Автореферат и диссертация по медицине (14.01.17) на тему:Аутодермопластика глубоких термических ожогов с использованием препарата "Вин-фар", содержащего фактор роста фибробластов (экспериментальное исследование)
Автореферат диссертации по медицине на тему Аутодермопластика глубоких термических ожогов с использованием препарата "Вин-фар", содержащего фактор роста фибробластов (экспериментальное исследование)
На правах рукописи
005053182
НИКИТЕНКО Иван Евгеньевич
Аутодермопластика глубоких термических ожогов с использованием препарата «Винфар», содержащего фактор роста фибробластов (экспериментальное исследование).
14.01.17 Хирургия
АВТОРЕФЕРАТ
диссертации на соискание ученой степени кандидата медицинских наук
11 ОКТ 2012
Оренбург - 2012
005053182
Диссертация выполнена в Государственном-бюджетном образовательном учреждении высшего профессионального образования «Оренбургская государственная медицинская академия» Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации
Научный руководитель
доктор медицинских наук, профессор Научный консультант доктор медицинских наук, профессор
Официальные оппоненты:
доктор медицинских наук, профессор, заведующий кафедрой хирургии ФППС ГБОУ ВПО ОрГМА Минздравсоцразвития России Третьяков Анатолий Андреевич
доктор медицинских наук, профессор, руководитель ожогового центра ФГБУ института хирургии им. A.B. Вишневского
Минздравсоцразвития России Алексеев Андрей Анатольевич
Ведущая организация: Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования «Самарский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации
Павловичев Сергей Алексеевич Полякова Валентина Сергеевна
Защита диссертации состоится « 'Р. '» /"¿3 2012 г. в « /£> » часов на заседании диссертационного совета Д 208.066.02 при Государственном бюджетном образовательном учреждении высшего профессионального образования «Оренбургская государственная медицинская академия» Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации (Россия. 460000, г. Оренбург, ул. Советская, 6).
С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке ГБОУ ВПО «Оренбургская государственная медицинская академия» Минздравсоцразвития России.
Автореферат разослан « ? (г> _2012 г.
Ученый секретарь диссертационного Совета
доктор медицинских наук, профессор ^^^ Р.И. Сайфутдинов
ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ Актуальность темы
Одним из наиболее распространенных и имеющих явную тенденцию к нарастанию видов повреждений остаются термические ожоги. Реальное влияние на рост числа ожогов у населения оказывают издержки научно-технического прогресса, увеличение количества потенциальных источников термических поражений (C.B. Попов, 2000). Ежегодно в Российской Федерации регистрируется более 400000 пострадавших с термическими поражениями различной тяжести, их частота доходит до 300-350 случаев на 100000 населения (Митряшов К.В. и др. 2011).
Хирургическое лечение больных с глубокими ожогами представляет собой серьезную медико-социальную проблему, значение которой с каждым годом неуклонно возрастает. Непосредственные и отдаленные результаты их лечения существенной положительной динамики за последние десятилетия не претерпели. При выполнении аутодермопластики расщепленными кожными лоскутами очень часто наблюдается лизис пересаженных трансплантатов. По данным Рудовского В. с сотр. (1980) приживление трансплантатов происходит менее, чем в 50 % случаев. А Усов В.В. с сотр. (2011) установили, что полное приживление пересаженных трансплантатов достигается лишь у 65,7% больных. Использование новых технологий закрытия ожоговых ран посредством применения культивированных клеток (кератиноциты и фибробласты) хотя и способствует заживлению, однако приводит к излишнему рубцеванию ран, что ведет к неудовлетворительным эстетическим и функциональным результатам (Shevchenko V.R. et al., 2010). Одной из задач современной хирургии, и, в частности, комбустиологии, является дальнейшее изучение репаративной регенерации кожного покрова и поиск препаратов способных её стимулировать.
Перспективным направлением оказалось исследование группы белков, которые получили-'общее название «факторы роста». Это полипептиды с молекулярной массой 5-50 кДа, объединенные в группу трофических
. регуляторных субстанций. Подобно гормонам, эти факторы обладают широким спектром биологического действия - стимулируют или ингибируют митогенез, хемотаксис, дифференцировку определённого типа клеток (Y.-H. Ching et al. 2011). Одним из наиболее изученных ростовых факторов является семейство факторов роста фибробластов (ФРФ), которые активно участвуют в эмбриональном развитии, процессах ангиогенеза и в заживлении ран (Ornitz D.M. et al., 2001).
В результате многолетних исследований феномена транслокации бактерий из желудочно-кишечного тракта проф. В.И. Никитенко (2011) впервые обнаружен природный штамм бактерий Bacillus subtilis 804, продуцирующий бактериальный фактор роста фибробластов. Наличие нового фактора роста фибробластов в метаболитах штамма подтверждено исследованиями и актом Научно-производственного центра медицинской биотехнологии (г. Москва) в 1989 году. Оказалось, что обнаруженный фактор роста фибробластов - это комплекс термостабильных (до 128 °С) четырех белков, молекулярной массой от 11 до 14 kD. В биотехнологическом эксперименте с культурой фибробластов этот фактор роста, по сравнению с контролем, на 30 — 45% увеличивает число вырастающих клеток. Вышеописанные обстоятельства побудили нас изучить влияние ранее неизвестного и впервые полученного в г. Оренбурге фактора роста фибробластов на заживление ожоговых ран. Был создан препарат с метаболитами штамма бактерий Bacillus subtilis 804, который получил название «Винфар» (свидетельство на товарный знак №433087 от 23 марта 2011 г.). Технология его получения проста, легко воспроизводима, не требует больших материальных вложений, что может быть чрезвычайно существенным при последующем внедрении препарата «Винфар» в широкую клиническую практику лечения тяжелообожженных.
Цель и задачи исследования
Цель работы — улучшение качества лечения глубоких термических ожогов путем экспериментальной разработки новой технологии
аутодермопластики при лечении ожоговых ран с использованием
лекарственного препарата «Винфар», содержащего " новый фактор роста фибробластов.
Для достижения этой цели поставлены следующие задачи:
1. Выполнить клиническое и патоморфологическое исследования приживления свободных кожных лоскутов при пластике гранулирующих ран у животных с глубокими термическими ожогами при местном использовании препарата «Винфар», содержащего новый фактор роста фибробластов.
2. Провести клинические и гистоморфологические наблюдения за приживлением свободных кожных трансплантатов на глубокие ожоговые раны после выполнения первичной тангенциальной некрэктомии при местном применении препарата «Винфар».
3. Изучить динамику заживления «донорских» ран у экспериментальных животных после забора кожи для аутодермопластики с местным применением препарата «Винфар».
Научная новизна
Впервые экспериментально на основе клинических данных, светооптического анализа гистологического материала и иммуногистохимических исследований доказана возможность применения препарата «Винфар», содержащего фактор роста фибробластов, для лечения ожоговых и донорских ран.
Установлено, что местное использование препарата «Винфар» во время аутодермопластики за счет сокращения сроков фиксации и улучшения его питания приводит к скорому и полному приживлению кожных трансплантатов на гранулирующие ожоговые раны. Данная методика при ограниченных глубоких ожогах предохраняет кожные лоскуты от некроза после первичной тангенциальной некрэктомии и способствует их приживлению (патент РФ № 2431203, 10.10.2011).
Однократное нанесение на раны препарата «Винфар» нормализует течение раневого процесса, способствует синтезу зрелого коллагена и снижает активность склеротического процесса. В результате этого не происходит
5
формирование грубых рубцов. Доказано, что применение препарата «Винфар», содержащего новый фактор роста фибробластов, приводит к сокращению времени заживления «донорских» ран.
Научно-практнческая значимость работы.
Полученные новые результаты исследований являются необходимым этапом разработки оригинального лекарственного препарата, содержащего бактериальный фактор роста фибробластов. Внедрение в клиническую практику этого средства в перспективе позволит улучшить результаты лечения тяжелообожженных.
Основные положения, выносимые на защиту.
1. Разработанная новая технология выполнения аутодермопластики с местным применением препарата «Винфар», содержащим фактор роста фибробластов, позволяет существенно улучшить приживление свободных кожных трансплантатов на ожоговые раны.
2. Использование препарата «Винфар» в эксперименте улучшает качество лечения глубоких ожогов и «донорских» ран за счет оптимизации фаз раневого процесса, при этом обеспечивая формирование органотипического регенерата.
Апробация работы и публикации
Основные результаты исследований представлены на заседании проблемной комиссии по хирургии ГБОУ ВПО «Оренбургская государственная медицинская академия» Минздравсоцразвития Российской Федерации, клинических конференциях травматологов-ортопедов ММУЗ ГКБ №4 (г. Оренбург, 2010, 2011), ежегодных региональных конференциях молодых ученых и специалистов (г. Оренбург, 2010, 2011), десятой международной научно-практической конференции «Исследование, разработка и применение высоких технологий в промышленности» (г. Санкт-Петербург, 2010), EPS Global 1-st International Complementary and Alternative Medicine Conference (r. Нанкин, Китай, 2010), национальном конгрессе «Пластическая хирургия» (г. Москва, 2011).
Fio материалам диссертации опубликовано 9 печатных работ, 5 из которых - в ведущих российских рецензируемых изданиях, рекомендованных ВАК. Получен патент Российской Федерации на изобретение № 2431203 от 10.11.2011г.
Структура и объем диссертации
Диссертация изложена на 128 страницах машинописного текста, состоит из введения, обзора литературы, описания материалов и методов исследования, глав с изложением результатов собственных исследований, обсуждения полученных результатов, выводов и указателя литературы, включающего 245 источников, в том числе 37 работ отечественных и 208 работ зарубежных авторов. Диссертация иллюстрирована 62 рисунками и 6 таблицами.
СОДЕРЖАНИЕ РАБОТЫ Материалы и методы
Для выполнения экспериментов использовался лекарственный препарат «Винфар», изготовленный на предприятии «Бакорен». «Винфар» - это стерильная прозрачная жидкость, содержащая 5% метаболитов с новым фактором роста фибробластов и воду. Содержание белка в нем - менее 0,1%, а количество фактора роста - не менее 10 нанограмм в мл. РН препарата - 7,1 + 0,2.
Совместными исследованиями с лабораторией механизмов гибели опухолевых клеток (зав. лабораторией - д.м.н. А.А.Штиль) НИИ канцерогенеза ГУ РОНЦ им. Н.Н.Блохина РАМН (г. Москва) было изучено влияние препарата «Винфар» на миграцию фибробластов.
Клетки (фибробласты) рассеивались в лунки 24-луночного планшета и оставлялись на сутки для распластывания и образования монослоя. Затем пипеткой наносили повреждение монослоя (раневая полоса). После этого вносилось 12 и 25 мкл препарата «Винфар» на 1 мл среды, контроль оставлялся без препарата. Далее ежедневно морфологически контролировалось состояние культуры. Опыт проводился трижды.
На следующем этапе исследования экспериментальным путем изучено местное воздействие препарата «Винфар» на течение и исходы лечения термических ожогов. Эксперименты на животных выполнялись в ГБОУ ВПО «Оренбургская государственная медицинская академия» Минздравсоцразвития Российской Федерации в соответствии с требованиями «Европейской конвенции по защите позвоночных животных, используемых для экспериментальных и других научных целей» (Страсбург, 1985). Исследования выполнены на 102 лабораторных белых крысах-самцах линии «Wistar» массой 185 - 215 г (табл. 1). Все животные были получены из питомников лабораторных животных «Столбовая» и «Рапполово».
Шестидесяти двум крысам наносились глубокие контактные ожоги в области спины. Модель ожоговой раны получали по методике В.В. Болтовской (2004). В межлопаточной области у крыс под тиопенталовым наркозом тщательно выбривалась кожа. Для наркоза 1% раствор тиопентала натрия вводился крысам внутрибрюшинно в дозе 40 мг на 1 кг массы животного. Операционное поле обрабатывалось 70 %-м этиловым спиртом. Тонкостенную стеклянную колбу с диаметром дна 1,2 см, наполненную водой с температурой 100 °С, прикладывали к выбритому участку кожи на 35 секунд. После формирования некротического струпа на 6 - 8 сутки выполнялась некрэктомия, а когда происходило созревание грануляционной ткани, на 12 сутки под тиопенталовым наркозом производилась аутодермопластика. При этом донорские места на спине в поясничной области тщательно выбривали, обрабатывали 70 %-м этиловым спиртом, лезвием выкраивали свободные кожные лоскуты.
У животных первой группы (35 крыс) трансплантация кожи выполнялась с использованием препарата «Винфар», который наносился на ожоговую гранулирующую рану в дозе 0,05 мл перед укладкой свободных кожных лоскутов (опыт 1). «Донорские» раны так же орошались препаратом «Винфар» в той же дозировке.
Второй группе крыс (27 -животных) вместо препарата «Винфар» на ожоговые гранулирующие раны перед укладкой свободных кожных лоскутов капали 0,05 мл 0,9% стерильного раствора натрия хлорида (контроль 1). «Донорские» раны в этой группе животных также орошались 0,05 мл 0,9 % раствором натрия хлорида.
Ежедневно у животных этих двух групп с экспериментальными ожогами оценивалось клиническое состояние ожоговых и «донорских» ран, степень приживления трансплантата, а также регистрировались потребление корма и воды, особенности поведения, масса тела животных. Затем на седьмые, десятые и двадцать первые сутки по 5 животных из каждой группы были выведены с помощью летальной дозы 1 % раствора тиопентала натрия (100 мг на 1 кг массы животного). За остальными животными обеих групп наблюдение продолжалось до 30 суток, затем они были выведены из опыта. Ткань области ожоговых и «донорских» ран забиралась для морфологических и иммуногистохимических исследований.
На следующем этапе экспериментального исследования сорока крысам по описанной выше методике под тиопенталовым наркозом наносились глубокие контактные ожоги в области спины. При этом диаметр дна пробирки равнялся 1,5 см. Через 10 мин. после получения ожога скальпелем выполнялась первичная тангенциальная некрэктомия до мелкоточечного кровотечения. Забор кожных трансплантатов выполнялся лезвием на предварительно выбритой поясничной области спины. Перед укладкой кожных лоскутов на ожоговые раны, они были рассечены и уложены марочным способом.
У двадцати животных перед укладкой свободных кожных лоскутов раны орошались препаратом «Винфар» в дозе 0,05 мл (опыт 2). На «донорские» раны у этих животных также наносили «Винфар» в той же дозе. У других двадцати крыс перед укладкой кожных лоскутов ожоговые и «донорские» раны орошались 0,05 мл стерильного 0,9 % раствора натрия хлорида каждая (контроль 2).
Таблица 1.
Данные о характере экспериментов н количестве животных.
