Автореферат и диссертация по медицине (14.00.16) на тему:Морфофункциональная характеристика лимфоидной ткани при антигенной стимуляции и аутосенсибилизации (Экспериментальное исследование)

АВТОРЕФЕРАТ
Морфофункциональная характеристика лимфоидной ткани при антигенной стимуляции и аутосенсибилизации (Экспериментальное исследование) - тема автореферата по медицине
Григорян, Наталья Аршаковна Ереван 1995 г.
Ученая степень
кандидата медицинских наук
ВАК РФ
14.00.16
 
 

Автореферат диссертации по медицине на тему Морфофункциональная характеристика лимфоидной ткани при антигенной стимуляции и аутосенсибилизации (Экспериментальное исследование)

ереванский государственный медицинский од университет им. м. гераци

3 РИ V

На правах рукописи

григорян наталья аршаковна

удк: 616.42-097+572.7

морфо-функциональная характеристика лимфоидной ткани при антигенной стимуляции и аутосен;сибилизации

(Экспериментальное исследование)

14.00.16-Патологическая физиология 14.00.23-Гистология, Цитология и Эмбриология

автореферат

диссертации на соискание ученой степени кандидата медицинских наук

е р е в ан -1995

Работа выполнена на кафедре гистологии, цитологии и эмбриологии Ереванского государственного медицинского университета им. М. Гераци (зав. проф. А. В. Азнаурян)

Научный руководитель - доктор медицинских наук,

профессор A.B. Азнаурян

Официальные оппоненты:

1. Доктор медицинских наук, профессор В.А. Шекоян

2. Доктор медицинских наук, профессор В.А. Мкртчян

Ведущая организация - Национальный институт здоровья Министерства здравоохранения Республики Армения.

Защита состоится " "_________ 1995 г. в часов

на заседании специализированного совета К.075.03.03 в Ереванском государственном медицинском университете им. М. Гераци (Ереван, 3750225, ул. Корюна,2).

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке Ереванского государственного медицинского университета им. М. Гераци.

Автореферат разослан " "_________ 1995 г.

Ученый секретарь а

Специализированного Совета ,-У/уС

кандидат медицинских наук, доцент^^/ ) А. С. Азнаурян

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность лемы. Благодаря успехам теоретической иммунологии в организме животных и человека определена система, которая отвечает за иммунологическую реактивность организма. Морфологически эта система представляется в виде лимфоидной ткани-центральных и периферических органов иммунной системы (Бернет М., 1971).

Иммунная система, аналогично другим системам организма обладает разнообразностью форм ответа, изучение особенностей которых позволяет раскрыть механизмы развития иммунологических изменений и иммунопатологических реакций и создает возможность разработать и предложить принципиально новые методы диагностики, лечения и профилактики заболеваний человека и животных.

Известно, что при некоторых заболеваниях человека иммунопатологические реакции генетически детерминированы, в связи с чем важным является изучение морфологических изменений, протекающих в лимфоидной-ткани, характерных для этих патологических процессов.

Имеющиеся в доступной нам литературе сведения о морфологических проявлениях иммуного ответа в условиях целого организма весьма ограничены. Монография Жариковой М.М. (1979), посвященная изучению морфологии периферических органов иммунитета, включает в себя исследования лимфоидных клеток и макрофагов лишь в селезенке и лимфатических узлах. Однако, весьма интересным и важным является морфофункциональное изучение в условиях антигенной стимуляции тимуса-центрального органа иммуногенеза.

Таким образом, вышеизложенное свидетельствует о важности и актуальности комплексного изучения функциональной морфологии периферических и центральных органов иммунитета в условиях антигенной стимуляции.

Цель и задачи исследования. Исходя из вышеизложенного мы задались целью изучить особенности морфологии лимфоидной ткани при антигенной стимуляции и врожденной аутосенсибилизации.

Конкретные задачи исследования сводились к следующему:

1. Изучить морфологические изменения тимуса, лимфатических узлов и селезенки при иг.мунизации животных ксеногенными эритроцитами;

2. Выявить характерные изменения лимфоидной ткани у животных с врожденной аутоиммунной патологией на уровнях световой и электронной микромкопии.

3. Провести цитохимический анализ лимфоцитов подопытных животных, а также изучить активность естественных киллеров и Т-супрессоров.

морфофункциональная характеристика изменений центральных и периферических лимфоидных органов при антигенной стимуляции и врожденной иммунопатологии.

данные обогащают наши знания о морфо-функциональных сдвигах, происходящих при врожденной аутоиммунной патологии и при антигенной стимуляции.

Впервые дана сравнительная

>_работы. Полученные

Выявленные морфо-функциональные изменения в центральных и периферических органах иммунной системы свидетельствуют о том, что тимус принимает активное участие при становлении гуморального иммунитета.

