Автореферат и диссертация по медицине (14.00.21) на тему:Дезинфекция стоматологических материалов и инструментов в клинике ортопедической стоматологии с применением солей полигексаметилен-гуанидина
- Ученая степень
- кандидата медицинских наук
- ВАК РФ
- 14.00.21
Автореферат диссертации по медицине на тему Дезинфекция стоматологических материалов и инструментов в клинике ортопедической стоматологии с применением солей полигексаметилен-гуанидина
1905
На правах рукописи УКД 616.314+615.477
Бурдавицына Марина Витальевна
ДЕЗИНФЕКЦИЯ СТОМАТОЛОГИЧЕСКИХ МАТЕРИАЛОВ И ИНСТРУМЕНТОВ В КЛИНИКЕ ОРТОПЕДИЧЕСКОЙ СТОМАТОЛОГИИ С ПРИМЕНЕНИЕМ ПРОИЗВОДНЫХ ПОЛИГЕКСАМЕТИЛЕН-ГУАНИДИНА
14.00.21-«Стоматология» 03.00.07-«Микробиология»
Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата медицинских наук
О 6 НОЛ 2000
Москва-2008
003451905
Работа выполнена в и ГОУ ВПО «Российская медицинская академия последипломного образования» Росздрава и ГОУ ДПО «Московский государственный медико-стоматологический университет» Росздрава
Научные руководители:
доктор медицинских наук, профессор Ушаков Рафаэль Васильевич доктор медицинских наук, профессор Царев Виктор Николаевич
Официальные оппоненты:
Доктор медицинских наук, профессор Малый Александр Юрьевич
ГОУ ВПО «Московский государственный медико-стоматологический университет
Росздрава»
Доктор медицинских наук, профессор Трухина Галина Михайловна «Федеральный научный центр гигиены им. Ф.Ф. Эрисмана министерства здравоохранения и социального развития РФ».
Ведущее учреждение:
ФГУ «Институт повышения квалификации Федерального медико-биологического агентства России»
диссертационного Совета Д208 041.07 при ГОУ ВПО «Московский государственный медико-стоматологический университет» Росздрава (127473, г. Москва, ул Делегатская
С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке ГОУ ВПО « Московский государственный медико-стоматологический университет» Росздрава (127206, г.Москва, ул.Вучетича 10а).
Защита состоится
заседании
д.20/1).
Автореферат разослан
(х£ 2008г.
Ученый секретарь диссертационного Совета,
кандидат медицинских наук, доцент
ОЛДашкова
ВВЕДЕНИЕ
Актуальность исследования
Инфекционному контролю в стоматологии уделяется большое внимание. Это связано с тем, что в полости рта представлено большое количество аэробных, факультативно- и облигатно-анаэробных бактерий, грибов, многие из которых обладают рядом факторов патогенности (В.Н.Царев, Р.В.Ушаков, 1989-2007; И.И.Олейник с соавт., 1991, 2000; Backisch, Frahm, 1989 и др.). Со слюной, десневой жидкостью и кровью в полость рта могут проникать вирусы, в том числе, возбудители СПИДа и гепатита. В связи с этим на стоматологическом приеме имеется повышенный риск передачи инфекции, в частности через инструменты, слепки и другие стоматологические изделия, контактирующие с полостью рта.
Дезинфекция стоматологических материалов и инструментов (согласно требованиям Госсанэпиднадзора) является обязательным мероприятием.
В настоящее время в стоматологической практике широко применяется метод химической стерилизации изделий с использованием поверхностно-активных соединений. В частности, хорошо зарекомендовали себя в стоматологии дезинфектанты «Катамин АБ» или «ПВК-1», ( ОАО «Синтез», Россия), «Аламинол» и «Бионол» (ГНЦ «НИОПИК»), «Окадез» (Норд-Ост, Россия), содержащие бензалкония хлорид из группы четвертичных аммониевых производных высокоактивный в отношении бактерий, грибов и вирусов (А.А.Остроухова с соавт. 2002; Р.Камилов., 2004; С.Д. Арутюнов, В.Н. Царёв, A.A. Остроухова, 2003). Однако, при высокой степени загрязнения объектов стерилизации органическими примесями требуется использовать высокие концентрации растворов - 10% и более, что может оказывать отрицательное воздействие на некоторые виды инструментов и, особенно, на слепки зубного ряда при протезировании (Остроухова. 2002 ,2006, Дзиццоева, 2005 ).
Последнее связано, прежде всего, с тем, что в некоторых клинических итуациях трудно выбрать уровень дезинфекции или провести грань последней со терилизацией после анализа категорий риска для пациента.
Эффективность дезинфекции зависит от типа препарата, длительности обработки. Вместе с тем рекомендованные средства имеют ряд недостатков, в частности, являются токсическими веществами (формальдегид, глутаровый альдегид), обладают низкой активностью, что требует длительного воздействия препарата на объект, отрицательно влияют на линейные и объемные параметры слепков, вызывают коррозию материалов, способны вызывать аллергизацию персонала. В связи с этим разработка и апробация в клинической практике новых многокомпонентных дезинфекционных средств остается актуальной задачей. ЦЕЛЬ РАБОТЫ:
Повышение эффективности дезинфекции стоматологических материалов и инструментов в клинике ортопедической стоматологии с применением препаратов фосфатных солей полигексаметилен-гуанидина («Анавидин», «Анавидин-Комплит»),
ЗАДАЧИ
¡.Изучить качественный и количественный состав микрофлоры на поверхности инструментов, материалов, слепков и его изменение под влиянием препаратов полигексаметилен-гуанидина.
2.Изучить влияние химической дезинфекции с применением известных многокомпонентных средств, содержащих бигуаниды, на возможные виды микробного загрязнения: аэробные и анаэробные бактерии грибы, вирусы.
3.Исследовать влияние дезинфектантов «Анавидин», «Анавидин-Комплит» на геометрические размеры и структуру поверхности слепочных материалов, качество поверхности инструментов.
4.Разработать методику дезинфекции стоматологических слепков с применением препаратов «Анавидин», «Анавидин-Комплит» на основе бигуанидов нового поколения.
НАУЧНАЯ НОВИЗНА
В результате проведенного исследования впервые изучено изменение качественного и количественного состава микрофлоры из различных участков стоматологических слепков, инструментов и материалов используемых для изготовления различных конструкций протезов под влиянием солей полигексаметилен-гуанидина.
Впервые проведено сравнительное изучение активности дезинфекционных средств на основе бигуанидов «Анавидина», «Анавидин-Комплита» на резидентную и транзиторную микрофлору полости рта.
Впервые проведено изучение влияния солей полигексаметилен-гуанидина на различные слепочные материалы, используемые в ортопедической стоматологии.
Впервые изучена антибактериальная, фунгуцидная и вирулицидная активность новых дезинфекционного средств «Анавидин», «Анавидин-Комплит» в условиях ортопедической стоматологической клиники. ПРАКТИЧЕСКАЯ ЦЕННОСТЬ
Определены режимы дезинфекции стоматологических инструментов и материалов с использованием отечественных дезинфекционных средств на основе солей полигексаметилен-гуанидина - «Анавидина», «Анавидин-Комплита».
Разработана схема проведения дезинфекции стоматологических слепков препаратами «Анавидин», «Анавидин-Комплит».
Предложены методики микробиологического контроля эффективности химической дезинфекции с помощью производных полигексаметилен-гуанидина. ПОЛОЖЕНИЯ, ВЫНОСИМЫЕ НА ЗАЩИТУ
1. Под влиянием растворов солей полигексаметилен-гуанидина происходит снижение количества жизнеспособных микробных клеток на поверхности инструментов и стоматологических слепков.
2. Дезинфектанты «Анавидин», «Анавидин-Комплит» обладают антибактериальным, противовирусным и противогрибковым действием в эксперименте in vitro.
3. Активность изучаемых дезинфицирующих средств на патогенную и резидентную микрофлору зависит от концентрации препарата и экспозиции.
4. В рабочих концентрациях препараты на основе полигексаметилен-гуанидина «Анавидин», «Анавидин-Комплит» обладают выраженным антибактериальным действием в отношении референтных и клинических штаммов бактерий, включая кислотоустойчивые и спорообразующие виды, что позволяет рекомендовать их для дезинфекции высокого уровня.
5. Концентрации рабочих растворов, режимы дезинфекции и предстерилизационной обработки инструментов и стоматологических слепков препаратами на основе солей полигексаметилен-гуанидина «Анавидин», «Анавидин-Комплит».
ВНЕДРЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЯ
Полученные результаты клинических и микробиологических методов исследования используются в учебном процессе на кафедре микробиологии МГМСУ, в лечебном процессе стоматологической поликлиники № 11 г. Москвы. ЛИЧНОЕ УЧАСТИЕ АВТОРА
Автор лично производила обработку инструментов, забор материала для микробиологических исследований, принимала участие в проведение бактериологических исследований, проводила изучение геометрических параметров слепков, проводила анализ и статистическую обработку материала, написание диссертационной работы. АПРОБАЦИЯ РАБОТЫ
Основные положения работы доложены на научно-практической конференции Научно-исследовательского медико-стоматологического института (НИМСИ при МГМСУ, 2006, 2007 гг), конференциях молодых учёных МГМСУ (2007,2008 гг.), на совместном заседании кафедры микробиологии, вирусологии, иммунологии МГМСУ, кафедры пародонтологии и гериатрической стоматологии МГМСУ, лаборатории молекулярно-биологических исследований НИМСИ МГМСУ и кафедры стоматологии РМАПО.
ПУБЛИКАЦИИ
По материалам диссертации опубликовано 5 печатных работ, из них 1- в журналах рекомендованных ВАК Министерства образования и науки РФ. ОБЪЕМ И СТРУКТУРА ДИССЕРТАЦИИ
Диссертационная работа состоит из Введения, глав «Обзор литературы», «Материалы и методы исследования», двух глав собственных результатов исследования, обсуждения результатов и заключения, выводов, практических рекомендаций и списка литературы. Обзор литературы включает 176 источников, в том числе, 49 отечественных и 127 иностранных авторов.
Диссертация изложена на 120 страницах компьютерного текста Times New Roman. Диссертация иллюстрирована 19 таблицами, 12 рисунками.