Наименование серии опытов
Количество животных
Сроки выведения и? опыта
Аутодермопластика ожоговой раны после формирования некротического струпа и его удаления с применением 0,05 мл препарата «Винфар» (опыт 1)._
35
На 7 сутки после аутодермопластики -5 крыс, на 11 сутки - 5 крыс, на 21 сутки - 5 крыс, на 30 сутки - 20 крыс.
Аутодермопластика ожоговой раны после формирования струпа и его удаления с применением физиологического раствора натрия хлорида 0,9 % дозой 0,05 мл (контроль 1).
27
На 7 сутки после аутодермопластики -5 крыс, на 11 сутки - 5 крыс, на 21 сутки - 5 крыс, на 30 сутки - 12 крыс.
Аутодермоплстика ожоговой раны после тангенциальной некрэктомии с применением 0,05 мл препарата «Винфар»(огтыт 2).
20
На 7 сутки после аутодермопластики -5 крыс, на 11 сутки - 5 крыс, на 21 сутки — 5 крыс, на 30 сутки — 5 крыс
Аутодермопластика после тангенциальной некрэктомии с применением физиологического раствора натрия хлорида 0,9 % дозой 0,05 мл (контроль 2).
20
На 7 сутки после аутодермопластики -5 крыс, на 11 сутки - 5 крыс, на 21 сутки - 5 крыс, на 30 сутки - 5 крыс.
Всего животных
102
Ежедневно у этик животных проводилась оценка клинического состояния ожоговых и «донорских» ран, степень приживления трансплантата, а также регистрировались потребление корма и воды, особенности поведения, масса тела животных. Затем на седьмые, десятые и двадцать первые сутки по 5 животных из каждой группы были выведены с помощью летальной дозы 1 % раствора тиопентала натрия (100 мг на 1 кг массы животного). За остальными животными обеих групп наблюдение продолжалось до 30 суток, затем они были выведены из опыта. Выполнялся забор тканей области ожоговых и «донорских» ран для гистологических и иммуногистохимических исследований.
Для гистологического и гистохимического исследования проводился под тиопенталовым наркозом (100 мг/кг) после декапитации забор материала от экспериментальных животных. Для световой микроскопии участки кожи области ожоговой раны с трансплантатом и «донорского» дефекта помещали в 10% нейтральный формалин и фиксировали при комнатной температуре в течение суток, после обезвоживания в спиртах с возрастающей концентрацией заливали в парафин. Приготовление серийных срезов толщиной 5-6 мкм осуществляли на ротационном микротоме МПС-2. Парафиновые срезы подвергали окраске гематоксилином Майера и эозином. Для выявления
ю
коллагеновых эластических волокон использовали окраску по Маллори, Ван-Гизон (Пирс Э., 1962; Меркулов Г.А., 1969). Часть материала фиксировали сразу в абсолютном спирте. Гистологические срезы из материала, зафиксированного в абсолютном спирте, окрашивали 0,1% раствором тодуидинового синего для выявления тучных клеток (Саркисов Д.С., Перова М.П., 1991). В окрашенных гистологических срезах с помощью окулярной сетки определена относительная объемная плотность сосудов, количество тучных клеток и фибробластов на условной единице площади формирующейся соединительной ткани.
На парафиновых срезах, помещенных на стекла Super frost plus, выявляли пролиферативную активность клеток эпидермиса и дермы с использованием набора реактивов для иммуногистохимии (фирма «BioGenex», США) и моноклональных антител Ki-67. Производили подсчет клеток экспрессирующих Ki-67 и выражали в %о. На стеклах препаратов от каждого экспериментального животного производили подсчет не менее 5 тыс. клеток эпидермиса. Кроме того, иммуногистохимически идентифицировали коллаген 1 и 3 типов с помощью набора моноклональных антител (anti-Collagen 1, antiCollagen 3) с использованием той же системы визуализации (фирма «BioGenex», США). Исследования проводили согласно протокола фирмы производителя.
В ходе проведенного морфологического исследования было проанализировано 1278 стекол.
Статистическая обработка производилась на персональном компьютере с помощью лицензированного пакета прикладных программ «Biostat». При обработке полученных результатов использовались методы описательной статистики и сравнения средних. Достоверность результатов оценивалась с помощью критерия Стьюдента и X2. При этом достоверными считались различия, где уровень значимости (р) был меньше 0,05 (Платонов А.Е., 2000).
и
Результаты исследования и их-обсуждение
Исследования in vitro по изучению действия препарата «Винфар» на клеточную миграцию фибробластов показали, что препарат «Винфар» в дозе 12 мкл привел к стопроцентному заживлению раневой полосы на третьи сутки, при дозе 25 мкл - 90,1 ±1,2 %. В контроле заживление раневой полосы составило 50,2 ± 0,9 %. (р< 0,05). Препарат «Винфар» значительно стимулирует миграцию фибробластов. Это согласуется с исследованиями Sasaki Т. (1992), который установил, что рекомбинантные факторы роста усиливают миграционную активность этих клеток.
На следующем этапе были выполнены клинические наблюдения за заживлением ожогов у крыс после аутодермопластики. После нанесения животным термических ожогов у них на коже сначала появлялась гиперемия, затем образовывались эпидермальные пузыри. Через двадцать четыре часа все крысы стали вялыми, адинамичными. Животные плохо питались. Потребление корма и воды было низким. Наметилась тенденция к снижению массы тела у всех животных. Вес животных в опытной группе составила 195,29+1,63 г, а в контрольной 193,15 ±1,79 г (табл. 4, р>0,05). Пальпация области ожоговой раны вызывала резкую негативную реакцию, что, очевидно было связано со значительным болевым раздражением. Ожоговые раны в опытной группе были размером 1,27 ± 0,04 см2, а в контроле 1,28 ± 0,05 см2 (р> 0,5). Раны были покрыты некротическим струпом коричневого цвета у всех животных.
Через девяносто шесть часов после нанесения ожоговых ран состояние крыс несколько улучшилось. Они стали активнее вести себя, потребление корма и воды увеличилось. Вокруг ран сохранялись гиперемия и отек. Твердый некротический струп коричневого цвета был плотно спаян с окружающими тканями. Отделяемое из ран отсутствовало.
С пятых суток состояние животных вновь ухудшилось. Животные стали вялыми. Реакция на внешние раздражители была не выражена. Потребление корма и воды снизилось. Гиперемия и отек увеличились, развился нагноительный процесс. Некротический струп серо-коричневого цвета начал
12
отторгаться от тканей раны по краям. Из под струпа выделялся серозно-гнойный экссудат. Масса животных обеих групп продолжала снижаться по сравнению с весом животных до травмы (р<0,05), и в опытной группе составила 189,68 ±1,48 г, а в контрольной 187,19 ±1,70 г (табл. 4).
После полного отграничения некротического струпа от жизнеспособных тканей, которое у разных животных происходило на б - 8 сутки, нами выполнялась вторичная хирургическая некрэктомия. Под некротическим струпом имелась грануляционная ткань красного цвета с гнойным отделяемым. Выявлялась слабая краевая эпителизация.
На двенадцатые сутки после ожога была выполнена аутодермопластика гранулирующих ран с применением и без применения препарата «Винфар». Масса животных на момент кожной пластики в опытной группе равнялась 190,02 ±1,57 г, а в контрольной - 187,03 ±1,75 г (табл. 4, р>0,05). Размеры ожоговых ран у животных опытной группы составили: 0,82 +0,04 см2, а контрольной: 0,81+0,05 см2 (р>0,5, табл. 2).
При проведении пластического закрытия гранулирующих ожоговых ран свободными кожными лоскутами нами было отмечено, что пересаживаемый трансплантат быстрее приклеивался к гранулирующей ожоговой ране в группе животных, у которых применялся исследуемый препарат «Винфар». Время адгезии кожного трансплантата в опытной группе составило 2,60 + 0,39 мин., тогда, как в контрольной группе без применения препарата «Винфар» кожные лоскуты фиксировались на ране дольше, в среднем за 12,82 + 0,77 (табл. 2, р< 0,001) мин. В доступной нам литературе мы не нашли сведений о лекарственных препаратах, позволяющих уменьшать сроки адгезии кожного трансплантата к грануляционной ткани. Между тем, это очень важно для осуществления успешного лечения глубоких ожогов. Быстрое «приклеивание» обеспечивает более раннее питание трансплантата и способствует полному приживлению пересаженной кожи.
Таблица-2.
Размеры ожоговых ран, кожных лоскутов и время адгезии трансплантатов в опытной и _контрольной группах (после выполнения вторичной некрэкгомии)._
Опыт 1 Контроль 1 Р
Размер ожоговых ран перед аутодермопластикой (см") 0,82 + 0,04 см2 (и =35) 0,81+0,05 CMj (п=27) р >0,5
Размер донорских ран (см2) 0,84 +0,03 CMJ(n=35) 0,83 + 0,03 см" (п=27) р> 0,5
Время адгезии кожного лоскута (мин.) 2,60+ 0,08 (п=35) 12,82+ 0,19 (п=27) р< 0,01
Через сорок восемь часов после трансплантации кожи у всех животных опытной группы трансплантаты были розового цвета, отделяемого из ран не отмечено. Отек и гиперемия вокруг ожоговой раны значительно уменьшились, но при пальпации области раны по-прежнему возникала негативная реакция. Лоскуты были плотно приклеены к ране.
В контрольной группе на вторые сутки после аутодермопластики у трех животных кожные лоскуты приобрели темно-коричневый цвет. Из ран у этих крыс обильно выделялась серозно-гнойная жидкость. Вокруг раны имелись выраженный отек и гиперемия. У остальных двадцати четырех животных контрольной группы кожные лоскуты были бледно-серого цвета.
При дальнейшем проведении эксперимента еще у восьми животных контрольной группы наблюдалась гибель кожных трансплантатов (на третьи, четвертые, тринадцатые, четырнадцатые и пятнадцатые сутки). У остальных 16 животных группы контроля аутотрансплантаты прижились. При наблюдении за животными опытной группы гибели трансплантатов не наблюдалось ни у одного из тридцати пяти животных. Раны у всех животных опытной группы эпителизировались на 10 сутки после проведения аутодермопластики.
При использовании препарата «Винфар» во время аутодермопластики на гранулирующие ожоговые раны клинически установлено, что полное приживление кожных трансплантатов наступило в 100% случаев. У животных, у которых вместо препарата «Винфар» рана орошалась 0,9% стерильным раствором натрия хлорида, кожные трансплантаты приживались существенно хуже. У одиннадцати из двадцати семи животных (40,74 %) произошел некроз кожных трансплантатов (р< 0,005). Гибель кожных лоскутов у этих животных происходила в различные сроки, начиная со вторых суток, и продолжалась до
пятнадцатых суток. Это согласуется с данными Smith P:D. et al. (2000) и Akita S. et al. (2010), которые установили, что рекомбинантные факторы роста фибробластов способствуют приживлению и ускоряют закрытие ячеек в перфорированных кожных лоскутах.
Благодаря ускоренному приживлению трансплантатов при применении препарата «Винфар», клинические проявления ожоговой интоксикации быстро купировались, животные раньше активизировались. Прибавка массы после аутодермопластики у животных опытной группы отмечена уже на третьи сутки после операции, тогда, как животные контрольной группы начинали прибавлять вес только с десятых суток после операции (табл. 4).
Наши клинические наблюдения в полной мере были подтверждены гистологическими исследованиями. Уже на седьмые сутки после трансплантации кожи у животных опытной группы наблюдалось полноценное приживление трансплантата к подлежащему раневому ложу, из которого произошла его адекватная реваскуляризация. Была восстановлена функциональная активность трансплантируемого участка кожи. Воспалительный процесс на границе трансплантата и раневой поверхности почти отсутствовал, оставался только слабо выраженный полиморфно-клеточный инфильтрат. Пересаженный участок кожи на всём протяжении был хорошо прикреплён к подлежащему ложу.
В группе животных без применения исследуемого препарата на седьмые сутки после аутодермопластики в трансплантате наблюдались выраженные дистрофические изменения эпидермиса, клеток фибробластического дифферона и межуточного вещества дермы. В эпителии отмечена гидропическая дистрофия, в дерме - отёк и выраженная лейкоцитарная инфильтрация. Трансплантат с подлежащим ложем был связан рыхлой прослойкой отёчной грануляционной ткани.
Уже на одиннадцатые сутки после трансплантации кожи в группе животных, у которой применялся препарат «Винфар», оказалось, что гистологически строение трансплантата напоминало строение интактной кожи
краёв раны. Эпидермис был многослойный, полноценный, приобретал толщину, близкую к нормальной с разделением на все функциональные слои и с признаками поверхностной кератинизации. Волокнистый матрикс преобладал над аморфным, волокна были расположены с заметным выравниванием параллельно фибробластам и базальной мембране эпидермиса. В связи с завершением формирования эпителиального пласта, дифференцировавшегося на все функциональные слои, показатель митотической активности краевых участков трансплантата был снижен по сравнению с контролем в 1,4 раза (р< 0,05), и оставался одинаковым по всей площади пересаженного участка кожи.
В группе животных без применения препарата «Винфар» на одиннадцатые сутки после пересадки кожи выявлено, что в толще трансплантата сохранялась слабо выраженная, но диффузная лимфо-гистиоцитарная инфильтрация с примесью эозинофилов. В краевых участках трансплантата митотическая активность клеток базального и шиповатого слоев возрастала до 45,8±0,5 %о по сравнению с участками, удаленными от этой зоны (18,3±0,4%о, р< 0,05). В почти редуцированной грануляционной ткани под трансплантатом, иногда встречались очаги расширенных полнокровных сосудов, питающих пересаженный участок кожи с многочисленными сидерофагами, что свидетельствовало о замедленной редукции сосудов грануляционной ткани ложа трансплантата с длительным эритродиапедезом и экстракапиллярным лизисом эритроцитов. Среди многочисленных фибробластов появлялись лишь единичные фиброциты.
Таким образом, установлено, что однократное орошение ожоговой гранулирующей раны препаратом «Винфар», содержащим фактор роста фибробластов, во время операции уже на седьмые сутки после аутодермопластики значительно снижает уровень воспалительной реакции в ране. При этом отмечены стимуляция пролиферации эпителиальных клеток, усиление ангиогенеза и реваскуляризации трансплантата. Это в полной мере подтверждается данными других исследований. М^игакч Н. е1 а1. (2012) при применении рекомбинантных факторов роста фибробластов отметили
16
снижение уровня воспаления- в ранах. Ряд авторов установили, что эти факторы роста усиливают пролиферацию эндотелиальных клеток, а также повышают уровень ангиогенеза в ранах (Huang S. et al., 2006; Komori M. et al., 2005; Su S.С. et al., 2008). Это подтверждает высокую биологическую активность оригинального препарата «Винфар», содержащего новый фактор роста фибробластов.
