Автореферат и диссертация по ветеринарии (16.00.06) на тему:Разработка технологии одновременной мойки и дезинфекции овечьей шерсти с применением электрохимически активированных растворов хлоридов

5~

На правах рукописи ДЖАБАРОВА ГУЛЬНАРА АБАКАРОВНА

&4J4-

РАЗРАБОТКА ТЕХНОЛОГИИ ОДНОВРЕМЕННОЙ МОЙКИ И ДЕЗИНФЕКЦИИ ОВЕЧЬЕЙ ШЕРСТИ С ПРИМЕНЕНИЕМ ЭЛЕКТРОХИМИЧЕСКИ АКТИВИРОВАННЫХ РАСТВОРОВ

ХЛОРИДОВ

00345Э504

16.00.06 — ветеринарная санитария, экология, зоогигиена и ветеринарно-санитарная экспертиза

АВТОРЕФЕРАТ

диссертации на соискание учёной степени кандидата ветеринарных наук

1 /> ЯНЗ 20G3

Москва -2008

003459504

Работа выполнена в лаборатории по изучению болезней птиц ГНУ Прикаспийского Зонального НИВИ, на кафедре микробиологии ФГУ ВПО Даггоссельхозакадемии и в хозяйствах республики Дагестан.

Научный руководитель: доктор ветеринарных наук, Заслуженный деятель науки РД, Я.И. Иммиев

Официальные оппоненты: доктор ветеринарных наук

Ю.И. Боченин, ГНУ ВНИИВСГЭ Россельхозакадемии

доктор ветеринарных наук

А.Г. Батиашвили, МГАВМиБ им. К.И.

Скрябина

Ведущая организация: Московский государственный университет прикладной биотехнологии

Защита диссертации состоится «Л??..» 2009 г. в У/ ч. на

заседании диссертационного совета Д 006.008.01 при Государственном научном учреждении «Всероссийский научно-исследовательский институт ветеринарной санитарии, гигиены и экологии» Российской академии сельскохозяйственных наук (ГНУ ВНИИВСГЭ Россельхозакадемии) по адресу: 123022 г. Москва Звенигородское шоссе д. 5

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке ГНУ Всероссийского научно-исследовательского института ветеринарной санитарии, гигиены и экологии

Автореферат разослан .» г.

Учёный секретарь

Диссертационного совета, к.б.н. ^ Н.С. Павлова

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность темы. В условиях реформирования сельскохозяйственного производства Российской Федерации широкое распространение получило предпринимательство в сфере производства, заготовки и реализации шерсти тонкорунных и грубошёрстных овец.

Вместе с тем овечья шерсть, как основное сырьё шерстсперерабатьшающей промышленности, может служить источником распространения многих инфекционных заболеваний людей и животных, таких как бруцеллёз, сибирская язва, оспа, ящур, листериоз, дерматомикозы и др. (Поляков A.A. 1958, 1961, 1964, 1969, 1980, 1985; Князев А.Н. 1968; Тржецецкая Т.А. 1972, 1992; Кадымов P.A. 1987; Бакулов И.А. 1989, 1992; Закомырдин A.A. 1996; Григанова Н.В., Саидова С.М. 2000 и др.).

Существующие технологии мойки и дезинфекции шерсти не всегда удовлетворяют требованиям практики, связаны с большими материальными и трудовыми затратами, снижают качество сырья, загрязняют окружающую среду сточными водами производства и не вполне отвечают требованиям действующей «Инструкции по дезинфекции сырья животного происхождения и предприятий по её заготовке и переработке».

Предназначенные для целей мойки и дезинфекции шерсти препараты должны быть с широким спектром антимикробного действия при отсутствии запаха и маркости, экологически безопасными и способными быстро разрушаться во внешней среде без образования токсичных соединений, малотоксичными и безопасными в работе не снижающими товарное качество сырья (Лактионова Г.И., 1937; Поляков A.A., 1958; Тржецецкая Т.А., 1972; Григанова Н.В., Саидова С.М., 2000).

В поиске эффективных экологически безопасных моющих и дезинфицирующих средств перспективным является использование биоцидов на основе униполярной электрохимической активации (ЭХА) водных растворов хлоридов в проточных электрохимических реакторах

ПЭМ-3 установок СТЭЛ (Бахир В.М., Леонов В.И., Задорожний Ю.Г., Паничева С.И., 1990; Закомырдин A.A. 1995, Ваннер Н.Э., 1985-2002; Бутко М.П., Царукян С.С., 2005).

Многими исследователями предлагаются различные технологии мойки и дезинфекции шерсти овец. Так, по данным Полякова A.A., Андрюнина Ю.И. (1968-1970 гг.), водяной пар при определённых условиях убивает споры и другие микроорганизмы в относительно короткий срок, но качество шерсти снижается. Дезинфекция шерсти 2,5% раствором формальдегида трудоёмка и не безопасна в экологическом отношении. Обработка шерсти газом и гамма-излучением не применяется из-за отсутствия гамма установок и прекращения выпуска газовой смеси и полиамидной плёнки. При замочке и мойке шерсти повышенная концентрация соды вызывает частичное растворение шерстяного волокна, а пониженная - приводит к плохому отмыванию жиропота и загрязнений шерсти. Длительное нахождение шерсти в растворах также отрицательно влияет на её качество (Шейфер ОЛ., 1988).

Исходя из вышеизложенного, мы занимались изысканием эффективных, экологически безопасных моющих и дезинфицирующих средств и на их основе разработали технологию одновременной мойки и дезинфекции шерсти овец в процессе её первичной обработки, что является весьма актуальным.

Цель и задачи исследований. Цель - научно обосновать и разработать эффективную технологию одновременной мойки и дезинфекции шерсти овец в процессе её первичной обработки на примере санитарно-показательных микроорганизмов - Е. coli штамм - 1257; St. aureus штамм - 209-Р с применением электрохимически активированных растворов хлорида натрия (анолит, католит) в сочетании с традиционными моющими средствами.

Для достижения намеченной цели были поставлены следующие задачи:

1. Изучить устойчивость санитарно-показательных тест-микроорганизмов к воздействшо нейтрального анолита АНК при его

раздельном применении и в сочетании с уксусной кислотой, перманганатом калия, йодом и др..

2. Изучить влияние ЭХА растворов хлорида натрия в сочетании с традиционными моющими средствами на инактивацию Е. coli штамм - 1257; St. aureus штамм - 209-Р овечьей шерсти в лабораторных условиях.

3. Разработать оптимальные бактерицидные сочетания ЭХЛ растворов хлорида натрия с традиционными моющими средствами при одновременной мойке и дезинфекции шерсти овец в процессе её первичной обработки.

4. Изучить влияние некоторых физических и химических факторов на остаточное содержание жира, растительного сора, минеральных примесей, естественной микрофлоры в образцах шерсти после её промывки и ополаскивания.

5. Разработать технологию одновременной мойки и дезинфекции шерсти овец на фабриках её первичной обработки.

6. Определить основные качественные показатели шерсти после её одновременной мойки и дезинфекции ЭХА растворами хлорида натрия в сочетании с традиционными моющими средствами.

7. Провести производственное испытание разработанной технологии одновременной мойки и дезинфекции шерсти овец в процессе её первичной обработки.

8. Определить экономическую эффективность одновременной мойки и дезинфекции шерсти овец в процессе её первичной обработки.

Научная новизна. Впервые в суспензионных опытах изучена устойчивость санитарно-иоказательных тест-микроорганизмов Е. coli штамм - 1257; St. aureus штамм - 209-Р к воздействию нейтрального анолита АНК при его раздельном применении и в сочетании с различными дезинфекционными препаратами (уксусная кислота, перманганат калия, йод и др.). Изучено влияние некоторых физических и химических факторов воздействия на инактивацию тест-микроорганизмов в шерсти и в суспензионных опытах.

Впервые разработаны оптимальные сочетания нейтрального анолита, католита с традиционными моющими средствами (мыло, каустическая сода) и технология их применения при одновременной мойке и дезинфекции шерсти овец, контаминированной санитарно-показательными микроорганизмами.

На основании выполненных исследований разработаны эффективные режимы и технология одновременной мойки и дезинфекции шерсти овец в процессе её первичной обработки. Предлагаемые для этой цели электрохимически активированные растворы хлорида натрия (анолит, католит) в сочетании с традиционными моющими средствами не оказывают отрицательного влияния на структуру шерстяного волокна и являются экологически безопасными.

Научная новизна полученных результатов исследований подтверждена патентом. Российское агентство по патентам и товарным знакам выдало патент №2251416 от 10 мая 2005 года на изобретение; «Дезинфекционное средство». Разработан «Способ одновременной мойки и дезинфекции шерсти овец в процессе её первичной обработки». Эта работа выполнена на уровне изобретения - положительное решение по заявке № 2006145489/15(049675) от 20.12.2006.

Определена экономическая эффективность синтеза и применения нейтрального анолита АНК, в сочетанга с традиционными моющими средствами при одновременной мойке и дезинфекции шерсти в процессе её первичной обработки.

Практическая значимость. Одновременная мойка и дезинфекция шерсти овец в процессе её первичной обработки по разработанной технологии обеспечивает 99-99,5% обеззараживание шерсти и полное её отбеливание. Мытая и обеззараженная шерсть содержит меньше растительного сора и минеральных примесей при повышении выхода чистой шерсти на 0,5-1,2% и сокращении трудозатрат на её прядение.

На основании результатов проведённых исследований разработано:

- наставление по применению ЭХА'нейтрального анолита в сочетании с уксусной кислотой в аэрозоле при респираторных заболеваниях птиц.

- временное наставление по применению ЭХА растворов хлоридов (хлористого натрия) в сочетании с традиционными моющими средствами при одновременной мойки и дезинфекции шерсти овец в процессе её первичной обработки. Разработанное временное наставление позволяет проводить обеззараживание шерсти при болезнях бактериальной и вирусной этиологии.

