Автореферат и диссертация по ветеринарии (16.00.02) на тему:Действие селенсодержащего препарата ДАФС-25 на гистологическую и гистохимическую структуру некоторых тканей и внутренних органов бычков и норок

ДИССЕРТАЦИЯ
Действие селенсодержащего препарата ДАФС-25 на гистологическую и гистохимическую структуру некоторых тканей и внутренних органов бычков и норок - диссертация, тема по ветеринарии
АВТОРЕФЕРАТ
Действие селенсодержащего препарата ДАФС-25 на гистологическую и гистохимическую структуру некоторых тканей и внутренних органов бычков и норок - тема автореферата по ветеринарии
Мерзлякова, Елена Анатольевна Ижевск 2009 г.
Ученая степень
кандидата ветеринарных наук
ВАК РФ
16.00.02
 
 

Автореферат диссертации по ветеринарии на тему Действие селенсодержащего препарата ДАФС-25 на гистологическую и гистохимическую структуру некоторых тканей и внутренних органов бычков и норок

На правах рукописи

Мерзлякова Елена Анатольевна

ДЕЙСТВИЕ СЕЛЕНСОДЕРЖАЩЕГО ПРЕПАРАТА ДАФС-25 НА ГИСТОЛОГИЧЕСКУЮ И ГИСТОХИМИЧЕСКУЮ СТРУКТУРУ НЕКОТОРЫХ ТКАНЕЙ И ВНУТРЕННИХ ОРГАНОВ БЫЧКОВ И

НОРОК

16.00.02 - патология, онкология, морфология животных

Автореферат

диссертации на соискание ученой степени кандидата ветеринарных наук

Санкт-Петербург 2009

003481522

Диссертационная работа выполнена в ФГОУ ВПО «Ижевская Государственная Сельскохозяйственная Академия».

Научный руководитель: кандидат ветеринарных наук, доцент Трошина

Татьяна Алексеевна

Официальные оппоненты: доктор ветеринарных наук, доцент Лаковников

Ведущая организация: ФГОУ ВПО «Уральская Государственная Академия Ветеринарной Медицины»

Защита состоится «13» ноября 2009 года «13» часов на заседании диссертационного совета Д 120.059.01 ФГОУ ВПО «Санкт-Петербургской Государственной Академии Ветеринарной Медицины» по адресу 196084, Санкт-Петербург, Черниговская, 5.

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке ФГОУ ВПО Санкт-Петербургской Государственной Академии Ветеринарной Медицины

Автореферат разослан « //» октября 2009 года и размещен на сайте www.spbgavm.ru

Ученый секретарь диссертационного совета

доктор ветеринарных наук, О.В. Крячко

Евгений Альфредович

доктор ветеринарных наук, профессор Усенко Владимир Иванович

1. ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность темы. Удмуртская Республика находится в зоне с преобладанием дерново-подзолистых почв, в которых содержание микроэлементов, таких как селен, йод, магний, фтор, медь очень низкое. Критическим значением содержания селена в почве считают 0,5 мг/кг, в то время как в УР, как и во многих других регионах РФ, его содержание значительно ниже указанной цифры. Содержание селена в растительных кормах нашей зоны ниже 0,06-0,1 мг/кг сухого вещества, что считается абсолютно недостаточным (Старков М.В., 2008).

В условиях современного ведения скотоводства и звероводства животные подвергаются стрессовому воздействию в периоды проведения массовых зоотехнических и ветеринарных мероприятий, при перегруппировках и транспортировках (Ляпин O.A., 1998; Сутыгина A.B., 2009). К серьёзным стрессовым факторам относится кормовой стресс, особенно сильное влияние он оказывает на норок. При несбалансированном рационе у этого вида животных развиваются жировой гепатоз или токсическая дистрофия печени. Зачастую, падеж зверей от этих заболеваний может доходить, в различных возрастных группах, до 35% (Болкисев Г.Б., 2008). Своё негативное влияние оказывают и микотоксины грибов, поражающие корма (Гуськова A.M. и др. 1999; Enjalbert F. et al. 2006). Это ведет к нарушению гомеостаз и влечет за собой сдвиг в балансе между образованием свободных радикалов и активностью антиоксидантных систем. В результате в организме животных возникает окислительный стресс (Кармолиев Р.Х., 1999; Алексеев В.В., 2008). Селен, входя в систему антиоксидантной защиты организма, способен предотвращать его' возникновение (Talas ZS. et al., 2009). Значит, своевременное введение этого микроэлемента может способствовать профилактике заболеваний и потерь продуктивности. Исследования, проведенные на протяжении последних лет, показали исключительное значение селена в животноводстве (Иванова JI.B., 2008; Колосова О.В., 2008; Бушуева И.С., 2009).

Однако остаются не исследованными влияния препаратов селена, применяемых при выращивании сельскохозяйственных животных, на структуру внутренних органов.

На данный момент многие хозяйства стремятся добавлять к основному рациону минеральные добавки, в состав которых входит селен. Однако они не всегда соответствуют потребностям животных. Следует учитывать, что в состав премиксов могут включаться микроэлементы, обладающие антагонистическим действием. Известно, что наибольший положительный эффект дают селенсодержащие препараты на органической основе (Джакупов И.Т., 2009). Одним из них является синтетический препарат ДАФС-25 (диацетофенилселенид). В тоже время подробного комплексного морфологического анализа влияния селенорганических препаратов на организм животных в доступной литературе не приведено. Данные по изменению гистологических и особенно гистохимических свойств

внутренних органов носят отрывочный характер (Клеймёнов Р.В., 2004; Кулешов К.А., Трифонов ГЛ., 2008).

Цель и задачи исследования. Выявление эффектов, оказываемых селенеодержащим препаратом ДАФС-25 на гистологическую и гистохимическую структуру печени, почек, селезёнки, лимфатических узлов и поперечнополосатых мышечных тканей бычков и норок, и сравнение его действия с селенитом натрия.

В связи с этим были поставлены следующие задачи:

1. Изучить действие ДАФС-25 на гистологическую организацию печени, состояние внутриклеточных ферментов в гепатоцитах, сопоставить их с изменениями показателей периферической крови бычков и норок в сравнении с действием селенита натрия.

2. Выяснить возможные эффекты изучаемых соединений селена на структурно-функциональную показатели почечной паренхимы откормочных бычков и норок.

3. Определить структурно-функциональные изменения в поперечнополосатой скелетной и сердечной мышечных тканях бычков и норок при применении органической и неорганической формы селена.

4. Выяснить состояние иммунокомпетентных органов (лимфатических узлов, селезёнки) при применения ДАФС-25 и селенита натрия у бычков и норок.

Научная новизна исследования. Впервые изучено действие селеноорганического препарата ДАФС-25 на гистологическую и гистохимическую структуру внутренних органов крупного рогатого скота и норок в различных дозировках, выявлено его влияние на накопление и распределение липидов в печени, почках, скелетной и сердечной мышечных тканях. Дано обоснование к применению ДАФС-25 в условиях животноводческих комплексов по откорму крупного рогатого скота и звероферм в Удмуртской Республике.

Практическая значимость работы. Выполненные исследования и полученные результаты позволили рекомендовать препарат ДАФС-25 для активизации биохимических процессов в организме животных, повышения иммунной защиты, профилактики и лечения жирового гепатоза норок. В инъекционной форме в дозах 0,2 и 0,1 мг/кг живой массы бычкам; норкам в дозе О,1 1 и 0,05 мг/кг живой массы, а так же норкам внутрь с кормом из расчета 2 г/т кормосмеси. Исследования являются фундаментальными для понимания особенностей клеточных реакций внутренних органов на введение селенсодержащих препаратов на органической основе.

Внедрение результатов исследования в практику: На основе исследований были разработаны «Методические рекомендации по использованию селенорганического препарата ДАФС-52 для профилактики гипоселенозов, повышения эффективности адаптивных качеств и продуктивности с/х животных», утвержденные начальником ГУВ УР Бурдовым Г.Н. от 20 сентября 2007г.; Оформлен патент «Способы

профилактики жировой дистрофии пушных зверей», зарегистрирован в Государственном реестре изобретений РФ - № 2008 128 815/13 (035551).

Основные положения, выносимые на защиту:

-Гистологическое и гистохимическое состояние печени и почек бычков и норок при введении ДАФС-25.

-Структурные и биохимические показатели мышечной ткани бычков и норок на фоне применения ДАФС-25.

-Состояние иммунокомпетентных систем организма под влиянием ДАФС-25.

-Динамика биохимических показателей крови бычков и норок при введении ДАФС-25.

Апробация работы. Основные результаты исследований, положения и выводы диссертации доложены и одобрены при обсуждении отчетов НИР (2005-2008), на ежегодных научно-практических конференциях ФГОУ ВПО «Ижевская ГСХА»: Всероссийской научно-практической конференции «Современные проблемы аграрной науки и пути их решения» (Ижевск,

2005); Всероссийской научно-практической конференции «Научное обеспечение реализации национальных проектов в сельском хозяйстве» (Ижевск, 2006); IV Всероссийской научно-практической конференции «Здоровье и здоровый образ жизни: состояние и перспективы» (Смоленск,

2006); VIII Конгресс международной ассоциации морфологов (Орел, 2006);* Всероссийской научно-практической конференции «Инновационное развитие АПК. Итоги и перспективы» (Ижевск, 2007); Всероссийской научно-практической конференции «Научный потенциал аграрному производству (Ижевск, 2008).; Всероссийской научно-практической конференции «Научный потенциал - современному АПК» (Ижевск 2009).

Публикации. По теме диссертации опубликовано 10 научных работ, в том числе 4 в изданиях, рекомендованных ВАК РФ, в которых отражены основные результаты научных исследований.

Объём и структура диссертации. Диссертация состоит из введения, обзора литературы, описания материалов и методов исследований, результатов собственных исследований, обсуждения результатов, выводов, практических предложений, списка литературы и приложения. Работа изложена на 170 страницах машинописного текста, содержит 28 таблиц, 70 рисунков и 3 приложения. Список литературы включает 244 источника, в том числе 149 отечественных и 95 зарубежных.

2. МАТЕРИАЛЫ И МЕДОТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

Исследования были проведены на базе кафедры ветеринарно-санитарной экспертизы и радиобиологии и кафедры физиологии и зоогигиены ФГОУ ВПО Ижевской ГСХА в рамках программы научных исследований факультета ветеринарной медицины.

Опыт на откормочном поголовье крупного рогатого скота поставлен в ООО «Родина» Можгинского района УР. Были сформированы четыре группы бычков по принципу аналогов в возрасте 10 месяцев по 5 голов в

каждой (табл. 1). Все животные содержались на основном хозяйственном рационе. Продолжительность опыта составила 90 суток.

Таблица 1. Распределение бычков по группам и условия проведения опыта

Количество голов Контрольная группа 1-ая опытная группа 2-ая опытная группа 3-ья опытная группа

20 голов (по 5 в группе) 1. Стерильное масло п/к, через 30 дней 1. Премикс 2. Стерильное масло п/к, через 30 дней 1. Масляный раствор ДАФС-25 п/к 0,2 мг/кг, через 30 дней 1. Масляный раствор ДАФС-25 п/к 0,1 мг/кг, через 30 дней

В течение опыта проводились морфологические и биохимические исследования крови на 1, 14, 30, 45, 60, 75 и 90-е сутки. В конце опыта был проведен убой бычков в условиях убойного пункта и взят биологический материал печени, почек, селезёнки, лимфатических узлов, скелетной и сердечной мускулатуры для проведения гистологических и гистохимических исследований и определения уровня селена в тканях.

Для проведения опыта на норках в ООО «Зверохозяйство Можгинское» были сформированы по принципу аналогов четыре группы. В которые входили норки стандартного окраса в возрасте 6 месяцев по 15 голов в каждой (табл. 2). Опыт проводился с июля по ноябрь.

Таблица 2. Распределение норок по группам и условия проведения опыта

Количество голов Контрольная группа 1-ая опытная группа 2-ая опытная группа 3-ья опытная группа

60 голов (по 15 в группе) 1 .Хозяйственный рацион с селенитом натрия. 2.Стерильное масло п/к через 30 дней 1. ДАФС-25 2 г/т корма раз в неделю. 2.Стерильное масло п/к через 30 дней 1. Масляный раствор ДАФС-25 п/к 0,1 мг/кг через 30 дней 1. Масляный раствор ДАФС-25 п/к 0,05 мг/кг через 30 дней

Перед убоем у животных была взята кровь для исследования морфологических и биохимических показателей. После убоя был отобран биологический материал печени, почек, селезёнки, лимфатических узлов, скелетной и сердечной мускулатуры для проведения гистологических и гистохимических исследований.

Для исследования кровь у бычков брали из яремной вены, у норок из пальца. При проведении гематологического анализа использовались следующие методики: подсчет количества эритроцитов и лейкоцитов в камере Горяева, дифференциальный подсчет лейкоцитов (определение лейкограммы) по общепринятой методике, определение гемоглобина крови гемиглобинцианидным методом с использованием прибора КФК-3, скорость оседания эритроцитов - микрометодом Панченкова, цветной показатель -расчетным методом. Исследовали следующие биохимические показатели крови: общий белок - рефрактометрическим методом; белковые фракции -методом электрофореза на бумаге с использованием денситометра Но5ркех

diagnostics; щелочную фосфатазу (ЩФ), аланинаминотрансферазу (АЛТ) и аспартатаминотрансферазу (ACT) - кинетическим методом на биохимическом полуавтоматическом анализаторе Биофот-311; мочевину -методом по конечной точке на анализаторе Биофот-311. Определение общего билирубина проводили по диазореакции, общего холестерина в модификации Илькина на спектрофотометре.