При гистологическом исследовании области ожоговых ран у животных контрольной группы без применения препарата «Винфар» на двадцать первые сутки имелся выраженный склеротический процесс, как в трансплантате, так и в окружающих его тканях. В результате этого у животных контрольной группы, несмотря на успешное приживление аутодермотрансплантата, не была достигнута органотипичность пересаженного участка кожи. Из-за асинхронного течения стадий репарации в окружающих трансплантат тканях процесс восстановления шел по типу субституции с формированием грубой рубцовой ткани. Это подтверждает мнение ряда исследований, что факторы роста фибробластов являются антагонистами фиброза и вызывают свободное от рубцов заживление раневых дефектов (Dang С.M. et al., 2003; Kong W. et al., 2008; Abe M. et al., 2012).
С помощью иммуногистохимических исследований установлено, что препарат «Винфар», содержащий фактор роста фибробластов, к одиннадцатым суткам стимулирует выраженный синтез зрелого коллагена I типа (рис. 1). В это время в группе контроля 1 оставался выраженным фибриллогенез тонких волокон незрелого коллагена III типа, которые были беспорядочно расположены в толще фибриллярного матрикса (рис. 2). Наши наблюдения в полной мере совпадают сданными других авторов (Dantas Filho A.M. et al., 2007; Bakhshayesh M. et al., 2012), которые установили стимулирующее влияние рекомбинантных факторов роста фибробластов на синтез зрелого коллагена I типа. Следовательно, исследуемый препарат «Винфар» по своей биологической активности сходен с известными рекомбинантными факторами роста фибробластов.
.........» » "" ,« :
Рис. 1. Окружающая аутодермотрансплантат грануляционная ткань. Опытная группа. 11 сутки после пересадки на гранулирующую раневую поверхность. Иммуногистохимическая реакция на выявление коллагена I типа.
Рис. 2. Окружающая аутодермотрансплантат грануляционная ткань. Контрольная группа. 11 сутки после пересадки на гранулирующую раневую поверхность. Иммуногистохимическая реакция на выявление коллагена Ш типа.
Следующим этапом работы было изучение влияния препарата «Винфар» на приживление кожных трансплантатов к ожоговым ранам после первичной тангенциальной некрэктомии. Сорока крысам были нанесены термические ожоги. Площадь ожоговых ран в опытной группе составила 2,09 ± 0,08 см2, а в контроле 2,22 ± 0,06 см2 (табл. 3, р> 0,05). Масса животных в опытной группе равнялась 196,74 ± 1,31 г, а в контроле 196,82 ±1,43 г (табл. 5, р> 0,5). Тотчас после выполнения тангенциальной некрэктомии производилась аутодермопластика. У двадцати животных ожоговые раны перед укладкой трансплантатов орошались препаратом «Винфар» в дозе 0,05 мл (опыт 2). «Донорские» раны в этой группе так же обрабатывались исследуемым препаратом в той же дозировке. У двадцати животных перед укладкой кожных
лоскутов ожоговые раны орошались стерильным 0,9 % раствором натрия
18
хлорида в дозе 0,05 мл (контроль 2). «Донорские» раны в* этой группе обрабатывались стерильным 0,9 % раствором натрия хлорида. Время адгезии лоскутов составило в опыте 2,60+ 0,11 мин, а в контроле - 13,43 + 0,17 мин (табл. 3, р< 0,001).
Таблица 3.
Размер ожоговых, «донорских» ран и время адгезии трансплантатов в опытной и контрольной группах (при выполнении аутодермопластики _после первичной некрэктомни).__
Опыт 2 Контроль 2 Р
Размер ожоговых ран (см2) 2,09 + 0,08 (п=20) 2,22 + 0,06 (п=20) р> 0,05
Размер «донорских» ран (см") 2,12 ±0,06 (п=20) 2,24 +0,07 (п=20) р> 0,05
Время адгезии трансплантатов (мин.) 2,60+0,11 (п=20) 13,43+0,17 (п=20) р< 0,001
В последующие дни проведения эксперимента у восьми животных опытной группы произошел некроз трансплантатов (40%): у двух крыс - на десятые сутки, у одного животного - на пятнадцатые сутки, у трех - на шестнадцатые, семнадцатые и восемнадцатые сутки. Еще у двух животных гибель кожных лоскутов наступила к двадцатым суткам после выполнения аутодермопластики. У остальных двенадцати крыс кожные трансплантаты прижились.
В контрольной группе на вторые сутки после аутодермопластики у одного животного произошла гибель трансплантата. Животное было резко заторможено. Из раны имелось обильное серозно-гнойное отделяемое. Вокруг раны имелся выраженный отек и гиперемия. При последующем наблюдении животных контрольной группы гибель кожных лоскутов наступила у двух животных на третьи сутки, у шести животных на четвертые сутки, у пяти животных на пятые сутки, у трех животных на шестые сутки, у двух животных на седьмые сутки и у одного животного на десятые сутки эксперимента.
Таким образом, гибель кожных трансплантатов у животных контрольной группы наступила у всех двадцати крыс, или в 100 % случаев. В опытной группе, в которой применялся препарат «Винфар», некроз трансплантатов наступил только у восьми из двадцати животных (40 %, р< 0,005).
" На 7-30 сутки опыта" масса тела животных в опытной группе стала большей, чем у крыс контрольной группы (табл. 5, р < 0,05), что свидетельствовало об уменьшении ожоговой интоксикации и благоприятном течении раневого процесса при использовании лекарственного препарата «Винфар».
При гистологическом исследовании трансплантатов в контрольной группе установлено, что на седьмые сутки после операции в пересаженном кожном лоскуте наблюдалась выраженная диффузная лейкоцитарная инфильтрация на фоне отёка и паранекротических изменений всех тканевых элементов. Сосуды пересаженного участка кожи были или запустевшие, или с лизирующимися эритроцитами. Под трансплантатом шел процесс формирования грануляционной ткани. Между грануляциями и аутодермотрансплантатом определялась прослойка фибринозно-лейкоцитарного экссудата, что подтверждало отсутствие адекватной фиксации и приживления пересаженного фрагмента кожи к подлежащему ложу.
При исследовании трансплантатов у животных с использованием препарата «Винфар», в сравнении с контролем, отмечалось более длительное нахождение ткани трансплантата в состоянии дистрофии (паранекроза). По-видимому, более длительный паранекротический процесс и отсроченный, по сравнению с контролем, некроз в опытной группе, связан с частичной реваскуляризацией трансплантата, что позволило пересаженному фрагменту кожи дольше находиться в переживающем состоянии. Однако, поздняя и частичная реваскуляризация приводила к неадекватной фиксации кожного лоскута и, как следствие, гибели трансплантата, хоть и позже чем в группе контроля. Тем не менее, у 60% опытных животных аутодермотрансплантат прижился к раневой поверхности, при этом морфологическая картина течения репаративного процесса была аналогична контрольной группе, где выполнялось закрытие гранулирующих ожоговых ран.
Таблица 4.
Динамика массы тела крыс в различные сроки проведения эксперимента (дермопластика гранулирующих ожоговых ран) в . _опытной и контрольной группах (в г).____
Сутки болезни Опыт 1 Изменение массы тела в опыте Контроль 1 Изменение массы тела контроль Р
До ожога 198,44+1,72 (п=35) 196,42+1,86 (п=18) р>0,05
1-е сутки после ожога 195,29+1,63 (п=35) -3,50 ±0,27 193,15 +1,79(п=27) -3,32 ±0,27 р> 0,05
3-й сутки после ожога 191,20+1,60 (п=35) -3,82 +0,22 189,42+1,79(п=27) -3,69+0,23 Р >0,5 :
5-е сутки после ожога 189,68+ 1,48 (п=35) -1,71 ±0,18 187,19 ±1,70 (п=27) -2,23 ±0,26 р >0,05
7-е сутки после ожога 189,11 +1,49 (п=35) -0,53 ±0,27 186,53 ±1,69 (п=27) -0,65 ±0,21 р>0,05
12-е сутки после ожога. 190,02 +1,57 (п=35) 0,91±0,29 187,03 ±1,75 (п=27) 0,54 ±0,29 р >0,05
1-е сутки после аутодермопластики 188,50+1,56 (11=35) -1,53 ±0,14 183,92 ±1,69 (п=27) -3,08 ±0,29 р>0,05
3-й сутки после аутодермопластики 187,85 ±1,57 (п=35) -0,62 ±0,21 180,88 ±1,60 (п=27) -3,04 ±0,27 р<0,005
5-е сутки после аутодермопластики 189,26+1,60 (п=35) 1,41 ±0,15 179,85 ±1,55 (п=27) -0,96+0,37 р<0,0005
7-е сутки после аутодермопластики 190,53+1,59 (п=35) 1,18 ±0,20 179,53 ±1,42 (п=27) -0,40 ±0,29 р<0,0005
10-е сутки после аутодермопластики 193,10+1,54 (п=30)* 1,21 ±0,23 180,33 ±1,55 (п=22)* 0,35±0,39 р<0,0005
15-е сутки после аутодермопластики 193,37+1,72 (п=25)» 2,35 +0,32 183,94+1,61 (п=17)* 0,87 +0,66 р<0,0005
20-е сутки после аутодермопластики 196,41 +1,81 (п=25) 3,13 ±0,31 184,81 +1,58 (п=17) 0,8+0,70 р<0,0005
25-е сутки после аутодермопластики 198,32+2,26 (п=20)* 2,53 ±0,23 188,18+1,81 (п=12)* 2,0 ±0,56 р<0,005
30-е сутки после аутодермопластики 200,31 ±2,30 (п=20) 2,06 ±0,32 190,18 ±2,11 (п=12) 2,10+0,60 р<0,005 ;
'- часть животных выведена из опыта для гистологического исследования.
Таблица 5.
Динамика массы тела крыс в различные сроки проведения эксперимента (дермопластика ожоговых ран после первичной
Дни после ожога Опыт 2 Изменение массы опыт 2 Контроль 2 Изменение массы контроль 2 Р
До ожога 196,73 ± 1,31 (п=20) 196,84 ±1,41 (п=20) р >0,5
Первые сутки после ожога 192,74+ 1,21 (п=20) -4,00 ± 0,30 192,84 ± 1,42 (п=20) -4,00 ± 0,36 р >0,5
Третьи сутки после ожога 189,31 ±1,05 (п=20) -3,42 ± 0,23 186,95 ±1,43 (п=20) -6,05 ± 0,40 р >0,05
Пятые сутки после ожога 188,64+ 1,09 (п=20) -1,63 ±0,34 183,07+ 1,88 (п=20) -4,05 + 0,38 р <0,05
Седьмые сутки после ожога 189,35+ 1,06 (п=20) 0,42 ± 0,29 180,64 ± 1,87 (п=20) -2,68 ±0,15 р <0,005 ,
Десятые сутки после ожога 190,21 + 1,48 (п=15)* 1,21 ±0,45 179,07 ±2,31 (п=15)' -1,50 ±0,37 р <0,005
Пятнадцатые сутки после ожога 193,13 + 1,84 (п=10)* 2,50 + 0,78 177,89 +2,72 (п=10)* -0,67 ± 0,50 р <0,005
Двадцатые сутки после ожога 195,1 1 + 1,80(п=10) 2,44 ± 0,44 179,66 ± 2,45 (п=10) 1,78 ± 0,28 р <0,005
Тридцатые сутки после ожога 200,50 ±1,32 (п=5)* 5,25 ±0,85 182,50 ± 2,22 (п=5)* 5,25 ± 1,32 р <0,005
* - часть животных выведена из опыта для гистологического исследования.
Таким образом, установлено, что оригинальный препарат «Винфар». предохраняет трансплантаты от некроза. Это согласуется с данными Bandera B.C. et al. (2010) о способности рекомбинантных факторов роста фибробластов повышать выживаемость кожных лоскутов при пластике.
При клиническом наблюдении за заживлением донорских ран установлено, что орошение этих ран препаратом «Винфар» благоприятно сказывается на их заживлении (табл. 6). При применении исследуемого препарата обращала на себя внимание более быстрая остановка капиллярного кровотечения по сравнению с контролем. У животных после аутодермопластики гранулирующих ран с применением препарата «Винфар» «донорские» раны полностью эпителизировались за 10,60 + 0,63 сут., а при аутодермопластике после первичной некрэктомии - за 13,50 +0,53 сут. Гнойных осложнений не отмечено ни у одного животного. При подобных повреждениях у животных контрольной группы 1 «донорские» раны эпителизировались в среднем за 15,81 + 1,80 сут., (у одного животного имелось нагноение), а в контрольной группе 2 - за 18,38 + 0,52 суток (у одного животного также отмечено нагноение).
При гистологическом изучении «донорских» ран без применения препарата «Винфар» на седьмые сутки после трансплантации в краях и дне донорских скальпированных ран кожи наблюдались умеренный отёк и лимфо-лейкоцитарная инфильтрация с преобладанием эозинофилов. Был выражен процесс новообразования сосудов грануляционной ткани. Наблюдалась интенсивная пролиферация фибробластов и фибриллогенез.
В опытной группе на седьмые сутки после забора кожного трансплантата, в отличии от контроля, отёк и лейкоцитарная инфильтрация в «донорской» ране отсутствовали. Тонкий слой эпителия закрывал большую часть раневого дефекта, наползая с краёв на зрелую грануляционную ткань, в которой уже начинается редукция сосудов. Пролиферация юных фибробластов была слабо выражена, число зрелых фибробластов
приближалось к максимуму, появлялись фиброциты, продолжался процесс увеличения фибриллярного матрикса.
Такая же морфологическая картина репаративного процесса в донорских ранах, как на седьмые сутки после обработки ран препаратом «Винфар», визуализировалась и в условиях контроля, когда «Винфар» не применялся, но только на одиннадцатые сутки эксперимента.
К одиннадцатым суткам после аутодермопластики у опытных животных грануляционная ткань в донорских ранах редуцировалась, частично сохраняясь только в субэпидермальных отделах, что, вероятно, было продиктовано повышенной потребностью ещё молодого и пролиферирующего эпителия в адекватном кровоснабжении. Тонкие коллагеновые волокна исчезали, одновременно образовывались толстые волокна и пучки, направленность которых определялась функциональной нагрузкой на данный участок кожи. Уменьшалось общее число клеток по отношению к фибриллярному матриксу, фиброциты преобладали над фибробластами. Эпидермис приобретал толщину, близкую к нормальной, с признаками поверхностной кератинизации, но ещё без формирования сосочков.
