Автореферат и диссертация по медицине (14.00.36) на тему:Влияние антиген-активированных дендритных клеток на функциональные свойства мононуклеарных клеток периферической крови больных туберкулезом
Автореферат диссертации по медицине на тему Влияние антиген-активированных дендритных клеток на функциональные свойства мононуклеарных клеток периферической крови больных туберкулезом
На правах рукописи
00344500Ь
ШЕВЧЕНКО ЮЛИЯ АЛЕКСАНДРОВНА
ВЛИЯНИЕ АНТИГЕН-АКТИВИРОВАННЫХ ДЕНДРИТНЫХ КЛЕТОК НА ФУНКЦИОНАЛЬНЫЕ СВОЙСТВА МОНОНУКЛЕАРНЫХ КЛЕТОК ПЕРИФЕРИЧЕСКОЙ КРОВИ БОЛЬНЫХ ТУБЕРКУЛЕЗОМ
14.00.36 - аллергология и иммунология
АВТОРЕФЕРАТ диссертации на соискание учёной степени кандидата биологических наук
2 4 ш0/7 2000
Новосибирск 2008
003445005
Работа выполнена в Государственном учреждении научно-исследовательском институте клинической иммунологии Сибирского отделения РАМН
Научный руководитель:
Доктор медицинских наук, профессор
Сергей Витальевич Сенников
Официальные оппоненты:
доктор медицинских наук профессор
Александр Анатольевич Останин ГУ НИ Институт Клинической Иммунологии СО РАМН, г Новосибирск
доктор медицинских наук Анна Вениаминовна Шурлыгина
профессор ГУ НИ Институт клинической и
экспериментальной лимфологии СО РАМН, г Новосибирск
Ведущая организация:
Российский государственный медицинский университет
Защита состоится «¿Г» С^Г
2008 г в _ часов на
заседании диссертационного совета Д 001 001 01 в ГУ НИИ клинической иммунологии СО РАМН по адресу 630099, г Новосибирск, ул Ядринцевская, 14
С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке ГУ НИИ клинической иммунологии СО РАМН
Автореферат разослан «40 » 2008 г
Ученый секретарь диссертационного совета
доктор биологических наук у ОТ Кудаева
ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ
Актуальность. Туберкулез относится к числу социальных заболеваний характеризуется хроническим течением, многообразием клинических форм поражением различных органов [Урсов, 1997] В основе патогенеза туберкулеза леж| нарушение клеточного звена иммунного ответа, осуществляемое по нескольки механизмам длительная персистенция M tuberculosis внутри антиген-презентирукмщ клеток, нарушение презентации антигена, секреция иммуносупрессорных цитокинов появление иммуносупрессорных Т-клеток, избыточный апоптоз Т-клеток и подавлеш апоптоза инфицированных макрофагов [Маянский, 2001, Fernando, 2006]
В настоящее время развитие новых эффективных подходов к лечени инфекционных заболеваний связано с использованием собственных механизмов защит организма и их возможной модуляции [Гантиевская, 2001] Протективный иммунни ответ на M tuberculosis связан с индукцией эффекгорных функций Т хелперов 1 типа, ч1 в свою очередь зависит от представления им антигена и дифференцировки «наивных» г клеток, что осуществляется дендритными клетками (ДК) как основными антиги презентирующими клеточными элементами [Demangel, 2000,0ttenhoff, 2005]
В патогенезе туберкулеза ДК являются клетками-мишенями для M tubérculos [Lichtner, 2006] Инфицированные M tuberculosis ДК могут способствовав распространению заболевания и накапливаться в лимфоидных органах и грануломг инфицированных крыс и людей, что говорит об отсутствии или подавлении эффективнь механизмов уничтожения M tuberculosis и формировании ниш для долговременно! выживания микобактерий в участке инфицирования [Buettner, 2005]
В то же время дендритные клетки обладают уникальными механизмами захвш антигена и представления его наивным Т-клеткам, усиливают врожденный иммуните регулируют развитие специфического иммунного ответа, определяют направленность активность иммунных реакций, поэтому их все чаще используют для иммунотсрапи различных иболсваний [Кузнецова, 2003] Кроме того, показано, что ДК, полученные i vitro из моноцитов, культивированных с GM-CSF и IL-4, не поддерживак внутриклеточную репликацию M tuberculosis в отличие от макрофагов, полученных i тех же самых моноцитов [Tailleux, 2003]
Эффективность иммунного ответа при бактериальной инфекции также зависит и с иммунорегуляторных факторов, непосредственно определяющих состояние иммунно системы в норме и при патологии, в частности 1L-18 [Akira, 2000, Gracie, 2003] Пр микобактериальной инфекции IL-18 стимулирует продукцию IFN-y Т-клетками и № клетками, тем самым, способствуя активации макрофагов и уничтожению M tuberulost. инфицированных клеток [Barnes, 2000] Однако у пациентов, больных туберкулезо наблюдаете! значительное снижение продукции IL-18 и IFN-y При этом в ряде рабе отмечают роль IL-18 в дифференцировке наивных Т-клеток в Т-хелперы 1 типа вообще
в М ¿ибега/озю-индуцированном синтезе цитокина 1-го типа IFN-y в частности [Vankayalapati, 2 ООО]
Исходя из функциональной неполноценности дендритных клеток в патогенезе туберкулеза, а также роли дендритных клеток и IL-18 для реакций клеточного иммунитета, представлялось актуальным и значимым рассмотреть возможность стимуляции эффекгорных функции мононуклеарных клеток периферической крови больных туберкулезом под действием зрелых аутологичных ДК и IL-18 in vitro Цель работы
Изучить возможность модуляции антиген-специфического иммунного ответа с помощью аутологичных активированных дендритных клеток и интерлейкина-18 в культуре мононуклеарных клеток больных туберкулезом
В связи с поставленной целью предстояло решить следующие задачи
1 Исследовать фототипические и функциональные показатели дендритных клеток больных туберкулезом легких по сравнению с дендритными клетками здоровых доноров
2 Исследовать особенности прохождения дендритных клеток по клеточному циклу в процессе генерации под действием используемых факторов дифференцировки
3 Исследовать влияние антиген-специфических дендритных клеток и IL-18 на пролиферативную активность МНК в ответ на специфический антиген М tuberculosis ESAT-6
4 Исследовать влияние антиген-специфических дендритных клегок и IL-18 на количество IFN-у-продуцирующих клеток и продукцию IFN-y и IL-4 МНК в ответ на специфический антиген М tuberculosis ESAT-6
5 Исследовать влияние антиген-специфических дендритных клеток и IL-18 на экспрессию перфорина МНК в ответ на специфический антиген М tuberculosis ESAT-6
Научная новизна работы
Установлено, что использование рч1Ь-18 при совместном культивировании мононуклеарных клеток со зрелыми аутологичными ДК приводит к максимальной стимуляции антиген-индуцированной продукции IFN-y, достоверному повышению содержания IFN-y -продуцирующих клеток по сравнению с МНК, культивированными с ДК в отсутствии IL-18
Показана фенотипическая и функциональная состоятельность зрелых дендритных клеток, презентирующих специфический антиген М tuberculosis ESAT-6, полученных из
моноцитов периферической крови пациентов, больных туберкулезом легких пр использовании модифицированного «короткого» 48 часового протокола Теоретичес кая и практическая значимость работы
Полученные результаты расширяют представления об иммунорегуляторно потенциале дендритных клеток моноцитарного происхождения при туберкулезе легки демонстрируют возможность влияния цитокинов и антигенов на направленное! противоинфекционного иммунного ответа, предполагают возможность использован! антиген-активированных дендритных клеток, IL-18 и мононуклеарных клеток в качесп эффективного подхода к восстановлению специфического иммунного ответа in vivo больных туберкулезом легких Практическая значимость работы заключается экспериментальном обосновании способа модуляции клеточного иммунного ответа культуре МНК, который может быть основой клеточной технологии лечения туберкулез. Основные положения, выносимые на защиту
1 Зрелые аутологичные ДК стимулируют продукцию IFN-7 и цитотоксическм фактора перфорина мононуклеарными клетками пациентов, больных туберкулеза легких в ответ на специфический антиген ES АТ-6
2 Рекомбинантный человеческий IL-18 играет адъювантную роль в развитии антиге) специфического иммунного ответа при совместном культивировании зрель аутологичных ДК и мононуклеарных клеток
Апробация материалов диссертации
Материалы диссертации доложены и обсуждены на 1) Ежегодной конкурс-конференцр студентов и молодых ученых «Авиценна - 2005» Новосибирск, 2005, 2) Московсюс международной конференции «Биотехнология и медицина» (Москва, 2006), Российской научно-практической конференции «Современные технологии иммунологии иммунодиагностика и иммунотерапия» (Курск, 2006), 4) 1 Международной конференции "Фундаментальные науки - медицине" (Новосибирс 2007), 5) Межрегиональной научно-практической конференции «Дни иммунологии Сибири» (Омск, 2007) 6) Семинарах экспериментального отдела ГУ НИИ КИ СО РАМ (Новосибирск, 2006, 2007) 7) Объединенном иммунологическом форуме (Санк Петербург, 2008)
Публикации По теме диссертации опубликовано 11 работ, в том числе 1 статья издании, рекомендованном ВАК
Объем и структура работы Диссертация написана в традиционном стиле и состоит i введения, обзора литературы, описания материалов и методов исследования, глав результатов собственных исследований, обсуждения полученных результатов и выводо Материал изложен на 120 страницах машинописного текста, включающего 14 рисунко
3 таблицы и 3 схемы Прилагаемая библиография содержит ссылки на 197 литературных источников, в том числе 191 иностранный
МЛ ТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ.