При этом электронномикроскопические и цитохимические исследования в сочетании с изучением субклеточных маркеров Ти В-лимфоцитов и гемолизинов в сыворотке крови подтвердили клеточные превращения, характерные для аутоиммунных состояний и явились информативными для оценки иммунитета.

Полученные данные позволяют расширить наши представления о роли тимуса и других лимфоидных органов при развитии иммунопатологических реакций.

1. Сила иммуного ответа животных, стимулированных антигеном находится в обратно-пропорциональной зависимости от их возраста;

2. Глубина морфофункциональных изменений в лимфоид-ной ткани при иммунизации чужеродными эритроцитами дает объективную информацию о приспособительных возможностях организма и намечает пути дезадаптационных мероприятий

Апробация работы. Основные положения диссертации доложены на заседаниях кафедры гистологии Ереванского мединститута им. М. Гераци (1985, 1994), на IX Всесоюзном съезде анатомов, гистологов и эмбриологов (г. минск, 1981), на Закавказской конференции морфологов (г. Ереван, 1987).

Публикации. По теме диссертации опубликовано 9 работ.

Структура и о6т»рм диссертации. Диссертация написана на русском языке, изложена на машинописи и состоит из введения, обзора литературы, материала и методов исследования, результатов собственных иследований, заключения и выводов. Работа иллюстрирована 7 таблицами и 35 рисунками. Список литературы включает 103 работ.

СОДЕРЖАНИЕ РАБОТЫ

Материал и методы.

Общая характеристика материала. Под опытом находились 550 мышей и 1200 крыс. Все животные в зависимости от характера воздействия разделялись на 2 группы. В I группу вошли 400 мышей и 1200 крыс, иммунизированных эритроцитами барана. II группу составляли мыши гибриды FiNZB/NZW, ВА4В/С и С57В4/6 с врожденной аутоиммунной патологией (150 животных).

У иммунизированных эритроцитами барана животных в разные сроки опыта (1,3,5,7,11,15,16,20 сутки) исследованы шейные и мезентеральные лимфатические узлы, селезенка и тимус. Образцы ткани фиксированы в 10% нейтральном формалине, жидкости Карнуа с последующей заливкой в парафин. Полученные срезы окрашивали гематоксилин-эозином, метиловым зеленым-пиронином для выявления РНК, ШИК-реакцией для выявления нейтральных мукополисахаридов (Пирс, 1962).

В свежезамороженных криостатных срезах выявляли следующие ферменты: кислую и щелочную фосфатазы,

сукцинатдегидрогеназу, глицерофосфатдегидрогеназу и НАД-диафоразу по методу Нахласа (М. Берстон, 1965). В дальнейшем производили количественный анализ содержания ферментов на цитофотометре.

Для выявления скорости синтеза ДНК в лимфоидных клетках лимфатического узла, селезенки, тимуса был использован метод авторадиографии. Для этого животным вводили внутрибрюшинно Н3-тимидин из расчета 0,8 микрокюри (гр. за 2 часа до забоя животного). Срезы вышеуказанных органов обрабатывались е}ютоэмульсией в течение 21 дня. В полученных препаратах определяли индекс мечения лимфоидных клеток, для сравнения подсчитывали в этих же клетках и митотический индекс. Оба показателя выражали в процентах.

В тимусе, селезенке, лимфатических узлах определяли наличие биогенных аминов (серотонина, гистамина) по методу Фалька-Хиларпа (Гордон Д.С. с соавт., 1962), с последующим количественным анализом на цитофотометре ЛЮМАМ-ИЗ, с диаметром зонда 0,1 мкм при длинах волн 585 и 550 мкм.

Для выявления активности клеток, продуцирующих антитела, производили количественный анализ РНК. С этой целью препараты обрабатывали галлоцианин-хромовыми квасцами по методу Эйнарсона (Гамке, 1980) с последующим анализом на цитофотометре.

Использовали также иммунолюминесцентный метод Кунса для выявления антителопродуцирующих клеток с использованием меченых глобулинов А,М,С-классов (Coons 1959).

Морфометрические исследования проводили для подсчета числа макрофагов и их фагоцитарной активности.

В тимусе выявляли внутриорганные кровеносные сосуды АТФ-азным методом Чилингаряна Г.М. с последующей морфо-метрической обработкой (Блинков С.М. с соавт., 1964).

Для сканирующей электронной микроскопии суспензию тимуса и селезенки фиксировали в 2% растворе глютаральдегида на 0,1 М натрий-какодилатном буфере (pH 7,3-7,4) при 37°, после чего отмывали и ресуспензировали в растворе Хенкса. После инкубации и фиксации суспензии глютаральдегидом клетки осаждали на алюминивую фольгу и материал проводили через ряд водных растворов ацетона восходящей концентрации. Высушивание проводили методом перехода критической точки из жидкой СС>2, после чего клетки напыляли серебром и исследовали в электронном микроскопе stereoscon Cambredge при ускоряющем напряжении 10 кВ.

