Автореферат диссертации по медицине на тему Роль дисфункции мейбомиевых желез в патогенезе развития роговичных поражений при синдроме сухого глаза
На правах рукописи
Миронкова Елена Александровна
Роль дисфункции мейбомиевых желез в патогенезе развития роговичных поражений при синдроме сухого глаза
14 00 08 - глазные болезни
Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата медицинских наук
ШИШИ!
Москва - 2008
Работа выполнена в ФГУ « Московский научно-исследовательский институт глазных болезней им Гельмгольца Росмедгехнологий » (директор института- Заслуженный деятель науки РФ, докт мед наук, профессор В В Нероев)
Научный руководитель -
Заслуженный деятель науки РФ, доктор медицинских наук, профессор
Официальные оппоненты"
Доктор медицинских наук, профессор Доктор медицинских наук, профессор
ЮФМайчук
НВ.Душин Л Т Архипова
Ведущая организация: ФГУ «МНТК «Микрохирургия глаза» имени акад С Н Федорова Росмедгехнологий»
Защита состоится « 11 » марта 2008 года в 14 часов на заседании диссертационного совета Д 208 042 01 при ФГУ «МННИ глазных болезней имени Гельмгольца Росмедгехнологий» (105062, Москва ул Садовая-Черногрязская, 14/19)
С диссертацией можно ознакомиться в научной библиотеке
ФГУ «МНИИ глазных болезней имени Гельмгольца Росмедгехнологий»
Автореферат разослан «_» февраля 2008 года
Ученый секретарь диссертационного совета,
доктор медицинских наук, профессор МБ Кодзов
ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ Актуальность проблемы
В последние годы в литературе накопился обширный материал, посвященный изучению синдрома сухого глаза (ССГ) Эта проблема становится все более актуальной в связи с увеличением этиологических факторов, вызывающих данное заболевание (компьютерной техники, кондиционеров, способствующих развитию так называемого «глазного офисного и мониторного» синдрома) (Бржевский В В, Сомов Е Е 2002, 2004) Распространенность ССГ год от года имеет тенденцию к росту, как в нашей стране, так и за рубежом, где изучению данной патологии уделяется большое внимание (Mathers WD 2000, Sullivan B.D 2001; Pflugfelder S С, Solomon А, 2002, Gilbard JP 2005, Tsubota К, 2006) ССГ включает в себя комплекс признаков роговично-конъюнктивального ксероза, патогенетически обусловленного длительным нарушением стабильности слезной пленки Прекорнеальная слезная пленка, являясь первым барьером и благодаря своим бактерицидным свойствам, выполняя защитную функцию, предохраняется от испарения тонким слоем липидов, секретируемых мейбомиевыми железами В литературе ССГ, связанный с дисфункцией мейбомиевых желез (ДМЖ) определяется как блефароконъюнктивальная форма ССГ (Полунин Г С 2003) или ССГ с повышенной испаряемостью слезы (Kaufman H 1995) Диагностика ДМЖ не представляет трудностей, однако четкой классификации, которая бы полностью отражала глубину и характер патологического процесса, нет
В целом проблема дисфункции мейбомиевых желез (ДМЖ) до настоящего времени недостаточно изучена, а в аспекте ССГ и связанных с ним изменений роговицы практически не исследовались Остается нераскрытой взаимосвязь состояния эпителия роговицы при ССГ и изменения функциональной активности мейбомиевых желез при их вовлечении в воспалительный процесс век
t
з \
Определенную роль в течении заболевания и развитии осложнений, могут играть нарушения иммунитета, отмечающиеся у больных с ССГ (Baudoin С, Haouat N 1992, Майчук Д Ю 2006 ), однако, целенаправленное исследование их роли в формировании роговичной патологии, ассоциированной с ДМЖ, не проводилось Основным методом лечения ССГ являются слезозамещающие препараты, но они не содержат компонента для восстановления лшщцного слоя слезной пленки Желаемый эффект достигается далеко не во всех случаях, так как данные препараты не влияют на испаряемость слезной жидкости с поверхности роговицы, а лишь возмещают ее объем
Исследование этих вопросов представляется актуальным как для понимания патогенеза заболевания, так и для оптимизации лечения Цель работы разработка комплекса эффективной диагностики и терапии синдрома сухого глаза, связанного с дисфункцией мейбомиевых желез Для достижения поставленной цели решались следующие задачи
1 Создание клинической классификации ДМЖ, определяемой функциональными изменениями мейбомиевых желез
2 Изучение местного иммунологического статуса (иммуноглобулины IgA, slgA, IgG, IgM, цитокины ИФН-у, ФНО-а) при нарушении функции мейбомиевых желез и сопутствующих им роговичных поражениях
3 Обоснование и разработка нового комплексного метода лечения ССГ, связанного с ДМЖ
4 Оценка эффективности патогенетически ориентированного медикаментозного лечения ССГ, сопряженного с ДМЖ, направленного на профилактику возникновения и прогрессирования поражений роговицы
Научная новизна
• Впервые предпринято комплексное клиническое и иммунологическое обследование больных с ССГ, связанного с ДМЖ, с целью определения критериев риска развития и прогрессирования поражений роговицы
• Осуществлен скрининг и сравнительный анализ состояния мейбомиевых желез и роговицы у больных с ССГ и выявлены их особенности при различных сопутствующих соматических заболеваниях
• Представлены данные о зависимости показателей, характеризующих состояние ДМЖ и слезной пленки от нарушений местного и системного иммунитета при блефароконъюнктивальной форме ССГ
• Впервые разработана классификация ДМЖ при ССГ, включающая пять клинических форм, основанная на клинической характеристике каждой формы ДМЖ, количественных и качественных изменениях слезопродукции (слезной пленки); ксеротических изменениях конъюнктивы и роговицы, показателях местного и общего иммунного статуса (1|»А, з1§А, ИФН- у, ФНО-а)
• Обнаружены и исследованы изменения уровня 1§А и его секреторной формы вЗ^А у больных с ССГ, связанного с ДМЖ различной этиологии, определена прогностическая значимость нарушений местного иммунитета для раннего выявления риска возникновения и прогрессирования поражений роговицы
• Научно обоснована целесообразность раннего патогенетически ориентированного лечения ССГ, сопряженного с ДМЖ, в целях профилактики возникновения и прогрессирования поражений роговицы, определены дифференцированные подходы к назначению медикаментозных средств
Практическая значимость работы
Определены формы ДМЖ наиболее характерные для различных этиологических групп (бактериальный блефарит, демодекозная инвазия, нарушения гормонального баланса) На основе созданной классификации клинических форм ДМЖ, разработаны алгоритмы медикаментозной терапии для профилактики и лечения поражений роговицы у больных с ССГ,
связанного с ДМЖ, и внедрено в практику применение с этой целью препаратов Офтальмоферон, ВитА-ПОС, Офлоксацин (глазная мазь) Впервые показано, что комплексное применение Офтальмоферона и стабилизаторов слезной пленки, выбор которых определяется с учетом этиологии ДМЖ (ВитА-ПОС, Офлоксацин глазная мазь), оказывает благоприятное воздействие на состояние слезной пленки и роговицы, компенсируя объем липидного слоя слезной пленки, а также способствует восстановлению секреторной активности МЖ
Основные положения, выносимые на защиту
1 Классификация клинических форм дисфункции мейбомиевых желез, основанная на характерных изменениях функциональной активности желез, качественных изменениях слезной пленки, ксеротических изменениях конъюнктивы и роговицы
2 Характеристика изменений местного иммунитета при ССГ, связанного с ДМЖ и их прогностическая значимость при развитии поражений роговицы
3 Алгоритмы терапии ССГ с нарушением стабильности слезной пленки, обусловленным ДМЖ, с учетом этиопатогенетических факторов, с использованием новых лекарственных средств (Офтальмоферон, Дефислез, ВитА-ПОС, Офлоксацин глазная мазь)
Внедрение в практику Предложенные методы внедрены в практику в отделе инфекционных и аллергических заболеваний глаз ФГУ МНИИ ГБ им Гельмгольца и в отделе контактной коррекции ФГУ МНТК Апробация работы. Основные положения работы доложены на симпозиуме «Интерфероны в лечении воспалительных заболеваний глаз» в рамках XIV Рос нац кошр "Человек и лекарство" (Москва, 2007), на конференции «Современные технологии катарактальной и рефракционной хирургии - 2007» (Москва, 2007); на научно-практической конференции «Красный глаз», воспаление, инфекция, аллергия (Москва, 2007), на
Всероссийской научно-практической конференции «Офтальмоиммунология, итоги и перспективы» (Москва, 2007)
Публикации По теме диссертации опубликовано 14 печатных работ, получен патент на изобретение «Способ комплексного лечения дисфункции мейбомиевых желез» № 2314102 от 10 01 08
Объем и структура работы Диссертация содержит введение, обзор литературы, материалы и методы, три главы результатов собственных исследований, заключение, выводы и практические рекомендации Работа изложена на 140 страницах машинописного текста и иллюстрирована 11 рисунками и 33 таблицами, список литературы содержит 237 источников (55 отечественных и 182 зарубежных)
СОДЕРЖАНИЕ РАБОТЫ Материалы и методы исследования
В исследование были включены 165 пациентов, проходивших обследование и лечение в отделе инфекционных и аллергических заболеваний глаз НИИ Глазных болезней им Гельмгольца (2003-2006) с диагнозом ССГ (блефароконъюнктивальная форма) Возраст больных от 18 до 75 лет Большинство пациентов составили женщины - 114 (69,1%), мужчины - 51 человек (30,9%)
При обследовании больных использовались традиционные методы, принятые в офтальмологической практике визометрия с коррекцией, при отсутствии форменного (предметного) зрения исследовалась светопроекция, осмотр при боковом (фокальном) освещении; биомикроскопия с помощью щелевой лампы и офтальмоскопия
Дополнительно проводилась биомикроскомия с применением флюоресцеинового теста и витального красителя бенгальского розового (оценка ксероза конъюнктивы и роговицы по В^егуеМ), исследование слезопродукции с использованием теста Ширмера; исследование стабильности слезной пленки (проба Норна, индекс слезного мениска)
Проводилась непосредственная регистрация рН отделяемого конъюнктивальной полости Способ осуществлялся путем непрерывной элекрохимической регистрации рН рН/тУметром Ш 8314 с помощью стеклянного электрода Ш 1083В фирмы Наша швйшпейз, Швейцария
Микробиологические исследования проводились по общепринятым стандартам и методикам (окраска мазков с конъюнктивы по Грамму, оценка роста культур в питательной среде, микроскопическое исследование этилированных ресниц на присутствие яиц, личинок и взрослых особей Бешоёех йэШсиИогит и Вето(1ех Ьгетаз) Мазки на мшфофлору с конъюнктивы исследовали каждые 5 дней в группе с ДМЖ на фоне бактериального блефарита у 31 больного
Иммунологические исследования были проведены на базе института совместно с д.б н, проф О С Слеповой и к м н Г Н Быковской^ и включали определение трех основных классов иммуноглобулинов (1|*А, 1§М) и цитокинов (ИФН-у, ФНО-а) в слезной жидкости (СЖ) и сыворотке крови (СК) Всего было исследовано 126 проб СЖ у 63 пациентов с различными формами ДМЖ Все три класса иммуноглобулинов определяли с помощью метода иммунодифузии по Манчини - 126 проб, кроме того и его секреторную форму (йцА) исследовали с помощью иммуноферментного анализа (ИФА) (после предварительной отработки условий постановки применительно к тест-системам «Вектор-Бест») Параллельно 1§А и 81£А исследовались в 86 пробах СЖ При исследовании гамма-интерферона (ИФН-у) в СЖ использовали тест-систему «гамма-Интерферон-ИФА-БЕСТ» Уровень провоспалительного цитокина ФНО-а в СЖ 45 пациентов (90 проб) и СК (27 проб) определяли с помощью тест-систем для ИФА («Протеиновый контур») Контрольную группу составили доноры (20 человек, 40 проб СЖ и 20 СК) без явлений соматической или офтальмопатологии
Наряду с офтальмологическими и лабораторными исследованиями проводилось обследование гормонального фона больных с ДМЖ в
специализированных учреждениях гинекологического профиля (НИИ акушерства и гинекологии и перинатологии РАМН и др.).