Количественное содержание селена в исследуемых образцах тканей проводили на кафедре физиологии, экологии животных и фармакологии Саратовского Государственного Аграрного Университета им. Н.И. Вавилова, в лаборатории «Биогеохимического анализа» методом флуорометрического определения элемента.

Фиксация материала для общего гистологического и гистохимического анализа на липиды проводилась в 10%-ном растворе нейтрального формалина. Для гистохимического анализа на выявление активности неспецифических кислых фосфатаз (КФ), сукцинатдегидрогеназы (СДГ) и аденозинтрифосфатаз (АТФ-аз) был взят материал печени, почек, сердечной и скелетной мускулатуры с последующей фиксацией в жидком азоте.

Заливку материала в парафин проводили по методике Волкова-Елецкой. Срезы толщиной 4 мкм изготавливали на ротационном микротоме с последующей окраской гематоксилином и эозином согласно общепринятой методике. Наличие липидов выявляли в реакции с Суданом III. Определение АТФ-азной активности проводили с солями свинца по Гомори в модификации Бухвалова; неспецифические кислые фосфатазы выявляли по методу Гомори; активности СДГ по методу Нахласа (Саркисов Д.С., 1996.)

Полученные срезы изучали в пяти случайных полях зрения. С каждого поля зрения делали микрофотосъемку на цифровую фотокамеру Canon с постоянным источником равномерного освещения, на одном оптическом увеличении камеры, с использованием одного микроскопа «Микмед - 1» с набором окуляров.

Морфометрические измерения проводились с помощью универсальной программы для морфометрических измерений Scio Image с учетом рекомендаций Автандилова Г.Г. (1990). Распределение ферментов и липидов определяли по всей площади снимка.

Статистическую математическую обработку морфометрических данных проводили по общепринятым методам.

3. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

В печени бычков первой опытной группы (в рацион вводили премикс) было выявлено достоверное уменьшение апоптотической активности в 1,9 раза (табл. 3). При этом возрастало количество двуядерных форм гепатоцитов в 4,2 раза, наблюдалось смещение ядерно-плазматического соотношение в сторону ядра. Это сочеталось с уменьшение оптической плотности липидов на 17,73%. Однако, в печени сохранялась инфильтрация лейкоцитарными клетками междольковой соединительной ткани, сосудов, триад, что указывает на повреждение паренхиматозных элементов.

Активность СДГ в паренхиме печени животных первой опытной группы была выше контрольной на 24,63%. Параллельно в цитоплазме гепатоцитов изменялась АТФ-азная активность. Увеличение активности этих внутриклеточных ферментов свидетельствует об усилении синтетической функции печени. Локализация КФ определялась в отдельных зонах синусоидных капилляров, соответствующих местам нахождения тканевых макрофагов, что указывает на отсутствие активации лизосомальных ферментов в гепатоцитах.

Таблица 3. Морфометрические показатели печени бычков (М±ш)

Группы Ядерно-плазматическое соотношение Двуядерные гепатоциты, % Ядра с 2-мя и более ядрышками, % Гепатоциты с признаками апоптоза, %

Контрольная 0,18+0,05 0,72±0,13 4,03+0,28 6,89±0,71

1-ая опытная 0,24±0,06 3,04 ±0,25* 20,64±0,76* 4,06±0,27*

2-ая опытная 0,20±0,04 1,84±0,17* 26,79±0,36* 3,51±0,14*

3-ья опытная 0,23±0,05 2,16±0,14* 27,51 ±1,20* 3,86+0,31*

* р<0,05 здесь и в следующих таблицах

В периферической крови бычков достоверно снижалось содержание аланинаминотрансферазы по отношению к контрольным показателям на 19,15% (табл. 4). Это происходит вследствие снижения проницаемости клеточных мембран гепатоцитов, в результате цитозольные ферменты не попадают в общий кровоток. Усиление белковосинтетической активности печени подтверждается выявленной тенденцией к увеличению содержания общего белка крови на фоне поддержания уровня его фракций (табл. 4).

У бычков второй опытной группы, после парэнтерального введения ДАФС-25 в дозе 0,2 мг/кг живой массы, выявлялось значительное снижение вакуолизации цитоплазмы гепатоцитов, что сопровождалось уменьшением содержания в них липидов на 25,68%. Так же фиксировалось уменьшении количества гепатоцитов с пикнотизированными ядрами в 4,3 раза (табл. 3). Достоверно увеличивалось число двуядерных гепатоцитов, с хорошим развитием ядрышкового аппарата, происходило смещение ядерно-цитоплазматического соотношения в сторону ядра на фоне поддержания общих размеров клетки. Уровень СДГ и АТФ-аз в паренхиме печеночных долек повышается вследствие увеличения числа гепатоцитов с высокой ферментативной активностью и превышает контрольные значения на 24,63% и 4,24% соответственно.

Состояние гепатоцитов отразилось на биохимических показателях крови, зависимых от функции этих клеток. Поскольку повреждение гепатоцитов в перипортальных областях минимально на что указывает отсутствие лейкоцитарных инфильтраций, то содержание АЛТ в периферической крови животных достоверно снижалось, начиная с 14-ых суток опыта. Это объясняется тем, что наибольшая концентрация аланинаминотрансферазы в печени жвачных животных сосредоточена именно в перипортальных гепатоцитах. Уровень активности ЩФ в крови

бычков данной группы заметно снизился после инъекций ДАФС-25 (табл. 4). Содержание общего белка и альбуминов в крови, напротив, увеличилось. Одновременно регистрировалось снижение а- и Р-глобулинов крови. Это указывает на положительные изменения в структуре паренхиматозных органов, т.к. увеличение содержания данных белковых фракций является ответной реакцией организма на повреждение их клеток. Все это доказывает значимую защитную роль ДАФС-25.

Таблица 4. Биохимические показатели крови бычков на 90-е сутки (М±т)

Группа Показатель

АЛТ, ед/л ЩФ, ед/л Общий белок, г/л Мочевина, ммоль/л ACT, ед/л

контрольная 37,02±0,64 292,15±8,35 86,95+1,02 8,16+0,07 73,54+1,16

1-ая опытная 31,07 ±0,09* 286,82+10,18 87,53+1,06 8,02+0,11 69,01+1,17*

2-ая опытная 27,61±0,05* 271,27±7,12* 88,18+0,84 7,78+0,13* 60,08+1,21 *

3-ья опытная 28,81+1,05* 270.18±9,65* 87,31+0,90 7,75+0,12* 59,87+1,19*

У бычков третьей опытной группы, после инъекции ДАФС-25 в дозе ОД мг/кг, происходило уменьшение количества вакуолизированных гепатоцитов, а так же клеток с элементами кариопикноза. При этом размер клеток оставался неизменным, а ядерно-плазматическое соотношение смещалось в сторону ядра (табл. 3). Количество двуядерных гепатоцитов увеличилось в 2,1 раза, что косвенно указывало на активацию синтетической функции печени. Максимальная активность СДГ в гепатоцитах определялась именно в этой группе и превышала контрольные значения на 55,21%. Локализация АТФ-аз в печени определялась диффузно по всей площади классической дольки. Локализация КФ в местах максимальной активности соответствовала синусиодным капиллярам.

В крови бычков данной группы уровень содержания общего белка, начиная с 14-х суток опыта, достоверно превышал контрольные значения, параллельно увеличивалось содержание альбуминовой фракции. Уровень АЛТ, в плазме крови этих животных к концу опыта был ниже контрольных значений на 22,18% (табл. 4). Как доказательство уменьшения повреждения клеток паренхиматозных органов происходило снижение уровня а- и ß-глобулиновых фракций белка.

В результате гистологического и гистохимического исследования печени, с учетом ее роли в поддержании белкового обмена у бычков опытных групп, выявлено, что наибольший протекторный эффект оказывало введение ДАФС-25 в дозе 0,1 мг/кг живой массы.

При изучении морфофункциональных особенностей печени норок было выявлено, что введение в рацион ДАФС-25 в дозе 2 г/т кормосмеси привело к уменьшению степени вакуолизации гепатоцитов, особенно в центральных зонах. Параллельно, уменьшилось число печеночных клеток, с проявлениями кариопикноза в 2,1 раза (табл. 5). Эти данные подтверждаются гистохимической реакцией с Суданом III, в которой наибольший уровень

накопления липидов определялся в периферических гепатоцитах. Таким образом, при зональной форме жировой дистрофии центральные гепатоциты, выполняющие основную роль в синтезе белка, восстанавливают свои функции. В локализации СДГ и АТФ-аз в печени норок этой группы существенных отличий от контрольной группы выявлено не было, а уровень активности этих внутриклеточных ферментов превышал контрольные показатели на 11,88% и 12,63% соответственно. Места локализации КФ соотносились с синусоидными капиллярами и были ниже контроля на 2,84%. Введения препарата в кормосмеси норок привело к уменьшению содержания АЛТ в плазме крови на 84,60% (табл. 6). Одновременно произошло снижение содержания ЩФ и общего билирубина. Уровень общего холестерина в крови недостоверно повышался относительно контроля, что так же является крайне важным показателем улучшения липидного обмена и свидетельствует о готовности опытных животных к зимовке. Уровень общего белка в крови норок данной группы достоверно вырос на 15,93%, параллельно увеличилось содержание альбуминов на 4,14%, что сочеталось со снижением уровня а-, и Р-глобулинов.

Таблица 5. Морфометрические показатели печени норок (М±т)

Группы Ядерно- Двуядерные Ядра с 2-мя и Гепатоциты с

плазматическое гепатоциты, % более признаками

соотношение ядрышками, % апоптоза, %

Контрольная 0,16±0,04 0,21±0,11 6,02±0,44 7,87±0,26

1-я опытная 0,21±0,03 0,87+0,22* 5,89±0,26 3,71+0,24*

2-я опытная 0,20±0,06 1,37+0,47* 4,67±0,69* 1,83+0,15*

3-я опытная 0,19+0,02 1,29+0,31* 4,72+0,35* 2,36±0,48*

* р<0,05

Таблица 6. Биохимические показатели крови норок (М±т)

Группа Показатель

АСТ, ед/л АЛТ, ед/л ЩФ, ед/л Мочевина, Общий Общий

ммоль/л билирубин, холестерин,

ммоль/л ммоль/л

контрольная 127,22+ 269,16+ 183,4+ 4,38± 6,23+ 4,15±

6,21 21,08 2,89 0,49 0,41 0,17

1-ая 103,74+ 145,8+ 136,8+ 4,51+ 6,05± 4,29+

опытная 2,38* 5,10* 3,16* 0,36 0,37 0,07

2-ая 97,78± 140,75± 128,03+ 4,32± 6,0,7± 4,43+

опытная 1,17* 7,04* 2,74* 0,57 0,52 0,15

3-ья 94,28± 134,57+ 125,73+ 4,17± 5,91+ 4,48+

опытная 2,13* 8,89* 3,41* 0,64 0,28 0,09*

У норок второй опытной группы, после введения ДАФС-25 в дозе 0,1 мг/кг живой массы, в печени зафиксировано уменьшение количества клеток паренхимы с проявлениями апоптоза в 4,3 раза. Гепатоциты с липидными каплями в цитоплазме были распределены диффузно в пределах

классической дольки, группами по несколько клетки. Что позволяло поддерживать функции как периферических, так и центральных паренхиматозных клеток. Сукцинатдегидрогеназа проявляла высокую ферментативную активность по периферии классической дольки и в единичных клетках промежуточной и центральной областей, превышая контрольные значения на 17,56%, АТФ-азная активность была выше, чем в контрольной группе на 13,14%. В данном случае в крови животных происходило снижение показателей уровня АЛТ, ЩФ, билирубина, а- и р-глобулинов с параллельным увеличением содержания общего белка, альбуминов и холестерина.

У норок третьей опытной группы подкожное введение ДАФС-25 в дозе 0,05 мг/кг живой массы привело к аналогичному изменению морфологического состояния печени. Уровень активности СДГ и АТФ-аз был выше, чем в контроле на 16,90% и 12,75% соответственно. В крови животных этой группы был зафиксирован наименьший уровень АЛТ, ниже контрольных данных в 2 раза (табл. 6), что говорит о наилучшем действии данной дозы на гепатоциты, а так же достоверно снижались показатели уровня ЩФ, билирубина. Положительный эффект этих изменений подтверждается повышением содержание общего белка на 16,95%, и наименьшим уровнем а-и (3-глобулиновых фракций.

Суммируя данные по морфофункциональным изменениям в печени и биохимическим показателям крови норок следует отметить, что наибольший эффект был получен при парентеральном введении ДАФС-25 в дозе 0,05 мг/кг живой массы.

В почечной паренхиме бычков первой опытной группы обнаруживается увеличение отношения площади клубочка к просвету капсулы до 2,8 против 1,2 в контроле, т.е. происходит увеличение объёма капиллярной сети, что в свою очередь свидетельствует об улучшение фильтрационной способности почек. Это так же подтверждает снижение содержания мочевины в крови. Однако в эпителиоцитах проксимальных и дистальных канальцев обнаруживались признаки полиморфизма, а в отдельных клетках кариопикноза. Ферментативная активность СДГ превышала контрольные показания на 48,66% и локализовалась в основном в зоне базальной исчерченности эпителиоцитов. В паренхиме почек животных фиксировалось снижение активности КФ на 3,43%. В совокупности это свидетельствует о протективном действии премикса.