Для трансмиссионной электронной микроскопии кусочки ткани из тимуса, селезенки и лимфатических узлов фиксировали в 2 % растворе глютаральдегида на какодилатном буфере (pH 7,4), после промывки и постфиксировки в 1% растворе OSO4 на том же буфере дегидратировали в ацетонах возрастающей концентрации и заливали аралдит или смесь эпона с аралдитом (Mollenhauer, 1964). В процессе дегидратации образцы контрастировали 0,5% раствором уранилацетата в 70% ацетоне. Ультратонкие срезы получали на ультратомах типа LKB и Reichert, контрастировали цитратом свинца (Reinolds, 1963) и просматривали в электронных микроскопах JEM-100B при ускоряющем напряжении 80 kV и Тесла.

С помощью плазмоцитарной реакции в отпечатках тимуса и селезенки определяли содержание антителообразующих клеток (Пурзвид С. с соавт., 1957), а в сыворотке крови-титр антител.

Исследовали также число АТОК по методу Ерне-Нордина (Никитин В.М., 1962), Т-лимфоцитов (Т-РОК) по Mendes (1977), функциональную активность натуральных киллеров и Т-супрессоров.

Результаты исследований и их обсуждение.

Результаты ферментативного ана\иза тимуса показали, что с 5-го дня иммунизации отмечается повышение активности исследованных ферментов: щелочной фосфатазы, НАД-диафоразы в эндотелии сосудов. При этом, активность щелочной фосфатазы к 5-му дню хорошо выражена в эндотелии мелких артерий и капилляров, расположенных чаще всего в междольковой соединительной ткани тимуса.

Начиная с 5-го дня эксперимента происходит постепенное нарастание коллатеральных анастомозов и увеличение диаметра отдельных капилляров в его корковом веществе.

Гладкомышечные клетки среднего слоя сосудов обладали наиболее высокой ферментативной активностью.

На 7-й день иммунизации в корковом веществе тимуса накапливаются макрофаги с выраженной активностью кислой фосфатазы.

Нередко такие клетки расположены на границе коркового и мозгового вещества дольки, образуя гнездные скопления. В эти сроки активность окислительно-восстановительных ферментов в клеточных структурах тимуса не меняется.

На 9-й день иммунизации в мозговом веществе концентрируется большое количество фосфатазоположительных

макрофагов и эпитериальных клеток стромы. Увеличиваете] количество сосудов, дающих реакцию на щелочную фосфатазу I НАД-диафоразу. В клетках кортико-медулярного слоя (тимоцита: и ретикулоэпителиальных) число гранул диформазана при реак ции НАД-диафоразу увеличивается. На 11-й день иммунизацш все исследованные ферменты проявляли низкую активность.

При люминесцинтно-микроскопическом исследованш тимуса выявлялись тканевые базофилы, разнообразные пс форме, величине и характеру люминесенции.

Среди них чаще обнаруживались два вида тучных клеток мелкие, расположенные под капсулой с яркой зелено! люминисценцией и средние, которые светились желтым цветом Количество тучных клеток в тимусе было значительно больше 3 иммунизированных животных. Среди тучных клеток встречалоа много дегранулированных форм.

Как привило, такие клетки имели нечеткие границы ^ отличались крупными размерами. При количественном анализ« среднего содержания гистамина и серотонина в тучных клеггказ тимуса (без дегранулированных форм) выявлено достоверно« увеличение биогенных аминов (Р<0,01).

С помощью данного метода исследования в тимусе хорошс выявляются элементы симпатической нервной системы представленные нервными волокнами, которые сложнс переплетаясь, образуют в адвентициальной оболочке сосудов сеть, люминисцирующую зеленым светом. Нервные волокна сопровождают сосуды до самых мелких калибров. Многие волокна, отходя от стенки сосудов, разветвляются в паренхиме и образуют в ней тончайшую терминальную сеть, которая светится зелено-изумрудным цветом. В мозговом веществе дольки тимуса

адренергическая иннервация обильнее и богаче терминальными образованиями и контактами с железистыми клетками и тканевыми базофилами, образующими букетообразные скопления.

Таким образом, при иммунизации животных эритроцитами барана во всех исследуемых сроках тканевых базофилов становится больше, чем в контроле. Следовательно, антигенная стимуляция способствует секреторной активации лаброцитов, морфологическим проявлениям которой является их дегрануляция. Последняя способствует обогащению окружающей среды гепарином, гистамином и другими биологически активными веществами.