Наставления одобрены Учёным Советом прикаспийского ЗНИВИ (протокол 7 от 28 июля 2005 г.) и утверждены НТС Комитета Правительства Республики Дагестан по ветеринарии (протокол 3 от 14 октября 2005 г.);

Апробация работы. Материалы научных исследований, представленных в диссертационной работе доложены и обсуждены на:

- Республиканской научно-практической конференции, посвященной 100-летию со дня рождения заслуженного деятеля науки РД, доктора ветеринарных наук, профессора В.В. Спасского, Махачкала, 2002;

Научно-практической конференции, посвященной 70-летию Дагестанской сельскохозяйственной академии (ДГСХА, Махачкала, 2002);

- Юбилейной научно-практической конференции, посвященной 35-летию ГНУ Прикаспийского зонального научно-исследовательского ветеринарного института, Махачкала, 2003;

- Учёном совете Прикаспийского ЗНИВИ, Махачкала, 2002-2005;

- Межлабораторном совещании сотрудников ПТУ Прикаспийского ЗНИВИ, Махачкала, 2006.

Личный вклад соискателя:

Представленная диссертационная работа является результатом 5-летних научных исследований по одновременной мойке и дезинфекции шерсти овец ЭХА растворами хлоридов натрия, которые проводились под научным руководством Иммиева Я.И., который оказывал, научно-методическую помощь в проведении исследований и анализе полученных результатов. Опыты по определению устойчивости санитарно-показательных

микроорганизмов к воздействию нейтрального анолита АНК при его раздельном применении и в сочетании с уксусной кислотой, перманганатом калия, йодом, формальдегидом и др.; по разработке технологии одновременной мойки и дезинфекции шерсти овец на фабриках её первичной обработки; по изысканию оптимальных бактерицидных сочетаний ЭХА растворов хлорида натрия с традиционными моющими средствами при одновременной мойке и дезинфекции шерсти овец, а также анализ и статистическую обработку полученных данных выполнены аспирантом лично.

По результатам исследований опубликованы работы в соавторстве с д.в.н. Иммиевым ЯМ., д.в.н. Кабардиевым С.Ш., д.в.н., профессором Закомырдиным A.A., к.в.н. Алиевым А.Д. и ст. научными сотрудниками Бакриевой P.M. и Дагаевой А.Б., которые не возражают в использовании результатов совместных работ (справки имеются в диссертационном совете).

Основные положеният выносимые на защиту:

1. Изучение устойчивости санитарно-показательных микроорганизмов к воздействию нейтрального анолита АНК и его сочетаний с другими дезинфекционными препаратами.

2. Изучение влияния нейтрального анолита АНК, католита в сочетании с традиционными моющими средствами на вымывание грязи и бактериальную контаминацию шерсти в процессе её первичной обработки.

3. Определение основных качественных показателей шерсти после одновременной мойки и дезинфекции нейтральным анолитом, католитом в сочетании с традиционными моющими средствами.

4. Технология одновременной мойки и дезинфекции шерсти в процессе её первичной обработки.

Публикации. По результатам выполненных исследований опубликовано 8 научных статей, получен патент на изобретение «Дезинфекционное средство» №2251416 от 10 мая 2005 года, получено положительное решение о выдаче патента на изобретение «Способ

одновременной мойки и дезинфекции шерсти овец в процессе её первичной обработки» с приоритетом от 20 февраля 2006 г. №2006145489/15(049675).

Объём и структура диссертации Диссертация изложена на 147 страницах компьютерного текста и включает введение, обзор литературы, собственные исследования, обсуждение, выводы, предложения, список литературы и приложение. Работа иллюстрирована 31 таблицой, 8 фотографиями и 1 рисунком. Список литературы включает 172 источника, из которых 21 зарубежных авторов.

СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ Материалы и методы исследования Работа выполнена в период 2001-2005 гг. в лаборатории по изучению болезней птиц ГНУ Прикаспийского зонального НИВИ. Производственные испытания проведены на базе ЗАО «Адам Интернэшнл» ООО «Махачкалинская шерстеперерабатывающая фабрика»; индивидуальном хозяйстве по выращиванию овец колхоза им. «Семена Курбанова» Акушинского района Республики Дагестан; на кафедре микробиологии, вирусологии и патанатомии Дагестанской государственной сельскохозяйственной академии.

В научной работе большую помощь оказали: д.в.н. Я.И. Иммиев -нашёл фабрику по первичной обработке шерсти Адам Интернэшнл для проведения исследований и договорился с генеральным директором и генеральным исполнительным директором; д.в.н., профессор A.A. Закомырдин - постоянно консультировал при постановке опытов и изыскал методики проведения исследований; д.в.н. С.Ш. Кабардиев - организовал поездки на фабрику, всячески помогал в проведении исследований; к.в.н. Алиев А.Д. - помогал при работе с реактивами; ст. научные сотрудники Бакриева P.M. и Дагаева А.Б. помогали в подборе образцов шерсти и подготовке растворов для одновременной мойки и дезинфекции, которым я выражаю большую благодарность

Для получения нейтрального анолита АНК использовали установки электрохимического синтеза активированных растворов СТЭЛ-10Н-120-01 (мод.40-01 и мод.20-03) в соответствии с инструкциями по их эксплуатации, производительность по нейтральному анолиту 60 и 20 л/час с концентрацией оксидантов (по активному хлору) 100-600 мг/л..

Контроль качества нейтрального анолита, получаемого на установках СТЭЛ при его раздельном и сочетанном применении с уксусной кислотой проводили по содержанию активного хлора, уксусной кислоты, величине рН и ОВП. Нейтральный анолит АНК применяли свежеприготовленным или через 24 часа после получения.

Исследования по определению бактерицидной активности анолита и его сочетаний с известными дезинфекционными препаратами проводили в соответствии с «Методическими указаниями о порядке испытания новых дезинфицирующих средств для ветеринарной практики», утвержденными ГУВ Госагропрома СССР 07.01.87г.

Бактерицидные свойства препаратов определяли суспензионным методами и на бязевых тест-объектах. Учёт результатов опытов проводили по показателю отсутствия роста тест-культур на плотных питательных средах в пробах до и после дезинфекции.

Выбор вышеуказанных штаммов микроорганизмов при проверке дезинфекционной активности отвечают требованиям, предъявляемым при работе с патогенными возбудителями бактериальных и вирусных инфекций 1 и 2 групп устойчивости («Инструкция по ветеринарной дезинфекции объектов животноводства», М., 1989). Всего поставлено 60 опытов, взято 200 проб исследуемого материала в 3-х кратной повторности.

Изучение влияния нейтрального анолита АНК в сочетании с традиционными моющими средствами на инактивацию E.coli -1257, Staph, aureus -209-Р и разработку режимов и технологии одновременной мойки и дезинфекции шерсти в процессе её первичной обработки проводили в лабораторных условиях с использованием стерильных образцов шерсти

массой 2 г с содержанием различных концентраций жиропота, минеральных примесей, растительного сора.

Каждый образец шерсти в отдельности инфицировали бактериальными (1 млрд/мл) суспензиями из расчёта 1 мл на 1 образец и подсушивали в термостате при температуре 37°С в течение 60 мин.

Одновременную мойку и дезинфекцию образцов шерсти проводили в соответствии с установленным технологическим регламентом первичной обработки путём погружения их в ёмкость с мыльно-содовым раствором при температуре 45-52°С, при этом дополнительно в мыльно-содовый раствор вводили католит (рН 11-11,5) и нейтральный анолит (Сах=200-600 мг/л) в соотношении 5:1:1 соответственно.

Производственные испытания разработанной технологии проводили на Махачкалинской шерстеперерабатывающей фабрике и в условиях индивидуального хозяйства по выращиванию овец по установленному технологическому режиму первичной обработки шерсти в мыльно-содовом растворе в сочетании с католитом (рН 11-12) и нейтральным анолитом с концентрацией оксидантов 500-600 мг/л и соотношении компонентов 5:1:1.

Контроль качества обработки проводили по обнаружению кишечной палочки, золотистого стафилококка и общему микробному числу по общепринятой методике.

Контролем во всех случаях служили тест-объекты из образцов шерсти, обсеменённые микроорганизмами также как и опытные, но обработанные в мыльно-содовом растворе; опыты проведены в 3-х кратной повторности.

Качественные показатели шерсти, прошедшей обработку в режиме одновременной мойки и дезинфекции в процессе ее первичной обработки, определяли по следующим показателям: тонина ГОСТ 17514; длина ГОСТ 21244; прочность ГОСТ 20269; содержание жира ГОСТ 21008; растительных примесей ГОСТ 26383.

Для достоверности результатов исследований каждый опыт повторяли 3-5 раз с последующей вариационно-статистической обработкой всех результатов исследований. Результаты считали достоверными при Р < 0,05.

Результаты исследований 1. Бноцидные свойства нейтрального анолита и его сочетаний с другими дезинфекционными препаратами Учитывая загрязнённость шерсти овец (до первичной мойки и дезинфекции) органическими и неорганическими веществами мы испытали биоцидность анолита в комбинации с традиционными дезинфицирующими и моющими препаратами.

Лабораторными исследованиями установлено, что нейтральный анолит АНК, приготовленный на основе талой, омагниченной или питьевой воды с содержанием различных концентраций активного хлора (0,12 и 0,6 мг/мл) обладает пониженной бактерицидной активностью в отношении тест-микроорганизмов, чем тот же нейтральный анолит при его сочетании с уксусной кислотой и перманганатом калия.

В опытах использовали взвеси суточных агаровых культур E.coli -1257, Staph, aureus -209-Р, с концентрацией микробных тел 1 млрд/мл

В первой серии опытов при сочетании нейтрального анолита АНК (Сах=0,12 мг/мл, рН 7,0 и ОВП=^1000±50мй) с 70% уксусной кислотой в соотношении 1000:1 соответственно обеспечивается 100%-ное обеззараживание суспензий микроорганизмов при экспозиции контакта 2 мин. При этом отдельно взятый нейтральный анолит с теми же физико-химическими показателями и уксусная кислота в том же разведении с дистиллированной водой обеспечивают соответственно 95 и 90%-ную бактерицидную активность.