Результаты исследований
В ходе проводимых исследований были выделены следующие группы больных с ДМЖ (рис.1):
- ДМЖ на фоне инфекционного (бактериального) блефарита - 31 пациент (19,1%),
- ДМЖ на фоне демодекозной инвазии - 43 человека (26,5%),
- ДМЖ у женщин с ССГ на фоне нарушения гормонального фона (климакс, дисфункция яичников) - 36 человек (22,2%),
- ДМЖ без бактериального или демодекозного поражения век и без клинических проявлений гормонального дисбаланса - 55 человек (32%).
Ш ДМЖ на фоне
а ДМЖ бактериального смешанном ____ --блефарита
этпологцп ^¡ЁгШШШЩк 1 19%
32%
ДМЖ на фоне демодекозного блефарита
= ДМЖ при ССТ 27%
на фоне гормональных нарушении
22%
Рис.1. Распределение больных по этиологическим группам ДМЖ
Результаты клинических исследований различных проявлений ДМЖ позволили разработать классификацию, которая отражает не только функциональное состояние самих МЖ, но и соответствующие изменения суммарной слезопродукции (ССП), времени разрыва слезной пленки (ВРСП), индекса слезного мениска (ИСМ), ксеротических изменений бульбарной конъюнктивы и роговицы, состояние эпителия роговицы.
В итоге были выделены пять клинических форм ДМЖ при ССГ (табл 1) ДМЖ-1 - гиперсекреция МЖ на фоне кистозных изменений выводных протоков МЖ,
Д МЖ -И - сочетание гиперкератозного пломбирования выводного протока МЖ и гиперсекреции МЖ,
ДМЖ III - гиперкератозное пломбирование протоков МЖ,
ДМЖ - IV - сочетание гиперкератозного пломбирования МЖ и Рубцовых
изменений выводных протоков МЖ,
ДМЖ- V - рубцовые изменения выводных протоков МЖ и краев век Таблица №1 Классификация ДМЖ, при ССГ, основанная на характерных клинических и лабораторных показателях
Формы ДМЖ тест Ширмера, мм\сек тест Норна, сек ивдекс слезного мениска, мм рН отделяемого конъюнктивы ксероз конъюнктивы (баллы 0-9) состояние роговицы
ДМЖ I б±3,б 5,6+0,8 2,2+0,5 7,5+0,01 2,15+0,9 ингакгна - 56,6% ед микроэрозии-30%
дмжп 5 ±2,1 4,6+1,9 1,9+0,3 7,44+0,01 3,85 ±1,1 сд. микроэрозии-48,3% эпителиопатия - 21,6% макроэрозии - 3,3%
дмжш 4,5 + 2,1 4,2+1,3 1,4+0,2 7,38+0,01 4,25 ± 1,3 ишакгна-13% ед. мшфозрозии-40,4% эпителиопапга - 28,5%
ДМЖУ1 4,8 + 2,9 3,5 + 0,9 1,4 ±0,2 7,32 + 0,01 4,5 ±1,4 ед мшфоэрозии - 47,3% эпителиопатия - 32,4% макроэрозии -13,5%
ДМЖУ 2,9+ОД 3 + 0,8 1,2+ 0,2 7,31+0,01 5,3 ± 1,2 эпителиопатия - 50%, макроэрозии - 30,7%.
Анализируя клинические наблюдения мы пришли к заключению, что функциональные изменения мейбомиевых желез можно рассматривать не только как изолированные формы дисфункции, а как стадии одного патологического процесса, гиперсекреторная форма (ДМЖ - I) с наличием активного воспаления, постепенно переходит в хроническое, и сопровождается гиперкератинизацией в структуре железы, что отражается на качественном изменении состава липидного секрета, клинически проявляющегося в изменении плотности секрета МЖ, застое его в выводных
протоках (ДМЖ-Н-Ш) Далее хроническое воспаление приводит к дистрофическим изменениям структуры МЖ с угасанием ее секреторной активности (ДМЖ-1У-У) Параллельно происходят значительные изменения в структуре слезной пленки (снижается объем суммарной слезопродукции, уменьшается время разрыва слезной пленки и индекс слезного мениска) и ухудшается состояние конъюнктивы и роговицы (увеличение ксероза и участков поврежденного эпителия роговицы)
В результате анализа анамнестических и клинических данных, больные были разделены на этиологические группы ДМЖ (табл 2) Для каждой из этих групп были выделены наиболее характерные признаки изменений -ДМЖ и роговицы
Таблица №2 Распределение клинических форм ДМЖ по «этиологическим» группам
Группы Клинические формы ДМЖ
(п-кол-во глаз) ДМЖ 1 ДМЖ п ДМЖ ш ДМЖ IV ДМЖУ
Бакгер блефарит 2 29 19 10 2
(п=62) 3,2% 46,7% 30,6% 16,1% 3,2%
Демодекоз 18 6 18 34 8
(п=8б) 20,9% 6,9% 20,9% 39,5% 9,3%
ССГ при гормон. 20 12 24 8 2
нарушениях 27,7% 16,6% 33,3% 11,1% 2,7%
(п=72)
Смешанная 12 34 30 22 9
группа 10,9% 30,9% 27,2% 20% 8,1%
(№=110)
Для ССГ на фоне бактериального блефарита наиболее характерна П (46,7%) - Ш (30,6%) формы ДМЖ и единичные микроэрозии роговицы, на фоне демодекозной инвазии - ДМЖ IV (39,5%), на роговице единичные микроэрозии (37,4%) или эпителиопатия (39,5%)
ДМЖ, при ССГ на фоне гормонального дисбаланса, выделялись противоречивостью клинических проявлений практически в равных соотношениях отмечены ДМЖ I и П1 формы (27,7% и 33,3%
и
соответственно), вдвое реже встречалась гиперсекреторная форма (ДМЖ П -16,6%), достоверно реже, чем в других этиологических группах диагностировалась ДМЖ IV-V (13,8%) (X2 = 5,337, р=0,021), вместе с тем роговица оставалась интактной всего у 5,5%, у основной массы имелись единичные микроэрозии (47,2%) или эпителиопатия (41,6%) Исходя из данных литературы, выраженные дефекты эпителия роговицы при относительно сохранной функции МЖ могут объясняться андрогенной регуляцией как функции самих МЖ, так и активности защитных механизмов слизистых (Suzuki Т, Schaumberg D А, 2002, Sullivan D 2004) Группа ДМЖ смешанной этиологии характеризовалась широкой вариабельностью функциональных форм ДМЖ и соответствующих им поражений роговицы
Результаты иммунологических исследований показали, что у больных с ССГ, сопряженным с ДМЖ, наибольшим колебаниям подвержены уровни IgA и его секреторной формы slgA (табл 3) Нормальные показатели IgA и slgA в целом отмечались редко (17,8%), в основном - у молодых пациентов, с гиперсекреторными формами ДМЖ и интактной роговицей При бактериальных блефаритах преобладало (40%) сочетанное повышение уровней IgA и slgA, что, надо полагать, отражало активизацию локального иммунного ответа в условиях инфекции В группе ДМЖ на фоне демодекозной инвазии преобладало повышение slgA (65%) при различных уровнях IgA (чаще - сниженном, реже - нормальном, или повышенном), что свидетельствует о явных особенностях местного реагирования, проявляющихся гиперсекрецией slgA в условиях длительно персистирующей демодекозной инвазии У женщин с гормональной дисфункцией в большинстве случаев выявлялось параллельное снижение уровней IgA и slgA (59%), свидетельствовавшее о дефекте местной защиты В группе ДМЖ смешанной этиологии выявлялись разнообразные варианты сдвигов и сочетания IgA и slgA, но в основном - параллельное снижение
Таблица № 3 Характер сдвигов уровней 1{>А и в слезной жидкости пациентов с ДМЖ различной этиологии
Группы ДМЖ (п- число глаз) Характер сдвигов ^А и вТёА в СЖ
18 А N N 4 4 1
А N т 4 N т Г
Бакт блефарит (п=10) 3 30% 1 10% 2 20% - 4** 40% -
Демодекоз (п=38) 8 21% 6 15,7% 8 21% 8 21% 4 10,5% 5** 13%
ССГпри гормональных нарушениях (п=44) 4** 9% 6 13,6% 26* 59% 3 6,8% 3 6,8% 2 4,5%
Смешанная (п=37) 8 21,6% 7 18,9% 8 21,6% 5 13,5% 6 16,2% 3 8,1%
Всего (п=129) 23 17,8% 20 15,5 % 44 34% 13 10,1% 17 13,1% 10 7,7%
*р=0,006, по сравнению с остальными группами, **р<0,05 по сравнению с остальными группами
Примечание норма ^А в СЖ - 5000-12000мг/л, в^А - ЗОО-бООмг/л
Дифференцированный анализ показал, что при начальных и промежуточных формах Д МЖ и интактной роговице отмечается тенденция к снижению и 1§А и 81цА, тогда как при терминальной форме ДМЖ с сопутствующими макрозрозиями роговицы преобладала возвратная нормализация уровня и б^А
В прогностическом плане развития роговидных поражений при ДМЖ наиболее неблагоприятным является сочетанный дефицит IgA и з1§А в СЖ, который может наблюдаться уже при начальных гиперсекреторных формах ДМЖ и интактной роговице (60,8%), а так же и гиперсекреция sIgA и/или 1§А при терминальных формах ДМЖ и выраженных изменениях роговицы (макроэрозии, нитчатый кератит) (таблица 4)
Таблица №4 Характер сдвигов уровня и з]£А в слезной жидкости при различных состояниях эпителия роговицы на фоне ДМЖ
Состояние роговицы (и- число глаз) Характер сдвигов IgA и slgA в СЖ
Ig А N N 4 4 Î 4
slgA N Î 4 N Î î
Интакгаая роговица (п=23) 3 13% 4 17,3% 14 60,8% 2 8,6% - -
Единичные микроэрозии (п=32) 4 12,5% 9 28,1% 11 34,3% 5 15,6% 3 9,3% -
Эпителиопатия (В"11) 3 27% - 4 36,6% 1 9,1% 2 18,2% 1 9,1%
Макроэрозии (п=6) 3 50% - - 1 16% 2 33% -
Нитчатый кератит (и=П) 2 18% 5 45,6% 1 9,1% 3 27,1%
О недостаточности местной защиты свидетельствуют и отрицательные результаты, полученные при исследовании в СЖ ИФН-у у пациентов с ДМЖ (12 проб), который часто обнаруживается в нормальной слезе (Герасименко В И 1999, Зайцева О В 2001)
По данным литературы (Zeirhut M, Dana M R, Stern M E, Sullivan D A 2002, Майчук Д Ю 2004), в СЖ и CK у пациентов с тяжелым течением ССГ может обнаруживаться ФНО-а, полифункциональный цитокин, относящийся к ключевым провоспалительным медиаторам По нашим наблюдениям обнаружение ФНО-а в CK (29,7% проб) коррелировало с тяжестью течения ССГ и наличием различных соматических заболеваний наличие в анамнезе полиартрита, язвенной болезни 12-перстной кишки в стадии обострения, а так же гормональными сдвигами При определении ФНО-а в СЖ у пациентов с ССГ, связанного с ДМЖ, большинство проб оказались отрицательными (96,7%), средний уровень 460+165пкг/мл Редкие случаи выявления цитокина в СЖ были связаны с наличием тяжелой патологии роговицы (стромальный кератит)
Оценка эффективности комплексного лечения синдрома «сухого глаза», ассоциируемого с дисфункцией мейбомиевых желез.