У бычков второй опытной группы после инъекций ДАФС-25 в дозе 0,2 мг/кг живой массы одновременно с недостоверным увеличением площади почечных телец достоверно увеличивается площадь клубочка на 66,01%. Это указывает на активную фильтрацию. На усиление процессов реабсорбции указывает увеличение процентного содержания капилляров и относительной площади, занимаемой эпителиоцитами канальцевого аппарата нефронов, в сочетание с уменьшением представительства соединительнотканных элементов, и снижением уровня мочевины в крови. Эти изменения сопровождались повышением активности СДГ, особенно в проксимальных

извитых канальцах нефронов.

В паренхиме почек бычков третьей опытной группы введение ДАФС-25 в дозе 0,1 мг/кг привело к значительному увеличению отношения площади клубочка к просвету капсулы до 3,4 против 1,2 в контроле. При этом было отмечено достоверное увеличение содержания капилляров на 5,71% и уменьшение соединительной ткани на 44,04%, что подтверждается устойчивой динамикой к понижению уровня мочевины в плазме крови и увеличением активности СДГ на 48,58%.

Таким образом, применение премикса увеличивает функциональную нагрузку на паренхиму почек с проявлениями умеренных реактивных изменений в ее структуре и функции. Использование ДАФС-25 оказывало положительный эффект на структурно-функциональное состояние нефронов, что наиболее явно проявлялось в третьей опытной группе.

У норок первой опытной группы в структуре почек было отмечено уменьшение проявления полиморфизма эпителиоцитов проксимальных канальцев с уменьшением вакуолизации клеток. В реакции с Суданом III мелкие липидные включения выявлялись только в области базальных полюсов. Активность СДГ и АТФ-аз, превышала контрольные показатели на 15,01% и 43,65% соответственно.

Во второй опытной группе норок после парентерального введения ДАФС-25 в дозе 0,1 мг/кг живой массы, изменения носили очаговый характер. В результате эпителиоциты в отдельных нефронах проявляли признаки полиморфизма и вакуолярно-дистрофических изменений. Наряду с подобными проявлениями отмечались нефроны имеющие типичное строение. Аналогично изменялись участки локализации СДГ и АТФ-аз. Снижение содержания мочевины в крови этих животных указывало на проявление компенсаторных возможностей почек (табл. 5).

Морфо-функциональные изменения в данном органе норок третьей опытной группы носили стойкую положительную динамику. Лишь в некоторых эпителиоцитах определялись элементы кариопикноза и единичные мелкие вакуоли. Повышение активности СДГ и АТФ-аз в эпителиоцитах на 61,55% и 16,09% соответственно и уменьшение уровня мочевины в крови свидетельствует о положительном влияние ДАФС-25 на адаптивные возможности почечной паренхимы.

При исследовании миокарда бычков первой опытной группы было обнаружено увеличение диаметра кардиомиоцитов на 14,15%. При этом площадь продольного сечения ядер уменьшалась на 15,04% относительно контроля. Большинство ядер проявляли полиморфизм и гиперхромность, что в сочетание с повышением оптической плотности содержания липидов в миокарде на 11,32% указывает на определённый токсический эффект, оказываемый премиксом. Подтверждением этого является наличие по ходу капиллярного русла лимфоцитов и единичных нейтрофильных гранулоцитов. Кроме того, было зафиксировано уменьшение активности СДГ на 3,49% и увеличение активности КФ на 4,20% по отношению к контролю.

У бычков второй опытной группы строение сердечной мышечной ткани типично. Диаметр кардиомиоцитов и площадь их ядер недостоверно превышают контрольные значения. Миокард Суданом III окрашивается равномерно, локализация СДГ соответствует расположению митохондрий. Содержание ACT в крови животных, начиная с 45-х суток опыта, достоверно снижалось.

В третьей опытной группе миокард бычков сохраняет характерное строение. Размер кардиомиоцитов и их ядер имеет близкие к контрольным значениям. Гистохимические реакции не выявили существенных отличий от контрольной группы. Уровень ACT в плазме крови бычков к концу опыта был ниже контрольных значений на 22,83% (табл. 4).

В опыте на норках было показано, что введение ДАФС-25 не оказывало существенного влияния на морфофункциональные особенности сердечной мышечной ткани, выявляемые общими гистологическими и гистохимическими методами. Однако было отмечено, что введение ДАФС-25 в дозе 0,05 мг/кг живой массы приводит к недостоверному увеличению диаметра кардиомиоцитов и площади их ядер. Минимальное содержание ACT в плазме крови фиксировалось у норок третьей опытной группы - ниже контроля на 34,93%. В первой и второй опытных группах снижение так же было достоверным.

Структурная организация поперечнополосатой скелетной мышечной ткани бычков первой опытной группы типична. В отличие от контроля у животных данной группы в соединительной ткани между миосимпластами отсутствуют лейкоцитарные клетки. Диаметр мышечных волокон увеличился на 7,82%, а площадь продольного сечения ядер на 43,74% (рис.1). Что является основанием предполагать наличие функциональной гипертрофии. Окраска Суданом III позволила выявить накопление липидов в липоцитах эндомизия и перемизия, а отложение липидов в самих миосимпластах отсутствует.

Контроль 1-я опытная 2-я опытная 3-я опытная

180 160 140 120

i 100

Е

I 80 60 40 20

Контроль 1-я опытная 2-я опытная 3-я опытная

Рис. 1. Морфометрические данные скелетной мышечной ткани бычков.

У бычков второй опытной группы после введения ДАФС-25 в дозе 0,2 мг/кг массы тела была отмечена типичная структура поперечнополосатой

скелетной мышечной ткани. При этом происходило увеличение количества волокон окислительного типа, на что указывает реакция по выявлению СДГ. Диаметр волокон превышал контрольные показатели на 7,06%. Площадь продольного сечения ядер превышала контрольные значения на 50,45%. Данный эффект связан с анаболическим действием ДАФС-25.

Аналогичная картина присуща скелетной мышечной ткани бычков третьей опытной группы. У этих животных после инъекций препарата в дозе 0,1 мг/кг живой массы отмечается максимальное увеличение диаметра мышечных волокон на 44,21%. Это происходит за счет преобладания волокон гликолитического типа, что видно по реакции на СДГ, диаметр которых превышает диаметр окислительных волокон. Площадь продольного сечения ядер увеличилась на 40,93% (рис. 1).

Изменения в структуре скелетных мышечных волокон норок опытных групп ограничивались увеличением их диаметра и площади продольного сечения ядер. При этом максимальное увеличение диаметра миосимпластов на 11,24% регистрировалось у животных третьей опытной группы, что сопровождалось преобладанием волокон гликолитического типа, а максимальное увеличение площади продольного сечения ядер на 42,31% у животных второй группы. У норок, после дачи ДАФС-25 с кормом так же было зафиксировано увеличение диаметра волокна на 7,76%, а площади ядер на 20,31%.

Применение премиксов у бычков оказало влияние на динамику процессов иммунопоэза, которое выражалось в уменьшении митотической активности в лимфатических узлах на 9,31% при одновременном снижении содержания дегенеративных форм клеток. В селезёнке значительных изменений в соотношении красной и белой пульпы выявлено не было. Динамика в органах периферического лимфопоэза соотносится с данными морфологических и биохимических показателей крови. Общее количество лейкоцитов в первой опытной группе достоверно снижается в пределах физиологических границ. При этом уменьшается относительное содержание лимфоцитов в периферической крови, что в сочетании с повышением у-глобулинов на 0,92% указывает на функциональную нормализацию иммунных ответов. По нашему мнению, снижение содержания лимфоцитов происходит за счет Т-клеточной популяции, т.к. в периферической крови именно Т-лимфоциты занимают до 70% лимфоидных клеток. На фоне снижения повреждения паренхимы внутренних органов происходит снижение чрезмерной активности клеточного иммунитета. В подтверждение уменьшение фагоцитарной активности в тканях происходит снижения содержания моноцитов в периферической крови и некоторое подавление гранулоцитопоэза, в первую очередь за счет нейрофильных гранулоцитов. Отсутствие эозинофильных и базофильных лейкоцитарных реакций косвенно указывает на низкое аллергизирующее действие препарата.

У бычков второй опытной группы влияние ДАФС-25 в дозе 0,2 мг/кг живой массы на селезенку проявлялось в тенденции к уменьшению содержания белой пульпы на 16,2%, а в лимфатических узлах в снижении

общей митотической активности на 10,93%. При анализе белковых фракций крови было обнаружено увеличение содержания у-глобулинов на 2,57%. Снижение активности в органах периферического лимфопоэза вело к уменьшению относительного содержания лимфоцитов в периферической крови уже с 14-х суток опыта. Общее количество лейкоцитов в периферической крови при этом снижалось по отношению к контролю. Реакции гранулоцитов в основном ограничены нейтрофильными популяциями в виде повышения уровня зрелых гранулоцитов в пределах видовых границ.

Исследование реакций селезёнки бычков третьей опытной группы выявило уменьшение белой пульпы на 17,81% по отношению к контролю. В нижнсчелюстных лимфатических узлах пролиферативно-клеточные реакции снижены на 8,14%. Количество лимфоцитов в общем объеме крови сохраняется в пределах средних физиологических показателей, что сочетается с повышением уровня у-глобулинов на 2,18% по отношению к контрольной группе. В периферической крови бычков данной группы имеется тенденция к снижению содержания моноцитов.

В периферических органах лимфопоэза норок первой группы после введения ДАФС-25 внутрь происходило увеличение относительного содержания белой пульпы селезёнки на 10,52%, что указывает на активизацию метаболизма в организме зверей. В лимфатических узлах регистрировалось повышение общей митотической активности на 2,20%, при этом содержание дегенеративных форм клеток несколько возрастало в мозговой зоне. Количество лейкоцитов в периферической крови норок находилось в пределах физиологических границ. Содержание у-глобулинов недостоверно превышало контрольные значения на 1,10%.

При парэнтеральном введении ДАФС-25 норкам в дозе 0,1 мг/кг живой массы в селезёнке происходило увеличение относительного содержания белой пульпы на 18,74%. Этот факт указывает на стимулирующее влияние данного препарата на периферический лимфопоэз. В подтверждение этого в нижнечелюстных лимфатических узлах фиксировалось увеличение общей митотической активности на 2,44%. Параллельно происходило незначительное увеличение содержания дегенеративных форм клеток в корковой и мозговой зонах. Количество лейкоцитов в периферической крови недостоверно превышало контрольные значения. Уровень у-глобулинов в периферической крови вырос на 6,18% по отношению к контролю. В совокупности эти данные говорят об определенном иммуномодулирующем эффекте, оказываемым ДАФС-25 на организм норок.

Аналогичная динамика прослеживалась в органах иммунопоэза норок третьей опытной группы. В селезёнке регистрировалось увеличение содержания белой пульпы на 17,58%. Во всех зонах нижнечелюстных лимфатических узлов выявлялось возрастание митотической активности в совокупности составившее 3,05%. Общее количество лейкоцитов в периферической крови к концу опыта имело тенденцию к повышению в физиологических границах. Уровень у-глобулинов превышал контрольные

значения на 8,20%

Показатели, характеризующие «красную» кровь бычков первой опытной группы на протяжении опыта имели положительную динамику, которая выражалась в увеличение числа эритроцитов на 4,93% к концу опыта, с одновременным повышением содержания гемоглобина на 6,47%. При парэнтеральном введении ДАФС-25 в дозе 0,2 мг/кг, и 0,1 мг/кг живой массы в периферической крови бычков фиксировалось значительное увеличение количества эритроцитов уже после первой инъекции на 14,48% и 8,85% соответственно. Параллельно возрастало содержание гемоглобина. Цветной показатель во второй опытной группе в течение опыта был наибольшим. При этом СОЭ была либо равно контрольным значениям, либо недостоверно снижалась. Таким образом, ДАФС-25 оказывает заметное положительное влияние на кранный росток кроветворения в организме бычков.

В периферической крови норок опытных групп после введения ДАФС-25 как пероральным, так и парэнтеральным способом отмечалось увеличение содержания эритроцитов. Максимальное при подкожном введении в дозе 0,05 мг/кг живой массы на 28,45%. Минимальное при введении с кормом - на 16,91%, что достоверно выше контрольного значения. Увеличение содержания гемоглобина, так же было максимальным во второй опытной группе. Введение препарата в организме норок способствует восстановлению эритропоэза.

При анализе содержания селена во внутренних органах бычков, в рацион которых входил селенит натрия в составе премикса, было обнаружено неравномерное отложение данного микроэлемента в тканях. Так его максимальное увеличение на 69,23% по отношению к контролю фиксировалось в почечной паренхиме, а так же на 60,57% в селезёнке, что очевидно связано с особенностями метаболизма селенита натрия. В печени содержание селена увеличилось лишь на 2,39%, а в мышечной скелетной и сердечной тканях на 6,35% и 3,36% соответственно (табл. 7).