Объект исследования. Мононуклеарные клетки периферической крови (МНК ПК) пациентов, больных туберкулезом легких (55 человек) и условно здоровых доноров (30 человек)
Выделение клеток из периферической крови
1 Выделение МНК ПК осуществлялось в градиенте плотности фиколл-урографина согласно [Boyum, 1968]
2 Выделении моноцитов периферической крови проводилось методом адгезии на пластике [Wahl, 1995]
Получение зрелых антиген-активированных ДК
1 Дифференцировка моноцитов в незрелые ДК под действием GM-CSF (50 hi /мл) и IL-4 (100 нг/мл) в течение 24 часов [Obermaier, 2003]
2 Культивирование незрелых ДК в присутствии специфического антигена Mycobacterium tuberculosis ESAT-6 (3 мкг/мл)
3 Получение зрелых дендритных клеток под действием LPS (5 мкг/мл) в течение 24 часов
Культивирование клеток проводилось в полной среде RPMI-1640, содержащей 10% FCS (РАА, Австрия), 2 мМ L-глютамина (ГНЦ ВБ «Вектор»), 10 мМ HEPES буфера (Sigma), 5 10"4 М 2-меркаптоэтанола (Sigma), 80 мкг/мл гентамицина (АО «Самсон» Санкт-Петербург), 100 мкг/мл ампициллина (ЗАО «Синтез» Курган) в атмосфере, содержащей 5% СО2, при 37°С
Анализ фенотипических и функциональных показателей дендритных клеток методом проточной цитометрич (FACSCalibur (BD))
1. Для анализа фенотипических характеристик дендритных клеток использовались моноклональные антитела anti-CD 83 РЕ (BD Pharmingen), anti-CD 86 FITC (BD Pharmingen), anti-HLA FITC («Сорбент», Москва)
2. Для оценки эффективности захвата антигена полученными дендритными клетками определялась их способность к рецептор-опосредованному эндоцитозу с помощью захвата FITC-декстрана (Sigma) при +4С и при +37С
3. Анализ клеточного цикла и уровня апоптоза проводили на основании измерения содержания ДНК с применением внутриядерного красителя 7AAD (Sigma)
Совместное культивирование МНК неприлипшей фракции и ПК
Полученные ДК подвергались совместному культивированию с мононуклеарным клетками неприлипшей фракции (нфМНК) в течение 48 часов для праймироваш специфического антигена (в соотношении ДК МНК=1 10) с добавлением 40 nr/v рекомбинантного человеческого 1L-18 (рч1Ь-18) (ООО «Центр инженернс иммунологии», г Новосибирск) или без него (группы нфМНК+ДК (ESAT-6) +IL-18 нфМНК+ДК (ESAT-6), соответственно) В качесгве контроля использовалис мононуклеарные клетки неприлипшей фракции, культивированные в тех же условия (группы нфМИК и нфМНК+1Ь-18), а также клетки, культивированные в присутствии Д1 которым не представлялся антиген ESAT-6 (группа нфМНК+ДК (без антигена))
После совместного культивирования МНК неприлипшей фракции и ДК присутствии или отсутствии IL-18, а также культивирования клеток контрольных груп клеточную суспензию отмывали, а затем культивировали полученные клетки (1 mhii/mj со специфическим антигеном ESAT-6 (1 мкг/мл) в течение 72 часов Для определен!' эффективности ответа на специфический антиген М tuberulom ESAT-6 через 72 час культивирования МНК, предварительно активированных зрелыми аутологичными ДК, мы использовали
1 Количественное определение клеток, продуцирующих IFN-y, с помощью технологи ELISpot (R&D Systems)
2 Определение продукции IFN-y и IL-4 в кондиционных средах с помощы иммуноферментного анализа («Вектор-Бэст», Новосибирск)
3 Определение пролиферативной активности МНК по включению 3Н-тимидина нуклеопротеидные фракции клеток. Н3-тимидин вносили по 1 (.iCi/лунка за 16-18 часс до конца культивирования
4 Определение содержания перфорин-позитивных клеток с помощью антител внутриклеточному белку перфорину (BD Pharmihgen) с последующим анализом и проточном цитометре FACSCahbur (BD)
Статистическая обработка результатов проводилась с помощью программ Statistica 6 0 Проверка выборки на нормальность распределения проводилась с помощы критерия Колмогорова-Смирнова При нормальном распределении выборки результат представлялись в виде среднего и ошибки среднего Статистическая достоверное! различий определялась с помощью t-критерия Стыодента при р<0,05 Если исследуемы выборки не подчинялись нормальному распределению, данные представлялись в вад медианы и диапазона значений квартилей ( 25% и 75%), а для проверки гипотез достоверности различии использовали непараметрические критерии Манна-Уитни Уилкоксона
РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ
Получение зрелых антиген-активированных дендритных клеток из моноцитов периферической крови.
Поскольку ДК являются клетками-мишенями для М. tuberculosis в патогенезе туберкулеза, то первой задачей стоящей перед нами была необходимость получения зрелых антиген-активированных дендритных клеток из моноцитов периферической крови пациентов, больных туберкулезом легких и сравнения их с ДК, полученными из моноцитов периферической крови здоровых доноров по фенотипическим и функциональным показателям. Для получения дендритных клеток из моноцитов периферической крови мы использовали протокол, предполагающий 24-часовое культивирование моноцитов ПК и терминальную дифференцировку полученных незрелых дендритных клеток в последующие 24 часа [Obermaier, 2003 ]. Незрелым ДК представлялся специфический антиген М. tuberculosis ESAT-6, а для терминальной дифференцировки ДК мы применяли бактериальный липополисахарид E.coli. На Рис. 1 и Рис. 2 представлены уровни экспрессии маркеров CD83, CD86 и HLA-DR на поверхности зрелых дендритных клеток по сравнению с незрелыми дендритными клетками и исходными мононуклеарными клетками прилипшей фракции пациентов больных туберкулезом и здоровых доноров.
^ В прилипающая фракция ■ незрелые ДК а зрелые ДК |
СО 83*/HLA-OR
Л
со вз.тл-ж
| и npiWimiBOmSH фрэщия ■нозронысДК Пфвшё )iy. j
Рис. 1. Уровень экспрессии поверхностных Рис. 2. Уровень экспрессии поверхностных
маркеров на дендритных клетках маркеров на дендритных клетках
больных туберкулезом (п=16). здоровых доноров (п-8)
Данные представлены в виде среднего и ошибки среднего.
* - различия достоверны между незрелыми и зрелыми ДК
Клетки исходной популяции пациентов, больных туберкулезом легких отличались достоверно более высоким уровнем экспрессии активационных молекул СО 86 и НЬА-ГЖ (Таблица !). Такое состояние лимфоцитов может быть следствием «преактивации», возникающей из-за бактериальной нагруженное™ организма. Как у пациентов, больных туберкулезом, так и у здоровых доноров наблюдается достоверное повышение содержания зрелых ДК, несущих соответствующие маркеры дифференцировки и костимуляции, однако при несколько более сниженных показателях содержания клеток,
экспрессирующих НЬА-1Ж+ и СО 86+ у пациентов, больных туберкулезом легки (Таблица 1) В тоже время ДК здоровых доноров и пациентов, больных туберкулезом и отличаются по экспрессии СБ 83+ и СБ 83+/НЬА-011', а содержание клеток с фенотипо! СБ 837СО 86+ достоверно выше у пациентов, больных туберкулезом легких
Таблица 1 Сравнение уровней экспрессии поверхностных маркеров дендритных клеток пациентов, больных туберкулезом и здоровых доноров.
Данные представлены
в виде среднее
и ошиб>
среднего
*- различи достоверны между здоровыми донорами больными туберкулезом
Для исследования способности полученных незрелых дендритных клеток больны туберкулезом захватывать антиген мы провели оценку их активности в отношени рецептор-опосредованного эндоцитоза (с помощью захвата FITC-декстрана) при +4"С при +37°С При +4"С происходит неспецифическое связывание декстрана поверхностными рецепторами, а при +37°С связанный декстран проникает в клетк (эндоцитоз) Степень захвата FITC-декстрана дендритными клетками определялась п формуле delta MIF = MIF 37 с ~ MIF4 с, где где MIF37 с и MIF4 с— интенсивност флюоресценции меченых клеток при +37°С и +4"С соответственно
При сравнении этого показателя обнаружено, что интенсивность захвата антиген незрелыми дендритными клетками как здоровых доноров, так и пациентов, больны туберкулезом достоверно выше по сравнению со зрелыми дендритными клетками Эт свидетельствует об эффективном захвате антигена нецелыми ДК по механизм рецептор-опосредованного эндоцитоза и о сохранении способности зрелых ДК неспецифичгскому связыванию декстрана без проникновения его в клетку (Рис 3, Ри( 4)
Таким образом, незрелые ДК, полученные при 24 часах дифференцировк! моноцитов периферической крови, обладают высокой способностью к эндоцитозу i могут быть эффективно нагружены антигеном Через 24 часа созревания незрелые Д]
прилипшая фракция MHK незрелые ДК зрелые ДК
Доноры (n=8) ТВ-больные (n=16) Доноры (n=8) ТВ- больные (n=16) Доноры (n=&) ТВ-больные (п=16)
CD 83" 2,3 H0.2I 6,37+O.M* It,12i2,41 32.l9il.74' 40,9i 1,53 43,11 ±5 Д5
CD 86* I9.S3H.S 14.22i2.9l' 34,7I±3,62 29,65±2,69 6.1,3913,4 S0.2Si4.IS''
HLA-DR* 11,7610.74 41,94i6.00* 43.lit.4S 26.9Ш.М* 64.77i6.67 37,11417,46'
CD 83+/CD 86* t,S6iO,S6 S.97S±0.71* 15,14±3,71 19,65±3,05 I4JSH.66 12.44*4.24»
CD 837 HLA-DR+ 1,43±0,16 l,055±0,25 10,45±2,39 8,76*1,15 26,19±3,1 24,36±7,67
приобретают фенотип зрелых дендритных клеток, увеличивая экспрессию СГ)83 'С0Х6! НЬЛ-ОК1 при снижении способности к захвату антигена.
600 500 400 300 200 100 О----
¡зрелые ДК
зрелые ДК
500
U. 400
S
га 300
~аз ■о 200
100
0
незрелые ДК
зрелые ДК
Рис. 3. Эндоцитозная активность дендритных клеток пациентов, больных туберкулезом в зависимости от степени зрелости (п=15).
Рис. 4. Эндоцитозная активность дендритных клеток здоровых доноров в зависимости от степени зрелости (,,=15)
Достоверность различий определена с помощью 1- критерия Стьюдеита при р<0.05. * -различия достоверны между незрелыми и зрелыми ДК
Для определения особенностей прохождения дендритных клеток по клеточному циклу в процессе генерации под действием используемых цитокинов, LPS и специфического антигена М. tuberulosis ESAT-6 мы исследовали фазы клеточного цикла и уровень апоптоза полученных незрелых дендритных клеток, дендритных клеток после добавления антигена и после добавления фактора терминальной дифференцировки LPS (Рис. 5).
100
g 80
h 60
Mi
40
20
0
3?
незрелые ДК без антигена
100 г-------
□ апоптоэ
А.
К.
Рис. 5 Распределение по фазам клеточного цикла ДК пациентов больных туберкулезом(Л) (п=8) и ДК здоровых доноров (п=8) (Б). Данные представлены « виде среднего и ошибки среднего. Различия недостоверны
Таким образом, используемые цигокины, антиген и липополисахарид не оказывают цитотоксического эффекта на генерируемые ДК и не влияют на прохождение ДК по клеточному циклу. Подавляющее большинство клеток находится в 01/00 фазе клеточного цикла, что может свидетельствовать о процессах дифференцировки клеток. При этом у больных туберкулезом и здоровых доноров наблюдается сходная картина распределения дендритных клеток по фазам клеточного цикла.
Модуляция иммунного ответа с помощью зрелых_антиген-активированиы.
дендритных клеток.
Изучение влияния антиген-активированных ДК на распределение мононуклеарны. клеток по фазам клеточного цикла
Для тестирования функционального состояния полученных ДК и их способност модулировать специфический иммунный ответ мы проводили совместно культивирование антиген-активированных дендритных клеток с мононуклеарным клетками неприлипшей фракции (далее называемыми просто МНК) в соотношени ДК:МНК=1:10 в течение 48 часов. Целью данной процедуры является активаци направленной дифференцировки ТО клеток в Т-хелперы I типа и индукция созревани специфических цитотоксических клеток.
Для сценки влияния зрелых антиген-активированных ДК на мононуклеарны клетки мы определяли уровень апоптоза и распределение МНК по фазам клегочног цикла после культивирования со зрелыми ДК. У пациентов, больных туберкулез« достоверно снижалось содержание клеток, находящихся в 01/СЮ фазах клеточного циклг с одновременным повышением количества клеток в Б, 02/М фазах, что може свидетельствовать об активации пролиферативного потенциала (Рис. 6 А). В групп здоровых доноров подобного эффекта не обнаружено (Рис. 6 Б).
мнк+дк
;,С2/м
Рис. б.Влиянче антиген-активированных ДК на распределение по фазам клеточного цикла МП пациентов, больных туберкулезом легких (А) (п=8) и МНК здоровых доноров (Б) (п=8). Данны представлены в виде среднего и ошибки среднего
Достоверность различий определена с помощью ?- критерия Стьюдента при р<0.05.
При сравнении распределения клеток по фазам клеточного цикла показано, что исходной фракции мононуклеарных клеток пациентов, больных туберкулезом легки? наблюдается достоверное меньшее содержание клеток, находящихся в 8, 02/М фаз клеточного цикла, соответствующей пролиферативной активности, при достоверно боле высоком содержании клеток, находящихся в фазе 01/00 по сравнению мононуклеарными клетками здоровых доноров. После совместного культивировани мононуклеарных клеток с антиген-активированными дендритными клеткам! наблюдается сохранение достоверных различий между клетками здоровых доноров клетками, пациентов, больных туберкулезом (Таблица 2).