В тимусе выявлены также антителообразующие клетки (АТОК). При этом количество АТОК, начиная с 7-го дня эксперимента, нарастало и достигало максимума на 11-й день после иммунизации, а затем отмечался спад их количества, заканчивающийся к 20-му дню после иммунизации. К этому сроку АТОК в тимусе не обнаруживались (таблица 1).

При исследовании в сканирующем электронном микроскопе в тимусе преобладали клетки с шероховатой поверхностью и кратерообразными впадинами, отдельные клетки имели единичные микроворсинки. В условиях антигенного воздействия выявлялось много переходных форм: клетки с шиповатыми цитоплазматическими отростками при уменьшении числа типичных Т-лимфоцитов. По всей вероятности различная картина поверхности и наличие переходных форм клеток свидетельствует об их функциональной напряженности и повышенной активности.

Таблица 1

Количество АТОК тимуса и селезенки на разных сроках антигенной стимуляции

Дни после иммунизации Количество АТОК на 106 клеток

В селезенке В тимусе

М±м М±м

5 457±12,5 0

7 216,4*2,6 3,6±1,2

9 121,3±46 6,3±3,1

11 52,8 ±9,0 20,9±4,0

13 20,7 ±16,5 1,9 ±0,25

16 2,8±0,3 1,3±0,3

20 0 0

Интактные 0 0

животные

При электронномикроскопическом трансмиссионном исследовании в популяции клеточных элементов тимуса на 7-й день эксперимента обнаруживались плазматические клетки с расширенными цистернами гранулярного эндоплазматического ретикулума, заполненными электронноплотным содержимым с плотной цитоплазмой. Митохондрии вакуолизированы.

Кровеносные капилляры обнаруживали признаки реактивных свойств; в межклеточных пространствах встречались остатки разрушенных клеток. В последующих сроках эксперимента ультраструктурная характеристика органа во многом была сходна с контрольной группой животных.

Таким образом, полученные данные свидетельствуют о функциональных изменениях как паренхиматозных, так и стромальных элементов тимуса при антигенной стимуляции. При этом гистохимические, микроскопические, иммуноморфо-логические, электронно-микроскопические изменения подтверждают активную роль вилочковой железы в реакциях как гуморального, так и клеточного иммунитета.

В селезенке наибольшее количество антителообразующих клеток выявлено на 5-ый день после иммунизации, после чего отмечался спад, а к 20-му дню эксперимента АТОК не обнаруживались.

Гистологическое исследование кинетики клеточных превращений лимфоидных элементов при первичном иммунологическом ответе показало, что общая картина гистологических изменений в селезенке соответствовала описанию изменений в лимфатических узлах при первичном иммунологическом ответе (Раппопорт Я.Л, 1957).

Пролиферативные изменения на 3-й сутки были уже отчетливо выражены. Количество пиронинофнльных клеток, среди которых преобладали плазматические, достигало максимума на 7-е сутки. На 14-е сутки гистоструктура селезенки мало отличалась от нормальной.

В тимусе и селезенке наибольшее количество антитело-образующих клеток выявлено на 5-ый и 11-ый дни после иммунизации, после чего отмечалось уменьшение их числа, а к 20-му дню эксперимента АТОК не обнаружилось. (Рис. 1).

Гистологическая структур« лимфоцитов в белой и красной пульпы имело свои морфологические особенности. Так, в лимфоцитах, расположенных вокруг цешральной артерии, выявляется интенсивно окрашенное ядро незначительных размеров, цитоплазма почти неразличима.

Литературные данные и наши исследования дают основание утверждать, что лимфоциты в описанных участках относятся к Т-лимфоцитам. На 3-ый день иммунизации в просветах синусов выявляется большое количество Т-лимфоцитов. Эндотелиальные клетки резко меняют свою конфигурацию и как бы выбухают в просвет синуса. Обнаруженный факт свидетельствует о выходе лимфоцитов из венозных синусов.

В эти сроки клетки с морфологическими признаками Т-лимфоцитов выявляются в красной пульпе. Местами можно обнаружить картину розетки, где в центре расположен макрофаг, а по периферии венчиком располагаются лимфоциты, что может рассматриваться как морфологический субстрат клеточных взаимодействий для реализации гуморального иммунного ответа. Это согласуется с известной концепцией о кооперации Т-лимфоцитов с макрофагами в процессе антителообразования.

Результаты электронно-микроскопического исследования дают основание выделить различные по ультраструктуре лимфоидные элементы.