Во второй серии опытов исследовали бактерицидную активность нейтрального анолита АНК с различным содержанием активного хлора (0,12 и 0,6 мг/мл) и при его сочетании с уксусной кислотой в различных

соотношениях (1000:1, 2000:1) и экспозициях контакта (2 и 10 мин). Результаты исследований приведены в таблице 1.

Таблица 1

Бактерицидиость нейтрального анолита при его сочетании с

уксусной кислотой при различных концентрациях растворов и экспозициях при температуре 22°С

Объект исследования (суспензии бактерий) Контроль (рост бактерий) Рост бактерий после обработки к.б.к.

Нейтральный анолит (Сах=0.12) с уксусной к-ой (1000:1) эксп. — 2 мин Нейтральный анолит (Сах=0.06) с уксусной к-ой (2000:1) эксп. -10 мин

Е.соН 10000±350 Нет роста 35±4

51аигеи$ 10000±320 Нет роста 3±1

Как видно из таблицы 1, сочетание нейтрального анолита (Сах=0.12 мг/мл) с уксусной кислотой в соотношении 1000:1 обеспечивает 100% обеззараживание суспензий микроорганизмов при экспозиции 2 мин. В то же время данные таблицы показывают, что пятикратное увеличение экспозиции при двукратном снижении концентрации активного хлора в нейтральном анолите и уксусной кислоты в 1 мл раствора не приводит к повышению бактерицидного эффекта.

В следующей серии опытов изучена бактерицидная активность нейтрального анолита АНК (Сах-0,12 мг/мл, рН 7,0 и ОВП=1000±50мВ) в сочетании с перманганатом калия в соотношении 5000:1 соответственно. Установлено, что указанное сочетание препаратов обеспечивает 100%-ное обеззараживание суспензий микроорганизмов кишечной палочки и золотистого стафилококка при экспозиции контакта 2 мин. При раздельном применении нейтрального анолита с теми же физико-химическими показателями и перманганата калия в том же разведении дистиллированной водой обеспечивает соответственно 93 и 98% обеззараживание.

2. Влияние ЭХА растворов хлорида натрия в сочетании с традиционными моющими средствами на инактивацию санитарно-

показатсльных микроорганизмов в шерсти овец

Исследования проводили в лабораторных условиях. Изучали бактерицидную активность нейтрального анолита в сочетании с традиционным моющим средством - 2% содовым раствором.

Установлено, что в пробах жидкости с ЭХА нейтральным анолитом АНК и из смеси АНК с 2% содовым раствором отсутствует рост тест-микроорганизмов при его наличии в пробах жидкости с 2% содовым раствором.

Исследования проведены при температуре испытуемых растворов 20-22°С в трёхкратной повторности.

3. Исследования по разработке эффективных композиций сочетания ЭХА растворов хлорида натрия с традиционными моющими

средствами для одновременной мойки и дезинфекции шерсти овец

В опытах использовали: нейтральный анолит (Сах=0,6 мг/мл, рИ 7,8 и ОВП=+1000±50мБ); католит (рН=11,2; ОВП=-600±40 мВ) смесь нейтрального анолита и католита в соотношении 1:1; смесь нейтрального анолита и 1% раствора соды в соотношении 1:1; смесь католита и 1% раствора соды в соотношении 1:1; 2% раствор соды; вода.

Установлено, что нейтральный анолит, нейтральный анолит с католитом и нейтральный анолит с 1% раствором соды обладают 99-99,6% бактерицидной активностью. При этом католит, смесь католита с 1% раствором соды и 2% раствор соды не обладают такой активностью.

Таким образом, проведёнными исследованиями установлены эффективные композиции препаратов, обеспечивающие одновременное отбеливание и дезинфекцию шерсти в процессе её первичной обработки. Такими композициями препаратов оказались: нейтральный анолит с 1% раствором соды и нейтральный анолит с католитом в соотношении 1:1. Установлено также, что эффективное вымывание растительного сора и

минеральных примесей из шерсти достигается с повышением температуры растворов до 40-50°С.

4. Влияние некоторых химических средств и физических факторов на остаточное содержание жира, растительного сора, минеральных примесей, естественной микрофлоры в образцах шерсти после её промывки и ополаскивания.

Исследования проводили в условиях фермерского хозяйства по выращиванию овец колхоза им. «Семена Курбанова» Акушинского района

РД.

При постановке опытов образцы шерсти по 50 г (опытные и контрольные) разрыхляли и раздельно замачивали в течение 30 мин в ёмкостях: опытные — в 7 л нейтрального анолита и католита в соотношении 5:2 при температуре раствора 20-22°С; контрольный - в 7 л воды с содержанием соды из расчёта 1 г/л при температуре 38-40°С. После замочки промывку опытных и контрольного образцов шерсти, и их ополаскивание проводили в 4 бочках при 5 минутной экспозиции в каждом. Результаты исследования приведены в таблице 2.

Как видно из приведённых данных таблицы 2 в опытном образце шерсти № 1 остаточное содержание жира после её промывки и ополаскивания составляет 12,63%, растительного сора - 2,06%, минеральных примесей - 1,9%, микробная обсеменённость - 500±100 б.к. При этом в опытном образце шерсти № 2 остаточное содержание жира - 5,66%; растительного сора - 4,24%, минеральных примесей - 1,64%, микробная обсеменённость - 59±25 б.к. Из данных таблицы видно также, что в контрольном образце шерсти содержание жира составляет - 1,10%; растительного сора - 1,84%, минеральных примесей -3,24%, микробная обсеменённость - 1000±100 б.к.

Полученные результаты исследования показывают, что сочетанное применение растворов хлоридов (нейтральный анолит, католит) с половинной дозой мыльно-содового раствора (1 г соды и 1,5 г мыла на 1л

жидкости) при температуре 20-22°С обеспечивает достаточно выраженное обеззараживание образца шерсти № 2 достигающее до 94,1%. При этом высоким остаётся процентное содержание в шерсти жира, растительного сора и минеральных примесей в образце шерсти.

Таблица 2

Остаточное содержание компонентов в опытных и контрольном

образцах шерсти после их промывки и ополаскивания

Образцы шерстя Состав растворов ДЛЯ промывки Температура моющих р-в (°С) Содержание компонентов

Жир (%) Растит, сор %) Минер, прим. Микроорганизмов (кол.) б.к.

Опытный № 1 анолит - 5 л католит - 2 л по 1 г соды и мыла на 1 л жидкости 20-22 12,63 2,06 1,9 500±100

Опытный № 2 анолит - 5 л католит - 2 л 1 г соды и 1, 5 г мыла на 1 л жидкости 20-22 5,66 4,24 1,64 59±25

Контрольный вода - 7 л 2 г соды 3 г мыла на 1 л жидкости 48-52 1,10 1,84 3,24 1000±100

В то же время в контроле применение полной дозы мыльно содового раствора (2 г соды и 3 г мыла на 1 л жидкости) при температуре 48-52°С обеспечивает эффективное вымывание органической, растительной и минеральной грязи из образцов шерсти при сохранении высокой его бактериальной обсеменённости.

Таким образом, выяснено влияние химических средств и физических факторов на эффективность одновременной мойки и дезинфекции шерсти овец в процессе её первичной обработки, которые легли в основу следующих наших исследований.

5. Исследования по разработке режимов и технологии одновременной мойке и дезинфекции шерсти овец на фабрике первичной обработки

Исходя из результатов лабораторных и производственных опытов, нами были продолжены исследования по разработке эффективной технологии одновременной мойки и дезинфекции овечьей шерсти в процессе её первичной обработки в условиях Махачкалинской шерстеперерабатывающей фабрики «Адам Интернэшнл». Для этого образцы мериносовой немытой шерсти белого цвета (опытные № 1 и № 2 и контрольный) по 50 г перед промывкой разрыхляли для максимального увеличения площади соприкосновения шерсти с моечным раствором. Все образцы шерсти вместе замачивали в течение 30 мин. в тёплой воде (38-40°С) с содержанием 1 г/л соды. После замочки опытный образец № 1 промывали в течение 5 мин в ёмкости с 7 л горячего (45-48°С) раствора, содержащего 5 л воды, по 1л анолита и католита, 3 г мыла и 2 г соды на 1 л жидкости. Затем образец шерсти промывали во второй и третьей ёмкостях по 5 мин в таком же растворе, что в первой, но при высокой температуре (50-52°С). Результаты исследований приведены в таблице 3.

Как видно из данных таблицы 3, образец шерсти № 1, подвергнутый обработке по разработанной технологии, обеззараживается на 99-99,7% при повышении вымывания минеральных примесей на 1,2%, растительного сора на 0,54% по сравнению с контролем. При этом отмечается также некоторое повышение вымывания жиропота из шерсти, что нежелательно при промывке её в фабричных условиях. Данные таблицы показывают, что двукратное уменьшение содержания анолита, католита, мыла и соды в моечном растворе приводит к понижению эффективности обеззараживания шерсти до 75% (опытный № 2).

Учитывая полученные результаты опытов, нами были продолжены исследования по выяснению оптимально необходимого количества нейтрального анолита, католита, мыла и соды в моечном растворе,

обеспечивающего высокую бактерицидную активность при одновременном сохранении в шерсти необходимого количества жира для защиты волокна от разрушения и потери её в период высушивания, прессования и мойки.

