Автореферат и диссертация по медицине (14.00.02) на тему:Взаимосвязь морфогистохимических изменений с процессами липопероксидации в гиппокампе человека при старении

ДИССЕРТАЦИЯ
Взаимосвязь морфогистохимических изменений с процессами липопероксидации в гиппокампе человека при старении - диссертация, тема по медицине
АВТОРЕФЕРАТ
Взаимосвязь морфогистохимических изменений с процессами липопероксидации в гиппокампе человека при старении - тема автореферата по медицине
Саркисян, Карен Джаникович Москва 2008 г.
Ученая степень
кандидата медицинских наук
ВАК РФ
14.00.02
 
 

Автореферат диссертации по медицине на тему Взаимосвязь морфогистохимических изменений с процессами липопероксидации в гиппокампе человека при старении

На правах рукописи

Саркисян Карен Джаниковнч

ВЗАИМОСВЯЗЬ МОРФОГИСТОХИМИЧЕСКИХ ИЗМЕНЕНИЙ С ПРОЦЕССАМИ ЛИПОПЕРОКСИДАЦИИ ВГИППОКАМПЕ ЧЕЛОВЕКА ПРИ СТАРЕНИИ

14 00 02 - анатомия человека

Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата медицинских наук

Москва - 2008

003450024

Работа выполнена в ГОУ ВПО «Российский государственный медицинский университет Федерального агентства по здравоохранению и социальному развитию»

Научный руководитель

доктор медицинских наук С.Е. Шемяков

Официальные оппоненты.

член-корр РАМН, профессор, доктор медицинских наук ГУ Научный центр неврологии РАМН член-корр РАМН, профессор, доктор медицинских наук ГОУ ВПО ТГМА Росздрава

Ведущая организация:

Московская медицинская академия им И М Сеченова

Защита состоится "_"_2008 года в_часов на заседании диссертационного совета Д 208 072 04 при Российском государственном медицинском университете по адресу 117997, г Москва, ул Островитянова, д 1

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке Российского государственного медицинского университета по адресу 117997, г Москва, ул Островитянова, д 1

Автореферат разослан "_"_2008 года

И.Н. Боголепова Д.В. Баженов

Ученый секретарь диссертационного совета доктор медицинских наук, профессор

А И Щеголев

АКТУАЛЬНОСТЬ ТЕМЫ. Главной задачей геронтологии является изучение основных механизмов старения человека и изыскание подходов к замедлению возрастных изменений (Фролькис В В, 1991, Боголепов H H и соавт, 1999, Hikosaka О , 1998, Martin W R et al, 1998, Soffie M , et al, 1999)

Одной из структур головного мозга, играющих важную роль в реализации когнитивных функций является гиппокамп (ГП) (Боголепова ИН, 1970-2008, Отмахов H А , 1993, Арушанян Э Б , 1999, Bartesaghi R, 2004, Czapinski Р et al, 2005, Muñoz M , Insausti R , 2005, Gogtay N et al, 2006) ГП является объектом пристального внимания кардиологов, эндокринологов, неврологов и геронтологов Это связано с тем, что нейродегенеративные и сенильные поражения данного отдела головного мозга сопровождаются развитием когнитивных и аффективных расстройств при артериальной гипертонии, сахарном диабете, болезни Альцгеймера и «нормальном» старении человека (Pella R et al, 2002, Schmidt R et al, 2004, Vincent AM et al, 2004)

В последние десятилетия утвердилось положение о микроединице центральной нервной системы (ЦНС), как о совокупности нейрона с его ближайшим глиальным и микрососудистым (капиллярным) окружением (Мотавкин П А и соавт , 1983, Адрианов О С , 1987, Семенова Л К, 1989, Козлов В И и соавт, 1994, Семченко В В и соавт, 1999, Турыгин В В и соавт, 2001, Шемя-ков С Е , 2003, Holton J L et al, 1997) В месте с тем, интегральные исследования, касающиеся морфологической динамики показателей системы «нейрон -глия - капилляр» при старении в гиппокампе человека отсутствуют С другой стороны, количественные и качественные изменения в системе «нейрон-глия-капилляр», являются лишь некой «формой», отражающей неизбежно меняющееся внутреннее содержание Последнее выражается прежде всего в возрастных сдвигах биохимических процессов, протекающих в нервной ткани

Известно, что процессы перекисного (свободнорадикального) окисления липидов (ПОЛ) являются универсальным механизмом тканевого повреждения (Биленко M В , 1989, Владимиров Ю А , 2000) В настоящее время именно ПОЛ

привлекает наибольшее внимание, как неспецифический механизм повреждений на клеточном, тканевом и органном уровнях (Шемяков С Е , 2003, Martinez М et al, 1994, Buttcrficld D A , 2002, Mattson MP ct al, 2002, Mariani E ct al, 2005, Favier A , 2006, Szeto H H , 2006)

Отсюда, несомненную актуальность представляет изучение взаимосвязей процессов ПОЛ с морфологическими изменениями и морфометрическими характеристиками нейронов, глиоцитов и капилляров в гиппокампе при старении

Исходя из вышесказанного, были определены цель и задачи настоящего исследования

ЦЕЛЬ ИССЛЕДОВАНИЯ.