Диссертационная работа выполнена в рамках научно- отраслевой программы: «Последипломное образование медицинских кадров». Регистрационный номер 01200216501
МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
Для микробиологического контроля эффективности стерилизации применяли методы культивирования референтных штаммов и клинических изолятов аэробных, анаэробных бактерий, грибов и вирусов, которые осуществляли в соответствии с принятыми нормами клинической микробиологии. При необходимости осуществляли количественную оценку результатов, а в случае с изучением эффективности стерилизации в отношении спорообразующих бактерий, - проводили построение кривых выживаемости и соответствующую статистическую обработку результатов.
Выполняли как модельные эксперименты с искусственным нанесением микробных культур на объекты стерилизации, так и клинические. При модельных экспериментах тест-штаммы референтных микробов или клинических изолятов наносили на инструменты путём помещения последних в такой объём взвеси микробной культуры в стерильном физиологическом растворе, который обеспечивал полное погружение инструмента. Для мелких инструментов (боры, шлифовальные диски, пульпоэкстракторы, корневые иглы) объём взвеси составлял
1 мл, для металлических инструментов, используемых для ручной работы врача (зонды, зеркала, гладилки, экскаваторы, пинцеты), - 10 мл, для наконечников турбин и слепков - 50 мл. Концентрация взвеси в зависимости от условий экспериментов составляла от 104до 109 КОЕ/мл.
Режим стерилизации считали эффективным при полном отсутствии жизнеспособных бактерий или вирусов, способных к репродукции.
Бактериологический метод исследования бесспоровых аэробных и факультативно-анаэробных бактерий.
Для исследования смывов использовали референтные штаммы Staphylococcus aureus Р209, Escherichia coli, Corinebacterium diphtheriae, Corinebacterium xerosis, Mycobacterium tuberculosis BCG, а также клинические изоляты Staphylococcus aureus, Staphylococcus warneri, Enterococcus faecalis, Proteus vulgaris, Klebsiella pneumoniae, Pseudomonas aeruginosae.
Бактериологический метод исследования бесспоровых облигатно-аиаробных и микроаэрофильных бактерий
Для исследования смывов использовали референтные штаммы Streptococcus sanguis, Actinomyces israelii, Actinomyces naeslundii, а также клинические изоляты Streptococcus sanguis, Streptocccus intermedius, Peptostreptococcus anaerobius, Prevotella intermedia, Porphyromonas gingivalis, Fusobacterium nucleatum, Fusobacterium necroforum.
Бактериологический метод исследования спорообразующих бактерий
Для исследования смывов использовали референтные штаммы бацилл: Bacillus cereus, штамм 96, В. Subtilis 36Ц и 18, В. licheniformis G и ВКМ В - 1711 Д, В. steatothermophilus ВКМ В - 718, а также облигатно-анаэробных клостридий: Clostridium perfringes, ВКМ , С. septicum, ВКМ . Учитывая особую устойчивость спор бацилл к стерилизующим агентам проводили специальное исследование выживаемости бацилл в динамике с построением кривых выживания по стандартной методике, принятой в НИИ дезинфектологии МЗ РФ.
Микологический метод исследования дрожжеподобных и мицелиальных грибов
Для исследования смывов использовали референтные штаммы грибов Candida albicans NCTC, C.Krusei BKM, C.glabrata , Aspergillus niger, A.flavus, A.fumigatus, а также клинические изоляты C.albicans, C.Krusei.
Для исследования смывов в экспериментах с культивируемыми вирусами использовали вакцинный штамм полиовируса I типа LSc2ab.
Контрольные посевы проводили на культуре ткани 4647 почек зелёной мартышки в среде 199 (с антибиотиками пенициллином и стрептомицином).
С целью изучения влияния химической дезинфекции слепков комплексными препаратами на основе полигексаметилен-гуанидина на геометрические параметры нами проведены планеометрические исследования.
Проведено изучение следующих дезинфицирующих средств (ДС), рекомендованных для обработки стоматологических слепков: 1. 6% раствор перекиси водорода (контроль),
2 «Окадез» - гидроперит с катамином АБ и мочевиной (Норд-Ост, Россия)
3«АДС-521» (ФГУП "ГНЦ "НИОПИК", Россия)
4«Люмакс-Дентал» ООО «Технодез», Россия
5«Анавидин» (ИрИОХ, Россия)
6«Анавидин-Комплит» (ИрИОХ, Россия)
Дезинфекцию проводили методом погружения с экспозициями 10, 20, 30 минут при температуре 20°С. Использовали концентрации ДС указанные в прилагаемых инструкциях. В качестве тестируемых слепочных материалов использовали воск стандартный базисный (Россия), альгинатный материал -«Стомальгин» (Россия), оттискной материал на полиэфирной основе для регистрации прикуса - «Рамитек» (ESPE, Германия), силиконовый базовый материал -«Дентафлекс», а также корригирующий «Дентафлекс». Для оценки сохранения формы модели исследуемые образцы подвергали сканированию на световом сканере (Schutz DENTAL GROUP, Германия ) с обработкой в
трехмерной программе и накладывании исходного изображения и изображения после обработки модели в растворах дезинфектантов. Результаты клинических и лабораторных исследований обрабатывали методами вариационной статистики с определением средней величины и её ошибки, критерия Стьюдента для множественных сравнений и далее, используя, программы «Ехе1» (MS Office) с учётом количества выборки определяли вероятность различий Р. Статистически достоверным считали значения Р<0,05.
Статистическую значимость изменения частоты обнаружения вирулентных видов бактерий после лечения проводили, используя критерий Z оценки доверительных интервалов для разности долей с помощью компьютерной программы «Biostat» (McGraw Hill).
РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ
При оценке выживания тест - штаммов в течение времени экспозиции от 5 до 30 мин. установлено, что эффективность эрадикации микробов зависит от двух факторов:
1 - концентрации раствора (при большей концентрации раствора требовалось меньшее время экспозиции для полной эрадикации микробов)
2 - времени экспозиции (при большем времени экспозиции существенно увеличивается эффективность эрадикации).
Так, при использовании низкой концентрации раствора при экспозиции 5 минут сохранение тест-штаммов наблюдалось в 15% случаев, а при экспозиции 10 мин - в единичных случаях - 0,8% {Staphylococcus epidermidis, S sanguis, Corynebacterium xerosus) выделяли с одного наконечника и одной ложки из 10. При экспозиции 15 и 20 минут все образцы были стерильны.
При использовании высокой концентрации наблюдали более выраженный эффект. Начиная с 10-й минуты экспозиции все носители после обработки «Анавидином» были стерильны. Как и предполагалось выживаемость тест -
культур споровых микроорганизмов была более выраженной, чем бесспоровых форм и загрязнение инструментов сохранялось в части случаев даже при 10 минутной экспозиции. При экспозиции 15 минут все инструменты были стерильны при применении как 0,5%, так и 0,1% растворов.
Оценка эффективности стерилизации химической средой в отношении спорообразующих бацилл включала следующие этапы: первичную оценку активности стерилизующего средства на тест-носителях и разработку режима стерилизации конкретных изделий.
число инстр.
□ Ряд1
□ Ряд2
1 2 3 4 5
серии модельных экспериментов
Рис.1 Экспериментальное обоснование экспозиции при обработке дезинфектантом «Анавидин» стоматологических инструментов при использовании для контаминации спорообразующих факультативно- и облигатно-анаэробных бактерий.
Исследование устойчивости спор тест-культур к химической среде проводили двумя методами: были проведены эксперименты, в ходе которых определяли показатель о\() (время десятикратного снижения числа жизнеспособных микроорганизмов). Параллельно находили время воздействия стерилизующего агента, при котором на всех носителях обнаруживали выжившие тест-микроорганизмы (время выживания спор тест-культур на 100 % исследованных носителей), и время гибели, когда все исследованные носители были стерильны.
Анализ данных, полученных в результате проведения этих экспериментов, свидетельствует, что устойчивость исследованных музейных тест-культур к воздействию химической среды на носителях из нержавеющей стали и стекла различается. Значения показателей 01(3 для всех тест-культур на стекле превышали аналогичные показатели на нержавеющей стали, наименьшее значение показателя Ш<Э установлено для тест-культуры В.яиЫШз штамм 18, в то время как наибольшее значение показателя ШО у В.сегеш, тест-культуры ВМеаго1}хегторЫ1т ВКМ В-718, ВЛскет/огт1.ч б и В.эиЫШз 36Ц имели близкие значения показателей ЭК}. Так как значения показателя 01С» для исследованных тест-культур не превышали 3 мин, предполагаемое время гибели тест-культур при плотности 103 спор на носитель не должно превышать 9 мин.
Установлено, что для всех тест-культур (при плотности 103 спор на носитель), за исключением ВМеагоМегторЫ1ш ВКМ-718 и В.яиЬИШ шт.18, эффективная стерилизация достигнута при 9 мин обработке ( для ВМеагоЛегторЬИт ВКМ В-718 - 7мин, В.зиЫШя шт. 18-5 мин). Время выживания тест-культур составляло для В.виЫШв шт. 18 — 1 мин, для остальных изученных тест-культур - 3 мин. Аналогичные результаты получены при использовании как носителей из нержавеющей стали, так и носителей из стекла, т.е. существенной разницы в эффективности стерилизации носителей в качественных экспериментах выявить не представилось возможным.
Для оценки вирулицидной активности химической среды поставлены 5 экспериментов при времени выдержки от 1 до 7 мин. Полученные данные представлены в табл. Как следует из приведенных в таблице данных, ни в одной из полученных проб вирус обнаружить не удалось даже при обработке «Анавидином» в течение 1 мин. В контрольных образцах вирус обнаруживали в небольшом количестве -101—102 Ед/0.2 мл, что свидетельствует о значительной потере вируса в процессе подготовки проб к исследованию. Результаты исследований позволяют сделать вывод о том, что при обработке химической средой тест-носителей из нержавеющей стали, стекла, контаминированных
вирусом полиомиелита (плотность контаминации носителей наблюдалась полная инактивация вируса.
Для оценки воздействия «Анавидина» на представителей эукариотических микроорганизмов выполняли модельные эксперименты со штаммами дрожжеподобных и плесневых грибов. Начиная с 7 минуты экспозиции наблюдался более выраженный эффект - значительная часть носителей после обработки химической средой была стерильной. При экспозиции 9 минут лишь с одного инструмента выделены грибы родя Aspergillus при контаминации 106 .
