Автореферат и диссертация по ветеринарии (16.00.03) на тему:Усовершенствование методов контроля эпидемиологически опасных и условно-патогенных микроорганизмов, выделяемых от птиц

ДИССЕРТАЦИЯ
Усовершенствование методов контроля эпидемиологически опасных и условно-патогенных микроорганизмов, выделяемых от птиц - диссертация, тема по ветеринарии
АВТОРЕФЕРАТ
Усовершенствование методов контроля эпидемиологически опасных и условно-патогенных микроорганизмов, выделяемых от птиц - тема автореферата по ветеринарии
Новикова, Оксана Борисовна Санкт-Петербург 2004 г.
Ученая степень
кандидата ветеринарных наук
ВАК РФ
16.00.03
 
 

Автореферат диссертации по ветеринарии на тему Усовершенствование методов контроля эпидемиологически опасных и условно-патогенных микроорганизмов, выделяемых от птиц

На правах рукописи

НОВИКОВА ОКСАНА БОРИСОВНА

УСОВЕРШЕНСТВОВАНИЕ МЕТОДОВ КОНТРОЛЯ

ЭПИДЕМИОЛОГИЧЕСКИ ОПАСНЫХ И УСЛОВНО-ПАТОГЕННЫХ МИКРООРГАНИЗМОВ, ВЫДЕЛЯЕМЫХ ОТ ПТИЦ

16.00.03 - ветеринарная микробиология, вирусология, эпизоотология, микология с микотоксикологией и ИММУНОЛОГИЯ

АВТОРЕФЕРАТ

диссертации на соискание учёной степени кандидата ветеринарных наук

Санкт-Петербург 2004

Работа выполнена в отделе микробиологии Всероссийского научно-исследовательского ветеринарного института птицеводства

Научный руководитель ■

доктор ветеринарных наук, профессор, заслуженный деятель науки РФ Борисенкова Адель Наумовна

Официальные оппоненты:

доктор ветеринарных наук, профессор Калишин Николай Михайлович

кандидат ветеринарных наук Персов Аркадий Семёнович

Ведущая организация - Всероссийский научно-исследовательский

институт экспериментальной ветеринарии им. Я.Р.Коваленко

Защита состоится « » СС^ОиЫК^ 2004 г. в 13 часов на заседании диссертационного совета Д 220.059.03 при ФГОУ ВПО «Санкт-Петербургская государственная академия ветеринарной медицины» (196084, Санкт-Петербург, Черниговская ул., д. 5).

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке ФГОУ ВПО «Санкт-Петербургская государственная академия ветеринарной медицины».

Автореферат разослан И » ММЛ, 2004 г.

Учёный секретарь диссертационного совета, кандидат биологических наук

О.В.Узюмова

1. ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

з

Актуальность темы. Птицеводство - наиболее наукоёмкая и динамичная отрасль мирового и отечественного сельского хозяйства. За последние 20 лет среднегодовой прирост яиц в мире составил 4,4%, а мяса птицы - 5,2%. По расчётам специалистов в 2022 году по удельному весу мясо птицы будет занимать первое место среди всех видов животных (Фисинин В.И., 2004). В условиях экономической реформы, в агроценозах повышается риск возникновения и распространения инфекционных, и, в частности, бактериальных болезней птиц. Наличие их в хозяйстве негативно сказывается не только на эпизоотической ситуации, но и на экономике предприятия. Возбудители бактериальных болезней в отдельности или в ассоциации оказывают существенное влияние на падёж птицы при остром или подостром течении заболевания (пастереллёз, колибактериоз, стафилококкоз и другие). При хронических, вялотекущих болезнях бактериальной этиологии отмечают неравномерный или низкий прирост массы бройлеров, повышенную чувствительность птицы к стрессам, снижение яйценоскости и выводимости цыплят, ухудшение биологических качеств эмбрионов, низкую конверсию корма, снижение поствакцинального противовирусного иммунигета (Борисенкова А.Н., 2001).

Бактериальные болезни птиц следует рассматривать в двух аспектах - с позиции опасности для сельскохозяйственной птицы, т.е. в аспекте противо-эпизоотической защиты и предотвращения экономических потерь как основного показателя эффективности птицеводства, и с позиции возможности заболевания людей, т.е. в аспекте противоэпидемиологической защиты, защиты здоровья людей (Борисенкова А.Н., 1998). Имеется достаточно широкий спектр микроорганизмов, персистирующих в организме кур в основном в кишечнике, не вызывающих клинического заболевания их, но эпидемиологически опасных. Птицы могут быть носителями многих зоопатогенных микроорганизмов, таких как Escherichia coli, Citrobacter freundii, Pseudomonas aeruginosa, Staphylococcus aureus. Особое внимание должно быть обращено на то, что сельскохозяйственные птицы могут являться носителями эпидемиологически опасной кишечной микрофлоры, ведущими представителями которой являются Salmonella enteritidis и Campylobacter jejuni. При нарушении санитарных правил получения птицеводческой продукции происходит контаминация её, что может в конечном итоге привести к заболеванию людей, и особенно детей (Максимова З.Н., 1987; Козак С.С., Гусев А.А., Лищук А.П., Берлова Г.А, 1992; Борисенкова А.Н., 1995; Waldroup A.I., 1996; Каф-тырева Л.А., 1999 и др.). Одним из таких заболеваний является кампилобак-териоз.

Возбудитель кампилобактериоза является комменсалом желудочно-кишечного тракта птиц. Это определяет бессимптомное течение инфекции и возможность реализации населению контаминированной птицеводческой продукции кур без ограничения, что способствует распространению кампи-лобактериоза. Эпидемиологическая что даже незначительная его

1 г мяса) может быть опасной для человека (Черкасский Б.Л., Минаев В.И., 1993).

В этой связи изучение спектра микроорганизмов, выделяемых от разных видов и кроссов сельскохозяйственной птицы в хозяйствах различного технологического направления, усовершенствование методов контроля и профилактики бактериальной инфицированности птиц является объективной необходимостью.

Цель работы. Целью настоящих исследований явилось изучение спектра микрофлоры, выделяемой от разных видов птиц на птицефабриках различного технологического направления и усовершенствование методов контроля эпидемиологически опасных и условно-патогенных микроорганизмов -возбудителей бактериальных болезней.

Для реализации цели были поставлены следующие задачи:

- выделить, идентифицировать и выявить доминирующие виды микроорганизмов от птиц разных видов и возрастов на птицефабриках различного технологического направления и изучить их вирулентные свойства;

- освоить и модифицировать методы лабораторной диагностики кампи-лобактериоза птиц, изучить уровень инфицированности кур кампилобакте-риями на различных птицефабриках и определить удельный вес кампилобак-терий в спектре микрофлоры, выделяемой с помётом птиц;

- изучить микрофлору, выделяемую в смывах с тушек кур и воде из ванн охлаждения на различных технологических этапах процесса убоя;

- определить эффективность препарата энрофлоксацина отечественного производства в отношении микроорганизмов, выделяемых о птиц;

- усовершенствовать методы контроля эпидемиологически опасных и условно-патогенных микроорганизмов, выделяемых от птиц.

Научная новизна. Изучен спектр эпидемиологически опасной и условно-патогенной микрофлоры, выделяемой от кур яичных и бройлерных пород, индеек, гусей. Из различных объектов выделены микроорганизмы 19-ти видов. Впервые от птиц выделены культуры микроаэрофильного стрептококка, относящегося к роду Melissococcus. Установлена идентичность микрофлоры, выделяемой из трупов цыплят и кур и групповых проб помёта.

Предложена ускоренная схема идентификации энтеробактерий, выделяемых от птиц.

Изучены вирулентные свойства 46 микроорганизмов 8-ми видов, выделенных из помёта и трупов птиц на модели интраорбитального заражения цыплят первых дней жизни и на модели внутривенного заражения цыплят и кур. Впервые получены данные по вирулентности культур Citrobacter freundii.

Модифицирована методика выделения кампилобактерий из помёта птиц, внутренних органов, смывов с тушек и ванн охлаждения. Впервые в качестве компонента среды для выделения кампилобактерий использована кровь нового биологического объекта - птицы.

Впервые-выявлен-удельный вес кампилобактерий на фоне микрофлоры, выделяемой из помёта кур.1 i

Проведены бактериологические исследования смывов с тушек кур на различных технологических этапах процесса убоя и проб воды из ванн охлаждения, установлена идентичность микрофлоры, выделяемой из групповых проб помёта птиц и в убойном цехе птицефабрики.

Для снижения бактериальной инфицированности птиц эпидемиологически опасной и условно-патогенной микрофлорой показана эффективность препарата отечественного производства из группы энрофлоксацинов.

Предложен прижизненный метод контроля инфицированности птиц бактериальной микрофлорой с использованием исследований мазков из трахеи и групповых проб помёта.

Практическая значимость. Предложенные методы исследования мазков из трахеи и групповых проб помёта можно рекомендовать как эффективные прижизненные способы контроля птицы на наличие патогенных и опасных для человека микроорганизмов, что позволяет выработать дальнейшую стратегию проведения оптимальных мероприятий при выращивании и убое птицы с целью снижения контаминации тушек на выходе готовой продукции. Разработанные «Методические рекомендации по выделению кампилобакте-рий и другой кишечной микрофлоры из групповых проб помёта птиц» могут быть использованы в работе врачами-бактериологами лабораторий птицефабрик и бактериологических отделов ветеринарных лабораторий.

Основные положения, выносимые на защиту:

- спектр микрофлоры, выделяемой от птиц разных видов и возрастов в птицехозяйствах различного технологического направления;

- прижизненный метод контроля инфицированности птиц бактериальной микрофлорой с использованием исследований мазков из трахеи и групповых проб помёта;

- модифицированный метод выделения кампилобактерий и уровень инфицированности ими птиц.

Апробация работы. Основные положения и результаты исследований заслушаны на заседаниях Методических Советов отделов микробиологии и паразитологии ВНИВИП (2000-2004 гг.); Учёных Советов ВНИВИП (20002004 гг.); на Городской научно-практической конференции эпидемиологов, микробиологов, педиатров, санитарных и ветеринарных врачей «Проблема диагностики кампилобактериоза, проявления эпидемического и эпизоотического процессов, профилактика» (Санкт-Петербург, 2001 г.); на Международной конференции-выставке «Птицеводство: мировой и отечественный опыт» (Зеленоград, 2002 г.); на Научной конференции профессорско-преподавательского состава, научных сотрудников и аспирантов СПбГАВМ (Санкт-Петербург, 2002 г.); на X и XII Московских Международных ветеринарных конгрессах (Москва, 2002, 2004 гг.); на Всероссийской конференции молодых учёных и аспирантов по птицеводству (Сергиев Посад, 2002 г.); на Конференции национального комитета по сотрудничеству птицеводов России с Всемирной научной ассоциацией по птицеводству (Зеленоград, 2003 г.); на IV Украинской конференции по птицеводству с международным участием «Птицеводство» (Алушта, 2003 г.); на второй международной межву-

зовской научно-практической конференции аспирантов и соискателей «Предпосылки и эксперимент в науке» (Санкт-Петербург, 2004 г); на Международной научно-практической конференции «Ветеринарная медицина 2004: современные аспекты разработки, маркетинга и производства ветеринарных препаратов» (Феодосия, 2004 г.); на курсах повышения квалификации ветеринарных врачей во ВНИВИП (2000-2004 гг.), региональном семинаре (Екатеринбург, 2003 г.), в Центральной научно-методической ветеринарной лаборатории (Москва-Косино, 2004 г.) и на координационных совещаниях специалистов птицеводства во ВНИВИП (2000-2004 тт.).

Публикация результатов исследований. По теме диссертации опубликовано 9 научных работ, 1 сдана в печать.

Структура и объём работы. Диссертация изложена в одном томе на 168 страницах компьютерного текста и состоит из введения, обзора литературы, собственных исследований, обсуждения полученных результатов, выводов, практических предложений, списка использованной литературы, приложения. Работа иллюстрирована 12 таблицами, 5 диаграммами, 4 гистограммами, 4 фотографиями, 5 рисунками и 1 графиком, Список использованной литературы включает 211 источников, в том числе 79 иностранных авторов.

2. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ 2.1. Материалы и методы исследований

Исследования проводили с 2000 по 2004 год в отделе микробиологии Всероссийского научно-исследовательского ветеринарного института птицеводства (ВНИВИП) в соответствии с программой НИР, в 30-ти птицехозяй-ствах различного технологического направления, в том числе птицефабрики по производству яйца - 20, птицефабрики по производству мяса бройлеров -5, хозяйства по выращиванию гусей - 3, индейководческие птицефабрики - 2.

В лабораторных опытах для определения вирулентных свойств выделенных культур использован 121 цыпленок, в том числе 86 цыплят суточного возраста, 35 цыплят 60-120-дневного возраста.