Установить закономерности изменений в системе "нейрон - глия - капилляр" и охарактеризовать их связь с процессами перекисного окисления ли-пидов в гиппокампе человека при старении

ЗАДАЧИ ИССЛЕДОВАНИЯ

1 Исследовать морфометрические показатели нейронов в различных отделах гиппокампа человека при старении

2 Изучить возрастные изменения количества глиальных клеток (астроци-тов, олигодендроцитов и микроглиоцитов) в гиппокампе человека

3 Исследовать особенности капиллярного русла гиппокампа у людей зрелого, пожилого и старческого возрастных периодов

4 Определить содержание продуктов перекисного окисления липидов в гиппокампе человека с учетом изучаемых периодов онтогенеза

5 Выявить функциональные взаимосвязи между возрастными изменениями морфометрических показателей нейронов, глиальных клеток, особенностями кровоснабжения гиппокампа и процессами липопероксидации в нем

НАУЧНАЯ НОВИЗНА ИССЛЕДОВАНИЯ. Впервые проведено комплексное морфометрическое исследование каждого из компонентов системы

"нейрон - глия - капилляр" в гиппокампе человека Установлено, что интенсивность возрастного падения нейрональной плотности в аммоновом роге в 1,21,8 раза больше, чем в зубчатой извилине Данный процесс сопровождается компенсаторной гипертрофией нейронов и заместительным глиозом Впервые установлено, что возрастное увеличение суммарной глиальной плотности в собственно гиппокампе достигает 85% Основной вклад в этот процесс вносят олигодендроциты, процентное содержание которых превалирует над астро- и микроглией Впервые показано, что в зубчатой извилине глиальная плотность уменьшается с возрастом на 21,2-21,9%, при этом доминирующим видом глио-цитов в зубчатой извилине являются астроциты Впервые показано, что в процессе старения в гиппокампе человека на фоне снижения линейных параметров капиллярного русла происходит компенсаторное увеличение его емкостных характеристик Описаны топические особенности возрастных изменений морфо-метрических показателей ГП, установлены корреляционные взаимосвязи между компонентами системы «нейрон-глия-капилляр» Впервые исследованы особенности процессов перекисного окисления липидов в гиппокампе людей разного возраста Показано, что с возрастом уменьшается устойчивость липидов ГП к оксидативному стрессу Впервые, на основании полученных результатов, установлены онтогенетические взаимоотношения морфологических изменений с процессами липопероксидации гиппокампа, что позволяет составить комплексное представление о возрастных преобразованиях в гиппокампе человека и дополняет сведения о механизмах старения головного мозга

ПРАКТИЧЕСКАЯ И ТЕОРЕТИЧЕСКАЯ ЗНАЧИМОСТЬ.

Работа носит фундаментально - теоретический характер

На основании анатомического, гистологического, гистохимического, биохимического и статистического исследования установлены закономерности онтогенетических сдвигов и их топические особенности в гиппокампе человека

Результаты проведенного морфо-гисто-биохимического исследования

значительно дополняют и расширяют существующие представления о структуре и функции системы ' нейрон - глия - капилляр" в гиппокампе человека и могут быть использованы в учебном процессе на кафедрах анатомии, гистологии, биохимии, физиологии, неврологии и других

Сведения о механизмах старения нервной системы могут использоваться при подготовке студентов на кафедрах медико-биологического профиля и врачей - курсантов на курсах повышения квалификации

Выявленные взаимосвязи морфогистохимических изменений с процессами липопероксидации в гиппокампе могут быть использованы как теоретическая основа для разработки новых подходов к профилактике и терапии нейро-дегенеративных заболеваний и сенильных расстройств

АПРОБАЦИЯ МАТЕРИАЛОВ ДИССЕРТАЦИИ

Основные положения работы доложены на VIII Конгрессе Международной Ассоциации морфологов (Орел, 2006), на международной научной конференции «Структурные преобразования органов и тканей на этапах онтогенеза в норме и при воздействии антропогенных факторов Экология и здоровье населения Актуальные проблемы биологии и медицины» (Астрахань, 2007) на расширенном заседании кафедр анатомии человека и гистологии РГМУ (2007, 2008), на научной конференции, посвященной 100-летию со дня рождения академика АМН СССР Жданова Дмитрия Аркадьевича (Москва, 2008), на международной научно-практической конференции «Проблемы современной морфологии человека» (Москва, 2008)