При более значительной контаминации - 10 s отдельные виды бактерий. Candida albicans, C.Krusei и Aspergillus spp. выделялись также с наконечника турбины, гладилки и двух пинцетов.
140 120 100 80
число инстр.
60 40 20 0
1 2 3 4 5 серии модельных экспериментов
□ Ряд1
□ Ряд2
Рис. 2 Выбор экспозиции стоматологических инструментов в растворе дезинфектанта «Анавидин» при использовании для контаминации грибов рода Candida и Aspergillus
При времени экспозиции 10 мин. с плотностью контаминации 10б ни в одном случае тест - культуры грибов не выделялись, то есть инструменты были полностью стерильны. При очень высокой степени контаминации, которая не
реальна в клинических условиях - 108, выделен лишь один штамм представителей грибковой флоры (Л.ш£ег). При продлении экспозиции до 12 минут все носители даже в этом случае были стерильны.При экспозиции 12 - 15 мин полная стерильность инструментов подтверждена во всех случаях без исключения, в том числе при высокой степени контаминации -108.
Таким образом, проведена оценка эффективности стерилизации химической средой с применением нового дезинфектанта «Анавидин» (ИрИОХ, Россия).
На основании проведенных исследований определены методические подходы к оценке эффективности стерилизации методом погружения в растворы «Анавидина». Основные положения сводятся к следующему:
Установлена устойчивость к химической среде 5 музейных штаммов, используемых для контроля термических и химических методов стерилизации (ВМеаШкегторЫ1ш ВКМ В-718, В.Искет^гт'и в В КМ В 1711 Д В.сегеш шт.96, В.зиЫШв шт.Зб Ц, В.виЬНШ шт.18) при режиме стерилизации менее 10 минут.
Выявлена зависимость эффективности обработки дезинфектантом «Анавидин» от вида тест-культур, плотности контаминации тест-носителей и изделий медицинского назначения, времени обработки.
Установлено экспоненциальное снижение числа спор от времени действия химической среды; определены количественные показатели устойчивости спор тест-культур (показатель экз).
Экспериментально определено время выживания и время гибели спор тест-культур в зависимости от плотности контаминации тест-носителей.
На основании опытов по определению устойчивости тест-культур к химической среде мы сочли возможным исключить из перечня тест-культур для контроля химического метода стерилизации культуру В.йиЬиШ шт. 18, так как показатель ее устойчивости был ниже аналогичных показателей других тест-культур.
Выбранные штаммы обладали характерными культуральными и физиолого-биохимическими признаками, хорошими ростовыми свойствами на общепринятых
питательных средах, образуя споры, которые хорошо сохраняются при общепринятых методах консервации. Показано, что гибель спор тест-культур на изделиях медицинского назначения стоматологического профиля при плотности контаминации 103 спор на изделие достигнута при времени выдержки 10 мин.
Установлена инактивация вируса полиомиелита 1-го типа (вакцинный штамм LSc2ab) при времени воздействия от 1 до 7 мин. Таким образом, показана высокая эффективность химической среды в отношении культивируемых вирусов.
Выявлена высокая эффективность химической стерилизации по отношению к использованным штаммам аэробных, факультативно-анаэробных и облигатно-анаэробных бактерий, а также грибов рода Candida и Aspergillus.
Для оценки химического воздействия после предварительной обработки "грязных" инструментов в соответствии с существующими инструкциями, требующими проведения в клинической практике предстерилизационной обработки инструментария, мы проводили параллельную постановку исследований в двух параллелях:
а) без предварительной ультразвуковой обработки;
б) с предварительной механической обработкой.
В обоих случаях далее инструменты подвергали воздействию химической средой «Анавидина» с временем экспозиции 5, 10 и 15 мин. В каждой параллели исследований использовали от 11 до 27 различных инструментов, взятых после работы врача - стоматолога с больными.
Результаты исследования представлены в таблице №1
Таблица 1.
Сравнительная эффективность обработки анавидином изделий медицинского назначения после практической работы врача стоматолога-ортопеда в зависимости от времени и вида обработки
Наименова- Время экспозиции в растворе анавидина
ние
изделия 10 мин 15 мин 20 мин 25 мин
УЗ- - + - + - + - +
обработка
Боры 10/3 10/1 10/1 10/0 10/0 10/0 10/0 10/0
алмазные
Боры твёрд /спл. 10/4 10/1 10/3 10/0 10/0 10/0 10/0 10/0
Щипцы крампон. 10/6 10/3 5/3 5/1 5/0 5/0 3/0 3/0
Гладилки
сериовидн. 10/5 10/2 10/1 10/0 10/0 10/0 10/0 10/0
Аппарат Копа Зонды 10/6 10/3 5/1 5/1 5/0 5/0 3/0 3/0
Шпатели Пинцеты Зеркала Стекла для заметив. 10/3 10/2 10/0 10/0 10/0 10/0 10/0 10/0 10/0 10/0 10/0 10/0 5/0 5/0 5/0 5/0
10/6 10/3 10/4 10/1 10/3 10/0 10/0 10/0 5/0 10/0 5/0 10/0 5/0 10/0 5/0 10/0
Наконечн. 10/3 10/0 10/0 10/0 5/0 5/0 5/0 5/0
турбины
Ложки 10/9 10/6 10/4 10/2 10/2 10/0 5/0 5/0
металлич.
Ложки пластмасс. 10/6 10/1 10/0 10/0 5/0 5/0 3/0 3/0
10/9 10/5 10/3 10/0 5/0 5/0 3/0 3/0
Всего 130/68 130/27 120/20 120/4 100/2 100/0 77/0 77/0
изделий
Частота 52,3 20,8 16,6 3,3 2,0 0 0 0
находок, %
При недостаточном времени экспозиции (менее 10 мин.) мы выделяли некоторые виды микроорганизмов в небольшом количестве. Перечень этих видов заслуживает особого внимания с точки зрения наибольшей опасности загрязнения. Результаты исследования представлены в таблице №2
Таблица 2
Виды бактерий и грибов, выделенных при недостаточном режиме обработки анавидином (смывы со 119 инструментов, экспозиция 15-20 минут)
Вид микроба Число штаммов Частота, % Количество (КОЕ/мл)
Actinomyces israelii 3 2,52 10'
Actinomyces naeslundii 6 5,04 102
Acinetobacter spp. 4 3,36 103
Bacillus spp. 13 10,92 103
Enterococcus spp. 16 13,45 103
Enterobacter spp. 8 6,72 ю2
Escherichia coli 5 4,20 102
Klebsiella spp 9 7,56 103
Staphylococcus 10 8,40 ю2
epidermidis 3 2,52 ю2
Staphylococcus warneri 3 2,52 ю2
Staphylococcus aureus 11 9,24 103
Streptococcus sanguis 7 5,88 ю2
Streptococcus spp. 2 1,68 101
Pseudomonas aeruginosae 3 2,52 ю2
Proteus spp. 5 4,20 ю1
Aspergillus spp. 7 5,88 ю2
Candida albicans 4 3,36 ю1
Всего 119 100,0 10'+ ю1
К данной группе микробов относились представители следующих видов факультативно - анаэробных бактерий и грибов. Прежде всего Staphylococcus epidermydis, который выделялся в количестве 10 - 20 КОЕ/ мл смыва с наибольшей частотой по сравнению с другими видами (индекс 0,11).
С несколько меньшей частотой (индекс 0,07) выделялись плесневые грибы рода Aspergillus. Самая низкая частота выделения зафиксирована для Staphylococcus aureus, Streptococcus sanguis и Bacillus cereus (индекс 0,04) при количестве от 1 до 10 КОЕ/ мл. смыва.
Таким образом, проведенные исследования дезинфекции медицинских инструментов с использованием химической среды дезинфектанта «Анавидин» подтвердили высокую эффективность данного метода и позволили выявить группу видов, представляющих наибольшую опасность с точки зрения устойчивости к данному способу дезинфекции.
Вместе с тем показано полное устранение представителей этих видов с поверхности загрязненных инструментов при времени экспозиции 10 мин. и более в случае обработки 0,5% раствором дезинфектанта «Анавидин» в течение 10 минут.
В результате исследования установлено, что поверхность слепков после обработке всеми ДС через 10 и 20 минут для альгинатного и полиэфирного материалов не изменялась и стоматологического воска, базовая и корригирующие массы силиконового материала при обработке исследуемыми материалами существенно не менялась. Это было отмечено как при визуальном исследовании с использованием бинакулярной лупы, так и при анализе формы и рельефа с помощью светового сканера.
При экспозиции слепков в течение 30 минут в рабочих растворах наблюдалось изменение цвета стоматологического воска (матовый оттенок). Кроме этого визуально определялась отслойка корригирующего слоя, по одному образцу после обработки дезинфектантами «Окадез» «АДС-521», «Люмакс-Дентал» и «Анавидин».
При анализе формы и рельефа поверхности моделей с помощью светового сканера наблюдалось подворачивание краев корригирующей массы по периферии слепка.
Весьма оптимистичные данные были получены при проведении измерений моделей, оттиски для которых были обработаны раствором «Анавидин-комплит» при всех изучаемых экспозициях ( 10, 20 и 30 минут).
Рисунок 3. Изменение цвета базисного воска после обработки ДС «Люмакс Дентал»(слева) и «Анавидин»(справа).Экспозиция 30 минут.
Не наблюдалось отклонений в размерах как восковой, так и при изучении слепочных материалов. Разброс составлял от ОД до 0,7%.
Колебания геометрических параметров менее 0,5% (как правило, не превышали 10 мкм) наблюдались как в меньшую, так и в большую сторону, не носили закономерный характер и по-видимому, являлись погрешностями в измерениях.
Таким образом, «Анавидин-комплит» не оказывает существенного влияния на геометрические параметры слепков из различных материалов и с учетом их активного антимикробного действия могут быть использованы в ортопедической
|
стоматологии для дезинфекции слепков из силиконовых, альгинатных , полиэфирных слепочных масс, зуботехнического воска.
Данные, полученные в ходе клинических исследований с использованием погружения в дезинфектант «Анавидин» показывают, что на альгинатной слепочной массе в режиме N3 (n = 1,L = 5 мм) исчезают Staphylococcus и Sarcina, на порядок уменьшается количество микробов других видов а в режиме N 4 (п = 2, L = 5 мм) погибают все микроорганизмы.