Таблица 7. Содержание селена во внутренних органах бычков, мкг/г (М±ш)

Группа Содержится элемента в органе

Мышцы Сердце Печень Почки Селезенка

Контрольная п=5 0,173± 0,010 0,119+ 0,014 0,167± 0,014 0,143± 0,009 0,104± 0,017

1-ая опытная п=5 0,184± 0,011 0,123± 0,011 0,171± 0,011 0,242± 0,017* 0,167± 0,013*

2-ая опытная п=5 0,211± 0,012* 0,171+ 0,012* 0,227± 0,010* 0,238± 0,015* 0,138± 0,014*

3-ья опытная п=5 0,198± 0,008* 0,169+ 0,010* 0,209± 0,007* 0,225± 0,012* 0,130± 0,009*

При парэнтеральном введение ДАФС-25 в дозе 0,2 мг/кг уровень селена в почках возрастает на 66,43% , а при дозировке 0,1 мг/кг живой массы - на 57,34%. Второе место по концентрации селена занимает миокард, где контрольное значение превышается на 43,69% и 42,01% в зависимости от дозировки. Следующим по уровню содержания селена среди исследованных тканей является печень. У бычков второй опытной группы её паренхима содержит на 35,92% селена больше, чем в контроле, а в третьей опытной группе данный показатель выше на 25,14%. Чуть ниже содержание селена в селезёнке - превышает контрольные значения на 32,69% и 25,0% соответственно. В длиннейшей мышце спины уровень селена достоверно превышал контрольные данные на 21,96% при введении ДАФС-25 в дозе 0,2 мг/кг живой массы и на 14,45% при дозе 0,1 мг/кг.

Введение селена в органической форме в виде ДАФС-25 и неорганической - в виде селенита натрия ведет к увеличению концентрации данного микроэлемента в тканях бычков. При этом после инъекций ДАФС-25 селена в органах и тканях бычков распределяется равномернее, чем при введение селенита натрия.

ВЫВОДЫ

1. Использование ДАФС-25 и селенита натрия при селеновой недостаточности у бычков и норок приводит к: уменьшению вакуолизации гепатоцитов; снижению апоптотн чсских проявлений; усилению функциональной активности, проявляющейся в повышении в крови уровня общего белка, снижении уровня AJIT, ACT и ЩФ. Данный эффект при введении ДАФС-25 более выражен.

2. Введение норкам ДАФС-25 способствует уменьшению проявления жировой дистрофии при пероральном способе до зональной формы, при парэнтеральном способе до диссеменированной.

3. Применение селенсодержащих препаратов у бычков и норок влечёт за собой увеличение в почках площади клубочков, а так же относительного содержания эпителиоцитов канальцев и капилляров при одновременном уменьшении содержания соединительнотканных структур.

4. В почках норок введение ДАФС-25 приводит к снижению жировой дистрофии в виде уменьшения количества патологически измененных нефронов.

5. Влияние ДАФС-25 на поперечнополосатую скелетную мышечную ткань бычков и норок выражается в увеличении диаметра мышечных волокон и площади их ядер.

6. Введение бычкам препаратов селена вызывает усиление активности СДГ в паренхиме почек и печени. Причем ДАФС-25 оказывал более выраженный эффект. У норок усиление активности данного фермента происходило только в паренхиме почек.

7. ДАФС-25 при применяемых способах введения в организме бычков и норок оказывает умеренное иммуномодулирующее действие.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

Для уменьшения степени повреждения клеточных структур и их функционального напряжения рекомендуем использовать

селеноорганический препарат ДАФС-25 (дифенилацетофенилселенид) бычкам подкожно в дозе 0,1 мг/кг живой массы через 30 дней; норкам целесообразно вводить в кормосмеси ДАФС-25 в дозе 2г/т 1 раз в неделю.

СПИСОК НАУЧНЫХ РАБОТ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ

1. Мерзлякова, Е.А. Влияние 1,5-дифенил-3-селенпентадион-1,5 на морфологию крови и печени. / Е.А. Мерзлякова. // Морфология -2006. - Т.4. - С. 82.

2. Берестов, Д.С. Антиоксидантный эффект ДАФС-25 при откорме бычков и в профилактике последствий лучевого воздействия. / Д.С. Берестов, Е.А. Мерзлякова, Е.И. Трошин. II Ветеринарная патология - 2007, - №3 - С. 188-192.

3. Старков, М.В. Влияние парентерального введения селеноорганического препарата на гистологические, некоторые морфологические, биохимические показатели крови бычков. / М.В. Старков, Е.А. Мерзлякова, Т.А. Трошина. / Ветеринарный врач. - 2007. - №4 - С.45-47.

4. Мерзлякова, Е.А. Изменение микроархитектоники печени крупного рогатого скота при парентеральном введении ДАФС-25. / Е.А. Мерзлякова. // Морфологические ведомости. - 2008. - № 1-2. - С. 193-194.

5. Мерзлякова, Е.А. Влияние премиксов на морфологию некоторых внутренних органов. / Е.А. Мерзлякова, М.В. Старков. // Современные проблемы аграрной науки и пути их решения: Материалы Всероссийской науч. практ. конф. ФГОУ ВПО Ижевская ГСХА. -Ижевск: РИО ФГОУ ВПО Ижевская ГСХА, 2005. - Т.1. - С. 182-184.

6. Старков, М.В. Изменение показателей АлАТ, АсАт и гистологимческой структуры печени на фоне применения премиксов при откорме крупного рогатого скота. / М.В. Старков, Е.А. Мерзлякова, Т.А. Трошина. // Научное обеспечение реализации национальных проектов в сельском хозяйстве: Материалы Всероссийской науч. практ. конф. ФГОУ ВПО Ижевская ГСХА. -Ижевск: РИО ФГОУ ВПО Ижевская ГСХА, 2006. - Т.2. - С. 263-265.

7. Старков, М.В. Влияние парентерального введения селеноорганического препарата на изменение массы тела, некоторые гематологические и биохимические показатели крови при откорме бычков. / М.В. Старков, Е.А. Мерзлякова, Т.А. Трошина. // Инновационное развитие АПК, итоги и перспективы: Материалы Всероссийской науч. практ. конф. - Ижевск: РИО ФГОУ ВПО Ижевская ГСХА, 2007. - Т.2. - С. 47-49.

8. ДАФС-25 селенорганический препарат нового поколения для лечения и профилактики гипоселенозов животных и пушных зверей: методические рекомендации / Т.А. Трошина, Р.Ф. Вакилов, Д.С. Берестов, Е.А. Мерзлякова. - Ижевск: РИО ФГОУ ВПО Ижевская ГСХА, 2007. -39 с.

9. Мерзлякова, Е.А. Гистологические и гистохимические реакции некоторых внутренних органов откормочного поголовья КРС на парентеральное введение ДАФС-25. / Е.А. Мерзлякова, Т.А. Трошина. // Эффективность адаптивных технологий в растениеводстве и животноводстве: Материалы Всероссийской науч. практ. конф. -Ижевск: РИО ФГОУ ВПО Ижевская ГСХА, 2008. - Т.2. - С. 252-256.

10. Трошина, Т.А. Антиоксиданты - в рационе пушных зверей. / Т.А. Трошина, М.В. Старков, Е.А. Мерзлякова, Р.Ф. Вакилов. // Научный потенциал - современному АПК: Материалы Всероссийской науч. практ. конф. - Ижевск: РИО ФГОУ ВПО Ижевская ГСХА, 2009. - С. 147-149.

lb

Подписано в печать 09.10.2009 г. Формат 60x84 1/16. Бумага офсетная. Печать офсетная. Усл. печ. л. 1,1. Тираж 100 экз. Заказ № 1315.

Отпечатано в ООО «Издательство "JIEMA"»

199004, Россия, Санкт-Петербург, В.О., Средний пр., д.24, тел./факс: 323-67-74 e-mail: izd_lema@mail.ru http://www.lemaprint.ru

 
 

Оглавление диссертации Мерзлякова, Елена Анатольевна :: 2009 :: Ижевск

Введение

1.Обзор литературы

1.1 .Распределение селена в природе

1.2.Метаболизм селена в организме животных

1.3 .Эффекты селена в организме

1 АСеленсодержащие препараты и их воздействие на организм 16 1.5.Гистологическая структура печени, почек, поперечнополосатых мышечных тканей, селезёнки и лимфатических узлов в норме и при селеновых микроэлементозах

2.Собственные исследования 30 2.1 .Материалы и методы

2.1.1. Схема опыта

2.1.2.Методы исследований

2.1.3.Морфометрическая обработка данных

3.Результаты собственных исследований 37 3.1 .Гистологические изменения в тканях бычков и норок 37 3.1.1 .Структура печени 37 3.1.2.Структура почек 50 3.1.3 .Структура сердечной мышечной ткани

3.1.4.Структура скелетной мышечной ткани

3.1.5. Структура селезёнки и нижнечелюстных лимфатических узлов

3.2.Гистохимические изменения в структуре печени, почек, сердечной и скелетной мышечной ткани

3.2.1.Распределение и активность АТФ-аз, СДГ, КФ в тканях бычков

3.2.2.Распределение и активность АТФ-аз, СДГ, КФ в тканях норок

3.2.3.Распределение липидов в тканях норок

3.2.4.Распределение липидов в тканях бычков

3.3.Картина крови 101 3.3.1 .Морфологические показатели крови бычков

3.3.2.Биохимические показатели крови бычков

3.3.3 .Морфологические показатели крови норок

3.3 АБиохимические показатели крови норок

3.4.Содержание селена в органах и тканях бычков

 
 

Введение диссертации по теме "Патология, онкология и морфология животных", Мерзлякова, Елена Анатольевна, автореферат

Актуальность проблемы. Удмуртская Республика находится в зоне с преобладанием дерново — подзолистых почв, в которых содержание микроэлементов таких как селен, йод, магний, фтор очень низкое. Критическим значением содержания селена в почве считают 0,5 мг/кг (Кудрявцев А.П., 1980; Рамиш А., 1986; Berry M.J. et al., 1991), в то время как в УР, как и во многих других регионах РФ, его содержание значительно ниже указанной цифры. Содержание селена в кормах ниже 0,06-0,1 мг/кг сухого вещества считают абсолютно недостаточным, что подтверждено многими, проведенными исследованиями растительных кормов (Овчинникова Т., 2005).

В условиях современного ведения скотоводства и звероводства животные подвергаются стрессовому воздействию в периоды проведения массовых зоотехнических и ветеринарных мероприятий, при перегруппировках и транспортировках (Ковальчикова М., Ковал ьч и к К., 1978; Мироненко М.А. и др., 1980; Ляпин О.А., 1998). К серьёзным стрессовым факторам относится кормовой стресс, особенно сильное влияние он оказывает на норок. При несбалансированном рационе у этого вида животных развиваются жировой гепатоз или токсическая дистрофия печени (Kennedy S., Rice D.A., 1987). Зачастую падеж зверей от этих заболеваний может доходить, в различных возрастных группах, до 35% (Болкисев Г.Б., 2008). Кроме того, своё негативное влияние оказывают и микотоксины грибов, поражающие корма для откормочного поголовья крупного рогатого скота (Гуськова A.M. и др. 1999; Enjalbert F. et al. 2006). Всё это ведет к нарушению гомеостаза организма, и влечет за собой сдвиг, в балансе между образованием свободных радикалов и активностью антиоксидантных систем. В результате, в организме животных возникает окислительный стресс (ОС) (Кармолиев Р.Х., 1999; Алексеев В.В., 2008).

Селен, входя в систему антиоксидантной защиты организма, способен предотвращать возникновение ОС (Gul М. et al., 2000; Farina М. et al., 2002;

Talas Z.S. et al., 2009). А значит, его своевременное введение может способствовать профилактике заболеваний и потерь продуктивности. Исследования, проведенные на протяжении последних лет, показали исключительное значение селена в животноводстве (Крапивина Е.В., Иванов В.П., 1999; Менькова А.А., 2002; Папазян Т.А., 2003; Шундалаев Р., 2004; Шевченко С.А. и др., 2006; Мишанин Ю.Ф. и др., 2007).0днако остаются не исследованными влияния препаратов селена, применяемых при выращивании сельскохозяйственных животных, на структуру внутренних органов.

На данный момент в УР и многих других регионах России хозяйства стремятся добавлять к основному рациону минеральные добавки, в состав которых входит селен (Кокорев В.А. и др., 2002). Однако они не всегда соответствуют потребностям животных. Следует учитывать, что в состав премиксов включаются микроэлементы, обладающие антагонистическим действием (Балткайс Я.Я., Фатеев В.А., 1991; Зайналабдиев P.M., Арсанукаев Д.Л., 2006). Известно, что наибольший положительный эффект дают селенсодержащие препараты на органической основе (Рецкий М.И. и др., 2005; Ткачёва JI.B. и др., 2005; Джакупов И.Т., 2009). Одним из них является синтетический препарат ДАФС-25. В тоже время подробного комплексного морфологического анализа влияния селенорганических препаратов на организм животных в доступной литературе не приведено. Данные по изменению гистологических и особенно гистохимических свойств внутренних органов носят отрывочный характер (Клеймёнов Р.В., 2004; Кулешов К.А., Трифонов Г.А., 2008). В связи с этим были поставлены следующие цель и задачи.

Цель и задачи. Целью исследования являлось выявление особенностей действия препарата ДАФС-25 на гистологическую и гистохимическую структуру внутренних органов и тканей откормочного поголовья крупного рогатого скота и норок, сравнения его действия с селенитом натрия.