Основные положения диссертации, выносимые на защиту:

1 В процессе старения в гиппокампе человека наблюдается гетеро-хронное и гетеротопное уменьшение количества нервных клеток с компенсаторным увеличением площади профильного поля нейроцитов Эти процессы наиболее выражены в поле CAI собственно ГП

б

2 Уменьшение числа нейронов в аммоновом роге сопровождается заместительным глиозом, связанным с пролиферацией олигодендроцитов Нарастание глиального индекса в собственно ГП происходит на фоне уменьшения суммарного числа i лиоцитов в зубчатой извилине

3 Морфологические проявления нейрональной инволюции гиппокам-па человека сопровождаются нарастающей редукцией капиллярного русла с компенсаторным увеличением емкостных параметров резидуальных капилляров

4 Увеличение чувствительности нервной ткани к оксидативному стрессу и нарастание уровня продуктов ПОЛ является одной из причин морфологических изменений в гиппокампе человека при старении

ПУБЛИКАЦИИ По материалам диссертации опубликовано 6 научных

работ

ОБЪЕМ И СТРУКТУРА ДИССЕРТАЦИИ Диссертация изложена на 186 страницах машинописи и включает введение, обзор литературы, описание использованных материалов и методов исследования, 4 главы собственных исследований, обсуждение результатов, выводы и список литературы, содержащий 128 отечественных и 156 иностранных источников Диссертация содержит 22 таблицы и 75 рисунков

МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

Объектом исследования послужили препараты гиппокампа, полученные при аутопсии 87 трупов людей обоего пола, в возрасте от 21 года до 92 лет, смерть которых не была напрямую связана с заболеваниями центральной нервной и сердечно - сосудистой систем Забор секционного материала производился не позднее 24 часов с момента смерти

Распределение материала по возрастным группам производилось согласно схеме, рекомендованной 7 -ой Всесоюзной научной конференцией по проблемам возрастной морфологии, физиологии и биохимии (М , изд АПН СССР, 1965) Исследовались четыре возрастные группы 1-ый зрелый возраст (от 22

до 35 лет - мужчины, от 21 до 35 лет - женщины), 2-ой зрелый возраст (от 36 до 60 лет - мужчины, от 36 до 55 лет - женщины), пожилой возраст (от 61 до 74 лет мужчины, от 56 до 74 лет женщины), старческий возраст (75 лет и старше)

Исследования были проведены в аммоновом роге, классическими полями которого являются поля CAI и САЗ (Виноградова О С , 1975), и зубчатой извилине (ЗИ) на уровне средней части и ножки ГП Особое внимание обращалось на пирамидный слой собственно ГП и зернистый (гранулярный) слой ЗИ

Гистологические методы исследования

Нейроны выявляли методом окраски крезиловым фиолетовым по Нисслю (Сапожников А Г, Доросевич А Е, 2000) Астроциты выявляли по методике Снесарева, а для дифференцировки олигодендроцитов и микроглиоцитов использовалась методика Мийагавы в модификации Александровской (Саркисов Д С , Перов 10 П , 1996) В качестве обзорной методики для выявления отдельных слоев, отделов и полей ГП, а так же в качестве вспомогательной методики для выявления нейронов и глиальных клеток использовался общепринятый метод окраски гематоксилин - эозином Для выявления отдельных звеньев микро-циркуляторного русла (МЦР) и для описания нейро-глио-капиллярных взаимоотношений использовался метод импрегнации нитратом серебра, модифицированный И В Рясковой (1984)

Подсчет нервных и глиальных клеток производился на микроскопе «Био-лам» при увеличении объектива 40х с помощью квадратно - сетчатой окулярной вставки (Автандилов Г Г, 1980, 1990), а так же на микроскопе Leica DMRXA с помощью компьютерной программы анализа изображения Диа Морф Cito W (Москва) На каждом срезе определялось количество клеток в 10 полях зрения С учетом толщины среза производился пересчет количества клеток в 0,01 мм3 ткани

Площадь нейронов определялась на микроскопе «Биолам» при увеличении объектива 90х с использованием водной иммерсии (Блинков С М , Глезер

И И , 1964), а так же на микроскопе Lcica DMRXA с помощью компьютерной программы анализа изображения Диа Морф Cito W (Москва)

Глиальный индекс (ГИ) вычислялся как соотношение между количеством глиоцитов и нейроцитов в единице объема нервной ткани (Блинков С M , 1963) Гистохимические методы исследования

