Автореферат диссертации по ветеринарии на тему Ускоренный метод определения свежести мяса с использованием биосенсорного анализатора
На правах рукописи
КОЛЕСНИКОВ ПАВЕЛ СЕРГЕЕВИЧ
УСКОРЕННЫЙ МЕТОД ОПРЕДЕЛЕНИЯ , СВЕЖЕСТИ МЯСА С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ БИОСЕНСОРНОГО
АНАЛИЗАТОРА
16.00 Об - ветеринарная санитария, экология, зоогигиена и ветеринарно-санитарная экспертиза.
АВТОРЕФЕРАТ
диссертации на соискание учёной степени кандидата ветеринарных наук
Москва - 2005 г.
Работа выполнена в Государственном научном учреждении Всероссийском научно-исследовательском институте ветеринарной санитарии, гигиены и экологии Россельхозакадемии (ГНУ ВПИИВСГЭ РАСХН).
Научный руководитель: кандидат ветеринарных наук,
Николай Александрович Шурдуба (ГНУ ВНИИВСГЭ).
Официальные оппоненты: доктор ветеринарных наук, профессор
Виктор Андреевич Долгов (ГНУ ВНИИВСГЭ);
кандидат ветеринарных наук, профессор Михаил Фёдорович Боровков, (МГАВМиБ)
Ведущая организация: Московский Государственный Университет
Прикладной Биотехнологии (МГУПБ)
Защита состоится «_»_2005 г. в _ часов на
заседании диссертационного совета Д 006.008.01 при ГНУ Всероссийском научно-исследовательском институте ветеринарной санитарии, гигиены и экологии по адресу: 123022, Москва, Звенигородское шоссе, д. 5.
С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке ГНУ Всероссийском научно-исследовательском институте ветеринарной санитарии, гигиены и экологии.
Автореферат разослан «_»_2005г.
Ученый секретарь
диссертационного совета, канд биол. наук
Е.С. Майстренко
ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ
Актуальность темы. В настоящее время в нашей стране и во всем мире большое значение занимает проблема качества продуктов животного происхождения. Это вызвано возрастающим влиянием техногенных факторов на окружающую среду, сельскохозяйственные культуры и продуктивных животных.
Одним из основных показателей качества мяса является его свежесть. Существующие традиционные методы определения свежести мяса (ГОСТ 7269-79 «Мясо. Методы отбора образцов и органолептические методы определения свежести») несмотря на достаточно длительную практику их применения, в целом малопроизводительны, субъективны, не отличаются высокой чувствительностью и специфичностью. Именно поэтому рядом исследователей (Колоболотский Г.В., 1960; Бутко М.П., 1968; Орешкин Е.Ф., 1991; Костенко Ю.Г. 2002) указывается на необходимость комплексного учёта всех происходящих в мясе изменений (органолептических, физико-химических, биохимических, морфологических), что позволяет дать реальную характеристику степени его свежести.
Актуальным является также вопрос приборной реализации методов, получения количественных характеристик изучаемых параметров, что повышает объективность результатов измерений и позволяет проводить метрологическую аттестацию методик, предусмотренную существующим ГОСТ Р ИСО 5725-1-2002 «Точность (правильность и прецизионность) методов и результатов измерений». В отношении методов определения свежести мяса этот вопрос до сих пор остаётся открытым.
В настоящее время весьма перспективным являются биосенсорные методы анализа, которые позволяют с высокой специфичностью и чувствительностью, быстро определять химические вещества в биологических материалах. Наряду с этим биосенсорные анализаторы портативны, относительно дешевы и могут быть использованы в автоматическом режиме.
С помощью биосенсоров можно
микроор! анизмы, биогенные амины, гормоны, пестициды и другие органичсскис п ncopiэпические вещества (Davis G., 1985; Turner A.PF., 1988; Tran Minh С., 1993).
Широкое использование биосенсорных анализаторов в ветерипарно-сапитарпой экспертизе сдерживается отсутствием доступных приборов и утверждённых методов анализа биологического материала.
По данным Смородинцева ИЛ (1952), Павловского П Е. (1975) и других, свежее охлажденное мясо убойных животных содержит определённое количество углеводов (гликогена и глюкозы), белков, жиров и других веществ. При нарушении температурных режимов хранения мяса под влиянием микрофлоры и автолитических процессов уменьшается содержание этих веществ, и образуются вредные продукты распада.
В этой связи при ветсанэкспертизе определённую помощь оказали бы соответствующие биосенсорные анализаторы, которые могли бы быстро и точно устанавливать концентрацию искомых веществ. К сожалению, на данный момент не разработаны нормативы содержания веществ в мясе различной степени свежести. В мясе одним из ведущих энергетических субстратов для роста и развития микроорганизмов является глюкоза, по степени её убыли можно судить о происходящих процессах порчи.
Цель и задачи исследований. Целью работы являлась разработка ускоренного метода определения свежести мяса на основе использования амперометрического ппокозного биосенсорного анализатора.
В задачи исследований входило:
1. Разработать методические подходы к определению глюкозы в мясе убойных животных с помощью биосенсорного анализатора.
2. Изучить содержание глюкозы в мясе убойных животных в зависимости от топографии взятия образца и глубины исследуемого слоя.
3. Определить взаимосвязь уровня глюкозы в мясе убойных животных, ею бактериальной обсеменённости и степени свежести.
4. Определить количественные уровни содержания глюкозы в мясе, которые можно использовать в качестве критериев его свежести.
5. Разработать методические рекомендации по ускоренному определению свежести мяса с использованием биосенсорного анализа.
Научная новнзна. Впервые предложен метод биосенсорного анализа свежести мяса, основанный на определении концентрации глюкозы.
Изучена динамика изменения уровня глюкозы в охлаждённой и замороженной говядине, свинине и баранине в зависимости от степени свежести.
Изучены концентрация глюкозы и распространение санитарно значимых микроорганизмов в тушах убойных животных в зависимости от топографии взятия пробы.
, Определены уровни глюкозы и общей бактериальной контаминации охлаждённого и замороженного мяса различной степени свежести в зависимости от глубины слоя исследуемого образца.
Установлена зависимость между количеством глюкозы, уровнем микробной контаминации и степенью свежести охлаждённого и замороженного мяса убойных животных
Пракшческая ценность работы. На основании результатов исследований разработаны «Методические рекомендации по определению свежести мяса с использованием метода биосенсорного анализа» (утверждены Отделением ветеринарной медицины РЛСХН, 2004 г.).
Апробация работы. Материалы диссертации доложены и обсуждены
на:
4-ой Международной научно-практической конференции «Актуальные проблемы ветеринарной медицины и ветеринарно-санитарного контроля сельскохозяйственной продукции» (Москва, 2002 г.);
- 5-011 Международной научно-технической конференции «Пища Эколот ия. Человек» (Москва, 2003 г );
- XII Международном Московском конгрессе по болезням мелких домашних животных (Москва 2004 г );
5-ой Международной научно-практической конференции «Актуальные проблемы ветеринарной медицины, ветеринарно-санитарного контроля и биологической безопасности сельскохозяйственной продукции» (Москва, 2004 г.)
Публикации. По теме диссертации опубликовано 5 научных статей.
ООьём и структура диссертации. Диссертация изложена на I 50 стр. машинописного текста и состоит из введения, обзора литературы, собственных исследований, обсуждения результатов, выводов, практических предложений, списка литературы и приложений. Список литературы включает 130 источников (46 отечественных и 84 зарубежных авторов). Работа иллюстрирована 30 таблицами.
СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ Материалы и методы исследований.
Диссертационная работа проводилась в период с 2002 по 2005 гг. в отделе технического регулирования, стандартизации и сертификации ВНИИВСГЭ, а также в лаборатории ветсанэкспертизы Орехово-Зуевского городского Центрального рынка. Диссертационная работа выполнена на основании плана научно-исследовательских работ ВНИИВСГЭ и является частью темы 05.02.01.29.2. Образцы охлажденного мяса отбирали на мясоперерабатывающем заводе ООО «Алгер» (г Егорьевск, Московской области) и убойном пункте совхоза «Озерецкий» Орехово-Зуевского района Московской области.
Материалом для исследований являлось охлаждённое и замороженное мясо убойного скота (говядина, свинина и баранина).
По вопросу изучения концентрации глюкозы и санитарно-микробиологических показателей мяса различной степени свежести было исследовано 147 образцов говядины, 181 образец свинины и 96 образцов баранины.
Отбор образцов мяса и определение свежести проводили согласно действующего ГОСТа 7269-79 «Мясо. Методы отбора образцов и органолептические методы определения свежести».
Определение КМАФАнМ, БГКП, бактерий рода Salmonella проводили по действующим ГОСТам, а бактерий Listeria monocytogenes в соответствии с методическими указаниями Минздрава. Санитарно-микробиологические исследования проводили в зависимости от Шубины слоя мяса.
В работе использовали биосенсорный анализатор БИОЛАК (производство ГНЦ НИИ прикладной микробиологии, г. Оболенск, Московской области). В качестве биологически чувствительного элемента использовался глюкозооксидазный биомодуль.