На двадцать первые сутки кожной пластики в опытной группе донорский раневой дефект имел признаки полного заживления и был представлен участком вновь образованной ткани, полностью соответствующей нормальной коже: эпидермис дифференцирован на все функциональные слои с признаками полноценной кератинизации и образованием погружённых в дерму сосочковых инвагинаций. Дерма была дифференцирована на сосочковый и сетчатый слои, сосуды грануляционной ткани полностью редуцированы. Процесс ремоделирования фибриллярного матрикса находился на стадии завершения. При этом тонкие коллагеновые волокна отсутствовали, вновь образованные толстые волокна и их пучки приобретали строго определённую направленность, почти до нормальных
...величин снижалась общая клеточность и был дифференцирован адекватный слой гиподермы.
Таблица 6.
Динамика заживления донорских ран в опытной н контрольной группах (см).
Сутки после забора трансплантатов Опыт 1 размер ран в см2. Контроль 1 размер ран в см2. Р Опыт 2 размер ран в см2. Контроль 2 эазмер ран в Р
Первые сутки после забора 0,79+ 0,020 (п=35) 0,83+0,030 (п=27) р>0,05 2,11 + 0,060 (п=20) 2,26+ 0,070 !п=20) р>0,05
Третьи сутки после забора 0,56+ 0,010 (п=35) 0,76+ 0,020 (п=27) р<0,01 1,64+0,060 (п=20) 2,16+0,060 (п=20) р<0,05
Седьмые сутки после забора 0,13+0,010 (п=35) 0,46 +0,020 (п=27) р<0,01 0,74 + 0,040 (п=20) 1,66 + 0,050 [п=20) р<0,01
Десятые сутки после забора 0,01+0,002 (п=30)* 0,24+ 0,020 (п=22)* р<0,01 0,22+ 0,030 (п=15)> 1,11+ 0,080 (п=15)» р<0,01
Четырнадцатые сутки после забора Все раны эпителизированы (п=25)* 0,03+ 0,008 (п=17)* Все раны эпителизированы (п=10)* 0,25 +0,020 (п=10)*
*- часть животных выведена из опыта для гистологических исследований.
На двадцать первые сутки после нанесения донорских ран без использования препарата «Винфар» морфологическая картина репаративного процесса была схожа с таковой в опытной группе с применением препарата, но на одиннадцатые сутки заживления. В отличие от интактной кожи, эпидермис так же ещё не формировал сосочковых инвагинаций в образующейся дерме, и сохранялась высокая общая клеточность соединительной ткани. Отличия состояли лишь в том, что в контрольной группе на двадцать первые сутки, по сравнению с опытом на одиннадцатые сутки была более выражена редукция сосудов субэпидермального слоя соединительной ткани, несомненно, за счёт большего (на 10 суток) времени заживления.
Таким образом, «донорские» раны после обработки препаратом «Винфар» полностью заживали на пять суток быстрее, по сравнению с животными контрольных групп без использования препарата, что было подтверждено и при гистологическом исследовании. Это согласуется с результатами наблюдений авторов, исследовавших свойства известных препаратов, содержащих рекомбинантные факторы роста фибробластов (Fu, Х.В. etal., 2000; Zhao-Fan, X. etal.,2007).
Результаты экспериментальных наблюдений позволили разработать новую технологию ауто дермопластики глубоких ожогов и лечения донорских ран, основанных на местном применении лекарственного препарата «Винфар», содержащего новый фактор роста фибробластов. Это является важным этапом в создании и регистрации нового лекарственного препарата, который позволит сократить время лечения и улучшить его качество при лечении тяжелой ожоговой травмы. Фактор роста фибробластов в препарате «Винфар» является природным. Высокая активность производственного штамма, в отличие от аналогов, позволяет получать относительно дешевый лекарственный препарат. Важным является наблюдение быстрой остановки капиллярного кровотечения в первой сосудисто-эндотелиальной фазе. Это может явиться предметом дальнейших научных исследований и создания новых гемостатических средств.
Выводы.
1. Разработанная новая технология выполнения аутодермопластики с использованием препарата «Винфар», содержащего фактор роста фибробластов, позволяет существенно улучшить результаты хирургического лечения глубоких ожогов и «донорских» ран.
2. Местное однократное орошение гранулирующей ожоговой раны препаратом «Винфар» при аутодермопластике способствует быстрой адгезии трансплантата, обеспечивает скорое и полное (100 %) приживление кожных лоскутов.
3. Применение препарата «Винфар» во время аутодермопластики после первичной тангенциальной некрэктомии приводит к выраженной реваскуляризации свободных кожных лоскутов и предохраняет их от некроза.
4. В результате местного применения препарата «Винфар» на «донорскую» рану после забора кожных лоскутов для аутодермопластики термических ожогов значительно ускоряется эпителизация «донорского» участка, восстанавливается полноценный кожный покров.
5. При использовании препарата «Винфар».происходит более быстрое
купирование клинических симптомов ожоговой интоксикации, которое проявляется в ранней активизации животных и увеличении их массы.
6. Лекарственный препарат «Винфар» стимулирует реваскуляризацию, клеточную пролиферацию фибробластов и эпителиоцитов кожи и восстанавливает органотипическое строение кожного покрова, при этом происходит усиление синтеза зрелого коллагена I типа и снижается активность склеротических процессов, что приводит к образованию менее выраженных рубцов по сравнению с контролем.
Список работ, опубликованных по теме диссертации.
1. Никитенко И.Е. Применение факторов роста фибробластов для лечения глубоких ожогов. / И.Е. Никитенко // Информационный архив - 2010 - Т. 4, № 3-4 - с. 88 - 90.
2. Никитенко В.И. Феномен транслокации бактерий и его использование в биотехнологии, медицине и ветеринарии. / В.И. Никитенко, В.А. Копылов, И.Е. Никитенко // Высокие технологии и фундаментальные исследования - г. Санкт-Петербург, 2010 - Том 4 - с. 40 - 42.
3. Никитенко В.И. Новые технологии в лечении ожогов и обширных дефектов мягких тканей / В.И. Никитенко, A.M. Гурьянов, С.А. Павловичев, И.Е. Никитенко и др. // Вестник Российской военно-медицинской академии - 2010 -№ 1(29)-с. 84-85.
4. Копылов В.А. Применение фактора роста фибробластов в медицине. / В.А. Копылов, И.Е. Никитенко // Вестник ОГУ - 2010 - № 4 - с. 95.
5. Миханов В.А. Влияние метаболитов культуры Bacillus subtilis 804 на процессы заживления ожоговых ран при проведении аутодермопластики. / В.А. Миханов, B.C. Полякова, В.А. Копылов, И.Е. Никитенко // Морфология - 2011 - Том 140 № 5 - с 100 — 101.
6. Полякова B.C. Экспериментально-гистологическое обоснование применения препарата на основе метаболитов Bacillus subtilis 804 для оптимизации заживления глубоких ран кожи. / B.C. Полякова, В.А. Миханов, В.А. Копылов, И.Е. Никитенко И Морфология-2011-Том 140, №5-с. 107- 108.
7. Никитенко В.И. Факторы роста в травматологии и хирургии. / В.И. Никитенко, С.А. Павловичев, A.A. Сафронов, И.Е. Никитенко // Травматология и ортопедия: материалы международной юбилейной научно-практической конференции травматологов-ортопедов «Достижения и перспективы развития травматологии и ортопедии» посвященной 20-летию Независимости Республики Казахстан - Астана 2011 -с. 357.
8. Копылов В.А. Использование метаболита бактерий Bacillus subtilis 804 при аутодермопластике ожоговых ран. / В.А. Копылов, И.Е. Никитенко, A.M. Гурьянов // Вестник ОГУ -2011 -№ 16 (135)-с. 289-291.
9. Никитенко И.Е. Применение метаболитов бактерий Bacillus subtilis 804, содержащих фактор роста фибробластов, для аутодермопластики при глубоких ожогах. / И.Е. Никитенко, В.А. Копылов // Сборник материалов национального конгресса «Пластическая хирургия» - г. Москва, 2011 - с. 24.
Изобретения по теме диссертации
1. Никитенко, В.И. Способ аутодермопластики в эксперименте. / В.И. Никитенко, В.А. Копылов, И.Е. Никитенко, С.Н. Гнедой - Пат. РФ № 2431203; опубл. 10.10.20011 г. (приоритет от 15.03.2010 г.), Бюл. № 28. -4 с.
26
Подписано в печать 19.09.2012 Формат 60x84/16. Компьютерный набор Гарнитура TimesNewRoman.
Тираж 150 экз.
Издательство ГБОУ ВПО ОрГМА, г. Оренбург, ул. Советская, 6
Оглавление диссертации Никитенко, Иван Евгеньевич :: 2012 :: Оренбург
Введение.
Глава 1. Оптимизация лечения глубоких ожогов с использованием факторов роста фибробластов (Обзор литературы).
Глава 2. Материалы и методы исследования.
2.1.Методика получения и описание исследуемого препарата.
2.2. Материал лабораторных и экспериментальных исследований.
2.3.Светооптические гистологические и иммуногистохимические исследования.
2.4.Методы статистического анализа результатов.
Глава 3. Изучение действия препарата «Винфар» на приживление кожных трансплантатов на ожоговые раны после вторичной некрэктомии.
3.1. Определение влияния препарата «Винфар» на миграцию фибробластов.
3.2. Результаты клинического наблюдения за заживлением термических ожогов после вторичной некрэктомии.
3.3. Гистоморфологическое описание заживления ожоговых ран после вторичной некрэктомии при лечении препаратом «Винфар».
Глава 4. Изучение действия препарата «Винфар» на приживление кожных трансплантатов на ожоговые раны после первичной тангенциальной некрэктомии.
4.1. Результаты клинического наблюдения за заживлением термических ожогов после первичной тангенциальной некрэктомии.
4.2. Гистоморфологическое описание заживления ожоговых ран после первичной тангенциальной некрэктомии при лечении препаратом
Винфар».
Глава 5. Изучение действия препарата «Винфар» на заживление «донорских» ран после забора свободных кожных трансплантатов.
5.1. Результаты клинического наблюдения за заживлением «донорских» ран после забора свободных кожных лоскутов.
5.2. Гистоморфологическое описание заживления «донорских» ран кожи после забора кожных трансплантатов.
Введение диссертации по теме "Хирургия", Никитенко, Иван Евгеньевич, автореферат
Одним из наиболее распространенных видов повреждений остаются термические ожоги. Реальное влияние на рост числа ожогов у населения оказывают издержки научно-технического прогресса, увеличение количества потенциальных источников термических поражений (C.B. Попов, 2000). Ежегодно в Российской Федерации регистрируется более 400000 пострадавших с термическими поражениями различной тяжести, их частота доходит до 300-350 случаев на 100000 населения (Митряшов К.В. и др. 2011).
Хирургическое лечение больных с глубокими ожогами представляет собой серьезную медико-социальную проблему, значение которой с каждым годом неуклонно возрастает. Непосредственные и отдаленные результаты их лечения за последние десятилетия существенной положительной динамики не претерпели. Одной из задач современной хирургии, и, в частности, комбустиологии, является дальнейшее изучение репаративной регенерации кожного покрова и поиск препаратов способных её стимулировать.
Перспективным направлением является изучение группы белков, которые получили общее название «факторы роста». Это полипептиды с молекулярной массой 5-50 кДа, объединенные в группу трофических регуляторных субстанций. Подобно гормонам, эти факторы обладают широким спектром биологического действия - стимулируют или ингибируют митогенез, хемотаксис, дифференцировку определённого типа клеток (Y.-H. Ching et al. 2011). К этой группе относятся - инсулиноподобные факторы роста (Herndon D.N. et al., 1996), эпидермальный фактор роста (Alemdaroglu С. et al., 2008), сосудистый эндотелиальный фактор роста (Infanger M. et al., 2004), фактор роста тромбоцитов (Greenhalgh D.G., 2005), трансформирующие факторы роста (Crowe MJ. et al., 2000), колониестимулирующий фактор роста (Ни X. et al., 2011), факторы роста фибробластов (Werner S. et al., 2003).
Одним из наиболее изученных ростовых факторов является семейство факторов роста фибробластов (ФРФ), которые активно участвуют в эмбриональном развитии, процессах ангиогенеза и в заживлении ран (Ornitz D.M. et al., 2001). Имеются многочисленные данные, что факторы роста фибробластов значительно ускоряют заживление ран и ожогов (McGee G.S. et al, 1988; Zheng J. et al, 1994, 1995; Fu X. et al, 1999; Yang Ы.М. et al, 2001; Xing B.R. et al, 2003; Cheng В. et al, 2003, 2004; Gao W.D. et al, 2007; Niu Y.W. et al, 2009), стимулируют ангиогенез во время заживления ран (Miyoshi M. et al, 2005; Komori M. et al, 2005; Wilcke I. et al, 2007; Qiu S.-L. et al, 2008), ускоряют заживление бактериально-загрязненных ран (Hayward P. et al, 1992; Stenberg B.D. et al, 1999; DantasFilho A.M. et al, 2007), улучшают организацию рубцовой ткани (Tan M.L. et al, 1993; Spyrou G.E. et al, 2002; Cheng В. et al, 2002; Akasaka Y. et al, 2007; Xie J.L. et al, 2008; Akita S. et al, 2008; Ishiguro S. et al, 2009), ускоряют заживление ран после забора расщепленных кожных лоскутов (Fu X. et al, 2000; Zhao-Fan X. et al, 2007), способствуют приживлению кожных трансплантатов на раны (Burges A.N, 1989; Sun T. et al, 1997; Liu P.Y. et al, 2005; Bandera B.C. et al, 2010). Все исследователи применяют рекомбинантные (полученные генно-инженерным способом белки-аналоги) факторы роста фибробластов (И. 10. Славченко и др. 2003; М.Э. Гаспарян и др. 2009). К сожалению, в клинической практике препараты, содержащие фактор роста фибробластов до настоящего времени не используются. Только в Китае и Японии проведены ограниченные клинические испытания лекарства с рекомбинантным фактором роста фибробластов при термической травме. Получены обнадеживающие результаты. Широкое клиническое использование уже известных препаратов, содержащих ФРФ, сдерживается сложностью и высокой стоимостью технологии получения фармацевтической субстанции и небольшими, фактически лишь лабораторными, объёмами её производства. Очевидно, что поиск новых, более доступных, источников ФРФ представляется чрезвычайно актуальным.