Таблица 3

Технология одновременной мойки и дезинфекции шерсти овец в

процессе её первичной обработки, при температуре растворов 45-52°С

Образцы шерсти Состав сочетанного применения препаратов Содержание компонентов в ше] 1СТИ

Жир % Растит, сор % Минер. приме. % Микроорганизмов (кол.) б.к. Выход чистой шерсти

Опытный № 1 вода - 5л анолит - 1 л католит -1 л 3 г мыла и 2г соды на 1 л 0,66 2,0 1,8 12±4 51,02

Опытный № 2 вода - 6 л анолит - 0,5 л католит - 0,5 л 1,5 г мыла и 1г соды на 1 л 0,99 2,38 2,4 500±100 51,56

Контрольный вода - 7 л 3 г мыла и 2г соды на 1 л 0,83 2,54 3,0 2000±300 51,42

Примечание: объём пробы жидкости на микробную контаминацию -0,5 мл

Установлено, что в опытных образцах шерсти после их первичной

обработки содержится жира - 0,91±0,03%, растительного сора - 2,13±0,05%, минеральных примесей - 1,9±0,1%, микроорганизмов - 18±7 при выходе чистой шерсти 52,55%. При этом в контрольном образце шерсти жира содержится - 0,85%, растительного сора - 2,64%, минеральных примесей -3,1%, микроорганизмов - 2300±50 при выходе чистой шерсти 51,42%.

Таким образом, первичная обработка шерсти овец по разработанной технологии наряду с промывкой и отбеливанием обеспечивает одновременную её дезинфекцию до 98,9-99,2% при снижении содержания минеральных примесей на 1,2%, растительного сора на 0,5% и повышения выхода чистой шерсти на 1,05% по сравнению с контролем. Содержание

жиропота в мериносовой шерсти в опыте и контроле остаётся в пределах нормы - 0,5-1,0%.

При этом по новой технологии на 1 л моечного раствора расходуется 2,5 г мыла и 1,5 г соды, что меньше чем в традиционно применяемом мыльно-содовом растворе на 17 и 25% соответственно.

Разработанная нами технология одновременной мойки и дезинфекции шерсти овец сочетается с технологическим регламентом первичной её обработки. Обеззараживание и отбеливание шерсти наступает в течение 30 мин при температуре растворов 45-48 и 48-52°С.

6. Влияние технологии одновременной мойки и дезинфекции на качественные показатели шерсти и её производственное испытание

Качество шерсти после её первичной обработки электрохимически активированными растворами хлорида натрия в сочетании с традиционным мыльно-содовым раствором определяли по основным физико-химическим показателям, принятыми в шерстеперерабатывающей промышленности: тонине, длине, прочности, содержанию жира, минеральных примесей, растительного сора. Кроме того, шерсть исследовали на микробную обсеменённость.

Установлено, что основные качественные показатели шерсти соответствуют ГОСТам мытой шерсти.

Предлагаемая нами технология одновременной мойки и дезинфекции шерсти обеспечивает её отбеливание и обеззараживание на 99-99,8%, не оказывает отрицательного влияния на качество мытой шерсти. При этом повышается выход чистой шерсти на 0,6-1,2%, сокращаются расходы мыла и соды на 17 и 25% соответственно.

Испытания проводили в условиях индивидуального овцеводческого хозяйства колхоза им. "Семена Курбанова" Акущинского района Республики Дагестан.

В качестве тест-микробов использовали Е. coli штамм - 1257; St. aureus штамм - 209-Р.

В качестве тестов брали образцы мериносовой шерсти белого цвета, массой 2 г и контаминировали смачиванием из расчёта 1 млрд микробных тел на 1 г. Всего взято 6 опытных и 3 контрольных тест-объекта. После подсушивания опытные тест-объекты помещали в марлевые мешочки, закладывали в мериносовую шерсть белого цвета массой 3 кг и обрабатывали согласно разработанной технологии. Марлевые мешочки с подсушенными контрольными тест-объектами также закладывали в мериносовую шерсть белого цвета массой 3 кг и обрабатывали общепринятым мыльно-содовым раствором.

Контроль качества обработки шерсти учитывали путём сравнения цвета, остаточного содержания растительного сора, минеральных примесей, микроорганизмов и выхода чистой шерсти.

При определении эффективности обеззараживания тест-микробов в шерсти (после обработки) пользовались МГ1А, средой Эндо, солевым мясо-пептонным агаром (8,5% КтаС1).

Установлено, что применение разработанной технологии обеспечивает выраженное отбеливание и обеззараживание шерсти, контаминированной возбудителями болезней бактериальной этиологии, на 99-100% при обильном росте микроорганизмов в контроле. При этом содержание вредных примесей (растительных, минеральных) меньше, чем в контроле на 0,6-1,3%, выход чистой шерсти выше 0,9-1,1%, сокращаются расходы мыла и соды на обработку шерсти на 17 и 25% соответственно.

7. Определение экономической эффективности одновременной мойки и дезинфекции шерсти овец в процессе её первичной обработки

Как показали наши исследования первичная обработка шерсти овец по разработанной технологии, в сравнении с принятой технологией, обеспечивает одновременное обеззараживание шерсти на 99-100%, повышение вымывания растительного сора на 0,7-1,6%, минеральных

примесей на 1,6-2,0%, выхода чистой шсрсти на 0,5-1,2%, при понижении расхода мыла и соды на 17 и 25% соответственно.

При промывке шерсти по известной технологии в 0,5 мл промывочного мыльно-содового раствора содержится 2100±50 микроорганизмов. Поэтому такую шерсть обеззараживают в пароформалиновой камере, загружая её из расчёта 3 кг на 1 м\ После загрузки камеру закрывают и обогревают калориферами до 40°С в течение 30 мин. Затем острым паром поднимают температуру до 50-55°С и начинают распыление формалина из расчёта 160 мл/м3. Дезинфекция шерсти продолжается при температуре 62-65°С в течение 90 мин. После окончания экспозиции камеру проветривают и шерсть выгружают. Обслуживающий персонал работает в противогазах.

Как видно из приведённого материала мойка и дезинфекция шерсти по известной технологии достигается при двукратной её обработке: сначала мойке, а затем дезинфекции, что связано с значительными трудовыми, материальными и энергетическими затратами.

Затраты на синтез ЭХА растворов хлорида натрия

а) затраты на оплату труда рассчитывали исходя из месячной тарифной ставки лаборанта (1500 руб.) и времени, затрачиваемого им на обслуживание установки (10%) при 8-ми часовом рабочем дне и 24 рабочих дней в месяц и составила:

1500*10

-= 76 коп/час

24»8«100

а с учётом обслуживания установки в течение 8 часов затраты на оплату труда составляют:

8 х 76 = 608 коп ~ 6 руб. 10 коп.

б) затраты на амортизацию и текущий ремонт установки рассчитывали

в соответствии с нормами приведёнными выше (14,2 и 18%) и составили:

5000 «32,2% «0,03 4830 . , -г——^—--= 4руб.

100-12 1200

в) стоимость электроэнергии за 8 часов работы установки при мощности потребляемой прибором включения, равной 16 Вт и стоимости электрической энергии 70 коп/кв-ч составляет:

16*8.70 896 до -=-= 0,89 руб.

1000 Вт 1000

г) стоимость пищевой соли, потраченной на синтез анолита и католита по 200 л составляет 15 руб. при стоимости 1 кг соли 10 руб. и количества потраченной пищевой соли 1,5 кг.

д) прочие неучтённые затраты за период эксплуатации установки составили 1% от прямых затрат.

Суммарные затраты по эксплуатации установки для синтеза ЭХА растворов хлорида натрия приведены в таблице 4.

Приведённые в таблице данные показывают, что затраты на синтез 1 л ЭХА раствора хлорида натрия достигают 0,11 руб. или 11 коп.

Таблица 4

Затраты (в рублях) на синтез ЭХА растворов хлорида натрия (нейтральный анолнт и католит) за 8 часов эксплуатации установки

СТЭЛ

Наименование затрат Ед. измерения Сумма

1. Затраты на оплату труда обслуживающего руб. 6

персонала

2. Затраты па руб. 4

амортизацию и текущии

ремонт установки (14,2 и 18% соответственно)

3. Расход руб. 0,86

электроэнергии

4. Расход соли руб. 15

5. Прочие прямые руб. 1

затраты

Итого: на 400 л анолита руб. 46, 99

и католита

Hal л руб. 0,11

Сопоставление экономических показателей разработанной и известной технологий первичной обработки шерсти овец

Для сопоставления экономических показателей (выход чистой шерсти, кратность обработки, расход мыла и соды, электроэнергии, материальные и трудовые затраты) разработанной и известной технологий нами взяты результаты комиссионной проверки первичной обработки шерсти овец сочетанным применением нейтрального анолита, католита с мыльно-содовым раствором.

Как показали наши исследования применение разработанной технологии обеспечивает повышение выхода чистой шерсти при снижении затрат электроэнергии, мыла и соды, кратности обработки и рабочей силы; одновременно достигается 99-100% обеззараживание шерсти.

Таблица 5

Экономическая эффективность сочетания ЭХА растворов хлорида натрия с традиционным мыльно-содовым раствором в расчёте иа 100 кг

обработанной шерсти

Показатели Ед. измерения Опыт Контроль Эффективность разработанной технологии

Выход чистой шерсти кг 52,6 51,5 1Д

руб. 1052 1030 22

Расход электроэнергии кВт/ч 1,28 30 28,72

руб. 0,89 21 20,11

Затраты рабочей силы час 8 24 16

руб. 6,10 18,30 12,20

Кратность обработки число раз 1 2 1

руб. 300 600 300

Расход мыла кг 2,5 3 0,5

руб. 25 30 5

Расход соды кг !.5 2 0,5

руб. 15 20 5

ИТОГО: руб. - - 364,31

По известной технологии в результате двукратной обработки шерсти

(мойка и дезинфекция производится в отдельности) значительно

повышаются материальные, энергетические и трудовые затраты. Показатели экономической эффективности приведены в табл. 5.

Как видно из данных таблицы 5 эффективность разработанной технологии первичной обработки шерсти овец сочетанным применением ЭХА растворов хлорида натрия (анолит, католит) с мылыго-содовым раствором выражается суммой 364 рубля 34 коп. на 100 кг обработанной шерсти.