Для моделирования разной степени свежести образцы свежего охлаждённого мяса хранили в холодильнике при температуре (8,0±1,5('С) и влажности 80-85 % в течение 10 - 14 дней. Через каждые 1-2 дня для проведения исследований отрезали куски массой не менее 200 г. Затем пробу испытывали органолептически, подтверждая результаты с помощью мазков-отпечатков и пробой с сернокислой медью. Параллельно исследуемые образцы подвергали микробиологическому и биосенсорному анализу.
В опытах по исследованию различной степени свежести замороженного мяса поступали следующим образом. Отобранный на мясокомбинате образец свежего мяса делили на три равные части массой не менее 200 г. Один образец замораживали сразу при температуре -18 °С. Остальные образцы хранили при температуре 8-10 °С до проявления
признаков сомнительной свежести и несвежего. Затем эти образцы замораживали при температуре -18 °С и хранили в течение 20-30 суток. Размораживание мяса проводили через 1-2 дня при комнатной температуре в течение 2,5-3,0 часов и затем исследовали несколькими методами.
Результаты исследований 1. Разработка метода нодюювкн проб для бносенсорно!о анализа свежести мяса.
Анализируя существующие методы пробоподготовки при исследовании мяса на свежесть, мы пришли к выводу, что стандартный метод не подходит для биосенсорного анализа глюкозы, так как при приготовлении экстракта производится разбавление образца мяса в 5 раз, к тому же получаемые большие объёмы экстракта (80 мл) для биосенсорного анализа не требуются.
Нами был отработан метод подготовки проб мяса для биосенсорного анализа с применением ручною механического пресса, суть которого заключается в асептическом выдавливании мясного сока из кусочка исследуемого мяса массой 5-7 г. Было установлено, что для определения концентрации глюкозы в исследуемом мясе с помощью амперометрического биосепсора требуется всего лишь 20 мкл мясного сока. При этом выделяющегося мясною сока при использовании пресса в количестве 0,8-1,2 мл вполне достаточно для определения уровня глюкозы в исследуемом мясе в 3-5 кратной повторности.
Результаты сравнительного определения концентрации глюкозы при различной пробоподюговке приведены в таблггце 1.
Из данных таблицы 1 видно, что, независимо от способа подготовки пробы, концентрация глюкозы, определяемая биосенсорным анализатором в мясном соке и мясном экстракте, практически одинакова и имеет высокий коэффициент корреляции. Вместе с этим установлено, что способ,
заключающийся в исследовании мясного сока, менее трудоёмок и в этой связи более предпочтителен для биосенсорного анализа
Таблица 1
Сравнительное определение концентрации глюкозы в образцах свежего охлажденного мяса при различной подготовке проб (п=20)
Вид мяса и место отбора образца на туше Определение концентрации глюкозы с помощью биосенсора, мг/мл Коэффициент корреляции (К)
Мясной водный экстракт (1:5) Мясной сок
Говядина:
У зареза 0,92±0,04 4,50+0,09 0,91
В области лопатки 1,иЗ±0,04 5,20±0,12 0,98
В области бедра 0,99+0,05 5,10±0,11 0,96
Свинина:
У зареза 1,01 ±0,06 5,10+0,08 0,96
В области лопатки 1,12±0,05 5,70±0,09 0,98
В области бедра 1,08±0,06 5,60+0,10 0,96
Баранина: У зареза В области лопатки 0,85+0,04 0,96±0,06 4,40±0,09 4,90±0,12 0,92 0,98
В области бедра 0,93±0,06 4,85±0,11 0,94
Следующим этапом нашей работы было определение чувс1вительности биосенсорного метода. Для этого были проведены эксперименты на серийных разведениях глюкозы в стерильной дистиллированной воде.
Результаты проведённых исследований представлены в таблице 2.
Анализ результатов проведённых исследований позволил установить, что чувствительность биосенсорного анализатора составляет 0,01 мг/мл.
Для определения специфичности биосенсорного анализатора нами были проведены опыты по испытанию различных растворов с помощью биосенсора. Результаты исследований приведены в таблице 3.
Анализ результатов, представленных в таблице 3, позволил установить, что используемый нами глюкозный биосенсорный анализатор обладает
высокой специфичностью и не даёт ложноположительных результатов с чистыми растворами сахарозы, мальтозы, лактозы, альбумина, ЫаС1, дрожжевою экстракта, пептона и казенна.
Таблица 2
Изучение чувствительности биосеисорио! о метода определения глюкозы (п=15)
Стандартное разведение глюкозы, мг/ мл Концентрация глюкозы, определяемая биосенсором, мг/мл
4,00 3,95+0,14
2,00 2,05+0,10
1,00 0,97+0,04
0,50 0,51±0,02
0,25 0,22±0,02
0,12 0,11 ±0,02
0,06 0,06+0,01
0,03 0,03+0,01
0,01 0,010+0,001
Таблица 3
Определение специфичности бносенсорного анализатора (п=15)
Испытуемые субстраты, мг/мл Показания биосенсора, мг/мл
Раствор глюкозы 2,0 2,0+0,1
Раствор сахарозы 1,0 0,0'
Раствор мальтозы 1,0 0,0
Раствор лактозы 1,0 0,0
Раствор альбумина 1,0 0,0
Раствор ЫаС1 2,5 0,0
Дрожжевой экстракт 1,0 0,0 .
Раствор пептона 1,0 0,0
Раствор казеина 1,0 0,0
Раствор сахарозы и глюкозы (содержащий по 1,0 мг/мл каждого вещее 1ва) 1,0±0,10
Раствор мальтозы и глюкозы (содержащий по 1,0 мг/мл каждого вещества) 1,0+0,13
Раствор лактозы и глюкозы (содержащий по 1,0 мг/мл каждого вещества) 1,0±0,09
Раствор альбумина и глюкозы (содержащий по 1,0 мг/мл 1,0+0,11
каждого вещества)
Раствор NaCI и глюкозы (содержащий по 1,0 мг/мл каждого вещества) 1,0±0,15
Pací вор дрожжевого экстракта и глюкозы (содержащий по 1,0 мг/мл каждого вещества) 1,0±0,11
Раствор пептона и глюкозы (содержащий по 1,0 мг/мл каждого вещества) 1,010,12
Раствор казеина и глюкозы (содержащий по 1,0 мг/мл каждого вещества) 1,010,14
2. Изучение уровня 1Люкозы в мясе различной степепи свежести и ею взаимосвязи с бактериальной обсеменённостью мяса.
Были проведены исследования по изучению взаимосвязи между уровнем глюкозы, бактериальной обсеменённостью и степенью свежести в охлажденном и замороженном мясе. Результаты исследований охлаждённой говядины представлены на рисунке 1 и в таблице 4. Анализ представленных результатов позволил установить закономерность, которая заключалась в обратной пропорциональной зависимости между концентрацией глюкозы и количеством микроорганизмов, контаминирующих мясо различной степени свежести. Результаты, полученные нами с помощью биосенсорного анализа, позволили установить, что в поверхностном слое свежей охлаждённой говядины уровень глюкозы составлял от 3,09 мг/мл до 3,65 мг/мл, при этом КМАФАнМ было в пределах от 6,1х103 до 4,9х104 КОЕ/г. В глубоких слоях говядины концентрация глюкозы составляла 3,56-4,37 мг/мл, КМАФАнМ было в пределах 3,3x102 КОЕ/г.
Результаты, полученные нами при исследовании охлаждённой говядины сомнительной свежести, позволили обнаружить, что в поверхностном слое количество глюкозы по сравнению со свежим мясом снижается в 3,7 раза. КМАФАнМ по сравнению со свежим мясом увеличилось на 1-2 порядка. Вместе с тем, в глубоких слоях концентрация глюкозы практически не снижается но сравнению со свежим мясом, а КМАФАнМ увеличивается всего лишь в 1,2 раза. Это свидетельствует о том, что процесс порчи мяса начинается с поверхностных слоёв.
Рисунок 1
И ».мепеипе копнем I рации ииокозы в зависимое! п о г стюпп сисжссш и 1Л}бпны слоя в охлаждённой I овндине
КонцсмI рация I люки )1>1, мг/мл
□ 0,0-0,5 см
□ 0,5-1,0 см Е 1,0-1,5 см ■ 1,5-2,0 см
1 2 3
Свежее Сомнительной Несвежее свежести
Iаблица 4
Изменение КМДФЛнМ в зависимое! н 01 (мемеии свежсст и ипбнны слоя в охлажденной юнилппс ргилнчпом етепепи свежести (п= 85)
Степень свежсс М1 КМАФАнМ в зависимосги ог глубины слоя мяса от поверхности, КОБ/г
До 0,5 см 0,5-1,0 см 1,0-1,5 см 1,5-2,0 см
Свежее (2,1 ±0,3)х I О1 (5,2±0,3)х102 (3,9±0,4)х102 (3,3±0,3)х102
Сомнит. свежести (1,1 ±0,3 )х 10'' (2,7±0,5)х 104 (5,3±0,4)х102 (3,1±0,5)х102
11есвсжее (4,4±0,7)х10" (8,2±0,5)х 10Л (5,8±0,4)х10б (4,1±0,5)х105
В результате бносепсорного анализа глюкозы, проведённого нами в поверхностном слое несвежею мяса, было показано, что её концентрация снижается в 8,6 раз, а КМЛФАнМ увеличивается на 5-6 порядков В
глубоких слоях концентрация глюкозы снижается в 3,9 раза В то же время КМЛФАнМ увеличивается на 3 порядка.