А [ о а поптоз ■ (31 /60 " О &, С2/м]
| о апоптоа шС1/50 о 5
Таблица 2 Распределение по фазам клеточного цикла мононуклеарных клеток пациентов больных туберкулезом и мононуклеарных клеток здоровых доноров до и после культивирования с антиген-
Данные представлены в виде среднего и ошибки среднего
* - различия достоверны между здоровыми донорами и больными туберкулезом
Для определения эффективности модуляции противотуберкулезного иммунного ответа т vitro с помощью полученных ДК мы оценивали пролиферативную активность, количество IFN-7-продуцирующнх клеток, продукцию IFN-y и IL-4 и экспрессию перфорина МНК неприлипшей фракции, предварительно культивированными с антиген-активированными ДК, в ответ на специфический антиген М tuberculosis ESAT-6 через 72 часа Таким образом, процессы презентации антигена протекают в культуре дендритных клеток, а совместное культивирование МНК неприлипшей фракции и ДК способствует реализации эффекторных функций иммунокомпетентных клеток Временной промежуток в 72 часа был выбран исходя из того, что пик секреции IFN-y de novo приходится на 48-72 часа культивирования клеток т vitro [Malyguine, 2004]
Влияние антиген-активированных ДК на пролиферативную активность мононуклеарных клеток in vitro.
При исследовании пролиферативной активности МНК, предварительно культивированных с антиген-активированными ДК, в ответ на специфический антиген М tuberculosis ESAT-6 через 72 часа, показано, что и антиген-стимулированные ДК и ДК, не нагруженные антигеном, способны активировать пролиферативный потенциал мононуклеарных клеток пациентов, больных туберкулезом (Рис 7) Недостоверность различий между спонтанными и антиген-стимулироваными уровнями пролиферативной активности мононуклеарных клеток можно объяснить тем, что специфический антиген М tuberculosis ESAT-6 обладает слабым влиянием на пролиферативную активность мононуклеарных клеток [Ulrichs, 2000 ]
Для стимуляции и поддержания направленной дифференцировки наивных Т-клеток в Т-хелперы первого типа мы добавляли рч1Ь-18 при совместном культивировании зрелых антиген-активированных ДК и МНК IL-18 играет важную роль в формировании эффективного Т-клеточного иммунного ответа, который при бактериальных инфекциях, в частности при туберкулезе, связан с появлением IFN-у-секретирующих Т-клеток, что приводит к активации макрофагов и уничтожению инфицированных клеток [Akira, 2000]
активированными дендритными клетками
МНК мнк+дк
Здоровые ТВ-больные Здоровые ТВ-больные
(п=8) (пЩ (п=8) (п=8)
Апоптоз 2.№0.и ПАЛОМ* 2,36±0,51 1,23±0,26
Gl/G0 56.4215.56 91,44±U7* 63.84±5.37 84.63±1.95*
S.G2/M 4¡.78í5.62 34.22*5.08 14.32±1.95*
Добавление рч1Ь-18 при совместном культивировании дендритных клеток мононуклеарных клеток пациентов, больных туберкулезом не приводит к статисгическ значимому усилению пролиферативной активности МНК по сравнению с клеткам1 культивированными без IL-18, что может объясняться слабой способностью IL-18 влият на процессы пролиферации иммунокомпетентных клеток без дополнительных факторо! например таких, как IL-12 [Micallef, 1996].
Рис. 7. Влияние антиген активированных Д К и про л ифератнв ную а кт и в но cm мононуклеарных клеток пациенте больных туберкулезом легких ответ на антиген ESAT-6 in viti (п=16). Данные представлены в вш среднего и ошибки среднего.
# — по сравнению с интактным МНК (как спонтанная, так и ESA'i 6-стимулированная пролиферация).
1. нфМНК
2. нфМНК +IL-18
3. нфМНК+ДК (бел антигена)
5. нфМНК'гДК (ESAT-6)+lL-18
Таким образом, совместное культивирование зрелых антиген-активированных ДК МНК приводит к активации пролиферативной активности мононуклеарных клето пациентов, больных туберкулезом in vitro. Полученные ДК, вне зависимости о антигенной нагрузки, индуцируют приблизительно равный пролиферативный отве мононуклеарными клетками в ответ на повторную стимуляцию антигеном.
Влияние антиген-активированных ДК на количество IFN-у-продуцирующих клеток культуре мононуклеарных клеток in vitro.
Для тестирования способности полученных дендритных клеток индуцироват развитие Thl-иммунного ответа мы использовали технологию ELISpol, позволяющу1 провести количественную оценку клеток, продуцирующих IFN-y в ответ н специфический антиген ESAT-6. По литературным данным циркулирующие ESAT-f специфические клетки ке обязательно связаны с патологией тканей, скорее их рол заключается в сдерживании М. tuberculosis. Показано, что дендритные клети нагруженные антигеном, эффективно повышают количество IFN-у-продуцирующи клеток самостоятельно и еще более эффекгивно в ответ на антиген ESAT-6 по сравненш с исходной популяцией МНК. ДК, не нагруженные антигеном, также повышаю количество IFN-у-продуцируклцих клеток, однако, не происходит прирост
□ спонтанная пролиферация Ш ESAT-6 (1 мкг/мл) (
цитокинпродуцирующих клеток в ответ на антиген. Добавление рч1Ь-18 при культивировании ДК и МНК повышает количество IFN-y -продуцирующих клеток по сравнению с исходной фракцией МНК, при этом количество IFN-у-продуцирующих клеток значительно увеличивается в присутствии туберкулезного антигена ESAT-6 (Рис. 8). При сравнении количества IFN-у-продуцирующих клеток в популяции МНК, культивированных с ДК различной антигенной нагруженное™ показано, что антиген-активированные ДК не повышают достоверно уровень последующего иммунного ответа на антиген по сравнению с ДК, которым не представлялся используемый антиген. В присутствии IL-18 наблюдается достоверно большее количество IFN-у-продуцирующих клеток по сравнению с МНК, культивированными в присутствии ненагруженных антигеном ДК, и МНК, культивированных с антиген-активированными ДК без IL-18 (Рис.
Рис. 8. Влияние антиген-активированных ДК на количество IFN-y продуцирующих клеток в ответ на антиген ESAT-6 в культуре МНК пациентов, больных туберкулезом легких (п=16). Данные представлены в виде медианы и диапазона значений квартилей # - по сравнению с интактнымп МНК (как спонтанная, так и ESAT-6-стимулированная секреция).
I. нфМНК 2. нф MHK+1L-I8 3. нфМНК+ДК (без антигена)
4. нфМНК+ДК (ESA Т-6) 5. нфМНК+ДК (ESAT-6)+IL-18
Таким образом, совместное культивирование МНК и антиген-активированных ДК в присутствии 1L-18 приводит к увеличению количества IFN-у-продуцирующих клеток по сравнению с культивированием в отсутствии IL-18. При этом у больных туберкулезом не наблюдается достоверных различий между культивированием МНК с ДК различной антигенной нагрузки.
Влияние антиген-активированных ДК на продукцию IFN-y и IL-4 в культуре мононуклеарных клеток in vitro.
Для того, чтобы определить направленность иммунного ответа, возникающего под влиянием полученных дендритных клеток мы определяли концентрации IFN-y и оппозитного цитокина IL-4 в кондиционных средах активированных МНК больных туберкулезом в ответ на антиген ESAT-6. Культивирование мононуклеарных клеток с аутологичными ДК приводит к достоверно более высокому уровню как спонтанной продукции, так и продукции в ответ на ESAT-6 по сравнению с исходной популяцией МНК (рис.9).
с 2200 5 2000 = 1800 ä 1600 j 1400 - 1200 I 1000 g 800 £ 600 5 400 g 200 0
fiT* <-#-*->
<- ^ Ü ii <
1
□ спонтанная
IESAT-6
Рис. 9. Влиянь а и m и г e и активированных ДК i продукцию IF/V-y МН больных туберкулезе в ответ на антпг( ESAT-6 in vitro (п=10).
Данные представлен в виде медианы диапазона значена квартилей. # - различи достоверны п сравнению с группой нфМНК.
* - различия достоверны по сравнению с группой нфМНК+lL-lS (как спонтанная, так и ESAT-i стимулированная секреция).
1. нфМНК 2. нфМНК +IL-18 3. нфМНК+ДК (без антигена)
4. нфМНК+ДК(ESAT-6) 5. нфМНК+ДК(ESAT-6)+IL-l8
При культивировании МНК с антиген-активированными ДК наблюдается достоверно повышение секреции IFN-у по сравнению с продукцией цитокина, индуцируемо ненагружениыми антигеном ДК. При добавлении рч!Ь-18 при совместно культивировании МНК и ДК наблюдается максимальная секреция IFN-y, достоверн отличающаяся от продукции цитокина МНК, культивированными с ДК без IL-18. (Phi
9).
При определении содержания IL-4 в кондиционных средах МНК, предварительн активированных аутологичными ДК, в ответ на антиген ESAT-6 не выявлен достоверных различий в продукции Th-2 цитокина IL-4 в зависимости от нагруженност ДК антигеном и присутствия или отсутствия IL-18 (Рис. 10).
□ спонтанная
И ESAT-6
Рис. 10. Влияние антиге/ активированных ДК на продукцию Н 4 МНК больных туберкулезом ответ на антиген ESAT-6 in viti (п=10).
Данные представлены в виде медиан и диапазона значений квартилей.
1. нфМНК
2. нфМНК +IL-18
3. нфМНК+ДК (без антигена)
4. нфМНК+ДК (ESA Т-6)
5. нфМНК+ДК (ESAT-6)+lL-18
Таким образом, совместное культивирование МНК и антиген-активированных Д) приводит к увеличению уровня продукции №N-7 по сравнению с культивированием присутствии дендритных клеток, ненагруженных антигеном и не оказывае
достоверного влияния на продукцию Th2 цитокина IL-4 Под действием IL-18 добавленного при совместном культивировании антиген-активированных дендритных клеток и мононуклеарных клеток пациентов, больных туберкулезом наблюдается достоверное повышение уровня секретируемого IFN-y в ответ на специфический антиген ESAT-6, а продукция IL-4 не изменяется, что свидетельствует о влиянии IL-18 на формирование Т-клеточного ответа первого типа
Влияние антиген-активированных ДК па экспрессию перфорина мононуклеарными клетками in vitro
Пролиферативная активность и продукция IFN-y мононуклеарными клетками способствует реализации эффекгорных функций направленных на уничтожение инфицированных клеток Клеточно-опосредованная цитотоксичность является одним из механизмов лизиса зараженных макрофагов [Canaday, 2001] В связи с этим представлялось необходимым определить потенциальную цитотоксическую активность МНК после культивирования с антиген-стимулированными дендритными клетками Специфический антиген М tuberculosis ESAT-6 имеет в составе эпитопы, распознаваемые как CD 4+, так и CD 8+ Т-клетками [Cardoso, 2002], поэтому ДК, представляющие антиген ESAT-6, в равной мере будут способствовать появлению цитотоксических клеток В нашей работе мы исследовали цитотоксическую активность МНК по продукции ими внутриклеточного порообразующего белка перфорина, поскольку перфорин-гранзимный механизм считается более эффективным для лизиса макрофагов, зараженных М tuberculosis Экспрессия перфорина мононуклеарными клетками, предварительно культивированными с ДК, как нагруженными, так и ненагруженными антигеном, достоверно повышается по сравнению с интактными МНК При этом наблюдается достоверное повышение продукции перфорина МНК, культивированными в присутствии антиген-активированных ДК, по сравнению с МНК, культивированными с ДК, которым не представлялся антиген Добавление IL-18 при совместном культивировании дендритных и мононуклеарных клеток еще более выражено стимулирует проявление цитотоксической активности МНК по сравнению с ДК, которым не представлялся антиген, что может говорить о специфичности иммунного ответа При этом не наблюдается достоверного прироста перфорин-позитивных клеток в ответ на антиген ESAT-6, что может свидетельствовать о том, что применение нативного антигена in vitro не в полной мере стимулирует цитотоксическую активность МНК, но предполагает эффективную работу этого механизма in vivo или в ответ на цельные инфицированные клетки in vitro (Рис 11)
1 2 3 4 5
□ спонтанная секреция Q ESÄT-6 (1мкг/мл)
стимулированная секреция).