Коэффициент экономической эффективности затрат на проведение первичной обработки шерсти овец сочетанным применением ЭХА растворов хлорида натрия с традиционным мыльно-содовым раствором

Определение коэффициента экономической эффективности проводили по формуле:

3

где Кэ - коэффициент экономической эффективности, (руб.)

Э - суммарная экономическая эффективность (руб.)

3 - сумма затрат на эксплуатацию установки СТЭЛ (руб.)

„ 364,31-46,99 317,32 , _ __ Кэ =----— =-г— = 6 руб. 75 коп.

46,99 46,99

Полученные данные и приведённые расчёты свидетельствуют, что предлагаемая нами технология первичной обработки шерсти овец является эффективной и позволяет предотвратить экономический ущерб в размере 6 руб. 75 коп. в расчёте на 1 рубль затрат на каждые 100 кг обработанной шерсти.

8. Выводы

1. Впервые разработана эффективная экологически безопасная технология одновременной мойки и дезинфекции шерсти овец с применением электрохимически активированных растворов хлорида натрия (поваренной соли).

2. Электрохимически активированные растворы хлорида натрия (нейтральный анолит и католит) в сочетании с мыльно-содовым раствором

при одновременной мойке и дезинфекции обеспечивают 99-100% обеззараживание шерсти овец; при этом мыльно-содовый раствор применяется в половинной дозе, рекомендуемой действующей инструкцией.

3. Изучена устойчивость неспорообразующих тест-культур (Е. coli -1257; St, aureus - 209-Р) к воздействию нейтрального анолита (Сах=0,12мг/мл) с уксусной кислотой в соотношении 1000:1; разработано новое дезинфекционное средство на основе ЭХА нейтрального анолита в комбинации с уксусной кислотой. Получен патент РФ на изобретение № 2251416.

4. Установлено, что сочетание мыльно-содового раствора с ЭХА растворами хлорида натрия в соотношении 5:1:1 соответственно обеспечивает одновременную мойку и дезинфекцию шерсти овец в процессе ёё первичной обработки при экспозиции 30 мин и температуре раствора 45-52°С..

5. Обработка шерсти по разработанной технологии (одновременная мойка и дезинфекция) не оказывает отрицательного влияния на качество шерсти и соответствует действующим ГОСТам.

6. Проведённой технико-экономической оценкой затрат на синтез анолита и католита нами установлено, что стоимость получения 1 л анолита или католита на установках СТЭЛ с учётом материальных и трудовых затрат составляет 7 коп., а применение разработанной технологии первичной обработки шерсти овец позволяет предотвратить экономический ущерб в размере 12 руб. 56 коп. на 1 рубль затрат на каждые 100 кг обработанной шерсти.

7. Применение разработанной технологии по сравнению с известной сокращает трудозатраты на 8-10%, повышает выход чистой шерсти на 0,51,2%, вымывание растительного сора и минеральных примесей на 0,5-2,0% при исключении загрязнения окружающей среды шерстеперерабатывающих предприятий вредными химикатами.

9. Практические предложения

- Предложены для применения в шерстеперерабатывающей промышленности ЭХА растворы хлорида натрия (анолит и католит) с традиционным мыльно-содовым раствором.

Разработаны "Временное наставление по применению электрохимически активированных растворов хлорида натрия (хлористого натрия) в сочетании с традиционным мыльно-содовым раствором при одновременной мойке и дезинфекции шерсти овец в процессе её первичной обработки" и «Наставление по применению электрохимически активированного нейтрального анолита в сочетании с уксусной кислотой в аэрозоле при респираторных заболеваниях птиц», которые одобрены Учёным Советом Прикаспийского зонального НИВИ (протокол 7 от 28 июля 2005 г.)и утверждены НТС Комитета Правительства Республики Дагестан по ветеринарии (протокол 3 от 14 октября 2005 г.)

10. Список опубликованных работ

1. Иммиев Я.И., Абакарова Г. А., Алиев А.Д. Бактерицидные свойства ЭХА нейтрального анолита в отношении санитарно-показательных микроорганизмов. ВУЗ и АПК Задачи, проблемы и пути развития. Межрегиональная юбилейная научно-практическая конференция, посвященная 70-летию образования ДГСХА; -Махачкала, 2002

2. Иммиев Я.И., Абакарова Г.А. Применение ЭХА растворов в ветеринарной медицине. "Актуальные проблемы ветеринарной медицины" Республиканская научно-практическая конференция, посвящённая 100-летию В.В. Спасского; -Махачкала, 2002

3. Абакарова Г.А., Иммиев Я.И. Дезинфекционное средство на основе ЭХА нейтрального анолита. Проблемы ветеринарной медицины в условиях реформирования сельскохозяйственного производства. Материалы юбилейной научно-практической конференции, посвящённой 35-летию ГУ Прикаспийского зонального научно-исследовательского ветеринарного института, -Махачкала, 2004.

4. Иммиев Я.И., Абакарова Г.А. Патент на изобретение № 2251416 от 10 мая 2005 г. "Дезинфекционное средство".

5. Иммиев Я.И., Абакарова Г.А. Исследования микробной обсеменённости качественных показателей шерсти овец после её одновременной мойки и дезинфекции в процессе первичной обработки. Сб. научных трудов «Основные проблемы ветеринарной медицины и стратегия борьбы с заболеваниями сельскохозяйственных животных в современных условиях»; -Махачкала 2007.

6. Иммиев Я.И., Абакарова Г.А. Эффективность сочетанного применения ЭХА растворов хлорида натрия с традиционным мыльно-содовым раствором при одновременной мойке и дезинфекции шерсти овец в процессе её первичной обработки. Сб. научных трудов «Основные проблемы ветеринарной медицины и стратегия борьбы с заболеваниями сельскохозяйственных животных в современных условиях»; -Махачкала 2007.

7. Иммиев Я.И. Абакарова Г.А. Исследования микробной обсеменённости качественных показателей шерсти овец после её одновременной мойки и дезинфекции в процессе первичной обработки. Сб. научных трудов «Основные проблемы ветеринарной медицины и стратегия борьбы с заболеваниями сельскохозяйственных животных в современных условиях»; -Махачкала 2007.

8. Джабарова Г.А. (Абакарова Г.А.) Новые высокоэффективные экологически безопасные дезинфицирующие средства на основе униполярно ЭХА растворов хлоридов. Ж. "Ветеринарная патология" № 1 2008 г.

ГНУ ВНИИВСГЭ, 2008 Москва, Звенигородское шоссе, 5 заказ 305/4, тираж 80 экз.

Актуальность. В условиях реформирования сельскохозяйственного производства Российской федерации широкое распространение получило предпринимательство в сфере заготовки и реализации сырья животного происхождения, в том числе шерсти тонкорунных и грубошёрстных овец.

В основных направлениях экономического и социального развития России поставлена задача, увеличить производство шерсти, шубно-мехового сырья и повысить их качество [86].

Одним из основных мер эффективного использования шерсти является сохранение её ценных свойств на всех стадиях производства в период заготовки, хранения и первичной обработки. При современных масштабах производства шерсти, даже незначительное повсеместное улучшение качества этой продукции при строгом соблюдении всех технологических процессов переработки даёт возможность стабильно получать больше прибыли [76].

Шерсть, как сложный волокнистый материал, обладает способностью легко окрашиваться, удерживать тепло и влагу при высокой прочности и низкой пожароопасности. Её используют при производстве костюмных и пальтовых тканей, валяной обуви, ковров, ковровых изделий и т.д.

Различают несколько видов шерсти: тонкая, полутонкая, полугрубая, грубая. Тонкая шерсть отличается высокой извитостью, прочностью и другими техническими свойствами. Получают тонкую шерсть от чистопородных тонкорунных овец, лучшая тонкая шерсть — мериносовая. Из неё изготавливают наиболее высококачественные изделия.

К полутонкой относится шерсть, состоящая из более грубого пуха или из смеси волокон трудно различимых по диаметру. Средний диаметр всех волокон больше 25 мкм. Полугрубая шерсть состоит из пуха, переходного волокна и сравнительно тонкой ости. Грубая шерсть состоит из смеси всех типов волокон, при большей их толщине.

Доля шерсти в структуре мирового производства волокон составляет 57%. Объём вырабатываемой шерсти в России обеспечивает функционирование отраслей народного хозяйства и удовлетворяет потребность населения в одежде первой необходимости. Поэтому шерсть занимает особое место на рынке сбыта готовой продукции. В структуре мирового производства шерсти на долю тонкой и полутонкой приходится 2/3, а грубой и полугрубой — 1/3 её объёмов. В России соответственно 66 и 34% [116].

Основными экономическими районами производства шерсти в России являются Северо-Кавказский (32% общего объёма), Восточно-сибирский (12%), Уральский (11%) и Западно-Сибирский (10%) [132].

Наряду с этим овечья шерсть, как основное сырьё шерстеперерабатывающей промышленности, может служить источником распространения многих инфекционных заболеваний людей и животных, таких как бруцеллёз, сибирская язва, оспа, ящур, листериоз, дерматомикозы и др. [11, 12, 45, 65, 97, 98, 99, 100, 101, 137, 138]. Как отмечает Поляков A.A. (1964) — контакт работников с инфицированной шерстью сопровождается заболеванием рабочих предприятий шерстеперерабатывающей промышленности сибирской язвой, бруцеллёзом, туляремией и др. Поэтому обеспечение санитарного благополучия на фабриках ПОШ и в шерстеперерабатывающих хозяйствах, способствует предупреждению возникновения инфекционных болезней человека и животных. Одной из важных сторон профилактики инфекционных заболеваний является одновременная мойка и дезинфекция шерсти при её первичной обработке, так как возбудитель заболевания может длительное время сохранять вирулентные свойства.