Результаты исследований охлаждённой свинины и баранины различной с i епеии свежести представлены на рисунках 2, 3 и в таблицах 5 и 6. Они coi пасуются сданными, полученными при изучении говядины
Рисунок 2
Изменение концом i рации глюкозы в зависимости ог с i с мени свежее ni и 1лубнны слои в охлаждённой свинине
Копцсшрация 4,5 инокозы, ^ мг/мл
|П 0,0-0,5 см ,□0,5-1,0 см И 1,0-1,5 см ■ 1,5-2,0 см
1 2 3
Свежее Сомнительной Несвежее свежести
Таблица 5
Определение КМАФАнМ п обращав охлажденной свинины различной степени свежести (п=97)
Степень свежести КМАФАнМ в зависимости от глубины слоя мяса от поверхности, КОЕ/г
До 0,5 см 0,5-1,0 см 1,0-1,5 см 1,5-2,0 см
Свежее (1,6±0,3)х 104 (4,9±0,4)х102 (4,2±0,3)х102 (3,1±0,2)х102
Сомниг. свежести (I,8±0,4)xl0ñ (2,1±0,3)х104 (4,9±0,4)х102 (3,8±0,2)х102
11есиежее
(5,8±0,6)ч 10
(1,9±0,6)\107
(7,2+0,6)х 10
(6,1±0,6)х10'
Рисунок 3
IIзмеиенис копнем 1 рации глюкозы в зависимости 01 С1СМС11Н свсжссш н 1Л)б||ны слоя в охлаждённой баранине
Концеш рация I люкозы, мг/мл
□ 0,0-0,5 см
□ 0,5-1,0 см И 1,0-1,5 см ■ 1,5-2,0 см
4 3,5 3 2,5 2 1,5 I
0,5 0
Свежее Сомнительной Несвежее свежести
Таблица 6
Определение КМАФАнМ в образцах охлажденной баранины различной с 1 спет! свежесш (п=55)
Степень свежести КМАФАнМ в зависимости от глубины слоя мяса от поверхности, КОЕ/г
До 0,5 см 0,5-1,0 см 1,0-1,5 см 1,5-2,0 см
Свежее (1,6±(),4)\10' ' (2,3±0,5)хН)" (5,4±0,4)х10: (4,3±0,5)х10: (2,8+0,3)х102
Сомпиг. свежести (2,2+0,3)х 104 (5,9±0,5)х102 (4,6±и,4)х10'! (4,7±0,4)хЮ'
1 !есвсжсс (6,7±0,6)х 1 0" (8,1 ±0,6)х 107 (5,8±0,3)х106
Анализ результатов, представленных на рисунках 1, 2, 3 и в таблицах 4, 5, 6 позволил установить закономерность, которая характеризовалась увеличением концентрации глюкозы в образцах мяса в зависимости от глубины и анатомического места исследуемого образца. Таким образом, можно заключить, что в поверхностном слое охлаждённого свежего мяса отмечается наибольшее количество контаминирующих микроорганизмов, что имеет существенное значение для сохранения его свежести в процессе хранения. При этом установлено, что концентрация глюкозы в охлаждённом мясе сомнительной свежести меньше, чем в свежем мясе, но сохраняется закономерность увеличения уровня глюкозы от поверхностных слоев к глубоким Результаты биосенсорных исследований, проведённых на образцах несвежего мяса, показывают, что в нём также сохраняется закономерность послойного увеличения уровня глюкозы: наименьшее количество в поверхностном слое, затем происходит постепенное увеличение в более глубоких слоях.
Таким образом, можно заключить,' что во всех слоях несвежего охлаждённого мяса происходит глубокая порча, и количество глюкозы в несколько раз меньше, чем в свежем мясе. Сопоставление результатов микробиологических исследований свежего, сомнительной свежести и несвежего мяса с результатами биосенсорного анализа глюкозы позволяет установить обратную пропорциональную зависимость между концентрацией глюкозы и количеством микроорганизмов в слоях мяса разной степени свежести. В мясе сомнительной свежести глубокие слои (более 1 см) соответствуют свежему мясу. Образцы, взятые в области зареза наиболее контаминированы микроорганизмами но сравнению с образцами, взятыми от лопатки и бедра.
Биосенсорные и микробиологические исследования замороженной говядины, представленные на рисунке 4 и в таблице 7, позволили установить такую же закономерность, как и у охлаждённого мяса. При этом нами отмечено, что уровень глюкозы в замороженном мясе убойных животных на
30-40 % ниже, чем в охлаждённом мясе, что объясняется большим уровнем микробном копIампнацип
Рисунок 4
Изменение концентрации ипокозы в зависимости от степени сосжестп н и/убипы слоя в замороженной ювядине
Конценфацпя I люкозы, М1 /мл
□ 0,0-0,5 см
□ 0,5-1,0 см
■ 1,0-1,5 см
■ 1,5-2,0 см
2,5 2 1,5 I
0,5
Свежее Сомнительной Несвежее свежести
Таблица 7
Определение КМАФАнМ п образцах замороженной ювяднны различной степени свежесгн (п=48)
Степень свежести КМАФАнМ в зависимости от глубины слоя мяса от поверхности, КОЕ/г
До 0,5 см 0,5-1,0 см 1,0-1,5 см 1,5-2,0 см
Свежее (1,2±0,3)х105 (1,1±0,2)х104 (5,1±0,4)х101 (3,б±0,4)х10}
Сомнит. свежести (1,8±0,2)х 107 (0,7±012)Х10,! (4,9±0,4)х104 (4,1±0,5)х10'<
I {есвежее (5,2±0,5)х 10ч (2,1+0,2)х 108 (2,8±0,3)х107 (2,3±0,4)х107
Анализ результатов исследования замороженного мяса позволил установить такую же закономерность, как и у охлаждённого мяса. При этом нами отмечено, что уровень глюкозы в замороженном мясе убойных животных на 30-40 % ниже, чем в охлаждённом мясе, что объясняется большим уровнем микробной контаминации.
Результаты исследований замороженной свинины и баранины различной степени свежести представлены на рис 5, 6 и в табл. 8, 9. они аналогичные данным, полученным при изучении замороженной говядины
Рисунок 5
Изменение конценграции глюкозы в зависимости от степени свежести и глубины слоя в замороженной свинине
Концентрация глюкозы, мг/мл
□ 0,0-0,5 см
□ 0,5-1,0 см 11,0-1,5 см 11,5-2,0 см
3 2,5 2 1,5 1
0,5 0
Свежее Сомнительной Несвежее свежести
Таблица 8
Определение КМАФАнМ в образцах замороженной свинине различной степени свежееIи (п=60)
Степень свежести КМАФАнМ в зависимости от глубины слоя мяса от поверхности, КОЕ/г
До 0,5 см 0,5-1,0 см 1,0-1,5 см 1,5-2,0 см
Свежее (1,3±0,2)х105 (1,1±0,2)х104 (6,5±0,5)х103 (5,3±0,4)х103
Сомнит. свежести (1,3±0,2)х107 (9,3±0,6)х104 (5,8±0,5)х104 (4,9±0,6)х104
Несвежее (6,5±0,5)х10ч (1,7±0,2)х108 (3,9±0,4)х107 (3,5±0,2)х107
Рисунок 6
Изменение концентрации глюкозы в зависимости от смепени свежести н глубины слоя в замороженной баранине
2,5 2
Концентрация глюкозы, мг/мл
□ 0,0-0,5 см
□ 0,5-1,0 см 1,0-1,5 см 1,5-2,0 см
Свежее Сомнительной Несвежее свежести
Таблица 9
Определение КМАФАнМ в образцах замороженной баранины различном С1епени свежеет (п=35)
Степень свежести КМАФАнМ в зависимости от глубины слоя мяса от поверхности, КОЕ/г
До 0,5 см 0,5-1,0 см 1,0-1,5 см 1,5-2,0 см
Свежее (1,3±0,4)х105 (2,9±0,2)х104 (3,7±0,3)х103 (2,8±0,2)х101
Сомнит. свежести (1,1±0,3)х107 (2,7±0,3)х105 (4,7±0,5)х10" (4,1±0,3)х104
Несвежее (6,8±0,5)х109 (0,5±0,2)х108 (0,8±0,2)х107 (3,8±0,4)х106
Анализ результатов проведённых биосенсорных исследований, представленных на рис. 4, 5, 6, позволил определить закономерность увеличения количества глюкозы в образцах мяса в зависимости от глубины исследуемого слоя. Отмечено, что в поверхностном слое замороженного свежего мяса, отмечается наибольшее количество микроорганизмов.
В замороженном мясе сомнительной свежести происходит более глубокая микробиологическая порча, чем в охлаждённом мясе сомнительной свежести. Образцы, взятые в области зареза наиболее контаминированы микроорганизмами по сравнению с образцами, взятыми от лопатки и бедра.