В режимах N1 (n = 1, L = 10 мм) и N2 (п = 2, L = 10 мм) разница в содержании микроорганизмов после обработки невелика, а при обработке в режиме N3 (n = 1, L = 5 мм) содержание микроорганизмов на материале резко падает. Данный факт говорит о наличии порогового эффекта в воздействии химической среды дезинфектанта на микроорганизмы.
В режимах N3 (n = 1, L = 5 мм) и N4 (п = 2, L = 5 мм) на зуботехническом воске наблюдается полная стерилизация. Режим N2 (п = 2, L = 10 мм), тем не менее, существенного уменьшения обсемененности не показал. То есть характер химических стерилизационных реакций на данном виде слепочной массы носит пороговый характер.
На кристаллизующейся слепочной массе во всех режимах, начиная с режима N2 (п = 2, L = 10 мм), наблюдается полное отсутствие роста микробных культур.
На силиконовой слепочной массе во всех режимах обработки по сравнению с контролем наблюдается полная стерилизация.
Одной из особенностей приведённых результатов является явная зависимость стойкости микробных культур к дезинфицирующему воздействию от вида материала.
Проведенные исследования химической стерилизации стоматологических инструментов методом погружения в дезинфектант «Анавидин» подтвердили высокую эффективность данного метода при экспозиции не менее 10 минут, обеспечивающую полный стерилизующий эффект в клинических и экспериментальных испытаниях.
Установлена группа микроорганизмов, проявляющих устойчивость при снижении времени экспозиции в химической среде. Эту группу микроорганизмов составляют: S.epidermidis, S.aureus, Enterococcus faecalis, S.sanguis, B.cereus, Aspergillus spp, имеющие значение как этиологические агенты воспалительных заболеваний в ротовой полости.
Тем не менее, предлагаемый для практики режим стерилизации должен быть более "жестким", т.е. иметь определенный запас надежности в отношении вирусов гепатитов, наиболее устойчивых к воздействию стерилизующих факторов.
Для обеспечения этого условия представляется целесообразным комбинировать химическую обработку дезинфектантом «Анавидин» в течение 10 мин. с ультразвуковой также не менее 10 мин.
Аналогичные рекомендации могут быть распространены и на слепочные массы, так как они не требуют столь жёсткого воздействия.
Следует учитывать, что необоснованное увеличение времени экспозиции в растворе дезинфектанта может сопровождаться нарушением характеристик изделий и приводить к ухудшению сохранности стоматологических инструментов или слепков. В этой связи, рекомендуемые нами режимы химической стерилизации (10-15 мин) удовлетворяют как требованиям стерилизации, так и обеспечивает их сохранность. Выводы
1. В результате использования стоматологических инструментов во время работы врача-стоматолога с пациентом происходит их загрязнение микробной флорой полости рта в высокой степени ( 10б - 108 КОЕ/ см2). Многие представители микроорганизмов - Staphylococcus epidermidis, Streptococcus sanguis, Staphylococcus aureus Enterococcus faecalis Klebsiella Bacillus, грибы Candida и Aspergillus и вирусы - длительное время ( от 48 часов до 5 суток) сохраняют свою жизнеспособность.
2. Растворы препаратов на основе полигексаметилен-гуанидина («Анавидин» и «Анавидин-комплит») оказывают выраженное бактерицидное, спороцидное,
фунгицидное и вирулицидное действие на микробную флору в эксперименте in vitro, которое зависит от концентрации раствора и экспозиции.
3. Дезинфектант «Анавидин-Комплит» не оказывает влияния на геометрические параметры и структуру слепочных материалов, качество поверхности материалов и инструментов, обладает выраженным дезинфицирующим эффектом в безопасных концентрациях в отношении микрофлоры, контаминирующей слепки. 4. При модельных экспериментах по обработке искусственно контаминированных инструментов и контаминированных при работе стоматолога с пациентов обосновано выделение двух режимов обработки инструментов методом погружения: для дезинфекции высокого уровня 0,5% раствор - 10 минут, для химической стерилизации - 0,5% раствор 15-20 минут или 1% раствор -10 минут.
Для дезинфекции стоматологических слепков режим обработки 0,5% раствор в течение 10 минут.
Практические рекомендации
1.Для дезинфекции стоматологических инструментов, перед проведением стерилизации, оптимальным режимом при использовании препаратов «Анавидин» и «Анавидин-Комплит» является погружение изделия на 10 минут в 0,5% раствор (по дезинфектанту), для холодной стерилизации в 0,5% раствор 15-20 минут или 1% раствор -10 минут. Представляется целесообразным комбинировать химическую обработку дезинфектантом «Анавидин» в течение 10 мин. с ультразвуковой, также не менее 10 мин.
2.Схема проведения дезинфекции стоматологических слепков препаратом «Анавидин-Комплит» 10 минут в 0,5% растворе, после чего ополаскивание проточной водой в течение 1-2 минут.
3.Предложенные в работе методики микробиологического контроля эффективности химической дезинфекции с помощью производных полигексаметилен-гуанидина могут быть рекомендованы для проведения испытаний других препаратов этой группы.
Список печатных работ по теме диссертации
1 .Бурдавицына М.В., Кудина Л.Н., Царева Т.Н., Носик A.C., Ушаков Р.В.
«Сравнительная оценка эффективности антисептических средств для блокады процессов микробной адгезии». Сб. научных трудов.1У Всероссийская научно-практическая конференция«Образование, наука и практика стоматологии».2007 С. 178-179.
2.ТрефиловА.Г., Бурдавицына М.В., Ибрагимов Т.И., Царев В.Н.«Особенности адгезии микрофлоры полости рта к некоторым новым ортопедическим материалом». Сб. научных трудов IV Всероссийская научно-практическая конференция.«Образование, наука и практика в стоматологии». 2007 С. 215-217.
3.Казимирский В.А.,Павлов С.А., Ушаков Р.В., Гладченко Я.А., Бурдавицына М.В.«Применение комплексонов в стоматологии».«Стоматолог»-2007 №4 С.33-37.
4. Арутюнов С.Д., Царев В. Н., Бабунашвили Г.Б., Геворкян A.A., Бурдавицына М.В., Травина М.В., Рожковский Е.В.«Клинические аспекты микробной колонизации временных зубных протезов из акрилатов».«Стоматология» - 2008 №1 С. 61-64.
5. Бурдавицына М.В., Тихонова С.И., Волченко Ф.Ф., Ширко Г.Н.,«Обоснование клинического применения новых дезинфектантов «Анавидин» и «Анавидин-Комплит» для дезинфекции стоматологических инструментов в практике ортопедической стоматологии».«Стоматолог» -2008. №6. С. 35-41.
Подписано в печать 22 10.2008 г.
Печать трафаретная
Заказ № 1021 Тираж: 100 экз.
Типография «11-й ФОРМАТ» ИНН 7726330900 115230, Москва, Варшавское ш., 36 (499) 788-78-56 www autoreferat ru
Оглавление диссертации Бурдавицына, Марина Витальевна :: 2008 :: Москва
ВВЕДЕНИЕ
ГЛАВА 1 ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
1.1.Микрофлора полости рта как источник инфицирования. Современное состояние вопроса инфекционного контроля в ортопедической стоматологии.
1.2. Пути инфицирования материалов в практике ортопедической стоматологии 18 1.3 .Препараты для химической стерилизации и дезинфекции 19 1.4. Методы химической стерилизации и дезинфекции в практике ортопедической стоматологии
1.4.1. Очистка и.дезинфекция рабочего места стоматолога и окружающих поверхностей.
1.4.2. Дезинфекция и стерилизация в стоматологической (зуботех-нической) лаборатории
1.4.3. Дезифекция турбинных наконечников и других стоматологических инструментов и устройств, соединенных со стационарными воздушными и водными системами. 29 Резюме
ГЛАВА 2 МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
2.1. Исследуемые инструменты и материалы
2.2. Методы микробиологического контроля эффективности дезинфекции и предстерилизационной очистки
2.2.1. Методика проведения исследования для контроля эффектив- 34 ности дезинфекции стоматологических объектов
2.2.2.Бактериологический метод исследования бесспоровых аэробных и факультативно-анаэробных бактерий
2.2.3. Бактериологический метод исследования бесспоровых обли- ^ гатно-анаробных и микроаэрофильных бактерий
2.2.4.Бактериологический метод исследования спорообразующих 36 бактерий
2.3.5. Микологический метод исследования дрожжеподобных и ми-целиальных грибов
2.3.6. Вирусологический метод эффективности контроля эффективности стерилизации 3g
2.3. Определение влияния дезинфицирующих растворов на геометрические параметры слепков зубного ряда
2.4. Характеристика изучаемых дезинфектантов
2.4.1. «АДС-521»
2.4.2. «Люмакс-Дентал»
2.4.3. «Анавидин»
2.4.4. «Анавидин-Комплит»
2.5. Методы статистической обработки результатов исследования
ГЛАВА 3 ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЕ ОБОСНОВАНИЕ МЕТОДИКИ ОБРАБОТКИ СТОМАТОЛОГИЧЕСКИХ ИНСТРУМЕНТОВ ДЕЗИНФЕКТАНТОМ АНАВИДИН
3.1. Изучение воздействия анавидина на штаммы бесспоровых фа- 48 культативно- и облигатно-анаэробных бактерий
3.2. Изучение воздействия анавидина на штаммы спорообразующих факультативно - и облигатно- анаэробных бактерий
3.3. Особенности химической стерилизации в отношении спорооб- ^4 разующих бацилл и собственно спор
3.4. Изучение фунгицидной активности анавидина на штаммы ^ дрожжеподобных и мицелиальных грибов
3.5. Изучение вирулицидной активности анавидина ^
3.6. Изучение влияния дезинфицирующих средств на структуру поверхности и геометрические размеры слепков
ГЛАВА 4 КЛИНИЧЕСКАЯ АПРОБАЦИЯ МЕТОДА ДЕЗИН- 74 ФЕКЦИИ СТОМАТОЛОГИЧЕСКИХ ИНСТРУМЕНТОВ И СЛЕПКОВ ДЕЗИНФЕКТАНТОМ АНАВИДИН
4.1. Оценка эффективности обработки стоматологических инстру- 74 ментов методом погружения в раствор анавидина после практической работы врача стоматолога-ортопеда
4.2. Оцешса эффективности химической дезинфекции слепков зубного ряда методом погружения в раствор анавидина
Резюме
ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ И ЗАКЛЮЧЕНИЕ ВЫВОДЫ
Введение диссертации по теме "Стоматология", Бурдавицына, Марина Витальевна, автореферат
Актуальность исследования
Инфекционному контролю в стоматологии уделяется большое внимание. Это связано с тем, что в полости рта представлено большое количество аэробных, факультативно- и облигатно-анаэробных бактерий, грибов, многие из которых обладают рядом факторов патогенности (Олейник И.И. с соавт., 1991; 2000; Царев В.Н., Ушаков Р.В., 1992-2008; Backisch, Frahm , 1989 и др.). Кроме этого со слюной, десневой жидкостью и кровью в полость рта проникают вирусы, в том числе, вирусы иммунодефицита человека и гепатита. В связи с этим на стоматологическом приеме имеется повышенный риск передачи инфекции, в частности через инструменты, слепки и другие стоматологические изделия, контактирующие с полостью рта.