Рис. //. Влияние антига активированных ДК на ypoeei, экспрессии перфорина в ответ ь антиген ESAT-6 in vitro МН больных туберкулезом легки (п=8).
Данные представлены в вш медианы и диапазона значеш, квартилей.
# - различия достоверны п сравнению с группой нфМНК (ы спонтанная, так и ESAT- <
1. нфМНК 2. нфМНК+IL-1S З.нфМНК+ДК (без антигена)
4. нфМНК+ДК (ESA Т-6) 5. нфМНК+ДК (ESA T-6)+lL-18
Таким образом, показано, что совместное культивирование зрелых аутологичны ДК и нфМНК приводит к достоверному повышению содержания перфорин-позигивны клеток с потенциальной цитотоксической активностью. Применение рч1Ь-18 пр совместном культивировании нфМНК ПК и аутологичных активированных ДК н оказывает достоверного влияния на уровень экспрессии перфорина монокуклеарным клетками периферической крови
По результатам проделанной работы были сделаны следующие выводы.
ВЫВОДЫ
1. Используемые факторы дифференцировки ДК, такие как GM-CSF, IL-4 липополисахарид Е. coli, а также специфический антиген М. tuberculosis и стимулируют процессы апоптоза дендритных клеток, генерируемых в течение 4 часов из моноцитов периферической крови и не влияют на прохождение ДК п клеточному циклу.
2. Зрелые дендритные клетки больных туберкулезом легких, характеризуютс сниженным содержанием клеток с экспрессией HLA-DR+ и CD86+ и не отличаютс по содержанию клеток с фенотипом CD 83+ по сравнению с ДК здоровых доноров, также способны к захвату декстрана на ранних этапах созревания, чт свидетельствует о возможности генерации ДК при данной патологии в условия культивирования in vitro.
3. Повышение содержания IFN-y и отсутствие влияния на продукцию IL-4 в культур
мононуклеарных клеток больных туберкулезом под действием антиген-активированных ДК свидетельствует о способности зрелых аутологичных дендритных клеток сдвигать баланс Thl/Th2 в пользу формирования реакций ТЫ типа
4 Совместное культивирование мононуклеарных клеток больных туберкулезом со зрелыми аутологичными ДК в присутствии рекомбинантного человеческого IL-18 приводит к повышению количества IFN-у-продуцирующих клеток и уровня антиген-индуцированной продукции IFN-y мононуклеарными клетками по сравнению с культивированием в отсутствии IL-18, что свидетельствует об адъювантной роли IL-18 в развитии антиген-специфического иммунного ответа
5 Содержание лимфоцитов, экспрессирующих перфорин достоверно увеличивается при культивировании мононуклеарных клеток, предварительно стимулированных зрелыми антиген-активированными ДК, в присутствии специфического антигена М tuberculosis ESAT-6, что свидетельствует об индукции антиген-специфической цитотоксичности
6 Дендритные клетки, полученные из моноцитов периферической крови больных туберкулезом легких обладают характерными фенотипическими и функциональными свойствами данной популяции и способны модулировать антиген-специфический иммунный ответ т vitro как самостоятельно, так и в присутствии IL-18, путем усиления эффективности взаимодействия иммунокомпетентных клеток
Список работ, опубликованных по теме диссертации
1 Шевченко Ю А , Якушенко Е В , Сенников С В , Козлов В А Оценка специфического иммунного ответа на туберкулезный антиген ESAT-6 мононуклеарными клетками больных туберкулезом на основе технологии ELISPOT // Материалы ежегодной конкурс-конференции студентов и молодых ученых «Авиценна-2005» Новосибирск, 2005 стр 115
2 Шевченко ЮА, Якушенко ЕВ, Романов ВВ, Сенников СВ, Козлов В А Применение технологии ELISpot для оценки специфического иммунного ответа на туберкулезный антиген ESAT-6 мононуклеарными клетками больных туберкулезом // Цитокины и воспаление - 2005 -т 4, №2 - стр 103 Материалы Всероссийского научного симпозиума «Цитокины Стволовая клетка Иммунитет» Новосибирск 19-21 июня 2005г
3 Сенников С В, Жеребцова Н О, Хрипко О П, Шевченко Ю А , Якушенко Е В , Облеухова И А, Гончаров М А , Романов В В , Пронкина Н В , Кожевников В С, Сизиков А Э, Бровкина Г И, Толоконская Н П, Позднякова JIJI, Красильникова И В , Козлов В А Модуляция специфического
иммунного огвета аутологичными активированными дендритными клетками in vitro // Материал Московской международной конференции «Биотехнология и медицина», 14-17 марта 2006 - ст] 141
4 Якушенко Е В, Хрипко О П, Шевченко Ю А, Пронкина Н В, Красилышкова И В, Романс ВВ, Сенников СВ, Козлов В А Модуляция противоинфекцион-ного иммунного oriei аутологичными активированными дендритными клетками при гепагите и туберкулезе легких 1 vitro// Russian Journal of Immunology - 2006 - v 9, suppl 3 - p 138 Материалы Россингкс научно-практической конференции «Современные технологии в иммунологи! иммунодиагностика и иммунотерапия»
5 Шевчеш о Ю А, Хрипко О П, Якушенко Е В, Пронкина Н В, Кожевников В С, Романов В В Лаушкина Ж А, Тутов АА, Сенников СВ, Козлов В А Оптимизация протоколов получени антиген-активированных дендритных клеток дня стимуляции специфического иммунного ответ ш viti о при туберкулезе легких // Иммунология Урала.- 2006 - № 1 (5) -стр 181-182
6 ShevcherJco Y , Sennikov S, Laushkina J, Yakushenko E, Romanov V, Tugov A, Kozlov N Autologous dendritic cell for modulation of the specific antituberculosis immune response in vitro World Immune Regulation Meeting Final Programme and Abstracts p 143-144 11 - 15 April 200 Davos, S svitzerland
7 Шевченю Ю A, Сенников С В , Якушенко Е В , Лаушкина Ж А, Романов В В , Тутов А А Козлов В А Влияние аутологичных антиген-активированых дендритных клеток на формировани иммуннсго ответа т vitro при туберкулезе // Медицинская иммунология -,>007 - №2-3 - т 9 -1 253-254
8 ShevcherJco Y , Senmkov S V , Laushkina Z A , Yakushenko E V, Romanov V V , Tugov A A Kozlov \ A Modulation of the specific antituberculosis immune response in vino by means of antiger activated dendritic cells // 13th International Congress oflmmunology, Rio de Janeiro, Brazil, Aug 21-2' 2007 p 375-376
9 Шевченко Ю A , Якушенко E В, Лаушкина Ж A, Романов В В, Свистельиик А В , Сенников С В Козлов В А Аугологичные дендритные клетки как основа для модуляции специфическог противотуберкулезного клеточного иммунного ответа in vitro И Материалы III международно конференции «Фундаментальные науки - медицине» - Новосибирск 2-8 сентября 2007г - с 86
10 Шевченко Ю А, Якушенко Е В, Лаушкина Ж А , Романов В В, Свистельник А В , Сенников С В Козлов В А Индукция специфического противоинфекционного иммунного ответа с помощы аутологичных антиген-активированных дендритных клеток у пациентов, больных туберкулезом Омский научный вестник -2007-№ 3(61), приложение 2-с 142-144
11 Шевченко Ю А, Якушенко Е В, Сенников С В, Лаушкина Ж А, Романов В В, Свистельник А В Козлов В А Модуляция противотуберкулезного иммунного ответа ¡п vitro с помощью антиген активированных дендритных клеток // Проблемы туберкулеза и болезней легких -2008 - № 2 - с 33-35
Отпечатано в типографии Новосибирского государственного технического университета 630092, г Новосибирск, пр. К. Маркса, 20, тел./факс: (383) 346-08-57 формат 60 X 84/16, объем 1,25 п л., тираж 100 заказ №268 подписано в печать 09.07.08 г.
Оглавление диссертации Шевченко, Юлия Александровна :: 2008 :: Новосибирск
список сокращений. введение.
1. обзор литературы.
1.1. Функциональное состояние иммунной системы при туберкулезе.
1.2. Роль IL-18 в патогенезе туберкулеза.
1.3. Создание противотуберкулезных вакцин.
1.4. Общая характеристика дендритных клеток.
1.5. Роль дендритных клеток в патогенезе туберкулеза.
2. материалы и методы.
3. результаты собственных исследований.
3.1. Получение зрелых антиген-активированных дендритных клеток из моноцитов периферической крови.
3.2. Модуляция эффекторных функций мононуклеарных клеток с помощью зрелых антиген-активированных дендритных клеток.
3.2.1. Влияние антиген-активированных ДК на апоптоз и распределение мононуклеарных клеток по фазам клеточного цикла.
3.2.2. Влияние антиген-активированных ДК на пролиферативную активность мононуклеарных клеток in vitro.
3.2.3. Влияние антиген-активированных ДК на количество IFN-у-продуцирующих клеток в культуре мононуклеарных клеток in vitro.
3.2.4. Влияние антиген-активированных ДК на продукцию IFN-y и IL-4 в культуре мононуклеарных клеток in vitro.
3.2.5. Влияние антиген-активированных ДК на экспрессию перфорина мононуклеарными клетками in vitro.
Введение диссертации по теме "Аллергология и иммулология", Шевченко, Юлия Александровна, автореферат
Туберкулез относится к числу так называемых социальных болезней и характеризуется хроническим течением, многообразием клинических форм и поражением различных органов, главным образом дыхательной системы. К факторам риска заболевания относятся иммуносупрессивные заболевания, дефицит питания, стресс, социальные условия, а также генетическая предрасположенность, обусловленная дефектом генов костимуляторных молекул, цитокинов и их рецепторов [5]. Одним из основных механизмов патогенеза туберкулеза является нарушение клеточного иммунитета, осуществляемое по нескольким механизмам:
- длительная персистенция М. tuberculosis внутри антиген-презентирующих клеток, таких как макрофаги и ДК
- нарушение презентации антигена
- секреция иммуносупрессорных цитокинов и появление иммуносупрессорных Т-клеток
- повышение апоптоза Т-клеток и подавление апоптоза инфицированных макрофагов [3, 53].
В настоящее время развитие новых эффективных подходов к лечению инфекционных заболеваний связано с использованием собственных механизмов защиты организма и их возможной модуляции. Протективный иммунный ответ на М tuberculosis связан с индукцией эффекторных функций Т хелперов 1 типа, что в свою очередь зависит от представления им антигена и дифференцировки «наивных» Т-клеток, что осуществляется дендритными клетками как основными антиген-презентирующими клеточными элементами.
В патогенезе туберкулеза дендритные клетки наряду с макрофагами являются клетками-мишенями для М. tuberculosis. Инфицированные М tuberculosis дендритные клетки могут способствовать распространению заболевания и накапливаться в лимфоидных органах и грануломах инфицированных крыс и людей, что говорит об отсутствии или подавлении эффективных механизмов уничтожения М. tuberulosis и формировании ниш для долговременного выживания микобактерий в участке инфицирования [110]. В то же время дендритные клетки обладают уникальными механизмами захвата антигена и представления его наивным Т-клеткам, усиливают врождённый иммунитет, регулируют развитие специфического иммунного ответа, определяют направленность и активность иммунных реакций, поэтому их все чаще используют для иммунотерапии различных заболеваний [2]. Кроме того, показано, что ДК, полученные in vitro из моноцитов, культивированных с GM-CSF и IL-4, не поддерживают внутриклеточную репликацию М. tuberculosis в отличие от макрофагов, полученных из тех же самых моноцитов [168].
Эффективность иммунного ответа при бактериальной инфекции также зависит и от иммунорегуляторных факторов, непосредственно определяющих состояние иммунной системы в норме и при патологии, в частности IL-18. При микобактериальной инфекции IL-18 стимулирует продукцию IFN-y Т-клетками и NK-клетками, тем самым, способствуя активации макрофагов и уничтожению М fwberw/os/s-инфицированных клеток. Однако у пациентов, больных туберкулезом наблюдается значительное снижение продукции IL-18 и IFN-y. При этом в ряде работ отмечают роль IL-18 в дифференцировке наивных Т-клеток в Т-хелперы 1 типа вообще ив М. ¿ибеги/от-индуцированном синтезе цитокина 1-го типа IFN-y в частности [182].