Результаты исследований образцов несвежею замороженного мяса показывают, что в нём также сохраняется закономерность послойного увеличения уровня глюкозы: наименьшее количество в поверхностном слое, затем происходит постепенное увеличение в более глубоких слоях
Таким образом, можно заключить, что во всех слоях несвежего размороженною мяса происходит глубокая порча, и количество ппокозы в несколько раз меньше, чем в свежем мясе.
Сопоставление результатов микробиологических исследований свежего, сомнительной свежести и несвежего мяса, с результатами биосенсорного анализа глюкозы показывает обратную пропорциональную зависимость между концентрацией глюкозы и количеством микроорганизмов в слоях мяса разной степени свежести
Результаты определения количественных уровней глюкозы в охлаждённом мясе различной степени свежести представлены в таблице 10.
Таблица 10
Зависимость стенени свежести охлажденного миса от концентрации глюкозы в мышечной ткани
Вид мяса Степень свежести Концентрация глюкозы на глубине более 1,0 см мг в 1 мл мясного сока
Говядина Свежая Более 2,5
Сомнительной свежести От 1,2 до 2,5
Несвежая Менее 1,2
Свинина Свежая Более 3,0
Сомнительной свежести От 1,5 до 3,0
Несвежая Менее 1,5
Баранина Свежая Более 2,5
Сомнительной свежести От 1,0 до 2,5
Несвежая Менее 1,0
Установлено, что в свежей говядине концентрация глюкозы должна составлять более 2,5 мг/мл, у свинины более 3,0 мг/мл, у баранины более 2,5 мг/мл. Охлаждённое мясо является сомнительной свежим, если концентрация глюкозы составляет, для говядины от 1,2 до 2,5 мг/мл; для свинины от 1,5 до 3,0 мг/мл; для баранины от 1,0 до 2,5 мг/мл. Охлаждённое мясо является несвежим, если уровень глюкозы составляет: для говядины менее 1,2 мг/мл; для свинины менее 1,5 мг/мл; для баранины менее 1,0 мг/мл.
Результаты определения количественных уровней глюкозы в замороженном мясе различной степени свежести представлены в таблице И.
Таблица 11
Зависимость степени свежести замороженного мяса от концентрации глюкозы в мышечной гкани
Вид мяса Степень свежести Концентрация глюкозы на глубине более 1,0 см мг в 1 мл мясного сока
Говядина Свежая Более 1,5
Сомнительной свежести От 1,1 до 1,5
Несвежая Менее 1,1
Свинина Свежая Более 1,8
Сомнительной свежести От 1,0 до 1,8
Несвежая Менее 1,0
Баранина Свежая Более 1,9
Сомнительной свежести От 0,8 до 1,9
Несвежая Менее 0,8
Определено, что в свежей замороженной говядине должно содержаться более 1,5 мг/мл глюкозы. Этот показатель для охлаждённой свинины и баранины составляет более 1,8 мг/мл и 1,9 мг/мл соответственно.
Замороженное мясо является сомнительной свежести, если концентрация глюкозы в мясном соке составляет: для говядины от 1,1 до 1,5 мг/мл; для свинины от 1,0 мг/мл до 1,8 мг/мл; для баранины от 0,8 мг/мл до 1,9 мг/мл.
Замороженное мясо является несвежим, если уровень глюкозы в мясном соке составляет: для говядины менее 1,1 мг/мл; для свинины менее 1,0 мг/мл; для баранины менее 0,8 мг/мл.
Исходя из этого, разработанные нами количественные уровни концентрации глюкозы в мясе можно использовать в качестве критериев при ускоренной оценке его свежести.
выводы
1. Определены методические подходы (пробоподготовка, постановка анализа, учёг результатов и т.д.) к определению глюкозы в мясе убойных животных с помощью биосенсорного анализатора.
2. Показана высокая чувствительность и специфичность разработанного биосеисорного метода определения глюкозы в мясе убойных животных.
3. Определены средние уровни содержания глюкозы в охлаждённом и замороженном мясе убойных животных. Установлено, что в охлаждённой говядине концентрация глюкозы была на уровне 3,73+0,08 мг/мл, в свинине 4,22±0,11 мг/мл, в баранине 3,7!±0,12 мг/мл. В замороженном мясе этот показатель составлял: для говядины 2,19±0,07 мг/мл, для свинины 2,23±0,06 мг/мл и для баранины 2,44±0,09 мг/мл.
4. Установлено, что уровень глюкозы в поверхностном слое (до 1 см) свежего охлаждённого мяса, отобранного от туш убойных животных, ниже, чем в более глубоких слоях. Так, в свежезамороженном мясе концентрация глюкозы была ниже в 1,13-1,19 раза но сравнению с более глубоким слоем. Вместе с тем установлено, что в образцах мяса, взятых в области зареза, уровни глюкозы в поверхностных слоях составляли для говядины, свинины и баранины 3,09±0,10 мг/мл, 3,77±0,10 мг/мл, 3,23±0,14 мг/мл соответственно и были в 1,21; 1,08; 1,09 раз меньше, чем в поверхностных слоях, взятых от области лопатки и бедра.
5. Установлена взаимосвязь уровня глюкозы в мясе убойных животных со степенью его бактериальной контаминации и свежести.
6. Показано, что в поверхностных слоях свежего охлаждённого мяса концентрация глюкозы у зареза туш убойных животных составляла в среднем 3,3б±0,10 мг/мл, в области лопатки и бедра - 3,77±0,10 мг/мл и 3,72 мг/мл соответственно. При этом КМАФАнМ у зареза животных составляло в среднем (4,4±0,3)х10 КОЕ/г, в области лопатки и бедра - (4,2±0,3)х103 КОЕ/г
и (5,3±0,4)хЮ1КОЕ/г соответственно. В глубоких слоях говядины, свинины и баранины этог показатель был в среднем соответственно в 120, 113 и 108 раз меньше, чем в поверхностных слоях.
В свежезамороженном мясе концентрация глюкозы в поверхностных слоях составляла 1,88±0,07 - 2,58±0,09 мг/мл, а в глубоких слоях 2,08±0,08 -2,69±0,09 мг/мл. КМАФАнМ в поверхностных слоях составляло (1,3±0,2)хЮ4 - (3,9±0,4)х!0'! KOE/i, а в глубоких слоях были на уровне (4,б±0,4)хЮ1КОЕ/г.
7. В охлаждённом мясе сомнительной свежести уровень глюкозы снижался у зареза туш убойных животных в 4,2 раза, в области лопатки и бедра был в 3,1 раза меньше, чем в свежем мясе. При этом КМАФАнМ у зареза составляло в среднем (5,3±0,4)х10 КОЕ/г, в области лопатки и бедра -(5,1±0,3)х104 КОЕ/г и (4,8±0,4)х104 КОЕ/г соответственно. В глубоких слоях говядины, свинины и баранины уровень общей микробной контаминации был в среднем в 8,Зх103, 11,2x1o1 и 12,7х103 раз меньше, чем в поверхностных слоях.
В замороженном мясе сомнительной свежести концентрация глюкозы в поверхностном слое снижалась 2,6 раза, а в глубоких слоях - в 1,6-1,7 раза. КМАФАнМ в поверхностных слоях составляло (2,1±0,2)х105 - (5,5±0,4)х107 КОЕ/г, а в глубоких слоях было на уровне (4,5±0,4)х104 КОЕ/г.
8. Отмечено, что концентрация глюкозы в несвежем охлаждённом и замороженном мясе туш убойных животных снижается в 7,1-10,5 раз в зависимости от глубины исследуемого слоя. Установлено, что в поверхностном слое мяса количество глюкозы снижалось в 9,2-11,1 раз, а на глубине свыше 2,0 см - в 2,8 раза.
Общая микробная контаминация несвежего охлаждённого и замороженного мяса туш убойных животных в значительной степени уменьшается в зависимости от глубины исследуемого слоя. В поверхносшом слое мяса КМАФАнМ составляло в среднем (4,7±0,4)х109 КОЕ/г, а на глубине свыше 2,0 см - на уровне (6,2±0,4)х105 КОЕ/г.
9. 1 la основании проведённых исследований определены количественные уровни содержания глюкозы в мясе убойных животных, которые можно использовать в качестве критериев его свежести. Разработаны методические рекомендации по ускоренному определению свежести мяса с использованием биосенсорного анализатора.
ПРЕДЛОЖЕНИЕ ДЛЯ ПРАКТИКИ
Для использования в научно-исследовательских учреждениях и лабораториях ветеринарно-санитарной экспертизы могут быть рекомендованы разработанные нами «Методические рекомендации по определению свежести мяса с использованием метода биосенсорного анализа» (утверждены Отделением ветеринарной медицины РАСХН, 2004г).
СПИСОК ОПУБЛИКОВАННЫХ РАБОТ
1. Колесников П.С., Костенко Ю.Г. Быстрые методы микробиологического контроля мясных продуктов. Всё о мясе. 2001, №1, с. 48-51.