В связи с этим были поставлены следующие задачи:

1. Изучить действие ДАФС-25 на гистологическую организацию печени, состояние внутриклеточных ферментов в гепатоцитах, сопоставить их с изменениями показателей периферической крови бычков и норок в сравнении с действием селенита натрия.

2. Выяснить возможные эффекты изучаемых соединений селена на структурно-функциональные показатели почечной паренхимы откормочных бычков и норок.

3. Определить структурно-функциональные изменения в поперечнополосатой скелетной и сердечной мышечных тканях бычков и норок при применении органической и неорганической формы селена.

4. Выяснить состояние иммунокомпетентных органов (лимфатических узлов, селезёнки) при применении ДАФС-25 и селенита натрия у бычков и норок.

Научная новизна исследования. Впервые изучено комплексное действие ДАФС-25 на морфологию внутренних органов крупного рогатого скота и норок в различных дозировках, научно аргументировано его влияние на накопление и распределение липидов в печени, почках, скелетной и сердечной мышечных тканях. В условиях производственного эксперимента по откорму бычков впервые было проведено сравнение эффективности от парентерального введения ДАФС-25 в дозах 0,2 и 0,1 мг/кг живой массы и применения селенсодержащего премикса. На гистологическом и гистохимическом уровне дано обоснование к применению ДАФС-25 при откорме молодняка крупного рогатого скота и профилактике жирового гепатоза при промышленном выращивании норок.

Практическая значимость работы. Выполненные исследования и полученные результаты позволили рекомендовать препарат ДАФС-25 для активизации биохимических процессов в организме животных, повышения иммунной защиты, профилактики и лечения жирового гепатоза норок. В инъекционной форме в дозах 0,2 и 0,1 мг/кг живой массы бычкам; норкам в дозе 0,1 и 0,05 мг/кг живой массы, а так же норкам внутрь с кормом из расчета 2 г/т кормосмеси. Исследования являются фундаментальными для понимания особенностей клеточных реакций внутренних органов на введение селенсодержащих препаратов на органической основе. Полученные результаты можно использовать при чтении лекций и проведении лабораторно-практических занятий при изучении физиологии, радиобиологии, фармакологии.

Основные положения, выносимые на защиту:

- Гистологическое и гистохимическое состояние печени и почек бычков и норок после введение ДАФС-25

- Структурные и биохимические показатели мышечной ткани бычков и норок после применения ДАФС-25

- Влияние на состояние иммунокомпетентной системы организма ДАФС-25

- Динамика биохимических показателей крови норок и бычков при введение ДАФС-25

Внедрение результатов исследований. Материалы диссертации используются в учебном процессе на кафедре физиологии и зоогигиены, ВСЭ и радиобиологии ФГОУ ВПО Ижевская ГСХА. В результате работы были разработаны «Методические рекомендации по использованию селеноорганического препарата ДАФС-25 для профилактики гипоселенозов, повышения адаптивных качеств и продуктивности с/х животных», утвержденные начальником ГУВ УР Бурдовым Г.Н. 20 сентября 2007г. Оформлен патент «Способы профилактики жировой дистрофии пушных зверей», зарегистрирован в Государственном реестре изобретений РФ - № 2008 128815/13 (035551).

Апробация работы. Основные результаты исследований, положения и выводы диссертации доложены и одобрены при обсуждении отчетов НИР (2005-2008), на ежегодных научно-практических конференциях ФГОУ ВПО «Ижевская ГСХА»: Всероссийской научно-практической конференции

Современные проблемы аграрной науки и пути их решения» (Ижевск,

2005); Всероссийской научно-практической конференции «Научное обеспечение реализации национальных проектов в сельском хозяйстве» (Ижевск, 2006); IV Всероссийской научно-практической конференции «Здоровье и здоровый образ жизни: состояние и перспективы» (Смоленск,

2006); VIII Конгресс международной ассоциации морфологов (Орел, 2006); Всероссийской научно-практической конференции «Инновационное развитие АПК. Итоги и перспективы» (Ижевск, 2007); Всероссийской научно-практической конференции «Научный потенциал аграрному производству» (Ижевск, 2008); Всероссийской научно-практической конференции «Научный потенциал - современному АПК» (Ижевск 2009).

Публикации. По теме диссертации было опубликовано 10 научных работ, в том числе 4 в печатных изданиях, рекомендованных ВАК РФ, в которых отражены основные результаты научных исследований.

Объём и структура диссертации. Диссертация состоит из введения, обзора литературы, описания материалов и методов исследований, результатов собственных исследований, обсуждения результатов, выводов, практических предложений, списка литературы и приложения. Работа изложена на 170 страницах машинописного текста, содержит 32 таблицы, 70 рисунков и 3 приложения. Список литературы включает 242 источника, в том числе 147 отечественных и 95 зарубежных.

 
 

Заключение диссертационного исследования на тему "Действие селенсодержащего препарата ДАФС-25 на гистологическую и гистохимическую структуру некоторых тканей и внутренних органов бычков и норок"

ВЫВОДЫ

1. Использование ДАФС-25 и селенита натрия при селеновой недостаточности у бычков и норок приводит к: уменьшению вакуолизации гепатоцитов; снижению апоптотических проявлений; усилению функциональной активности, проявляющейся в повышении в крови уровня общего белка, снижении уровня АлАТ, АсАТ и ЩФ. Данный эффект при введении ДАФС-25 более выражен.

2. Введение норкам ДАФС-25 способствует уменьшению проявления жировой дистрофии при пероральном способе до зональной формы, при парентеральном способе введения - до диссеменированной.

3. Применение селенсодержащих препаратов у бычков и норок влечёт за собой увеличение в почках площади клубочков, а так же относительного содержания эпителиоцитов канальцев и капилляров при одновременном уменьшении содержания соединительнотканных структур.

4. В почках норок введение ДАФС-25 приводит к снижению жировой дистрофии в виде уменьшения количества патологически измененных нефронов.

5. Влияние ДАФС-25 на поперечнополосатую скелетную мышечную ткань бычков и норок выражается в увеличении диаметра мышечных волокон и площади их ядер.

6. Введение бычкам препаратов селена вызывает усиление активности СДГ в паренхиме почек и печени. Причем ДАФС-25 оказывает более выраженный эффект. У норок усиление активности данного фермента происходит только в паренхиме почек.

7. ДАФС-25 при применяемых способах введения в организме бычков и норок оказывает умеренное иммуномодулирующее влияние.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

Для уменьшения степени повреждения клеточных структур и их функционального напряжения рекомендуем использовать селеноорганический препарат ДАФС-25 (дифенилацетофенилселенид) бычкам подкожно в дозе ОД мг/кг живой массы через 30 дней; норкам целесообразнее вводить этот препарат в кормосмеси из расчета 2г/т один раз в неделю.

 
 

Список использованной литературы по ветеринарии, диссертация 2009 года, Мерзлякова, Елена Анатольевна

1. Авдеенко, В. Оплодотворяемость свиноматок при искусственном осеменении спермой хряков, получавших в рационе «ДАФС-25» / В. Авдеенко, М. Насибов // Свиноводство. 2008. - № 4. - С. 23 - 24.

2. Автандилов, Г.Г. Медицинская морфометрия. Руководство / Г.Г. Автандилов. -М.: Медицина, 1990.

3. Агаркова, Е.В. Применение Эсливера форте в комплексной терапии заболеваний гепатобилиарной зоны / Е.В Агаркова // Русский медицинский журнал. — 2008. № 12. - С. 68.

4. Адаптация и стресс при содержании и разведении сельскохозяйственных животных / М. Ковальчикова, К. Ковальчик; под ред. Е.Н. Панова, пер. со словац. Т.Н. Мирошниченко. — М.: Колос, 1978.-271с.

5. Алексеев, В.В. Морфофизиологическое становление и развитие эндокринных желез у бычков в постнатальном онтогенезе, содержащихся в разных режимах адаптивной технологии: автореферат док. биол. наук / В.В. Алексеев. Чебоксары, 2008.

6. Арасланов, С.А. Ультраструктурные изменения клеток печени при хроническом экспериментальном гепатите после облучения красным светом (А=0,6-0,75 мкм) / С.А. Арасланов, А.А. Косых // Российские морфологические ведомости. 2000. — № 3-4. - С. 16-23.

7. Атлас. Опухоли лимфатической системы / Под. ред. А.И. Воробьева,

8. A.M. Кременецкой. -М.: Ньюдиамед, 2007. -294 с.

9. Байматов, В.Н. Влияние полисоли микроэлементов на печень свиней /

10. B.Н. Байматов, A.M. Багаутдинов // Актуальные проблемыветеринарной науки: Тез. докл./МВА им. К.И. Скрябина. — М.: МВА им. К.И. Скрябина 1999. - С. 55-56.

11. Бакшутова, Е.В. Современные представления об архитектонике миокарда / Е.В. Бакшутова // Морфологические ведомости. — 2006. — № 1-2.-С. 24-26.

12. Балткайс, Я.Я. Взаимодействие лекарственных веществ (фармакотерапевтические аспекты) / Я.Я. Балткайс, В.А. Фатеев. М.: Медицина, 1991. - 304 с.

13. Балым, Ю.П. Экспериментальная и клиническая фармакология селеданта и эффективность применения его в ветеринарии и животноводстве: автореф. докт. дис. / Ю.П. Балым. Воронеж, 2008

14. Бахадыров, Ф.Н. Становление дольчатого строения печени „ в постнатальном онтогенезе / Ф.Н. Бахадыров, Ф.Х. Алимходжаев, В.А. Шевердин // Российские морфологические ведомости. 1997. - № 2-3 -С. 86.

15. Беляев, В.И. Биохимический статус телят, получавших препараты селена / В.И. Беляев, Ю.Н. Алехин, С.В. Куркин, JI.T. Туренкова //Ветеринария. 2004 - №6 - С. 29-30.

16. Берестов, Д.С. Структурно-функциональная характеристика коры больших полушарий головного мозга при общем у-облучении и на фоне введения препарата ДАФС-25: автореф. канд. дис. / Д.С. Берестов Ижевск, 2007.

17. Блинохватов, А.Ф. Использование ультрамикроэлемента селена в рационах овец. / А.Ф. Блинохватов // Овцы, козы, шерстное дело -1997.-№5-6-С. 14-16.

18. Болкисев, Г.Б. Гепатоз пушных зверей, лечение и профилактика / Г.Б. Болкисев // Ветеринарный вестник Удмуртии. — 2008. — №9-10 — С. 6-7.

19. Боряев, Г.И. Влияние соединений селена на иммунный статус бычков / Г.И. Боряев, А.Ф. Блинохватов, Ю.Н. Федотов, Н.И. Петренко // Ветеринария. 1999. - №7. - С. 36-38.

20. Боцман, Н.Е. Сравнительная морфология лимфоэпителиальных образований (тонзиллярного аппарата) у некоторых животных / Н.Е. Боцман, В.В. Дмитренко // Арх. анат., гист. и эмбр. 1966. - № 6 - С. 311.

21. Бузлама, B.C. Эмбриотропное действие динофена / B.C. Бузлама и др. // Ветеринария. 2000. - №4. - С. 46-48

22. Буеверов, А.О. Место гепатопротекторов в лечении заболеваний печени / А.О. Буеверов // Русский медицинский журнал. — 2001. Т. 3, № 1.-С. 16-19.

23. Васильев, A.M. Влияние ДАФС-25 на продуктивность растущих свиней / A.M. Васильев, Ю.Н. Прытков // Достижения науки и техники АПК. 2007. - №4 - С. 50.

24. Ветеринарная лабораторная медицина. Интерпретация и диагностика. / Д. Мейер, Дж. Харви; Пер. с англ. М.: Софион, 2007. - 456 с.

25. Ветошкина Г.А. Факторы определяющие морфологические типы сердца у плотоядных животных / Г.А. Ветошкина // Актуальные проблемы ветеринарной науки: Тез. докл./МВА им. К.И. Скрябина. -М.: MB А им. К.И. Скрябина 1999.-С. 171-172.

26. Видякина, М.А. Морфология лимфатических узлов кишечника крупного рогатого скота / М.А. Видякина, А.Б. Панфилов // Российские морфологические ведомости. — 2000. № 3-4 - С. 43-47.

27. Влияние селена на здоровье и продуктивность кур / Ю.Ф. Мишанин и др. // Мясная индустрия. 2007. - №1 - С. 52-54.

28. Влияние селена на резистентность свиней при повышенном содержании Cs137 в почве / Е.В. Крапивина и др. // Зоотехния. 1998. - №2. - С. 18-20.

29. Возрастные изменения морфофункциональных структур опорно-двигательного комплекса сердца в условиях нормы / В.Ю. Лебединский и др. // Российские морфологические ведомости. — 1999. -№3-4.-С. 59.

30. Голиков, А.Н. Адаптационный синдром у коров в молочном комплексе / А.Н, Голиков // Актуальные проблемы ветеринарной науки: Тез.докл./МВА им. К.И. Скрябина. М.: МВА им. К.И. Скрябина -1999.-С. 186-187

31. Голубкина, Н.А. Содержание Se в пшеничной и ржаной муке России, стран СНГ и Балтии / Н.А. Голубкина // Вопросы питания. — 1997. — №3. С. 17-20.

32. Горский, В.В. Структурно-функциональные проявления адаптации скелетных мышц к некоторым видам нагрузки /В.В. Горский, С.Л. Кузнецов, Б.С. Шенкман // Морфологические ведомости. 2004. - № 3-4-С. 100.