В работе нами из различных объектов выделено и идентифицировано 1174 культуры 19-ти видов микроорганизмов. Объектами исследований были поражённые органы павших и вынужденно убитых птиц разных видов и возрастов, мазки из трахей клинически здоровых особей, групповые пробы помета, смывы с тушек и пробы воды из ванн охлаждения в убойных цехах птицефабрик

В работе для выделении и идентификации микроорганизмов были использованы общепринятые микробиологические методики с применением простых и дифференциально-диагностических питательных сред, биохимических тестов. Для идентификации энтеробактерий, выделяемых от птиц, нами предложена ускоренная схема. Для выделения кампилобактерий использовали среду, применяющуюся в медицинской практике, в нашей модифика-

ции. Модификация заключалась в использовании крови новою биологического объекта - птицы (курицы)

Чувствительность выделенных штаммов различных культур к энроф-локсацину определяли двумя методами: методом серийных разведений и методом дисков, основанным на диффузии антибиотика в питательную среду

2.2. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

2.2.1. Спектр микрофлоры, выделяемой от птиц в хозяйствах различного технологического направления

Спектр микрофлоры, выделяемой от птиц, достаточно широк и представлен 19-ю видами (гистограмма 2 2.1.1) Наибольший удельный вес приходится на кишечную палочку - 41,6% Значительный процент составляет кокковая микрофлора - 24.4?о, протей - 12,5% и синегнойная палочка - 6,2% В 3,7-2,8% случаев были выделены культ>ры зпидемиологически опасных видов микроорганизмов - Salmonella ententidis и Camp>lobacter jejuni соответственно.

Из 20-ти хозяйств по производству яйца выделено 435 культур микроорганизмов 17-ти видов, доминирующими из которых являются Ebchenchia cob (38,2%), Slaphylococcus aureus (8,3%), Pseudomonas aeuiginosa (8%) и Proteus vulgans (7,8%) Из 5-ти хозяйств по производству мяса бройлеров выделено 617 культур 15-ти видов микроорганизмов, из которых наибольший процент выделения приходится на Eschenchia coli (47%), Staphylococcus auieus (14,4%), Proteus vulgans (13,5%) и Staphylococcus epidermidis (7%). Из двух хозяйств по производству мяса индеек выделено 74 культуры 6-ти видов микроорганизмов, наибольший процент которых также приходится на Escherichia coli (39,2%). Pseudomonas aerugmosa (21.6%), Slaphylococcus auieus (14,4%) и Citiobacter freundii (13.5%) Из трех хозяйств по выращиванию гусей выделено 48 культур 6-ти видов микроорганизмов, ведущими яв-

ляются Proteus vulgaris (43,75%), Pseudomonas aeruginosa (39,58%) и Escherichia coli (6,25%). Из полученных нами результатов исследований видно, что, независимо от специализации хозяйств, доминирующими видами микроорганизмов являются Escherichia coli, Proteus vulgaris, Staphylococcus aureus, Pseudomonas aeruginosa. Однако процентное соотношение различно и обусловлено различной эпизоотической ситуацией в исследуемых хозяйствах.

2.2.1.1 Микрофлора, выделяемая из трупов птиц

Нами были проведены бактериологические исследования трупов птиц разных видов и возрастов на птицефабриках различного технологического направления и патологического материала, поступившего из птицехозяйств различных областей для проведения бактериологических экспертиз. Всего исследовано 298 трупов павших и вынужденно убитых птиц из 24-х птицефабрик. Высевы делали из крови сердца, лёгких, печени, желчного пузыря, селезёнки, яичников, желтка, перитонеальной жидкости, глаз, синусов, носового экссудата, суставов, подошв лапок. Всего был сделан 651 высев из разных органов и выделено 677 культур 16-ти видов микроорганизмов. Доминирующими видами являются Escherichia coli, удельный вес которой составляет 44,3%, Staphylococcus aureus - 14,3% и Proteus vulgaris - 11,7%. Также из органов были выделены эпидемиологически опасные виды Salmonella enteritidis (4,7%) и Campylobacter jejuni (1,33%).

Культуры Escherichia coli, Proteus vulgaris, Pseudomonas aeruginosa, Staphylococcus aureus и Staphylococcus epidermidis выделяли из многих органов, что свидетельствует о генерализованности инфекционного процесса. Культуры Klebsiella pneumoniae были выделены из лёгких и носового экссудата, культуры Campylobacter jejuni - из печени, Streptococcus zooepidemicus -из суставов и подошв лапок, что указывает на органотропность этих видов микроорганизмов.

2.2.1.2 Микрофлора, выделяемая из мазков с трахеи

В работе впервые использован прижизненный метод контроля бактериальной инфицированности птиц: бактериологическое исследование мазков из трахеи. Мазки брали с верхней части трахеи стерильными ватными палочками. Первоначально этот метод предложен для мониторинга на микоплазмоз, посевы делали на транспортную среду для микоплазм. Далее пробы пересевали на мясо-пептонный бульон и исследовали по общепринятым микробиологическим методикам. Всего было исследовано 134 мазка из трахеи клинически здоровых взрослых птиц (100-300-дневного возраста) из 5-ти птицефабрик: 4-х по производству яйца и одной по производству мяса бройлеров. Из 134 мазков с трахеи в 36 пробах (26,9%) выделены микроорганизмы 4-х видов. Pseudomonas aeruginosa, Escherichia coli, Staphylococcus spp., Streptococ-

cus spp Доминирующим видом является Streptococcus spp. удельный вес которого составляет 66,1%. что указывает на ею органотропность

Из результатов полученных нами в исследованиях видно, что почти 30% птицы являются носителями условно патогенных микроорганизмов сел-тико-токсического действия Выделение из трахеи таких видов микроорганизмов как Pseudomonas aerugmosa и Eschericlua coh указывает на дыхательные пути как одни из возможных ворот инфекции, вызываемой этими возбудителями

2.2.1.3 Микрофлора, выделяемая из помёта птиц

Параллельно с бактериологическими исследованиями трупов в отдельных хозяйствах были проведены бактериологические исследования групповых проб помета Вся птица была клинически здорова

Всего была исследована 181 групповая проба помета от двух видов птиц (курица и индейка) разного возраста из 9-ти хозяйств различного технологического направления, в том числе хозяйства по производств}' яйца - 4, хозяйства по производству мяса бройлеров - 4 и 1 индейководческая птицефабрика Всего из помета выделено 367 культур 12-ти видов микроорганизмов (диаграмма 2 2 13 1) Доминирующими являются Escherichia coli. удельный вес которой составил 40,9%, Pioteus vulgaus - 14,99%. Citiobactei fieundii -12,3% и Staph)lococcus aurens - 9.5%

Из 4-х птицефабрик по производств) яйца из 56-ти проб выделено 109 культур 9-ги видов микроорганизмов, из 4-х по производству мяса бройлеров из 115-ти проб - 225 культур 10-ти видов, из индейководческой из 10-тп проб - 33 культуры 4-х видов Доминирующими видами как в хозяйствах по производству яйца, так и по производств} мяса бройлеров и индеек явились Es-chenchia coli, кокковая микрофлора, микроорганизмы родов Pioteus и Citro-bactei

Следует отметить, что из групповых проб помёта были выделены и эпидемиологически опасные виды микроорганизмов Campylobacter jejuni (5,7%) и Salmonella enteritidis (2,2%), которые выделяются как в хозяйствах по производству яйца (15,6% и 1,8% соответственно), так и мяса бройлеров (1,7% и 2,75%).

Нами установлено, что у цыплят раннего возраста (до 10 суток) видовой состав микрофлоры представлен 1-3-мя видами микроорганизмов. У цыплят более старшего возраста спектр выделяемой с помётом микрофлоры представлен большим количеством видов (4-6), в том числе высоким процентом выделения протея, как и у маленьких цыплят. Выделение большого количества протея указывает на нарушение нормального микробиоценоза кишечника цыплят.

Спектр микрофлоры, выделяемой из помёта, в каждом отдельном хозяйстве, был различен и зависел от эпизоотической ситуации на данной птицефабрике.

Полученные данные позволяют утверждать, что микроорганизмы, выделяемые из групповых проб помёта, в большинстве случаев идентичны выделяемым из трупов: 10 нозологических единиц микроорганизмов в одних и тех же хозяйствах выделяются как из помёта, так и из трупов цыплят и кур. Следовательно, метод исследования групповых проб помёта можно использовать как эффективный прижизненный метод контроля живой птицы на но-сительство зоопатогенных и эпидемиологически опасных микроорганизмов. Это позволяет выработать дальнейшую стратегию проведения оптимальных мероприятий при выращивании и убое птицы с целью снижения контаминации тушек на выходе готовой продукции, что особенно актуально для хозяйств по производству мяса бройлеров.

2.2.2 Изучение вирулентных свойств культур микроорганизмов, выделенных из помёта и трупов птиц

Вирулентные свойства были изучены на моделях интраорбитального заражения суточных и внутривенного заражения 60-дневных цыплят у 46 культур 8 видов, в том числе Escherichia coli - 17 культур, Salmonella enteritidis - 3 культуры, Citrobacter freundii- 2 культуры, Providensia stuartii - 2 культуры, Proteus - 6 культур, Escherichia coli+Proteus - 5 культур, Pseudomonas aeruginosa - 4 культуры, Staphylococcus aureus - 3 культуры, Enterococcus - 4 культуры. При этом 22 культуры были выделены из внутренних органов трупов птиц (сердце, лёгкие, печень, глаза), 24 культуры - из групповых проб помёта.

Из 24-х культур, выделенных из помёта, 13 (6 Escherichia coli, 4 Proteus vulgaris, 3 Escherichia coli + Proteus vulgaris) при интраорбитальном и 3 (2 Es-cherichia coli, Citrobacter freundii) при внутривенном заражении были вирулентны и вызывали гибель цыплят в течение 1-5 суток, на вскрытии отмечали признаки острого сепсиса - серозный перикардит, катаральную пневмонию, геморрагический энтерит; 2 (Escherichia coli, Escherichia coli + Proteus

vulgaris) при интраорбитальном и 1 (Escherichia coli) при внутривенном были слабовирулентны и вызывали заболевание цыплят, при убое их через 10 суток из всех внутренних органов были выделены культуры исходного заражающего штамма; 5 (2 Escherichia coli, Escherichia coli + Proteus vulgaris) были авирулентны и не вызывали гибели цыплят или заболевания цыплят.

Из 22-х культур, выделенных из внутренних органов, 7 при интраорби-тальном заражении (2 Escherichia coli, 3 Salmonella enteritidis, 2 Pseudomonas aeraginosa) и 7 при внутривенном заражении (3 Escherichia coli, Citrobacter freundii, 2 Pseudomonas aeraginosa, Staphylococcus aureus) были вирулентны и вызывали гибель цыплят в течение 1-5 суток, на вскрытии отмечали признаки острого сепсиса - серозный перикардит, катаральную пневмонию, геморрагический энтерит; 4 (2 Proteus vulgaris, 2 Staphylococcus aureus) при интра-орбитальном заражении были слабовирулентны и вызывали заболевание цыплят, при убое их через 10 суток из всех внутренних органов были выделены культуры исходного заражающего штамма; 4 (4 Enterococcus) были авиру-лентны и не вызывали гибели или заболевания цыплят.

Из результатов проведённых исследований видно, что все культуры, причём даже одного и того же вида, имеют различную степень вирулентности: встречаются как вирулентные, так и слабовирулентные и авирулентные штаммы. Вирулентные и слабовирулентные штаммы как патогенных, так и условно патогенных микроорганизмов вызывают или гибель цыплят в первые несколько суток, или заболевание, вследствие которого птица отстает в росте и развитии.

2.2.3 Выделение кампилобактерий из различных объектов 2.2.3.1 Освоение и модификация методики выделения кампилобактерий

При отработке методики выделения кампилобактерий применяли методику, используемую в медицине, руководствуясь «Инструкцией по клинической и лабораторной диагностике кампилобактериоза» (1989). В качестве транспортной среды использовали физиологический раствор, в качестве питательной среды для выращивания кампилобактерий - плотную среду - кро-вяно-угольный эритрит-агар с добавлением антибиотиков и пирувата натрия (смесь Буцлера). Для создания микроаэрофильных условий (в атмосфере из 85% N2, 10% СО2 и 5% O2) использовали эксикатор с плотно притертой крышкой со сжиганием в нём кислорода. Посевы культивировали в термостате при температуре 42°С в течение 48-72 часов. По истечении этого времени проводили визуальную оценку выросших колоний и микроскопию при окрашивании по Граму. Исследуемые микроорганизмы при микроскопии представляли собой грамотрицательные, спиральноизгонутые палочки шириной 0,2-0,5 мкм и длиной 0,5-0,8 мкм, образовывали один или несколько витков, чаще имели вид запятой, буквы S или крыльев летящей чайки, спор и капсул не образовывали. После изучения морфологических свойств для дальнейшей родовой дифференциации проводили тесты на способность к продукции цитохромоксидазы и каталазы, температурный тест, тест на спо-

собность к росту на среде Ресселя. Культуры были каталазо- и оксидазопо-ложительные, не росли на среде Ресселя. Таким образом, выделенные культуры по морфологическим и культурально-биохимическим свойствам соответствовали признакам рода Campylobacter.