Исходя из функциональной неполноценности дендритных клеток в патогенезе туберкулеза, а также роли дендритных клеток и IL-18 для реакций клеточного иммунитета, представлялось актуальным и значимым рассмотреть возможность стимуляции эффекторных функции мононуклеарных клеток периферической крови больных туберкулезом под действием зрелых аутологичных ДК и IL-18 in vitro.
Цель работы:
Изучить возможность модуляции антиген-специфического иммунного ответа с помощью аутологичных активированных дендритных клеток и интерлейкина-18 в культуре мононуклеарных клеток больных туберкулезом. В связи с поставленной целью предстояло решить следующие задачи:
1. Исследовать фенотипические и функциональные показатели дендритных клеток больных туберкулезом легких по сравнению с дендритными клетками здоровых доноров.
2. Исследовать особенности прохождения дендритных клеток по клеточному циклу в процессе генерации под действием используемых факторов дифференцировки.
3. Исследовать влияние антиген-специфических дендритных клеток и IL-18 на пролиферативную активность МНК в ответ на специфический антиген М. tuberculosis ESAT-6.
4. Исследовать влияние антиген-специфических дендритных клеток и IL-18 на количество IFN-у-продуцирующих клеток и продукцию IFN-y и IL-4 МНК в ответ на специфический антиген М. tuberculosis ESAT-6.
5. Исследовать влияние антиген-специфических дендритных клеток и IL-18 на экспрессию перфорина МНК в ответ на специфический антиген М. tuberculosis ESAT-6.
Научная новизна работы.
Установлено, что использование рч1Ь-18 при совместном культивировании мононуклеарных клеток со зрелыми аутологичными ДК приводит к максимальной стимуляции антиген-индуцированной продукции IFN-y, достоверному повышению содержания IFN-y -продуцирующих клеток по сравнению с МНК, культивированными с ДК в отсутствии IL-18.
Показана фенотипическая и функциональная состоятельность зрелых дендритных клеток, презентирующих специфический антиген М. tuberculosis ESAT-6, полученных из моноцитов периферической крови пациентов, больных туберкулезом легких при использовании модифицированного «короткого» 48 часового протокола.
Теоретическая и практическая значимость работы
Полученные результаты расширяют представления об иммунорегуляторном потенциале дендритных клеток моноцитарного происхождения при туберкулезе легких, демонстрируют возможность влияния цитокинов и антигенов на направленность противоинфекционного иммунного ответа, предполагают возможность использования антиген-активированных дендритных клеток, IL-18 и мононуклеарных клеток в качестве эффективного подхода к восстановлению специфического иммунного ответа in vivo у больных туберкулезом легких. Практическая значимость работы заключается в экспериментальном обосновании способа модуляции клеточного иммунного ответа в культуре МНК, который может быть основой новой клеточной технологии лечения туберкулеза.
Основные положения, выносимые на защиту
1. Зрелые аутологичные ДК стимулируют продукцию IFN-y и цитотоксического фактора перфорина мононуклеарными клетками пациентов, больных туберкулезом легких в ответ на специфический антиген ESAT-6.
2. Рекомбинантный человеческий IL-18 играет адъювантную роль в развитии антиген-специфического иммунного ответа при совместном культивировании зрелых аутологичных ДК и мононуклеарных клеток.
Апробация материалов диссертации
Материалы диссертации доложены и обсуждены на:
1. Ежегодной конкурс-конференции студентов и молодых ученых «Авиценна - 2005» Новосибирск, 2005
2. Московской международной конференции «Биотехнология и медицина» (Москва, 2006)
3. Российской научно-практической конференции «Современные технологии в иммунологии: иммунодиагностика и иммунотерапия» (Курск, 2006)
4. III Международная конференции "Фундаментальные науки -медицине" (Новосибирск, 2007)
5. Межрегиональной научно-практической конференции «Дни иммунологии в Сибири» (Омск, 2007)
6. Семинарах экспериментального отдела ГУ НИИ КИ СО РАМН (Новосибирск, 2006, 2007)
7. Объединенном иммунологическом форуме (Санкт-Петербург, 2008). Публикации
По теме диссертации опубликовано 11 работ, в том числе 1 статья в издании, рекомендованном ВАК.
Самостоятельность выполненной работы.
Результаты, представленные в данной работе, получены лично автором на базе лаборатории молекулярной иммунологии ГУ НИИ КИ СО РАМН и Центра коллективного пользования СО РАМН.
Большую признательность автор выражает научному руководителю работы профессору, д.м.н. C.B. Сенникову за подробное конструктивное 8 обсуждение полученных результатов, а также всем сотрудникам лаборатории молекулярной иммунологии за благожелательное отношение в ходе выполнения работы.
Большую признательность автор выражает сотрудникам лаборатории профессора, д.м.н. Кожевникова B.C. за доброжелательное отношение и помощь при получении данных с помощью прибора FACSCalibur, а также сотруднику Новосибирского НИИ туберкулеза к.м.н. Лаушкиной Ж.А. за помощь в формировании выборки пациентов, больных туберкулезом легких.
1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
Заключение диссертационного исследования на тему "Влияние антиген-активированных дендритных клеток на функциональные свойства мононуклеарных клеток периферической крови больных туберкулезом"
выводы
1. Используемые факторы дифференцировки ДК, такие как GM-CSF, IL-4 и липополисахарид Е. coli, а также специфический антиген М. tuberculosis не стимулируют процессы апоптоза дендритных клеток, генерируемых в течение 48 часов из моноцитов периферической крови и не влияют на прохождение ДК по клеточному циклу.
2. Зрелые дендритные клетки больных туберкулезом легких, характеризуются сниженным содержанием клеток с экспрессией HLA-DR+ и CD86+ и не отличаются по содержанию клеток с фенотипом CD 83+ по сравнению с ДК здоровых доноров, а также способны к захвату декстрана на ранних этапах созревания, что свидетельствует о возможности генерации ДК при данной патологии в условиях культивирования in vitro.
3. Повышение содержания IFN-y и отсутствие влияния на продукцию IL-4 в культуре мононуклеарных клеток больных туберкулезом под действием антиген-активированных ДК свидетельствует о способности зрелых аутологичных дендритных клеток сдвигать баланс Thl/Th2 в пользу формирования реакций Thl типа
4. Совместное культивирование мононуклеарных клеток больных туберкулезом со зрелыми аутологичными ДК в присутствии рекомбинантного человеческого IL-18 приводит к повышению количества IFN-у-продуцирующих клеток и уровня антиген-индуцированной продукции IFN-y мононуклеарными клетками по сравнению с культивированием в отсутствии IL-18, что свидетельствует об адъювантной роли IL-18 в развитии антиген-специфического иммунного ответа.
5. Содержание лимфоцитов, экспрессирующих перфорин достоверно увеличивается при культивировании мононуклеарных клеток, предварительно стимулированных зрелыми антиген-активированными ДК, в присутствии специфического антигена М. tuberculosis ESAT-6, что свидетельствует об индукции антиген-специфической цитотоксичности.
6. Дендритные клетки, полученные из моноцитов периферической крови больных туберкулезом легких обладают характерными фенотипическими и функциональными свойствами данной популяции и способны модулировать антиген-специфический иммунный ответ in vitro как самостоятельно, так и в присутствии IL-18, путем усиления эффективности взаимодействия иммунокомпетентных клеток.
Заключение
Обобщая результаты, можно заключить, что дендритные клетки, полученные из моноцитов периферической крови пациентов, больных туберкулезом легких обладают необходимыми функциональными и фенотипическими характеристиками в зависимости от стадии развития. Поверхностные маркеры и костимуляторные молекулы CD 83, CD 86, HLA-DR присутствуют на незрелых дендритных клетках и их содержание достоверно увеличивается при созревании. Дендритные клетки пациентов, больных туберкулезом характеризуются сниженной экспрессией молекул HLA-DR и CD86 по сравнению с клетками здоровых доноров, однако по экспрессии CD 83+ и CD 83+/HLA-DR+ ДК здоровых доноров и больных туберкулезом не отличаются, а содержание клеток с фенотипом CD 83+/CD 86+ достоверно выше у пациентов, больных туберкулезом легких, что может свидетельствовать о возможности генерации in vitro функционально полноценных ДК при данной патологии. Незрелые дендритные клетки характеризуются способностью к активному захвату антигена, при снижении этой способности при созревании дендритных клеток. Цитокины, используемые для дифференцировки дендритных клеток, антиген ESAT-6 и стимул терминальной дифференцировки LPS не оказывают цитотоксического эффекта на генерируемые клетки и не стимулируют процессы апоптоза и поддерживают клетки в состоянии дифференцировки.
При совместном культивировании зрелых аутологичных дендритных клеток и аутологчных мононуклеарных клеток пациентов, больных туберкулезом легких происходит эффективная активация эффекторных функций мононуклеарных клеток. Это проявляется в появлении пула активированных IFN-у-продуцирующих клеток, усилении продукции IFN-y и стимуляции антиген-стимулированной продукции перфорина в ответ на специфический антиген М. tuberulosis ESAT-6. Дендритные клетки, которым не представлялся антиген ESAT-6 актвируют механизмы неспецифической активации иммунокомпетентных клеток в ответ на специфический антиген ESAT-6. Использование рекомбинантного IL-18 приводит к повышению количества ESAT-6-стимулированных IFN-у-продуцирующих клеток и максимальной продукции IFN-y мононуклеарными клетками. Зрелые аутологичные ДК вне зависимости от антигенной нагруженности и присутствия IL-18 не стимулируют продукцию IL-4, что свидетельствует об эффективности применения ДК для индукции Thl иммунного ответа в ответ на специфический антиген М. tuberulosis ESAT-6. На основании полученных данных был разработан способ повышения эффективности антиген-специфического иммунного ответа in vitro путем усиления взаимодействия иммунокомпетентных клеток с помощью антиген-активированных аутологичных дендритных клеток и интерлейкина-18 в культуре мононуклеарных клеток.
Список использованной литературы по медицине, диссертация 2008 года, Шевченко, Юлия Александровна
1. Гантиевская Ю.А, Селявко В.В. Дендритные клетки: роль в системеиммунитета // Иммунопатология, аллергология, инфектология. 2001. -№ 4-р.5-23.
2. Кузнецова А.В., Данилова Т. И., Гладских О. П. и др. Дендритные клетки и их использование в иммунотерапии // Молекулярная медицина 2003-№ 3- С. 3-17.
3. Маянский А.Н. Туберкулез. (Микробиологические и иммунопатогенетические аспекты) //Иммунология. 2001. - № 2. - с. 5463.
4. Свирщевская Е.В., Митрофанов B.C., Шендерова Р.И., Чужова Н.М. Иммунитет при туберкулезе и аспергиллезе (обзор) //Проблемы медицинской микологии 2005. - Т.7, №1- С.3-13.
5. Урсов И.Г. Эпидемиология туберкулеза Новосибирск: Изд-во Института теплофизики СО РАН, 1997 - 104 с.
6. Чучалин А.Г. Новые данные иммунных реакций при туберкулезе // Русский медицинский журнал. 2004. - том 12, № 2- с. 88-91.
7. Abd El-Maged MS, Shoman SA, Al-Sherbieny MM, Barakat AB. Cell mediated responses to the mycobacterium tuberculosis specific ESAT-6 antigen in Egyptian tuberculosis patients // Egypt J Immunol. 2006. - Vol.13, № 1. - p. 131-40.
8. Adams S, O'Nell D.W., Bhardwaj N.Recent Advances in Dendritic Cell Biology // Journal of Clinical Immunology.-2005.-Vol. 25, №. 3. p 177-188.