Выявленные в ходе проведенных исследований особенности клинических проявлений ДМЖ в различных этиологических группах, как и характерные для них нарушения местного иммунитета, послужили основой для разработай дифференцированного подхода к лечению ССГ В группах с ССГ, связанного с ДМЖ, смешанной этиологии (50 человек) и ССГ на фоне гормональных нарушений (28 человек) комплексная терапия включала слезамещающий препарат Дефислез, иммуномодулирующий Офтальмоферон, а в качестве стабилизатора слезной пленки - ВитА-ПОС В группе I (30 пациентов) проводилось слезозаместительное (Дефислез) и иммуномодулирующее лечение (Офтальмоферон) Во П-й группе (18 пациентов) помимо инсталляций слезозаместительных и иммуномодулирующих препаратов применяли ВитА-ПОС В группе III (30 пациентов) проводилась слезозаместительная монотерапия (Дефислез) Проведенные нами исследования по сравнению терапевтической эффективности слезозаместительной монотерапии (Дефислез) и комплексной патогенетической терапии, включающей иммуномодулирующий и противовоспалительный препарат Офтальмоферон (первые, отечественные, стабильные глазные капли, содержащие человеческий рекомбинантный интерферон альфа-2Ь) и стабилизатор слезной пленки ВитА-ПОС и Дефислез, показали, что в группе больных, получавших комплексную терапию (Офтальмоферон, ВитА-ПОС, Дефислез) имело место
более быстрое (6,7+сутки), статистически достоверное уменьшение субъективных жалоб (р<0,05) по сравнению с группой, получавшей только слезозамесгительную монотерапию,
- более ранняя нормализация состояния век и конъюнктивы уменьшение гиперемии, отека бульбарной конъюнктивы, отделяемого и исчезновения корочек век (7-8 сутки) (р<0,05) по сравнению с группой монотерапии (10-11 сутки),
- более ранние сроки восстановления прекорнеальной слезной пленки и формирование более стабильного эпителиального покрова,
- методом окрашивания витальным красителем бенгальским розовым, выявляющим ксероз, установлено, статистически достоверное (р<0,05), уменьшение ксеротических изменений конъюнктивы и роговицы (табл 5), Таблица№ 5 Оценка ксерозирования бульбарной конъюнктивы и роговицы в динамике лечения ССГ, сопряженного с ДМЖ
Группа I (М ± т) Группа П (М±т) Группа Ш (М±т)
До лечения 5,22 ± 0,28 5,8± 0,25 5,7 ± 0,19
7-й день лечения 3,72 ± 0,23 3,9± 0,28 4,98 ± 0,17
30 день лечения* 1,90 ±0,18 1,9± 0,17 3,27 ±0,15
достоверность различий между III и 1,И опытными группами * р< 0,05
- в группе комплексной терапии отмечена лучшая, чем в 1руппе монотерапии, динамика восстановления стабильности прекорнеальной слезной пленки, достоверное (р<0,05) увеличение показателей пробы Норна (табл 6),
Таблица№6 Динамика времени разрыва слезной пленки в группах сравнения терапевтической эффективности лечения ССГ, сопряженного с ДМЖ
Группа 1(М± т) Группа II (М±т) Группа Ш (М+т)
До лечения 2,95 ± 0,14 2,2 ±0,14 2,73 ±0,13
7-й день лечения 4,03 ± 0,17 4,7+ 0,13 2,92 ± 0,11
30 день лечения* 5,02 ± 0,14 6,25+0,25 3,60 ± 0,10
достоверность различий между Ш и 1,П опытными группами * р< 0,05
статистически достоверное (р<0,05) повышение показателей слезопродукции (пробы Ширмера) в динамике лечения зарегистрированы только при комплексной терапии, в группе стандартной монотерапии отмечена лишь тенденция увеличения слезопродукции (р>0,05) (табл 7) Таблица №7 Динамика слезопродукции в группах сравнения терапевтической эффективности лечения ССГ, сопряженного с ДМЖ
Группа 1(М± т) Группа П (М±т) Группа Ш (М±т)
До лечения 4,5 ± 0,46 4,3 ± 0,46 4,85 ± 0,52
7-й день лечения 5,36 ± 0,37 4,9 ±0,39 4,78 ± 0,33
30 день лечения 6,24 ± 0,29 5,8± 0,25 5,37 ± 0,26
достоверность различий между Ш и 1,11 опытными группами * р< 0,05
Ретроспективный анализ эффективности лечения в зависимости от тяжести исходной клинической картины и применявшейся терапевтической схемы, показал, что схема лечения, включающая Дефислез + Офтальмоферон+ВитА-ПОС, оказалась наиболее эффективной при всех клинических формах ДМЖ, причем при ДМЖ I и ДМЖ П - это подтвердилось в 100% случаев по всем клиническим показателям При ДМЖ Ш-ГУ в ряде случаев (7,3%) достичь полного терапевтического эффекта не удалось или он был нестойким При ДМЖ V с наличием рубцовых изменений выводных протоков МЖ и истощением железистой ткани МЖ восстановления функциональной активности желез не наблюдалось, вследствие необратимых изменений в их структуре, тем не менее, отрицательной динамики не было зарегистрировано Необходимо отметить, что в процессе лечения по мере нормализации состояния конъюнктивы и роговицы в группе больных, получающих Офтальмоферон и ВитА-ПОС, уменьшилась потребность в количестве инсталляций слезозамещающих препаратов в 2-3 раза
При наличии бактериальной инфекции (31 пациент) в качестве препарата, влияющего на стабильность слезной пленки и оказывающего антимикробное действие, применяли - Офлоксацин 0,3% глазная мазь, в дополнение к базовой терапии Офтальмофероном и Дефислезом При оценке эффективности лечения было выявлено следующее исчезновение микрофлоры в мазках отмечено на 2-4 сутки, достоверное уменьшение ксеротических изменений конъюнктивы и роговицы (р<0,05), восстановление секреторной активности МЖ, по сравнению с началом лечения Длительность терапии составила в среднем 12,5+1,7 дней Количество инсталляций слезозаместительных препаратов (Дефислез), уменьшилось до 1-2 раз в сутки, по сравнению с традиционным методам слезозамещающей монотерапии, включающем 5-6 и более инсталляций в течение суток
При наличии демодекозной инвазии (43 пациента), наряду со слезозаместительной и иммуномодулирующей терапией, нами был
разработан новый комплексный способ лечения, включающий массаж век, обработку век 0,5% раствором метронидазола, с последующей аппликацией на кожу век глазной мази Пренацвд, обладающей" помимо противовоспалительного и стабилизирующим слезную пленку действием, а также воздействие на веки переменным магнитным полем (напряженность ЮмТл, частота 17 Гц) Контрольное микробиологическое исследование ресниц на с1етос1ех йэ111си1огшп проводилось по окончании курса терапии, у 93% пациентов на 30-й день ёепюйех бэШсикнпт - отсутствовал, у 7% содержание снижалось до субклинического уровня Восстановление функциональной активности МЖ было связано со снятием воспалительной реакции век Достоверное увеличение ВРСП (р<0,001) происходило за счет воздействия жировой основы мази Пренацид, а также за счет восстановления секреторной активности желез Зарегистрировано также уменьшение ксероза конъюнктивы и роговицы (р<0,05) Эпителизация микроэрозий роговицы происходила в среднем на 3,1+0,9 день.
Обобщение полученных результатов, подтвердило необходимость дифференцированного подхода к лечению ССГ, связанного с ДМЖ различной этиологии, с учетом клинической формы ДМЖ
Разработанная с этой целью клиническая классификация ДМЖ отражает не только их функциональное состояние, но и изменения прекорнеальной слезной пленки, бульбарной конъюнктивы и роговицы Новые данные о роли локальной иммунной защиты при синдроме ССГ, сопряженном с ДМЖ, должны учитываться при обследовании больных с ССГ, с целью формирования групп риска развития роговичных поражений Разработанные алгоритмы лечения, учитывающие все отмеченные клинические, микробиологические и иммунологические факторы показали высокую терапевтическую эффективность
Выводы:
1. Разработана классификация клинических форм дисфункции мейбомиевых желез при ССГ, с учетом функциональной активности желез, изменений прекорнеальной слезной пленки и эпителия роговицы, позволяющая улучшить диагностику этого заболевания и определить подходы к этопатогенетической терапии
Выделены пять клинических форм дисфункции мейбомиевых желез ДМЖI — гиперсекреция на фоне кистозных изменений выводных протоков мейбомиевых желез, ДМЖ П - гиперсекреция и гиперкератозное пломбирование выводного протока мейбомиевых желез, ДМЖ Ш -изолированное гиперкератозное пломбирование протоков МЖ, ДМЖ IV -гиперкератозное пломбирование и рубцовые изменения выводных протоков мейбомиевых желез, ДМЖ V - рубцовые изменения выводных протоков МЖ и краев век
2. Установлено, что возникновение и выраженность ксеротических изменений эпителия роговицы при ССГ связано с функциональной активностью мейбомиевых желез, нарушение которой является прогностическим фактором прогрессирования ССГ Для ДМЖ I наиболее характерны - интакгная роговица 56,6%, при ДМЖ П - ед микроэрозии роговицы - 48,3%, при ДМЖ Ш - ед микроэрозии - 40,4% и эпителиопатия -28,5%, для ДМЖ IV - эпителиопатия - 32,4% и макроэрозии - 13,5%, при ДМЖ V- эпителиопатия - 50% и макроэрозии - 30,7%
3. Выявлены особенности клинических проявлений ДМЖ в зависимости от этиологии блефароконъюнктивальной формы ССГ и от наличия и характера сопутствующих заболеваний Для ДМЖ на фоне бактериального блефарита наиболее характерны П (46,7%) и Ш (30,6%) формы, проявления ДМЖ, при ССГ на фоне гормонального дисбаланса носят наиболее разнородный характер (ДМЖ I - 27,7%, ДМЖ Ш - 33,3%), при ДМЖ на фоне демодекозной инвазии чаще встречается IV форма (39,5%)
4. Сопряженный с ДМЖ ССГ, ассоциируется с нарушением местного иммунитета (дисбаланс и э^А, дефицит ИФН-у) у подавляющего большинства больных, повьппение в СЖ и/или в СК уровня ФНО-а выявляется при наличии сопутствующих соматических заболеваний Глубина нарушений иммунитета коррелирует с тяжестью ДМЖ и изменениями роговицы, что определяет целесообразность использования иммунокоррещрующей и противовоспалительной терапии
5. Разработаны алгоритмы терапии ССГ с применением новых лекарственных препаратов (ВитА-Пос, Офтальмоферон, Дефислез, Офлоксацин глазная мазь), учитывающие этиологию, клинические формы ДМЖ и нарушения местного иммунитета
6. Впервые исследована эффективность липидосожержащих стабилизаторов слезной пленки (ВитА-ПОС, Офлоксацин глазная мазь, Пренацид), различной этиологической направленности Применение данной группы препаратов позволяет сократить количество инсталляций слезозамещающих препаратов до 2-3 раз в сутки У 79,3% больных была отмечена полная реэпителизация роговицы
Практические рекомендации
1 При обследовании больных с ССГ необходимо принимать во внимание функциональное состояние (форму дисфункции) мейбомиевых желез и соответствующие изменения показателей стабильности слезной пленки (ВРСП, ИСМ, ССП), расценивая их как диагностический и прогностический фактор развития поражений роговицы
2 Учитывая нарушение местного иммунитета, больным с ДМЖ рекомендуется применение глазных капель Офтальмоферона, обладающих как противовоспалительным, так и иммуномодулирующим действием (2 раза в день в течение 14-30 дней)
3 Комплексное лечение больных ССГ, сопряженного с ДМЖ, должно носить не только слезозаместительный характер, но и содержать
препараты, стабилизирующие липидный слой слезной пленки Выбор препаратов определяется этиологическими факторами При наличии бактериальной инфекции - Офлоксацин глазная мазь - 2 раза в день на края век в течение 10-14 дней, при ДМЖ на фоне гормонального дисбаланса и при отсутствии бактериальной инфекции - ВитА-Пос (2 раза в день, 10-14 дней)
4 При ДМЖ на фоне демодекозной инвазии рекомендуется применение комплексного метода лечения, включающего массаж век, обработку корней ресниц 0,5% раствором метронидазола, аппликации мази пренацид на кожу век и воздействие на веки переменным магнитным полем (напряженность ЮмТл, частота 17 Гц) Комплексное лечение направлено на различные звенья патогенеза ДМЖ, восстановление функционального состояния МЖ, соответствующее восстановлению слезной пленки
Список опубликованных научных работ
1 Алгоритмы лечения острых инфекционных конъюнктивитов, направленные на предупреждение развитая синдрома сухого глаза Пособие для врачей М - 2004 - 20 С Майчук Ю Ф , Вахова Е С , Майчук Д Ю , Миронкова Е А, Яни Е В
2 Комплексная терапия хронических блефароконъюнктивитов и конъюнктивитов Новые лекарств препараты 2005 - №11 - С 27-30 Майчук Ю Ф , Миронкова Е А
3 Глазные капли Фуциталмик в лечении бактериальных блефаритов // Рефракционная хирургия и офтальмология - 2003 - т 3,№3 - С36 Майчук Ю Ф, Миронкова Е А
4 Роль дисфункции мейбомиевых желез в патогенезе развития синдрома сухого глаза, выбор лекарственной терапии // Рефракционная хирургия и офтальмология-2007 -т2,№4 -С51-55 Майчук ЮФ,МиронковаЕ А
5 Выбор терапии при синдроме сухого глаза с нарушением стабильности лшшдаого слоя слезной пленки при дисфункции мейбомиевых желез// Рефракционная хирургия и офтальмология -2007 -т 7, №3 -С 57-60 Майчук Ю Ф, Миронкова Е А.