Для определения вида кампилобактерий использовали тест на способность быстро гидролизовать гиппурат натрия, который позволяет дифференцировать термофильные кампилобактерий различного происхождения на два вида - C.jejuni и C.coli. Исследуемые культуры обладали способностью гидролизовать гиппурат натрия, таким образом, выделенные культуры были отнесены к виду Campylobacter jejuni.

В методике, применяемой в медицине, в качестве одного из компонентов среды для выделения кампилобактерий используется кровь человека. В связи с тем, что объект наших исследований птица, кровь человека была нами заменена на кровь родственного биологического объекта - курицы в том же объёме (соотношении). Было проведено исследование внутренних органов (печени) трупов кур из птицефабрики по производству яйца. Среда с кровью птицы показала себя эффективной для выделения кампилобактерий. Из всех 9-ти проб печени были выделены культуры Campylobacter jejuni.

Также на среде для выделения кампилобактерий при тех же условиях культивирования впервые нами были выделены культуры микроаэрофильно-го стрептококка, относящегося к роду Melissococcus.

2.2.3.2. Выделение кампилобактерий из помёта кур

При использовании вышеизложенной методики с целью выделения кампилобактерий были проведены исследования групповых проб помёта на птицефабриках различного технологического направления. На яичной птицефабрике было происследовано 30 групповых проб помёта от взрослых кур 500-дневного возраста. На бройлерной птицефабрике происследовано 40 групповых проб помёта 5-ти залов одного птичника (по 8 проб из каждого зала) от цыплят 31-дневного возраста.

В результате исследований на яичной птицефабрике от кур 500-дневного возраста из 30 групповых проб помёта было выделено 17 культур кампилобактерий, что составило 57% от общего количества проб. На бройлерной птицефабрике от цыплят 31-дневного возраста из 40 групповых проб помёта кампилобактерий были выделены в 4-х пробах, что составило 10% от общего числа проб.

Также на птицефабрике по производству яйца при исследовании из 30 групповых проб помёта было выделено 22 культуры (73,3%) Melissococcus, относящихся к зоопатогенным микроорганизмам, удельный вес которых составил 5,99%.

Для выявления удельного веса кампилобактерий нами проведено изучение спектра патогенной и условно-патогенной микрофлоры, выделяемой из помёта от птиц. Удельный вес кампилобактерий на фоне микрофлоры, выде-

ляемой из групповых проб помета птиц на птицефабрике по производств) яйца составил 24,6% по производству мяса бройлеров - 4 7°о

Выделение кампилобактерии из гр>пповы\ проб помета подтверждает факт носигельства кампилобактерий у птиц

2.2.3.3 Выделение кампилобактерии со смывов с тушек и воды из ванн охлаждения в убойных цехах птицефабрик

Учитывая, что из трупов и помета кур выделен достаточно широкий спектр патогенной и условно-патогенной микрофлоры, было целесообразно изучить микрофлору выделяемую из смывов с тушек на разных технологических этапах процесса убоя, в том числе и на выходе готовой продукции, и проб воды из ванн охлаждения, так как инфицированность птицы данными микроорганизмами увеличивает риск обсеменения ими тушек кур при убое

Всего было исследовано 52 смыва с тушек и 28 проб воды из ванн охлаждения на двух птицефабриках очной по производству яйца и одной по производству мяса бройлеров

Из смывов с тушек и воды из ванн охлаждения выделены микроорганизмы 9-ти видов (диаграмма 2 2 3 3 1). наибольший удельный вес из которых у Eschenchia coli - 39,4%, Klebsiella pneumoniae - 26,6% Staphylococcus aiuens - 10,6% Также выделены эпидемиологически опасные виды - Salmonella eiitentidis и Camp>lobacter jejuni - по 3,2% каждого

Дивершта 2 2 3 3 1 Спектр микрофлоры, вьдоляемои со смывов с тушек

Salmonella ententidu 3 2 , , Providentia Stuart,.

Campylobacter jejuni 3 2

<3 f '

MellSSOCOCCUS I i' ^y

4 зА В I ЧГ \ Proteus vulgaris УЯ 1 ' \

\ 39 4

Citrobacter freundn / ^Säi^t .. \ Escherichia coli

10 E

Staphylococcus aureus

2ББ

Klebsiella pneumoniae

Из смывов с тушек в }бойном цехе пишефабрике по произволегву яйца из 20-ти проб выделено 39 микроорганизмов 6-ти видов Наибольший процент выделения приходится на Eschenchia coli удельный вес которой составил 43,6%, и Klebsiella pneumoniae - 33 3% Также были выделены культу -ры эпидемиологически опасного вида Campylobacter jejuni - 7,7% Из 20-ти проб воды из ванн охлаждения той же птицефабрики было выделено 16 микроорганизмов 3-х видов наибольший процент из которых приходится на

Klebsiella pneumoniae - 56,25% Также были выделены культуры эпидемиологически опасного вида Salmonella enteritidis -18,75%.

На бройлерной птицефабрике из 40 проб, взятых в убойном цехе на различных этапах технологического процесса убоя и воды из ванны охлаждения выделено 39 культур 6-ти видов микроорганизмов. Наибольший процент выделения приходится на Escherichia coli - 41% и Staphylococcus aureus -25,6%

Наибольший процент - 35,9% - и количество видов (6) микроорганизмов выделено на втором этапе наших исследований - после потрошения. Это, вероятно, связано с тем, что при потрошении микроорганизмы из кишечника птицы (через клоаку или разрывы кишечника при ручном потрошении) попадают на поверхность тушки. После выхода из ванных охлаждения обсеме-ненность тушки несколько снижается (17,9%), и наименьшая обсеменённость на последнем этапе - выходе готовой продукции (10,3%).

Выделение кампилобактерий из смывов с тушек отмечено нами только на одной птицефабрике - по производству яйца. В ваннах охлаждения кампи-лобактерии выделены не были, так как пробы были взяты в начале технологического процесса при охлаждении не более 5% убойных кур.

На второй птицефабрике (по производству мяса бройлеров) кампило-бактерии были выделены только из групповых проб помёта. Ни из смывов с тушек, ни из ванн охлаждения кампилобактерии выделены не были. Вероятно, это связано, с одной стороны, с уровнем ветеринарно-санитарных условий в убойном цехе, с другой стороны, возможно, это обусловлено меньшим наличием кампилобактерий в кишечнике птицы. Об этом свидетельствует количественная разница в выделении кампилобактерий из групповых проб помёта. Если на одной птицефабрике - 57%, то другой - 10%, т.е. в 5,7 раза меньше. На птицефабрике, где кампилобактерии в групповых пробах помета выделены в 57% случаев, возбудитель был выделен и из смывов с тушек.

Выделение условно-патогенной, а также эпидемиологически опасной микрофлоры (сальмонелл и кампилобактерий) при наших исследованиях в ваннах охлаждения и на выходе готовой продукции доказывают существование перекрёстной контаминации доброкачественной продукции в ваннах охлаждения, куда данные микроорганизмы попадают из помёта птиц. Полученные данные указывают на то, что присутствие зоопатогенных микроорганизмов в кишечнике птиц, выделяемых из помёта, увеличивает риск обсеменения ими тушек при убое.

2.2.4 Испытание препаратов неспецифической защиты для снижения инфицированности птицы кишечной микрофлорой

2.2.4.1 Определение чувствительности выделенных культур к энрофлоксацину отечественного производства

С целью поиска препаратов неспецифической защиты, эффективных при бактериальных болезнях птиц, нами была испытана эффективность препарата из группы фторхинолонов - энрофлоксацина отечественного произ-

водства (группа компаний ВПК) в отношении микроорганизмов, выделяемых от птиц.

В работе было использовано 60 культур 9-ти видов микроорганизмов, в том числе Escherichia coli - 22 культуры, Salmonella enteritidis - 6 культур, Citrobacter freundii - 7 культур, Klebsiella pneumoniae - 7 культур, Providencia stuartii - 1 культура, Pseudomonas aeruginosa - 1 культура, Proteus vulgaris - 9 культур, Staphylococcus aureus - 5 культур, Streptococcus zooepidemicus - 2 культуры, выделенных из поражённых органов трупов павших и вынужденно вынужденно убитых птиц, из групповых проб помёта от живых кур, от здоровых кур (смывы с тушек в убойном цехе), а также музейные культуры, хранящиеся в отделе института.

При определении чувствительности к энрофлоксацину методом дисков 13 культур микроорганизмов (25,49%) имели зону задержки от 25 до 35 мм, 19 культур (37,25%) имели зону задержки 18-24 мм. Наибольшая зона задержки выявлена у Klebsiella pneumoniae - 35 мм, 24-26 мм у Streptococcus zooepidemicus и музейных штаммов Escherichia coli и Salmonella enteritidis.

13 культур (25,49%) имели зону задержки 14-16 мм. Это культуры эн-теропатогенной микрофлоры, выделенной в основном из групповых проб помёта цыплят и кур. 6 культур (11,77%) имели зону задержки 11-13 мм. При вычислении % результаты чувствительности протея были исключены.

Средние статистические данные по видам микроорганизмов получены путём математической обработки данных. С этой целью была использована компьютерная программа расчета средних значений - М, среднеквадратичных отклонений ошибок оценки среднего значения - а, доверительного интервала для среднего значения - m и проверки достоверности различия средних значений по критерию Стьюдента (Лакин Г.Ф., 1990).

Методом серийных разведений была определена минимальная подавляющая концентрация антибиотика (МПК) культур Escherichia coli, Salmonella enteritidis и Staphylococcus aureus (музейные штаммы, давшие зоны задержки 26-28 мм при оценке методом дисков) и одна культура Escherichia coli, выделенная из помёта, давшая зону задержки 15 мм.

В работе использовали 10% раствор Энрофлона, было сделано 21 разведение от 5% (10000 у активного вещества) до 0,0 0 0 0 ;(0,0625 у: и в н о -го вещества).

У трёх культур (Escherichia coli, Salmonella enteritidis, Staphylococcus aureus), давших зону задержки 26-28 мм, МПК была в два раза выше и составила 0,00025% (25 гамм).

Следует отметить, что в пробирках, следующих за теми, разведение препарата в которых соответствовало МПК, отмечали рост культуры менее интенсивный, чем в контрольных без добавления энрофлона. При подсчёте колоний из этих пробирок было установлено, что в 1 мл Escherichia coli содержится 17,3x10^ микробных клеток, Salmonella enteritidis ■ 24x105, Staphy-lococcus aureus - 48x104 микробных клеток против микробных

клеток в контроле. Очевидно, что при уменьшении дозы энрофлона ещё имеет место бактериостатический эффект.

Из представленных данных видно, что использование препарата эн-рофлоксацина в птицеводстве перспективно, так как 88,23% штаммов были чувствительны и высокочувствительны и только 11,77% культур - малочувствительны. Исключение представляют только культуры протея. Однако, при применении в птицеводстве препарата в каждом отдельном случае необходимо проверять его чувствительность к исследуемым культурам.

4. ВЫВОДЫ

1. Спектр микрофлоры, выделяемой от разных видов птиц на птицефабриках различного технологического направления достаточно широк, включает в себя 19 видов микроорганизмов. Доминирующими являются Es-cherichia coli, удельный вес которой составляет 41,6%, Staphylococcus aureus -12%, Proteus vulgaris - 11,8%. Также от птиц выделяются и эпидемиологически опасные виды Salmonella enteritidis - 3,7% и Campylobacter jejuni - 2,8%. Видовой состав выделяемой микрофлоры обусловлен эпизоотической ситуацией в каждом отдельном хозяйстве, следствием чего является различное процентное соотношение доминирующих видов.

2. Из 134 мазков из трахеи от клинически здоровых кур в 26,9% случаев выделены микроорганизмы 4-х видов: Pseudomonas aeruginosa, Escherichia coli, Staphylococcus spp, Streptococcus spp. Доминирующим видом является Streptococcus spp., удельный вес которого составляет 66,1%.

- 3. Из помёта клинически здоровых птиц выделено 12 видов микроорганизмов, наибольший удельный вес из которых у Escherichia coli - 40,9%, Proteus vulgaris - 14,99%, Citrobacter freundii - 12,3%. Культуры, выделяемые из помёта в большинстве случаев идентичны культурам, выделяемым из трупов.