9. Aderem A, Underhill D.M. Mechanisms of phagocytosis in macrophages // Annu Rev Immunol. 1999. - Vol. 17. - P. 593-623
10. Akgun M, Saglam L, Kaynar H, Yildirim AK et. al. Serum IL-18 levels in tuberculosis: Comparison with pneumonia, lung cancer and healthy controls // Respirology- 2005.- V. 10, № 3.- p. 295-9.
11. Akira S. The role of IL-18 in innate immunity //Curr Opin Immunol. 2000-V. 12, № l.-P. 59-63.
12. Algood HM, Chan J, Flynn JL. Chemokines and tuberculosis // Cytokine Growth Factor Rev. 2003. - Vol. 14. - p. 467-477.
13. Allen M.J., Laederach A., Reilly P.J., Mason R.J. Polysaccharide recognition by surfactant protein D: novel interactions of a C-type lectin with nonterminal glucosyl residues // Biochemistry. 2001. - Vol.40. - P.7789-7798.
14. Andersen P, Andersen AB, Sorensen AL, Nagai S. Recall of long-lived immunity to Mycobacterium tuberculosis infection in mice // J. Immunol. -1995.-№154.-p.3359-72
15. Andersen P. Host responses and antigens involved in protective immunity to Mycobacterium tuberculosis // Scand. J. Immunol. 1997 - Vol. 45.—p. 115—31.
16. Barnes PF, Wizel B. Type 1 cytokines and the pathogenesis of tuberculosis //Am J Respir Crit Care Med. 2000. -Vol.161, № 6. - p. 1773-4.
17. Belardelli F, Gresser I. The neglected role of type I interferon in the T-cell response: implications for its clinical use // Immunol Today. 1996. - Vol. 17. - p. 369-72.
18. Belkaid Y, Rouse BT. Natural regulatory T cells in infectious disease // Nat Immunol. 2005. - Vol. 6. - p. 353-360.
19. Bender, A., Sapp, M., Schuler, G., Steinman, R.M. Bhardwaj, N. Improved methods for the generation of dendritic cells from nonproliferating progenitors in human blood // J. Immunol. Methods. -1996. Vol. 196. -p. 121-135.
20. Biet F, Locht C, Kremer L. Immunoregulatory functions of interleukin 18 and its role in defense against bacterial pathogens // J Mol Med. 2002. - Vol. 80, № 3. - p. 147-62.
21. Biet F., Laurent Kremer L., Isabelle Wolowczuk I., Delacre M., Locht C. Mycobacterium bovis BCG Producing Interleukin-18 Increases Antigen-Specific Gamma Interferon Production in Mice //INFECTION AND IMMUNITY. 2002. - Vol. 70, №. 12. - p. 6549-6557
22. Bonecini-Almeida MG, Chitale S, Boutisakakis I et al. Induction of in vitro human macrophage anti-Mycobacterium tuberculosis activity: requirement for IFN-y and primed lymphocytes // J Immunol. 1998. - Vol. 160. - p. 4490-9.
23. Boom WH. The role of T-cell subsets in Mycobacterium tuberculosis infection // Infect Agents Dis. 1996. - Vol. 5. - p. 73-81.
24. Bottasso O., Bay M. L., Besedovsky H., del Rey A. The Immuno-endocrine Component in the Pathogenesis of Tuberculosis // Scandinavian Journal of Immunology. 2007. - Vol. 66. - p. 166-175
25. Bousso P, Robey E. Dynamics of CD8+T cell priming by dendritic cells in intact lymph nodes //Nat Immunol. 2003.- Vol.4.- P.579-585
26. Boyum A. Separation of leucocytes from blood and bone marrow // Scand J Clin Lab Invest. -1968. -V .21. -P. 97.
27. Brandt L, Oettinger T, Holm A, Andersen P. Key epitopes on the ESAT-6 antigen recognized in mice during the recall of protective immunity to Mycobacterium tuberculosis. // J Immunol. 1996. - №157. - p. 3527-33.
28. Brandt L., Elhay M., Rosenkrands I., Lindblad E. B., Andersen P. ESAT-6 subunit vaccination against Mycobacterium tuberculosis. // Infect. Immun. -2000. № 68. - p.791.
29. Brill, K. J., Li Q., Larkin R., Canaday D. H., et.al. Human natural killer cells mediate killing of intracellular Mycobacterium tuberculosis H37Rv via granule-independent mechanisms //Infect.Immun. 2001. - № 69. - 1755.
30. Britton W. J., Palendira U. Improving vaccines against tuberculosis // Immunology and Cell Biology. 2003. - № 81. - p. 34^15.
31. Buettner M, Meinken C, Bastian M, et.al. Inverse correlation of maturity and antibacterial activity in human dendritic cells // J Immunol. 2005. - Vol. 1, № 174 (7).-P. 4203-9.
32. Cameron LA, Taha RA, Tsicopoulos A, Kurimoto M, et. al. Airway epithelium expresses interleukin-18 // Eur Respir J. 1999 - Vol. 14, № 3. - p. 553-9
33. Canaday DH., Wilkinson R. J, Li Q. et.al CD4 (+) and CD8(+) T cells kill intracellular Mycobacterium tuberculosis by a perforin and Fas/Fas ligand-independent mechanism // J Immunol. 2001. - Vol. 167, № 5. - p. 2734-42
34. Cardoso FL, Antas PR, Milagres AS, Geluk A, et. al. T-cell responses to the Mycobacterium tuberculosis-specific antigen ESAT-6 in Brazilian tuberculosis patients // Infect Immun. 2002. - V. 70, № 12 - p. 6707-14.
35. Cella M., Scheidegger D., Palmer-Lehmann K., et. al. Ligation of CD40 on dendritic cells triggers production of high levels of interleukin-12 and enhances T cell stimulatory capacity: T-T help via APC activation //J. Exp. Med-1996.-Vol. 184.-p. 747.
36. Chen ZW. Immune regulation of gammadelta T cell responses in mycobacterial infections // Clin Immunol. 2005. - Vol. 116. - p. 202-207.
37. Chow A, Toomre D, Garrett W, Mellman I: Dendritic cell maturation triggers retrograde MHC class II transport from lysosomes to the plasma membrane //Nature. 2002. - Vol. 418. - P. 988-994.
38. Colditz, G. A., Berkey C. S., Mosteller F., et. al. The efficacy of bacillus Calmette-Guerin vaccination of newborns and infants in the prevention oftuberculosis: meta-analyses of the published literature // Pediatrics. 1995. -№ 96. - p.29-35
39. Cooper AM, Adams LB, Dalton DK, et.al IFN-gamma and NO in mycobacterial disease: new jobs for old hands // Trends Microbiol. 2002. -Vol. 10.-p. 221-226
40. Daniell H, Streatfield SJ, Wycoff K. Medical molecular farming: production of antibodies, biopharmaceuticals and edible vaccines in plants //Trends Plant Sci.- 2001. Vol. 6, № 5. - p. 219-26.
41. De Smedt T, Pajak B, Muraille E, Lespagnard L, Heinen E, De Baetselier P, Urbain J, Leo O, Moser M. Regulation of dendritic cell numbers and maturation by lipopolysaccharide in vivo // J Exp Med. -Vol. 184, № 4. P. 1413-24.
42. Degli-Esposti MA, Smyth MJ. Close encounters of different kinds: dendritic cells and NK cells take centre stage // Nat Rev Immunol. 2005. - Vol. 5, № 2. -P. 112-24.
43. Delia Bella S., Nicola S, Riva A, Biasin M, et. al. Functional repertoire of dendritic cells generated in granulocyte macrophage-colony stimulating factor and interferon-a // J. Leukocyte Biol. 2004. - V.75, № 1 - p. 106-16
44. Demangel C., Britton W. J. Interaction of dendritic cells with mycobacteria: Where the action starts //Immunology and Cell Biology. 2000. - № 78. - P. 318-324
45. Dhodakar M.V., Bhardwaj N. Active immunization of human with dendritic cells // J. Clin. Immunol. 2000. - Vol. 20, № 3. - P. 167-174
46. Doffmger R, Patel S, Kumararatne DS. Human immunodeficiencies that predispose to intracellular bacterial infections // Curr Opin Rheumatol. 2005. -Vol.17.-p. 440-446.
47. Doherty M. New vaccines against TB //Tropical Medicine and International Health.- 2004.- Vol. 9, № 7.- p 818-826
48. Fernando S. L, Britton W. J Genetic susceptibility to mycobacterial disease inhumans // Immunology and Cell Biology. -2006. V. 84 - p. 125-13798
49. Ferraz J.C., Melo F.B.S., Albuquerque M.F.P.M., et.al. Immune factors and immunoregulation in tuberculosis // Braz J Med Biol Res. 2006 -Vol.39, №11 -p. 1387-1397
50. Flynn JL, Goldstein MM, Triebold KJ, Koller B, Bloom BR. Major histocompatibility complex class I-restricted T cells are required for resistance to Mycobacterium tuberculosis infection // Proc Natl Acad Sci USA.- 1992. -Vol. 89.-p. 12013-12017.
51. Flynn JL. Immunology of tuberculosis and implications in vaccine development // Tuberculosis. 2004. - Vol. 84. - p. 93-101.
52. Garcia M, Vargas JA, Castejon R, Navas E, Durantez A. Flow-cytometric assessment of lymphocyte cytokine production in tuberculosis // Tuberculosis. -2002.-Vol. 82.-p. 37-41.
53. Geijtenbeek TB, Van Vliet SJ, Koppel EA, Sanchez-Hernandez M, Vandenbroucke-Grauls CM, Appelmelk B, Van Kooyk Y. Mycobacteria target DC-SIGN to suppress dendritic cell function. //J Exp Med. 2003. - V.6, № 197(1). -P.7-17.
54. Gett AV, Sallusto F, Lanzavecchia A, Geginat J: T cell fitness determined by signal strength // Nat Immunol. 2003. - Vol. 4. - P. 355-360
55. Goldfeld AE. Genetic susceptibility to pulmonary tuberculosis in Cambodia // Tuberculosis. 2004. - Vol. 84. - p. 76-81.
56. Grade JA, Robertson SE, Mclnnes IB. Interleukin-18 // J Leukoc Biol. 2003. -Vol. 73, №2-p. 213-24
57. Gordon SV, Brosch R, Billault A et al. Identification of variable regions in the genomes of tubercle bacilli using bacterial artificial chromosome arrays. // Mol. Microbiol. 1999. -№32. -p.643-55.
58. Green EA, Gorelik L, McGregor CM, Tran EH, Flavell RA. CD4+ CD25+ T regulatory cells control anti-islet CD8+ T cells through TGF-beta-TGF-beta receptor interactions in type 1 diabetes // Proc Natl Acad Sei USA.- 2003. -Vol. 100.-p. 10878-10883.
59. Grotzke JE, Lewinsohn DM. Role of CD8+ T lymphocytes in control of Mycobacterium tuberculosis infection // Microbes Infect. 2005. - Vol. 7. - p. 776-788.
60. Gu Y, Kuida K, Tsutsui H et al. Activation of interferon-gamma inducing factor mediated by interleukin-lbeta converting enzyme // Science. 1997. -Vol. 275, №. 5297.-p. 206-9.
61. Guler R, Olleros ML, Vesin D, Parapanov R, Garcia I. Differential effects of total and partial neutralization of tumor necrosis factor on cell-mediated immunity to Mycobacterium bovis BCG infection // Infect Immun. 2005. -Vol.73, №6.-p. 3668-76.
62. Gutierrez MG, Master SS, Singh SB, Taylor GA, Colombo MI, Deretic V. Autophagy is a defense mechanism inhibiting BCG and Mycobacterium tuberculosis survival in infected macrophages // Cell. 2004. - Vol. 119. - p. 753-766.
63. Guyot-Revol V, Innes JA, Hackforth S, Hinks T, Lalvani A. Regulatory T cells are expanded in blood and disease sites in patients with tuberculosis // Am J Respir Crit Care Med. 2006. - Vol.173. - p. 803-810.