В нашей стране и за рубежом разработано множество методов первичной обработки шерсти. Однако они не позволяют совместить одновременную мойку и дезинфекцию с технологическим процессом первичной обработки шерсти. Незавершённая технология первичной обработки шерсти приводит к огромным потерям шерстяного волокна, как на фабрике первичной обработки, так и на шерстеперерабатывающих предприятиях. Кроме того, повреждение волокон шерсти при переработке сырья влияет на качество готовых изделий [42, 43, 44, 108].

Исходя из вышеизложенного, изыскание эффективных, экологически безопасных моющих и дезинфицирующих средств и на их основе разработка технологии одновременной мойки и дезинфекции шерсти овец в процессе её первичной обработки является актуальной проблемой.

Существующие технологии мойки и дезинфекции шерсти не всегда удовлетворяют требованиям практики, связаны с большими материальными и трудовыми затратами, снижают качество сырья, загрязняют окружающую среду сточными водами производства и не вполне отвечают требованиям действующей «Инструкции по дезинфекции сырья животного происхождения и предприятий по её заготовке и переработке» (1981).

Так, по данным Полякова A.A., Андрюнина Ю.И., Григановой Н.В. (1985), после дезинфекции шерсти текущими паром в камерах Крупина шерсть желтеет, понижается прочность волокна, в результате чего оно становится ломким. Количество повреждённых волокон при этом достигает до 60%. Дезинфекция шерсти 2,5% раствором формальдегида трудоёмка и небезопасна в экологическом отношении. Обработка шерсти газом и гамма-излучением не применяется из-за отсутствия гамма-установок и прекращения выпуска газовой смеси и полиамидной плёнки [57, 103].

При замочке и мойке шерсти повышенная концентрация соды вызывает частичное растворение шерстяного волокна, а пониженная -приводит к плохому отмыванию жиропота и загрязнению шерсти. Длительность нахождения шерсти в растворах также отрицательно влияет на её качество [147].

Предназначенные для целей мойки и дезинфекции шерсти препараты должны быть с широким спектром антимикробного действия при отсутствии запаха и маркости, экологически безопасными и способными быстро разрушаться во внешней среде без образования токсичных соединений, малотоксичными и безопасными в работе, не снижающими товарное качество сырья [45, 98, 137].

В поиске эффективных экологически безопасных моющих и дезинфицирующих средств перспективным является использование биоцидов на основе униполярной электрохимической активации (ЭХА) водных растворов хлоридов в проточных электрохимических реакторах ПЭМ-3 установок СТЭЛ [Бахир В.М., Задорожний Ю.Г., Закомырдин A.A. 1975-1980, Ваннер Н.Э., 1985-2002; Бутко М.П., Царукян С.С., 2005].

В настоящее время ЭХА растворы хлорида натрия применяются в качестве моющих, дезинфицирующих и стерилизующих средств на объектах здравоохранения [49] для дезинфекции молочных, убойных цехов, скорлупы яиц [55] в технологическом процессе переработки птицы [Бутко М.П., Царукян С.С., 2006]; в профилактике и борьбе с основными микозами пчёл [78]. Положительные результаты по одновременной мойке и дезинфекции овечьей шерсти ЭХА растворами NaCI были получены в опытах Григановой Н.В., Закомырдина A.A., Ваннер Н.Э., (2000).

Повышенный интерес к ЭХА растворам хлорида натрия связан с тем, что действующие компоненты препарата являются короткоживущими пероксидными соединениями, обладающими высокой бактерицидной и вирулицидной активностью при отсутствии токсичности и отрицательного влияния на обрабатываемые объекты.

Цель и задачи исследований. Цель - научно обосновать, разработать и внедрить технологию применения униполярно электрохимически активированных растворов хлорида натрия (анолит, католит) в сочетании с традиционными моющими средствами при одновременной мойке и дезинфекции шерсти овец в процессе её первичной обработки в условиях овцеводческих хозяйств и фабрик ПОШ (первичная обработка шерсти).

В задачи наших исследований входило:

1. Изучить устойчивость санитарно-показательных тест-микроорганизмов (Е. coli штамм - 1257; St. aureus штамм - 209-Р и вируса Ньюкаслской болезни птиц штамм - «Ла-Сота») к воздействию нейтрального анолита АНК при его раздельном и сочетанном применении с уксусной кислотой, перманганатом калия, йодом, формальдегидом и др.

2. Изучить влияние ЭХА растворов хлорида натрия в сочетании с традиционными моющими средствами на инактивацию Е. coli штамм - 1257; St. aureus штамм - 209-Р овечьей шерсти в лабораторных условиях.

3. Разработать оптимальные бактерицидные композиции сочетанного применения ЭХА растворов хлорида натрия с традиционными моющими средствами при одновременной мойки и дезинфекции шерсти овец в процессе первичной обработке.

4. Изучить влияние некоторых физических факторов и химических средств на остаточное содержание жира, растительного сора, минеральных примесей, естественной микрофлоры в образцах шерсти после её промывки и ополаскивания.

5. Разработать технологию одновременной мойки и дезинфекции шерсти овец на фабриках её первичной обработки.

6. Провести производственное испытание разработанной технологии одновременной мойки и дезинфекции шерсти овец в процессе её первичной обработки.

7. Определить основные качественные показатели шерсти после её одновременной мойки и дезинфекции ЭХА растворами хлорида натрия в сочетании с традиционными моющими средствами.

8. Определить экономическую эффективность одновременной мойки и дезинфекции шерсти овец в процессе её первичной обработки.

I. Обзор литературы 1.1. Шерсть как фактор передачи инфекционных и инвазионных болезней животных и человека

Продукты животного происхождения и сырьё (молоко, брынза, шерсть, пушно-меховое сырьё и др.), получаемые от больных животных, могут быть факторами распространения инфекционных болезней, в частности бруцеллеза, сибирской язвы, оспы, ящура туляремии и др.

Исследованиями установлены многочисленные случаи заражения людей бруцеллезом через молоко, сыр, брынзу и другие продукты, приготовленные из необезвреженного молока. Кроме того, бруцеллезом можно заразиться при обработке мясных продуктов, кож и шерсти от бруцеллезных животных [129, 150]. Источником распространения возбудителей бруцеллеза могут быть и собаки, которые, поедая последы, абортированные плоды и т.д. становятся разносчиками инфекции. В распространении заболевания могут быть причастны грызуны, особенно крысы и мыши, а также клещи, мухи, слепни и другие насекомые. Грызуны не только механически распространяют бруцеллез, но и сами восприимчивы к нему. Клещи служат резервуаром инфекции, в них бруцеллы способны сохраняться длительное время. Мухи и другие насекомые в основном являются механическими переносчиками бруцелл [128].

При многих инфекционных и инвазионных заболеваниях (сибирская язва, бруцеллез, оспа, ящур, чесотка, туляремия и др.) возбудители попадают в шерсть вместе с калом, мочой, слюной, часто с кровью при убое и снимании шкур с трупов животных. Содержание в шерсти более 17% влаги, и плюсовая температура благоприятствуют сохранению жизнеспособности микроорганизмов в шерсти [94, 99].

Шерсть овец, коз, верблюдов, происходящая из пунктов, неблагополучных и карантинированных по сибирской язве, эмфизематозному карбункулу, бродзоту, ящуру, оспе овец, считается зараженной. Отечественная шерсть, поступающая из неблагополучных по сибирской язве не карантинированных пунктов, рассматривается как подозрительная по заражению. Верблюжья шерсть и пух, поступающие из пунктов, карантинированных по сапу, инфекционному энцефаломиелиту и инфекционной анемии лошадей, а также из маллеиновых хозяйств, рассматриваются как заведомо заражённые.

Стрижка, заготовка и вывозка шерсти в хозяйствах, неблагополучных по сибирской язве, воспрещается на все время карантина; после снятия карантина шерсть должна быть подвергнута дезинфекции или горячей мойке при температуре не ниже 55°С.

Импортная шерсть, независимо от наличия ветеринарных сертификатов, подвергается выборочному бактериологическому исследованию на сибирскую язву. При отрицательном результате шерсть подвергается горячей мойке, а при положительном - дезинфекции.

Стрижку овец и коз, неблагополучных по бруцеллезу, производят на брезентовой подстилке или деревянном помосте, ежедневно подвергаемых влажной дезинфекции; остриженную шерсть хранят изолированно в течение двух месяцев.

Дезинфекция шерсти подозрительной в сибирской язве производится:

1) насыщенным паром (100°С) или водяным паром (110-111°С) под давлением 0,5 атм. в течение 2,5 час в камерах системы Крупина;

2) 1,8 - 2,0 % водным раствором формалина с предварительной мойкой в мыльно-щелочном растворе и последующей 15-20 минутной сушкой при температуре не ниже 70°С в специальных ваннах с механическими приспособлениями для перемешивания, выемки и отжимания шерсти;

3) пароформалиновым способом, в стационарных или в передвижных пароформалиновых камерах.

При невозможности изоляции зараженной бруцеллезом шерсти её дезинфицируют: и

1) текучим паром в камерах системы Крупина, при 105-115°С 30 минут: шерсть рыхло укладывают в мешках, емкостью не более 50 кг, из расчета 50 кг на 1 м3 полезной емкости камеры;

2) мойкой в горячем мыльно-щелочном растворе при температуре не ниже 55°С, с последующим высушиванием при 75-80°С.

Шерсть, подозреваемую в происхождении от животных, больных оспой, ящуром, туляремией, а также чесоткой, дезинфицируют так же, как и шерсть, зараженную бруцеллезом.

В странах производителей шерсти в настоящее время регистрируется значительное количество заболеваний, при которых необходимо проводить её дезинфекцию. К таким заболеваниям, наносящим огромный социально-экономический ущерб, относятся: бруцеллез, лептоспироз, листериоз, туляремия, эмфизематозный карбункул, сибирская язва, паратиф, паратуберкулез, оспа, псороптоз (чесотка), ящур, болезнь Ауески.