4. Культуры, выделяемые от птиц, даже одного и того же вида, имеют различную степень вирулентности: встречаются как вирулентные, так и слабовирулентные и авирулентные штаммы. Вирулентные и слабо вирулентные штаммы как патогенных, так и условно-патогенных микроорганизмов вызывают или гибель цыплят в первые несколько суток, или заболевание, вследствие которого цыплята отстают в росте и развитии.

5. Модифицированная нами методика выделения кампилобактерий с использованием в качестве одного из компонентов крови птицы показала себя эффективной для выделения кампилобактерий из различных объектов: трупов, групповых проб помёта, смывов с тушек, воды из ванн охлаждения.

6. Кампилобактерии вида jejuni циркулируют в птицеводческих хозяйствах как по производству яиц, так и мяса бройлеров. Удельный вес Сатру-lobacter jejuni, выделенных из групповых проб помёта птиц в хозяйстве по производству яйца составил 24,6%, в птицехозяйстве по производству мяса

. бройлеров - 4,7%. Удельный вес Campylobacter jejuni, выделенных из смывов с тушек составил 3,2%. Выделение кампилобактерий из групповых проб помёта подтверждает факт носительства кампилобактерий у птиц. Из внутренних органов (печень) было выделено 9 культур Campylobacter jejuni (100%).

7. Впервые от птиц выделены культуры микроаэрофильного стрептококка, относящегося к роду Melissococcus. Удельный вес Melissococcus, выделенного из групповых проб помета на птицефабрике по производству яйца составил 5,99%, из смывов с тушек в убойном цехе - 7,3%.

8. Со смывов с тушек и воды из ванн охлаждения выделены микроорганизмы 9-ти видов, наибольший удельный вес из которых у Escherichia coli -39,4%, Klebsiella pneumoniae - 26,6%, Staphylococcus aureus - 10,6%. Также выделены эпидемиологически опасные виды - Salmonella ententidis и Campylobacter jejuni - то 3,2% каждого. Выделение условно-патогенной, а также эпидемиологически опасной микрофлоры (сальмонелл и кампилобактерий) в ваннах охлаждения и смывах с тушек доказывают существование перекрёстной контаминации доброкачественной продукции в ваннах охлаждения, куда данные микроорганизмы попадают из помета птиц.

9. Доминирующая в хозяйстве микрофлора (Escherichia coli, Staphylococcus aureus, Proteus vulgaris, Pseudomonas aeruginosa и др) выделяется из всех исследованных нами объектов (трупы, помёт, смывы с тушек).

10. Перспективно использование в птицеводстве при бактериальных болезнях птиц препарата энрофлоксацина отечественного производства. При исследовании чувствительности микроорганизмов, выделенных от птиц, к энрофлоксацину 88,23% штаммов были чувствительны и высокочувствительны, и лишь 11,77% культур - малочувствительны.

5. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ.

1. Для оценки эпизоотической ситуации в отношении бактериальных болезней птиц можно рекомендовать исследования мазков из трахеи и групповых проб свежего как эффективные и безопасные прижизненные методы контроля эпидемиологически опасных и условно-патогенных микроорганизмов, выделяемых от птиц, что дает возможность выбора средств для нормализации микробиологического статуса кишечника и профилактики заболеваний бактериальной этиологии.

2. Для контроля бактериальных болезней птиц проводить исследования не только на факультативные анаэробы, но и на микроаэрофилы. При выделении микроорганизмов семейства Enterobacteriaceae проводить идентификацию не только до рода, но и до вида.

3. Для контроля за кампилобактериозом проводить исследование не только групповых проб помета, но и смывов с тушек и воды из ванн охлаждения.

4. Для снижения бактериальной инфицированности птицы эффективно использовать препарат отечественного производства энрофлоксацин.

5. Разработанные «Методические рекомендации по выделению кампи-лобактерий и другой кишечной микрофлоры из помета птиц» могут быть использованы в работе врачами-бактериологами лабораторий птицефабрик и бактериологических отделов ветеринарных лабораторий

в

6 Материалы, изложенные в диссертации могут быть использованы в учебном процессе на курсах повышения квалификации ветеринарных врачей Всероссийского научно-исследовательского ветеринарного института птицеводства.

СПИСОК РАБОТ, ОПУБЛИКОВАННЫХ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ

1. Борисенкова А Н., Рождественская Т.Н., Новикова О.Б. О выделении кампилобактерий от кур // Международная конференция-выставка «Птицеводство: мировой и отечественный опыт». - Москва, Россия, 28-31 января 2002.-С. 19.

2. Новикова О.Б Методика выделения кампилобактерий из помёта кур // Материалы 54-й научно-практической конференции профессорско-преподавательского состава, научных сотрудников и аспирантов СПбГАВМ. - Санкт-Петербург, 2002. - С. 66-68.

3. Новикова О.Б., Хорева Е.В., Головещенко Л.В. Изучение микрофлоры цыплят раннего возраста // Тезисы докладов Всероссийской конференции молодых учёных и аспирантов по птицеводству. - Сергиев Посад, 2002. - С. 32-33.

4. Новикова О.Б. Выделение микроаэрофильной микрофлоры из кишечника кур // Тезисы докладов Всероссийской конференции молодых учёных и аспирантов по птицеводству. - Сергиев Посад, 2002. - С. 33-35/

5. Борисенкова А.Н., Рождественская Т.Н., Новикова О.Б., Елисеева Е.Н Определение активности энрофлона при бактериальных болезнях птиц // Журнал «Ветеринария». - 2002. -№ 6. - С. 15-17.

6. Борисенкова А.Н., Рождественская Т.Н., Новикова О.Б. О кампило-бактериозе кур // Конференция по птицеводству, Материалы национального комитета по сотрудничеству птицеводов России с Всемирной научной ассоциацией по птицеводству. - Зеленоград, 2003. - С 202-203.

7. Борисенкова А.Н., Коровин Р.Н., Рождественская Т.Н., Новикова О.Б., Чавгун В.А., Головещенко К.А. Спектр микрофлоры, выделяемой от птиц, в хозяйствах различного технологического направления // Журнал «Ра-цВетИнформ». - 2003. - № 9. - С. 3-6

8. Новикова О.Б. Сравнительная характеристика микрофлоры, выделяемой из помёта кур, ванн охлаждения и смывов с тушек // Тезисы докладов второй международной межвузовской научно-практической конференцию аспирантов и соискателей «Предпосылки и эксперимент в науке». - Санкт-Петербург. - 2004.- С. 90-91.

9. Борисенкова А.Н., Рождественская Т.Н., Новикова О.Б. Бактериальные болезни птиц, вызываемые зоопатогенными и эпидемиологиески опасными микроорганизмами // Материалы Всероссийского ветеринарного конгресса. - Москва, 2004. - С. 34-37.

Отпечатано в ООО «АкадемПринт». С-Пб. ул. Миллионная, 19 Тел.: 315-11-41. Подписано в печать 26.05.04. Тираж 100 экз.

»1 24 5 4

 
 

Оглавление диссертации Новикова, Оксана Борисовна :: 2004 :: Санкт-Петербург

ВВЕДЕНИЕ.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1. Спектр условно-патогенной и эпидемиологически опасной микрофлоры, выделяемой от птиц.

1.2. Определение вирулентных свойств.

1.3. Кампилобактериоз птиц.

1.3.1. Эпидемиологические, эпизоотологические и экологические аспекты кампилобактериоза.

1.3.2. Характеристика кампилобактерий.

1.3.3. Патогенез, клиника, диагностика, лечение и профилактика кампилобактериоза.

1.4. Эпидемиологическая опасность продукции птицеводства 1.5. Энрофлоксацин.

2. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ.

2.1. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ.

2.1.1. Методики выделения и идентификации микроорганизмов, выделяемых от птиц.

2.1.2. Схемы идентификации основных видов энтеробактерий.

2.1.3. Определение вирулентных свойств культур различных видов микроорганизмов, выделенных из помёта и трупов птиц.

2.1.4. Определение чувствительности к энрофлоксацину культур различных видов микроорганизмов, выделенных от птиц.

2.2. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ.

2.2.1. Спектр микрофлоры, выделяемой от птиц в хозяйствах различного технологического направления.

2.2.1.1. Микрофлора, выделяемая из трупов птиц.

2.2.1.2. Микрофлора, выделяемая из мазков с трахеи.

2.2.1.3. Микрофлора, выделяемая из помёта птиц.

2.2.2. Изучение вирулентных свойств культур микроорганизмов, выделенных из помёта и трупов птиц.

2.2.3. Выделение кампилобактерий из различных объектов.

9 2.2.3.1. Освоение и модификация методики выделения кампилобактерий.

2.2.3.2. Выделение кампилобактерий из помёта кур.

2.2.3.3. Выделение кампилобактерий со смывов с тушек и воды из ванн охлаждения в убойных цехах птицефабрик.

2.2.4. Испытание препаратов неспецифической защиты для снижения инфицированности птицы кишечной микрофлорой.

2.2.4.1. Определение чувствительности выделенных культур к энрофлоксацину отечественного производства.

3. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЙ.

4. ВЫВОДЫ.

5. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ.

 
 

Введение диссертации по теме "Ветеринарная эпизоотология, микология с микотоксикологией и иммунология", Новикова, Оксана Борисовна, автореферат

Актуальность темы. Птицеводство - наиболее наукоёмкая и динамичная отрасль мирового и отечественного сельского хозяйства. За последние 20 лет среднегодовой прирост яиц в мире составил 4,4%, а мяса птицы - 5,2%. По расчётам специалистов в 2022 году по удельному весу мясо птицы будет занимать первое место среди всех видов животных (Фисинин В.И., 2004). В условиях экономической реформы, в агроценозах повышается риск возникновения и распространения инфекционных, и, в частности, бактериальных болезней птиц (Слизнёва И.В., 1996). Наличие их в хозяйстве негативно сказывается не только на эпизоотической ситуации, но и на экономике предприятия. Возбудители бактериальных болезней в отдельности или в ассоциации оказывают существенное влияние на падёж птицы при остром или подостром течении заболевания (пастереллёз, колибактериоз, стафилококкоз и другие). При хронических, вялотекущих болезнях бактериальной этиологии отмечают неравномерный или низкий прирост массы бройлеров, повышенную чувствительность птицы к стрессам, снижение яйценоскости и выводимости цыплят, ухудшение биологических качеств эмбрионов, низкую конверсию корма, снижение поствакцинального противовирусного иммунитета (Борисенкова А.Н., 2001).

Распространение во внешней среде условно-патогенной микрофлоры создаёт предпосылки для её циркуляции и рециркуляции в организме птиц. Широкое применение в производстве антибиотиков и дезосредств способствуют снижению вирулентности микроорганизмов, их ассоциативному воздействию на организм птицы (Борисенкова А.Н. с соавт., 2003).

Бактериальные болезни птиц следует рассматривать в двух аспектах - с позиции опасности для сельскохозяйственной птицы, т.е. в аспекте противо-эпизоотической защиты и предотвращения экономических потерь как основного показателя эффективности птицеводства, и с позиции возможности заболевания людей, т.е. в аспекте противоэпидемиологической защиты, защиты здоровья людей. Имеется достаточно широкий спектр микроорганизмов, персистирующих в организме кур в основном в кишечнике, не вызывающих клинического заболевания их, но эпидемиологически опасных. Птицы могут быть носителями многих зоопатогенных микроорганизмов, таких как Escherichia coli, Citrobacter freundii, Pseudomonas aeruginosa, Staphylococcus aureus. Особое внимание должно быть обращено на то, что сельскохозяйственные птицы могут являться носителями эпидемиологически опасной кишечной микрофлоры, ведущими. представителями которой являются Salmonella enteritidis и Campylobacter jejuni. При нарушении санитарных правил получения птицеводческой продукции происходит контаминация её, что может в конечном итоге привести к заболеванию людей, и особенно детей (Максимова З.Н., 1987; Козак С.С., Гусев А.А., Лищук А.П., Берлова Г.А., 1992; Борисенкова А.Н., 1995; Waldroup A.I., 1996; Кафтырева Л.А., 1999 и др.). Одним из таких заболеваний является кампилобактериоз.

Возбудитель кампилобактериоза является комменсалом желудочно-кишечного тракта птиц. Это определяет бессимптомное течение инфекции и возможность реализации населению контаминированной птицеводческой продукции кур без ограничения, что способствует распространению кампилобактериоза. Эпидемиологическая опасность мяса возрастает в связи с тем, что даже незначительная его контаминация кампилобактериями (4 К.О.Е. на 1 г мяса) может быть опасной для человека (Черкасский Б.Л., Минаев В.И., 1993).