Капиллярное русло исследуемых структур выявлялось гистохимической реакцией на щелочную фосфатазу (ЩФ) (К Ф 3 1 3 1 ) методом одновременного азосочетания по M S Burstone (Лойда 3 исоавт,1983) Специфичность гисто-химическои реакции контролировали добавлением в инкубационную среду 0,01М L - цистеина (Лойда 3 и соавт , 1983)

Наиболее лабильными параметрами капиллярного русла (KP) являются диаметр микрососудов и количество функционирующих капилляров, т к именно эти два показателя отражают главную гемодинамическую характеристику МЦР - его пропускную способность (Козлов В И , 1983)

Исходя из этого на препаратах, окрашенных на ЩФ, определяли следующие параметры капиллярного русла 1. длина капилляров в мм3 ткани (L), 2 диаметр капилляров (d), 3 обменная поверхность капилляров в мм3 ткани (S=7tdL), 4 объем капиллярного русла в мм3 ткани (V=(d2/4)L7i), 5 количество крови, приходящееся на единицу поверхности капилляра (V^V/S) (Мотавкин П А и соавт., 1983)

Длина капилляров вычислялась по методике С M Блинкова и Г Д Моисеева (1961) с использованием формулы для неравномерного распределения капилляров в ткани мозга Диаметр микрососудов измеряли при помощи винтового окуляр - микрометра MOB - 1-15" на микроскопе «Биолам» при увеличении объектива 40х

Фотосъемка микропрепаратов осуществлялась цифровой камерой "OLYMPUS" и с использованием микроскопа Leitz Wetzlar, с последующей компьютерной распечаткой при помощи программы "Corel PHOTO - PAINT 9" Биохимические методы исследования

Содержание первичных, вторичных и конечных продуктов ПОЛ оценивали спектрофотометрически в гептан-изопропанольном липидном экстракте мозговой ткани (Волчегорский И А и соавт, 1989,2000) Измеряли оптическую плотность каждой фазы против соответствующего контроля при 220нм, 232нм и 278 нм Соответствующие величины экстинции отражают поглощение изолированных двойных связей, диеновых коньюгатов ацилгидроперекисей (первичных молекулярных продуктов ПОЛ), кетодиенов и сопряженных триенов (вторичных молекулярных продуктов ПОЛ) Конечные продукты ПОЛ определяли путем дополнительного замера оптической плотности экстракта при 400 нМ Поглощение липидного экстракта при 400 нм отражает содержание шиффовых оснований (конечных продуктов ПОЛ) (Львовская Е И и соавт, 1991) Результаты выражали в виде индексов окисления, рассчитывая соотношение Е232/Е220, Е278/Е220 И Е400/Е220

Дополнительно рассчитывали показатель Е220/МГ ткани, отражающий удельное содержание полиненасыщенных липидов в изучаемых структурах мозга (Волчегорский И А и соавт, 1989,2000а)

Чувствительность липидов нервной ткани к свободнорадикальной атаке in vitro оценивали по степени накопления веществ, реагирующих с 2 - тиобар-битуровой кислотой (ТБК) в гомогенатах ГП, инкубируемых на воздухе в течение 60' при 37°С (Волчегорский И А и соавт , 2000) Показатель окисляемости выражали в процентах прироста содержания ТБК - реактивных веществ по отношению к исходному уровню Исходные значения оптической плотности по ТБК-тесту использовали для расчета удельного содержания ТБК - реактивных продуктов ПОЛ в ткани мозга и выражали, как Е532 х 103 /мг ткани

Статистическая обработка результатов.

Результаты обработаны при помощи стандартного пакета прикладных программ "Statisica 5 for Windows" и представлен в виде средней арифметической и ее стандартной ошибки (М±ш) О достоверности различий судили по t -

критерию Стыодента для независимых выборок Различия считались достоверными при р<0,05 В качестве показателей статистической связи между изучаемыми параметрами рассчитывались коэффициенты линейной корреляции Пирсона^) и коэффициент ранговой корреляции Спирмена (rs)

РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ

Нейронный состав пирамидного слоя собственно ГП представлен в подавляющем большинстве пирамидными нейронами, тела которых имеют треугольную или овальную форму, с выраженным апикальным дендритом, уходящим в радиальный слой ГП Этот тип нервных клеток имеет четкие контуры ядра и перикариона Ядра клеток светлые, содержат базофилыюе ядрышко, занимающее в основном центральное положение Вещество Ниссля мелкими глыбками или пылевидной зернистостью заполняет нейроплазму. В поле CAI наблюдается густое расположение нейронов, апикальный дендрит которых разветвляется почти сразу на множество тонких ветвей В поле САЗ нейроны располагаются диффузно, менее плотно прилежат друг к другу Их отличительной чертой являются толстые дендриты большой величины Гранулярный слой ЗИ представлен нейронами округлой и овальной формы, плотность расположения которых значительно выше, чем пирамидных нейронов в собственно ГП