Дезинфекция стоматологических материалов и инструментов (согласно требованиям Госсанэпиднадзора) является обязательным мероприятием.
В настоящее время в стоматологической практике широко применяется метод химической стерилизации изделий с использованием поверхностно-активных соединений. В частности, хорошо зарекомендовали себя в стоматологии дезинфектанты «Катамин АБ» или «ПВК-1», ( ОАО «Синтез», Россия), «Аламинол» и «Бионол» (ГНЦ «НИОПИК»), «Окадез» (Норд-Ост, Россия), содержащие бензалкония хлорид из группы четвертичных аммониевых производных высокоактивный в отношении бактерий, грибов и вирусов (Остро-ухова А.А. с соавт., 2002; Камилов Р., 2004; Арутюнов С.Д., Царёв В.Н., Ост-роухова А.А., 2003). Однако при высокой степени загрязнения объектов стерилизации органическими примесями требуется использовать высокие концентрации растворов - 10% и более, что может оказывать отрицательное воздействие на некоторые виды инструментов и, особенно, на слепки зубного ряда при протезировании (Остроухова А.А., 2002, 2005; Дзиццоева, 2005).
Последнее связано, прежде всего, с тем, что в некоторых клинических ситуациях трудно выбрать уровень дезинфекции или провести грань последней со стерилизацией после анализа категорий риска для пациента.
Эффективность дезинфекции зависит от типа препарата, длительности обработки. Вместе с тем, рекомендованные средства имеют ряд недостатков, в частности являются токсическими веществами (формальдегид, глутаровый альдегид, фенол), обладают низкой активностью, что требует длительного воздействия препарата на объект. Многие дезинфектанты отрицательно влияют на линейные и объемные параметры слепков, вызывают коррозию материалов, способны вызывать аллергизацию персонала. В связи с этим разработка новых многокомпонентных дезинфекционных средств остается актуальной задачей.
ЦЕЛЬ И ЗАДАЧИ ИССЛЕДОВАНИЯ
Цель работы:
Повышение эффективности дезинфекции стоматологических материалов и инструментов в клинике ортопедической стоматологии с применением препаратов фосфатных солей полигексаметитленгуанидина («Анавидин», « Анавидин-Комплит»).
Задачи
1. Изучить качественный и количественный состав микрофлоры на поверхности инструментов, материалов, слепков и его изменение под влиянием солей полигесаметиленгуанидина.
2. Изучить влияние химической дезинфекции с применением известных многокомпонентных средств содержащих бигуаниды на возможные виды микробного загрязнения :аэробные и анаэробные бактерии грибы, вирусы.
3. Исследовать влияние дезинфектантов «Анавидин», «Анавидин-Комплит» на геометрические размеры и структуру поверхности слепочных материалов, качество поверхности инструментов.
4. Разработать методику дезинфекции стоматологических слепков с применением препаратов «Анавидин», «Анавидин-Комплит» на основе биту анидов нового поколения.
НАУЧНАЯ НОВИЗНА
В результате проведенного исследования впервые изучено изменение качественного и количественного состава микрофлоры из различных участков стоматологических слепков, инструментов и материалов используемых для изготовления различных конструкций протезов под влиянием солей по-лигесаметиленгуанидина.
Впервые проведено сравнительное изучение активности дезинфекционных средств на основе биту анидов «Анавидина», «Анавидин-Комплит а» на резидентную и транзиторную микрофлору полости рта.
Впервые проведено изучение влияния солей полигесаметиленгуанидина на различные слепочные материалы, используемые в ортопедической стоматологии.
Впервые изучена антибактериальная, фунгуцидная и вирулоцидная активность новых дезинфекционного средств «Анавидин», «Анавидин-Комплит» в условиях ортопедической стоматологической клиники.
ПРАКТИЧЕСКАЯ ЦЕННОСТЬ
Определены режимы дезинфекции стоматологических инструментов и материалов с использованием отечественных дезинфекционных средств на основе солей полигесаметилен-гуанидина - «Анавидина», «Анавидин-Комплита».
Разработана схема проведения дезинфекции стоматологических слепков препаратами «Анавидин», «Анавидин-Комплит».
Предложены методики микробиологического контроля эффективности химической дезинфекции с помощью производных полигесаметилен-гуанидина
ПОЛОЖЕНИЯ, ВЫНОСИМЫЕ НА ЗАЩИТУ
1. Под влиянием растворов солей полигесаметиленгуанидина происходит изменение состава микрофлоры на поверхности инструментов и стоматологических слепков в зависимости от концентрации препарата и экспозиции
2. В рабочих концентрациях препараты на основе полигесаметиленгуанидина «Анавидин», «Анавидин-Комплит» обладают выраженным антимикробным действием в отношении референтных и клинических штаммов микроорганизмов
3. Концентрации рабочих растворов, режимы дезинфекции и предстери-лизационной обработки инструментов и стоматологических слепков препаратами на основе солей полигесаметиленгуанидина «Анавидин», «Анавидин-Комплит».
4. В рабочих концентрациях препараты на основе полигесаметиленгуанидина Анавидин и Анавидин-комплит обладают выраженным антибактериальным действием в отношении референтных и клинических штаммов бактерий, включая кислотоустойчивые и спорообразующие виды, что позволяет рекомендовать их для дезинфекции высокого уровня и химической стерилизации стоматологических инструментов.
5. Концентрации рабочих растворов, режимы дезинфекции и предстери-лизационной обработки стоматологических инструментов и слепков зубного ряда препаратами Анавидин и Анавидин-комплит.
ВНЕДРЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЯ
Полученные результаты клинических и микробиологических методов исследования используются в учебном процессе на кафедре микробиологии, вирусологии, иммунологии ГОУ ВПО МГМСУ Росздрава, кафедре стоматологии ГОУ ДПО РМАПО Росздрава, в лечебном процессе в стоматологической поликлиники №11 г.Москвы.
ЛИЧНОЕ УЧАСТИЕ АВТОРА
Автор лично производила обработку инструментов, забор материала для микробиологических исследований, принимала участие в проведении микробиологических исследований, проводила изучение геометрических параметров слепков, проводила анализ и статистическую обработку материала, написание диссертационной работы.
ПУБЛИКАЦИИ
По теме диссертации опубликовано 5 научных работ, в том числе 1 - в журнале, рекомендованном ВАК Министерства образования и науки РФ.
АПРОБАЦИЯ РАБОТЫ
Основные положения работы доложены на научно-практических конференциях Научно-исследовательского медико-стоматологического института (НИМСИ при ГОУ ВПО МГМСУ, 2005, 2006, 2007 гг), на совместном заседании кафедры микробиологии, вирусологии, иммунологии, кафедры факультетской терапевтической стоматологии, кафедры пародонтологии и гериатрической стоматологии ГОУ ВПО МГМСУ и кафедры стоматологии ГОУ ДПО РМАПО Росздрава.
ОБЪЕМ И СТРУКТУРА ДИССЕРТАЦИИ
Заключение диссертационного исследования на тему "Дезинфекция стоматологических материалов и инструментов в клинике ортопедической стоматологии с применением солей полигексаметилен-гуанидина"
ВЫВОДЫ
1. В результате использования стоматологических инструментов во время работы врача-стоматолога с пациентом происходит их контаминация микробной флорой полости рта в высокой степени (106 - 108 КОЕ/см2). Многие представители микроорганизмов -Enterococcus faecalis, Staphylococcus epidermidis, Staphylococcus aureus, Streptococcus sanguis, Klebsiella, Bacillus, грибы Candida и Aspergillus, а также вирусы - длительное время (от 48 часов до 5 суток) сохраняют свою жизнеспособность.
2. Растворы препаратов на основе полигексаметилен-гуанидина (Анавидин и Анавидин-Комплит) оказывают выраженное бактерицидное, спороцидное, фунгицидное и вирулицидное действие на микробную флору в эксперименте in vitro, которое зависит от концентрации раствора и экспозиции.
3. Дезинфектанты Анавидин и Анавидин-Комплит не оказывают отрицательного влияния на геометрические параметры и структуру слепочных материалов, качество поверхности материалов и инструментов, обладает выраженным дезинфицирующим эффектом в отношении микрофлоры, контаминирующей слепки, в концентрациях безопасных для обрабатываемых изделий.
4. При модельных экспериментах по обработке искусственно контаминированных инструментов и контаминированных при работе стоматолога-ортопеда с пациентов обосновано выделение нескольких режимов обработки инструментов методом погружения в 1% и 0,5% растворы дезинфектанта.
5. Применение ультразвуковой обработки совместно с химической в растворе Анавидина методом погружения существенно повышает эффективность деконтаминации и позволяет сократить экспозицию стерилизуемых объектов до 20 минут.
Практические рекомендации
1. Для дезинфекции стоматологических инструментов, перед проведением стерилизации, оптимальным режимом при использовании препаратов Анавндин и Анавидин-Комплит» является погружение изделия на 15 минут в 0,5% раствор (по дезинфектанту), а для холодной стерилизации в 0,5% раствор на 25-30 минут или 1% раствор - 20 минут. Представляется целесообразным комбинировать химическую обработку дезинфектантом Анавидин в течение с ультразвуковой, что сокращает время обработки на 5 минут.
2. Схема проведения дезинфекции стоматологических слепков препаратом Анавидин-Комплит 20 минут в 0,5% растворе или 15 минут - в 1% растворе, после чего ополаскивание проточной водой в течение 1-2 минут.