В результате многолетних исследований феномена транслокации бактерий из желудочно-кишечного тракта проф. В.И. Никитенко (2011) впервые обнаружен природный штамм бактерий Bacillus subtilis 804, продуцирующий бактериальный фактор роста фибробластов. В биотехнологическом эксперименте с культурой фибробластов этот фактор роста, по сравнению с контролем, на 30 - 45% увеличивает число вырастающих клеток. Вышеописанные обстоятельства побудили нас изучить влияние ранее неизвестного и впервые полученного в г. Оренбурге фактора роста фибробластов на заживление ожоговых ран. Был создан препарат с метаболитами штамма Bacillus subtilis 804, который получил название «Винфар» (свидетельство на товарный знак №433087 от 23 марта 2011 г.). Технология его получения проста, легко воспроизводима, не требует больших материальных вложений, что может быть чрезвычайно существенным при последующем внедрении препарата «Винфар» в широкую клиническую практику лечения тяжелообожженных.
Цель и задачи исследования
Цель работы - улучшение качества лечения глубоких термических ожогов путем экспериментальной разработки новой технологии аутодермопластики при лечении ожоговых ран с использованием оригинального лекарственного препарата «Винфар», содержащего новый фактор роста фибробластов.
Для достижения этой цели поставлены следующие задачи:
1. Выполнить клиническое и патоморфологическое исследования приживления свободных кожных лоскутов при пластике гранулирующих ран у животных с глубокими термическими ожогами при местном использовании препарата «Винфар», содержащего новый фактор роста фибробластов.
2. Провести клинические и гистоморфологические наблюдения за приживлением свободных кожных трансплантатов на глубокие ожоговые раны после выполнения первичной тангенциальной некрэктомии при местном применении препарата «Винфар».
3. Изучить динамику заживления «донорских» ран у экспериментальных животных после забора кожи для аутодермопластики с местным применением препарата «Винфар».
Научная новизна
Впервые экспериментально на основе клинических данных, светооптического анализа гистологического материала и иммуногистохимических исследований доказана возможность применения препарата «Винфар», содержащего фактор роста фибробластов, для лечения ожоговых и донорских ран.
Установлено, что местное использование препарата «Винфар» во время аутодермопластики за счет быстрой адгезии кожного лоскута и улучшения его питания приводит к скорому и полному приживлению кожных трансплантатов на гранулирующие ожоговые раны. Данная методика при ограниченных глубоких ожогах предохраняет кожные лоскуты от некроза после первичной тангенциальной некрэктомии и способствует их приживлению (патент РФ № 2431203, 10.10.2011).
Однократное нанесение на раны препарата «Винфар» нормализует течение раневого процесса, способствует синтезу зрелого коллагена и снижает активность склеротического процесса. В результате этого не происходит формирование грубых рубцов. Доказано, что применение препарата «Винфар», содержащего новый фактор роста фибробластов, приводит к сокращению времени заживления «донорских» ран.
Научно-практическая значимость работы.
Полученные новые результаты исследований являются необходимым этапом разработки оригинального лекарственного препарата, содержащего бактериальный фактор роста фибробластов. Внедрение в клиническую практику этого средства в перспективе позволит улучшить результаты лечения тяжелообожженных.
Основные положения, выносимые на защиту.
1. Разработанная новая технология выполнения аутодермопластики с местным применением препарата «Винфар», содержащим фактор роста фибробластов, позволяет существенно улучшить приживление свободных кожных трансплантатов на ожоговые раны.
2. Использование препарата «Винфар» в эксперименте улучшает качество лечения глубоких ожогов и «донорских» ран за счет оптимизации фаз раневого процесса, при этом обеспечивая формирование органотипического регенерата.
Апробация работы и публикации
Основные результаты исследований представлены на заседании проблемной комиссии по хирургии ГБОУ «Оренбургская государственная медицинская академия Минздравсоцразвития РФ», клинических конференциях травматологов-ортопедов ММУЗ ГКБ №4 (г. Оренбург, 2010, 2011), ежегодных региональных конференциях молодых ученых и специалистов (г. Оренбург, 2010, 2011), десятой международной научно-практической конференции «Исследование, разработка и применение высоких технологий в промышленности» (г. Санкт-Петербург, 2010), EPS Global 1-st International Complementary and Alternative Medicine Conference (r. Нанкин, Китай, 2010), национальном конгрессе «Пластическая хирургия» (г. Москва, 2011).
По материалам диссертации опубликовано 9 печатных работ, 5 из которых - в ведущих российских рецензируемых изданиях, рекомендованных ВАК. Получен патент Российской Федерации на изобретение № 2431203 от 10.11.2011 г.
Структура и объем диссертации.
Диссертация изложена на 128 страницах машинописного текста, состоит из введения, обзора литературы, описания материалов и методов исследования, глав с изложением результатов собственных исследований, обсуждения полученных результатов, выводов и указателя литературы,
Заключение диссертационного исследования на тему "Аутодермопластика глубоких термических ожогов с использованием препарата "Вин-фар", содержащего фактор роста фибробластов (экспериментальное исследование)"
Выводы.
1. Разработанная новая технология выполнения аутодермопластики с использованием препарата «Винфар», содержащего фактор роста фибробластов, позволяет существенно улучшить результаты хирургического лечения глубоких ожогов и «донорских» ран.
2. Местное однократное орошение гранулирующей ожоговой раны препаратом «Винфар» при аутодермопластике способствует быстрой адгезии трансплантата, обеспечивает скорое и полное (100 %) приживление кожных лоскутов.
3. Применение препарата «Винфар» во время аутодермопластики после первичной тангенциальной некрэктомии приводит к выраженной реваскуляризации свободных кожных лоскутов и предохраняет их от некроза.
4. В результате местного применения препарата «Винфар» на «донорскую» рану после забора кожных лоскутов для аутодермопластики термических ожогов значительно ускоряется эпителизация «донорского» участка, восстанавливается полноценный кожный покров.
5. При использовании препарата «Винфар» происходит более быстрое купирование клинических симптомов ожоговой интоксикации, которое проявляется в ранней активизации животных и увеличении их массы.
6. Лекарственный препарат «Винфар» стимулирует реваскуляризацию, клеточную пролиферацию фибробластов и эпителиоцитов кожи и восстанавливает органотипическое строение кожного покрова, при этом происходит усиление синтеза зрелого коллагена I типа и снижается активность склеротических процессов, что приводит к образованию менее выраженных рубцов по сравнению с контролем.
Список использованной литературы по медицине, диссертация 2012 года, Никитенко, Иван Евгеньевич
1. Алексеев A.A. Комплексное лечение обожжённых с использованием культивированных фибробластов. / A.A. Алексеев, Е.В. Глущенко // Сборник "Актуальные вопросы лечения термической травмы и её последствий.", Москва - 1995 - с. 31-35.
2. Амчиславский Е.И. Цитокиновый контроль процесса ангиогенеза. / Е.И. Амчиславский, Д.И. Соколов, Э.А. Старикова, И.С. Фрейдлин // Медицинская иммунология 2003 - № 5(5-6) - С. 493-506.
3. Беляев А.Н. Системная и региональная антиоксидантная терапия при осложнённых формах диабетической стопы. / А.Н. Беляев, А.Н. Рыгин, А.Н. Захватов // Хирургия 2007 - № 11 - С. 46-50.
4. Берлин Л.Б. Морфология кожи после ожогов и свободной пересадки / Л.Б. Берлин. // Л.: Медицина 1966. - 222 с.
5. Болтовская В.В. Патомофология раневого процесса в зоне глубокого ожога кожи в условиях применения низкоинтенсивного электромагнитного излучения.: автореф. дис. канд. мед.наук: 14.0015/ СГМУ.-С., 2006.-24 с.
6. Гаспарян М.Э. Гиперэкспрессия в EscherichiaColi и отчисткарекомбинантного основного фактора роста фибробластов (FGF-2). / М.Э. Гаспарян,П.А. Елистратов,Н.И. Дризе,И.Н. Нифонтова и др. // Биохимия 2009 - № 74(2) - С. 272-277.
7. Графова Г.Я. О гистотопографических особенностях структуры эпидермального регенерата / Г.Я. Графова // Морфология раневого процесса: Материалы науч.-практ. конф,- СПб.: ВМедА 1992 - С. 14.
8. Гусев Е.Ю. Системное воспаление как типовой патологический процесс. / Е.Ю. Гусев, Л.Н. Юрченко // Цитокины и воспаление 2004 - Т. 3, № 3 -С. 48-53.
9. Ефимов Е.А. Посттравматическая регенерация кожи (Экспериментальное исследование) / Е.А. Ефимов. // М.: Медицина -1975.- 168 с.
10. Калинина Е.П. Диагностический критерий прогрессирования хронической обструктивной болезни лёгких. / Е.П. Калинина, Е.Г. Лобанова // Бюллетень со РАМН 2010 - № 30(1) - С. 5-8.
11. Маслов JI.H. Использование цитокинов для стимуляции неоангиогенеза и регенерации сердца. / J1.H. Маслов, С. И. Сазонова // Экспериментальная и клиническая фармакология 2006 - № 69(5) - С. 70-76.
12. Меркулов Г.А. Курс патогистологической техники./ Г.А, Меркулов // JT.: Медицина, Ленингр. Отд-ие 1969 - 423с.
13. Никитенко В.И. Новые технологии в лечении ожогов и обширных дефектов мягких тканей / В.И. Никитенко, А.М. Гурьянов, С.А. Павловичев, И.Е. Никитенко и др. // Вестник Российской военно-медицинской академии 2010 - № 1(29) - с. 84-85.
14. Никитенко В.И. Патент на изобретение № 2427644. Штамм бактерий Bacillus subtilis продуцент фактора роста фибробластов. / В.И. Никитенко // - опубл. 27.08.11. Бюл. № 24.
15. Никитенко В.И. Патент на изобретение № 2431203. Способ аутодермопластики в эксперименте. / В.И. Никитенко, В.А. Копылов, И.Е. Никитенко, С.Н. Гнедой //-опубл. 10.10.11. Бюл. № 28.
16. Новиков Д.К. Патология системы иммунитета. / Д.К. Новиков. М.: Национальная академия микологии, 2003. - 368 с.
17. Одинцова И.А. Закономерности процессов регенерационного гистогенеза в кожно-мышечной ране / И.А. Одинцова // Анатомия и военная медицина СПб.: ВМедА - 2003 - С. 41 - 43.
18. Одинцова И.А. Гистологические критерии заживления кожно-мышечной раны в эксперименте /И.А. Одинцова// Фундаментальные и прикладные проблемы гистологии. Гистогенез и регенерация тканей. Труды ВМедА. СПб Т.257 - 2004 - С. 88 - 93.
19. Парамонов Б.А. Ожоги. / Б.А. Парамонов, Я.О. Порембский, В.Г. Яблонский// СПб, СпецЛит 2000 - 488 с.
20. Пирс Э. Гистохимия / Э.Пирс // М.: Издательство иностранной литературы 1962 - 962с.
21. Платонов А.Е. Статистический анализ в медицине и биологии: задачи, терминология, логика, компьютерные методы /А.Е.Платонов// М. ¡Издательство РАМН 2000 - 52с.
22. Попов С.В. Вопросы профилактики термической травмы / С.В. Попов // Комбустиология на рубеже веков: материалы Международного конгресса. Москва, 2000. - С. 30 - 31.
23. Рудовский В. Теория и практика лечения ожогов / В. Рудовский, В. Назиловский, В. Зиткевич, К. Зинкевич // М, Медицина 1980 - с. 376
24. Саркисов Д.С. Морфология раневого процесса / Д.С. Саркисов, А.А. Пальцин, Л.И. Музыкант и др. // Раны и раневая инфекция. М.: Медицина 1990 - С. 38- 82.
25. Свидетельство на товарный знак (знак обслуживания) № 433087 «Винфар». Правообладатель Никитенко В.И. зарегистрировано 23 марта 2011 г.
26. Серов В.В. Соединительная ткань: функциональная морфология и общая патология / В.В. Серов, А.Б. Шехтер // М.: Медицина -1981-312с.
27. Славченко И.Ю. Биосинтез основного фактора роста фибробластов человека в клетках ESCHERICHIA COLI и его очистка. / И. 10.
28. Славченко, Е. В. Борейко, Т. Г. Гавриш и др. // Biopolymers and cell -2003-Т. 19, №2-С. 179-184.
29. Соколов В.Е. Руководство по изучению кожного покрова млекопитающих / В.Е. Соколов, Р.П. Женевская. // М.: Наука 1988 -280 с.
30. Филяева Ю.А. Гомеостатические особенности ангиогенных факторов при заживлении раны гипертрофическим рубцом после маммопластики. / Ю.А. Филяева, Т.Г. Тенчурина // Современные проблемы науки и образования 2007 -№1 - С. 121-125.
31. Шаповалов Д.А. Особенности строения кожи крыс в норме и при действии пирогенала. / Д.А. Шаповалов, А.П. Голуб // Морфолопя. -2008.- T.II, №2. С.71-74.
32. Шурыгин М.Г. Влияние основного фибробластического фактора роста на выраженность цитолиза при экспериментальном инфаркте миокарда / М.Г. Шурыгин, H.A. Шурыгина, H.H. Дремина // Бюллетень ВСНЦ СО РАМН 2008 - № 6(64) - С. 58-60.
33. Шурыгин М.Г. Влияние фактора роста фибробластов на мехапоморфоз левого желудочка при экспериментальном постинфарктном кардиосклерозе. / М.Г. Шурыгин, И.А. Шурыгина, H.H. Дремина // Бюллетень СО РАМН 2008 -№ 2(130) - С. 73-77.
34. Эфрон А.Г. Цитокины как иммунномодуляторы течения раневого процесса. / А.Г. Эфрон // Математическая морфология - 1998 - № 3(1) -С. 217-221.
35. Abe М. Evidence that PI3K, Rac, Rho, and Rho kinase are involved in basic fibroblast growth factor-stimulated fibroblast-Collagen matrix contraction. / M. Abe, Y. Sogabe, T. Syuto, Y. Yokoyama, O. Ishikawa // J Cell Biochem. -2007- 102(5)-pp. 1290-9.
36. Abe M. A possible mechanism of basic fibroblast growth factor-promoted scarlesswound healing: the induction of myofibroblast apoptosis. / M. Abe, Y. Yokoyama, O. Ishikawa // Eur. J. Dermatol. 2012 - 22(1) - pp. 46-53.
37. Akasaka Y. The mechanisms underlying fibroblast apoptosis regulated by growth factors during wound healing. / Y. Akasaka, I. Ono, T. Kamiya, Y. Ishikawa et al. // J Pathol. 2010 - 221(3) - pp. 285-99.
38. Akita S. A basic fibroblast growth factor improved the quality of skin grafting in burn patients. / S. Akita, K. Akino, T. Imaizumi, A. Hirano //Burns- 2005. Vol.31 (7).- pp. 855-8
39. Akita S. The quality of pediatric burn scars is improved by early administration of basic fibroblast growth factor. / S. Akita, K. Akino, T. Imaizumi, K. Tanaka et al. // J. Burn Care Res. 2006. - Vol. 27 (3). - pp. 333-8.