На 3-ий день иммунизации выявились лимфоциты с плотным хроматином в ядре. Цитоплазма представлена тонким ободком, органелл мало. Вместе с тем обнаруживаются лимфоциты, сходные с описанными, но с более крупным* митохондриями, канальцами эндоплазматической сети и обилиек

рибосом. Описанные лимфоциты, по литературным данным, соответствуют Т-лимфоцитам на различных стадиях дифферен-цировки. Такие лимфоциты выявились также в синусах. На 7-й день иммунизации в большом количестве обнаруживались лимфоциты с диффузным распределением хроматина, придающим светлый вид ядру, с большим обьемом цитоплазмы. В цитоплазме выявляются хорошо развитые органеллы. Описанная картина характерна для В-лимфоцитов.

При изучении ультраструктуры селезенки были обнаружены изменения, в некоторых чертах идентичные наблюдавшимся в лимфоузлах и тимусе, а именно: выраженные изменения митохондрий лимфоцитов и плазматических клеток, расширение в них перинуклеарной цистерны, признаки выраженного клеточного полиморфизма, наличие большого количества свободных рибосом, в цитоплазме лимфоцитов, расширение элементов гранулярного эндоплазма-тического ретикулума в цитоплазме плазматических клеток на 7-ой день опыта.

С 6-го по 9-ый день эксперимента отмечена значительная активация макрофагального звена селезенки; наблюдалось увеличение количества этих клеток и их фагоцитарной активности (Табл. 2), усиление активности в них фосфатазы.

Таблица 2

Влияние различных сроков антигенной стимуляции на содержание макрофагов и их фагоцитарную интенсивность в селезенке

Сроки Кол-во животных Содержание макрофагов Фагоцитарная интенсивность макрофагов

фагоцитарный среднее число кл« показатель ток со светотех-шггенсивным фагоцитозом

Контроль 6 396±9,97 10,22 ±0,18 2,75±0,83

(2,67%)

6 день 5 456±3,4 11,012±0,6 10,5±1,26

(9,5%)

9 день 5 666±3 11 ±0,3 10,5±0,76

(9,5%)

15 день 5 422±2,7 11,95±0,24 10±1,08 ______(9,09%)

Электронномикроскопическое изучение макрофагов селезенке на 7-ой день после иммунизации также обнаруживало признаки их значительной активации, проявляющиеся в виде появления большого количества полиморфных лизосом в цитоплазме, обилия цито плазматических выростов, клапано-образных вздутий и гребнеобразных выростов в этот же срок.

Электронномикроскопически было отмечено персисти-рование большинства вышеуказанных признаков до 10-15 суток эксперимента.

Результаты проведенных исследований показали, что при антигенном воздействии в лимфатических узлах выявляются определенные изменения морфофункционального характера.

У иммунизированных животных к 5-7 дню иммунизации в висцеральных лимфоузлах наблюдается следующая картина. По сравнению с контролем заметно увеличивается число лимфоидных клеток как в паренхиме узла, так и в его сшгусах, что можно объяснить и усилением миграции лимфоцитов в лимфатический узел, и усиленным размножением собственных лимфоидных клеток. Об усилении миграции лимфоцитов свидетельствует сосредоточение основной их массы (около 50 %) в паракортикальной зоне.

Согласно литературным данным, миграция лимфоцитов проходит через стенки посткапиллярных венул, что связано с особыми свойствами их эндотелиальной выстилки и, в частности, с наличием довольно широких межэндотелиальных щелей (1964, Поликар, 1966, Вернет М., 1971). Существует взаимосвязь между цитологическими особенностями эндотелия венул и интенсивностью рециркуляции лимфоцитов. Любое усиление рециркуляции сопровождается гипертрофией эндотелия посткапиллярных венул, и, наоборот, потеря лимфоцитами способности к рециркуляции вызывает довольно быструю атрофию эндотелия соответствующих кровеносных сосудов.

Таким образом, на ранних этапах эксперимента (5-7 сутки после введения антигена), когда начинается усиленный приток лимфоцитов в лимфатические узлы, клетки эндотелия гипертрофируются и приобретают призматическую форму, а лимфоциты через стенку венул выселяются в окружфющую ткань лимфоузла. В этот же период в сосудах органа отмечается высокая активность щелочной фосфатазы.

Взаимодействием между лимфоцитами и эндотелием венул обусловлено сосредоточение в паракортикальной зоне основной

части тимусзависимого ре циркулирующего пула лимфоцитов (Сапин М. Р. с соавт., 1978). В наших исследованиях к 7-му дню иммунизация в паракортикальной зоне было сосредоточено около 50 % всех лимфоидных клеток лимфатического узла. Наличие в паракортикальной зоне интердигитирующих ретикулярных клеток также создает благоприятные условия для рециркуляции лимфоцитов и вовлечения их в реакции иммунитета.

Со стороны лимфоидных фолликулов на 5-7 сутки эксперимента наблюдается активация центров размножения, что согласуется с данными (Ковалевский Г. В., 1976).