3. Предложенные в работе методики микробиологического контроля эффективности химической дезинфекции с помощью производных полигесаметилен-гуанидина могут быть рекомендованы для проведения испытаний других препаратов этой группы и текущего микробиологического контроля эффективности дезинфекции/стерилизации.
Список использованной литературы по медицине, диссертация 2008 года, Бурдавицына, Марина Витальевна
1. Агапов B.C., Тарасенко С.В., Трухина Г.М., Лакшин A.M. Внутрибольничные инфекции в хирургической стоматологии. Москва. -Медицина. -2002.-255с.
2. Арефьева Л. П., Маневич Л. А., Федорова Л. С. Бактерицидная активность некоторых зарубежных препаратов/Юсновные направления дезинфекционного дела.— М., 1987.— С. 9-12.
3. Арутюнов С.Д., Царёв В.Н., Остроухова А.А. Основы применения современных методов стерилизации и дезинфекции в стоматологической практике. Учебное пособие. — М., ВУМЦ. — 2003. — 74с.
4. Балин В.Н., Иорданишвили А.К., Ковалевский A.M. Практическая периодонтология.-СПб.: Питер-пресс, 1995.-272с.
5. Белова В. И, Арефьева Л. П., Лиманова В. Е. и др. Основные направления исследований в области создания дезинфицирующих препаратов//Актуальные вопросы совершенствования дезинфекционных и стерилизационных мероприятий. Ч. 2.— М. 1990,—С. 137-141.
6. Белова В. И., Волков Ю. П. Основные направления исследований в разработке дезинфицирующих средств//Научные основы дезинфекции и стерилизации.— М., 1991.— С. 13-18.
7. Бектемиров Т.А. Вакцинопрофилактика гепатита В: успехи и проблемы //Вакцинация.-2001.-№ 3 (15) С.4-5.
8. Большая Российская энциклопедия лекарственных средств т. П М.,»Ремедиум»,2001.С 126-148.
9. Ю.Боровский Е.В., Леонтьев В.К. Биология полости рта.-М.: Медицинская книга: Н.Новгород: НГМД, 2001.С-304.
10. П.Дмитриева JI.A., Романов А.Е., Царев В.Н. и др. Сравнительная характеристика антибактериальной активности новых антисептиков и перспективы их использования в стоматологической практике / Стоматология, 1997, Том 76, № 2, С. 26 28.
11. Дмитриева JI.A., Романов А.Е., Царёв В.Н. Клинические и микробиологические аспекты применения реставрационных материалов и антисептиков в комплексном лечении заболеваний пародонта. Москва.-МЕДпресс. -2002.-94с.
12. Р.Камилов. Химическая дезинфекция стоматологических оттисков с применением нового дезинфектанта «Окадез М»: автореферат дисс. . к.м.н.-М., 2004.-25с.
13. Кордис М.С., Музыченко Н.И., Петраш Н.В Применение ингибиторов ферментов, антисептической полимерной пленки и антимикробных препаратов в профилактике одонтогенной инфекции // Профилактика и лечение одонтогенных инфекций (труды ЦНИИС),М., 1989.-180с
14. Николаев А.И., Цепов JI.M. Практическая терапевтическая стоматология. -СПб. -2001. -388с.
15. Пантелеева Л.Г., Федорова Л.С., Цвирова И.М., Белова А.С. Вирулицидная, туберкулоцидная и фунгицидная активность новых средств из группы поверхностно-активных веществ.-Дезинфекционное дело.-1998.-№3.-С. 1-4.
16. Пантелеева Л.Г., Цвирова И.М., Рысина Т.З., Белова А.С. Методические указания по применению средства «Саноджин» производства фирмы «Пуросан АВ» (Швеция) для целей дезинфекции.-М.Д999.-12С.
17. Санитарно-гигиенический режим, дезинфекция и стерилизация в стоматологических учреждениях. Издание 3-е. // под ред. А.А. Остроуховой. -М. 2006. - 51с.
18. Санитарно-гигиенические требования к организации профилактики внутрибольничных инфекций в учреждениях стоматологического профиля /Под ред. проф. С.И. Абакарова. Пособие для врачей М. -2003.-44с.
19. Саркисян МС. Стерилизация слепков в ортопедической стоматологии с помощью четвертичных аммониевых производных. Автореф. дис. канд. мед.наук. ML -2001 -23 с.
20. Слюна:ее значение для здоровья и роль при заболеваниях //l.Dental.J.-1992.-Vol.42.-P.291-304.
21. Ушаков Р.В., Царев В.Н. Этиология и этиотропная терапия неспецифических инфекций в стоматологии.-Иркутск, 1997.-116с.
22. Ушаков Р.В., Царёв В.Н., Абакарова Д.С.Духаджян Г.А. Применение адгезивных двухслойных стоматологических плёнок «Диплен-Дента» в стоматологии М.-2002.-25с
23. Ушаков Р.В., Царев В.Н., Завадский Р.В. Профилактика послеоперационных осложнений в хирургической стоматологии методом подслизистой .- Сборник научных трудов международной конференции «Копейкинский байкальские чтения» 28-29 июня.-2001с. 179-180
24. Ушаков Р.В., Царев В.Н., Лопырев В.А. и др. Антибактериальная активность антисептиков, применяемых в стоматологии// Журнал инфекционной патологии, 1996.-№2.-С.23-25.
25. Ушаков Р.В., Царев В.Н., Сердюк Е.Н., Ласточкин А.А. Профилактика инфекционно-воспалительных осложнений в хирургической стоматологии/Учебное пособие.-М.-2003.- 40 с.
26. Ушаков Р.В., Царев В.Н.Микрофлора полости рта и ее значение в развитии стоматологических заболеваний// Стоматология для всех, 1998.-№3.-С.22-24.
27. Ушаков Р.В.,Царев В.Н.Местное антимикробное лечение в стоматологии.-изд.Медиапресс,-2003 .-152с
28. Ушакова Т.В. Клинико-лабораторное обоснование применения нитазола в комплексном лечении хронического генерализованного пародонтита: Автор еф.дисс. к.м.н./ММСИ.-М., 1992.-20с.
29. Федорова JI. С., Арефьева JI. И., Путинцева JI. С. и др. Современные средства дезинфекции и дезинсекции. Характеристика, назначение, перспективы.— М., 1991.— 51 с.
30. Хельвиг Э., Климек Й., Аттин Т. Терапевтическая стоматология/пер.с нем.- Urban&Schwarzenberg.-l999.-409 с.
31. Царев В.Н., Ушаков Р.В., Давыдова М.М. Лекции по клинической микробиологии для студентов стоматологических факультетов. -Иркутск, 1996.-82с.
32. Царев В.Н., Ушаков Р.В., Ласточкин А.А. Принципы профилактики инфекционно-воспалительных осложнений в стоматологической практике. 5-я конференция «Современные проблемы антимикробной химиотерапии». Москва. 2003 г. С.54-55
33. Царёв В.Н., Чувилкин В.И., Мегрелишвили Н.А.,Романов А.Е. Особенности влияния хлоргексидин-содержащих препаратов на состояние микробиоценоза полости рта у больных пародонтитом. 2003. №2 (27). -С.49-53.
34. Царёв В.Н.,Иванов С.Ю.,Чувилкин В.И, Акылбеков Д.И. Результатыизучения влияния различных лекарственных форм хлоргексидина на клеточный фактор воспаления in vitro Тр. Российск. Нац. Контр. «Человек и лекарство» М. -2002. -С.718
35. Энциклопедия лекарств. Регистр лекарственных средств России (РЛС),2003.
36. Юшманова Т.Н., Пантелеева Л.Г. Содержание микроорганизмов на оттисках после дезинфекции их методом погружения в растворы гипохлорита натрия//Стоматология, 1998.-№1.-С.48-49
37. Юшманова Т.Н., Щербаков А.С. Обеззараживание оттисков с целью профилактики внутриболъничной инфекции. Гипохлорит натрия как дезинфицирующее средство //Стоматология. 1998.-№3.-С.41-43.
38. Abello R, Buitragu С, Prate CM, et al. Effect of a mouthrinse containing triclosan and a copolymer on plaque formation in the absence of oral hygiene. Am J Dent 1990;3:S57.
39. Abiko Y. Passive immunization against dental caries and periodontal disease: development of recombinant and human monoclonal antibodies. Crit Rev Oral Biol Med 2000;11(2):140-58
40. Adapted from Marsh and Bradshaw. Physiological approaches to the control of oral biofilms. Adv Dent Res 1997;11: 176-185.
41. AlmstahI A, Wikstrom M, Stenberg I, Jakobsson A, Fagerberg-Mohlin B.Oral microbiota associated with hyposalivation of different origins. Oral Microbiol Immunol. 2003 Feb; 18(1): 1-8.
42. Almstahl A, Wikstrom M, Kroneld U. Microflora in oral ecosystems in primary Sjogren's syndrome.Rheumatol. 2001 May;28(5):1007-13.
43. A1-Mubarak S, Ciancio S, Aljada A, Mohanty P, Ross C, Dandona P. Comparative evaluation of adjunctive oral irrigation in diabetics. J Clin Periodontol. 2002 Apr;29(4):295-300.
44. Anderson MH.A review of the efficacy of chlorhexidine on dental caries and the caries infection. J Calif Dent Assoc. 2003 Mar;31(3):211-4
45. Ansai T, Yamamoto E, Awano S, Yu W, Turner AJ, Takehara T.Effects of periodontopathic bacteria on the expression of endothelin-1 in gingival epithelial cells in adult periodontitis. Clin Sci (Lond) 2002 Sep 1;103 Suppl 1:327S-31S
46. Awano S, Gohara K, Kurihara E, Ansai T, Takehara T. The relationship between the presence of periodontopathogenic bacteria in saliva and halitosis.Int Dent J 2002 Jun;52 Suppl 3:212-6
47. Baehni PC, Takeuchi Y.Anti-plaque agents in the prevention of biofilm-associated oral diseases. Oral Dis. 2003;9 Suppl 1:23-9.
48. Bagga BSR, Murphy RA, Anderson AW, Punwani I. Contamination of dental unit cooling water with oral microorganisms and its prevention. J Am Dent Assoc 1984; 109:712
49. Block SS, ed. Disinfection, sterilization, and preservation, 4th ed. Philadelphia: Lea & Febiger, 1991:676-95
50. Boylan R., Goldstein R, Schulman A. Evaluation of an ultraviolet disinfection unit//J. prosthet. Dent. 1987. - Vol.58. - P. 650-654.