40. Akita S. Basic fibroblast growth factor accelerates and improves second-degree burn wound healing. / S. Akita, K. Akino, T. Imaizumi, A. Hirano // Wound Repair Regen 2008 - Vol. 16 (5) - pp. 635-41.
41. Akita S. A basic fibroblast growth factor improves lower extremity wound healing with a porcine-derived skin substitute. / S. Akita, K. Akino, K. Tanaka, K. Anraku et al. // J. Trauma. 2008 - № 64(3) - pp. 809-15.
42. Akita S. Basic fibroblast growth factor is beneficial for postoperative color uniformity in split-thickness skin grafting. / S. Akita, K. Akino, A. Yakabe et al. // Wound Repair Regen. 2010 - 18(6) - pp. 560-6.
43. Aktas G. Ultrastructural immunolocalization of basic fibroblast growth factor in fibroblasts and extracellular matrix. / G. Aktas, R. Kayton // Histochem Cell Biol. 2000 - № 113(3) - pp. 227-33.
44. Alemdaroglu C. Investigation of epidermal growth factor containing liposome formulation effects on burn wound healing. / C. Alemdaroglu, Z. Degim, N. Celebi, M. Sengezer et al. // J. Biomed Mater. Res. A. 2008 - Vol. 85(1) — pp. 271-83.
45. Baird, A. Fibroblast growth factor. / A. Baird, P.A. Walicke // Br. Med. Bull. 1989-№45-pp. 438-52.
46. Bandera B.C. Role of growth factors in improved skin flap viability caused by phosphodiesterase-5 inhibitor. / B.C. Bandera, T. Pham, C. Hill-Pryor, M. Bah-Sow et al. //Am Surg. -2010 -№ 76(6) -pp. 614-7.
47. Barrientos S. Growth factors and cytokines in wound healing. / S. Barrientos, O. Stojadinovic, S. Michael, M.D. Golinko et al. // Wound Rep. Reg. 2008 -№ 16-pp. 585-601.
48. Bennett N.T. Growth factors and wound healing: biochemical properties of growth factors and their receptors. / N.T. Bennett, G.S. Schultz // Am. J.Surg. 1993 - № 165 - pp. 728—37.
49. Bennett N.T. Growth factors and wound healing, part II: role in normal and chronic wound healing. / N.T. Bennett, G.S. Schultz // Am. J. Surg. 1993 -№ 166-pp. 74-81.
50. Bennett S.P. Growth factors in the treatment of diabetic foot ulcers. / S.P. Bennett, G.D. Griffiths, A.M. Schor et al. // Br. J. Surg. 2003 - № 90 - pp. 133-46.
51. Bikfalvi A. Biological roles of fibroblast growth factor-2. / A. Bikfalvi, S. Klein, G. Pintucci, D. B. Rifkin // Endocr. Rev. 1997 - № 18 - pp. 26-45.
52. Boilly B. FGF signals for cell proliferation and migration through different pathways. / B. Boilly, A.S. Vercoutter-Edouart, H. Hondermarck, V. Nurcombe et al. // Cytokine Growth Factor Rev. 2000 - № 11(4) - pp. 295302.
53. Brusselaers N. Severe burn injury in europe: a systematic review of the incidence, etiology, morbidity, and mortality / N. Brusselaers, S. Monstrey, D. Vogelaers E. Hoste et al.//Critical Care-2010-vol. 14-pp. 188-200
54. Burges A. N. Epidermal growth factor and transforming growth factor beta. / A.N. Burges // Br Med Bull 1989 - № 45 - pp. 401 -24.
55. Carroll L.A. Heparin stimulates production of bFGF and TGF-beta 1 by human normal, keloid, and fetal dermal fibroblasts. /L.A. Carroll, R.J. Koch // Med Sci Monit. 2003 - № 9(3) - pp. BR97-108.
56. Carrington L.M. Hepatocyte growth factor and keratinocyte growth factor regulation of epithelial and stromal corneal wound healing. / L.M. Carrington, M. Boulton //J. Cataract. Refract. Surg. 2005 - №31 (2) - pp. 412-23.
57. Carver N. Keratinocyte grafts and skin equivalents. /N. Carver, I.M. Leigh // Int. J. Dermatol. 1991 - vol. 30 - pp. 540-551.
58. Cheng B. The effect of basic fibroblast growth factor on myofibroblasts and its significance on wound healing. / B. Cheng, X. Fu, Z. Sheng, X. Gu et al. // Zhonghua Yi Xue Za Zhi. 2002 -№ 82(17) - pp. 1187-91.
59. Cheng B. Effect of exogenous basic fibroblast growth factor on proliferation and migration of endothelial cells of partial thickness scald in rats. / B. Cheng, X. Fu, Z. Sheng // Zhongguo Xiu Fu Chong Jian Wai Ke Za Zhi 2004 -Vol. 18 (3)- pp. 200-4.
60. Ching Y.-H. The Use of growth factors and other humoral agents to accelerate and enhance burn wound healing / Y.-H. Ching, T. L. Sutton, Y. N. Pierpont, M. C. Robson et al. // Journal of Plastic Surgery 2011 - № 11 - pp. 429 -449.
61. Compton C.C. Skin regenerated from cultured epithelial autografts on full-thickness burn wounds from 6 days to 5 years after grafting. / C.C. Compton, J.M. Gill, D.A. Bradford, S. Regauer et al. // Lab. Invest. -1989 vol. 60 -pp. 600-612.
62. Cross M.J. FGF and VEGF function in angiogenesis: signaling pathways, biological responses and therapeutic inhibition. / M.J. Cross, L. Claesson-Welsh // TRENDS in Pharma Sci 2001 - № 22 - pp. 201-207.
63. Cross S.E. Defining a model to predict the distribution of topically applied growth factors and other solutes in excisional full-thickness wounds. / S.E. Cross, M.S. Roberts // J Invest Dermatol. 1999 - № 112(1) - pp. 36 - 41.
64. Crowe M.J. Delayed wound healing in immunodeficient TGF-beta 1 knockout mice. / M.J. Crowe, T. Doetschman, D.G. Greenhalgh // J. Invest. Dermatol. 2000 - Vol. 115(1) - pp. 3-11.
65. Dailey L. Mechanisms underlying differential responses to FGF signaling. / L. Dailey, D. Ambrosetti, A. Mansukhani, C. Basilico // Cytokine Growth Factor Rev. 2005 - 16(2) - pp. 233-47.
66. Dang C.M. Decreased expression of fibroblast and keratinocyte growth factor isoforms and receptors during scarless repair. / C.M. Dang, S.R. Beanes, C. Soo, K. Ting et al. // Plast. Reconstr. Surg. 2003 - 111(6) - pp. 1969-79.
67. Di Vita G. Cytokines and growth factors in wound drainage fluid from patients undergoing incisional hernia repair. / G. Di Vita, R. Patti, P. D'Agostino, G. Caruso et al. // Wound Repair Regen. 2006 - № 14 - pp. 259-64.
68. Domres B. Intermingled skin grafting: a valid transplantation method at low cost. / B. Domres, D. Kistler, J. Rutczynska // Ann Burns Fire Disasters -2007-vol. 20(3)-pp. 149-154
69. Escamez M.J. An in vivo model of wound healing in genetically modified skin-humanized mice. / M.J. Escamez, M. Garcia, F. Larcher, A. Meana et al. // J Invest Dermatol 2004 - № 123 - pp. 1182-1191.
70. Fan L. Immunohistochemical localization of vascular endothelial growth factor in the globule leukocyte/mucosal mast cell of the rat respiratory and digestive tracts. / L. Fan, S. Iseki // Histochem. Cell Biol. 1999 - h № 111 -pp. 13-21.
71. Ferretti A. Angiogenesis and nerve regeneration in a model of human skin equivalent transplant / A. Ferretti, E. Boschi, A. Stefani, S. Spiga et al. // Life Sci. -2003 V. 73, № 15 - P. 1985-1994.
72. Finch P.W. Human KGF is FGF-related with properties of a paracrine effector of epithelial cell growth. / P.W. Finch, J.S. Rubin, T. Miki, D. Ron et al. // Science 1989 - № 245 - pp. 752-5.
73. Fu X.B. Role of fibroblast growth factor (bFGF) in incised wound healing in pigs. / X.B. Fu, Y.P. Wang, G.U. Chang, D.W. Wang et al. // Chin. J. Trauma.- 1995 -№> 11 pp. 134-36.
74. Fu X.B. Acidic fibroblast growth factor reduces renal morphologic and functional indicators of injury caused by ischemia and reperfusion. / X.B. Fu,
75. P. Cuevas, G. Gimenez-Gallego, H.M. Tian et al. // Wound Rep.Reg. 1996 - № 4 - pp. 297-303.
76. Fu X.B. Basic fibroblast growth factor (bFGF) and wound healing: a multicenters and controlled clinical trial in 1024 cases. / X. Fu, Z. Shen, Y. Chen // Zhongguo Xiu Fu Chong Jian Wai Ke Za Zhi 1998 - Vol. 12 (4) - pp. 20911.
77. Fu X.B. Randomised placebo-controlled trial of use of topical recombinant bovine basic fibroblast growth factor for second-degree burns. / X. Fu, Z. Shen, Y. Chen, J. Xie et al.//Lancet 1998 - Vol. 352 (9141) - pp. 1661-4.
78. Fu X.B. Ischemia and reperfusion impair the gene expression of endogenous basic fibroblast growth factor in rat skeletal muscles. / X. Fu, Y. Yang, X. Li, T. Sun et al. // J. Surg. Res. 1998 - № 80 - pp. 88-93.
79. Fu X.B. Effects of basic fibroblast growth factor on the healing of cutaneous chronic wounds. / X.B. Fu, Z.R. Guo, Z.Y. Sheng // Zhongguo Xiu Fu Chong Jian Wai Ke Za Zhi. 1999 - № 13(5) - pp. 270-2.
80. Fu X.B. Comparative study of epidermal growth factor and basic fibroblast growth factor on wound healing. / X.B. Fu, T.Z. Sun, Y.P. Wang // Zhongguo Xiu Fu Chong Jian Wai Ke Za Zhi. 1999 - № 13(5) - pp. 278-82.
81. Fu X.B. Characteristics of bFGF and TGF-beta expression in dermal chronic ulcers and hypertrophic scars and their effects on tissue repair. / X.B. Fu, T.Z. Sun, Y.H. Yang // ZhongguoXiuFuChongJianWaiKeZaZhi. 2000 - № 14(5) -pp. 271-4.
82. Fu X.B. Recombinant bovine basic fibroblast growth factor accelerates wound healing in patients with burns, donor sites and chronic dermal ulcers. / X. Fu, Z. Shen, Y. Chen, J. Xie et al. // Chin. Med. J. 2000 - Vol. 113 (4) -pp. 367-71.
83. Fu X.B. Expression of basic fibroblast growth factor (bFGF) in rat and mouse skin and its biological significance. / X. Fu, T. Sun, X. Gu // Zhonghua Yi Xue Za Zhi. 2001 -№ 81(10) - pp. 609-12.
84. Fu X.B. Expression of oncoproteins c-fos and c-jun in hypertrophic scars and chronic dermal ulcers and their regulation of basic fibroblast growth factor. / X.B. Fu, L. Jiang, T. Sun, Y. Yang et al. // Chin Med J (Engl). 2001 - № 114(8)-pp. 852-6.
85. Fu X.B. Healing of chronic cutaneous wounds by topical treatment with basic fibroblast growth factor. / X.Fu, Z. Shen, Z. Guo, M. Zhang et al. // Chin Med J (Engl). 2002 - № 115(3) - pp. 331 -5.
86. Fu X.B. Thermal injuries induce gene expression of endogenous c-fos, c-myc and bFGF in burned tissues. / X. Fu, X. Gu, T. Sun, Y. Yang et al. // Chin. Med. J. 2003 - Vol. 116 (2) - pp. 235-8.
87. Fu X.B. Enhancing the repair quality of skin injury on porcine after autografting with the bone marrow mesenchymal stem cells. / X.B. Fu, L.J. Fang, Y.X. Wang, T.Z. Sun et al. // Zhonghua Yi Xue Za Zhi 2004 - Vol. 84(11)- pp. 920-4.
88. Gallagher J.T. Heparan sulphate in the binding and activation of basic fibroblast growth factor. / J.T. Gallagher, J.E. Turnbull // Glycobiology -1992-№ 2-pp. 523-8.
89. Gao W.D. The application of artificial dermis and recombinant bFGF afer immersion bath in residual burn wound. / W.D. Gao, X.S. Liu, X. Han, Y.G. Han et al. // Zhonghua Shao Shang Za Zhi 2007 - Vol. 23 (1) - pp. 40-2.
90. Gibran, N.S. Basic fibroblast growth factor in the early human burn wound. / N.S. Gibran, F.F. Isik, D.M. Heimbach, D. Gordon // J. Surg. Res. 1995 -№ 56 - pp. 226-34.
91. Gospodarowicz D. Heparin protects basic and acidic FGF from inactivation. / D. Gospodarowicz, J. Cheng // J. Cell. Physiol 1986 - № 128 - pp. 475484.
92. Greenhalgh D.G. Effects of basic fibroblast growth factor on the healing of partial-thickness donor sites. A prospective, randomized, double-blind trial. / D.G. Greenhalgh, M. Rieman // Wound Repair Regen 1994 - Vol. 2 (2) -pp. 113-21.
93. Greenhalgh D.G. Models of wound healing. / D.G. Greenhalgh// J Burn Care Rehab. 2005 - Vol. 26(4) - pp. 293-5.
94. Gu T.M. Clinical observation on changes of fibroblast growth factor in burn wounds. / T.M. Gu, X.T. Niu, H. Guo // Zhongguo Xiu Fu Chong Jian Wai Ke Za Zhi 2000 - Vol. 14 (5) - pp. 261-3.
95. Gu X. Expression characteristics of c-fos, c-myc and bFGF in early burn tissue. / X. Gu, X. Fu, Y. Yang, T. Sun et al. // Chin. Med. J. 2001 - Vol. 114 (9)-pp. 925-8.
96. Harmer N. J. Insights into the role of heparan sulphate in fibroblast growth factor signalling. / N. J. Harmer // Biochem. Soc. Trans. 2006 - № 34 - pp. 442-445.
97. Hashimoto K. Regulation of keratinocyte function by growth factors / K. Hashimoto // J. Dermatol. Sei. -2000- V. 24, Suppl. 1 P. 46 - 50.
98. Hayward P. Fibroblast growth factor reverses the bacterial retardation of wound contraction. / P. Hayward, J. Hokanson, J. Heggers, J. Fiddes et al. // Am. J. Surg. 1992-Vol. 163 (3)-pp. 288-293.