33. Гмошинский, И.В. Селен в питании: краткий обзор / И.В. Гмошинский, В.К.Мазо // Medicina Altera. 1999. - №4. - С. 18-22.

34. Гонохова, М. Влияние на свиней тяжелых металлов в кормах / М. Гонохова // Животноводство России. 2008. - № 12. - С. 25-29.

35. Григорьев, П.Я. Жировой гепатоз (жировая инфильтрация печени): диагностика, лечение и профилактика / П.Я. Григорьев // Русский медицинский журнал. 2002, т. 4. — № 1 — С. 30-35

36. Гуськова, A.M. Диагностика стресса у животных / A.M. Гуськова, Н.И. Ярован, Н.В.Ермакова // Актуальные проблемы ветеринарной науки: Тез. докл./МВА им. К.И. Скрябина. М.: МВА им. К.И. Скрябина -1999.-С. 216-217.

37. Дедков, Э.И. Изучение гистио- и органотипических свойств миокарда при культивировании по методу Ф.М. Лазаренко / Э.И. Дедков, А.А. Стадников // Российские морфологические ведомости. — 1995. — № 3 — С. 28-33.

38. Джакупов, И.Т. Ветеринарно-технологические основы повышения репродуктивной функции молочного скота в условиях Северного Казахстана: автореф. дис. докт. вет. наук. / И.Т. Джакупов.- Астана, 2009.

39. Динамика гематологических показателей крови у телят при применении лекарственных растений / Н.А. Кочуева и др. // Актуальные проблемы науки в агропромышленном комплексе — Кострома, 2000. Т. 1 - С. 115-116.

40. Дьячко, Л.С. Баланс азоту i мшеральних елемештв у вщгодовуваних свиней за р1зних джерел селену в пацюш / Л.С. Дьяченко, О.В. Онишенко // В1сник аграрно! науки Причорномор'я Миколшв. — 2007. -№4.-С. 140-146.

41. Жила, M.I. Морфолопчна характеристика оргашв 1мунно1 системи молодняка великоУ рогатоУ худоби, вирощеного на рад1активно забрудненш мюцевостк автореф. дис. канд. вет. наук / M.I. Жила,-Киев, 2002.

42. Загородников, Е.Т. Патогенез, лечение и профилактика беломышечной болезни телят при промышленном выращивании: автореф. канд. дис. / Е.Т. Загородников.-М, 1986.

43. Загреков, А. А. Влияние ДАФС-25 на продуктивность цигайских овец в условиях Саратовского Заволжья: дис. канд. с.-х. наук / А.А. Загреков. -Саратов, 2000.

44. Зайналабдиев, P.M. Возможности потенцирования микроэлементного пула / P.M. Зайналабдиев, Д.Л. Арсанукаев // Материалы конференции «Ветеринарная медицина теория, практика и обучение». - Санкт-Петербург. - 2006.

45. Зайцев, В.Б. Строение цитоскелета эндотелиальных клеток почечных гломерул позвоночных / В.Б. Зайцев // Российские морфологические ведомости. 1999.-№ 3-4-С. 51.

46. Зайцев, В.Б. Субмикроскопическая морфология цитоскелета клеток нефрона позвоночных животных и человека / В.Б. Зайцев, Е.В. Коледаева // Морфологические ведомости. 2004. - № 3-4. - С. 102103.

47. Звенигородская, JI.A. Оксид азота как маркер воспаления при стеатогепатите у больных с метаболическим синдромом /Л.А. Звенигородская, Т.В. Нилова // Русский медицинский журнал. 2008. -№ 12. - С. 47-48.

48. Зверков, И.В. Гепатопротекторы в лечении хронических заболеваний печени различной этиологии / И.В Зверков, JI.B. Масловский, О.Н. Минушкин // Русский медицинский журнал. — 2003. Т. 5, № 1 — С. 812.

49. Здорнова, О.В. Изменения в сосудах печени при воздействии токсических веществ, содержащих металлы / О.В. Здорнова, Г.Л. Радцева, Е.И. Пискарева // Морфологические ведомости. — 2006. — № 1-2.-С. 104-105.

50. Зотова, А.С. Динамика морфо-функциональных показателей печени в норме и при гепатозе норок: автореф. дис. канд. вет. наук / А.А. Зотова. Иваново, 2006.

51. Иванова, JI.B. Сравнительная морфофункциональная характеристика органов полового аппарата самок норок при примененииселенсодержащих препаратов: автореф. канд. дис. / JI.B. Иванова. Ставрополь, 2008.

52. Ивашкин, В.Т. Неалкогольный стеатогепатит / В.Т. Ивашкин, Ю.О. Шульпекова // Русский медицинский журнал. 2000. - Т. 2, №2. — С.41.47.

53. Иммунобиология для практических врачей / Барбер Х.Р.К.; Пер. с англ. М.: Медицина, 1980. - 355 с.

54. Каклутский, JI.B. Гипоселенозы / JI.B. Кактурский, А.А. Сручкова, Истомина // Архив патологии . 1990. - №12 - С. 3-8.

55. Кармолиев, Р.Х. Свободнорадикальная патология в этиопатогенезе болезней животных / Р.Х. Кармолиев // Ветеринария. 2005 — №4 - С.I42.47.

56. Клеймёнов, Р.В. Обмен веществ и продуктивность телят при скармливании комбикормов с селенсодержащим препаратом ДАФС-25 (диацетофенонилселенид): автореф. дис. канд. биол. наук / Р.В. Клейменов. п. Дубровицы, Моск. обл., 2004.

57. Клиническая иммунология и аллергология / Под ред. JI. Йегера. — М.: Медицина, 1986. 449 с.

58. Кокорев, В.А. Биологическое обоснование потребности ремонтных телок в селене при травяном типе кормления / В.А. Кокорев, Ю.Н. Прытков, А.А. Кистина, М.Ф. Пугачев // Сельскохозяйственная биология. 2002. - №6. - С. 85-94.

59. Колганов, К. А. Применение гепатопротекторов в клинической практике / К.А. Колганов // Русский медицинский журнал. — 2008. — № З.-С. 26-28.

60. Колосова, О.В. Морфофункциональные изменения при гепатозах норок и способы их коррекции: автореф. дис. канд. вет. наук.- Барнаул, 2008.

61. Кормилина, Н.В. Гистологические показатели лимфоидной ткани селезёнки при действии комплекса биологически активных веществ животного происхождения / Н.В. Кормилина, Н.Н. Чучкова, С.Н. Стяжкина // Морфологические ведомости. 2006. - № 3-4. - С. 30-31.

62. Косых, А.А. Некоторые аспекты клеточной пролиферации в нормальной и патологически измененной печени крыс / А.А. Косых // Морфологические ведомости. -2004. -№ 3-4. С. 106-108.

63. Крапивина, Е.В. Влияние селена на защитные системы организма свиней / Е.В. Крапивина, В.П. Иванов // Ветеринария. — 1999. №4. -С. 46-48.

64. Кроль, М.Ю. Влияние серы и комплекса микроэлементов на кумуляцию тяжелых металлов в организме животных / М.Ю. Кроль // Актуальные проблемы ветеринарной науки: Тез.докл./МВА им. К.И. Скрябина. М.: МВА им. К.И. Скрябина, 1999. - С. 81-83.

65. Крупные животноводческие комплексы и окружающая среда / Мироненко, М.А. и др.. М.: Медицина, 1980. - 255 с.

66. Крюков, В.М. Органические соединения микроэлементов: за и против / В.М. Крюков // Животноводство России. 2008. - №8. - С. 62-66.

67. Кудрявцев, А.П. Селен в растениях и рационах животных / А.П. Кудрявцев // Ветеринария. 1980. - № 9. - С. 27-30.

68. Кузнецов, С.А. Микроэлементы в кормлении животных / С. А. Кузнецов // Животноводство России. 2003. - №3 — С. 15-19.

69. Кулешов, К.А. Активность амилазы кур яичного направления при применении селенсодержащих препаратов в постнатальном периоде онтогенеза / К.А. Кулешов, Г.А. Трифонов // Вестник Алтайского государственного аграрного университета. — 2006. — №5. — С. 24-27.

70. Куликов, В.Н. Применение бетаина в рационах молодняка норок: автореф. дис. канд. вет. наук. / В.Н. Куликов, п. Родники, Моск. обл., 2006.

71. Лойда, 3. Гистохимия ферментов лабораторные методы / 3. Лойда, Р. Госсрау, Т. Шиблер; под.ред. Н.Т. Райхлина. — М.: Мир, 1982. 272 с.

72. Ляпин, О.А. Ионол как регулятор стрессов у откормочного молодняка / О.А. Ляпин // Зоотехния. 1998. -№1. - С. 25-28.

73. Мезонефрос человека. Морфологическая характеристика / В.Л Янин78. и др. // Российские морфологические ведомости. — 2000. №3-4. — С. 204-211.

74. Менькова, А.А. Масса тела и внутренних органов телок в зависимости от уровня минерального питания /А.А. Менькова // Сельскохозяйственная биология. 2002. - №6. - С. 96-100.

75. Методы ветеринарной клинической лабораторной диагностики: Справочник / под ред. И.П. Кондрахина. М.: КолосС, 2004. — 520с.

76. Методика оценки клеточного состава лимфатических узлов / М.Р. Сапин и др. // Архив анатомии. 1988. - Т. 95. - С. 85-89.

77. Микроскопическая техника: руководство / Под ред. Д.С. Саркисова, Ю.Л. Петрова. -М.: Медицина, 1996. 544 с.

78. Микрохирургические аспекты морфологии скелетных мышц млекопитающих и человека / В.М. Чучков и др. // Морфологические ведомости.-2005.-№ 1-2.-С. 174-176.

79. Микроэлементозы человека / А.П. Авцын, А.А. Жаворонков, М.А. Риш. -М., 1991.-210 с.

80. Модульная и локальная осморегуляция капиллярного кровотока специализированными эндотелиальными клетками / В.И. Кошев, Е.С. Петров, В.Д. Иванова. Самара.: ООО «Офорт» ГОУ ВПО «Сам ГМУ», 2004.-188 с.

81. Морфометрические изменения артериальных сосудов селезёнки в возрастном аспекте по данным ангиографического метода исследования / Т.Е. Овсеенко и др. // Морфологические ведомости. -2006. № 1-2. - С. 224-226.

82. Муртазина Г.Х. Оценка влияния селемакцида на гематологические показатели и вегетативную нервную систему / Г.Х. Муртазина // Актуальные проблемы ветеринарной науки: Тез.докл./МВА им. К.И. Скрябина. М.: МВА им. К.И. Скрябина, 1999. - С. 87-88.

83. Набатова, И.М. Влияние лизорецина на некоторые биохимические показатели крови норок / И.М. Набатова // Актуальные проблемы ветеринарной науки: Тез.докл./МВА им. К.И. Скрябина. М.: МВА им. К.И. Скрябина - 1999. - С. 89-90.

84. Наумова, Л.И. Показатели активности щелочной и кислой фосфатаз кардиомиоцитов при воздействии сероводородсодержащего газа / Л.И. Наумова, А.А. Осипов // Российские морфологические ведомости. — 2001.-№ 1-2.-С. 43-44.

85. Неспецифические механизмы адаптации человека / И.А. Сапов, В.С.Новиков. Л.: Наука, 1984. - 97с.

86. Никонова, Э.Б. Физиологическая реактивность норок в постнатальном онтогенезе и пути её коррекции: автореф. докт. дис. / Э.Б. Никонова. -п. Родники, Моск. обл., 2007.

87. Обогащение кормов селеноорганическим препаратом — надёжный путь повышения качества говядины / И.Ф. Горлов и др. // Мясная индустрия 2004. - №4 - С.54-55.

88. Обмен веществ и продуктивность коров при скармливании концентратов с органической формой селена / B.JI. Владимиров и др. // Доклады Российской академии сельскохозяйственных наук — 2003 -№ 6 С. 29-31

89. Овчинникова, Т.А. Селен: яд и противоядие / Т. А. Овчинникова // Животноводство России. — 2005. — №4. С. 45.

90. Олейник, В.М. Формирование гидролитической функции пищеварительного тракта у хищных пушных зверей / В.М.Олейник, Е.Б. Свечкина // Актуальные проблемы ветеринарной науки: Тез. ДОКЛ./МВА им. К.И. Скрябина. М.: MB А им. К.И. Скрябина, 1999.1. С. 215-216.

91. Павлович, Е.Р. К вопросу о морфологии двух популяций кардиомиоцитов в сосочковых мышцах сердца крысы / Е.Р. Павлович // Архив анатомии, гистологии и эмбриологии. 1982. - Т. 82, № 3 - С. 67-73.

92. Папазян, Т. А. Преодоление селенодефицита / Т.А. Папазян // Животноводство России. — 2003. №12. - С. 32-34.

93. Пауков, B.C. Роль макрофагов в патогенезе органического воспаления / B.C. Пауков, С.А. Дабуль, Н.Ю. Беляева // Архив патологии. 2005. -№4.-С. 3-10.

94. Пилипенко, Д.Н. Влияние селенсодержащих кормовых добавок на мясную продуктивность подсвинков / Д.Н. Пилипенко, В.Н. Храмова, И.М. Чернуха // Мясная индустрия 2006. - №6 - С.46-47

95. Подымова, С.Д. Жировой гепатоз, неалкогольный стеатогепатит. Клинико-морфологические особенности. Прогноз. Лечение / С.Д. По дымова // Русский медицинский журнал. — 2005. Т. 7, № 2. — С. 6163.