51. Bearfield C, Davenport ES, Sivapathasundaram V, Allaker RP. Possible association between amniotic fluid micro-organism infection and microflora in the mouth. В JOG. 2002 May;109(5):527-33.
52. Bosch JA, Turkenburg M, Nazmi K, Veerman EC, de Geus EJ, Nieuw Amerongen AV. Stress as a determinant of saliva-mediated adherence and coadherence of oral and nonoral microorganisms. Psychosom Med. 2003 Jul-Aug;65(4):604-12.
53. Brading MG, Marsh PD.The oral environment: the challenge for antimicrobials in oral care products. Int Dent J. 2003 Dec;53(6 Suppl l):353-62.
54. Bradshaw DJ, Marsh PD, Watson GK, Allison С Role of Fusobacterium nucleatum and coaggregation in anaerobe survival in planktonic and biofilm oral microbial communities during aeration. Infect Immun. 1998 Oct;66(l 0):4729-32.
55. Brook I.J. Isolation of capsulate anaerobic bacteria from orofacial abscesses// Med Microbiol.-1986.-Vol.22.-P. 171 -174
56. Brook, Frazier E.H. Aerobic and anaerobic bacteriology of wounds and cutaneus abscesses//Arch Surg.-1990.-Vol.125.-P. 1445-1451.
57. Gjermo P. Chlorhexidine and related compounds. J Dent Res 1989;68(Spec. Issue): 1602.
58. Marvniak J, Dark W, Walker CB, et al. The effect of three mouthrinses on plaque and gingivitis development. J Clin Periodontol 1992; 19:19.
59. Gomes , Shakim ML, Ripa LW. Effect of rinsing with 1.5% hydrogen peroxide (Peroxyl) on gingivitis and plaque. Clin Prevent Dent 1984;6:21.
60. Wennstrom J, Lindhe J. Effect of hydrogen peroxide on developing plaque and gingivitis in man. J Clin Periodontol 1979 ;6: 115.
61. Cash R. Trends in sterilisation and disinfection procedures in orthodontic offices // Amer. J. Orthodont. 1990. - Vol. 98, № 4. . p. 292-300.
62. Council on Dental Therapeutics and Council on Dental aterials, Instruments, and Equipment. Monograph on Safety and Infection Control. 1st ed. Chicago: American Dental Association; 1990
63. Crawford JJ, Broderius RK. Control of cross infection risks in the dental operatory: prevention oFwSer retraction by bur cooling spray systems. J Am Dent Assoc 1988; 116:685
64. Catuogno C, Jones MN.The antibacterial properties of solid supported liposomes on Streptococcus oralis biofilms. Int J Pharm. 2003 May 12;257(l-2):125-40
65. Ciancio SG, Mather ML, Zambon J, Reynolds HS. Effect of a chemotherapeutic agent delivered by an oral irrigation device on plaque, gingivitis, and subgingival flora. JPeriodontol 1989:6:310-315.
66. Cutler CW, Stanford TW, Abraham C, Cederberg RA, Boardman TJ, Ross C.Clinical benefits of oral irrigation for periodontitis are related to reduction of pro-inflammatory cytokine levels and plaque. J Clin Periodontol. 2000 Feb;27(2): 134-43.
67. Cvitkovitch DG. Genetic competence and transformation in oral streptococci.Crit Rev Oral Biol Med. 2001; 12(3):217-43.81. da Silva RM, Lingaas PS, Geiran O, Tronstad L, Olsen I. Multiple bacteria in aortic aneurysms.J Vase Surg. 2003 Dec;38(6): 1384-9.
68. Daneshmand N, Jorgensen MG, Nowzari H, Morrison JL, Slots J. Initial effect of controlled release chlorhexidine on subgingival microorganisms.J Periodontal Res 2002 Oct;37(5):375-9
69. Darout IA, Albandar JM, Skaug N, Ali RW. Salivary microbiota levels in relation to periodontal status, experience of caries and miswalc use in Sudanese adults. J Clin Periodontol 2002 May;29(5):411-20
70. Darout LA, Albandar JM, Skaug N, Ali RW. Salivary microbiota levels in relation to periodontal status, experience of caries and miswak use in Sudanese adults. J Clin Periodontol 2002 May;29(5):411-20
71. Davies RM.The rational use of oral care products in the elderly. Clin Oral Investig. 2003 Oct 28 Epub ahead of print.
72. Desvarieux M. Periodontal disease, race, and vascular disease. Compend Contin Educ Dent 2001 Jul;22(3):34-41
73. Desvarieux M. Periodontal disease, race, and vascular disease. Compend Contin Educ Dent 2001 Jul;22(3):34-41
74. Dogan S, Gunay H, Leyhausen G, Geurtsen W. Effects of low-concentrated chlorhexidine on growth of Streptococcus sobrinus and primary human gingival fibroblasts. Clin Oral Investig. 2003 Dec;7(4):212-6. Epub 2003 Aug22.
75. DuPont GA. Understanding dental plaque; biofilm dynamics. J Vet Dent 1997;14: 91-94. Marsh PD, Bradshaw DJ. Dental plaque as a biofilm. J Industrial Microbiology 1995;15: 169-175.
76. Favero MS, Bond WW. Chemical disinfection of medical and surgical materials. In: Block SS, ed. Disinfection, sterilization, and preservation, 4th ed. Philadelphia: Lea & Febiger, 1991:617-41. 38.
77. Fine DH, Letizia J, Mandel Ш. The effect of rinsing with Listerine antiseptic on the properties of developing plaque. J Clin Periodontol 1985:12:660.
78. Frascella JA, Fernandez P, Gilbert RD, Cugini M.A randomized, clinical evaluation of the safety and efficacy of a novel oral irrigator. Am J Dent. 2000 Apr;13(2):55-8
79. Geerts SO, Nys M, De MP, Charpentier J, Albert A, Legrand V, Rompen EH. Systemic release of endotoxins induced by gentle mastication: association with periodontitis severity. J Periodontol 2002 Jan;73(l):73-8
80. Geerts SO, Nys M, De MP, Charpentier J, Albert A, Legrand V, Rompen EH. Systemic release of endotoxins induced by gentle mastication: association with periodontitis severity.J Periodontal 2002 Jan;73(l):73-8
81. Gerardu VA, Buijs MJ, ten Cate JM, van Loveren C. The effect of a single application of 40% chlorhexidine varnish on the numbers of salivary mutans streptococci and acidogenicity of dental plaque. Caries Res. 2003 Sep-Oct;37(5):369-73.
82. Gilbert P, McBain AJ. Literature-based evaluation of the potential risks associated with impregnation of medical devices and implants with triclosan. Surg Infect (Larchmt). 2002;3 Suppl l:S55-63.
83. Grossner-Schreiber B, Griepentrog M, Haustein I, Muller WD, Lange KP, Briedigkeit H, Gobel UB.Plaque formation on surface modified dental implants. An in vitro study. Clin Oral Implants Res. 2001 Dec;12(6):543-51.
84. Guan YH, Lath DL, Graaf T, Lilley IH, Brook AH. Moderation of oral bacterial adhesion on saliva-coated hydroxyapatite by polyaspartate. J Appl Microbiol. 2003;94(3):456-61.
85. Haffajee AD, Socransky SS. Evidence of bacterial etiology: a historical perspective. Periodontology 2000 1994;5: 7-25.
86. Hagewald S, Bernimoulin JP, Kottgen E, Kage A. Salivary IgA subclasses and bacteria-reactive IgA in patients with aggressive periodontitis. J Periodontal Res 2002 Oct;37(5):333-9
87. Han YW, Shi W, Huang GT, Kinder Haake S, Park NH, Kuramitsu H, Genco RJ.Interactions between periodontal bacteria and human oral epithelial cells: Fusobacterium nucleatum adheres to and invades epithelial cells. Infect Immun. 2000 Jun;68(6):3140-6.
88. Harper DS, Gordon J, Fine J, Hoviiaras C. Effect of subgingival irrigation with an antiseptic mouthrinse on periodontal pocket microflora. J Dent Res 1991:70:474.
89. Hoang TQ.The use of triclosan in supportive treatment of gingivitis and periodontitis. J West Soc Periodontol Periodontal Abstr. 2000;48(4): 101-8.
90. Houle MA, Grenier D, Plamondon P, Nakayama K. The collagenase activity of Porphyromonas gingivalis is due to Arg-gingipain. FEMS Microbiol Lett. 2003 Apr 25;221(2): 181-5.
91. Houle MA, Grenier D, Plamondon P, Nakayama K. The collagenase activity of Porphyromonas gingivalis is due to Arg-gingipain. FEMS Microbiol Lett. 2003 Apr 25;221(2):181-5.
92. Hunt Gerardo S, Yoder SC, Citron DM, Goldstein EJ, Haake SK.Sequence conservation and distribution of the fusobacterial immunosuppressive protein gene, fipA. Oral Microbiol Immunol 2002 0ct;17(5):315-20
93. Jacobs, J. A. The "Streptococcus milleri" group: Streptococcus anginosus, Streptococcus constellatus, and Streptococcus intermedius. Rev. Med. Microbiol. 1997. 8: 73-80.
94. Johansson A, Hanstrom L, Kalfas S. Inhibition of Actinobacillus actinomycetemcomitans leukotoxicity by bacteria from the subgingival flora. Oral Microbiol Immunol. 2000 Aug; 15(4):218-25
95. Johnson KE, Sanders JJ, Gellin RG, Palesch YY.The effectiveness of a magnetized water oral irrigator (Hydro Floss) on plaque, calculus and gingival health. J Clin Periodontol. 1998 Apr;25(4):316-21.
96. Kato Т., lijima !!., Ishihara K. etal. Antibacterial effects of Listerinc on oral bacteria. 1990, Nov. - P. 301-307.
97. Kawashima M, Hanada N, Hamada T, Tagami J, Senpuku H Realtime interaction of oral streptococci with human salivary components. . Oral Microbiol Immunol. 2003 Aug; 18(4):220-5.
98. Kawashima Y, Ishikawa I. Simple and rapid detection of serum antibody to periodontopathic bacteria by dot blotting. J Periodontal Res 2002 Jun;37(3):223-9
99. Kim SS, Kim S, Kim E, Hyun B, Kim KK, Lee BJ. Synergistic inhibitory effect of cationic peptides and antimicrobial agents on the growth of oral streptococci. Caries Res. 2003 Nov-Dec;37(6):425-30.