Кроме того, многие страны — поставщики животного сырья являются неблагополучными по инфекционным заболеваниям, и не исключается возможность завоза с шерстью возбудителей различных инфекций: бруцеллеза, ящура, сибирской язвы и др. [14].

По сообщениям ряда авторов (Коромыслова Г.Ф., 1983, Керимова Ч., 1966-1967; Садыкова С.Ж., Таршис М.Г., 1984; Радионова C.B.,. 1983, Яковлева И.Н., Беспалова B.JL, 1988; Джупиной С.И., 1985) бруцеллез регистрируется на всей территории России и прилегающих государств СНГ.

Стационарно неблагополучными территориями по бруцеллезу являются Волгоградская, Ростовская, Оренбургская области, Ставропольский край, Калмыкия, Дагестан и др. В целом ряде хозяйств Прикаспийского региона России, считавшихся благополучными по бруцеллезу, в последнее время выделяются положительно реагирующие животные, и имеется угроза дальнейшего осложнения эпизоотической ситуации по данной болезни. При этом анализ динамики заболеваемости показывает, что в регионе отмечается устойчивая тенденция к росту случаев заболеваемости людей бруцеллезом, которая в 2004 году достигла 238 случаев (10,4 случаев на 100 тыс. населения) [64].

Бруцеллез регистрируется во многих странах мира, таких как Аргентина [152], Германия [159], Великобритания [153, 155, 156], США

164], Канада (Forbes Y.B.,1989), Италия (Romasko H.,1980), Турция [161], Куба [157], Аляска [162], Бангладеш [163], Греция (Vautsis D., 1933), Польша

165], Франция (Festerbauk R., 1987), Индия (Chang P.U., 1968), Иран (Zeughi Е., Ecadi А., 1938). В настоящее время род бруцелл принято подразделять на следующие виды: Br. abortus, Br. melitensis, Br. suis, Br.neotomae, Br. ovis, Br. canis.

Основные виды возбудителей бруцеллеза, т.е. бруцеллы вида мелитензис (козье-овечий вид), вида абортус (бычий вид) и вида суис (свиной вид) в соответствии с определенными их свойствами принято подразделять на биотопы, согласно решению Международного комитета по бактериологической номенклатуре.

Учитывая, что шерсть служит фактором передачи возбудителя бруцеллеза, необходимо принять во внимание свойства устойчивости бруцелл и их способность сохраняться во внешней среде, в том числе и шерсти.

Как отмечают Голубев И.Е., (1939), Николаев В.А., (1954), Селиванов A.B., (1969) виды бруцелл, вызывающие заболевание человека, обладают значительной устойчивостью к неблагоприятным физико-химическим воздействиям. Так, например, во влажной почве они не погибают в течение 72-100 дней, в навозе инфицированных помещений сохраняются 45 дней, в коровьем навозе при низкой температуре - до 160 дней; в условиях сибирской зимы в сенной трухе - до 5 месяцев, в воде - от 76 до 300 дней, в лужах мочи - до 45 дней, на одежде, загрязненной выделениями или испражнениями больных животных — 15-30 дней, на загрязненной овечьей шерсти — 80-115 дней.

Возбудители бруцеллеза остаются жизнеспособными в молоке при нагревании до 55°С в течение 2 часов, до 65°С - 15 минут, до 70°С — 5 минут. При кипячении бруцеллы погибают моментально. Сухой жар действует слабее: при температуре 90-95°С и при пониженной влажности бруцеллы погибают только через час [84].

Исследованиями Тараканова Ю.И. и др. (1969) установлено, что в грязной овечьей шерсти возбудители бруцеллеза Br.abortus 19, Br.melitensis 25 и Br.melitensis 16 Ма выживают 121 день, а Br.abortus - 544, Br.suis - 1 и Br.suis 1330 - 110 дней.

Выяснением сроков сохранения вакцинных бруцелл на шерстном покрове овец занимались Селиванов A.B. и Гриницина Г.А. в 1966. Для этого исследователями было поставлено два опыта на двух нестриженных овцах породы советский меринос. В первом опыте выживаемость бруцелл вакцинного штамма на шерстном покрове определялась после аэрозольной иммунизации овцы. Животное находилось в камере 1 час, где создавалась концентрация 100 млн. вакцинных бруцелл на 1 л воздуха. Во втором опыте инфицирование шерстного покрова животного проводилось путем нанесения на различные участки тела вакцинной культуры из расчета 1 мл 10 млрд. взвеси бруцелл на 10 см2 шерстного покрова.

В результате установлено, что вакцинный штамм № 19, в зависимости от погодных условий и режима содержания овец, погибает в первые часы или сутки после нанесения на шерстный покров животных.

На основании опытов в условиях Узбекистана Даминова Л.Д. (1966) сообщает, что бруцеллы, заключенные в прессованную шерсть и на ее поверхности в июне сохраняли жизнеспособность в течение 27 дней, в то время как в рыхлой шерсти при аналогичных условиях - в течение 15 дней. В шерсти при комнатной температуре бруцеллы сохраняются 44-48 дней, а в жиропоте шерсти - свыше трех месяцев. Сливко В.В. и Воробьева М.В. (1940) отмечают, что бруцеллы в чистой шерсти сохраняются до 65 - 85 дней, в шерсти с примесью крови — 85- 105 и в загрязнениях фекалиями — 105-125 [96].

Как отмечает Онацкий И.И. (1968), бруцеллы выживают в тонкорунной овечьей шерсти в течение двух месяцев при инфицированности 10 микробных тел на 1 г шерсти и хранении ее в темном месте при температуре 13-25°С. Многие исследователи - Сафронов Н.В., Третьяков Ю.К. (1969) и другие отмечают, что бруцеллы могут сохраняться на шерсти от 15 до 115 дней. Различные сроки выживаемости бруцелл, по-видимому, объясняются тем, что эксперименты проводились при различных температурных и влажностных режимах, применялись различные методики и плотности инфицирования, а также использовалась шерсть неодинакового качества. Например, шерсть грубошерстных пород овец содержит меньше жиропота, чем шерсть тонкорунных овец, а жиропот препятствует высыханию шерсти, тем самым гибели бруцелл. По Яковлеву Л.А. (1939-1940) бруцеллы в жиропоте сохранялись более трех месяцев.

Наряду с выживаемостью исследователями изучены также культуральные и вирулентные свойства возбудителя бруцеллеза, длительно хранившегося на шерсти. Установлено, что в условиях хранения шерсти при комнатной температуре в течение двух месяцев возбудитель бруцеллеза теряет свою вирулентность, а к третьему месяцу - жизнеспособность.

Следующим особо опасным заболеванием, распространяющимся с сырьем животного происхождения, в частности с шерстью овец, является ящур. Тенденция к глобальному распространению, высокая контагиозность болезни, множество иммунологических типов и подтипов возбудителя, разнообразие путей выделения и распространения, способность длительное время сохраняться как во внешней среде, так и в организме животных характерны возбудителю данного заболевания. Эпизоотии ящура не знают географических и климатических границ и могут распространяться в очень короткое время на огромные территории [16, 70, 71, 112, 139, 143]. Число животных ежегодно заболевающих ящуром, в ряде стран превышает общее количество переболевших всеми другими заразными болезнями [65]. Ящур сопровождается большими потерями молока, мяса, шерсти и других видов животноводческой продукции, достигающими 30-40%.

Анализ эпизоотической ситуации в СНГ свидетельствует о том, что в последние годы значительные территории его свободны от ящура, а единичные случаи его распространения регистрируются, в основном, в Средней Азии, Казахстане и Закавказье [17].

Исследованиями установлено, что спонтанно невосприимчивые животные — собаки, кошки, лошади, и домашняя птица - при тесном контакте с больными животными и контаминированными вирусом навозом, предметами ухода за скотом, кормами, могут быть промежуточно-пассивными носителями вируса и механически распространять его за пределы эпизоотического очага. Ряд авторов полагает, что птицы могут переносить вирус пассивно на перьевом покрове или после заглатывания выделять его с пометом. В то же время с этим не согласуются множество других наблюдений, и эпизоотологическое значение птиц и их перелётов является спорным, а крысы и мыши только в исключительных случаях могут чисто механически перенести возбудителя на небольшое расстояние [168].

Второстепенная роль в распространении ящура принадлежит также мухам, клещам и другим насекомым, как механическим переносчикам вируса. Мясо и субпродукты животных, убитых в инкубационном периоде заболевания и в период генерализации ящурного процесса, также могут быть источником распространения болезни.

В странах Европы (Бельгии, Греции, Италии, ФРГ и Швейцарии) зарегистрировано 14 случаев заноса вируса ящура с импортированным из Южной Америки мороженым мясом. В Великобритании в период 1939-1950 гг. насчитывалось 355 первичных вспышек, из которых в 243 случаев источником возбудителя явилось импортированное мясо, шерсть.

Роль транспортных средств в распространении вируса ящура и тесная связь между появлением вторичных вспышек болезни и транспортными магистралями отмечается многими исследователями. Это относится в первую очередь к тем транспортным средствам, которые непосредственно связаны с перевозками животных и животноводческой продукции на рынки, мясокомбинаты, молокозаводы, шерстеперерабатывающие фабрики и др.

Отмечая многообразие путей распространения ящура, Селлерс и др. подчёркивают, что аэрогенное распространение заболевания зависит от действия различных факторов на аэрозоль вируса. При этом, как отмечают исследователи, решающее значение имеют относительная влажность, солнечная радиация, конвенционные потоки, направление ветра и дожди.

Источником аэрогенного заболевания могут быть животные, активные и пассивные выделители вируса, и контаминированные предметы и продукты животноводства, генерирующие при определенных условиях, вторичные вирусные аэрозоли [166]. Точку зрения о том, что основным механизмом передачи вируса ящура является алиментарный путь, разделяют многие авторы [4, 12, 64, 115, 137, 142, 148, 157, 158].