96. Применение селекора новорожденным телятам / М.И. Рецкий и др. // Ветеринария. 2005. - № 11. - С. 52-54.

97. Рамиш, А. Влияние дефицита селена на течение инвазий желудочно-кишечных нематодов / А. Рамиш // Новости ветеринарной фармации и медицины. 1986. - № 1. - С. 24-26.

98. Рехачева, И.П. Активность АТФ-азы миозина в соматических мышечных волокнах при различных рН преинкубационной среды / И.П. Рехачева // Арх. анат., гист. и эмбр. 1990. - Т. 99, № 10. - С. 6468.

99. Родионова, Т.Н. Селенорганический препарат ДАФС-25 в кормлении кроликов / Т. Н. Родионова, В. Ю. Васильев, Л.И. Ульихина // Зоотехния. 2001. - №3 - С. 27-29.

100. Родионова, Т.Н. Обмен веществ и мясная продуктивность молодняка крупного рогатого скота под влиянием селена / Т.Н. Родионова, М.Н. Панфилова // Сельскохозяйственная биология — 2003. — №2 — С. 108109.

101. Роменская, Н.В. Нарушение картины крови при дисфункции печени у крупного рогатого скота: автореф. канд. дис. / Н.В. Роменская. -Белгород, 2007.

102. Сабирова, И.Р. Морфологические изменения в тонкой кишке, печени, легких у крыс при интоксикации полихлорированными бифенилами / И.Р. Сабирова, Ф.А. Каюмов, А.Ф. Каюмова // Морфологические ведомости. 2006. - № 1-2. - С. 251-254.

103. Садовникова, Н. П. Селен: формы и функции / Н. П. Садовникова // Животноводство России. 2008. - №8. - С. 59-62.

104. Сапин, М.Р. Место лимфатической системы в иммунных процессах / М.Р. Сапин // Российские морфологические ведомости. — 1999. — № 3-4.- С. 72-73.

105. Селенсодержащие препараты для профилактики болезней половых органов коров / А.Г. Нежданов и др. // Ветеринария. — 2005. — №12. — С. 35.

106. Селенсодержащие препараты, повышающие иммунный статус детей / И.М. Чернуха и др. // Мясная индустрия. 2006. - № 7. - С. 19-22.

107. Селен в жизни человека и животных / Под ред. Л.П. Никитиной и В.Н. Ивановой М.: ТОО «Росуниверсал»: МП «Капина» - 1995 - 241 с.

108. Семёнов, В.В. Сравнительная оценка воспроизводительных качеств свиней в зависимости от способов стимуляции половой охоты / В.В. Семёнов // Эффективное животноводство. — 2009. — № 4. С. 28-31.

109. Смирнов, М.И. Влияние ДАФС-25 на белковый обмен / М.И. Смирнов, Т.Ю. Поперечнева, Н.А. Пудовкин // Ветеринарный врач. 2007. — № 4. -С. 50-52.

110. Старков, М.В. Использование премиксов и ДАФС-25 при выращивании бычков на мясо / М.В. Старков автореф. канд. диссер. Ижевск — 2008

111. Таскаев, И.И. Гистохимические и цитологические изменения в печени при экспериментальной интоксикации и последующей беременности / И.И. Таскаев // Арх. анат., гист. и эмбр. 1979. - Т. LXXVI, № 2. - С. 49-54.

112. Тельцов, Л.П. Закономерности индивидуального развития крупного рогатого скота / Л.П. Тельцов, О.С. Бушукина, И.В. Добрынина // Морфологические ведомости. 2004. - № 3-4. - С. 77-80.

113. Тишювський, М.Я. Симптоми, патогенез i ефектившсть лпсування KopiB, хворих на ал1ментарну дистрофно: автореф. дис. канд. вет. наук / М.Я. Тишювський. Бша Церква, 2002.

114. Ткачёва, JI.B. Влияние селенопирана на спермопродукцию быков / Л.В. Ткачёва, Е.Н. Ващекин // Ветеринария. 2005. - № 6. — С. 34-36.

115. Трифонов, Г.А. Влияние новых селеноорганических соединений на воспроизводительные качества овец // Г.А. Трифонов, Л.Л. Ошкина // Овцы, козы, шерстяное дело. — 2002. — №2. — С. 34.

116. Трифонов, Г.А. Влияние селенсодержащих препаратов и витамина Е на показатели крови и яйценоскость кур родительского стада / Г.А. Трифонов, О.П. Евсеева // Вестник Алтайского государственного аграрного университета. 2008. - №6. - С. 44-47.

117. Трифонов, Г.А. Постнатальный морфогенез двенадцатиперстной кишки кур при применении селенсодержащих препаратов / Г.А. Трифонов, К.А. Кулешов // Вестник Алтайского государственного аграрного университета. — 2008. — №3. — С. 21-23.

118. Трифонов, Г. Влияние препаратов микроэлемента селена на воспроизводительные качества свиней / Г. Трифонов, Е. Перунова // Свиноводство 2001 - №1 - С. 18-20.

119. Тютюнник, Н.Н. Биохимические тесты в оценке физиологического состояния пушных зверей / Н.Н. Тютюнник // Актуальные проблемы ветеринарной науки: Тез.докл./МВА им. К.И. Скрябина. -М.: МВА им. К.И. Скрябина, 1999. С. 227-228.

120. Узенбаева Л.Б. Значение цитохимических тестов в оценке морфофункциональных свойств лейкоцитов крови пушных зверей / Л.Б. Узенбаева // Актуальные проблемы ветеринарной науки: Тез.докл./МВА им. К.И. Скрябина. М.: МВА им. К.И. Скрябина -1999.-С. 235-236.

121. Утеченко, М.В. Симптоми i функциональный стан печшки у великоУ рогато'1 худоби залежно вщ структурних змш и napeHxiMH: автореф. дне. канд. вет. наук / М.В. Утеченко. Бша Церква, 2003.

122. Федорченко, О. А. Влияние селено-органического препарата ДАФС-25 на воспроизводительную функцию коров: автореф. дис. канд. биол. наук. / О.А. Федорченко. Лес. Поляны, 1998.

123. Фельдман, Б.Ф. Околочасовые ритмы белкового метаболизма в гепатоцитах при различных функциональных состояниях организма / Б.Ф. Фельдман // Морфологические ведомости. 2006. — № 1-2. - С. 301-303.

124. Хаитов, Р.М Иммунодиагностика и иммунотерапия нарушений иммунной системы / P.M. Хаитов, Б.В.Пинегин // Практикующий врач. 1997.-№9.-С. 5-13.

125. Шведавченко, А.И. К вопросу о печеночной дольке / А.И. Шведавченко // Морфологические ведомости. — 2004. № 3-4. - С. 7233.

126. Шундалаев, Р. Дефицит витаминов й минералов обходится дорого / Р. Шундалаев // Животноводство России. 2004. - № 3. — С. 6-8.

127. Щелкунов, Л.Ф. Селен и профилактика заболеваний / Л.Ф. Щелкунов // В1сник морсько! медицини. 2000. - № 4 - С. 58-62

128. Юлдашев, А.А. Морфологические и морфометрические особенности собирательных трубок почки при экспериментальном ацидозе / А.А. Юлдашев, P.P. Рахманов // Морфологические ведомости. — 2005. — № 1-2.-С. 71-73.

129. Ямщиков, Н.В. Клеточно-дифферонная организация сердечной мышечной ткани / Н.В. Ямщиков, О.И.Скворцова // Морфология. -1997. Т. 112, №4. - С. 97-98.

130. Abdelrahman, М.М. Deposition of copper, manganese, zinc, and selenium in bovine fetal tissue at different stages of gestation / M.M. Abdelrahman, R.L. Kincaid // J.Dairy Sci. 1993. - Nov (11). - P. 88-93.

131. Advanced glycation end products impair the scavenger function of rat hepatic sinusoidal endothelial cells / Hansen B. et al. // Diabetologia. 2002 Oct;45(10):1379-88. Epub 2002 Aug 23. ,

132. Adipophilin is a specific marker of lipid accumulation in diverse cell types and diseases / Heid HW. et al. // Cell Tissue Res. 1998 Nov;294(2):309-21.

133. Aflatoxin B1 toxicosis in dairy calves pretreated with selenium-vitamin E. /М. Brucato et al. // Am. J. Vet. Res. 1986. - Jan; 47(1). - P. 79-83

134. Analysis of bovine selenoprotein P-like protein gene and availability of metal responsive element (MRE) located in its promoter / Fujii M et al. // Gene. 1997 Oct 15;199(1-2):211-7.

135. Antioxidant enzyme activity in the muscles of calves depleted of vitamin E or selenium or both / DM. Walsh et al. //

136. Antioxidative effects of novel synthetic organoselenBr J Nutr. 1993 Sep;70(2):621-30.ium compound in rat lung and kidney / ZS. Talas et al. // Ecotoxicol Environ Saf. 2009 Mar;72(3):916-21. Epub 2008 Jan 28.

137. Antioxidative role of selenium against the toxic effect of heavy metals (Cd+2, Cr+3) on liver of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss Walbaum 1792) / ZS. Talas et al. // Fish Physiol Biochem. 2008 Sep;34(3):217-22. Epub 2007 Sep 18.

138. Arthur, J.R. Effects of selenium and vitamin E status on plasma creatine kinase activity in calves / J.R. Arthur // J. Nutr. 1988. - Jun (6). - P. 47-55.

139. Arthur, J.R. Selenium deficiency in Friesian steers / J.R. Arthur // Proc. Nutr. Soc. 1979. — May (1). — P. 13.

140. Agarwal, R. Role of selenium in mercury intoxication in mice / R. Agarwal, J.R. Behari // Ind. Health. 2007. - Jun (3). - P. 88-95.

141. A study of the characteristics of hepatic iodothyronine 5'-monodeiodinase in various vertebrate species / F. Santini et al. // Endocrinology. 1992 Aug;131(2):830-4.

142. Atif, F. Restraint stress-induced oxidative damage and its amelioration with selenium / F. Atif, S.K. Agrawal // Eur. J. Pharmacol. 2008. - Dec. (1-3). -P. 59-63.

143. Beneficial effect of goat milk on bioavailability of copper, zinc and selenium in rats / M. Barrionuevo et al. // J. Physiol. Biochem. — 2003. Jun (2). -P. 1-8.

144. Berry, M.J. Effects of selenium supplementation of fertilizers on human hutrition and selenium status / M.J. Berry, J.D. Kieffer, L.P. Reed // J. Bid. Chem. 1991.-Vol. 266.-№22.-P. 155-158.

145. Biodegradable Meshes Printed with Extracellular Matrix Proteins Support Micropatterned Hepatocyte Cultures / KA Woodrow et al. // Tissue Eng Part A. 2008 Dec 15.

146. Butenolide induced cytotoxicity by disturbing the prooxidant-antioxidant balance, and antioxidants partly quench in human chondrocytes / Z. Shi et al. // Toxicol In Vitro. 2009 Feb;23(l):99-104. Epub 2008 Nov 18.

147. Bovine liver abscesses pus and the status of some important minerals / GA. Kojouri et al. //Рак J Biol Sci. 2008 Jan 1 ;11(1): 145-7.

148. Change in hepatic antioxidant defense system with liver injury development in rats with a single alpha-naphthylisothiocyanate intoxication / Y. Ohta et al. // Toxicology. 1999 Dec 6;139(3):265-75.

149. Characterization of endocytic components of liver Subcell Biochem. 1993; 19:163-94.nonparenchymal cells / R Wattiaux et al. //

150. Characterization of the glomerular endothelial cell in culture / K. Nitta et al. //Nippon Jinzo Gakkai Shi. 1993 Aug;35(8):887-91.

151. Cholesterol increase in mitochondria: its effect on inner-membrane functions, submitochondrial localization and ultrastructural morphology / S. Echegoyen et al. // Biochem J. 1993. - Feb 1;289. - P. 3-8.

152. Chloroquine allows to distinguish between hepatocyte lysosomes and sinusoidal cell lysosomes / R. Wattiaux et al. // Biochem Biophys Res Commun. 1993 Feb 15;190(3):808-13.

153. Clark, L.C. Effects of selenium supplementation for cancer prevention in patients with carcinoma of the skin / L.C. Clark, G.F.I. Combs., B.W. Turnbull //1. Amer. Med. Assoc. 1996. - Vol. 276. - P. 57-63.

154. Detection of catalase in rat heart mitochondria / R. Radi // J Biol Chem. 1991 Nov 15;266(32):22028-34.

155. Determination of the status of lipid peroxidation and antioxidants in cattle infected with Dictyocaulus viviparous / S. Deger et al. // Turkiye Parazitol Derg. 2008;32(3):234-7.

156. Enjalbert, F.Effects of copper, zinc and selenium status on performance and health in commercial dairy and beef herds: Retrospective study // F. Enjalbert, P. Lebreton, O. Salat // J. Anim. Physiol. Anim. Nutr. 2006. -Dec; 90 (11-12).-P. 59-66.

157. Enrich, C. Biochemical features and functional activity of the endocytic compartment in the liver cell / C. Enrich, WH. Evans // Rev Esp Fisiol. 1990 Mar;46(l):95-101.