6 Фармакотерапия синдрома сухого глаза при дисфункции мейбомиевых желез // XI Рос нац конгресс «Человек и лекарство» -М, 2004 - С 462-463 Миронкова Е А, Майчук Д Ю
7 Комплексная терапия хронических блефаритов и блефароконъюнктивитов» //XIV Рос.нац конгресс «Человек и лекарство» -М, 2007 -С 567 МиронковаЕА,МайчукЮФ
8 Клиническое применение комплексных глазных капель Бетагенот в лечении блефаритов// ХШ Рос нац конгресс «Человек и лекарство»-М, 2006 - С 675 Майчук Ю.Ф , Миронкова Е А
9 Комплексная терапия хронических блефаритов и блефароконъюнктивитов XIV Рос нац конгресс «Человек и лекарство» -М, 2007 - С.567 Миронкова Е А,МайчукЮФ
10 Исследование pH конъюнктивы в прогнозировании поражений роговицы при дисфункции мейбомиевых желез // Сборник трудов первой всероссийской научной конференции молодых ученых «Актуальные проблемы офтальмологии» - М, 2006 - С 46 Миронкова Е А, Майчук Ю Ф, Ковалевская М А
11 Особенности нарушений местного иммунитета при развитии роговичных поражений у больных с дисфункцией мейбомиевых желез // Сборник трудов юбилейной научно-практической конференции «Федоровские чтения - 2007» - М, 2007 - С 349 Миронкова Е А, Слепова О С
12 Особенности нарушений местного иммунитета и их роль в развитии поражений роговицы у больных с дисфункцией мейбомиевых желез //Сборник трудов VIII всероссийского конгресса «Современные проблемы аллергологии, иммунологии и иммунофармакологии» - М, 2007 -С 218 Слепова О С, Миронкова Е.А
13 Синдром сухого глаза, сопряженный с дисфункцией мейбомиевых желез //Врач - М ,2007, №7 - С 59-60 Майчук Ю Ф, Миронкова Е А
14 Классификация дисфункции мейбомиевых желез, сочетающейся с синдромом сухого глаза, патогенетические подходы в комплексной терапии //РМЖ «Клиническая офтальмология» - М, 2007, -т 8, №4, - С 169 -172 Майчук Ю Ф, Миронкова Е А
Заказ № 345. Объем 1 п.л. Тираж 100 ж*.
Отпечатано в ООО «Пегроруш». I. Москва, ул Палиха-2а, тел. 250-92-06 www.po.stator.ru
Оглавление диссертации Миронкова, Елена Александровна :: 2008 :: Москва
ВВЕДЕНИЕ.
Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ. СОВРЕМЕННЫЕ ПРЕДСТАВЛЕНИЯ О ДИСФУНКЦИИ МЕЙБОМИЕВЫХ ЖЕЛЕЗ И СИНДРОМЕ СУХОГО ГЛАЗА; ПАТОГЕНЕЗ, КЛИНИКА,
ПОДХОДЫ К МЕДИКАМЕНТОЗНОМУ ЛЕЧЕНИЮ.
Глава 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ.
Глава 3. КЛИНИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ СИНДРОМА СУХОГО ГЛАЗА, СОПРЯЖЕННОГО С РАЗЛИЧНЫМИ ФОРМАМИ ДИСФУНКЦИИ МЕЙБОМИЕВЫХ ЖЕЛЕЗ.
Глава 4. ПРОЯВЛЕНИЯ НАРУШЕНИЙ В МЕСТНОМ И ОБЩЕМ ИММУННОМ СТАТУСЕ У БОЛЬНЫХ С ССГ ПРИ ДИСФУНКЦИИ МЕЙБОМИЕВЫХ ЖЕЛЕЗ.
Глава 5. ОБОСНОВАНИЕ И ОЦЕНКА ЭФФЕКТИВНОСТИ КОМПЛЕКСНОГО МЕДИКАМЕНТОЗНОГО ЛЕЧЕНИЯ СИНДРОМА «СУХОГО ГЛАЗА», АССОЦИИРУЕМОГО С ДИСФУНКЦИЕЙ МЕЙБОМИЕВЫХ ЖЕЛЕЗ.
Введение диссертации по теме "Глазные болезни", Миронкова, Елена Александровна, автореферат
В последние годы в литературе накопился обширный материал, посвященный изучению синдрома сухого глаза (ССГ). Эта проблема становится все более актуальной в связи с увеличением этиологических факторов, вызывающих данное заболевание (компьютерной техники, кондиционеров, способствующих развитию так называемого «глазного I офисного и мониторного» синдрома) (Бржевский В.В., Сомов Е.Е. 2002, 2004). Распространенность ССГ год от года имеет тенденцию к росту, как в нашей стране, так и за рубежом, где изучению данной патологии уделяется большое внимание (Mathers W.D. 2000; Sullivan B.D. 2001; Pflugfelder S.C., Solomon A., 2002; Gilbard J.P. 2005; Tsubota K., 2006). ССГ включает в себя комплекс признаков роговично-конъюнктивального ксероза, патогенетически обусловленного длительным нарушением стабильности слезной пленки. Прекорнеальная1 слезная пленка, являясь первым барьером и благодаря своим бактерицидным свойствам, выполняя защитную функцию, предохраняется от испарения тонким слоем липидов, секретируемых мейбомиевыми железами. В литературе ССГ, связанный с дисфункцией мейбомиевых желез (ДМЖ) определяется как блефароконъюнктивальная форма ССГ (Полунин Г.С.2003) или ССГ с повышенной испаряемостью слезы (Kaufman Н.1995). Диагностика ДМЖ не представляет трудностей, однако четкой классификации, которая бы полностью отражала глубину и характер патологического процесса нет.
В целом проблема дисфункции мейбомиевых желез (ДМЖ) до настоящего времени недостаточно изучена, а в аспекте ССГ и связанных с ним изменений s роговицы практически не исследовались. Остается нераскрытой взаимосвязь состояния эпителия роговицы при ССГ и изменения функциональной активности мейбомиевых желез при их вовлечении в воспалительный процесс век.
Определенную роль в течении' заболевания и развитии осложнений, могут играть нарушения иммунитета, отмечающиеся у больных с ССГ (Baudoin С., Haouat N. 1992; Майчук Д.Ю. 2006.), однако,.целенаправленное исследование их роли в формировании роговичной патологии, ассоциированной с ДМЖ, не проводилось. Основным методом лечения ССГ являются слезозамещающие препараты, но они не содержат* компонента, для восстановления , лйпидного слоя слезной пленки. Желаемый- эффект достигается далеко не во всех случаях, так как данные препараты не влияют на испаряемость слезной жидкости с поверхности роговицы, а лишь возмещают ее объем. .
Исследование этих вопросов представляется актуальным как для : [ ■ понимания патогенеза заболевания, так и для оптимизации лечения;
Цель работы: разработка комплекса эффективной диагностики и терапии синдрома сухого глаза, связанного с дисфункцией мейбомиевых желез. Для достижения поставленной цели решались следующие задачи: 1 .Создание клинической классификации ДМЖ, определяемой функциональными изменениями мейбомиевых желез.
2. Изучение местного иммунологического статуса (иммуноглобулины: IgA, slgA, IgG, IgM, цитокины: ИФН-у, ФНО-а) при нарушении функции мейбомиевых желез и сопутствующих им роговичных поражениях.
3. Обоснование и разработка нового комплексного метода, лечения ССГ, связанного с ДМЖ.
4. Оценка эффективности патогенетически ориентированного медикаментозного лечения ССГ, согфяженного с ДМЖ, направленного; на: профилактику возникновения и прогрессирования поражений роговицы.
Научная новизна:
Впервые предпринято комплексное клиническое и иммунологическое обследование больных с ССГ, связанного с ДМЖ, с целью определения критериев риска развития и прогрессирования поражений роговицы. Осуществлен скрининг и сравнительный анализ состояния мейбомиевых желез и роговицы у больных с ССГ и выявлены их особенности при различных сопутствующих соматических заболеваниях.
Представлены данные о зависимости показателей, характеризующих, состояние ДМЖ и слезной пленки от нарушений местного и системного иммунитета при блефароконъюнктивальной форме ССГ. Впервые разработана классификация ДМЖ при ССГ, включающая пять клинических форм, основанная на: клинической характеристике каждой формы ДМЖ; количественных и качественных изменениях слезопродукции (слезной пленки); ксеротических изменениях конъюнктивы и роговицы; показателях местного и общего иммунного статуса (1§А, б^А, ^М, ИФН-у, ФНО-а).
Обнаружены и исследованы изменения уровня ^А и его секреторной формы б^А у больных с ССГ, связанного с ДМЖ различной этиологии, определена прогностическая значимость нарушений местного иммунитета для раннего выявления риска возникновения и прогрессирования поражений роговицы.
Научно обоснована целесообразность раннего патогенетически ориентированного лечения ССГ, сопряженного с ДМЖ, в целях профилактики возникновения и прогрессирования поражений роговицы; определены дифференцированные подходы к назначению медикаментозных средств.
Практическая значимость работы:
Определены, формы ДМЖ наиболее характерные для различных этиологических групп (бактериальный блефарит, демодекозная инвазия, нарушения гормонального баланса). На основе созданной классификации клинических форм ДМЖ, разработаны алгоритмы медикаментозной терапии для профилактики и лечения поражений роговицы у. больных с ССГ, связанного с ДМЖ, и внедрено в практику применение с этой целью препаратов Офтальмоферон, ВитА-ПОС, Офлоксацин (глазная мазь). Впервые показано, что комплексное применение Офтальмоферона и стабилизаторов слезной пленки, выбор которых определяется с учетом этиологии ДМЖ (ВитА-ПОС, Офлоксацин глазная мазь), • оказывает благоприятное воздействие на состояние слезной пленки и роговицы, компенсируя объем липидного слоя слезной пленки, а также способствует восстановлению секреторной активности МЖ.