2. Колесников П.С., Шурдуба H.A. Метод ускоренного определения свежести мяса. // Материалы 4-ой Международной научно-практической конференции «Актуальные проблемы ветеринарной медицины и ветеринарно-санитарного контроля сельскохозяйственной продукции» Москва, 2002, с. 46-47.
3. Колесников П.С., Бабунова B.C., Шурдуба H.A. Использование глюкозного биосенсора для определения степени свежести мяса. // Материала 5-ой Международной научно-технической конференции «Пища. Экология. Человек», Москва, 2003, с. 233-234.
4. Колесников П.С , Бабунова В С , Шурдуба H.A. Метод определения свежести мяса с использованием амперометрического глюкозного биосенсора // Материалы XII Международного Московского конгресса по болезням мелких домашних животных, Москва 2004 г, с. 229-230.
5. Колесников П.С., Шурдуба Н А Использование новых методов определения свежести охлаждённого мяса. // Материалы 5-ой Международной научно-практической конференции «Актуальные проблемы ветеринарной медицины, ветеринарно-санитарного контроля и биологической безопасности сельскохозяйственной продукции» Москва, 2004, с. 37-38.
ВНИИВСГЭ, 2005 г., г. Москва, Звенигородское шоссе, д.5 Заказ
Тираж 80 экз.
-8 190
РЫБ Русский фон
2006-4 15813
Оглавление диссертации Колесников, Павел Сергеевич :: 2005 :: Москва
ВВЕДЕНИЕ.
1. ЛИТЕРАТУРНЫЙ ОБЗОР.
1.1. Микробиологические аспекты порчи мяса.
1.2. Роль глюкозы в метаболизме возбудителей порчи мяса.
1.3. Применение биосенсоров для экспертизы качества и безопасности продуктов животного происхождения.
1.4. Методология определения свежести мяса.
2. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ.
2.1. Материалы и методы.
2.2. Разработка метода подготовки проб для биосенсорного анализа свежести мяса.
2.3. Изучение уровня глюкозы в мясе различной степени свежести.
2.3.1 Определение уровня глюкозы в охлаждённом мясе.
2.3.2 Изучение уровня глюкозы в замороженном мясе.
2.3.3 Определение зависимости степени свежести мяса от концентрации глюкозы в мышечной ткани.
2.4. Определение бактериальной контаминации мяса различной степени свежести в зависимости от глубины слоя исследуемого образца.
2.4.1 Определение КМАФАнМ в зависимости от глубины среза охлаждённого мяса убойных животных.
2.4.2 Определение КМАФАнМ в зависимости от глубины среза замороженного мяса убойных животных.
2.5. Изучение санитарно-микробиологических показателей мяса убойных животных.
2.5.1 Изучение санитарно-микробиологических показателей охлаждённого мяса убойных животных.
2.5.2 Изучение санитарно-микробиологических показателей замороженного мяса убойных животных.
3. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЙ.
ВЫВОДЫ.
ПРЕДЛОЖЕНИЯ ДЛЯ ПРАКТИКИ.
Введение диссертации по теме "Ветеринарная санитария, экология, зоогигиена и ветеринарно-санитарная экспертиза", Колесников, Павел Сергеевич, автореферат
Актуальность темы. В настоящее время в нашей стране и во всем мире большое значение занимает проблема качества продуктов животного происхождения. Это вызвано возрастающим влиянием техногенных факторов на окружающую среду, сельскохозяйственные культуры и продуктивных животных.
Система ветеринарного контроля качества и безопасности мяса предусматривает, наряду с производственным контролем, проведение государственного контроля за соблюдением ветеринарно-санитарных правил и норм на всех стадиях убоя скота, разделки туш, переработки, хранения и реализации мяса.
Существующие национальные стандартные методы контроля степени свежести мяса (ГОСТ 23392-78. Мясо. Методы химического и микроскопического анализа свежести; ГОСТ 7269-79. Мясо. Методы отбора образцов и органолептические методы определения свежести) имеют низкую производительность, малую чувствительность и информативность, субъективны, в ряде случаев трудоёмки, дорогостоящи, требуют высококвалифицированного персонала и специальных лабораторий для проведения анализа.
Имеющиеся литературные сведения и данные лабораторных исследований свидетельствуют о расхождении и нестабильности результатов исследования на свежесть мяса, полученных по действующим стандартам. В этой связи возникает необходимость в разработке новых высокопроизводительных приборных методов определения качества мясного сырья, что в определённой степени будет способствовать получению более высокого качества мясных продуктов.
Также актуальным остается вопрос разработки экспресс-методов оценки степени свежести мяса и его безопасности. В настоящее время весьма перспективными являются биосенсорные методы анализа для оперативного контроля качества продукции в пищевой промышленности и, в том числе, мясной отрасли. Современные биосенсорные анализаторы позволяют с высокой специфичностью и чувствительностью быстро определять химические вещества в биологических материалах. Наряду с этим, биосенсорные анализаторы портативны, относительно дешевы и могут быть использованы в автоматическом режиме. С помощью биосенсоров можно определять токсины, патогенные микроорганизмы, биогенные амины, гормоны, пестициды и другие органические и неорганические вещества.
Широкое использование биосенсорных анализаторов в ветеринарно-санитарной экспертизе сдерживается слабым финансированием отрасли, отсутствием доступных приборов и утверждённых методов анализа биологического материала.
Большое распространение в медицине и ветеринарии при диагностике диабета, а также при производстве пищевых продуктов получили амперометрические глюкозные биосенсорные анализаторы, основанные на использовании иммобилизированной глюкозооксидазы.
Известно, что свежее охлажденное мясо убойных животных содержит определённое количество углеводов (гликогена и глюкозы), белков, жиров и других веществ. При нарушении температурных режимов хранения мяса под влиянием микрофлоры и автолитических процессов уменьшается содержание этих веществ и образуются вредные продукты распада.
Таким образом, практически по изменению биохимических показателей мяса можно судить о его доброкачественности. В этой связи при ветсанэкспертизе определённую помощь оказали бы соответствующие биосенсорные анализаторы, которые могли бы быстро и точно устанавливать концентрацию искомых веществ. К сожалению, на данный момент не разработаны нормативы содержания веществ в мясе различной степени свежести.
В мясе одним из ведущих энергетических субстратов для роста и развития микроорганизмов является глюкоза, и, вероятно, по степени её убыли можно судить о происходящих процессах порчи.
Цель и задачи исследований. Целью работы являлась разработка ускоренного метода определения свежести мяса на основе использования амперометрического глюкозного биосенсорного анализатора.
В задачи исследований входило:
1. Разработать методические подходы к определению глюкозы в мясе убойных животных с помощью биосенсорного анализатора.
2. Изучить содержание глюкозы в мясе убойных животных в зависимости от топографии взятия образца и глубины исследуемого слоя.
3. Определить взаимосвязь уровня глюкозы в мясе убойных животных, его бактериальную обсеменённости и степени свежести.
4. Определить количественные уровни содержания глюкозы в мясе различной степени свежести, которые можно использовать в качестве критериев его свежести.
5. Разработать методические рекомендации по ускоренному определению свежести мяса с использованием биосенсорного анализа.
Научная новизна. Впервые предложен метод биосенсорного анализа свежести мяса, основанный на определении концентрации глюкозы.
Изучена динамика изменения уровня глюкозы в охлаждённой и замороженной говядине, свинине и баранине в зависимости от степени свежести.
Изучены концентрация глюкозы и распространение санитарно значимых микроорганизмов в тушах убойных животных в зависимости от топографии взятия пробы.
Определены уровни глюкозы и общей бактериальной контаминации охлаждённого и замороженного мяса различной степени свежести в зависимости от глубины слоя исследуемого образца.
Установлена зависимость между количеством глюкозы, уровнем микробной контаминации и степенью свежести охлаждённого и замороженного мяса убойных животных.
Практическая ценность работы. На основании результатов исследований разработаны «Методические рекомендации по определению свежести мяса с использованием метода биосенсорного анализа» (утверждены Отделением ветеринарной медицины РАСХН, 2004 г.).
Апробация работы. Материалы диссертации доложены и обсуждены на:
4-ой Международной научно-практической конференции «Актуальные проблемы ветеринарной медицины и ветеринарно-санитарного контроля сельскохозяйственной продукции» (Москва, 2002 г);
- 5-ой Международной научно-технической конференции «Пища. Экология. Человек» (Москва, 2003);
- XII Международном Московском конгрессе по болезням мелких домашних животных (Москва 2004 г.);
- 5-ой Международной научно-практической конференции «Актуальные проблемы ветеринарной медицины, ветеринарно-санитарного контроля и биологической безопасности сельскохозяйственной продукции» (Москва, 2004).
1. ЛИТЕРАТУРНЫЙ ОБЗОР.
Заключение диссертационного исследования на тему "Ускоренный метод определения свежести мяса с использованием биосенсорного анализатора"
ВЫВОДЫ
1. Определены методические подходы (пробоподготовка, постановка анализа, учёт результатов и т.д.) к определению глюкозы в мясе убойных животных с помощью биосенсорного анализатора.
2. Показана высокая чувствительность и специфичность разработанного биосенсорного метода определения глюкозы в мясе убойных животных.