158. Effects of high dietary lead on the metabolism of intravenously dosed selenium-75 in dairy calves / MW. Neathery et al. // J Dairy Sci. 1990 Apr;73(4): 1107-12.

159. Effects of dietary selenium on the oxidative stress and pathological changes in tilapia (Oreochromis niloticus) exposed to a microcystin-producing cyanobacterial water bloom / L. Atencio et al. // Toxicon. 2009. — Feb (2).-P. 69-82.

160. Effects of selenium supplementation on cardiovascular disease incidence and mortality: secondary analyses in a randomized clinical trial / S. Stranges et al. // Am J Epidemiol. 2006 Apr 15;163(8):694-9. Epub 2006 Feb 22.

161. Effects of vitamin E and selenium on serum trace and major elements in horses / F. Yur et al. // Biol Trace Elem Res. 2008 Dec;125(3):223-8. Epub 2008 Sep 17.

162. Evaluation of multiple reticulorumen selenium pellets as a health risk in growing Hereford steers / DJ. Wilson et al. // Am J Vet Res. 1991 Nov;52(ll):l 866-70.

163. Expression of fatty acid binding proteins inhibits lipid accumulation and alters toxicity in L cell fibroblasts / B.P. Atshaves et al. // Am. J. Physiol. Cell. Physiol. 2002. - Sep (3). - P. 88-70.

164. Fructose and carbonyl metabolites as endogenous toxins / O. Lee et al. // Chem. Biol. Interact. 2009. - № 1-3. - P. 2-9.

165. Jansson, B. Association between serum selenium and the risk of cancer / B. Jansson // Metal, ions in biological sistems. 1980. - Vol. 10. - P. 281-311.

166. Gerloff, BJ. Effect of selenium supplementation on dairy cattle / J Anim // Sci. 1992 Dec;70(12):3934-40.

167. He, R. Си, Со and Se nutritive value of compound trace elements controlled-release boluses for grazing ruminants / R. He, S. Wang, Y. Yao, Y. Wang // Ying Yong Sheng Tai Xue Bao. 2000 Apr;l l(2):258-60.

168. Hepatic energy metabolism and the differential protective effects of sevoflurane and isoflurane anesthesia in a rat hepatic ischemia-reperfusion injury model / N. Bedirli et al. // Anesth. Analg. 2008. - Mar; 106(3). -P. 3-9.

169. Histopathological characteristics of Kupffer cells and ito cells in the porcine and bovine liver / К Uetsuka et al. // J Vet Med Sci. 2007 Jul;69(7):767-70.

170. Horky, D. Histochemical and ultrahistochemical localization of heavy metals in calf organs / D. Horky, J. Illek, A. Pechova // Microsc Res Tech. 2002 Mar 15;56(6):435-50.

171. Intracellular sites involved in the biogenesis of bile canaliculi in hepatic cells / KJ. Zaal et al. // Eur J Cell Biol. 1994 Feb;63(l):10-9.

172. In vitro clearance of trace elements via continuous renal replacement'therapy / AT. Nakamura et al. //J Ren Nutr. 2004 Oct;14(4):214-9.

173. In vivo uptake of Си, Zn superoxide dismutase. Morphological evidence for preferential endocytosis and accumulation by sinusoidal liver cells / L. Dini et al. // Cell. Mol. Biol. 1996. - Mar; 42(2). - P. 69-77.

174. Kamimoto, M Uptake ability of hepatic sinusoidal endothelial cells and enhancement by lipopolysaccharide / M. Kamimoto, T. Rung-Ruangkijkrai, T. Iwanaga // Biomed Res. 2005 Jun;26(3):99-107.

175. Kennedy, S. Histopathologic and ultrastructural myocardial alterations in calves deficient in vitamin E and selenium and fed polyunsaturated fatty acids / S. Kennedy, DA. Rice // Vet Pathol. 1992 Mar;29(2): 129-38.

176. Low toxicity of diphenyl diselenide in rabbits: a long-term study / A.F. Bern et al. //Basic Clin. Pharmacol. Toxicol. 2007. - Jul; 101(1).-P. 47-55.

177. Moskovitz, J. Prolonged selenium-deficient diet in MsrA knockout mice causes enhanced oxidative modification to proteins and affects the levels of antioxidant enzymes in a tissue-specific manner / J Moskovitz // Free Radic Res. 2007 Feb;41(2):162-71.

178. Micromorphological characteristics of hepatic sinusoidal endothelial cells and their basal laminae in five different animal species / Higashi N et al. // Okajimas Folia Anat Jpn. 2002 Dec;79(5): 135-42.

179. Mihajlovic, M. Selenium toxicity in domestic animals / M. Mihajlovic // Glas Srp AkadNauka Med. 1992;(42):131-44.

180. Mineral and heavy metal status as related to a mortality event and poor recruitment in a moose population in Alaska / TM O'Hara et al. // J Wildl Dis. 2001 Jul;37(3):509-22

181. Neonatal oxidative liver metabolism: effects of hydrogen peroxide, a putative mediator of septic damage / C. Romeo et al. // J Pediatr Surg. 1999 Jul;34(7):l 107-11.

182. Niedobory selenu u krow w rejonie Pomorza Zachodniego / T. Bombik et al. // Pr. Komis. Nauk Roln. i Biol. 2003. - № 51. - P. 45-52.

183. O'Toole, D Pathology of experimentally induced chronic selenosis (alkali disease) in yearling cattle / D. O'Toole, MF. Raisbeck // J Vet Diagn Invest. 1995 Jul;7(3):364-73.

184. Properties of ATPase activity associated with peroxisomes of rat and bovine liver / ZA. Malik et al. // Comp Biochem Physiol B. 1991;99(2):295-300.

185. Protective effect of selenium on hemoglobin mediated lipid peroxidation in vivo / J. Simoni et al. // Artif Cells Blood Substit Immobil Biotechnol. 1995;23(4):469-86.

186. Reaction of diphenyl diselenide with hydrogen peroxide and inhibition of delta-aminolevulinate dehydratase from rat liver and cucumber leaves. / Farina M et al. // Braz J Med Biol Res. 2002 Jun;35(6):623-31.

187. Reconstruction of hepatic organoid by rat small hepatocytes and hepatic nonparenchymal cells / T. Mitaka et al. // Hepatology. 1999 Jan;29(l):l 1125.

188. Rice, DA. Use of sodium hydroxide treated selenium deficient barley to induce vitamin E and selenium deficiency in yearling cattle / DA. Rice, CH. McMurray//Vet Rec. 1986 Feb 15; 118(7): 173-6.

189. Rederstorff, M. Understanding the importance of selenium and selenoproteins in muscle function / M. Rederstorff, A. Krol, A. Lescure // Cell Mol Life Sci. 2006 Jan;63(l):52-9.

190. Reduction of cisplatin nephrotoxicity by sodium selenite. Lack of interaction at the pharmacokinetic level of both compounds / NP. Vermeulen et al. // Drug Metab Dispos. 1993 Jan-Feb;21(l):30-6.

191. Role of Synthesized Organoselenium Compounds on Protection of Rat Erythrocytes from DMBA-Induced Oxidative Stress / TZ. Selamoglu et al. // Biol Trace Elem Res. 2008 Oct 31. [Epub ahead of print] .

192. Role of Oxidative Stress in the Promoting Activities of PCBs Glauert HP et al. //Environ Toxicol Pharmacol. 2008;25(2):247-250.

193. Salisbury, CD. Multielement concentrations in liver and kidney tissues from five species of Canadian slaughter animals / CD. Salisbury, W. Chan, PW. Saschenbrecker // J Assoc Off Anal Chem. 1991 Jul-Aug;74(4):587-91

194. Scholz, RW. Distribution of selenium-dependent and nonselenium-dependent glutathione peroxidase activity in tissues of young cattle / RW. Scholz, LS. Cook, DA. Todhunter// Am J Vet Res. 1981 0ct;42(10): 1724-9.

195. Selenium accumulation in beef: effect of dietary selenium and geographical area of animal origin / Hintze KJ. et al. // J Agric Food Chem. 2002 Jul 3;50(14):3938-42.

196. Selenoenzyme activities in selenium- and iodine-deficient sheep / AE. Voudouri et al. // Biol Trace Elem Res. 2003 Sep;94(3):213-24.

197. Selenium and vitamin E in blood sera of cows from farms with increased incidence of disease /U. Braun //Vet. Rec. 1991. - Jun 8;128(23). - P. 3-7.

198. Selenium and Topiramate on Lipid Peroxidation and Antioxidant Vitamin Levels in Blood of Pentylentetrazol-Induced Epileptic Rats / S Kutluhan et al. // Biol Trace Elem Res. 2009 Jan 6.

199. Selenium compounds counteract the stimulation of ecto-nucleotidase activities in rat cultured cerebellar granule cells: putative correlation with neuroprotective effects / Ghisleni G. et al. // Brain Res. 2008 Jul 24; 1221:134-40. Epub 2008 Apr 24.

200. Selenium-independent epididymis-restricted glutathione peroxidase 5 protein (GPX5) can back up failing Se-dependent GPXs in mice subjected to selenium deficiency / P. Vemet et al. // Mol Reprod Dev. 1999 Dec;54(4):362-70.

201. Selenium metabolism in the dairy cow: the influence of the liver and the effect of the form of Se salt / HW. Symonds et al. // Br J Nutr. 1981 Jan;45(l): 117-25.

202. Serum selenium, vitamin E, and sialic acids concentrations in lambs with white muscle disease / Y. Deger et al. // Biol Trace Elem Res. 2008 Jan; 121(l):39-43. Epub 2007 Jun 5.

203. Selenium supplementation sensitizes renca cells to tert-butylhydroperoxide induced loss of viability / M. Gul, S. Temosin, O. Hanninen // Indian J Exp Biol. 2000 Oct;38(10):1020-5.

204. Selenium toxicity in feeder pigs / H. D. Stowe et al. // Am. Vet. Med. 1992. J. 201:292.

205. Shearer, TR. Lack of effect of selenium on glycolytic and citric acid cycle intermediates in rat kidney and liver / TR. Shearer, T. Kinersly // Proc Soc Exp Biol Med. 1973 Nov;144(2):688-91.

206. Spectrally resolved morphometry of the nucleus in hepatocytes stained by four histological methods / C. Rothmann et al. // Histochem J. 1998 Aug;30(8):539-47.

207. Studies on serum tocopherol, selenium 1 evels and blood glutathione peroxidase activities in calves with white muscle disease. Hoshino Y et al. //Nippon Juigaku Zasshi. 1989 Aug;51(4):741-8.

208. Status of selenium, vitamin E, and vitamin A among Saudi adults: potential links with common endemic diseases / I. Al-Saleh et al. // J. Environ Pathol. Toxicol. Oncol. 2007. - № 3. - P. 21-43.

209. Sunde, RA. Dietary selenium requirements based on tissue selenium concentration and glutathione peroxidase activities in old female rats / RA. Sunde, KM.Thompson // Trace Elem Med Biol. 2009;23(2): 132-7. Epub 2009 Mar 14.

210. Superoxide dismutase, catalase and glutathione peroxidase in the spontaneously hypertensive rat kidney: effect of antioxidant-rich diet / CD. Zhan et al. // J Hypertens. 2004 Oct;22(10):2025-33.

211. Surai. P.F. Is Organic selenium letter fjr animals than inorganic sources / P.F. Surai, J.E.Dvorska // Feed Mix. -2001. Vol. 9. - P. 8-10. .

212. Tang, YL. Both inorganic and organic selenium supplements can decrease brain monoamine oxidase В enzyme activity in adult rats / YL. Tang, SW. Wang, SM Lin //Br JNutr. 2008 Sep;100(3):660-5. Epub 2008 Feb 28.

213. Tateno, C. Long-term cultivation of adult rat hepatocytes that undergo multiple cell divisions and express normal parenchymal phenotypes / C. Tateno, K. Yoshizato // Am J Pathol. 1996 Feb;148(2):383-92.

214. Terry, TL. Effects of fetal calf serum and disruption of cadherin function on the formation of bile canaliculi between hepatocytes / TL. Terry, WJ. Gallin // Exp Cell Res. 1994 Oct;214(2):642-53.

215. The morphology and function of the liver in high performance cows 2 weeks post partum / U. Johannsen et al. // Dtsch Tierarztl Wochenschr. 1993 May; 100(5): 177-81.

216. The hepatoprotective effects of selenium against cadmium toxicity in rats / AA. Newairy // Toxicology. 2007 Dec 5;242(l-3):23-30. Epub 2007 Sep 8.

217. The effect of chronic diazepam administration on lipid peroxidation and Ca2+ -ATPase activity in rat liver / S. Segkin et al. // Acta Biol Hung. 2007 Dec;58(4):441-3.

218. Transport of feed selenium to different tissues of bulls / P. Ekholm et al. // Br. J. Nutr. 1991. - Jul; 66(1). - P. 49-55.

219. Van Vleet, JF. Myodegeneration associated with selenium-vitamin E deficiency in a pregnant heifer / JF, Van Vleet, RR. Crawley, HE. Amstutz //J Am Vet Med Assoc. 1977 Sep l;171(5):443-5.

220. Zongping, L. Studies on the haematology and trace element status of adult Bactrian camels (Camelus bactrianus) in China / L. Zongping // Vet Res Commun. 2003 Jul; 27(5):397-405.