Основные положения, выносимые на защиту
1. Классификация клинических форм дисфункции мейбомиевых желез, основанная на характерных изменениях функциональной активности, желез, качественных изменениях слезной пленки, ксеротических изменениях конъюнктивы и роговицы.
2. Характеристика изменений местного иммунитета при ССГ, связанного с ДМЖ и их прогностическая значимость при развитии поражений' роговицы.
3. Алгоритмы терапии ССГ с нарушением стабильности слезной пленки, обусловленным ДМЖ, с учетом этиопатогенетических факторов, с использованием новых лекарственных средств (Офтальмоферон, Дефислез, ВитА-ПОС, Офлоксацин глазная мазь).
Внедрение в практику. Предложенные методы внедрены в практику в отделе инфекционных и аллергических заболеваний глаз ФГУ МНИИ ГБ им. Гельмгольца и в отделе контактной коррекции ФГУ МНТК. Апробация работы. Основные положения работы доложены: на симпозиуме «Интерфероны в лечении воспалительных заболеваний глаз» в рамках XIV Рос. нац. конгр "Человек и лекарство" (Москва, 2007); на конференции «Современные технологии катарактальной и рефракционной хирургии - 2007» (Москва, 2007); на научно-практической конференции «Красный глаз»: воспаление, инфекция, аллергия (Москва, 2007); на Всероссийской научно-практической конференции «Офтальмоиммунология, итоги и перспективы» (Москва, 2007).
Публикации. По теме диссертации опубликовано 14 печатных работ, получен патент на изобретение «Способ комплексного лечения дисфункции мейбомиевых желез» № 2314102 от 10.01.08.
Заключение диссертационного исследования на тему "Роль дисфункции мейбомиевых желез в патогенезе развития роговичных поражений при синдроме сухого глаза"
Выводы:
1. Разработана классификация клинических форм; дисфункции мейбомиевых желез при ССГ, с учетол^ функциональной активности желез, изменений прекорнеальной слезной, пленки и эпителия роговицы, позволяющая улучшить диагностику этого заболевания и определить подходы к этопатогенетической терапии.
Выделены пять клинических форм! дисфункции мейбомиевых желез: ДМЖ'Г— гиперсекреция на^фоне кистозных изменений выводных протоков мейбомиевых желез; ДМЖ П - гиперсекреция и гиперкератозное пломбирование выводного протока мейбомиевых желез; ДМЖ Ш — изолированное гиперкератозное пломбирование протоков МЖ; ДМЖ IV -гиперкератозное пломбирование и рубцовые изменения выводных протоков мейбомиевых желез; ДМЖ V. - рубцовые изменения выводных протоков МЖ и краев век.
2. Установлено, что возникновение и выраженность ксеротических изменений эпителия роговицы при ССГ связано с функциональной активностью мейбомиевых желез, нарушение которой является прогностическим фактором прогрессирования ССГ. Для ДМЖ I наиболее характерны - интактная роговица 56,6%; при ДМЖ П - ед. микроэрозии роговицы - 48,3%; при ДМЖ Ш - ед. микроэрозии - 40,4% и эпителиопатия -28,5%; для ДМЖ IV - эпителиопатия - 32,4% и макроэрозии - 13,5%;.при ДМЖ V- эпителиопатия - 50% и макроэрозии - 30,7%.
3. Выявлены особенности клинических проявлений ДМЖ в зависимости от этиологии блефароконъюнктивальной формы ССГ и от наличия и характера-сопутствующих заболеваний. Для ДМЖ. на фоне бактериального блефарита наиболее характерны П (46,7%) и Ш (30,6%) формы, проявления ДМЖ, при ССГ на фоне гормонального дисбаланса носят наиболее разнородный характер (ДМЖ I - 27,7%, ДМЖ Ш - 33,3%), при ДМЖ на фоне демодекозной;инвазии чаще встречается IV форма (39,5%).
4. Сопряженный с ДМЖ CCF, ассоциируется с нарушением; местного иммунитета (дисбаланс IgA и slgA, дефицит ИФН-у) у подавляющего большинства больных; повышение в СЖ и/или в CK уровня ФНО-а выявляется при наличии сопутствующих соматических заболеваний. Глубина нарушений иммунитета коррелирует с тяжестью ДМЖ и изменениями роговицы, что определяет целесообразность использования иммунокоррегирующей и противовоспалительной терапии.
5. Разработаны алгоритмы терапии ССГ с применением, новых лекарственных препаратов: (ВитА-Пос, Офтальмоферон, Дефислез, Офлоксацин глазная мазь), учитывающие этиологию, клинические формы ДМЖ и нарушения местного иммунитета.
6. Впервые исследована эффективность липидосожержащих стабилизаторов слезной пленки (ВитА-ПОС, Офлоксацин глазная мазь, Пренацид), различной этиологической направленности: Применение данной группы препаратов позволяет сократить количество инсталляций слезозамещающих препаратов до 2-3 раз в сутки. У 79,3% больных была отмечена полная реэпителизация роговицы.
Практические рекомендации
1. При обследовании больных с ССГ необходимо принимать.во внимание функциональное состояние (форму дисфункции) мейбомиевых желез и соответствующие изменения показателей стабильности слезной пленки (ВРСП, ИСМ, ССП), расценивая их как диагностический и/ прогностический фактор развитияшоражений роговицы.
2. Учитывая нарушение местного иммунитета; больным с ДМЖ рекомендуется, применение глазных капель Офтальмоферона, обладающих как противовоспалительным, так и иммуномодулирующим действием (2 раза в день в течение 14-30 дней).
3. Комплексное лечение больных ССГ, сопряженым с ДМЖ, должно носить не только слезозаместительный характер, но и содержать препараты, стабилизирующие липидный слой слезной пленки. Выбор препаратов определяется этиологическими факторами. При наличии бактериальной инфекции - Офлоксацин глазная мазь - 2 раза в день на края век в течение 10-14 дней, при ДМЖ на фоне гормонального дисбаланса и при отсутствии бактериальной инфекции - ВитА-Пос (2 раза в день, 10-14 дней).
4. При ДМЖ на фоне демодекозной инвазии рекомендуется применение комплексного метода лечения, включающего массаж век, обработку корней ресниц 0,5% раствором метронидазола, аппликации мази пренацид на кожу век и воздействие на веки переменным магнитным полем (напряженность ЮмТл, частота 17 Гц). Комплексное лечение направлено на различные звенья патогенеза ДМЖ, восстановление функционального состояния МЖ, соответствующее восстановлению слезной пленки.
Список использованной литературы по медицине, диссертация 2008 года, Миронкова, Елена Александровна
1. Золоторева М.М. Пособие для практического врача-офтальмолога. 1961. — С.193-195.
2. Майчук Д.Ю. Патогенетическая роль воспаления в формировании вторичного сухого глаза. Сб.науч.статей «Современные методы диагностики в офтальмологии». 2006. - С.255-258
3. Полунин Г.С., Сафонова Т.Н., Федоров A.A., Полунина Е.Г. Блефарогели в комплексном лечении блефароконъюнктивитов и синдрома сухого глаза. Клиническая офтальмология, т.5, 2004, №1, С. 12-14.
4. Майчук Ю.Ф., Миронкова Е.А. Глазные капли Фуциталмик в лечении инфекционных блефаритов. «Рефракционная хирургия и офтальмология», -2003, том 3, С.36-40.
5. Бржевский В.В., Сомов Е.Е. Синдром «сухого глаза»: болезнь цивилизации// Consilium provisorum. 2002.- т.2. - №4. - С. 12-15
6. Бржевский В.В., Сомов Е.Е. Современные методы лечения роговично-конъюнктивального ксероза // 3-я ВШО. М., 2004. - С.250-257
7. Бржеский В.В:, Сомов Е.Е. Синдром сухого глаза: современные аспекты диагностики и лечения. Синдром сухого глаза. 2002. №1.- С.3-9.
8. Петрович Ю.А., Терехина H.A. Биохимия слезы и ее изменение при патологии //Вопр. мед. химии.-1990.- Вып.З.- С.13-18.
9. Чеснокова Н.Б. Клиническое значение биохимического исследования слезной жидкости //Мед. Реф.Журнал: Разд.8. 1986.- N3.- С.7-11.
10. Майчук Д.Ю., Кашинкова O.A., Кудряшов В.В. Терапия синдрома сухого глаза до и после фоторефракционной хирургии. Синдром сухого глаза. 2002.2.- С.12-14.
11. Майчук Д.Ю. Клинические формы вторичного «сухого глаза»: патогенез, терапия и профилактика.//Новые технологии в лечении заболеваний роговицы. Mi, 2004. - С.702-706
12. Майчук Д.Ю. Клинические формы вторичного сухого глаза* в офтальмохирургии и терапии // Eye World. 2002. - №3. - С.36-37
13. Майчук Ю.Ф., Щипанова А.И., Лазенкова A.A. Лекарственная терапия в лечении роговичных поражений при синдроме сухого глаза. Пособие для врачей Минздрава РФ.М. 1997.-С.16.
14. Пирогов Ю.И., Бржеский В.В., Давыдов В.А., Пасхина М.Н. Иммунологический статус больных с синдромом "сухих глаз" различного генеза // Боевые повреждения органа зрения. СПб., 1993. - С.135.
15. Железнякова Г.Ф., Тихомирова О.В. // Медицинская иммунология, 2004, № 3-5, С. 307.32,34.
16. Акилов. O.E.,. Казанцева С.В,.Власова И.А Особенности иммунного ответа при инвазии различных видов клещей рода Demodex Российский иммунологический журнал 2001т6№4, С. 399
17. Слепова О.С. Иммунодиагностика и обоснование иммунокоррегирующей терапии при воспалительных заболеваниях глаз. // Актуальные вопросы воспалительных заболеваний глаз. М. -2001. -242 С.-21, 22.
18. Егоров Е.А., Егорова Г.Б. Новый препарат искусственной слезы пролонгированного действия «офтагель» для коррекции синдрома сухого глаза. Клинич. Офтальмол. 2001.№3. С.123-124.
19. Майчук Д.Ю. Препараты Лекролин и Офтагель при синдроме сухого глаза, сочетающимся с аллергическим конъюнктивитом. Рефракц. Хирургия и офтальмология 2002.2.№2. С.57-61.
20. Майчук Ю.Ф., Поздняков В.ИМ Позднякова В.В., Якушина JI.H. Противоаллергические глазные капли «Полинадим» экспериментально-клинические исследования.//Вестн.офтальмол.-2006. №5.-С.35-38
21. Майчук Ю.Ф. Пренацид, глазная мазь и капли. Пятнадцать лет в офтальмологической практике в России // Рефракционная хирургия и офтальмология 2004.2.- С.- 12
22. Щипанова А.И.,Майчук Д.Ю. Циклолип липосомальные глазные капли циклоспорина - при экспериментальном увейте // Иммунология - 1998.-N 2.-С.-45-47:
23. Азнабаев М.Т и др., «Демодекоз глаз», 2004 с 115
24. Майчук Ю.Ф. В кн.: Паразитарные заболевания глаз. М.: Медицина, 1988.-С. 52-53.
25. Ковалевская М. А. Разработка методов экспресс диагностики и оценки динамики терапии при некоторых инфекционных заболеваниях глаз. Дисс.: Докт. мед. наук. Москва 2006. С. 59.
26. Маценко В.П., Мальковская Е.Е., Соловьева В.В. Материалы Юбилейной научно-практической конференции. Омск.1997.Вып.З.С.162-164.