В процессе старения происходит снижение количества нервных клеток, характеризующееся гетеротопностью и гетерохронностью (табл 1) Потеря количества пирамидных нейронов у лиц старческого возраста по сравнению с лицами зрелого возраста в поле CAI составляет 33,2-38,9%, в то время как аналогичные изменения в поле САЗ составляют лишь 24,6-24,7% Количество гранулярных нейронов в 0,01 мм3 ткани ЗИ превышает плотность пирамидных нейронов аммонова рога в 3-5 раз При этом степень возрастной убыли гранулярных нейроцитов существенно ниже В период с 21 года до 92 лет, количество последних уменьшается на 21,5-21,9% Следует отмстить, что показатели средней части ГП более лабильны, и уменьшение количества нейронов здесь происходит уже у людей 2-го периода зрелого возраста, в то время как на уровне

ножки ГП это происходит лишь у людей старше 60 лет Нами выявлена прямая корреляционная зависимость между количественными возрастными изменениями пирамидных нейронов поля САЗ и гранулярных нейронов ЗИ Это показывает аналогичность возрастных изменений морфофункционально тесно связанных структур Известно, что аксоны гранулярных клеток направляются к пирамидным нейронам именно поля САЗ (Виноградова О С, 1975, Отмахов Н А , 1993, БоЫоу М V Л а1, 2003, ЗсИпнск-Н^Ьег С , 2008) При этом есть основание полагать, что центральную роль в обучении и памяти играют гранулярные клетки зубчатой извилины (БЬу^ег Я Б е1 а1,1996)

Признаком, который обусловливает индивидуальную вариабельность мозга, является показатель площади профильного поля нервных клеток Изменения этого параметра определяют морфологические предпосылки индивидуальной психической деятельности человека (Боголепова И Н, 2000) Некоторыми авторами выявлено уменьшение размера нервных клеток в различных областях головного мозга у людей пожилого и старческого возраста (Жалилов Ш X, 1994, Ахунжанов Р А , Касым-Ходжаев И К, 1998)

По нашим данным в большинстве компартментов ГП наблюдается увеличение площади нейронов у людей в возрасте от 21 до 74 лет, сменяющееся их уменьшением у людей старше 75 лет (табл 1) Принимая во внимание, имеющуюся достоверную обратную корреляционную зависимость возрастных изменений данного параметра и количества нейроцитов, можно предположить, что гипертрофия нейронов должна рассматриваться как адаптационный механизм, а нивелирование этой реакции у людей старческого возраста, наряду с уменьшением количества нейронов, представляется как истощение компенсаторно-приспособительных возможностей ЦНС, что может являться составляющей изменения функций ГП Это совпадает с результатами полученными на лабораторных животных Средний диаметр нейронов у них может увеличиваться, а затем снижаться до исходного уровня, уменьшаясь в поздние возрастные периоды (Фролькис В В , 1991) Изменение размеров клеток, по мнению автора, от-

ражает стабильность, увеличение или снижение их функциональной активности

Второй составляющей структурно-функциональной единицы ЦНС являются глиальиые клетки В литературе до настоящего времени не существует единой точки зрения на возрастную динамику количества глиоцитов в головном мозге Наряду с данными о возрастном глиозе (Ройтбак А И, 1993, Шемя-ков С Е, 2003), приводятся сообщения об относительной неизменности (Мо-тавкин П А и соавт, 1983) и снижении числа глиоцитов (Косимходжаева Д И , 1998)

Результаты нашего исследования показали, что возрастные изменения показателя суммарной плотности глиалышх клеток в разных структурах «старой коры» оказались разнонаправлены В аммоновом роге он увеличивается с возрастом, причем прирост глиальной плотности при старении может достигать 85%, тогда как в зубчатой извилине, напротив, происходит его некоторое уменьшение, достигающее 15-22% При этом соотношение между тремя видами глии (астроцитами, олигодендроцитами и микроглиалъными клетками) различно не только в разных компартментах ГП, но и меняется с возрастом Это согласуется с мнением многих авторов о том, что количественные межглиальные соотношения отличаются не только в разных формациях мозга, но и зависят от возрастного периода (Блинков СМ и соавт, 1964, Бериашвили РВ, 1990, Sturrock R R , 1986, 1987, Hayakawa N et al, 2007, Stark AK et al, 2007) Нами обнаружено, что в собственно ГП у людей зрелого возраста наблюдается преобладание олигодендроцитарной глии, которое увеличивается с возрастом В ЗИ во всех возрастных периодах количество астроглии превышает аналогичные показатели олиго- и микроглии, при этом доля астроцитов увеличивается с возрастом Процентное количество микроглии не претерпевает с возрастом значимых изменений Селективное преимущество количества определенного вида глии очевидно указывает на их функционально-метаболическую взаимосвязь с нейронами соответствующих отделов ГП