64. Hanekom W. A., Mendillo M., Manca C., Haslett P. A. J. et.al Mycobacterium tuberculosis Inhibits Maturation of Human Monocyte-Derived Dendritic Cells In Vitro // J Infect Dis. 2003.- Vol. 188, № 2. - p. 257-66.
65. Hauber HP, Beyer IS, Meyer A, Pforte A. Interleukin-18 expression in BAL cells of sarcoidosis patients is decreased in vivo but protein secretion is not impaired in vitro //Respir Med. 2003. - Vol. 97, № 5. - p. 521-7.
66. Henao MI, Monies C, Paris SC, Garcia LF. Cytokine gene polymorphisms in Colombian patients with different clinical presentations of tuberculosis // Tuberculosis. 2006. - Vol. 86. - p. 11-19.
67. Henderson RA, Watkins SC, Flynn JL. Activation of human dendritic cells following infection with Mycobacterium tuberculosis // J. Immunol-1997-Vol. 159-p.63 5-43.
68. Hernandez-Fuentes M. P., Warrens A. N., Lechler R. I., Immunologic monitoring // Immunological Reviews 2003. - Vol. 196. -p. 247-264.
69. Hickman S. P., Chan J., Salgame P. Mycobacterium tuberculosis induces differential cytokine production from dendritic cells and macrophages with divergent effects on naive T cell polarization // J. Immunol. -2002. Vol. 168. -p. 4636-42
70. Hirsch C. S., Johnson J. L. Okwera A., et. al. Mechanisms of Apoptosis of T-Cells in Human Tuberculosis // Journal of Clinical Immunology. 2005. - Vol. 25, №. 4.
71. Hirsch CS, Toossi Z, Johnson JL, et. al. Augmentation of apoptosis and interferon-gamma production at sites of active mycobacterium tuberculosis infection in human tuberculosis // J Infect Dis. 2001. - Vol. 1183. - p. 779788.
72. Hirsch, C.S., Toossi, Z., Othieno, C., et. al. Depressed T cell interferon-gamma responses in pulmonary tuberculosis: analysis of underlying mechanisms and modulation with therapyn // J. Infect. Dis. 1999. - V. 180 - p. 2069-2073
73. Ho C., Munster S. D., Pyke C. M., Hart D. N., Lopez J. A. Spontaneous generation and survival of blood dendritic cells in mononuclear cell culture without exogenous cytokines // Blood. 2002. - Vol. 99, № 8. - P. 2897-904.
74. Ho LP, Davis M, Denison A, Wood FT, Greening AP.Reduced interleukin-18 levels in BAL specimens from patients with asthma compared to patients with sarcoidosis and healthy control subjects // Chest. 2002. -Vol. 121. № 5. - p. 421-6.
75. Hoshino T, Kawase Y, Okamoto M, et. al. Cutting edge: IL-18-transgenic mice: in vivo evidence of a broad role for IL-18 in modulating immune function // J Immunol.- 2001. Vol. 166, № 12. - p.7014-8.
76. Hoshino T., Wiltrout R. H., Young H. A. IL-18 is a potent coinducer of IL-13 in NK and T cells: a new potential role for IL-18 in modulating the immune response //.J. Immunol. 1999. - Vol. 162, № 9. - p. 5070-7.
77. Hoshino T., Winkler-Pickett R. T., Mason A. T., Ortaldo J. R., Young. H. A. IL-13 production by NK cells: IL-13 producing NK and T cells are present in vivo in the absence of IFN-g // J. Immunol. 1999. - Vol. 162, № 9. - p. 51-9.
78. Hunt DW, Huppertz HI, Jiang HJ, Petty RE Studies of human cord blood dendritic cells: evidence for functional immaturity // Blood. 1994. - Vol. 84, № 12.-p. 4333-43;
79. Jiao X., Lo-Man R., Guermonprez P., Fiette L.et. al. Dendritic cells are host cells for mycobacteria in vivo that trigger innate and acquired immunity. J Immunol. 2002. - Vol. 168, № 3. - p. 1294-301
80. Jo EK, Park JK, Dockrell HM. Dynamics of cytokine generation in patients with active pulmonary tuberculosis // Curr Opin Infect Dis. 2003. - Vol. 16, № 3. - p. 205-10.
81. Kampmann B., Tena G. N., Mzazi S., et.al. Novel Human In Vitro System for Evaluating Antimycobacterial Vaccines // INFECTION AND IMMUNITY. -2004,- Vol. 72, № 11. p. 6401-6407
82. Kaser A., Käser S., Kaneider N. C., Enrich B., et. al. Interleukin-18 attracts plasmacytoid dendritic cells (DC2s) and promotes Thl induction by DC2 sthrough IL-18 receptor expression // Blood. 2004. - V. 103, № 2 - p. 64855.
83. Kato M., Neil TK, Fearnley DB, McLellan AD et.al. Expression of multilectin receptors and comparative FITC-dextran uptake by human dendritic cell // Int. Immunol.-2000.-№ 11.— p. 1511-1519
84. Kaufmann S. H. E. New issues in tuberculosis // Ann Rheum Dis. 2004. - № 63 (Suppl II). - p. 50-56.
85. Kinjo Y, Kawakami K, Uezu K, Yara S, et. al. Contribution of IL-18 to Thl response and host defense against infection by Mycobacterium tuberculosis: a comparative study with IL-12p40 //J Immunol. 2002. - Vol. 169, № 1. - p. 323-9.
86. Kitching AR, Tipping PG, Kurimoto M, Holdsworth SR. IL-18 has IL-12-independent effects in delayed-type hypersensitivity: studies in cell-mediated crescentic glomerulonephritis // J Immunol. -2000. Vol. 165, № 8. - p. 464957.
87. Klein SA, Ottmann OG, Ballas K, Dobmeyer TS, et. al. Quantification of human interleukin 18 mRNA expression by competitive reverse transcriptase polymerase chain reaction //Cytokine. 1999. -Vol.11, № 6. p. 451-8.
88. Lasco TM, Cassone L, Kamohara H, Yoshimura T, McMurray DN. Evaluating the role of tumor necrosis factor-alpha in experimental pulmonary tuberculosis in the guinea pig // Tuberculosis. 2005. - Vol. 85. - p. 245-258
89. Li J., M. Lamine Mbow, Sun L., Li L., Yang G., et.al. Induction of dendritic cell maturation by IL-18 // Cellular Immunology. 2004. - № 227. - p. 103— 108
90. Lienhardt C, Azzurri A, Amedei A, Fielding K, Sillah J, Sow OY, et al. Active tuberculosis in Africa is associated with reduced Thl and increased Th2 activity in vivo // Eur J Immunol. 2002. - Vol. 32. - p. 1605-161
91. Lipscomb M. F., Masten B. J. Dendritic cells: immune regulators in health and disease // Physiol Rev.- 2002.- Vol. 82. p. 97-130 )
92. Liu YJ. Dendritic cell subsets and lineages, and their functions ininnate and adaptive immunity // Cell. 2001. - Vol. 106. - P. 259-62
93. Lugo-Villarino G., Maldonado-Lopez R., Possemato R., Penaranda C., Glimcher LH: T-bet is required for optimal production of IFN-gamma and antigen-specific T cell activation by dendritic cells // Proc Nat Acad Sci USA. -2003.-Vol. 100.-P. 7749-7754
94. MacMicking JD, Taylor GA, McKinney JD. Immune control of tuberculosis by IFN-gamma-inducible LRG-47 // Science. 2003. - Vol. 302. - p. 654659.
95. Maerten P, Shen C, Bullens DM, et al. Effects of interleukin 4 on CD25+CD4+ regulatory T cell function // J Autoimmun.- 2005,- Vol. 25-p.l 12-120.
96. Malyguine A., Strobl S. L, Shafer-Weaver K. A, Ulderich T., et. al. A modified human ELISPOT assay to detect specific responses to primary tumor cell targets // Journal of Translational Medicine. -2004 Vol. 2, № 9.
97. Marino S, Pawar S, Fuller CL, Reinhart TA, Flynn JL, Kirschner DE. Dendritic cell trafficking and antigen presentation in the human immune response to Mycobacterium tuberculosis // J Immunol. 2004. - V.l, №173(1). - P.494-506.
98. Marten A., Greten T., Ziske C., Renoth S. et.al Generation of activated and antigen-specific T cells with cytotoxic activity after co-culture with dendritic cells // Cancer Immunol Immunother. -2002. V. 51 - p. 25-32
99. McKenna K, Beignon AS, Bhardwaj N: Plasmacytoid dendritic cells: Linking innate and adaptive immunity // J Virol 2005 - Vol. 79 , № 1. - P. 17-27
100. Mempel TR, Henrickson SE, Von Andrian UH: T-cell priming by dendritic cells in lymph nodes occurs in three distinct phases //Nature 2004- Vol.427— 154-159
101. Mustafa AS, Oftung F, Amoudy HA, et.al. Multiple epitopes from the Mycobacterium tuberculosis ESAT-6 antigen are recognized by antigen-specific human T cell lines. // Clin Infect Dis 2000. - № 30 Suppl 3. - p.201-5.
102. Nakanishi K, Yoshimoto T, Tsutsui H, Okamura H. Interleukin-18 regulates both Thl and Th2 responses // Annu Rev Immunol. 2001. - V. 19 - p. 423474.
103. Ngo VN, Korner H, Gunn MD, et. al. Lymphotoxin alpha/beta and tumor necrosis factor are required for stromal cell expression of homing chemokines in B and T cell areas of the spleen // J Exp Med. 1999. -Vol. 189, № 2. - p. 403-12.
104. Nicod L. P. Immunology of tuberculosis //Swiss Medical Weekly. 2007. -Vol. 137.-p. 357-362
105. North RJ. Mice incapable of making IL-4 or IL-10 display normal resistance to infection with Mycobacterium tuberculosis // Clin Exp Immunol. -1998.-Vol. 113.-p. 55-58.
106. Obermaier B, Dauer M, Herten J, Schad K, Endres S, Eigler A. Development of a new protocol for 2-day generation of mature dendritic cells from human monocytes // Biol Proced Online. 2003. - Vol. 5 - P. 197-203.
107. Okamura H, Nagata K, Komatsu T, Tanimoto T, et. al. A novel costimulatory factor for gamma interferon induction found in the livers of mice causes endotoxic shock //Infect Immun-1995. V.63, № 10. - p. 3966-72.
108. Okamura H, Tsutsi H, Komatsu T, Yutsudo M, Hakura A, Tanimoto T, Torigoe K, Okura T, Nukada Y, Hattori K, et al.Cloning of a new cytokine thatinduces IFN-gamma production by T cells //Nature.- 1995 V. 378, № 6552. -p. 88-91.
109. Olsen AW, van Pinxteren LAH, Okkels LM, Rasmussen PB, Andersen P. Protection of mice with a tuberculosis subunit vaccine based on a fusion protein of antigen 85B and ESAT-6. // Infect. Immun. 2001. - № 69. - p. 2773 - 8.
110. Olsen, A. W., Hansen P. R., Holm A., Andersen P. 2000. Efficient protection against Mycobacterium tuberculosis by vaccination with a single subdominant epitope from the ESAT-6 antigen // Eur. J. Immunol. № 30. -p. 1724.
111. Ottenhoff TH, Verreck FA, Hoeve MA, van de Vosse E. Control of human host immunity to mycobacteria //Tuberculosis. 2005. -№85.-p.53- 64.
112. Palendira U, Bean AGD, Feng CG, Britton WJ. Lymphocyte recruitment and protective efficacy against pulmonary mycobacterial infection are independent of the route of prior Mycobacterium bovis BCG immunization // Infect. Immun. -2002. -№70. p. 1410-16.
113. Pechkovsky DV., Goldmann T, Vollmer E, et.al. Interleukin-18expression byalveolar epithelial cells typell in tuberculosisandsarcoidosis //FEMS1.munology & Medical Microbiology. 2006. -Vol. 46. - p. 30 - 38
114. Pieters J, Gatfield J. Hijacking the host: survival of pathogenic mycobacteria inside macrophages // Trends Microbiol. 2002. - Vol. 10, №3 - p. 142-6.