27. Раткина H.H. Массаж мейбомиевых желез в комплексном лечении дистрофии роговицы. Вестн. Межрегион.ассоц. «Здравоохранение Сибири», 2001. №2. С.45-47.
28. Г.Н.Драник, Ю.А.Гриневич, Г.М.Дизик. Иммунотропные препараты. 1994. С.-199-200.
29. Хаитов P.M., Гущин И.С., Пинегин Б.В., Зебрев А.И. Экспериментальное изучение иммунотропной активности фармакологических препаратов. // Вед фармакол ком -1999.- №1: -С. 31-36.
30. Хаитов Р.М, Пинегин Б.В. Иммуномодуляторы и некоторые аспекты их клинического применения.// Клин мед -1996.- №8,: -С. 7-12.
31. Хаитов P.M., Пинегин B.Bl Вторичные иммунодефициты:-С. клиника, диагностика, лечение. // Иммунология. -1999, №1, -С.14-17.
32. Хаитов P.M., Пинегин Б.В. Современные представления о защите организма от инфекции. // Иммунология.- 2000.- №1: -С. 61-64.
33. Хаитов P.M., Пинегин Б.В., Андронова Т.М. Отечественные иммунотропные лекарственные средства последнего поколения и стратегия их применения.//Леч врач: -1998. -№ 4: -С. 46-51.
34. Пинегин Б.В, Яздовский В.В, Борисов A.M., Хорошилова Н.В., Андронова Т.М., Хаитов P.M. //Методич. реком. № 96/181.- М:-2000.С.- 16
35. Хаитов Р.М:, Пинегин Б.В., Основные принципы иммуномодулирующей терапии. //Аллергия, астма клин иммунол. -2000.- №1: -С. 9-16. 317 .
36. Майчук Д.Ю.,.Яни Е.В, Шипанова А.И.,.Майчук Ю.Ф Офтальмоферон в противовоспалительной и симптоматической терапии вторичного сухого глаза.// Рефракционная хирургия и офтальмология, 2005, том 5(№1), С.61-65.
37. Майчук Ю.Ф., Е.В.Яни Офтальмоферон в лечении аденовирусных заболеванишглаз. // Окулист, № 5- 2006, С.- 18.
38. Зацепина Н.Д., Майчук Ю.Ф., Семенова Г.Я. Поражение глаз при демодекозе: метод, рекомендации; М., 1983. С- 17.
39. Быковская Г.Н., Слепова О.С. // Медицинская иммунология, 2004, №№ 35, С.- 299-300.
40. Тотолян A.A., Марфичева H.A., Тотолян H.A. «Иммуноглобулины в клинической лабораторной диагностике», С-Пб, 1996. С. 67.
41. Кукайн Э.М., Хазенсон Л.Б.// ЖМЭИ, 1978, №2 С. 56-61.
42. Кукайн Э.М.,Хазенсон Л.Б., Рыбкин А.Н. // ЖМЭИ,1977,№ 8. С.106- 111.
43. Новикова-Билак Т. А. Клинико-иммунологические подходы к профилактике развития и прогрессирования диабетической ретинопатии у больных инсулинзависимым сахарным диабетом.: Дисс. канд.мед.наук — Москва, 2003 С.67.
44. Величко Л.Н. Иммунобиологические эффекты интерферона/Юфтальмол. Журн.- 1997.-№6.- С. -14-20.
45. Жабоедов Г.Д., Киреев В.В. Диагностика и лечение дефицита слезы //Офтальмол. Журн.-1994.-№4.- С.245-249.
46. Кашникова O.A. Состояние слезной жидкости и способы стабилизации слезной пленки в фоторефракционной хирургии. Диии.канд.мед.наук. М., 2000 С.53.
47. Яковлев В.П., Литовченко К.В.// Инфекции и антимикробная терапия. 2001. т.З. №5. - С. 132-140
48. Солнцева В.К., Быков A.C., Воробьев A.A., Матюшкин А.П., Корн М.Я. // Медицинская паразитология и паразитарные болезни. 2001.- №2.- С.23-25.
49. Цветков А.Л., Терещенкова Т.Ф. Хирургическая реабилитация больных с перфорацией язвы роговицы на фоне ССГ. Вестн. Офтальмологии 2001 январь- Февраль;117(1): С48-9.
50. Gutgesell YJ, Stern GA, Hood CI. Histopathology of meibomian gland dysfunction. Am J Ophthalmol 1982; 94:383-387.
51. Jester JV, Nicolaides N, Kiss-Palvolgyi I, Smith RE. Meibomian gland dysfiinction.il. The role of keratinization in a rabbit model of MOD. Invest Ophthalmol Vis Sci 1989; 30:936-945.
52. Mathers WD, Shields WJ, Sachdev MS, Petroll WM, Jester JV. Meibomian gland dysfunction in chronic blepharitis. Cornea 1991; 10:277-285.
53. Davidorf JM. LASIK and dry eye. Ophthalmology. 2002; 109:1948-1949.
54. Rozsa AJ, Guss RB, Bcucrman RW. Neural remodeling following experimental surgery of the rabbit cornea. Invest Ophthalmol Vis Sci. 1983:24:1033-1051.
55. Trevor-Roper PD. The eye and its disorders. . The bony orbit, lids and lacrimal apparatus. Int Ophthalmol Clin 1974; 14:26-44.
56. Ozanics VJ, F. Prenatal development of the eye and its adenexa. In: WT Tasman and EA Jaeger, eds.) Duane's Foundations of Clinical phthalmoloy. Vol 1. Philadephia: Lippincott, 1993:2-73.
57. Seifert P, Spitznas M. Immunocytochemical and ultrastructural evaluation of the distribution of nervous tissue and neuropeptides in the meibomian gland. Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol 1996; 234:648-656.
58. Meneray MA, Bennett DJ, Nguyen DH et al. Effect of sensory denervation on the structure and physiologic responsiveness of rabbit lacrimal gland; Cornea.! 998; 17:99-107.
59. Seifert P, Spitznas M. Vasoactive intestinal polypeptide (VIP) innervation of the human eyelid glands. Exp Eye Res 1999; 68:685-692.
60. Kirch W, Horneber M, Tamm ER. Characterization of meibomian gland innervation in the cynomolgus monkey (Macacafascicularis). Anat Embryo) 1996; 193:365-375.
61. Mathers WD, Lane JA, Zimmerman MB. Tear film changes associated with normal aging. Cornea 1996; 15:229-234.
62. Bron AJ, Benjamin L, Snibson GR. Meibomian gland disease. Classification and grading of lid changes. Eye 1991; 5:395-411.
63. Hykin PG, Bron A J. Age-related morphological changes in lid margin and meibomian gland anatomy. Cornea 1992; 11:334-342. 26,27, 28.
64. Benjamin D. Sullivan, MS; James E. Evans; M. Reza Dana, MD, MSc, MPH; David A. Sullivan, PhD Influence of Aging on the Polar and Neutral Lipid Profiles in Human Meibomian Gland Secretions . Arch Ophthalmol. 2006;124:1286-1292.
65. Yokoi N, Mossa F, Tiffany JM, Bron AJ. Assessment of meibomian gland function in dry eye using meibometry. Arch Ophthalmol 1999; 117:723-729.
66. Krenzer KL, Dana MR, Ulman MD et al. Effect of androgen deficiency on human meibomifn gland and ocular surface. J Clin Endocrinol Menab. 2000; 85: 4874-4882
67. Schaumberg DA, Buring JE, Sullivan DA et al. Hormone replacement therapy and dry eye syndrome. JAMA. 2001 ;286: 2114 2119.
68. Cermak JM, Krenzer KL, Dana MR et al. Do individuals with complete androgen insensivity display the sings and symptoms of dry eye? Invest Ophthalmol Vis Sei. 1999; 40 (Suppl.):S2836.
69. Sullivan BD, Dana MR, Sullivan DA. Influence of aging on the polar and neutral lipid profiles in human meibomian gland secretions. Invest Ophthalmol Vis1. Sei. 2001; 42:S39.
70. Sullivan BD, Evans JE, Cermak JM, Krenzer KL, Dana MR, Sullivan DA. Complete androgen insensitivity syndrome: effect on human meibomian gland secretions. Arch Ophthalmol 2002; 120:1689-1699.
71. Cermak JM, Krenzer KL, Sullivan RM et al. Is comp;ete androgen insensivity syndrome associated with alterations in the meibomian gland and ocular surface? Cornea. 2003;22:516-521. 4,5,34,38,183-186).
72. Thody AJ, Shuster S. Control and function of sebaceous glands.PhysiolRev. 1989;69:383-416.
73. Puy LA, Turgeon C, Gagne D et al. Localization and regulation of expression of the FAR-17A gene in the hamster flank organs. J Invest Dermatol. 1996; 107: 44-50.
74. Stewart ME, Downing DT, Cook JS et al. Sebaceous gland activity and serum dehydroepiandrosterone sulfate levels in boys and girls. Arch Dermatol 1992;128:1345-1348.
75. Choudhry R, Hodgins MB, Van der Kwast TH et al. Localization of androgen receptors in human skin by immunohistochemistry: implications for the horm onal regulation of hair growth, sebaceous glands and sweat glands. J Endocrinol. 1992;133:467-475.
76. Deplewski D, Rosenfield RL. Role of hormones in pilosebaceous unit development. EndocrRev. 2000;21:363-392.
77. Hamilton JB. Male hormone substance: A prime factor in acne. J Clin Endocrinol Metab. 1941; 1:570.
78. Rony HR, Zakon SJl Effect of androgen on the sebaceous glands of human skin Arch Dermatol Syphilol. 1943;48:601-604.
79. Zouboulis CC, Akamatsu H, Stephanek K et al. Androgens affect the activity of human sebocytes in culture in a manner dependent on the localization of the sebaceous glands and their effect is antagonized by spironolactone. Skin Pharmacol 1994;7:33-40.
80. Pochi PE. Acne: endocrinologie aspects. Cutis. 1982;30:212-222.
81. Pochi PE, Strauss JS. Endocrinologie control of the development and activity of the human sebaceous gland. J Invest Dermatol. 1974;62:191-201.
82. Akamatsu H, Zouboulis CC, Orfanos CE. Control of human sebocyte proliféra tion in vitro by testosterone and 5-alpha-dihydrotestosterone is dependent on the localization of the sebaceous glands. J Invest Dermatol.\992;99\509-5^\.
83. Luderschmidt C, Eiermann W, Jawny J. Steroid hormone receptors and. their relevance for sebum production in the sebaceous gland ear model of the Syrian hamster. Arch Dermatol Res. 1983;275:175-180.
84. Hall DW, van den Hoven WE, Noordzij-Kamermans NJ et al. Hormonal control of hamster ear sebaceous gland lipogenesis. Arch Dermatol Res. 1983;275:1-7.
85. Strauss JS, Pochi PE. The human sebaceous gland: its regulation by steroidal hormones and its use as an end organ for assaying androgenicity in vivo. Ree Prog Horm Res. 1963;19:385.
86. Imperato-McGinley J, Gautier T, Cai LQ et al. The androgen control of sebum production. Studies of subjects with dihydrotestosterone deficiency and complete androgen insensitivity. J Clin Endocrinol Metab. 1993;76:524-528.
87. Miyake K, Ciletti N, Liao S et al. Androgen receptor expression in the preputial gland and its sebocytes. J Invest Dermatol. 1994; 103:721-725.
88. Luu-The V, Sugimoto Y, Puy L et al Characterization, expression, and immuno-histochemical localization of 5 alpha-reductase in human skin. J Invest Dermatol 1994; 102:221-226.
89. Zouboulis CC, Seltmann H, Neitzel H et al. Establishment*and characterization of an immortalized human sebaceous gland cell line (SZ95). J Invest Dermatol. 1999;113:1011-1020.