В этой связи изучение спектра микроорганизмов, выделяемых от разных видов и кроссов сельскохозяйственной птицы в хозяйствах различного технологического направления, усовершенствование методов контроля и профилактики бактериальной инфицированности птиц является объективной необходимостью.

Цель работы. Целью настоящих исследований явилось изучение спектра микрофлоры, выделяемой от разных видов птиц на птицефабриках различного технологического направления и усовершенствование методов контроля эпидемиологически опасных и условно-патогенных микроорганизмов - возбудителей бактериальных болезней.

Для реализации цели были поставлены следующие задачи:

- выделить, идентифицировать и выявить доминирующие виды микроорганизмов от птиц разных видов и возрастов на птицефабриках различного технологического направления и изучить их вирулентные свойства;

- освоить и модифицировать методы лабораторной диагностики кампи-лобактериоза птиц, изучить уровень инфицированности кур кампил о бактериями на различных птицефабриках и определить удельный вес кампилобак-терий в спектре микрофлоры, выделяемой с помётом птиц;

- изучить микрофлору, выделяемую в смывах с тушек кур и ванн охлаждения на различных технологических этапах процесса убоя;

- определить эффективность препарата энрофлоксацина отечественного производства в отношении микроорганизмов, выделяемых о птиц;

- усовершенствовать методы контроля эпидемиологически опасных и условно-патогенных микроорганизмов, выделяемых от птиц.

Научная новизна. Изучен спектр эпидемиологически опасной и условно-патогенной микрофлоры, выделяемой кур яичных и бройлерных пород, индеек, гусей. Из различных объектов выделены микроорганизмы 19-ти видов. Впервые от птиц выделены культуры микроаэрофильного стрептококка, относящегося к роду Melissococcus. Установлена идентичность микрофлоры, выделяемой из трупов цыплят и кур и групповых проб помёта.

Предложена ускоренная схема идентификации энтеробактерий, выделяемых от птиц.

Изучены вирулентные свойства 46 микроорганизмов 8-ми видов, выделенных из помёта и трупов птиц на модели интраорбитального заражения цыплят первых дней жизни и на модели внутривенного заражения цыплят и кур. Впервые получены данные по вирулентности культур Citrobacter freundii.

Модифицирована методика выделения кампилобактерий из помёта птиц, внутренних органов, смывов с тушек и ванн охлаждения. Впервые в качестве компонента среды для выделения кампилобактерий использована кровь нового биологического объекта — птицы.

Впервые выявлен удельный вес кампилобактерий на фоне микрофлоры, выделяемой из помёта кур.

Проведены бактериологические исследования смывов с тушек кур на различных технологических этапах процесса убоя и проб воды из ванн охлаждения, установлена идентичность микрофлоры, выделяемой из групповых проб помёта птиц и в убойном цехе птицефабрики.

Для снижения бактериальной инфицированности птиц эпидемиологически опасной и условно-патогенной микрофлорой показана эффективность препарата отечественного производства из группы энрофлоксацинов.

Предложен прижизненный метод контроля инфицированности птиц бактериальной микрофлорой с использованием исследований мазков из трахеи и групповых проб помёта.

Практическая значимость. Предложенные методы исследования мазков из трахеи и групповых проб помёта можно рекомендовать как эффективные прижизненные способы контроля птицы на наличие патогенных и опасных для человека микроорганизмов, что позволяет выработать дальнейшую стратегию проведения оптимальных мероприятий при выращивании и убое птицы с целью снижения контаминации тушек на выходе готовой продукции. Разработанные «Методические рекомендации по выделению кампилобактерий и другой кишечной микрофлоры из помёта птиц» могут быть использованы в работе врачами-бактериологами лабораторий птицефабрик и бактериологических отделов ветеринарных лабораторий.

Основные положения, выносимые на защиту:

- спектр микрофлоры, выделяемой от птиц разных видов и возрастов в птицехозяйствах различного технологического направления;

- прижизненный метод контроля инфицированности птиц бактериальной микрофлорой с использованием исследований мазков из трахеи и групповых проб помёта;

- модифицированный метод выделения кампилобактерий и уровень инфицированности ими птиц.

Апробация работы. Основные положения и результаты исследований заслушаны на заседаниях Методических Советов отделов микробиологии и паразитологии ВНИВИП (2000-2004 гг.); Учёных Советов ВНИВИП (20002004); на Городской научно-практической конференции эпидемиологов, микробиологов, педиатров, санитарных и ветеринарных врачей «Проблема диагностики кампилобактериоза, проявления эпидемического и эпизоотического процессов, профилактика» (Санкт-Петербург, 2001 г.); на Международной конференции-выставке «Птицеводство: мировой и отечественный опыт» (Зеленоград, 2002 г.); на Научной конференции профессорско-преподавательского состава, научных сотрудников и аспирантов СПбГАВМ (Санкт-Петербург, 2002 г.); на X и XII Московских Международных ветеринарных конгрессах (Москва, 2002, 2004 гг.); на Всероссийской конференции молодых учёных и аспирантов по птицеводству (Сергиев Посад, 2002 г.); на Конференции национального комитета по сотрудничеству птицеводов России с Всемирной научной ассоциацией по птицеводству (Зеленоград, 2003 г.); на IV Украинской конференции по птицеводству с международным участием «Птицеводство» (Алушта, 2003 г.); на второй международной межвузовской научно-практической конференции аспирантов и соискателей «Предпосылки и эксперимент в науке» (Санкт-Петербург, 2004 г.); на Международной научно-практической конференции «Ветеринарная медицина 2004: современные аспекты разработки, маркетинга и производства ветеринарных препаратов» (Феодосия ,2004 г.); на курсах повышения квалификации ветеринарных врачей во ВНИВИП (2000-2004 гг.), региональном семинаре (Екатеринбург, 2003 г.), в Центральной научно-методической ветеринарной лаборатории (Москва-Косино, 2004 г.) и на координационных совещаниях специалистов птицеводства во ВНИВИП (2000-2004 гг.).

Публикация результатов исследований. По теме диссертации опубликовано 9 научных работ, 1 сдана в печать.

Структура и объём работы. Диссертация изложена в одном томе на 168 страницах компьютерного текста и состоит из введения, обзора литературы, собственных исследований, обсуждения полученных результатов, выводов, практических рекомендаций, библиографического списка использованной литературы, приложения. Работа иллюстрирована 12 таблицами, 5 диаграммами, 4 гистограммами, 4 фотографиями, 5 рисунками и 1 графиком, Список использованной литературы включает 211 источник, в том числе 79 иностранных авторов.

 
 

Заключение диссертационного исследования на тему "Усовершенствование методов контроля эпидемиологически опасных и условно-патогенных микроорганизмов, выделяемых от птиц"

4. ВЫВОДЫ

1. Спектр микрофлоры, выделяемой от разных видов птиц на птице- «V/ фабриках различного технологического направления достаточно широк, включает в себя 19 видов микроорганизмов. Доминирующими являются Escherichia coli, удельный вес которой составляет 41,6%, Staphylococcus aureus -12%, Proteus vulgaris - 11,8%. Также от птиц выделяются и эпидемиологически опасные виды Salmonella enteritidis - 3,7% и Campylobacter jejuni - 2,8%. Видовой состав выделяемой микрофлоры обусловлен эпизоотической ситуацией в каждом отдельном хозяйстве, следствием чего является различное процентное соотношение доминирующих видов.

2. Из 134 мазков из трахеи от клинически здоровых кур в 26,9% случаев выделены микроорганизмы 4-х видов: Pseudomonas aeruginosa, Escherichia coli, Staphylococcus spp., Streptococcus spp. Доминирующим видом является Streptococcus spp., удельный вес которого составляет 66,1%.

3. Из помёта клинически здоровых птиц выделено 12 видов микроорга- ^J низмов, наибольший удельный вес из которых у Escherichia coli - 40,9%, Proteus vulgaris - 14,99%, Citrobacter freundii - 12,3%. Культуры, выделяемые из помёта в большинстве случаев идентичны культурам, выделяемым из трупов.

4. Культуры, выделяемые от птиц, даже одного и того же вида, имеют различную степень вирулентности: встречаются как вирулентные, так и слабовирулентные и авирулентные штаммы. Вирулентные и слабовирулентные штаммы как патогенных, так и условно-патогенных микроорганизмов вызывают или гибель цыплят в первые несколько суток, или заболевание, вследствие которого цыплята отстают в росте и развитии.

5. Модифицированная нами методика выделения кампилобактерий с использованием в качестве одного из компонентов крови птицы показала себя эффективной для выделения кампилобактерий из различных объектов: трупов, групповых проб помёта, смывов с тушек, воды из ванн охлаждения.

6. Кампилобактерии вида jejuni циркулируют в птицеводческих хозяйствах как по производству яиц, так и мяса бройлеров. Удельный вес Campylobacter jejuni, выделенных из групповых проб помёта птиц в хозяйстве по производству яйца составил 24,6%, в птицехозяйстве по производству мяса бройлеров - 4,7%. Удельные вес Campylobacter jejuni, выделенных из смывов с тушек составил 3,2%. Выделение кампилобактерий из групповых проб помёта подтверждает факт носительства кампилобактерий у птиц. Из внутренних органов (печень) было выделено 9 культур Campylobacter jejuni (100%).

7. Впервые от птиц выделены культуры микроаэрофильного стрептококка, относящегося к роду Melissococcus. Удельный вес Melissococcus, выделенных из групповых проб помёта на птицефабрике по производству яйца составил 5,99%, из смывов с тушек в убойном цехе - 7,3%.

8. Со смывов с тушек и воды из ванн охлаждения выделены микроорганизмы 9-ти видов, наибольший удельный вес из которых у Escherichia coli -39,4%, Klebsiella pneumoniae - 26,6%, Staphylococcus aureus - 10,6%. Также выделены эпидемиологически опасные виды - Salmonella enteritidis и Campylobacter jejuni - по 3,2% каждого. Выделение условно-патогенной, а также эпидемиологически опасной микрофлоры (сальмонелл и кампилобактерий) в ваннах охлаждения и смывах с тушек доказывают существование перекрёстной контаминации доброкачественной продукции в ваннах охлаждения, куда данные микроорганизмы попадают из помёта птиц.

9. Доминирующая в хозяйстве микрофлора (Escherichia coli, Staphylococcus aureus, Proteus vulgaris, Pseudomonas aeruginosa и др) выделяется из всех исследованных нами объектов (трупы, помёт, смывы с тушек).

10. Перспективно использование в птицеводстве при бактериальных болезнях птиц препарата энрофлоксацина отечественного производства. При исследовании чувствительности микроорганизмов, выделенных от птиц, к энрофлоксацину 88,23% штаммов были чувствительны и высокочувствительны, и лишь 11,77% культур - малочувствительны.

5. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

1. Для оценки эпизоотической ситуации в отношении бактериальных болезней птиц можно рекомендовать исследования мазков из трахеи и групповых проб свежего как эффективные и безопасные прижизненные методы контроля эпидемиологически опасных и условно-патогенных микроорганизмов, выделяемых от птиц, что даёт возможность выбора средств для нормализации микробиологического статуса кишечника и профилактики заболеваний бактериальной этиологии.

2. Для контроля бактериальных болезней птиц проводить исследования не только на факультативные анаэробы, но и на микроаэрофилы. При выделении микроорганизмов семейства Enterobacteriaceae проводить идентификацию не только до рода, но и до вида.

3. Для контроля за кампилобактериозом проводить исследование не только групповых проб помёта, но и смывов с тушек и воды из ванн охлаждения.

4. Для снижения бактериальной инфицированности птицы эффективно использовать препарат отечественного производства энрофлоксацин.

5. Разработанные «Методические рекомендации по выделению кампилобактерий и другой кишечной микрофлоры из помёта птиц» могут быть использованы в работе врачами-бактериологами лабораторий птицефабрик и бактериологических отделов ветеринарных лабораторий

6. Материалы, изложенные в диссертации могут быть использованы в учебном процессе на курсах повышения квалификации ветеринарных врачей Всероссийского научно-исследовательского ветеринарного института птицеводства.

 
 

Список использованной литературы по ветеринарии, диссертация 2004 года, Новикова, Оксана Борисовна

1. Айткен И.Д., Александер Д.Дж. и др.; под ред. В.П.Карпова. Болезни птицы. М., Агропромиздат, 1985. - 352 с.

2. Алабугина Т.В. Ветеринарно-санитарная экспертиза тушек птиц и органов птицы при кампилобактериозе: Автореф. дис. канд. вет. наук. М., 1998.

3. Аронов В.И. Роль различных видов сальмонелл в патологии птиц: Дисс. канд вет. наук. СПб., 1999.

4. Байдевлятов А.Б., Бессарабов Б.Ф. и др. Справочник по болезням сельскохозяйственной птицы. Киев: Урожай, 1992.