Клеточный состав представлен большими, средними и малыми лимфоцитами, ретикулярными клетками и макрофагами, однако, преобладающими клеточными формами на данном этапе являются бласты-гермонобласты с крупным светлым ядром и узким ободком пиронинофильной цитоплазмы, что свидетельствует об активном функционировании этих клеток в коре узла в эти сроки иммунизации. Отмечается повышение их числа по сравнению с контрольным уровнем.

Это увеличение имеет место за счет бластов светлых центров.

Мантийная зона вокруг фолликулов представлена плотно расположенными малыми лимфоцитами.

Паракортикальная зона густо заселена лимфоцитами и незначительным количеством пиронинофильных клеток. Лимфоциты в этой области в большинстве своем относятся Т-лимфо-цитам. Подсчеты показали, что именно паракортикальная зона является зоной наибольшего сосредоточения лимфоидных клеток.

Мозговое вещество на данном этапе иммунизации хорошо развито, а тяжи утолщены, представлены в основном зрелыми и

незрелыми формами клеток плазматического ряда, являющимися наиболее активными продуцентами антител.

Количественный анализ пиронинофильных клеток показал, что основная их масса локализуется в мозговом веществе, а общее число пиронинофильных клеток на 7-й день иммунизации превышает контрольный уровень.

Иммунологические исследования обнаружили самые высокие титры гемолизинов на 5-7 дни иммунизации, что совпадало со сроками обнаружения максимального количества АТОК в селезенке. К этому периоду обнаружено также транзи-торное нарушение функциональной активности натуральных киллеров и конканавалин А индуцированных Т-супрессоров.

В тимусе животных с врожденной аутоиммунной патологией отмечена активизация макрофагов; кислая фосфатаза выявлялась также в ретикулоэпителиальных клетках, что связано с большой функциональной нагрузкой этих клеток в тимусе в условиях изучаемой патологии. Отмечено повышение активности некоторых окислительно-восстановительных ферментов в крупных отростчатых клетках тимуса, что свидетельствует об их гиперфункции.

Полученные данные позволяют предположить определенную степень участия клеток макрофагальной системы в патогенезе аутоиммунного заболевания. Так, понижение активности макрофагов в одних органах может быть связяно с их врожденной дефективностью. Повышение активности их в селезенке, возможно, сопровождается секрецией проста-гландинов. Последние играют определенную роль в патогенезе аутоиммунных заболеваний. Отмечается, что макрофага некоторых больных с аутоиммунной патологией синтезируют

простагландины, причем различаются активные и малоактивные формы макрофагов (КикраШск 1961). Ряд исследователей указывает, что противовоспалительное действие простагландинов при некоторых аутоиммунных заболеваниях, выражающееся в расширении прекапилляров, повышении проницаемости их стенок, изменении чувствительности болевых рецепторов, опосредуется через ЦАМФ макрофагов воспалительного экссудата (усиление синтеза) и лизосомальные ферменты (уменьшение высвобождения), на что указывает Робинсон М. В. с соавт. (1979).

Таким образом, проведенные исследования показывают, что тимус с первых же дней после антигенной стимуляции вовлекается в процесс иммунного ответа, включая и продукцию антител.

ВЫВОД ы

1. Иммунизация животных чужеродным антигеном вызывает в центральных и периферических лимфоидных органах резко выраженные морфо-функциональные изменения, характерные для иммунного ответа и иммунопатологических реакций. Пик морфофункциональных изменений наблюдается к 5 дню опыта в селезенке и к 11 дню опыта в тимусе.

2. Изучение морфологии лимфоидных органов при врожденной аутоиммунной болезни показывало, что в лимфатических узлах наблюдалась нарастающая с возрастом гиперплазия ретикулярной ткани с замещением лимфоидных элементов плазматическими клетками. В селезенке с возрастом наблюдалась заметная активация макрофагального звена с признаками аутофагии, играющая, по-видимому, значительную роль в развитии аутосенсибилизации.

3. При антигенной стимуляции наблюдается нарушение функциональной активности естественных киллеров и Т-супрессоров, которые носят транзиторный характер и более выражены в начальных периодах опытов.

4. Растровая электронная микроскопия дает основание описать морфологическую картину различных лимфоцитов. При этом, в тимусе преобладают клетки с шероховатой поверхностью и кратерообразными впадинами, а при антигенной стимуляции обнаруживаются лимфоциты с шиповатыми отростками. В селезенке и лимфатических узлах преобладали лимфоциты с ворсинчатой поверхностью.

5. При антигенной стимуляции подопытных животных в тимусе на 9-ый день иммунизации отмечается пик увеличения

фосфатфзоположительных макрофагов и эпителиальных клеток стромы, а также увеличение количества сосудов, дающих реакцию на щелочную фосфатазу и НАД-диафоразу.