90. Ito A, Sakiguchi T, Kitamura K et al. Establishment of a tissue culture system for hamster sebaceous gland cells. Dermatology. 1998; 197:238-244.
91. Sullivan DA, Sullivan BD, Ullman MD et al. Androgen influence on the meibomian gland. Invest OphthalmolVis Sei. 2000;41:3732-3742.
92. Wickham LA, Gao J, Toda I et al. Identification of androgen, estrogen and prog esterone receptor mRNAs in the eye. Ada Ophthalmol Scand. 2000;78:146-153.
93. Rocha EM, Wickham LA, da-Silveira LA et al. Identification^ of androgen receptor protein and 5alpha-reductase mRNA in human ocular tissues. Br JOphthalmol. 2000;84:76-84.
94. Yamagami.H, Richards SM, Sullivan BD et al. Gender-associated differences in gene expression of the meibomian gland. Adv Exp Med Biol. 2002;506:459-A63.
95. Yamagami H, Schirra F, Liu M et al. Androgen influence on gene expression in the meibomian gland. Adv Exp Med Biol. 2002;506:477-481.
96. Steagall RJ, Cermak JM, Wickham LA et al. Androgen control of gene expression in the rabbit meibomian gland. Invest Ophthalmol Vis Sei. 1999;40: S2836.
97. Steagall RJ, Yamagami H, Wickham LA et al. Androgen control of gene expression in the rabbit meibomian gland. Adv Exp Med Biol. 2002;506: 465-476.
98. Schirra F, Richards SM, Sullivan DA. Androgen influence on cholesterogenic enzyme mRNA levels in the mouse meibomian gland. Curr Eye Res. 2007 May;32(5):393-8.
99. Schirra F, Richards SM, Liu M, Suzuki T, Yamagami H, Sullivan DA. Androgen regulation of lipogenic pathways in the mouse meibomian gland. Exp Eye Res. 2006 Aug;83(2):291-6.
100. Richards SM, Yamagami H, Schirra F, Suzuki T, Jensen RV, Sullivan DA Sex-related effect on gene expression in the mouse meibomian gland.
101. Curr Eye Res. 2006 Feb;31(2):119-28.
102. Suzuki T, Schirra F, Richards SM, Treister NS, Lombardi MJ, Rowley P, Jensen RV, Sullivan DA. Estrogen's and progesterone's impact on gene expression- in the mouse lacrimal gland. Invest Ophthalmol Vis Sei. 2006 Jan;47(l):158-68.
103. Krenzer KL, Dana MR, Ullman MD et al. Effect of androgen deficiency on the human meibomian gland and ocular surface. J Clin Endocrinol Meta&.2000;85:4874-4882.
104. Sullivan BD, Dana MR, Sullivan DA. Influence of aging on the polar and neutral lipid profiles in human mebiomian gland secretions. Invest Ophthalmol Vis Sc/.2001;42:S39.
105. Sullivan BD, Evans JE, Cermak JM et al. Complete androgen insensitivity syndrome: effect on human meibomian gland secretions. Arch Ophthalmol. 2002; 120:1689-1699.
106. Schaumberg DA, Buring JE, Sullivan DA et al. Hormone replacement therapy and dry eye syndrome. JAMA. 2001;286:2114-2119.
107. PharMetrics/NDC Health Information Services. Prevalence and treatment of dry eye in a managed care population. Draft Report. 2000.
108. Wirth H, Gloor M, Kimmel W. Influence of cyproterone acetate and estradiol on cell kinetics in the sebaceous gland of the golden hamster ear. Arch Dermatol Res. 1980;268:277-281.
109. Schafer G, Krause W. The effect of estradiol on the sebaceous gland of the hamster ear and its antagonism by tamoxifen. Arch Dermatol Res. 1985;277:230-234.
110. Sweeney TM, Szarnicki RJ, Strauss JS et al. The effect of estrogen and androgen on the sebaceous gland turnover time. J Invest Dermatol. 1969;53:8-10.
111. Strauss JS, Kligman AM, Pochi PE. The effect of androgens and estrogens on human sebaceous glands. J Invest Dermatol. 1962;39:139-155.
112. Sansone-Bazzano G, Reisner RM, Bazzano G. A possible mechanism of action of estrogen at the cellular level in a model sebaceous gland. J Invest Dermatol. 1972;59:299-304.
113. Saihan EM, Burton JL. Sebaceous gland suppression in female acne patients by combined glucocorticoid-oestrogen therapy. Br J Dermatol. 1980; 103:139142.
114. Pochi PE, Strauss JS. Sebaceous gland inhibition from combined glucocorticoid-estrogen treatment. Arch Dermatol. 1976; 112:1108-1109.
115. Suzuki T, Sullivan BD, Liu M et al. Estrogen and progesterone effects on the morphology of the mouse meibomian gland. Adv Exp Med Biol. 2002; 506:483-488.
116. Suzuki T, Schaumberg DA, Sullivan BD et al. Do estrogen and progesterone play a role in the dry eye of Sjogren's syndrome? Ann NY Acad Sci. 2002;966: 223-225.
117. Suzuki T, Sullivan D. Influence of estrogen and progesterone on gene expression in the mouse meibomian gland. Submitted for publication 2004.
118. Matias JR, Malloy VL, Orentreich N. Synergistic antiandrogenic effects of topical combinations of 5 alpha-reductase and androgen receptor inhibitors in the hamster sebaceous glands. JInvest Dermatol. 1988;91:429-433.
119. Nuck BA, Fogelson SL, Lucky AW. Topical minoxidil does not act as an anti-androgen in the flank organ of the golden Syrian hamster. Arch Dermatol. 1987;123:59-61.5
120. Girard J, Barbier A, Lafille C Inhibition of testosterone metabolism and lipogenesis in animal sebaceous glands by progesterone. Arch Dermatol Res. 1980;269:281-290.
121. Smith JG, Brunot FR. Hormonal effects on aged human sebaceous glands. Acta Derm Venereol. 1961;41:61-65
122. Girard J, Barbier A, Lafille C Inhibition of testosterone metabolism and lipogenesis in animal sebaceous glands by progesterone. Arch Dermatol Res. 1980;269:281-290.
123. Hinks WM; Thody AJ, Shuster S. Proceedings: Effect of progesterone on sebaceous gland activity in the rat. J Endocrinol. 1975;64:48PAt9P.
124. Pal P, Bhattacharyya SP. Influence of progesterone on the activity of sebaceous gland in rat. Indian J Dermatol. 1985;30:1 1-19.4
125. Lely MA van der. The nature of the action of progesterone on the sebaceous gland of the rat. Dermatologica. 1966;133:452-455.
126. Bamford JT. Rosacea: current thoughts on origin. Semin Cutan Med Surg 2001; 20:199-206.
127. Barton K, Nava A, Monroy DC, Pflugfelder SC. Cytokines and tear function in ocular surface disease. Adv Exp Med Biol 1998; 438:461-469.
128. Huber-Spitzy V, Baumgartner I, Bohler-Sommeregger K, Grabner G.Blepharitis—a diagnostic and therapeutic challenge. A report on 407 consecutive cases. Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol 1991; 229:224-227 .
129. Barton K, Monroy DC, Nava A, Pflugfelder SC. Inflammatory cytokines in the tears of patients with ocular rosacea. Ophthalmology 1997; 104:1868-1874.
130. Mathers WD, Lane JA, Sutphin JE, Zimmerman MB. Model for ocular tear, film function. Cornea 1996; 15:110-119:
131. Robin JB, Jester JV, Nobe J, Nicolaides N, Smith RE. In vivo transillumination'biomicroscopy and photography of meibomian gland dysfunction: A clinical study. Ophthalmology 1985; 92:1423-1426.
132. Zengin N, Tol H, Gunduz K, Okudan S, Balevi S, Endogru H. Meibomian gland dysfunction and tear film abnormalities in rosacea. Cornea 1995; 14:144146:
133. Lemp MA, Mahmood MA, Weiler HH. Association of, rosacea and keratoconjunctivitis sicca. Arch Ophthalmol 1984; 102:556-557.
134. McCulley JP, Dougherty JM, Deneau DG. Classification of chronic blepharitis. Ophthalmology 1982; 89:1173-1179.
135. McCulley JP, Dougherty JM. Bacterial aspects of chronic blepharitis. Trans Ophthalmol Soc UK 1986; 105:314-318.
136. Crow KD. Chloracne and its potential clinical implications. Clin Exp Dermatol 1981; 6:243-257.
137. Jester JV, Nicolaides N, Kiss-Palvolgyi I, Smith RE. Meibomian gland dysfunction.n. The role of keratinization in a rabbit model of MOD. Invest Ophthalmol Vis Sci 1989; 30:936-945.
138. Kanski J.J. Kliniche Ophthalmologie:Lehrbuch und Atlas/ 5 Auflage. — Munchen; Jena, 2003.-732 P149.' Thygeson P. The etiology and treatment of blepharitis: a study in military personnel.Military Surg 1946; 98:191-203.
139. Tetz MR, Klein U, Volcker HE, et al. Staphylococci-associated blepharo-kerato-conjunctivitis. Ophthalmologe 1997; 94:186-190.
140. Seal D, Picker L, Ramakrishnan M, Wright P. Role of staphylococcal toxin production in blepharitis. Ophthalmology 1990; 97:1684-1688:
141. Gutgesell VJ, Stern GA, Hood CI. Histopathology of meibomian gland-dysfunction.Am J Ophthalmol. 1982 Sep;94(3):383-7
142. Song CH, Choi JS, Kim DK, Kim JC. Enhanced secretory group II PLA2 activity in the tears of chronic blepharitis patients. Invest Ophthalmol Vis Sci 1999; 40:2744-2748.
143. Gouveia SM, Tiffany JM.Related Articles, Human tear viscosity: an interactive role for proteins and lipids. Biochim Biophys Acta. 2005 Dec 1; 1753(2): 155-63. Epub 2005 Sep 21.
144. Dougherty JM, McCulley JP. Analysis of the free fatty acid component of meibomian secretions in chronic blepharitis. Invest Ophthalmol Vis Sci 1986; 27:52-56.
145. Dougherty JM, McCulley JP. Bacterial Upases and chronic blepharitis. Invest Ophthalmol Vis Sci 1986; 27:486-491.
146. Seal DV, McGill JI, Jacobs P, Liakos GM, Goulding NJ. Microbial and immunological investigations of chronic non-ulcerative blepharitis and. meibomianitis. Br J Ophthalmol 1985; 69:604-611.
147. Groden LR, Murphy B, Rodnite J, Genvert GI. Lid flora in blepharitis. Cornea 1991; 10:50-53.
148. Shine W.E., McCulley Polar lipids in human meibomian gland secretions. Curr Eye Res. 2003 Feb;26(2):89-94.
149. Shine WE, McCulley JP. Keratoconjunctivitis sicca associated with meibomian secretion polar lipid abnormality. Arch Ophthalmol 1998; 116:849852.
150. Shine W.E., McCulley JP. Association of meibum oleic acid with meibomian seborrhea. Cornea 2000; 19:72-74.
151. Aronowicz JD, Shine WE, Oral D, Vargas JM, McCulley JP. Short term oral minocycline treatment of meibomianitis. Br J Ophthalmol. 2006 Jul;90(7):856-60.
152. Shimazaki J, Goto E, M. O, Shimura S, Tsubota K. Meibomian gland dysfunction in patients with Sjogren syndrome. Ophthamology 1998; 105:14851488.
153. Mathers WD, Lane JA. Meibomian, gland lipid, evaporation, and tear film stability. In: Sullivan DA, Stern ME, Tsuboota K, Dartt DA, Sullivan RM, Bromberg BB, eds. Lacrimal Gland, Tear Film, and Dry Eye Syndromes 2. New York: Plenum, 1998:349-360.