99. Herndon D.N. Growth hormone treatment for burned children. / D.N. Herndon, E.J. Pierre, K.N. Stokes, R.E. Barrow // Horm. Res. 1996 - Vol. 45 (suppl l)-pp. 29-31.
100. Hu X. Topically applied rhGM-CSF for the wound healing: a systematic review. / X. Hu, H. Sun, C. Han, X. Wang et al. // Burns. 2011 - vol. 37(5) - pp. 728-40.
101. Huang S. Promotion of wound healing through incorporation of bFGF-impregnated microspheres into collagen membrane. / S. Huang, Y. Jin, T. Deng, H. Wu et al.// Zhongguo Xiu Fu Chong Jian Wai Ke Za Zhi. 2006 -№20(2)-pp. 161-4.
102. Ibrahimi O.A. Kinetic model for FGF, FGFR, and proteoglycan signal transduction complex assembly. / O.A. Ibrahimi, F. Zhang, S.C. Lang Hrstka, M. Mohammadi et al. // Biochemistry 2004 - № 43 - pp. 4724^1730
103. Igarashi M. Characterization of recombinant human fibroblast growth factor (FGF)-10 reveals functional similarities with keratinocyte growth factor (FGF-7). / M. Igarashi, P.W. Finch, S.A. Aaronson //J. Biol. Chem. 1998 -№273(21)-pp. 13230-5.
104. Imaizumi T. Acceleration of sensory neural regeneration and wound healing with human mesenchymal stem cells in immunodeficient rats. / T. Imaizumi, S. Akita, K. Akino, A. Hirano // Stem Cells. 2007 - № 25(11) - pp. 295663.
105. Infanger M. Vascular endothelial growth factor serum level is strongly enhanced after burn injury and correlated with local and general tissue edema. / M. Infanger, O. Schmidt, P. Kossmehl, S. Grad et al. // Burns. 2004 - Vol. 30(4)-pp. 305-11.
106. Itoh N. Functional Evolutionary History of the Mouse Fgf Gene Family. / N. Itoh, D.M.Ornitz // Developmental Dynamics 2008 - № 237 - pp. 18-27.
107. Jimenez P.A. Keratinocyte growth factor-2 accelerates wound healing inincisional wounds. / P.A. Jimenez, M.A. Rampy // J. Surg. Res. 1999 - № f81(2)-pp. 238-42.
108. Jungnickel J. Faster nerve regeneration after sciatic nerve injury in mice over-expressing basic fibroblast growth factor. / J. Jungnickel, K. Ilaase, J. Konitzer // J Neurobiol 2006 - № 66 - pp. 940 -948.
109. Kastner S. Gene expression patterns of the fibroblast growth factors and their receptors during myogenesis of rat satellite cells. I J. Histochem. Cytochem. -2000-№48-pp. 1079-96.
110. Kawai K. Accelerated tissue regeneration through incorporation of basic fibroblast growth factor-impregnated gelatin microspheres into artificial dermis. / K. Kawai, S. Suzuki, Y. Tabata, Y. Ikada et al. // Biomaterials. -2000-№21(5)-pp. 489-99.
111. Kibe Y. Spatial and temporal expression of basic fibroblast growth factor protein during wound healing of rat skin. / Y. Kibe, H. Takenaka, S. Kishimoto // Br J Dermatol 2000 - № 143 - pp. 720-7.
112. Kiritsy C. Role of growth factors in cutaneous wound healing: a review / C. Kiritsy, A. Lynch, S. Lynch // Crit. Rev. Oral. Biol. Med. 1993. - V. 4,№5. -pp. 729-760.
113. Knighton D.R. Stimulation of repair in chronic, nonhealing, cutaneous ulcers using autologous platelet-derived wound healing formula. / D.R. Knighton, K.F. Ciresi, V.D. Fiegel, S. Schumerth et al. // Cerra Surg. Gyn. Obstet. -1990 № 170-pp. 56-60.
114. Kong W. Blood-derived small Dot cells reduce scar in wound healing. / W. Kong, S. Li, M.T. Longaker, H.P. Lorenz // Exp. Cell Res. 2008 - 314(7) -pp. 1529-39.
115. Kuroda K.' Up-regulation of putative hyaluronan synthase mRNA by basic fibroblast growth factor and insulin-like growth factor-1 in human skin fibroblasts. / K. Kuroda, A. Utani, Y. Hamasaki, H. Shinkai // J. Dermatol. Sci. 2001 -№ 26 - pp. 156-160.
116. LaRochelle W.J. Heparan sulfate proteoglycan modulates keratinocyte growth factor signaling through interaction with both ligand and receptor. / W.J. LaRochelle, K. Sakaguchi, N. Atabey, H.G. Cheon et al. //Biochemistry. -1999-38(6)-pp. 1765-71.
117. Lazarus G.S. Definitions and guidelines for a ssessment of wounds and evaluation of healing. / G.S. Lazarus, D.M. Copper, D.R. Knighton // Arch Dermatol 1994 - 130 - pp. 489-493.
118. Leali D. Osteopontin (Eta-1) and fibroblast growth factor-2 cross-talk in angiogenesis. / D. Leali, P. Dell'Era, H. Stabile, B. Sennino et al. // J Immunol. 2003 - № 171(2)-pp. 1085-93.
119. Leigh I.M. Clinical practice and biological effects of keratinocyte grafting. / Leigh, I.M. et al. // Annals Academy of Medicine. -1991 vol. 20 - pp. 549555.
120. Liang G.B. Dynamic changes in focal adhesion kinase during cell migration induced by bFGF and the significance. / G.B. Liang, G.P. Zhang, H.M. Jin, R.Z. Qian // Sheng Li Xue Bao. 2004 - № 56(4) - pp. 509-14.
121. Liu L. Keratinocyte growth factor-2 on the proliferation of corneal epithelial stem cells in rabbit alkali burned cornea. / L. Liu, Y. Li, S. Huang, J. Lin et al.// Yan Ke Xue Bao. 2007 - № 23(2) - pp. 107-16.
122. Liu P.Y. Efficacy of combination gene therapy with multiple growth factor cDNAs to enhance skin flap survival in a rat model. / P.Y. Liu, K. Liu, X.T. Wang, E. Badiavas et al. // DNA Cell Biol. 2005 - № 24(11) - pp. 751 -7.
123. Liu T.L. Cytocompatibility of regenerated silk fibroin film: a medical biomaterial applicable to wound healing. / T.L. Liu, J.C. Miao, W.H. Sheng, Y.F. Xie et al. // J Zhejiang Univ Sci B. 2010 - №11(1) - pp. 10-6.
124. Loo B.M. Heparin/heparan sulfate domains in binding and signaling of fibroblast growth factor 8b. / B.M. Loo, M. Salmivirta // J Biol Chem 2002 -№277-pp. 32616-23.
125. Lotti L.V. AKT and MAPK signaling in KGF-treated and UVB-exposed human epidermal cells. / L.V. Lotti, S. Rotolo, F. Francescangeli, L. Frati et al. // J. Cell Physiol. 2007 - № 212(3) - pp. 633-42.
126. Lu W. Fibroblast growth factor-10. A second candidate stromal to epithelial cell andromedin in prostate. / W. Lu, Y. Luo, M. Kan, W.L. McKeehan // J. Biol. Chem. 1999-№274-pp. 12827-34.
127. Luo Y. Improved production of recombinant fibroblast growth factor 7 (FGF7/KGF) from bacteria in high magnesium chloride. / Y. Luo, H.H. Cho, R.B. Jones, C. Jin et al. // Protein Expr. Purif. 2004 - № 33(2) -pp. 326-31.
128. Luo Y. Control of fibroblast growth factor (FGF) 7- and FGFl-induced mitogenesis and downstream signaling by distinct heparin octasaccharide motifs. / Y. Luo, S. Ye, M. Kan, W.L. McKeehan // J Biol Chem 2006 - № 281 - pp. 21052-61
129. Maas-Szabowski N. Keratinocyte growth regulation in fibroblast cocultures via a double paracrine mechanism. / N. Maas-Szabowski, A. Shimotoyodome, N.E. Fusenig // J. Cell Sci. 1999 - № 112 (Pt 12) - pp. 1843-53.
130. Makino T. Basic fibroblast growth factor stimulates the proliferation of human dermal fibroblasts via the ERK1/2 and JNK pathways. / T. Makino, M. Jinnin, F.C. Muchemwa, S. Fukushima et al. // Br J Dermatol. 2010 -№162(4)-pp. 717-23.
131. Marti G. KGF-1 fjr wound healing in animals model. / G. Marti, P. Mohebi, L. Liu, J. Wang et al. //Methods Mol. Biol. -2008 -423 pp. 383-91.
132. Martin P. Wound healing-aiming for perfect skin regeneration. / P. Martin // Science 1997 - №276 - pp. 75-81.
133. McGee G.S. Recombinant basic fibroblast growth factor accelerates wound healing. /G.S. McGee, J.M. Davidson, A. Buckley, A. Sommer et al. // J. Surg. Res 1988 - Vol. 45 (1) - pp. 145 - 153.
134. Metcalfe A. D. Tissue engineering of replacement skin: the crossroads of biomaterials, wound healing, embryonic development, stem cells and regeneration / A. D. Metcalfe, M. W. J. Ferguson // J. R. Soc. Interface 2007 -vol. 4 -pp. 413^137
135. Miyoshi M. Effects of bFGF incorporated into a gelatin sheet on wound healing. / M. Miyoshi, T. Kawazoe, H.H. Igawa, Y. Tabata et al. // J Biomater Sci Polym Ed. 2005 - № 16(7) - pp. 893-907.
136. Mohammadi M. Structural basis for fibroblast growth factor receptor activation. / M. Mohammadi, S. K. Olsen, O. A. Ibrahimi // Cytokine Growth Factor Rev.-2005 -№ 16-pp. 107-137.
137. Nicosia R. endothelial growth factor, platelet-derived growth factor, and insulin-like growth factor-1 promote rat aortic angiogenesis in vitro. / R. Nicosia, S. Nicosia, M. Smith // Am J Pathol 1994 - № 145 - pp. 1023-29.
138. Nissen N.N. Basic fibroblast growth factor mediates angiogenic activity in early surgical wounds. / N.N. Nissen, P.J. Polverini, R.L. Gameiii, L.A. DiPietro // Surgery 1996 - № 119 - pp. 457-65.
139. Nissen N.N. Heparin and heparan sulphate protect basic fibroblast growth factor from non-enzymic glycosylation. / N.N. Nissen, R. Shankar, R.L. Gamelli, A. Singh et al. // Biochem J 1999 - № 338(Part 3) - pp. 637- 42.
140. Nissen N.N. Differential angiogenic and proliferative activity of surgical and burn wound fluids. / N.N. Nissen, R.L. Gamelli, P.J. Polverini, L.A. DiPietro// J. Trauma 2003 - Vol. 54 (6) - pp. 1205-10.
141. Niu J. Keratinocyte growth factor/fibroblast growth factor-7-regulated cell migration and invasion through activation of NF-kappaB transcription factors. / J. Niu, Z. Chang, B. Peng, Q. Xia et al. // J. Biol. Chem. 2007 - 282 - pp. 6001-11.
142. Niu Y.-W. Effects of FGF2 on wound healing process in diabetic rats second-degree scald. / Y.-W. Niu, Ge K., L. Rong, S.-L. Lu et al.// J. Shanghai Jiaotong Univ. Med. Sei. 2009 - Vol. 29 (2) - pp. 121 - 125.
143. Nugent M.A. Fibroblast growth factor-2. / M.A. Nugent, R.V. lozzo // Int. J. Biochem. Cell Biol. 2000 - № 32 - pp. 115-120.
144. Numata Y. The accelerating effect of histamine on the cutaneous wound-healing process through the action of basic fibroblast growth factor. / Y. Numata, T. Terui, R. Okuyama, N. Hirasawa et al. // J Invest Dermatol. -2006-№ 126(6)-pp. 1403-9.
145. Ohuchi H. FGF10 acts as a major ligand for FGF receptor 2 Illb in mouse multi-organ development. / H. Ohuchi, Y. Hori, M. Yamasaki, H. Harada et al. // Biochemical and Biophysical Research Communications 2000 - № 277-pp. 643-649.
146. Ojeh N. Ectopic expression of syndecan-1 in basal epidermis affects keratinocyte proliferation and wound re-epithelialization. / N. Ojeh, K. Hiilesvuo, A. Wärri, M. Salmivirta et al. // J Invest Dermatol. 2008 - № 128(1)-pp. 26-34.
147. Ono I. Basic fibroblast growth factor reduces scar formation in acute incisional wounds. / I. Ono, Y. Akasaka, R. Kikuchi, A. Sakemoto et al. // Wound Repair Regen.-2007-№ 15(5)-pp. 617-23.
148. Ornitz D.M. Receptor specificity of the fibroblast growth factor family. / D.M. Ornitz, J. Xu, J.S. Colvin, D.G. McEwen et al. // J. Biol. Chem. 1996 -№271 - pp. 15292-7.
149. Ornitz D.M. FGFs, heparan sulfate and FGFRs: complex interactions essential for development. / D.M. Ornitz // Bioessays 2000 - № 22 - pp. 108-12.
150. Ornitz D.M. Fibroblast growth factors. / D.M. Ornitz, N. Itoh // Genome Biology 2001 - № 2(3) - pp. 3005.1-3005.12.
151. Pellegrini L. Role of heparan sulfate in fibroblast growth factor signalling: a structural view. / L. Pellegrini // Curr Opin Struct Biol 2001 - № 11 - pp. 629-34.
152. Powers C.J. Fibroblast growth factors, their receptors and signaling. / C.J. Powers, S.W. McLeskey, A. Wellstein // Endocr. Relat. Cancer 2000 - № 7 -pp. 165-97.
153. Presta M. Fibroblast growth factor/fibroblast growth factor receptor system in angiogenesis. / M. Presta, P. Dell'Era, S. Mitola, E. Moroni et al. // Cytokine Growth Factor Rev. 2006 - № 16- 159-178.
154. Presta M. Inflammatory cells and chemokines sustain FGF2-induced angiogenesis. / M.Presta, G. Andrés, D. Leali, P. Dell'era et al. // Eur Cytokine Netw. 2009 - № 20(2) - pp. 39-50.
155. Qiu S.-L. Influence of chitosan and basic fibroblast growth factor on wound healing. / S.-L. Qiu, M. Feng, P.-P. Zhang, W. Zhao et al. // J. Clin. Rehab. Tissue Eng. Res. 2008 - Vol. 12 (10) - pp. 1823 - 1826.