3. Определены средние уровни содержания глюкозы в охлаждённом и замороженном мясе убойных животных. Установлено, что в охлаждённой говядине концентрация глюкозы была на уровне 3,73±0,08 мг/мл, в свинине 4,22±0,11 мг/мл, в баранине 3,71±0,12 мг/мл. В замороженном мясе этот показатель составлял: для говядины 2,19±0,07 мг/мл, для свинины 2,23±0,06 мг/мл и для баранины 2,44±0,09 мг/мл.
4. Установлено, что уровень глюкозы в поверхностном слое (до 1 см) свежего охлаждённого мяса, отобранного от туш убойных животных, ниже, чем в более глубоких слоях. Так, в свежезамороженном мясе концентрация глюкозы была ниже в 1,13-1,19 раза по сравнению с более глубоким слоем. Вместе с тем установлено, что в образцах мяса, взятых в области зареза, уровни глюкозы в поверхностных слоях составляли для говядины, свинины и баранины 3,09±0,10 мг/мл, 3,77±0,10 мг/мл, 3,23±0,14 мг/мл соответственно и были в 1,21; 1,08; 1,09 раз меньше, чем в поверхностных слоях, взятых от области лопатки и бедра.
5. Установлена взаимосвязь уровня глюкозы в мясе убойных животных со степенью его бактериальной контаминации и свежести.
6. Показано, что в поверхностных слоях свежего охлаждённого мяса концентрация глюкозы у зареза туш убойных животных составляла в среднем 3,36±0,10 мг/мл, в области лопатки и бедра - 3,77±0,10 мг/мл и
3,72 мг/мл соответственно. При этом КМАФАнМ у зареза животных составляло в среднем (4,4±0,3)х104 КОЕ/г, в области лопатки и бедра -(4,2±0,3)х103 КОЕ/г и (5,3±0,4)х103 КОЕ/г соответственно. В глубоких слоях говядины, свинины и баранины этот показатель был в среднем соответственно в 120,113 и 108 раз меньше, чем в поверхностных слоях.
В свежезамороженном мясе концентрация глюкозы в поверхностных слоях составляла 1,88±0,07 - 2,58±0,09 мг/мл, а в глубоких слоях 2,08±0,08 - 2,69±0,09 мг/мл. КМАФАнМ в поверхностных слоях составляло (1,3±0,2)х104 - (3,9±0,4)х105 КОЕ/г, а в глубоких слоях было на уровне (4,6±0,4)х 103 КОЕ/г.
7. В охлаждённом мясе сомнительной свежести уровень глюкозы снижался у зареза туш убойных животных в 4,2 раза, в области лопатки и бедра был в 3,1 раза меньше, чем в свежем мясе. При этом КМАФАнМ у зареза составляло в среднем (5,3±0,4)х106 КОЕ/г, в области лопатки и бедра - (5,1±0,3)х104 КОЕ/г и (4,8±0,4)х104 КОЕ/г соответственно. В глубоких слоях говядины, свинины и баранины уровень общей микробной контаминации был в среднем в 8,3x10 , 11,2x10 и 12,7x10 раз меньше, чем в поверхностных слоях.
В замороженном мясе сомнительной свежести концентрация глюкозы в поверхностном слое снижалась в 2,6 раза, а в глубоких слоях - в 1,6-1,7 раза. КМАФАнМ в поверхностных слоях составляло (2,1±0,2)х105 - (5,5±0,4)х107 КОЕ/г, а в глубоких слоях было на уровне (4,5±0,4)х10
КОЕ/г.
8. Отмечено, что концентрация глюкозы в несвежем охлаждённом и замороженном мясе туш убойных животных снижается в 7,1-10,5 раз в зависимости от глубины исследуемого слоя. Установлено, что в поверхностном слое мяса количество глюкозы снижалось в 9,2-11,1 раз, а на глубине свыше 2,0 см - в 2,8 раза.
Общая микробная контаминация несвежего охлаждённого и замороженного мяса туш убойных животных в значительной степени уменьшается в зависимости от глубины исследуемого слоя. В поверхностном слое мяса КМАФАнМ составляло в среднем (4,7±0,4)х109 КОЕ/г, а на глубине свыше 2,0 см - на уровне (6,2±0,4)х105 КОЕ/г.
9. На основании проведённых исследований определены количественные уровни содержания глюкозы в мясе убойных животных, которые можно использовать в качестве критериев его свежести. Разработаны методические рекомендации по ускоренному определению свежести мяса с использованием биосенсорного анализатора.
ПРЕДЛОЖЕНИЯ ДЛЯ ПРАКТИКИ
Для использования в научно-исследовательских учреждениях и лабораториях ветеринарно-санитарной экспертизы могут быть рекомендованы разработанные нами «Методические рекомендации по определению свежести мяса с использованием метода биосенсорного анализа» (утверждены Отделением ветеринарной медицины РАСХН, 2004 г).
Список использованной литературы по ветеринарии, диссертация 2005 года, Колесников, Павел Сергеевич
1. Абрамович М.И. К разработке стандартной методики определения доброкачественности мяса. Гигиена и санитария, 1936, №12, с. 12-14.
2. Алабовский В.В., Федоров Э.Л. «Метод оценки содержания глюкозы в моче». Клиническая лабораторная диагностика, 2001, №1, с. 1718.
3. Артюх И.А. О применении гистологического метода для определения качества мяса. Вопросы питания, 1937, т. VI, №5, с. 22-23.
4. Артюх И.А. К вопросу о сущности процесса порчи мяса. Вопросы питания, 1941, т. 10, №2, с. 6-8.
5. Арутюнян Л.А. О гемолитических свойствах мяса. Вопросы питания. 1937, т.6, №2, с. 17-18.
6. Бузолева JI.C., Сомов Г.П. Об эпидемиологической опасности хранения пищевых продуктов при низкой температуре. Гигиена и санитария, 2000, № 3, с. 30-32.
7. Булычёв И.А. К вопросу о бактериологическом исследования мяса. Гигиена и санитария, 1948, №9, с. 15-16.
8. Булычёв И.А. К вопросу о сравнительной оценке методов исследования мяса. Труды Молотовского государственного медицинского института. Молотов, 1950, Выпуск 24-25, с. 62-64.
9. Бутко М.П. Применение резазуриновой пробы для определения свежести мяса. Материалы научно-производственной конференции по ветеринарной гигиене пищевых продуктов. Минск, 1968.
10. Бутко М.П. Применение резазурината натрия и метиленовой сини для определения свежести мяса. Труды ВНИИВСД968, 30, с. 145-146.
11. Васильев Б.А. Определение свежести сырого мяса по степенивнутреннего трения в бульоне. Вестник современной ветеринарии, 1928, № 17, с. 13-14.
12. Васильев Б. А. Усовершенствования в моём методе исследования мяса и коэффициенты свежести для баранины и свинины. Вестник современной ветеринарии, 1930, №4, с. 9-10.
13. Вилькомирская В.П. Оценка существующих методов исследования сырого и варёного мяса. Гигиена и санитария, 1936, вып. 5, с. 23-25.
14. Вольферц В.Ю., Коряжнов В.П., Шлипаков Я.П., Лубянецкий С.А. Проверка существующих методов исследования мяса на свежесть. Сборник трудов Московского зооветеринарного института 1935, т. И, с. 5052.
15. Гусев Н.К. К вопросу об органолептическом методе испытания качества пищевых продуктов. Вопросы питания, 1940, вып. 5, с. 19.
16. Дзядзевич С.В., Солдаткин А.П., Россохатый В.К., Шрам Н.Ф., Шульга А.А., Стриха В.И. Амперометрический ферментный биосенсор с мембраной глюкозооксидаза-полианилин. Украинский биохимический журнал, 1994, т. 66, №3, с.54-60.
17. Захарьевский М.С. Определение начальных стадий порчи мяса с помощью физико-химических методов. Вопросы питания, 1938, т. 6, вып. 1, с. 23.
18. Капиашвили 3. Исследование тушек уток и гусей на загрязнённость микробами. Периодический научный журнал. «ИНТЕЛЕКТИ», 2001, т. 2, с. 159-161.
19. Колесников П.С., Костенко Ю.Г. Быстрые методы микробиологического контроля мясных продуктов. Всё о мясе 2001, №1, с. 48-51.
20. Колоболотский Г.В. Определение микробных токсинов в мясецветной реакцией. Мясная Индустрия СССР. 1951, № 1, с. 29-30.
21. Колоболотский Г.В. Состояние вопроса о стандартных методах бактериологического и биохимического исследования мяса и мясопродуктов. Труды ВНИИВС. 1960, т. 17, с. 51-54.
22. Коряжнов В.П., Ковш А.З. Сравнительная оценка методов и новые средства определения свежести мяса. Вестник современной ветеринарии, 1929, № 15, с. 14-16.
23. Коряжнов В.П., Шлипаков Я.П. Удельный вес фильтрата-экстракта как показатель состояния мяса. Советская ветеринария, 1936, № 1, с. 18-20.
24. Кост Е.А. Справочник по клиническим лабораторным методам исследованиям., 1975.
25. Костенко Ю.Г., Бутко М.П. Руководство по ветеринарно-санитарной экспертизе и гигиене производства мяса и мясных продуктов. РИФ «Антиква», М, 1994.