Действие на вирус ящура физических и химических факторов вызывает разрушение и инактивацию при сохранении целостности вириона. При этом низкие температуры, высушивание, глицерин оказывают на вирус консервирующее действие, а высокие температуры, УФ Л, высокие и низкие значения рН - разрушающее [112].

Устойчивость вируса ящура к различным химическим веществам различная. Такие вещества, как хлорная известь, креолин, крезол, фенол, сулема мало эффективны против вируса ящура [159]. Химические вещества, которые создают в окружающей вирус-среде концентрацию водородных ионов ниже 6,0 или выше 11,0, вызывают разрушение вируса [160].

Выживание вируса тесно связано с условиями среды, в которой он находится: рН, влажностью, температурой и другими факторами. Например, при рН фосфатного раствора, в котором взвешен ящурный вирус, равном 4.0 - 6,2, разрушается вирус примерно за 4 дня; при рН, равном 6.4 — 7,0, разрушение идет быстро, но не регулярно; при рН, равном 7,4, вирус остается живым в течение 71-73 дней. При температуре 37°С вирус независимо от рН раствора, едва выживает от 4 до 20 дней [21].

Особенно устойчивым вирус ящура становится после высыхания. Высушенный вирус на коже, шерсти и каучуке сохраняет свою вирулентность 80-100 дней (Поляков А.А., 1964). В шерсти и щетине, хранившейся в тюках при комнатной температуре в течение 31 дня, вирус ящура теряет свои вирулентные свойства [20]. По сообщениям Полякова А.А., Андрюнина Ю.И., Григановой Н.В. (1985) вирус ящура в сырье животного происхождения (шкуры, пушно-меховое сырье, шерсть, пух и перо) остается жизнеспособным от 20 до 352 суток.

Среди других источников заболевания сырье животного происхождения (шерсть, шкуры и др.) является доминирующим в распространении сибиреязвенной инфекции. Возбудитель заболевания Вас. апШгаыэ обладает выраженными вирулентными свойствами и способен вызывать у животных и человека болезнь со смертельным исходом. Шкура и шерсть, снятая с павшего от сибирской язвы или вынужденно убитого животного - опасный фактор распространения возбудителя данной болезни. Поэтому при заготовке, хранении, транспортировке, первичной обработке кожевенного и другого сырья необходимо строго проводить ветеринарно-санитарные и профилактические мероприятия против сибирской язвы. Чаще бывают инфицированы шкуры сухого консервирования [61, 62 63].

Споры сибирской язвы очень устойчивы и сохраняются в почве годами. Засолка и сушка мяса, кож способствует сохранению спор. Отмечена разница в восприимчивости к возбудителю сибирской язвы у животных разных пород одного и того же вида, например, алжирские овцы более устойчивы, чем овцы европейских пород. Ягнята 2-3-х месячного возраста более устойчивы к заражению возбудителем сибирской язвы, чем взрослые овцы.

Для сибирской язвы характерна сезонность проявления. Массовое распространение болезни наблюдается в пастбищный период. Эпизоотии сибирской язвы чаще наблюдаются в засушливые, неурожайные годы [65].

Джупина С.И. (1981) считает, что роль летающих кровососов в распространении болезни незначительна, поэтому современные особенности эпизоотической ситуации можно объяснить усиленным размножением клещей-кровососов. На это указывают совпадение сезона активации клещей с усилением распространения болезни, а также особенности изменения структуры вспышек сибирской язвы.

Люди, занимающиеся переработкой животного сырья, также заболевают сибирской язвой. В конце 70-х годов на Боровскую суконную фабрику поступили две партии шерсти и козьего пуха из Ирана и Афганистана, неблагополучные по сибирской язве. В результате 8 работников фабрики заболело. Заражение возможно даже через готовые изделия из шерсти, если шерсть инфицирована [116]. Для обеспечения санитарной безопасности при ввозе шерстяного сырья из-за рубежа, необходима его дезинфекция [14, 23].

Поступление шерсти на шерстомойные фабрики без предварительной дезинфекционной обработки, в том числе и из овцеводческих неблагополучных хозяйств, может служить источником заноса инфекции на шерстемоечное производство. Данные Степанова H.H. (1939), Ярового JI.B., Рыбасова H.A. и Шаферштейна Д.Л. (1963) подтверждают возможность заражения рабочих фабрик первичной обработки шерсти [89].

В настоящее время считается установленным, что болезнью Ауески переболевают люди, соприкасающиеся с инфицированным материалом - как в легкой, так и в тяжелой формах [8, 79].

Наиболее продолжительное время вирус сохраняется в объектах, находящихся в животноводческих помещениях. Фураж, подстилка, вода обезвреживаются к 60-му дню после их загрязнения вирусом [80]. Сохраняемость вируса в меховом сырье зависит от температуры окружающей среды [141]: в кроличьих шкурках зимой при 5-6°С вирус погибает через 46-49 дней; летом при 16-18°С - 24-28 дней.

Для обеззараживания кроличьих шкурок, инфицированных вирусом Ауески, применяют сухой посол смесью солей, состоящей из 5% алюминиевых квасцов, 5% хлористого аммония и 90% поваренной соли при 24 часовой экспозиции и температуре 5-8°С. В этих условиях вирус инактивируется через 41-49 дней [82, 83, 139, 140, 141, 142, 143].

Полученные экспериментальные данные показывают необходимость нового подхода при решении вопроса проведения текущей и заключительной дезинфекции объектов ветеринарного надзора. Хорошо проводимые ветеринарно-санитарные меры, сочетаемые с зоотехнической работой, являются средством, позволяющим успешно бороться с болезнью Ауески.

В шерстеперерабатывающих предприятиях рабочие могут заболеть и туляремией. Для профилактики заболевания применяют специальные правила, регламентирующие получение шерсти в неблагополучном хозяйстве. Овец, прежде всего, освобождают от переносчиков туляремии — клещей, для чего обрабатывают одним из существующих инсектицидов. Полученную после стрижки овец шерсть упаковывают в двойную мягкую плотную тару и отправляют на склады для дезинфекции и последующего 4-х месячного выдерживания в условиях, исключающих возможность заражения туляремийными грызунами.

При отправлении шерсти овец и шкурок грызунов из мест неблагополучных по туляремии, выдается специальное свидетельство, где указывают вид сырья, место и дату отправки, а также способ обеззараживания и количество мест [99].

По сообщению Малеченко Б.И. (1965) возбудитель паратифа овец (Salmonella abortus ovis) сохраняется под белковой защитой (сыворотка крови) на мездре 30-40, на коже с шерстью - 51, на шерсти после стрижки овец - 110 дней.

В шерсти больных оспой овец возбудитель заболевания сохраняется два месяца и более [101].

Многочисленные литературные данные показывают, что сырье животного происхождения: шкуры, шерсть, пух, перо и др. играют большую роль в распространении инфекционных заболеваний людей и сельскохозяйственных животных. Поэтому дезинфекция шерсти и другого животного сырья в большинстве случаев является обязательным профилактическим мероприятием, обеспечивающим благополучие предприятий по переработке животного сырья и обслуживающего персонала.

Выводы:

1. Впервые разработана эффективная экологически безопасная технология одновременной мойки и дезинфекции шерсти овец с применением электрохимически активированных растворов хлорида натрия (поваренной соли).

2. Электрохимически активированные растворы хлорида натрия (нейтральный анолит и католит) в сочетании с мыльно-содовым раствором при одновременной мойке и дезинфекции обеспечивают 99-100% обеззараживание шерсти овец; при этом мыльно-содовый раствор применяется в половинной дозе, рекомендуемой действующей инструкцией.

3. Изучена устойчивость неспорообразующих тест-культур (Е. coli -1257; St. aureus -209-Р) к воздействию нейтрального анолита (Сах=0,12мг/мл) с уксусной кислотой в соотношении 1000:1; разработано новое дезинфекционное средство на основе ЭХА нейтрального анолита в комбинации с уксусной кислотой. Получен патент РФ на изобретение № 2251416.

4. Установлено, что сочетание мыльно-содового раствора с ЭХА растворами хлорида натрия в соотношении 5:1:1 соответственно обеспечивает одновременную мойку и дезинфекцию шерсти овец в процессе первичной обработки при экспозиции 30 мин и температуре раствора 45-52°С.

5. Обработка шерсти по разработанной технологии (одновременная мойка и дезинфекция) не оказывает отрицательного влияния на качество шерсти и соответствует действующим ГОСТам.

6. Проведённой технико-экономической оценкой затрат на синтез анолита и католита нами установлено, что стоимость получения 1 л анолита или католита на установках СТЭЛ с учётом материальных и трудовых затрат составляет 7 коп., а применение разработанной технологии первичной обработки шерсти овец позволяет предотвратить экономический ущерб в размере 12 руб. 56 коп. на 1 рубль затрат на каждые 100 кг обработанной шерсти.

7. Применение разработанной технологии по сравнению с известной сокращает трудозатраты на 8-10%, повышает выход чистой шерсти на 0,51,2%, вымывание растительного сора и минеральных примесей на 0,5-2,0% при исключении загрязнения окружающей среды шерстеперерабатывающих предприятий вредными химикатами.

Практические предложения:

На основании результатов проведённых исследований разработано:

- Временное наставление по применению электрохимически активированных растворов хлорида натрия (хлористого натрия) в сочетании с традиционным мыльно-содовым раствором при одновременной мойке и дезинфекции шерсти овец в процессе ёё первичной обработки (утверждено НТС Комитета Правительства Республики Дагестан по ветеринарии протокол 3 от 14 октября 2005 г.);

- Наставление по применению электрохимически активированного нейтрального анолита в сочетании с уксусной кислотой в аэрозоле при респираторных заболеваниях птиц" (утверждено НТС Комитета

Правительства Республики Дагестан по ветеринарии протокол 3 от 14 октября 2005 г.).

В заключении приношу глубокую благодарность профессору A.A. Закомырдину за оказанную помощь в процессе выполнения работы с униполярно электрохимически активированными растворами и техническими средствами.