154. Mathers WD, Daley TE. Tear flow and evaporation in patients with and without dry eye. Ophthalmology 1996; 103:664-669
155. Gilbard JP. The diagnosis and management of dry eyes. Otolaryngol Clin North Am. 2005 Oct;38(5):871-85.
156. Tsubota K, Yamada M. Tear evaporation from the ocular surface. Invest Ophthalmol Vis Sci 1992; 33(10):2942-2950.
157. Korb DR. Survey of preferred tests for diagnosis of the tear film and dry eye.Cornea 2000; 19:483-486.
158. Tomlinson A, Trees OR, Occhipinti JR. Tear production and evaporation in the normal eye. Ophthalmic Physiol Opt 1991; 11:44-47.
159. Bowman RW, Dougherty JM, McCulley JP. Chronic blepharitis and dry eyes. Int Ophthalmol Clin 1987; 27:27-35.
160. Stem ME, Beuerman RW, Fox RI, Gao J, Mircheff AK, Pflugfelder SC. A unified theory of the role of the ocular surface in dry eye. Adv Exp Med Biol 1998; 438:643-651.
161. Tsubota K. Tear dynamics and dry eye. Prog Retinal Eye Res 1998; 17:565596.
162. Mathers W. Why the eye becomes dry: a cornea and lacrimal gland feedback model. CLAO J 2000; 26:159.
163. Lemp MA. Report of the National Eye Institute/Industry Workshop on Clinical Trials in Dry Eyes. CLAOJ. 1995;21:221-232
164. Stern ME, Beuerman RW, Fox RI et al. The pathology of dry eye: the interaction between the ocular surface and lacrimal glands. Cornea. 1998; 17:584589.
165. Wolff E. The Anatomy of the eye and orbit.- 4-th ed.- New York: Blakinston Co, 1954.- 491
166. Van Haeringen N.J: Clinical biochemistry of tears //Surv. Ophthalmol.-1981.- Vol.26, N.2:- P.84-96.
167. Sharma A. Energetics of corneal epithelial cell-ocular mucus-tear film interactions: Some surfase-chemical pathways of corneal defens //Biophis.Chem.-1993.- Vol.47, N1.- P.87-99
168. Lemp MA. The 1998 Castroviejo Lecture. New strategies in the treatment of dry-eye states. Cornea. 1999; 18:625-632.
169. Hisatake K. Evaporation of water in a vessel. J Appl Physiol 1993; 73:73957401.
170. Kurihashi K, Yanagihara N, Honda Y. A modified Schirmcr test: the fine-thread method for measuring lacrimation. J Pedialr Ophthalmol. 1977:14:390 397.
171. Van Bijsterveld OP. Standardization of the lysozymc test for a commercially available medium. Its use for the diagnosis of the sicca syndrome. Arch Ophthalmol 1974:91:432-434.
172. Mackie IA, Seal DV Diagnostic implications of tear protein profiles. Br J Ophthalmol 1984;68:321-324.
173. Mathers WD, Lane JA, Zimmerman MB. Assessment of the tear film with tandem scanning confocal microscopy. Cornea 1997; 16:162-168.
174. Mathers WD, Binarao G, Petroll M. Ocular water evaporation and the dry eye. A new measuring device. Cornea 1993; 12:335-340.
175. Korb DR, Greiner JV, Glonek T, et al. Human and rabbit lipid layer and interference pattern observations. Adv Exp Med Biol 1998; 438:305-308.
176. Korb DR, Baron DF, Herman JP, et al. Tear film lipid layer thickness as a function of blinking. Cornea 1994; 13:354-359.
177. Doane MG. Abnormalities of the structure of the-superficial lipid layer on the in vivo dry-eye tear film. Adv Exp Med Biol 1994; 350:489-493.
178. Prydal JI, Campbell FW. Study of precorneal tear film thickness and structure by interferometry and confocal microscopy. Invest Ophthalmol Vis Sci 1992; 33:1996-2005.
179. Prydal JI, Artal P, Woon H, Campbell FW. Study of human precorneal tear film thickness and structure using laser interferometry. Invest Ophthalmol Vis Sci 1992; 33:2006-2011.
180. Shimazaki J, Goto E, M. O, Shimura S, Tsubota K. Meibomian gland dysfunction, in patients with Sjogren syndrome. Ophthamology 1998; 105:14851488.
181. Lee SH, Tseng SC. Rose bengal staining and cytologic characteristics associated with lipid tear deficiency. Am J Ophthalmol 1997; 124:736-750.
182. Barton K, Nava A, Monroy DC, Pflugfelder SC. Cytokines and tear function in ocular surface disease. Adv Exp Med Biol 1998; 438:461-469.
183. Thakur A, Willcox MD. Cytokine and lipid inflammatory mediator profile of human tears during contact lens associated inflammatory diseases. Exp Eye Res 1998; 67:9-19.
184. Sullivan DA, Edwards JA. Androgen stimulation of lacrimal gland function in mouse models of Sjogren's syndrome. J Steroid Biochem Mol B/o/. 1997; 60:237-245. 7).
185. Gao J, Schwalb TA, Addeo J et al. The role of apoptosis in the pathogenesis of canine keratoconjunctivitis sicca: the effect of topical Cyclosporin A therapy. Cornea. 1998:17:654-663.
186. Kirch W, Horneber M, Tamm ER. Characterization of meibomian gland innervation in the cynomolgus monkey (Macacafascicularis). Anat Embryo 1996; 193:365-375.
187. Stern ME, Beuerman RW, Fox RI et al. The pathology of dry eye: the interaction between the ocular surface and lacrimal glands. Cornea. 1998:17:584589.
188. Jones DT, Monroy D, Ji Z et al. Sjogren's syndrome: cytokine and Epstein-Barr viral gene expression within the conjunctival epithelium. Invest Ophthalmol VisSci. 1994;35:3493-3504.
189. Pflugfelder SC, Solomon A, Dursun D, Li DQ. Dry eye and delayed tear clearance: "a call to arms.". Adv Exp Med Biol. 2002; 506(Pt B):739-43.
190. Seal DV, McGill JI, Jacobs P, Liakos GM, Goulding NJ. Microbial and immunological investigations of chronic non-ulcerative blepharitis and meibomianitis Br J Ophthalmol. 1985 Aug;69(8):604-1
191. Liu SH, Tagawa Y, Prendergast RA, Franklin RM, Silverstein Secretory component of IgA: a marker for differentiation of ocular epithelium. Invest Ophthalmol Vis Sci. 1981 Jan;20(l): 100-9.
192. Calonge M. The treatment of dry eye. Surv Ophthalmol 2001; 45(suppl 2):S227~S239.
193. Fox RI. Sjogren's syndrome: current therapies remain inadequate for a common disease. Exp Opin Invest Drugs 2000; 9:2007-2016.
194. Howes JF. Loteprednol etabonate: a review of ophthalmic clinical studies. Pharmazie 2000; 55:178-183. 87
195. Stevenson D,Tauber J, Reis BL. Efficacy and safety of cyclosporin A ophthalmic emulsion in the treatment of modcrate-to-severe dry eye disease: a doseranging, randomized trial. The Cyclosporin A Phase 2 Study Group. Ophthalmology. 2000:107:967-974.
196. Perry HD, Doshi-Carnevale S, Donnenfeld ED, Solomon R, Biser SA, Bloom AH Efficacy of commercially available topical cyclosporine A 0.05% in the treatment of meibomian gland dysfunction.Cornea. 2006 Feb;25(2):171-5.
197. Angelov O, Wiese A, Yuan Y, Andersen J, Acheampong A, Brar B. Preclinical safety studies of cyclosporine ophthalmic emulsion. Adv Exp Med Biol 1998;438:991-995.
198. Sail K, Stevenson OD, Mundorf TK, Reis BL. Two multicenter, randomized studies of the efficacy and safety of cyclosporine ophthalmic emulsion in moderate to severe dry eye disease. Ophthalmology 2000; 107:631-639.
199. Tauber J*. A dose-ranging clinical trial to assess the safety and efficacy of cyclosporine ophthalmic emulsion* in patients with keratoconjunctivitis sicca. The Cyclosporine Study Group. Adv Exp Med Biol 1998; 438:969-972. 88-90.
200. Tsubota K, Goto E, Fujita H et al. Treatment of dry eye by autologous serum application in Sjogren's syndrome. Br J Ophthalmol 1999:83:390-395.
201. Miyachi Y, Yoshioka A, Imamura S, Niwa Y. Effect of antibiotics on* the generation of reactive oxygen species. J Invest Dermatol 1986; 86:449—453. 93.
202. Pruzanski W, Greenwald RA, Street IP, Laliberte F, Stefanski E, Vadas P.Inhibition of enzymatic activity of phospholipases A2 by minocycline and doxycycline. Biochem Pharmacol 1992; 44:1165-1170.
203. Li DQ, Lokeshwar BL, Solomon A, Monroy D, Ji Z, Pflugfelder SC. Regulation of MMP-9 production by human corneal epithelial cells. Exp Eye Res 2001;73:449-459.
204. Barnhorst DA, Foster JA, Chern KC, Meisler DM. The efficacy of topical metronidazole in the treatment of ocular rosacea. Ophthalmology 1996; 103:18801883.
205. Cermak JM, Papas AS, Sullivan RM, Dana MR, Sullivan DA. Nutrient intake in women with primary and secondary Sjogren's syndrome. Eur J Clin Nutr 2003; 57:328-334. 99
206. Ambrosio RJ, Stelzner SK, Boerner CF, Honan PR, Mclntyre DJ. Nutrition and dry eye: the role of lipids. Rev Refrac Surg 2002; August:29-32.
207. Francois CA, Connor SL, Wander RC, Connor WE. Acute effects of dietary fatty acids on the fatty acids of human milk. Am J Clin Nutr 1998; 67:301-308.
208. Key JE. A comparative study of eyelid cleaning regimens in chronic blepharitis. CLAOJ 1996; 22:209-212.
209. Weller R, Pattullo S, Smith L, Golden M, Ormerod A, Benjamin N. Nitric oxide is generated on the skin surface by reduction of sweat nitrate. J Invest Dermatol 1996; 107:327-331.
210. Greiner JV, Leahy CD, Glonek T, Heam SL, Auerbach D, Davies L. Effects of eyelid scrubbing on the lid margin. CLAO J 1999; 25:109-113.
211. E Goto, Y Monden, Y Takano, A Mori, S Shimmura, J Shimazaki, K Tsubota. Treatment of non-inflamed odstructive meibomian gland dysfunction by an infrared warm compression device. Br J Ophthalmol 2002;86:1403-1407
212. Rieger G. Lipid-containing eye drops: a step closer to natural tears. Ophthalmlogica 1990;201:206-12.
213. Tiffany JM. Lipid-containing eye drops letter. Ophthalmlogica 1991; 203:47-9.
214. E Goto et al. Castor Oil Eye Drops DMG. Ophthalmology V109, 11, 2002 P.2030-2034
215. Thiboutot DM, Gollnick HP. Treatment considerations for inflammatory acne: clinical evidence for adapalene 0.1% in combination therapies J Drugs Dermatol. 2006 Sep;5(8):785-94.
216. Wolf JE . Potential anti-inflammatory effects of topical retinoids and retinoid analogues. Jr Adv Ther. 2002 May-Jun; 19(3): 109-18.
217. Elitsur Y, Neace C, Liu X, Dosescu J, Moshier JA. Vitamin A and retinoic acids immunomodulation on human gut lymphocytes Immunopharmacology. 1997 Jan;35(3):247-53.
218. Langmann T, Liebisch G, Moehle C, Schifferer R, Dayoub R, Heiduczek S, Grandl M, Dada A, Schmitz G. Gene expression profiling identifies retinoids as potent inducers of macrophage lipid efflux Biochim Biophys Acta. 2005 May 30;1740(2): 155-61.