По нашему мнению, заместительный глиоз, хорошо выраженный в аммо-новом роге, проявляется в суммарном увеличении как свободно лежащих глио-цитов, так и клеток - сателлитов, которые в большинстве случаев образованны олигодендроцитами и микроглиальными клетками

Глиальный индекс, как интегральный показатель системы «нейрон -глия» является более чувствительным маркером топических особенностей, чем отдельно взятые показатели нейрональной и глиальной плотности (Шемяков С.Е , 2003) В процессе старения происходит увеличение глиального индекса во всех изученных компартментах ГП человека, за исключением ЗИ Возрастное увеличение ГИ в собственно ГП обусловлено снижением числа нервных клеток и параллельным заместительным глиозом Следует отметить, что степень прироста глиального индекса в аммоновом роге на уровне ножки ГП в 2,5-3,5 раза превосходит таковую на уровне его средней части

Абсолютные величины ГИ в ЗИ на уровне средней части и ножки находятся в пределах 0,59±0,014 - 0,76±0,022 Такие малые значения объясняются тем, что количество гранулярных нейроцитов превосходит количество глии в ЗИ В ЗИ человека в процессе старения глиальный индекс меняется незначительно По-видимому, это происходит из-за того, что снижение количества гранулярных клеток и количества нейроцитов пропорционально друг другу

Капилляры, наряду с нервными и глиальными клетками, относятся к составляющим структурно-функциональной единицы ЦНС (Мотавкин ПА и со-авт, 1983, Адрианов О С , 1987, Семченко В В и соавт, 1999, Шемяков С Е, 2003, Телешева И Б, 2008, Holton J L eta], 1997)

Обменное звено МЦР ГП представлено хорошо развитой трехмерной капиллярной сетью, повторяющей его цитоархитектонику Оно является частью классического МЦР, все звенья которого присутствуют в изучаемом отделе головного мозга

Артериолы диаметром 30-50 мкм берут начало от мелких ветвей 1-3 по-

Таблица 1

ВОЗРАСТНЫЕ ИЗМЕНЕНИЯ МОРФОМЕТРИЧЕСКИХ ПОКАЗА ГЕЛЕЙ

НЕЙРОНОВ И ГЛИАЛЬНЫХ КЛЕТОК В ГИППОКАМПЕ ЧЕЛОВЕКА

ОТДЕЛЫ ПАРА- ВОЗРАСТ

МОЗГА МЕТРЫ 1-й зрелый 2-й зрелый пожилой старческий

Мпир 202,4±8,83 178,3110 23' 155,9+6,37'2 135,319,31123

поле CAI Snnp 210,4±6,37 251,7±7,2S1 293,516,16'2 248,816,54'3

я с ? а к Гл 654,3±23,41 784,1143,83' 767,5+35,94' 691,1142,812

А ОМ 36 47 17 26 53 21 29 61 10 31 58 11

ГИ 3 28±0,09 4,52±0 18' 5,00+0,23' 5,38+0.27'2

о Nnnp 167 4±8,45 144,1+9,29' 136,9111,47' 126,217,42'2

я поле САЗ Snup 254,5±6,13 304 6±5,731 288,7+6,12' 241,617,4123

л н Гл 621,7+24,88 613,3±33,74 812,5153,72'2 73 8,8162,951,23

а АОМ 36 48 16 32 45 23 27 60 13 30 56 14

к « ГИ 3,87±0,19 4,48±0,24 6,23Ю,29'2 6,0410 25'2

ж э а. и Ыгран 793,5+11,82 718,6±10,73' 691,5113,74' 622,9111.83'23

Srpan 112,6±5,92 131,517,83' 93,4+6,47''2 89,317,72'2

ЗИ Гл 472,8±21,72 446,1±19,04 401,9122,74' 369,1119,76'2

АОМ 44 37 19 56 29 15 54 30 16 57 24 19

ГИ 0,60±0,015 0,63±0,014 0,59+0.017 0,6010,015

Nnnp 180,6±6,98 167,7±7,89 132,517,86'2 110,4+6,41'23

поле CAI Snnp 203,4±8,62 215,2±7,61 255,7+6,81'2 250,817,92'2

Гл 658,7+31,82 928,2±47,2l' 1176,8157,761'2 1243 0+82,11'2

АОМ 27 59 14 25 63 12 17 64 19 16 66 18

« ГИ 3,83±0,22 5,86±0,34' 9,1510,421>2 12 01+0,66'2,3

S а Nnnp 162,9±8,63 158,6±9,31 126,3111,37'2 122,6+10,6112

а о поле САЗ Snnp 315,6±5,82 324,8±7,65 317,917,72 280,7+6 28'23

с S Гл 584,8±21,53 1084Д±49,62' 1007,2167,92' 1079,5178,53'