5. Бакулов И. А., Ведерников В.А., Семенихин A.JI. Эпизоотология с микробиологией. М.: Колос, 1997. - 480 с.

6. Белик В.В. Этиологическая роль подвидов Campylobacter в патологии животных и человека // Мат. Всесоюзной конф. Львов, 1988. - С. 415416.

7. Белик В.В., Киселеёва М.К., Огородникова Т.Н., Горовенко Г.В. Чувствительность кампилобактерий к некоторым антибиотикам // Сб. науч. тр. JIBH: Профилактика и ликвидация заразных болезней сельскохозяйственных животных. JI., 1985, вып. 84. - С. 10-12.

8. Бикорюков А.А. Характеристика микрофлоры, выделенной от больной и павшей птицы в условиях бройлерной птицефабрики // Сб. науч. тр. СпбВИ: Морфология, физиология и патология у животных. СПб, 1993. -№120,ч.2.-С. 21-25.

9. Блохина И.Н., Соколова К.Я., Леванова Г.Ф. Новое в классификации и идентификации энтеробактерий // ЖМЭИ. 1992. - № 1. - С. 49-52.

10. Бовкун Г.Ф. Роль клебсиелл в патологии животных // Ветеринария. 1986.-№ 8.-С. 70-71.

11. Бовкун Г.Ф. Роль микрофлоры при заболеваниях пищеварительного тракта у цыплят // Ветеринария. 2004. - №4. - С. 14-16/

12. Бовкун Г.Ф., Борисенкова А.Н. Биологические свойства синегнойной палочки и её роль в патологии птицы // Ветеринария. 1995. - № 2. - С. 30-31.

13. Бойцов А.Г. Гигиенические и микробиологические аспекты проблемы экологии возбудителей кишечных зоонозов: Автореф. дисс. докт. мед. наук. Л., 1991.

14. Борисенкова А.Н., Гинзбург В.В. Определение патогенных и вирулентных свойств стафилококков, выделенных от птиц // Сб. «Агроинформ». -М., 1974.

15. Борисенкова А.Н. Определение патогенных свойств P.multocida на модели цыплят первых дней жизни. XIY конгресс по птицеводству. Бразилия, Рио-де-Жанейро, 1978.

16. Борисенкова А.Н., Рождественская Т.Н., Лебедева А.И., Гаврилова B.C., Николаев С.В. Рекомендации по диагностике, профилактике и мерам борьбы с пастереллёзом птиц. Л., 1986. - 24 с.

17. Борисенкова А.Н., Бовкун Г.Ф., Рождественская Т.Н. Лабораторная диагностика псевдомоноза птиц // Сб. научн. тр. ВНИВИП: Основы профилактики болезней сельскохозяйственных птиц. Л., 1989. - С. 27-32.

18. Борисенкова А.Н., Гаврилова B.C., Рождественская Т.Н., Поно-марчук Н.Г. Комплексные рекомендации по профилактике пневмоний индеек бактериальной этиологии. Д., 1991. - 16 с.

19. Борисенкова А.Н. Проблема бактериальных болезней в промышленном птицеводстве, основные принципы профилактики: Тез. докл. научно-практ. семинара вет. спец. птицевод, хозяйств и спец. вет. лабораторий. Ломоносов, 1995. - С. 33.

20. Борисенкова А.Н., Рождественская Т.Н., Чавгун В.А. Некоторые аспекты синегнойной инфекции в птицехозяйствах промышленного типа // Мат. Межд. симпозиума: Современная диагностика болезней птиц. Днепропетровск, 1997, 21-24 июля. С. 28-30.

21. Борисенкова А.Н. Проблемы бактериальных болезней птиц в промышленном птицеводстве // Юбилейный сборник РАСХН, посвященный 190-летию ветеринарного образования в России и 100-летию ветеринарной науки.-М., 1998.

22. Борисенкова А.Н. Проблема сальмонеллёзов в промышленном птицеводстве // Сальмонеллёз птиц (современная научная концепция этиологии, диагностики и профилактики в промышленном птицеводстве). Санкт-Петербург-Ломоносов, 2000. -С. 10-17.

23. Борисенкова А.Н. Система контроля бактериальных болезней птиц основа эпизоотического благополучия птицехозяйств // Совершенствование методов профилактики болезней птиц: Мат. научно-практ. конф. - Новосибирск, 2001. - С. 46-49.

24. Борисенкова А.Н., Рождественская Т.Н., Новикова О.Б. О выделении кампилобактерий от кур // Международная конференция-выставка «Птицеводство мировой и отечественный опыт». - 28-31 января 2002, Москва, Зеленоград - С. 19-20.

25. Борисенкова А.Н., Рождественская Т.Н., Новикова О.Б., Елисеева Е.Н. Определение эффективности «Энрофлона» (фирма ВИК) в отношении болезней возбудителей заболеваний птицы // Ветеринария, 2002. - № 6. - С. 15-17.

26. Борисенкова А.Н., Р.Н.Коровин, Т.Н.Рождественская, О.Б.Новикова, В.А.Чавгун, К.А.Головещенко. Спектр микрофлоры, выделяемой от птиц, в хозяйствах различного технологического направления // РацВетИнформ. -2003.-№10.-С. 3-6

27. Борисенкова А.Н. Кампилобактериоз птиц // ВетИнформ. 2003.11.

28. Борисенкова А.Н., Рождественская Т.Н., Новикова О.Б. Бактериальные болезни птиц, вызываемые зоопатогенными и эпидемиологиески опасными микроорганизмами // Материалы Всроссийского ветеринарно конгресса. Москва, 2004 г., стр. 34-37.

29. Булатов А.С. Биологические особенности сальмонелл, выделенных с объектов внешней среды птицефабрик и пути снижения её контаминации: Автореф. дисс. канд. вет. наук. М., 1999. - 20 с.

30. Буросеф Абдаллах. Биологические свойства энтеробактерий, выделенных от кур в Алжире: дисс. канд. веет. наук. М. 1993. - 115 с.

31. Витебский Э.Л., Ревво А.В., Трефилов А.А. Справочник по импортным ветеринарным препаратам. М.: Колос, 1998. - 272 с.

32. Воронин Е.С., Кисленко В.Н., Колычев Н.М., Плешакова В.И. Электронный дидактический комплекс: Ветеринарная микробиология и иммунология, Новосибирский ветеринарный институт. 2002.

33. Голиков А.В. Вибриоз животных и птицы. М.: Россельхозиздат, 1978.- 112 с.

34. Голиков А.В., Зенин И.В., Пыхтарёва Е.И. Эпизоотическая и эпидемиологическая роль кампилобактерий // Бюллетень ВИЭВ. Москва, 1989, вып. 71.-С. 78-81.

35. Гросскнаус Д. Кампилобактериоз специальные меры профилактики и борьбы // Бюллетень ВИЭВ. - М., 1984, вып. 56. - С. 28-33.

36. Гусев А.А. и др. Профилактика сальмонеллёзов и снижение микробной обсеменённости на тушках птиц // Ветеринария, 1997. № 10. - С. 5253.

37. Гусев В., Мустафин И., Светоч Э. Кампилобактериозная инфекция бройлеров // Птицеводство. 1999. - №3. - С. 18-20.

38. Ежов В.И., Грошева Г.А., Минаев И.М. Действие антибактериальных препаратов на возбудителя колисептицемии птиц // Ветеринария. 1970. -№12.-С. 33.

39. Жакинбаева Б.Т. Микробиологическая характеристика и санитарно-эпидемиологические особенности кампилобактериозов на промышленных птицекомплекса: Автореф. дис. канд. мед. наук. Алма-Ата, 1992. - 18 с.

40. Житенко П.В., Серёгин И.Г., Никитченко В.Е. Ветеринарно-санитарная экспертиза и технология переработки птицы. М.: Аквариум. -2001.

41. Иванов В.П., Бойцов А.Г., А.А.Порин. Кампилобактеры и кампило-бактериозы. СПб, 1995. - 44 с.

42. Инструкция по клинической и лабораторной диагностике кампилобактериоза. Москва, 1989. - 40 с.

43. Каравайчик A.JI. Кампилобактериоз собак в Санкт-Петербурге: Дисс. канд. вет. наук. СПб. - 2002.

44. Кафтырева J1.A. Микробиологические особенности эпидемиологического надзора за сальмонеллёзом в современных условиях: Автореф. дисс. докт. мед. наук. СПб, 1999. - 49 с.

45. Кирик Д.Л., Шабловская Е.А., Васильченко А.А., Кролевецкая И.Н., Ралко Н.И., Кикоть В.И. Особенности эпидемиологии кампилобакте-риоза в современных условиях // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 1995. - № 5. С. - 60-63.

46. Кирьянов Е.А. Кампилобактериоз животных. Лекция, Приморский сельскохозяйственный институт. Уссурийск, 1992. - 23 с.

47. Киселёва М.К., Смирнова Т.И., Щербатых И.П. Роль дикой и домашней птицы в распространении C.jejuni. // Сб. науч. тр. ЛВИ: Инфекционные болезни сельскохозяйственных животных и птиц. Л., 1987, вып. 90. - С. 49-50.

48. Кожевников Г.М. Кампилобактериоз // Мед. реф. журнал. 1984, разд. 3.-№3.-С. 36-40.

49. Козак С.С. Обеззараживание поверхности тушек кур от сальмонелл в ваннах охлаждения: Автореф. дис. нанд. вет. наук. М., 1992.

50. Козак С.С., Гусев А.А., Чурукба Т. Микробная обсеменённость тушек // Птицеводство. 1992. - № 2. - С.23-25.

51. Козак С.С., Гусев А.А., Лищук А.П., Берлова Г.А. Профилактика сальмонеллёза в птицеперерабатывающей промышленности. Москва. -1992.

52. Козак С.С. Борьба с сальмонеллёзом на перерабатывающих предприятиях // Птицеводство. 2001. - № 6. - С. 31-32.

53. Коровин Р.Н., Зеленский В.П., Трошева В.А. Лабораторная диагностика болезней птиц. М.: Агропромиздат. - 1989. - 256 с.

54. Коромыслов Г.Ф., Михайлов Н.Н., Лучко М.А., Голиков А.В. Кампилобактериоз сельскохозяйственных животных // Бюллетень ВИЭВ. М. 1984,вып. 56.-С. 13-18.

55. Коротеева Л.А. Питательные среды для культивирования кампилобактерий // Бюллетень ВИЭВ. М., 1983, том 49. - С. 90-91.

56. Кузьмин В.А., Урбан В.П., Бойцов А.Г. с соавт. Кампилобактериоз-ная инфекция в Северо-Западной зоне РСФСР // Сб. науч. тр. ЛВИ: Инфекционные болезни сельскохозяйственных животных и птиц. Л., 1988. - С. 35-37.

57. Куликовский А.В. Оценка безопасности пищевых продуктов в США // Ветеринария. 1996. - № 1. - С.58-59.

58. Куликовский А.В. Кампилобактериоз: пищевая зоонозная инфекция // Ветеринарная газета. 1997. - № 14. - С. 2-3.

59. Лабинская А.С. Микробиология с техников микробиологических исследований. М.: Медицина. - 1972.

60. Лабораторная диагностика сальмонеллёзов человека и животных. Обнаружение сальмонелл в кормах, продуктах питания и объектах внешней среды. Черкасский Б.Л., Рожнова С.Ш., Тендетник Ю.Я. Методические указания. М.: Агропромиздат. - 1990.

61. Лакин Г.Ф. Биометрия: учебное пособие для биол. спец. ВУЗов. -М.: Высшая школа. 1990. - 352 с.

62. Максимова З.Н. Пути распространения сальмонелл в условиях птицефабрик и ветеринарно-санитарная оценка выпускаемой пищевой продукции по сальмонеллёзу: Автореф. дис. канд. вет. наук. 1987. - 17 с.

63. Матвеева З.Н. Выделение, культивирование и идентификация кам-пилобактер еюни: Автореф. дис. канд. мед. наук. Л., 1989. - 21 с.

64. Методика бактериологической диагностики кампилобактериоза животных. Санкт-Петербург, 2000. - 20 с.

65. Методические рекомендации по лабораторной диагностике кампилобактериоза. Алма-Ата, МЗ КазССР. - 1990. - 17 с.

66. Методические указания. Лабораторная диагностика сальмонеллёзов человека и животных, обнаружение сальмонелл в кормах, продуктах питания и объектах внешней среды. М.: МЗ СССР, 1990.

67. Методические указания по бактериологической диагностике заболеваний, вызываемых энтеробактериями. М.: Минздрав. - 1984.

68. Методические указания по бактериологической диагностике ко-либактериоза (эшерихиоза) животных. Утверждены ГУЗ МСХ продовольствия СССР.- 1991.-25 с.