156. Qu Z. Mast cells are a major source of basic fibroblast growth factor in chronic inflammation and cutaneous hemangioma. / Z. Qu, J.M. Liebler, M.R. Powers, T. Galey et al. // Am. J. Pathol. 1995 - 147 - pp. 564-73.
157. Radek K.A. FGF-10 and specific structural elements of dermatan sulfate size and sulfation promote maximal keratinocyte migration and cellular proliferation. / K.A. Radek, K.R. Taylor, R.L. Gallo // Wound Repair Regen. 2009 - № 17(1)-pp. 118-26.
158. Raife T. Keratinocyte-specific expression of human thrombomodulin in transgenic mice: effects on epidermal differentiation and cutaneous wound healing / T. Raife, D. Lager, J. Peterson et al. // J. Investig. Med. -1998 V. 46, №4 -pp. 127- 133.
159. Reuss B. Fibroblast growth factors and their receptors in central nervous system. / B. Reuss, O. von Bohlen und Halbach // Cell Tissue Res. 2003 -№313-pp. 139-157.
160. Richardson T.P. Regulation of basic fibroblast growth factor binding and activity by cell density and heparan sulfate. / T.P. Richardson, V. Trinkaus-Randall, M.A. Nugent // J Biol Chem 1999 - № 274 - pp. 13534^10.
161. Robson M.C. The safety and effect of topically applied recombinant basic fibroblast growth factor on the healing of chronic pressure sores. / M.C. Robson, L.G. Phillips, W.T. Lawrence, J.B. Bishop et al. // Ann. Surg. 1992 -№216-pp. 401-8.
162. Robson M.C. Exogenous growth factor application effect on human wound healing. / M.C. Robson // Prog. Dermatol. 1996 - № 30 - pp. 1-7.
163. Robson M.C. Effect of cytokine growth factors on the prevention of acute wound failure. / M.C. Robson, D.A. Dubay, X. Wang, M.G. Franz // Wound Repair Regen. 2004 - № 12(1) - pp. 38-43.
164. Rodel J. Production of basic fibroblast growth factor and interleukin 6 by human smooth muscle cells following infection with Chlamydia pneumonia. / J. Rodel, M. Woytas, A. Groh et al. // Infect. Immun 2000 - № 68(6) - pp. 3635-3641.
165. Roesel J.F. Assessment of different cytokine effects on angiogenesis using an vivo model of cutaneous wound repair. / J.F. Roesel, L.B. Nanney // J. Surg.Res. 1995 -№ 58 - pp. 449-59.
166. Rubin J.S. Purification and characterization of a newly identified growth factor specific for epithelial cells. // J.S. Rubin, H. Osada, P.W. Finch, W.G. Taylow et al. // Proc Natl Acad Sci USA 1989 - № 86 - pp. 802-6.
167. Sakai Y. Prostaglandin E2 regulates the expression of basic fibroblast growth factor messenger RNA in normal human fibroblasts. / Y. Sakai, K. Fujita, PI. Sakai, K. Mizuno//Kobe J. Med. Sci.-2001 -№47-pp. 35-45.
168. Saksela O. Endothelial cell-derived heparan sulfate binds basic fibroblast growth factor and protects it from proteolytic degradation. / O. Saksela, D. Moscatelli, A. Sommer, D.B. Rifkin // J. Cell Biol. 1988 - № 107 - pp. 743-751.
169. Sanchez J.L. Cost-utility analysis applied to the treatment of burn patients in a specialized center. / J.L. Sanchez, S.B. Pereperez, J.L. Bastida, M.M. Martinez // Arch. Surg. 2007 - № 142 - pp. 50-57.
170. Sánchez-González M.C. FGF-23: just a phosphate metabolism regulator or something else? / M.C. Sánchez-González, L. Salanova, P. Ruano // Reumatol Clin. -2011 -№2-pp. 5-7.
171. Sanz Garcia S. Experimental model for local application of growth factors in skin re-epithelialisation. / S. S. Garcia, X. S. Heredero, A. I. Hernandez, E. P. Peña et al. // Scand. J. Plast. Reconstr. Surg. Hand. Surg. 2000 - № 34(3) -pp. 199-206.
172. Sasaki T. The effects of basic fibroblast growth factor and doxorubicin on cultured human skin fibroblasts: relevance to wound healing. / T.Sasaki // J. Dermatol. 1992-№ 19-pp. 664-6.
173. Schmidt A. Basic fibroblast growth factor controls migration in human mesenchymal stem cells. / A. Schmidt, D. Ladage, T. Schinkothe, U. Klausmann et al. // Stem Cells. 2006 - № 24(7) - pp. 1750-8.
174. Shevchenko R. V. A review of tissue-engineered skin bioconstructs available for skin reconstruction / R. V.Shevchenko, S. L. James, S. E. James//J. R. Soc. Interface. 2010 - №7(43) - pp. 229-258
175. Singer A. J. Cutaneous wound healing. / A. J. Singer, R. A. F. Clark // N. Engl J. Med. 1999 -№341, 738-746.
176. Smith P.D. Efficacy of growthfactors in the acceleratedclosure of interstices in explantedmeshedhumanskingrafts. / P.D. Smith, M. Polo, P.M. Soler, J.S. McClintock et al.// J. Burn. Care Rehabil. 2000 - 21(1 Pt l)-pp. 5-9.
177. Sogabe Y. Basic fibroblast growth factor stimulates human keratinocyte motility by Rac activation. / Y. Sogabe, M. Abe, Y. Yokoyama, O. Ishikawa // Wound Repair Regen. 2006 - № 14 - pp. 457-62
178. Sohn Y.D. A novel recombinant basic fibroblast growth factor and its secretion. /Y.D. Sohn, H.J. Lim, K.C. Hwang, J.H. Kwon et al. // Biochem BiophysRes Commun-2001 -№284(4)-pp. 931-6.
179. Soler P.M. In vivo characterization of keratinocyte growth factor-2 as a potential wound healing agent. / P.M. Soler, T.E. Wright, P.D. Smith, S.P. Maggi et al. // Wound Repair Regen. 1999 - № 7(3) - pp. 172-8.
180. Song H.F. Expression of basic fibroblast growth factor during wound healing of human fetal and adult skin and its significance. / H.F. Song, J.K. Chai, Z.H. Lin // Zhongguo Xiu Fu Chong Jian Wai Ke Za Zhi. 2003 - № 17(4) - pp. 298-300.
181. Spyrou G.E. The effect of basic fibroblast growth factor on scarring. / G.E. Spyrou, I.L. Naylor //Br. J. Plast. Surg. 2002 - Vol. 55 (4) - pp. 275 - 282.
182. Steed D.L. Clinical evaluation of recombinant human platelet-der ived growth factor for the treatment of lower extremity diabetic ulcers. / D.L.Steed // Vas. Surg. 1995-№21 - pp. 71-81.
183. Stenberg B.D. Effect of b-fgf on the inhibition of contraction caused by bacteria. / B.D. Stenberg, L.G. Phillips, J.A. Hokanson // J Surg Res. 1999 -№ 50 47-50.
184. Sun T. Effects of bFGF on succinate dehydrogenase level and oxygen consumption of skin flap in rats. / T. Sun, X. Fu, M. Xu // Zhongguo Xiu Fu Chong Jian Wai Ke Za Zhi. 1997 - № 11 (5) - pp. 264-6.
185. Takayama M. The exudate of pressure ulcers contains a substantial amount of vascular endothelial growth factor. / M. Takayama, Y. Kuramoto, R. Okuyama, K. Yamasaki et al. // Tohoku J Exp Med 2010 - № 221(4) - pp. 315-9
186. Takenaka H. Immunolocalization of fibroblast growth factor receptors in normal and wounded human skin. / H. Takenaka, H. Yasuno, S. Kishimoto // Arch Dermatol Res 2002 - Vol. 294 (7) - pp. 331 -8.
187. Tardieu M. Derivatized dextrans mimic heparin as stabilizers, potentiators, and protectors of acidic or basic FGF. / M. Tardieu, C. Gamby, T. Avramoglou, J. Jozefonvicz et al. // J. Cell. Physiol. 1992 - № 150 - pp. 194-203.
188. Taylor K.R. Structural and sequence motifs in dermatan sulfate for promoting fibroblast growth factor-2 (FGF-2) and FGF-7 activity. / K.R. Taylor, J.A. Rudisill, R.L. Gallo // J. Biol. Chem. 2005 - № 280(7) - pp. 5300-6.
189. Trowbridge J.M. Dermatan Sulfate Binds and Potentiates Activity of Keratinocyte Growth Factor (FGF-7). / J. M. Trowbridge, J. A. Rudisill, D. Ron, R. L. Gallo // The journal of biological chemistry 2002 - № 277(45) -pp. 42815^12820.
190. Uhl E. Basic fibroblast growth factor accelerates wound healing in chronically ischaemic tissue. / E. Uhl, J.H. Barker, I. Bondar, T.J. Galla et al. // BR. J. SURG. 1993 - Vol. 80 (8) - pp. 977 - 980.
191. Walgenbach K.J. A potential role formast cells in the release of bFGF from normal myocytes during angiogenesis in vivo. / K.J. Walgenbach, J.R. Gorospe, C. Gratas, G. Brunagel et al. // J. Invest. Surg. 2002 - № 15 - pp. 153-62.
192. Wang X. Effects of keratinocyte growth factor-2 on corneal epithelial wound healing in a rabbit model of carbon dioxide laser injury. / X. Wang, X. Zhou, J. Ma, H. Tian et al. // Biol. Pharm. Bull 2010 - № 33(6) - pp. 971-976.
193. Werner S. Large induction of keratinocyte growth factor expression in the dermis during wound healing. / S. Werner, K.G. Peters, M.T. Longaker, F. Fuller-Pace et al. // Proc .Natl. Acad. Sci. USA 1992 - № 89 - pp. 6896900.
194. Werner S. The function of KGF in morphogenesis of epithelium and reepithelialization of wounds. / S. Werner, FI. Smola, X. Liao, M.T. Longaker et al. // Science 1994 -№ 266 - pp. 819-22/
195. Werner S. Regulation of wound healing by growth factors and cytokines. / S. Werner, R. Grose // Physiol. Rev. 2003 - Vol.83 (3) - pp. 835-70.
196. Wu Z.H. An early comprehensive prevention and treatment of sepsis in severely burned patients with delayed fluid resuscitation. / Z.H. Wu, M. Liu, Z.F. Xia, X.H. Zhan et al. // Zhongguo Wei Zhong Bing Ji Jiu Yi Xue. 2004 -№16 (4)-pp. 198-201.
197. Xia Y.P. Effects of keratinocyte growth factor-2 (KGF-2) on wound healing in an ischaemia-impaired rabbit ear model and on scar formation. / Y.P. Xia, Y. Zhao, J. Marcus, P.A. Jimenez et al. // J. Pathol. 1999 - 188(4) - pp. 431-8.
198. Xie J.L. Basic fibroblast growth factor (bFGF) alleviates the scar of the rabbit ear model in wound healing. / J.L. Xie, H.N. Bian, S.H. Qi, H.D. Chen et al. // Wound Repair Regen 2008 - Vol. 16 (4) - pp. 576-81.
199. Xie J. Effects of basic fibroblast growth factor on the expression of extracellular matrix and matrix metalloproteinase-1 in wound healing. / J. Xie, H. Bian, S. Qi, Y. Xu et al. // Clin. Exp. Dermatol. 2008 - Vol. 33 (2) -pp. 176-82.
200. Xie J. Effects of basic fibroblast growth factors on hypertrophic scarring in a rabbit ear model. / J. Xie, S. Qi, Y. Xu, J. Tang et al. // J. Cutan. Med. Surg. -2008 Vol. 12 (4) - pp. 155-62.
201. Xing B.R. Comparison of the effects of rhEGF with rhbFGF on the acceleration of wound healing. / B.R. Xing, T.Z. Li, H.N. Bian, S.H. Qi et al. // Zhonghua Shao Shang Za Zhi 2003 - Vol. 19 (6) - pp. 340-3.
202. Yang H.M. Effect of improved topical agents on healing time of deep second-degree burn wound. / H.M. Yang, J.K. Chai, Z.R. Guo // Zhongguo Xiu Fu ChongJian WaiKeZaZhi-2001 -Vol. 15(3)-pp. 162-4.
203. Yang Y. Effect of keratinocyte growth factor-2 on proliferation of human adult keratinocytes. / Y. Yang, X. Fu, J. Li // Chin. J. Traumatol. 2002 - № 5(6)-pp. 342-5.
204. Yao Y. A comparative study on wound healing treated by different doses of bovine basic fibroblast growth factor (bFGF). / Y. Yao, C. Fei, Z. Li // Zhonghua Shao Shang Za Zhi. 2001 - № 17(1) - pp. 10-2.
205. Yukami T. Endothelial selectins regulate skin wound healing in cooperation with L-selectin and ICAM-1. / T. Yukami, M. Hasegawa, Y. Matsushita, T. Fujita et al. // J Leukoc Biol. 2007 - № 82(3) - pp. 519-31.
206. Zern B.J. Control growth factor release using a self-assembled polycation:heparin. complex. / B.J. Zern, H. Chu, Y. Wang // PLoS One. -2010 -№8;5(6)-p. 11017.
207. Zheng J. A study on the factors influencing bFGF to improve wound healing in severe burn. / J. Zheng, S. Wang, D. Yan // Zhonghua Zheng Xing Shao Shang Wai Ke Za Zhi 1995 - Vol. 11 (5) - pp. 343-5.
208. Zheng J. Promotion of wound healing with fibroblast growth factor in combined burn radiation injury. / J. Zheng, S. Wang, L. Guo // Zhonghua Zheng Xing Shao Shang Wai Ke Za Zhi 1994 - Vol. 10 (2), pp. 146-9.
209. Zheng Y. Organogenesis from dissociated cells: generation of mature cycling hair follicles from skinderived cells. / Y. Zheng, X. Du, W. Wang, M. Boucher et al. // J. Invest. Dermatol. 2005 - vol. 124 - pp. 867-876.
210. Zhong X. Effect of keratinocyte growth factor on corneal epithelial wound healing. / X. Zhong // Gong Zhonghua Yan Ke Za Zhi. 1998 - № 34(1) -pp. 15-18.
211. Zhou Z. Impaired angiogenesis, delayed wound healing and retarded tumor growth in perlecan heparan sulfate-deficient mice. / Z. Zhou, J. Wang, R. Cao, H. Morita et al. // Cancer Res. 2004 - № 64(14) - pp. 4699-702.
212. Ziegler T.R. Growth factors and wound healing: basic science and potential clinical applications. / T.R. Ziegler, G.F. Pierce, D.N. Herndon // New York: Springer 1997-pp. 3-7.