26. Кузнецов А.В., Костенко Ю.Г., Иванкин А.Н. О контроле мяса на свежесть. Всё о мясе, 2002, №2, с. 25-27.
27. Мазур Н.И. Санитарно-микробиологичеекие показатели мяса при первичной переработке крупного рогатого скота. Автореферат на соискание учёной степени кандидата ветеринарных наук, 1973.
28. Малин. И.В. К вопросу о методах определения доброкачественности мяса и птицы. Вопросы питания, 1937, т. VI, вып. 4, с. 31-32.
29. Моисеева E.J1. «Микробиология мясных и молочных продуктов при холодильном хранении» Москва, ВО «Агропромиздат» 1988.
30. Мюнх Г.-Д., Заупе X., Шрайтер М. Микробиология продуктов животного происхождения. Пер. с нем. М.: Агропромиздат, 1985
31. Околов Ф.С. Тер-Арутюнов Г.А. К вопросу об определениидоброкачественности мяса бактериологическим способом. Гигиена и эпидемиология, 1931, № 12, с. 22-23.
32. Околов Ф.С. Активность каталазы, как показатель для оценки мяса и некоторых мясных продуктов. Гигиена и санитария, 1947, № 8, с. 19-20.
33. Орешкин Е.Ф., Костенко Ю.Г., Тимченко С.В. Об эффективности оценки качества мясного сырья стандартными методами Мясная и молочная промышленность, 1991, №6, с. 29-31.
34. Орлов Н.И., Рейслер А.В. Простейшие органолептические показатели санитарной оценки пищевых продуктов. Биомедгиз, 1936.
35. Павловский П.Е., Пальмин В.В. Биохимия мяса, М. Пищевая промышленность, 1975.
36. Пайкина С.И., Подосинникова М.П. Гемолитический индекс и число Песлера как показатели для оценки качества мяса. Вопросы питания, 1941, т. 10, вып. 2, с. 12-14.
37. Прусова А.А., Новоселова И.П., Сычкина Г.Н., Безгодова О.А., Сбоева Т.Н. Использование микробиологического экспресс-анализатора «Бак Трак 4100» в работе бактериологической лаборатории. Пермский медицинский журнал, 2002, 19, № 1, с. 94-99.
38. Решетилов А.Н., Лобанов А.В., Морозова Н.О., Греен Р.В., Леазерс Т.Д. Применение элементов теории распознавания образов для определения содержания этанола в смеси при помощи микробного сенсора. Сенсорные системы, 1998, №4, т.12, с.285-295.
39. Рубашкина С.Ш. Химические превращения в мышце. Медгиз,1953.
40. Смородинцев И.А. Химические физико-химические изменения при созревании мяса. Труды Всесоюзного научно-исследовательского института мясной промышленности, Снабиздат, 1933, Вып. IX, с. 41-42.
41. Смородинцев И. А. Частная биохимия. Биохимия мяса. Пищепромиздат, 1938.
42. Смородинцев И.А. Химизм гниения пищевых продуктов. Мясная индустрия, 1938, № 11, с. 11-12.
43. Смородинцев И.А. Биохимия мяса, Пищепромиздат, М 1952.
44. Тироцуян С.М. Коэффициент скорости фильтрирования водных вытяжек из мяса, как показатель его свежести. Вопросы питания, т. 9, вып. 6,1940.
45. Хмелевский Ю.В. Основные биохимические константы человека в норме и при патологии.- Киев, 1987.
46. Шмидт В. Зависимость роста бактерий на охлаждённом мясе от температуры и влажности. Перевод с немецкого. Снабтехиздат, 1932.
47. Albery W.J., Craston D.H. Amperometric enzyme electrodes: Theory and experiment. Biosensors. Fundamental and Application / Eds A.P.F. Turner, I. Karube, G.S. Wilson. Oxford: Oxford Univ. press, 1987.
48. Anderson, M.E., Huff, H.E., Naumann, H.D., Marshall, R.T., Damare, J.M., Pratt, M., and Johnston, R. // J. Food Prot., 1987, 50, p. 562-566.
49. Banks, J.G., and Board, R.G. Some factors influencing the recovery of yeasts and moulds from chilled foods. // Int. J. Food Microbiol., 1987, №4, p. 197-206.
50. Baumman, P. Numerical taxonomy of psychrotrophic pseudomonads. // J. Bacterid., 1968, № 96, p. 39-42.
51. Bern Zavisa, Hechelmann Hansgeorg «Kuhlung und Kuhllagerung von fleisch. Microbiologische Vorgange». // Fleischwirtschaft, 1994, №10, s. 1046,1048,1050-1051,1081.
52. Blickstad, E. Growth and end product formation of two psychrotrophic Lactobacillus spp. and Brochothrix thermosphacta ATCC 11509T at different pH values and temperatures. // Appl. Environ. Microbiol., 1983, №46, p. 1345-1350.
53. Blickstad, E., and Molin, G. The microbial flora of smoked pork loin and frankfurter sausage stored in different gas atmospheres at 4°C. // J. Appl. Bacteriol., 1984,57, p. 213-220.
54. Brotzu, G. Uber die Methoden zum Nachweise beginnender Zerstorung des Fleisches. // Ztschr. f. Untersuch. d. Lebensmittel. 1932, №63, s. 503-514.
55. Byun J.S., Park K.S. Comparison of indicators microbial quality of meat during aerobic cold storage // Труды 46-го Международного конгресса по вопросам науки и технологии мясной промышленности. Аргентина. 2000 г.
56. Clark L.C., Jr. Monitor and control of blood and tissue oxygen tensions // Trans. Amer. Soc. Artif. Int. Organs., 1956, №2, p. 41-48.
57. Clark L.C., Lyons C. Electrode systems for continuous monitoring in cardiovascular surgery // Ann. New York. Acad. Sci., 1962, №102. p.29-45.
58. Coates K. J., Beattie J. C., Morgan I. R., Widdres P. R. Thecontribution of carcass contamination and the boning process to microbial spoilage of aerobically stored pork // Food Microbiol., 1995, v 12, №1, p. 4954.
59. Cooke, R.C., and Rayner, A.D.M. Ecology of Saprophytic Fungi, 1984, Longman, London.
60. Coulson, R.A. Aerobic and anaerobic glycolysis in mammals and reptiles in vivo. // Сотр. Biochem. Physiol., 1987, 87B, p.207-216.
61. Стефанов Иван «Разпространение на Pseudomonas aeruginosa в някои месни продукты» // Вет. Мед., 1997, №3, 4, с.256-257.
62. Dainty, R.H., Shaw, B.G., De Boer, К.A., and Scheps, E.S.J. Protein changes caused by bacterial growth on beef. // J. Appl. Bacteriol., 1975, №39, p. 73-81.
63. Dainty, R.H. in Proceedings. 27 European Meeting Meat Research Workers, Vienna, 1981, p. 688.
64. Dainty, R.H., and Hibbard, C.M. Precursors of the major end products of aerobic metabolism of Brochothrix thermosphacta. // J. Appl. Bacteriol. 1983, №55, p. 127-133.
65. Dainty, R.H., Shaw, B.G., and Roberts, T.A. in Food Microbiology; Advances and Prospects (Roberts, T.A., and Skinner, F.A., Eds.), Academic Press, London, 1983.
66. Dalton, H.K., Board, R.G., and Davenport, R.R. The yeasts of British fresh sausage and minced beef. // (1984) Antonie van Leeuwenhoek 1984, №50, p. 227-248.
67. Davidson, C.M., Mobbs, P., and Stubbs, J.M. Some morphological and physiological properties of Microbacterium thermosphactum. // J. Appl. Bacteriol., 1968, №31, p. 551-559.
68. Davis G. Electrochemical techniques for the development of amperometric biosensors // Biosensors, 1985, №1, c. 161-168.
69. Edwards, R.A., Dainty, R.H., and Hibbard, C.M. Volatilecompounds produced by meat pseudomonads and relate reference strains during growth on beef stored in air at chill temperatures. // J. Appl. Bacterid., 1987, № 62, p. 403-412.
70. Eskin, N.A.M., Henderson, H.M., and Townsend, A.J. Biochemistry of Foods, Academic Press, New York, 1971.
71. Gardner, G.A. A selective medium for the enumeration of Microbacterium thermosphactum in meat and meat products. // J. Appl. Bacterid., 1966, №28, p. 252-264.
72. Gardner, G.A., and Stewart, D.J. Changes in the free amino and other nitrogen compounds in stored beef muscle. // J. Sci. Food Agric., 1966, №17, p. 491-496.
73. Gill, C.O. The development of the anaerobic spoilage flora of meat stored at chill temperatures. // J. Appl. Bacterid., 1976, №41, p. 401-410.
74. Gill, C.O. Characterization of quality deterioration in yellow fin tuna. // J. Appl. Bacterid., 1976, №41, p. 401-410.
75. Gill, C.O., and Newton, K.G. Rapid method for distinction of Gram-negative and Gram-positive bacteria. // Appl. Environ. Microbiol., 1982, №43, p. 284-288.