69. Методические указания по бактериологической диагностике саль-монеллёза. Утверждены ГУЗ МСХ продовольствия СССР. 1990.

70. Методические указания по бактериологической диагностике стафи-лококкоза. Утверждены ГУЗ МСХ продовольствия СССР. 1997.

71. Методические указания по бактериологической диагностике стреп-тококкоза. Утверждены ГУЗ МСХ продовольствия СССР. 1990.

72. Минаев В.И. Эпидемиология кампилобактериоза и биологические свойства его возбудителей: Автореф. дис. докт. мед. наук. М., 1993.

73. Минаев В.И., Черкасский Б.Л., Минаева Н.З. с соавт. Лабораторная диагностика кампилобактериоза в современных условиях // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунологии. 1991. - № 8. - С. 18-21.

74. Мишурнова Н.В., Киржаев Ф.С. Представление о нормальной микрофлоре пищеварительного тракта. Ветеринария. 1993. №6. С. 30-33.

75. Новикова О.Б. Методика выделения кампилобактерий из помёта кур // Мат. 54-й научно-практ. конф. профессорско-преподавательского состава, научных сотрудников и аспирантов СПбГАВМ. СПб, 2002. - стр. 6668.

76. Новикова О.Б., Хорева Е.В., Головещенко Л.В. Изучение микрофлоры цыплят раннего возраста // Тез. докл. всерос. конф. молодых учёных и аспирантов по птицеводству. Сергиев Посад, 2002. - С. 32-33.

77. Новикова О.Б. Выделение микроаэрофильной микрофлоры из кишечника кур // Тез. докл. всерос. конф. молодых учёных и аспирантов по птицеводству. Сергиев Посад, 2002. - С 33-35.

78. Обуховская О.В., Бабкин В.Ф., Савинова Е.М. Методические рекомендации по выделению сальмонелл из свежего помёта кур. Киев: Медкомиссия ИЭКВМ, приказ №4.- 1997.

79. Определитель бактерий Берджи; од ред. Дж.Хоулта и др. М.: Мир. - 1997. - 800 с.

80. Острые кишечные инфекции, вызываемые условно-патогенными микроорганизмами; под ред. Мельника М.И. Киев: Здоров'я, 1984.

81. Панин А.Н., Малик Н.И., Степаненко Т.Г. Формирование кишечного микробиоценоза у цыплят // Ветеринария. 2000. - № 7. - С.23-26.

82. Партии О.С. Клинико-патогенетические аспекты кампилобактериоза // Лечащий врач. 1998. - № 4.

83. Петровская В.Г., Марко О.П. Микрофлора человека в норме и патологии. М., 1976.

84. Петровская В.Г. Роль множественной лекарственной устойчивости в биологии патогенных и условно-патогенных бактерий // Антибиотики. -1984. -№ 2. С. 104 -111.

85. Петруев Д.Н. Биологическая и экологическая характеристика микроорганизмов, выделенных от птиц: Автореф. дис. канд. вет. наук. Благовещенск. 2000. - 22 с.

86. Пищевые зоонозы: сальмонеллёзы, кампилобактериоз, иерсиниоз, листериоз. Методы и средства диагностики, лечения и профилактики // Интернациональный симпозиум. М. - 1995.

87. Покровский В.И., Ющенко Г.В. Кампилобактериоз. Руководство по зоонозам. JI.: Медицина. - С. 166-168.

88. Полунина В.В. Носительство микроорганизмов в носовой полости у поросят // Ветеринария. 2004. - № 1:

89. Поляк М.С. Определение чувствительности микроорганизмов к антибиотикам «методом дисков». Лекции по фармакотерапии. СПб, НИФЦ: «Анталия». 1997. - № 1 (6).

90. Поляк М.С. Определение чувствительности микроорганизмов к антибиотикам методом серийных разведений. Лекции по фармакотерапии. СПб, НИФЦ: «Анталия». 2000. - № 10.

91. Порин А.А. Совершенствование методов выделения бактерий рода Campylobacter: Автореф. дис. канд. мед. наук. Л. - 1990.

92. Прозоров Е.Л. Выделение и изучение различных культур энтеро-бактерий от павших цыплят и кур птицефабрики «Скворицы» // Мат. 52-й на конф. молодых учёных и студентов СПбГАВМ. СПб, 1998. - стр. 46-47.

93. Профилактика и борьба с заразными болезнями, общими для человека и животных. Сборник санитарных и ветеринарных правил. М. - 1996.

94. Пыхтарёва Е.И. Эффективность питательных сред при выделении термофильных кампилобактерий // Бюллетень ВИЭВ. 1988.

95. Пыхтарёва Е.И. Выделение и биологические свойства термофильных кампилобактерий: Автореф. дис. канд. вет. наук. М. - 1990.

96. Пяткин К.Д., Кривошеин Ю.С. Микробиология (с вирусологией и иммунологией). М.: Медицина. - 1980. - 512 с.

97. Рахманова А., Неверов В. Кампилобактериоз //Медицинская газета. 2000. - № 74.

98. Рекомендации по профилактике и борьбе с псевдомонозом птиц. М/, ГУВ СССР, 1987. 17 с.

99. Рыбальченко О.В., Чайка Н.А. Острые кишечные инфекции. Л., 1986, вып. 10.-С. 178-184.

100. Сасова В.А., Залесских Н.В., Бурков А.Н. Методы идентификации энтеробактерий и стафилококков с помощью пластин биохимических дифференцирующих энтеробактерии и стафилококки: Информационные материалы. Нижний Новгород, 2003. - 32 с.

101. Сафонова Т.Б., Тараненко Л.А. Кампилобактер. Лекция. М., 1988.-18 с.

102. Сафонова Н.В., Хазенсон Л.Б., Матвеева З.Н. и др. Лабораторная диагностика кампилобактериоза. Проспект на ВДНХ. Л. 1987. - 27 с.

103. Свирина С.В. Выделение и идентификация кампилобактерий от кур // Проблемы ветеринарной санитарии. М., 1992, выпуск 2. - С. 32-37.

104. Сергевнин В.И., Ярков В.Л., Шарипова B.C., Сковородин А.Н., Сармометов Е.В. Расследование вспышек острых кишечных инфекций. Методические указания. Пермь, 1998.

105. Сидоров М.А., Скородумов Д.И., Федотов В.Б. Определитель зоо-патогенных микроорганизмов. -М.:Колос. 1995. - 319 с.

106. Сидоров М.А., Субботина В.А., Данилевская Н.В. Нормальная микрофлора животных и её коррекция пробиотиками // РацВетИнформ. -2004.-№1.-С. 9-10.

107. Скирроу М.Б. Эпидемиология и взаимосвязь между кампилобак-териозами человека и животных // Бюллетень ВИЭВ, вып. 56. М., 1984, том 56.-С. 18-22.

108. Слизнёва И.В. Микробиологический мониторинг вывода цыплят и выбор средств профилактики бактериальных болезней: Дисс. канд. вет. наук. -СПб., 1996.- 126 с.

109. Смирнова Л.И. Адгезивные свойства кишечной палочки: Дисс. канд. вет. наук. СПб, 1996. - 150 с.

110. Справочник по микробиологическим и вирусологическим исследованиям. М.: Медицина, 1982. - 464 с.

111. Терехов В.И. Чувствительность и устойчивость условно-патогенных эшерихий к антибактериальным препаратам // Вестник ветеринарии. 1999.-№ 1. - С. 72-77.

112. Таршис М.Г., Черкасский Б.Л. Болезни животных, опасные для человека. М.: Колос, 1997. - 298 с.

113. Тогмидын Г. Выделение термофильных кампилобактеров от людей и животных в Монголии: Автореф. дис. канд. мед. наук. СПб, 1992. - 20 с.

114. Триленко П.А. Вибироз крупного рогатого скота и овец. Ленинград-Москва, 1961. - 248 с.

115. Уразбаева Д.Ч. Патогенность и факторы, её определяющие у штаммов кампилобактерий различного происхождения: Автореф. дис. канд. мед. наук. Ал маты, 1993. - 22 с.

116. Урбан В.П., Радчук Н.А., Баланин Н.В. Изучение колибактериоза птиц в условиях птицефабрик // Ветеринария. 1975. - № 5. - С. 71.

117. Урбан В.П., Кузьмин В.А., Бойцов А.Г., Порин А.А. Указания по использованию метода фильтров для выделения кампилобактерий. Л., 1989. -7 с.

118. Хазенсон Л.Б., Сафронова Н.В., Матвеева З.Н. и др. Выделение и идентификация кампилобактерий из материала от людей, сельскохозяйственных животных и птиц. Острые кишечные инфекции. Вып. 9. Л., 1985. -С. 120-124.

119. Штукарёва М.Ю., Ленченко Е.М., Гладских Л.В., Алабугина Т.В., Барков А.В. Влияние низких температур на выживаемость кампилобактерий в мясе. Пища. Экология. Человек. Материалы МНТК. 14-16.12.95. М., 1995. -С. 200-201.

120. Чайка Н.А., Хазенсон Л.Б., Бутцлер Ж.-П. и др. Кампилобактериоз. М.: Медицина. 1988. - 352 с.

121. Черкасский Б.Л. Современные теоретические основы профилактики инфекционных болезней // Мат. 18 съезда микробиологов, эпидемиологови паразитологов. Алма-Ата, 26-29 сентября 1989. - Москва-Алма-Ата. -1989.-С. 134-142.

122. Черкасский Б.Л, Минаев В.И. Кампилобактериоз. Руководство по эпидемиологии. Т.2. М.: Медицина. 1993. - С. 51-60.

123. Чубис Н.Д. Материалы по изучению вибриоза кур в северном и центральном Казахстане: Автореф. дис. канд. веет. наук. Тарту. - 1974.

124. Энтеробактерии. Руководство для врачей; под ред. академика АМН СССР проф. В.И.Покровского. М.: Медицина. - 1985. - 320 с.

125. Фисинин В.И. Новые научные и практические подходы в рзавитии мирового и отечественного птицеводства // Материалы Всроссийского вете-ринарно конгресса. Москва, 2004. С. 34-37.

126. Achen M., Morishita T.Y. and Ley E.C. Shedding and colonization of Campylobacter jejuni in broilers from day of hatch to slaughter age // Avian Diseases. 1998. - 42. - P. 732-737.

127. Acvedo E., Peres P., Nazurio F. et al. Aslamiento de Campylobacter jejuni у Campylobacter coli em polios // Vet. Мех. 1987. - Vol. 18. - №2. - P. 109113.

128. Ahmed M.M., Ahmed F.A. Occurence of Campylobacter spp. In broilers and laying hens suffering from diarrhea // Assiut veter. Mad. J. 1994. - Vol. 32.-№63.-P. 119-125.

129. Aho M., Nuotio L., Nurmi E. And Kiiskinen T. Competitive exclusion of Campylobacters from poultry with K-bacteria and Broilact // International Journal of Food Microbiology. 1992. - 15. - P. 265-275.

130. Baig B.H., Wachsmuth I.K. and Morris G.K. Utilization of exogenous siderophores by Campylobacter species // Journal of Clinical Microbiology. -1986.-23.-P. 431-433.

131. Bailey J.S. Control of Salmonella and Campylobacter in poultry production. A summary of work at Russell research center // Poultry Sc. 1993. Vol. 72.-№6.-P. 1169-1173.

132. Baumgartner A., Grand M., Liniger M. And Simmen A. Campylobacter contamination of poultry liver consequences for food handlers and consumers // Archiv. Fur Lebensmittelhygiene. - 1995. - 46. - P. 11-12.

133. Beery J.T., Hugdahl M.B. and Doyle M.P. Colonization of the gastrointestinal tract of chicks by Campylobacter jejuni // Applied and Environmental Microbiology. 1998. - 54. - P. 2365-2370.

134. Berg R., Jutila J., Firehammer B. Revised classification of Vibrio fetus. Amer. // J. Of Veter. Res. 1971. V. 32. - № 1. - P. 11-22.

135. Berndtson E., Tivemo M and Engvall A. Distribution and numbers of Campylobacter in newly slaughtered broiler chickens and hens // International Journal of Food Microbiology. 1992. - 15. - P. 45-50.

136. Berrang M.E., Buhr R.J. and Cason J.A., Campylobacter recovery from external and internal organs of commercial broiler carcasses prior to scalding // Poultry Sciens. 2000. - 79. - P. 286-290.

137. Bolton F., Coates D. Developement of blood-free Campylobacter medium: screening tests on basal media and supplements, and the ability of selected supplements to facilitate aerotolerance // J. Appl. Bacteriol. 1983. - Vol. - 54. P. 115-125.