6. При люминисцентно-микроскопическом исследовании тимуса были выявлены два вида тучных клеток, разнообразные по форме, величине и характеру люминисценции. При количественном анализе биогенных аминов было выявлено достоверное их увеличение.

7. Изучение гистологической, электронномикроскопи-ческой, цитохимической картины лимфоидных органов и их клеток позволяет расширить наши знания о значении иммунной системы при срыве толерантности и врожденных дефектов развития тимуса.

Практические рекомендации.

1. В экспериментальной и клинической практике при морфологических исследованиях лимфоидных органов (аутопсийный или биопсийный материал) необходимо обратить внимание на структурно-функциональные изменения иммуно-компетентных клеток, что свидетельствует об активности иммунологического процесса.

2. Полученные в ходе, экспериментальных исследований данные позволят в клинической практике расширить диапазон диагностических тестов иммунопатологических реакций путем использования морфологических, цитохимических и электронно-микроскопических методов исследования.

СПИСОК

опубликованных работ по теме диссертации

1. Возрастная характеристика иммунного ответа. Арохчапа-утюн.1980, N 3,12-15 (в соавт. с А. В. Азнаурян, С. О. Чилингарян).

2. Количественная характеристика клеточных и неклеточных структур тимуса и селезенки при антигенной стимуляции. Тезисы докл. IX. Всесоюзн. съезда анат., гист. и эмбриол. Минск, 1981, 112 (в соавт. с М. 3. Бахшинян).

3. Возрастные особенности лимфоидных клеток при антигенной стимуляции. Арх. анат., гистол. и эмбриол., 1981, N 9, 92-97 (в соавт. с А В. Азнаурян, М. 3. Бахшинян, Э. С. Акопджанян, С. И. Чилингарян и И. С. Каспарова).

4. Гистоэнзиматическая характеристика тимуса при антигенном воздействии. Ж. эксперим. и клинич. мед. АН Армении, 1982, 22 N 3., 213-215 (в соавт. с А. В. Азнаурян, Э. С. Акопджанян и Г. Л. Мелтонян).

5. Центральные и периферические органы иммуногенеза в свете гистоферментативного анализа. Закавк. конф. патофиз. Баку, 1982, 18-21 (в соавт. с А.А. Азнаурян, Э.С. Акопджанян, И. С. Каспарова, Г. А. Мелтонян).

6. Тучные клетки тимуса в свете люминисцентно-микро-скопического анализа. Тез. докл. Всес. конф. Москва 1983 г. Азнаурян, Акопджанян.

7. Гистохимическая и иммуноморфологическая характеристика тимуса при антигенной стимуляции. Тбилиси 1986, Азнаурян А.В., Акопджанян Э.С.

8. К вопросу об антителообразующей функции клеток тимуса в эксперименте. Мат. Закавказ. конф. морфологов, Ереван, 1987, 162-163 (в соавт. с С. И. Чилингарян, А. В. Азнаурян и Г. Т. Даниелян).

9. Гистоферментативная характеристика тимуса у мышей гибридов линии Р, с врожденной аутоиммунной патологией, (в соавт. с Э. С. Акопджанян, Ж. С. Акопджанян, Г. Л. Мелтонян и К. Т. Саакян). Мат. Закавказ. конф. морфологов, Ереван, 1987.

1ШФПФП1-и

nhiruúGiuufjprupjruGGbpQ l^mmmpi|ht ЬО 1750 фпрдшршрш^и l^bûi^uûhQbph Црш: Unuiçfiû furuiJpQ Ifuiqúbi. ЬО 400 úljGbp L 1200 umGbinGbi npnGfi ^nLÛ^qiugil.hL bQ пб[ишр^ tplunpngtiinGbpnil, tibintuqmnilbi t iupáuiqbi\d| Uii|2UJjti{j hiuGqnijgGbpQ L фш]6ш|ис húniCifiqiugtiuijfí tnuippbp opbpmú <úbt|, 2, ! 7, 9, 11, 15, 16, 20): bpljpnpq Hpmú oûwWbi bG F-|NZB/NZW, BALB/C C5FBL/6 шгшлфЗшС iqujpninqfiujjrul 150 hfippjiq úljGbp:

Фпрйшрифш1{шО ujruinntiúniG iqújpn|nqhiujn4 ЦЬОгциС^СЬрЬ nipûujqbqàj un{2UjjfiG hiuGqmjgGbph L фицбифф ijiú$n|it hjniu^iuógQ bGpujplji|bi hbmuiqninnipjiuG hiuuujljiujhG 3 fuúpbpiuú:

ЦЬСшрп&шЦшО L óuJjpuji5ujuujj[iG ifutyntiq opqiuGGbpo hbimuqrumlbi b hjniutiuiôfiiupuiQuiljuiG, hjniuiluiópuj^tiúfiujljuiG, tibljmpnGnúuiGpuiritiinuHjiJujhl tiúniüninqhuHjujO йЬрпо&Ьрпф

(Эшрй ишпЬдфиб opqujGGbpfi tjwpiluidgGbpnu} niumúGtuu}ip4bi t ppm hb^jhü 3>nu$unmuqtujfi, ЛДГф, СДГ-li, Л-ГФДГ I» НАД-Д фЬрйЬйшйЬр ujljuifiiinipjiuG mbqu^uupcttip Ü ßuiGmljiuljujü фпфп[шнррт|ЛОЬр, прпОр фпрЗД 7-р opQ ruGbGniú ЬО ш1(иф4пLpjuiO piupàpuigruû, |iul{ 11-prj opo iJbpjfiGfi uuG^ruCi:

flipàujqbqôniù hiujinGiupbpilbi. bû hiiiljuJÜujpúGiuqDjUjgnigfc pgfigGbp, npnG £uíGuíIjq фпрй^ 7-prj opfig hbuin шйЬ^ bG iununlb|tuqnijGti hiuuGbiml 11-pq op[ huL| 20-pq ophg hbuin ¿bG hujjinGuipbptlbi: Ujq pgfigGbpQ t|btjmpnGujjf) йиШршгфини({|1 oqGnipjiuúp pGniptuqptlbi bG npiqbu imuiqüujtnfrfj ppfrçGbp: ЪгЦш duiiH|bmGbpnu! hiuúiuGútuG фпфп^иш^шййЬр bG GljtuuulbL фш^ьфф U ип&шф hiuGqnijgGbpfi ДОтиЦш^иц qnmhûbpfi huiljiuúiupóüujqnjmgnighi pgfigGbp Вшйш^Ь imJbiujgiliuG li hbùnifiqjiûûbpfi uifimpfi puipápiugiiiuG ûfipU:

húniGhqiugt|iuó l^GqiuG^iGbph nipôtuqbqôniù зшини^пи] t ujiupuipi pphíGbph giuûiuljq, npnGg qbqpiuGniijiugfiuijfi tIuiu|iG bG ittiujjniú úfi2UJiluijpm.ú hbiquipfiGh, h|iuumii3fiGfi U ^ЬйишЦшй шд urtjui|i4 Gjmpbp] hiujtnGujpbpniúQ:

:gijnmp gmfdiugqbuintimqu líiud i|dqg3iJ3d uigqinqhiputjugnjp ^ piuimlifi Dpiu£iZf]q]iZmqmhnm ijbdm^mjimq о1"?1! piudqgfimpifli rjiupi)uimur gmtimdmdmçdi^ ^пЦ '3qp i|nq6uütn rjmfdiuilbmmdm ijdqggijpdmpmhm } jnu^mübüqg Oçbqbmçdiu hjmgmpmp gmp^mbbm ijdqggtjjpmtyn üu 'mjlrrun gq 6hu6 Ddqg3giufbdm tjdqgguifdiumubmmqq pmfidminm '^um]hnn(n :piumn]mnj gmfdiu|ii|in^m lmgui|6ligiu<fc i|dqgdunqdhviun-j_ çm]i6tyiuùr}i q tJUqgüqlliJh gmtimgd 4mg gi^qjimimqmßmd uiup ijdqgijgmbgqti bip

:piuüqgmiJ6f]mqu bfm gijnmp ijgmpijuinn gmtdiuö^mgnmij ijdqg3i|3d ingqinqhijiufiugiujiil } tnufmffli Офт? ijdqgpiugmtnmu 6gudu 'dqpdmZmbqm gm^mtyngmi ijdqgiudd gijimgi|qlt]iug gq çm|nJqdmginfmj :çiiu6mdçdmd gmfdiuliijin^m ijdqgmgqpdqt gmïimbugbgmf)mdq|iubijn3c r| qtmbmLnmtnut íudd } lq]\mmtig jnudqg3i43d gijfmlqdubg.uhutiijinqi 4 bm<fcudtyn[i ijçbqbmçdiu ijdqgijgmbgqh giupijumium gmfimdmdmçduo

:piu6mlq|im 1|фт?тртй1г

i|dqgdugmbmçi 4mg riqta?gi| '£tm L|dqgbujimuinmgm ImdqinmTlh jnugqgu gq ijbqrn 6i]gm}ido bd-g 1^иф du 1q]iuifmqm6m;j :Qdqgdugm dmuimgiufdrr gi|fmhmd1ddqg gq 1qfidijnmg¡numu jnuçbqbmçdiu Jiubudqp gi]ímbm-fl)XV

il