и а АОМ 20 57 23 22 60 18 16 59 25 15 62 23

ГИ 3,74±0,17 7,05±0.29' 8,35+0,411,2 9,4810,58'2

i NrpaH 740,6±10,82 718,6111,61 654,9113,26' 2 578,4±11,42'23

SrpaH 121,3+6,81 137,517,92' 98,7+8,Зб''2 82,517,35'23

ЗИ Гл 548,1+25,83 418,0±29,93] 401,4125,84' 431,7121,89'

АОМ 40 38 22 48 41 И 61 29 10 50 33 17

ГИ 0,75+0,017 0,59+0,014' 0,6210,014' 0,76+0,0222 3

Примечание 1 ЗИ - зубчатая извилина I иппокампа, 2 Мпир , Игран - количество пирамидных, гранулярных нейронов в 0,01 мм3, Бпир, Бгран - площадь пирамидных, гранулярных нейронов (мкм2), Гл - количество глиальных клеток в 0,01 мм3, А О М - соотношение астро-, олиго- и микроглии (%), ГИ - глиальный индекс, 3 1 - достоверные отличия по отношению к 1-му зрелому возрасту,2 - по отношению к 2-му зрелому возрасту,3 - по отношению к пожилому возрасту (Р<0,05)

рядка, отходящих от задней мозговой и передней ворсинчатой артерии Ход ар-териол зачастую повторяет форму ГП Некоторые артериолы отклоняются в сторону субикулюма, тогда как другие направляются к зубчатой извилине В аммоновом роге наиболее крупные микрососуды располагаются в два ряда, один из которых лежит кнутри, а другой снаружи слоя пирамидных нейронов Сосуды резистивного звена, отходящие в сторону паравентрикулярной области (альвеус, краевой слой) не имеют предпочтительного направления Артериолы, прекапиллярные артериолы и капилляры радиального слоя имеют четко выраженное преимущественное направление Эти микрососуды идут перпендикулярно пирамидному слою, повторяя направление апикальных дендритов пирамидных нейронов

Часть микрососудов, отходящих от артериол внутреннего слоя образют густые капиллярные сети в молекулярно-лакунарном слое, анастамозируя при этом с сосудами зубчатой извилины Сосудисто-капиллярные сети лакунарно-молекулярного слоя образованы ячейками полигональной формы В этом ком-партменте ГП можно выделить преимущественно ориентацию МЦР, зачастую совпадающую с изгибом аммонова рога и ЗИ Это еще раз подтверждает тезис о том, что ангиоархитектоника в головном мозге является зеркальным отображением его цитоархитектоники (Клосовский Б Н, Космарская Е Н, 1961)

По нашим данным (табл 2), суммарная длина функционально активных капилляров в ГП уменьшается в старческом возрасте по сравнению с людьми 1-го зрелого возраста в 1,5 - 1,7 раза При этом уровень капилляризации отдельных областей ГП внутри возрастной группы существенно различается Это согласуется с данными полученными М А Bell, М J Ball (1981), которые обнаружили возрастное уменьшение плотности капилляров в ГП в 1,1-1,2 раза, так же отмечая гетеротопность этого процесса Вероятнее всего, в данном случае мы имеем дело с классическим примером единства структуры и функций Любые изменения пространственной организации микрососудистой системы мозга имеют свой функциональный эквивалент и, наоборот, изменения функции моз-

га будут сопровождаться изменениями пространственной организации его сосудистой системы (Козлов В И и соавт, 1994)

Одним из важных морфочетрическич параметров капиллярного русла является среднии диаметр микрососудов В процессе старения в изученных отделах ГП происходит увеличение данного показателя, который достигает своих максимальных значений у людей старте 60 лет Расширение микрососудов мозга в старости может рассматриваться как приспособительная реакция, направленная на компенсацию одновременно идущего процесса редукции капилляров (Петренко Л Г, 1986)