138. Bolton F., Hutchinson D., Coates D. Campylobacter II. London. 1983. -P. 52.

139. Bryan F.L. and Doyle M.P. Health ricks and consequences of Salmonella and Campylobacter jejuni in raw poultry // Journal of Food Protection. -1995.-58.-P. 326-344.

140. Butzler J. Campylobacter infection in main and animals. Boca Raton: CRC Press. 1984. - 246 p.

141. Carter A.M., Pacha R.E., Clark G.W., Williams E.A. Appl. Environm. Microbiol. 1987. - Vol. 53. - № 3. - P. 523-526.

142. Chang M.H., Chen T.C. Reduction of Campylobacter jejuni in a simulated chicken digestive tract by lactobacilli cultures // Journal of Food Protection. -2000.-63.-P. 1594-1597.

143. Chen H.-C., Stern N.J. Competitive exclusion of heterologous Campylobacter spp. In chicks // Journal of Applied Macrobyology. 2001. - 67.- P. 848851.

144. Geniorgis C.A., Hassuneh M., Collins P.Campylobacter jejuni infection on poultry farms and its effect on poultry meat contamination during slaughtering // Journal of Food Protection. 1986. - 49. - P. 895-903.

145. Gondrosen В. Survival of thermotolerant Campylobacters in water // Acta Vet. Scand. 1986. - Vol. 27. - №1. - P. 1-10.

146. Dorn P., Krabisch P., Altmeyer M. Buhler-Nickel E. Znaczenie oraz rozprzestrzenianie sie zakazen Campylobacter i listeria u drobiu // Weterynaria. Wroclaw. 1992. - № 52. - S. 85-103.

147. Escobar A., Ramos P., Hernandez V. Presencia en Cuba de la hepatitis vibrionica de las aves // Rev. cub. Cienc veter. 1995. - Vol. 24. - № 1.- P. 33-35.

148. Glunder G. NaCl-tolerance of Campylobacter isolates from birds and Campylobacter type strains and variation of their serological behaviour // J. Veter. Mad. Ser. B. 1993. - Vol. 40. - № 4. - P. 245-252.

149. Goldstein I.D., Goldleski I.I., Balikian I.P., Herman P.G. Patholigic pattens of Serratia marcescens pneumoniae // Hum. Pathol. 1982. - Vol. 13. - № 3. - P. 479-484.

150. Gregoriadis S. Campylobacter jejuni, poultry and public health // Bull. Hellen. Veter. Med. Soc. 1996. - Vol. 47. - № 4. - P.235-242.

151. Hakkinen M., Schneitz C. Efficacy of a commercial competitive exclusion product against Campylobacter jejuni // British Poultry Science. 1999. - 40. -P. 619-621.

152. Hald В., Knudsen K., Lind P., Madsen M. Study of the infectivity of saline-stored Campylobacrter jejuni fo day-old chicks // Applied and Environmental Microbiology. 2001. - 67. - P. 2388-2392.

153. Hoffman P., George H., Kreig N, Smibert R. Studies on the microaero-philic nature of Campylobacter fetus subsp. Jejuni // Canad. J. Microbiol. 1979. -Vol. 25.-P. 8-16.

154. Hugdahl M.B., Beery J.T., Doyle M.P. Chemotactic bahaviour of Campylobacter jejuni // Infection and Immunity. 1988. - 56. - P.1560-1566.

155. Humphrey T.J., banning D.G., Mead G.C. Inhibition of Campylobacter jejuni in vitro by broiler chicken caecal contents // Veterinary Record. 1989. -125. - P. 272-273.

156. Humphrey Т. J., Henley A., banning D.G. The colonization of broiler chickens with Campylobacter jejuni: some epidemiological investigation // Epidemiology and Infection. 1993. - 110. - P. 601-607.

157. Jacobs-Reitsma W.F., Bolder N.M., Mulder R.W.A.W. Cecal carriage of Campylobacter jejuni and Salmonella in Dutch broiler flocks at slaughter: a one-year study // Poultry Science. 1994. - 73. - P. 1260-1266.

158. Jacobs-Reitsma W.F., Van de Giessen A.W., Bolder N.M., Mulder R.W.A.W. Epidemiology of Campylobacter pp. at two Dutch broiler farms // Epidemiology and Infection. 1995. - 114. - P. 413-421.

159. Jones D.M., Curry A., Sutcliffe E.M. // Acta gastro-enterol. Belg. -1993. Suppl. - P. 40.

160. Kaino K., Hayashidani H., Kaneko K., Ogawa M. Intestinal colonization of Campylobacter jejuni in chikens // Japanese Journal of Veterinary Science. 1988. - 50. - P.489-494.

161. Kapperud G., Skjerve E., Vik I., Hauge K., Lysaker A., Aalmen I., Os-troff S.M., Potter M. Epidemiological investigation of risk factors for Campylobacter colonisation in Norwegian broiler flocks // Epidemiology and Infection. 1993. -111.-P. 245-255.

162. Karmali M., Skirrow M. Campylobacter infection in main and animals // Boca Raton CRC Press Inc. 1984. - P. 1-20.

163. Kelly L.A., Hartnett E., Gettynby G., Fazil A., Snary E., Wooldbrydge. Microbiological safety of poultry meat: risk assessment as a way forward // World's poultry science journal. Vol. 59, December. - 2003, n. 4, - P. 495-508.

164. Knill M.J., Suckly W.G., Pearson A.D. Campylobacter: epidemiology, pathogenesis and biochemistry. Lancaster: MTP-press. 1982. - P. 281-284.

165. Kim Т., Stephens I. Drug resistance and trausferable drug resistance of E.coli isolated from «ready-to cook» // Broiler-Poultry International. 1992. - V. 51. № 4. - P. 11-17.

166. Konkel M.E., Garvis S.G., Tipton S.L., Anderson D.E.J., Cieplak W.J. Identification and molecular cloning of a gene encoding a fibronectin-binding protein (cadF) from Campylobacter jejuni // Molecular Microbiology. 1997. - 24. -P. 953-963.

167. Konkel M.E., Kim B.J., Klena J.D., Young C.R., Ziprin R. Characterization of the thermal stress reponse of Campylobacter jejuni. Infection and Immunity. 1998. - 66. - P. 3666-3672.

168. Kotarski S. et al. Campylobacter III. London. 1985. - P. 51-53.

169. Kulkarni N.M., Sherikar A.T., Sherikar A.A., Tarwate B.G., Paturkar A.M., Murugkar H.V. Incidence of Campylobacter jejuni in chiken and their carcasses sold at Bombay citi // Indian J. Anim. Sc. 1992. - Vol. 62. - № 11. - P. 1024-1027.

170. Lam K.M., Damassa A.J., Morichita T.Y., Shiraprasad H.L., Bickford A.A. Pathogenicity of Campylobacter jejuni for turkeys and chickens Avian Diseases. 1992. - 36. - P. 359-363.

171. Li C.Y., Xue P., Tian W.Q., Liu R.C., Yang C. Experimental Campylobacter jejuni infection in the chicken: an animal moel of axonal Guillian-Barre syndrome // Journal of Neurology, Neurosurgery and Pshychiatry. 1996. - 61. - P. 279-284.

172. Lindblad J. Only strict hygiene barriers can stop Campylobacter // Mis-set World Poultry. 1993. - Vol. 9. - № 8/9. - P. 49-50.

173. Lindblom G., Sjogren E., Kayser B. Natural Campylobacter colonization chickens raised under different environmental condition // J. Hyg. 1986. -Vol. 96. -№3.- P. 385-391.

174. Luechtefeld N., Blaser M., Reller L. et al. Isolation of Campylobacter fetus subsp. jejuni from migratory Waterford // J. Clin. Microbiol. 1980. - Vol. 12. - P. 406-408.

175. Luechtefeld N., Cambre R. Wang W.-L. Isolation of Campylobacter fetus subsp. jejuni from zoo animals // J. Am. Vet. Med. Assoc. 1981. - Vol. 179. -P. 1119-1122.

176. Mead G.C. Current trends in the microbiological safety of poultry meat // World's poultry science journal. Vol. 60, march. - 2004, n. 1. - P. 112.

177. Meinersmann R.J., Porter R.E. Effect of Vibrio cholerae toxin on oral immunization of chickens // Avian Dis. 1993. - Vol. 37. - № 2. - P. 427-432.

178. Mochmann H., Kohler В., Richter U. Zur Epidemiologic und Epizo-otologie der durch Campylobacter jejuni und Campylobacter coli hervorgerufenen Enteritis // Mh. Veter. Med. 1985. - Vol. 40. - № 15. - S. 505-507.

179. Moran A.P. Acta gastro-enterol. Belg. Suppl. 1993. - P. 39.

180. Nachamkin J., Blazer M. J., Tomkins J. S., etal. Campilobacter jejuni. Current Status and Future Trends. American Society for Microbiology. Washington D. C. 1992.

181. Oosterom J. Studies on the epidemiology of Campylobacter jejuni. Utrecht. 1985. 181 p.

182. Rios R., Fox A.J., Jones D.M. // Acta gastro-enterol. Belg. Suppl. 1993. P. 40.

183. Rola Campylobacter i patologii ptakow. 1. Badania epizootiologiczne nad wystepowanien zakazen Campylobacter u drobiu // Wieliczko A. Med. weter. -1995.-R. 51.-X23.-S. 150-152.

184. Sermakova I. Vyuzitie testu v rychlej diagnostike niektorych rodov en-terobacterii // Veter.med. 1988. - Vol. 33, X° 4. - S. 219-224.

185. Shane S., Montrose M. The occurence and significance of Campylobacter jejuni in man and animals // Veter. Res. Communic. 1985. - V. 9. - X® 3. - P. 167-198.

186. Shimizu A., Kimura S. Antibiotic resistance of bacteria isolated from chikens // Sc. Rep. Fac. Agr. Kobe univ. 1987. - V 13. - X° 1. - P. 163-165.

187. Skirrow M.B. Campylobacter infectio of main. London: Academic press. 1984. - Vol. 4. - P. 105-106.

188. Skirrow M., Benjamin J. Campylobacter. Boston: MTD-press. -1981.-P. 40-44.

189. Skirrow M., Benjamin J. et al. Isolation and identification methods for food poisoning organisms. London. - 1982. - P. 313-328.

190. Smibert R.M. The Prokariota, a Handbook on Habitas, Isolation and Identification of Bacteria //New York: Springer-Verlag. -1981. P. 609-617.

191. Smibert R.M. Bergey's mannual of systematic bacteriology. 1989. - P. 111-118.

192. Smith KE, Besser JM, Hedberg CW et al. NEJM 1999; 340: 1525-32.

193. Smith Т., Taylor M., Some morphological and biological characters of the Spirilla (Vibrio fetus n.sp.) associated with disease of the fetal membranes in cattle // J. Exper. Med. 1919. - V. 30. - P. 229-231.

194. Stern N.J. Mucosal competitive exclusion to diminish colonization of chickens by Campylobacter jejuni // Puoltry Sc. 1994. - Vol. 73. - № 3. - P. 402407.

195. Stern N.J., Clavero M.R.S., Bailey J.S., Cox N.A., Robach M.C. Campylobacter spp. In broilers on the farm and after transport // Poultry Sc. 1995. -Vol. 74.-№6.P. 937-941.

196. Svedhem A., Kaiser B. Isolation of Campylobacter jejuni from domestic animals and pets // Journal of Infection. -1981. №3. - P. 37-40.

197. Szteyn J., Uradzynski J. Wplyw chlodzenia imersyjnego na zanic-zyszczenie tuszek i narzadov wewnetrznych drobiu bakteriani rodzaju Campylobacter // Med. Weter. 1994. - R. 50. - № 7. - S. 325-327.

198. Tenover F., Knapp J., Patton C., Plorde J. Use of auxotyping for epidemiological studies of Campylobacter jejuni and Campylobacter coli infections // Infect, and Immun. 1985. - Vol. 48. - №2. - P. 384-388.

199. Teylor D. N. and Blazer M. J. Campilobacter infections p. 151-172. In A. S. Evans and P. S. Brachman (ed) Bacter // Infections of Humans: Epidemiology and Control. Plenum Publishing Corp., New York. 1991.

200. Vinzent R., Dumas J., Picard N. Septicemic drave au cours de la grossesse due a un vibrion: avortment consecutive. Bull. Acad. Natl. Med. (Paris). 1947. - V. 16. - № 131. - P. 291-294.

201. Waldroup A.L. Contamination of Raw poultry With pathogens // Poultry sc. 1996. Vol. 52, № 1. P. 7-25.

202. Wang Y. et al. Acta acad. med. Sichuan. 1985. Vol. 16. №2. P. 112114. Weaver R. Et al. Campylobacter: epidemiology, pathogenesis and biochemistry // Lancaster: MTP-press. -1981. P. 50-51.