115. Pieters J. Entry and survival of pathogenic mycobacteria in macrophages //Microbes Infect. 2001. - Vol.3, №3 - p. 249-55.
116. Quesniaux V, Fremond C, Jacobs M, Parida S, Nicolle D, Yeremeev V, et al. Toll-like receptor pathways in the immune responses to mycobacteria // Microbes Infect.- 2004. Vol. 6 - p. 946-959.
117. Radvanyi LG, Banerjee A, Weir M, Messner H. Low Levels of Interferon-a Induce CD86 (B7.2) Expression and Accelerates Dendritic Cell Maturation from Human Peripheral Blood Mononuclear Cells // Scand J Immunol 1999. -Vol. 50. P. 499-509
118. Raja A. Immunology of tuberculosis // Indian J Med Res. 2004. - Vol.120. -P. 213-232.
119. Rajeswari D. N., Selvaraj P., Jawahar M.S., Adhilakshmi A.Ret.al. Elevated percentage of perforin positive cells in active pulmonary tuberculosis // Indian J Med Res. -2006. -V. 123. -p 687-690
120. Randolph G. J., Beaulieu S., Lebecque S., Steinman R. M., Muller W. A. Differentiation of monocytes into dendritic cells in a model of transendothelial trafficking //Science. 1998. - Vol. 282, № 5388,- P. 480-3.
121. Ravn P., Demissie A., Eguale Т., et. al. Human T Cell Responses to the ESAT-6 Antigen from Mycobacterium tuberculosis // The Journal of Infectious Diseases. 1999. -№ 179. -p.637-45
122. Relloso M, Puig-Kroger A, Pello OM, et al. DC-SIGN (CD209) expression is IL-4 dependent and is negatively regulated by IFN, TGF-beta, and antiinflammatory agents // J Immunol 2002 - Vol. 168, № 6.- P. 2634-43.
123. Ribeiro-Rodrigues R, Resende CT, Rojas R, Toossi Z, Dietze R, Boom WH, et al. A role for CD4+CD25+ T cells in regulation of the immune response during human tuberculosis // Clin Exp Immunol. 2006. - Vol. 144. - p. 2534.
124. Richter LJ, Thanavala Y, Arntzen CJ, Mason HS. Production of hepatitis B surface antigen in transgenic plants for oral immunization //Nat Biotechnol. 2000.-Vol.18, № 11.-p. 1167-71.
125. Roach DR, Briscoe H, Saunders B, France MP, Riminton S, Britton WJ. Secreted lymphotoxin-alpha is essential for the control of an intracellular bacterial infection // J Exp Med. 2001. - Vol. 193. - 239-246
126. Robertson MJ, Mier JW, Logan T, Atkins M, et. al. Clinical and biological effects of recombinant human interleukin-18 administered by intravenous infusion to patients with advanced cancer // Clin Cancer Res 2006 - Vol.12. № 14. Pt 1. - p. 4265-73.
127. Romani N., Reider D., Heuer M., Ebner S., et al. Generation of mature dendritic cells from human blood. An improved method with special regard to clinical applicability // J. Immunol. Methods.- 1996,-Vol. 196.-P. 137-151.
128. Rook GA, Hernandez-Pando R, Dheda K, Teng SG. IL-4 in tuberculosis: implications for vaccine design // Trends Immunol. 2004. - Vol. 25. - p. 483488.
129. Russell CS, Clarke LA. Recombinant proteins for genetic disease // Clin Genet. 1999. - Vol.55, № 6. - p. 389-94.
130. Salgame P. Host innate and Thl responses and the bacterial factors that control Mycobacterium tuberculosis infection //Curr Opin Immunol. 2005. -Vol. 17-p. 374-380.
131. Samten B., Thomas E. K. Gong J., Barnes P. F. Depressed CD40 Ligand Expression Contributes to Reduced Gamma Interferon Production in Human Tuberculosis // INFECTION AND IMMUNITY. 2000. - Vol. 68, №. 5. - p. 3002-3006.
132. Santini SM, Di Pucchio T, Lapenta C, Parlato S, et al. A new type IIFN-mediated pathway for the rapid differentiation of monocytes into highly active dendritic cells // Stem Cells.- 2003.- Vol. 21, № 3,- P. 357-62.
133. Schulz A, Bauer G: Synergistic action between tumor necrosis factor-alpha and transforming growth factor type-beta: Consequences for natural antitumor mechanisms // Anticancer Res. 2000. - Vol.20. - p. 3443-3448.
134. Shams H., Wizel B., Weis S.E., Samten B., Barnes, P.F. Contribution of CD8+ T cells to gamma interferon production in human tuberculosis // Infect. Immun. -2001. -V. 69 p. 3497-3501
135. Shigehara K, Shijubo N, Ohmichi M, Yamada G, et. a Increased levels of interleukin-18 in patients with pulmonary sarcoidosis. //Am J Respir Crit Care Med. 2000. - Vol.162, № 5. - p. 1979-82.
136. Skoberne M, Beignon AS, Bhardwaj N: Danger signals: A time and space continuum // Trends Mol Med.- 2004.- Vol. 10.- P. 251-257
137. Smith I. Mycobacterium tuberculosis Pathogenesis and Molecular Determinants of Virulence. // CLINICAL MICROBIOLOGY REVIEWS. -2003. Vol. 16, №3. - p. 463^96.
138. Song CH, Lee JS, Nam HH, Kim JM, et. al. IL-18 production in human pulmonary and pleural tuberculosis.//Scand J Immunol 2002 - V.56, №6-P.611-8.
139. Sorensen AL, Nagai S, Houen G, Andersen P, Andersen AB. Purification and characterization of a low-molecular-mass T-cell antigen secreted by Mycobacterium tuberculosis // Infect Immun. 1995. - №63. - p. 1710-7.
140. Stenger S, Mazzaccaro RJ, Uyemura K, et. al. Differential effects of cytolytic T cell subsets on intracellular infection // Science. -1997. V. 276, № 5319.-p. 1684-7.
141. Stenger S. Immunological control of tuberculosis: role of tumour necrosis factor and more //Ann Rheum Dis. 2005,- Vol.64. - p.24-28
142. Stober D, Schirmbeck R, Reimann J. IL-12/IL-18-dependent IFN-gamma release by murine dendritic cells. //J Immunol. -2001. -Vol.167, № 2. p. 95765.
143. Stoll S, Delon J, Brotz TM, Germain RN. Dynamic imaging of T cell-dendritic cell interactions in lymph nodes // Science. 2002. - Vol. 296. -P.1873-1876
144. Sugawara I, Yamada H, Kaneko H, Mizuno S, Takeda K, Akira S. Role of interleukin-18 (IL—18) in mycobacterial infection in IL-18-gene-disraptedmice //Infect Immun. 1999. - V.67, № 5. - p. 2585-9.115
145. Sugawara I., Yamada H., Shi R. Pulmonary tuberculosis in various gene knockout mice with special emphasis on roles of cytokines and transcription factors // Current Respiratory Medicine Reviews. 2005. - V.l. - p. 7-13
146. Tailleux L, Neyrolles O, Honore-Bouakline S, et. al. Constrained intracellular survival of Mycobacterium tuberculosis in human dendritic cells //J Immunol.-2003.-V.l 5, № 170(4). P. - 1939-48.
147. Takeda K, Tsutsui H, Yoshimoto T, Adachi O, et. al. Defective NK cell activity and Thl response in IL-18-deficient mice // Immunity. 1998. -Vol.8, № 3. - p. 383-90
148. Talreja J., Bhatngar A., Jindal S. K., Ganguly N. K. Influence of Mycobacterium tuberculosis on differential activation of helper T-cells // Clin Exp Immunol. 2003. - Vol. 131. - p. 292-298
149. Tascon R. E., C. Soares S., Ragno S., Stavropoulos E., Hirst E. M. A., Colston M. J. Mycobacterium tuberculosis-activated dendritic cells induce protective immunity in mice //Immunology. 2000. - № 99. - P. 473-480.
150. Trinchieri, G., Pflanz, S., Kastelein, R. A. The IL-12 family of heterodimeric cytokines: new players in the regulation of T cell responses // Immunity. 2003. - Vol.19, № 5. - p. 641-4.
151. Tsutsui H, Nakanishi K, Matsui K, Higashino K, et. al. IFN-gamma-inducing factor up-regulates Fas ligand-mediated cytotoxic activity of murine natural killer cell clones //J Immunol. 1996. - Vol.157, № 9. - p. 3967-73.
152. Ulrichs T, Moody DB, Grant E, Kaufmann SH, Porcelli SA. T-Cell Responses to CDl-Presented Lipid Antigens in Humans with Mycobacterium tuberculosis Infection // Infect Immun 2003 - Vol.71, № 6. - p. 3076-87.
153. Vankayalapati R, Wizel B, Weis SE, Samten B, Girard WM, Barnes PF. Production of Interleukin-18 in Human Tuberculosis //The Journal of Infectious Diseases. 2000. -Vol. 182. - p.234-9
154. Verdijk RM, Mutis T, Esendam B, Kamp J, et al. Polyriboinosinic polyribocytidylic acid (poly(I:C)) induces stable maturation of functionally active human dendritic cells // J Immunol 1999 - Vol.163.- P. 57-61
155. Vidal-Vanaclocha F, Fantuzzi G, Mendoza L, et.al. IL—18 regulates IL-1 beta-dependent hepatic melanoma metastasis via vascular cell adhesion molecule-1 //Proc Natl Acad Sei U S A.- 2000. Vol. 97, № 2. - p. 734-9.
156. Wahl L.M., Smith, P.D. "Isolation of monocyte/macrophage populations", In: Coligan, J.E., Kruisbeek, A.M., Margulies, D.H., Shevach, E.M. and Strober, W., eds, Current Protocols in Immunology (John Wiley and Sons, New York).- 1995.-pp 7.6.1-7.6.7
157. Wallis RS, Broder MS, Wong JY, Hanson ME, Beenhouwer DO. Granulomatous infectious diseases associated with tumor necrosis factor antagonists // Clin Infect Dis. 2004. - № 38. - p. 1261-1265.
158. Wang J, Guan E, Roderiquez G., Norcross M.A: Synergistic induction of apoptosis in primary CD4(+) T cells by macrophage-tropic HIV-1 and TGF-betal // J Immunol. 2001. - №167. - p. 3360-3366,.
159. Wang, J., Xing Z. Tuberculosis vaccines: the past, present and future. // Expert Rev. Vaccines. 2002- №1. - p.341-354.
160. Weissman D, Li Y, Ananworanich J, Zhou LJ, et al. // Proc Natl Acad Sci U S A. 1995.- Vol. 92, № 3.- P. 826-30
161. Winau F, Weber S, Sad S, de Diego J, Hoops SL, Breiden B, et al. Apoptotic vesicles crossprime CD8 T cells and protect against tuberculosis // Immunity. -2006.-№24.-p. 105-117.
162. Worku S., Hoft D. F. Differential Effects of Control and Antigen-Specific T Cells on Intracellular Mycobacterial Growth // INFECTION AND IMMUNITY. -2003. -V. 71, №. 4. p. 1763-1773
163. Yamada G, Shijubo N, Shigehara K, Okamura H, Kurimoto M, Abe S. Increased Levels of Circulating Interleukin-18 in Patients with Advanced Tuberculosis // Am J Respir Crit Care Med. 2000. - Vol.161, № 6. - p. 17869.
164. Zang X, Loke P, Kim J, Murphy K, Waitz R, Allison JP: B7x: A widely expressed B7 family member that inhibits T cell activation // Proc Natl Acad Sci USA. 2003. - Vol.100.- P. 10388-10392
165. Zhou LJ., Tedder TF: CD14+ blood monocytes can differentiate into functionally mature CD83+ dendritic cells // Proc Natl Acad Sci USA.- 1996. -№93.-P. 2588-92.