100. Konig J, Storcks V, Kocher T, Bossmann K, Plagmann HC. Anti-plaque effect of tempered 0.2% chlorhexidine rinse: an in vivo study. J Clin Periodontol. 2002 Mar;29(3):207-10
101. Kononen E Development of oral bacterial flora in young children. Ann Med. 2000 Mar;32(2): 107-12.
102. Leonhardt A, Olsson J, Dahlen G.Bacterial colonization on titanium, hydroxyapatite, and amalgam surfaces in vivo. Dent Res. 1995 Sep;74(9): 1607-12
103. Lewis DL, Вое RK. Cross infection risks associated with current procedures for using highspeed dental handpieces. J Clin Microbiol 1992
104. Lucas GQ, Lucas ON.Preventive action of short-term and long-term chlorhexidine rinses. Acta Odontol Latinoam. 1999;12(l):45-58
105. Luppens SB, Rombouts FM, Abee T.The effect of the growth phase of Staphylococcus aureus on resistance to disinfectants in a suspension test. J Food Prot 2002 Jan;65(l): 124-9
106. Mandel ID. Oral infections: impact on human health, well-being, and health-care costs Compend Contin Educ Dent 2002 May;23(5):403-6, 408.
107. Mandel ID. Oral infections: impact on human health, well-being, and health-care costs Compend Contin Educ Dent 2002 May;23(5):403-6, 408, 410 passim; quiz 414
108. Marchant S, Brailsford SR, Twomey AC, Roberts GJ, Beighton D. The predominant microflora of nursing caries lesions. Caries Res. 2001 Nov-Dec;35(6):397-406.
109. Marsh PD Plaque as a biofilm: pharmacological principles of drug delivery and action in the sub- and supragingival environment. Oral Dis. 2003 ;9 Suppl 1:16-22.
110. Marsh PD. Are dental diseases examples of ecological catastrophes? Microbiology. 2003 Feb;149(Pt 2):279-94.
111. McBain AJ, Bartolo RG, Catrenich CE, Charbonneau D, Ledder RG, Gilbert P.Effects of triclosan-containing rinse on the dynamics and antimicrobial susceptibility of in vitro plaque ecosystems. Antimicrob Agents Chemother. 2003 Nov;47(ll):3531-8.
112. McBain AJ, Bartolo RG, Catrenich CE, Charbonneau D, Ledder RG, Gilbert P.Effects of triclosan-containing rinse on the dynamics and antimicrobial susceptibility of in vitro plaque ecosystems. Antimicrob Agents Chemother. 2003 Nov;47(ll):3531-8.
113. Mikx FH, Renggli HH. How sensible are bacteriological tests in periodontology?Ned Tijdschr Tandheelkd 1994 Dec;101(12):484-8
114. Mombelli A, Schmid B, Rutar A, Lang NP. Local antibiotic therapy guided by microbiological diagnosis. J Clin Periodontol 2002 Aug;29(8):743-9
115. Myers L.L., Shoop O.S., Colline J.E. Rabbit model to evaluate enterovirulence of Bacteroides fragilis//J.Clin.Microbiol.-1990.-Vol.-28.-P. 1658-1660.
116. Newman HN.Periodontal pocket irrigation as adjunctive treatment. Curr Opin Periodontol. 1997;4:41-50
117. O'Reilly M.Oral care of the critically ill: a review of the literature and guidelines for practice. Aust Crit Care. 2003 Aug;16(3):101-10.
118. Pavarina AC, Pizzolitto AC, Machado AL, Vergani CE, Giampaolo ET.An infection control protocol: effectiveness of immersion solutions to reduce the microbial growth on dental prostheses. J Oral Rehabil. 2003 May;30(5):532-6.
119. Pavarina AC, Pizzolitto AC, Machado AL, Vergani CE, Giampaolo ET.An infection control protocol: effectiveness of immersion solutions to reduce the microbial growth on dental prostheses. J Oral Rehabil. 2003 May;30(5):532-6.
120. Piscitelli, S. C., J. Shwed, P. Schreckenberger, and L. H. Danziger. Streptococcus milleri group: renewed interest in an elusive pathogen. Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. 199211: 491-498
121. Pistorius A, Willershausen B, Steinmeier EM, Kreislert M. Efficacy of subgingival irrigation using herbal extracts on gingival inflammation. J Periodontol. 2003 May;74(5):616-22.
122. Pitten FA, Doering S, Kramer A, Rosin M.In vitro assay for the screening of the plaque-reducing activity of antimicrobial agents. Arzneimittelforschung. 2003;53(3): 182-7.
123. Pitten FA, Doering S, Kramer A, Rosin M.In vitro assay for the screening of the plaque-reducing activity of antimicrobial agents. Arzneimittelforschung. 2003;53(3): 182-7
124. Pitten FA, Doering S, Kramer A, Rosin M.In vitro assay for the screening of the plaque-reducing activity of antimicrobial agents. Arzneimittelforschung. 2003;53(3): 182-7.
125. Pitten FA, Doering S, Kramer A, Rosin M.In vitro assay for the screening of the plaque-reducing activity of antimicrobial agents. Arzneimittelforschung. 2003;53(3): 182-7.
126. Reuter G. The Lactobacillus and Bifidobacterium microflora of the human intestine: composition and succession. Curr Issues Intest Microbiol. 2001 Sep;2(2):43-53.
127. Roldan S, Herrera D, Sanz M. Biofilms and the tongue: therapeutical approaches for the control of halitosis. Clin Oral Investig. 2003 Dec;7(4): 189-97
128. Sbordone L, Bortolaia C.Oral microbial biofilms and plaque-related diseases: microbial communities and their role in the shift from oral health to disease. Clin Oral Investig. 2003 Dec;7(4):181-8. Epub 2003 Nov 04.
129. Scannapieco FA, Bush RB, Paju S.Associations between periodontal disease and risk for nosocomial bacterial pneumonia and chronic obstructive pulmonary disease. A systematic review. Ann Periodontol. 2003 Dec;8(l):54-69
130. Scannapieco, F. A. Saliva-bacterium interactions in oral microbial ecology. Crit. Rev. Oral Biol. Med. 1994.-5:203-248
131. Sciotti, M. A., I. Yamodo, J. P. Klein, and J. A. Ogier. The N-terminal half part of the oral streptococcal antigen I/IIf contains two distinct binding domains. FEMS Microbiol. Lett. 1997.153: 439-445
132. Shay К Infectious complications of dental and periodontal diseases in the elderly population. Clin Infect Dis 2002 May 1;34(9): 1215-23
133. Shay K. Infectious complications of dental and periodontal diseases in the elderly population.Clin Infect Dis 2002 May l;34(9):1215-23
134. Sheen S, Eisenburger M, Addy M.Effect of toothpaste on the plaque inhibitory properties of a cetylpyridinium chloride mouth rinse. Surg Infect (Larchmt). 2001 Spring;2(l):5-18.
135. Shiltitoe E.J. Caffesse R.G. The amj viral spectrum of Listerme antiseptic//Oral Suig. Oral Med. OralPathol, OralRadiol. Endod. -1995, Apr. p. 442-448.
136. Sjostrom S, Kalfas S.Tissue necrosis after subgingival irrigation with fluoride solution. J Clin Periodontal. 1999 Apr;26(4):257-60.
137. Slavkin HC. Biofilms, microbial ecology and Antoni Van Leeuwenhoek. J Am Dent Assoc 1997;128: 492-495.
138. Slomiany B, Slomiany A Porphyromonas gingivalis lipopolysaccharide interferes with salivary mucin synthesis through inducible nitric oxide synthase activation by ERK and p38 kinase. Biochem Biophys Res Commun 2002 Oct 11;297(5): 1149
139. Socransky SS, Smith C, Haffajee AD. Subgingival microbial profiles in refractory periodontal disease.J Clin Periodontol 2002 Mar;29(3):260-8
140. Sorsblom B, Sarkiala-Kessel E, Kanervo A, Vaisanen ML, Helander M, Jousimies-Somer H. Characterisation of aerobic gram-negative bacteria from subgingival sites of dogs—potential bite wound pathogens. J Med Microbiol 2002 Mar;51(3):207-20
141. Sreenivasan P, Gaffar A.Antiplaque biocides and bacterial resistance: a review. J Clin Periodontol. 2002 Nov;29(ll):965-74.
142. Sreenivasan P.The effects of a triclosan/copolymer dentifrice on oral bacteria including those producing hydrogen sulfide. Eur J Oral Sci. 2003 Jun;lll(3):223-7.
143. Stephen KW, Saxton CA, Jones CL, et al. Control of gingivitis and calculus by a dentifrice containing a zinc salt and triclosan. J Periodontol 1990;61:674.
144. Suci PA, Tyler В J. A method for discrimination of subpopulations of Candida albicans biofilm cells that exhibit relative levels of phenotypic resistance to chlorhexidine. J Microbiol Methods. 2003 Jun;53(3):313-25.
145. Sullivan A, Wretlind B, Nord CE Will triclosan in toothpaste select for resistant oral streptococci? Clin Microbiol Infect. 2003 Apr;9(4):306-9
146. Sumi Y, Miura H, Sunakawa M, Michiwaki Y, Sakagami N. Colonization of denture plaque by respiratory pathogens in dependent elderly. Gerodontology. 2002 Jul;19(l):25-9.
147. Svatun B, Saxton CA, Rolla G. Six-month study of the effect of a dentifrice containing zinc citrate and triclosan on plaque, gingival health,and calculus. Scand J Dent Res 1990;98:301.
148. Vitkov L, Hannig M, Krautgartner WD, Fuchs K. Bacterial adhesion to sulcular epithelium in periodontitis. FEMS Microbiol Lett 2002 Jun 4;211(2):239-46
149. Walsh TF, Unsal E, Davis LG, Yilmaz O. The effect of irrigation with chlorhexidine or saline on plaque vitality. J Clin Periodontol. 1995 Mar;22(3):262-4.
150. Willcox, M. D., C. Y. Loo, D. W. Harty, and K. W. Knox. Fibronectin binding by Streptococcus milleri group strains and partial characterisation of the fibronectin receptor of Streptococcus anginosus F4. Microb. Pathog. 1995 19: 129-137.