76. Gill, C.O. in Advances in Meat Research: Meat and Poultry Microbiology (Pearson, A.M., and Dutson, T.R., Eds.), MacMillan, London., 1986
77. Girsch A, Kune F. Ztschr. f. Untersuchung der Nahrungs und GenuBmittel. Bd. 1927, №42, s. 64.
78. Grau, F.H. Inhibition of the Anaerobic Growth of Brochothrix thermosphacta by Lactic Acid. // Appl. Environ. Microbiol. 1979, №38, p.818-820.
79. Gregg B.A., Heller A. Crosslinked redox gels containing glucose oxidasi for amperometric biosensors application // Anal. Chem., 1999 №62,с. 258-263.
80. Harder, W. A rapid, simple method for staining bacterial flagella.// Soc. Gen. Microbiol., 1979, № 6, p. 139-140.
81. Hobbs, G. Bacterial traits, organism mass, and numerical abundance in the detrital soil food web of Dutch agricultural grasslands // Microbiol. Ecol., 1986, №12, p. 15-30.
82. Ingram, M., and Dainty, R.H. Symposium on microbial changes in foods. Changes caused by microbes in spoilage of meats. // J. Appl. Bacterid., 1971, №34, p. 21-39.
83. Kototh Bearbeitet, Christina Maria. Aktuelles aus der International Fleischforschung: Mikrobiologie des Fleisches // Fleischwirtschaft, 1995, v.75, №11, s. 1362-1364.
84. Kress-Rogers, E., D'Costa, E.J., Sollars, J.E., Gibbs, P.A. & Turner, A.P.F. Measurement of meat freshness in situ with a biosensor array. // Food Control. 1993, №4, p. 149-154.
85. Lannelongue, M., and Finne, G. Microbiological and chemical changes during storage of swordfish (Xiphias gladius) steaks in retail packages containing C02-ensicbed atmospheres. // J. Food Prot., 1986, №49, p. 806-810.
86. Larpent Jean-Paul. Microbiologic et aliments // Ind. Aiim. et agr., 2000, v.117, №6, c.47-58.
87. Lawrie, R.A. Meat Science, 3rd ed, Pergamon Press, Oxford., 1985
88. Leistner, J. Zur Charakteristik der postmortalen Veranderungen des Fleisches gesunder, kranker und veranderter Tiere. Ztschr. f. Infektionskrankh. u. Hyg. d. Haust., 1956, №2, s. 41-46.
89. Lessie, T.G., and Phibbs, P.V. Alternative pathways of carbohydrate utilization in pseudomonads. // Annu. Rev. Microbiol., 1984, №38, p. 359-387.
90. Markus Richter, Fehlhaber Karsten, Braun Peggy. Haltbarkeitsprobleme bei Lebensmitteln durch mikrobielle enzyme //
91. Fleischwirtschaft, 1998, v.78, №4, s. 366-368.
92. Midgley, M., and Dawes, E.A. The regulation of transport of glucose and methyl alpha-glucoside in Pseudomonas aeruginosa. // Biochem. J., 1973, №132, p. 141-154.У
93. Mildner P. Uber die Umsetzung von Aminosauren durch Bact. Proteus Vulgaris. // Arch. f. Hyg., 1908, №66, s. 209-243.
94. Miller, A., Scanlan, R.A., Lee, J.S., Libbey, L.M., and Morgan, M.E. Volatile compounds produced in sterile fish muscle (Sebastes melanops) by Pseudomonas perolens. // Appl. Microbiol., 1973, №25, p. 257-261.
95. Mossel, D.A.A., and Ingram, M. The physiology of the microbialft*spoilage of foods. // J. Appl. Bacteriol., 1955, №18, p. 232-268.
96. Mossel, D.A.A. in Food Microbiology; Advances and Prospects (Roberts, T.A., and Skinner, F.A., Eds.), Academic Press, London, 1983.
97. Nakae, Т., and Elliott, J.A. Production of volatile fatty acids by some lactic acid bacteria. II. Selective formation of volatile fatty acids bydegradation of amino acids. // J. Dairy Sci., 1965, №48, p. 293-299.
98. Newton, K.G., and Gill, C.O. Spoilage of vacuum-packaged dark, firm, dry meat at chill temperatures. // Appl. Environ. Microbiol., 1978, №36, p. 375-376.
99. Nychas, G.J. Microbial Growth in Minced Meat, Ph. D. thesis, University of Bath, 1984.
100. Ockerman H.W., Basil L. A review of Listeria monocytogenes — a pathogen that likes refrigerated temperatures // Spec. Circ. / Ohio State Univ. Ohio Agr. Res. And Dev Cent., 1999,168, p. 70.
101. Pederiva Norma B. Barbini, de Guzman Ana Stefanini «Isolation and survival of Yersinia enterocolitica in ice cream at different pH values, stored at -18 °C» // Braz. J. Microbiol, 2000, № 3, p.174-177.
102. Pichner Rohtraud. Aktuelles aus der internationalen Fleischerzeugnissen // Fleischwirtschaft, 2000, v.80, №7, s. 64-66.
103. Pittard, B.T., Freeman, L.R., Later, D.W., and Lee, M.L. Identification of volatile organic compounds produced by fluorescent pseudomonads on chicken breast muscle. Appl. Environ. Microbiol., 1982, №43, p.1504-1506.
104. Potzelberger D.E., Paulsen P. // Erhebunden zur Haltbarkeit und Haltbarkeitbewertung von frischfleisch Die Bildung biogener Amine und mikrobielle Veranderungen wahrend der Lagerung // Fleischwirtschaft, 1997. Bd. 77, №12, s. 1086-1089.
105. Rosset R. Securite alimentare et froid. Le probleme des psychrotrophes // Rev. gen. Froid, 1993, v. 83, №5, p. 16-18.
106. Scheller F., Karsten C. A combination of invertase reactor and glucose-oxidase electrode for successive determination of glucose and sucrose // Anal. Chim. Acta, 1983, №155, p. 29-36.
107. Shaw, B.G., and Latty, J.B. A numerical taxonomic study of Pseudomonas strains from spoiled meat. // J. Appl. Bacterid., 1982, №52, p. 219-228.
108. Shaw, B.G., and Harding, C.D. A numerical taxonomic study of lactic acid bacteria from vacuum-packed beef, pork, lamb and bacon. J. Appl.
109. Bacteriol., 1984, №56, p. 25-40.
110. Thomas, C.J., and Mcmeekin, T.A. Spoilage of chicken skin at 2 degrees C: electron microscopic study. // J. Appl. Bacteriol., 1981, №51, p. 529-534.
111. Tran Minh C. Biosensors. London: Chapman & Hall, 1993.
112. Turner A.P.F. Biosensors for industrial monitoring and control. Colloq. "Adv. Sens. Biotechnol". London, 1988, p.1-5.
113. Uhitil Suncica, Jaksic Slavica, Petrak Tomislav «Prevalence of microorganisms in human foods» Докл. 2 Croatian Veterinary Congress, Cavtat, 10-13 Oct, 2000. // Vet. Arh., 2000, 70, p. 35-40.
114. Updake S.J., Hicks G.P. The enzyme electrode // Nature, 1967, №214, p. 986-988.
115. Upmann Matthias, Reuter Gerhard. Oberflachenkeimgehalte und Betriebshygiene in einem Zerlegebetrieb fur Schweinefleisch 2 Mitt. // Fleischwirtschaft, 1998, v. 78, №9, s. 971-974, 990.
116. Veldkamp, H, and Jannasch, H.W. Mixed culture studies with the chemostat. // J. Appl. Chem. Biotechnol., 1972, №22, p.105-123.
117. Walker, H.W., and Ayres, J.C. in The Yeasts, Vol. 3, Yeast Technology (Rose, A.H., and Harrison, J.S., Eds.), Academic Press, London,1970.
118. White S.F., Turner A.P.F. Mediated amperometric biosensors // Handbook of biosensors and electronic noses: medecine, food and environment / Ed. E. Kress-Rogers. New York: CRC press, 1997, p. 227-244.
119. Whiting, P.H., Midgley, M., and Dawes, E.A. Role of glucose limitation in regulation of transport of glucose, gluconate and 2-oxogluconate, and of glucose catabolism in Pseudomonas aeruginosa. // J. Gen. Microbiol., 1976, №92, p. 304-310.
120. Whiting, P.H., Midgley, M., and Dawes, E.A. The regulation of transport of glucose, gluconate and 2-oxogluconate and of glucose catabolism in Pseudomonas aeruginosa. // Biochem. J., 1976, №154, p. 659-668.
121. Wiki M., Gao H., Juvet M., Kunz R.E. Compact integrated optical sensor system // Biosens. and Bioelectron., 2001, №16, p. 37-45.
122. Wilkins, K.M., and Board, R.G. in Antimicrobial Systems (Gould, G.W., Ed.), Elsevier, Amsterdam/New York, 1988.
123. Wilsschtetter H, Waldschmidt B. Ztschr. Berlin, deutsche chemische Gesellschaft, 1926, №11, s. 29-30.
124. Zhu Long, Li Yuan-Zong, Ci Yun-Xianj // Acta chim. Sin., 2002, v. 60, №4, p. 692-697.