Изменения площади обменной поверхности определяются динамикой суммарной длины капилтяров и их диаметра Значения данного параметра в 1мм" ткани ГП уменьшаются в пожилом и/или старческом возрасте, относительно людей 1-го и/или 2-го зрелого возраста в 1,3 - 1,5 раза Он вычислен для функционально активных микрососудов, маркированных ЩФ Данный фермент, являясь маркером проницаемости капитляров (Нигш'кег О й а1, 1974, Ногеку 5 , Ногека М , 1987), характеризует трансэндотелиачьный обмен и выявляется только в функционально активных капиллярах (Мотавкин П А и соавт, 1983), а значит в определенной степени отражает интенсивность обменных процессов между кровью и нервной тканыо (Мотавкин П А и соавт, 1983)

Другим интегральным показателем функциональных возможностей обменного звена МЦР является объем капиллярного русла в 1 мм" ткани мозга В аммоновом роге при старении емкость обменного звена МЦР, а значит, и объем депонированной в нем крови, либо не изменяется, либо уменьшается только у людей старческого возраста При этом уровень снижения составляет лишь 1516% от соответствующих показателей у людей 1-го зрелого возраста

Тенденция к стабилизации объема обменного звена МЦР может служить доказательством существенных адаптивных возможностей КР гипиокампа Подтверждением этому служат возрастные изменения количества крови, приходящееся на единицу поверхности капилляра По нашим данным этот показа-

Таблица 2

ВОЗРАСТНЫЕ ИЗМЕНЕНИЯ МОРФОМЕТРИЧЕСКИХ ПАРАМЕТРОВ КАПИЛЛЯРНОГО РУСЛА, МАРКИРОВАННОГО ЩФ, ГИППОКАМПА ЧЕЛОВЕКА

ОТДЕЛЫ МОЗГА ПАРАМЕТРЫ ВОЗРАСТ

1-й зрелый 2-й зрелый пожилой старческий

средняя часть гиппокампа поле CAI L 183,7±5,67 158,5±6,36' 129,6±4,94''2 115,8±2,9312'3

d 5,02±0,062 5,27±0,075' 5,88±0,12512 5,81±0,07912

S 2,92±0,077 2,63±0,191 2,39±0,095l 2,11±0,09212'3

V 3,64±0,141 3,49±0 332 3,52±0,098 3,06±0,0751,3

V, 1,26±0,026 1,32±0,045 1,47±0,03712 1,45±0,02612

поле САЗ L 168,9±5,02 142,8±4,22' 116,1±3,63''2 108,6±2,841-2

d 5,21 ±0,096 5,64±0,095' 6,12±0,0861'2 6,10±0,097'2

S 2,76±0,132 2,53±0,123 2,23±0,0961,2 2,08±0,0971>2

V 3,60±0,152 3,57±0,166 3,42±0,124 3,18±0,128

V, l,3±0,051 1,41±0,032' 1,53±0,023''2 1,53±0,031'-2

ЗИ L 154,7±5,09 110,5±3,12' 108,3±3,97' 92,5±5,13123

d 5,33±0,087 5,89±0,095' 5,97±0,125' 6,27±0,0971'23

S 2,59±0,088 2,05±0,0731 2,03±0,12l' 1,81±0,09812

V 3,45±0,156 3,01±0,106' 3,03±0,167 2,81±0,146'

V, 1,33±0,033 l,47±0,03l' l,49±0,02l' 1,55±0,022123

ножка гиппокампа ! поле CAI L 170,6±4,97 160,9±4,49 125,8±4,18'1 115,2±3,12w

d 5,22±0,097 5,28±0,117 6,02±0,95'2 6,17±0,09712

S 2,81±0,132 2,67±0,097 2,38±0,07812 2,23±0,076'2

V 3,66±0,212 3,53±0,132 3,58±0,124 3,45±0,145

V, 1,31±0,031 1,32±0 022 1,51±0,0171,2 1,54±0,02312

поле САЗ L 166,7±6,01 152,4±4,16 124,6±3,62''2 112,6±3,251АЗ

d 5,44±0,114 5,76±0,125' 6,21±0,0981,2 6,07±0,09612

S 2,85±0,145 2,76±0,075 2,43±0,066''2 2,15±0,078'2'3

V 3,87±0,197 3,97±0,089 3,77±0,115 3,26±0,146123

V, 1,36±0,022 1,44±0,019' l,55±0,02l'2 1,52±0,02212

ЗИ L 146,7±4,21 126,5±3,67' 96,1±4,37''2 90,9±3,6112

d 5,62±0,087 5,72±0,086 6,24±0,095'2 6,21±0,08512

S 2,58±0,092 2,27±0,076' 1,88±0,098''2 1,77±0,1121,2

V 3,61±0,176 3,25±0,179 2,94±0,147' 2,75±0,17312

V, 1,40±0,034 1,43±0,021 1,56±0,01912 1,55±0,01112

Примечание 1 ЗИ - зубчатая извилина гиппокампа, 2 Ь - суммарная длина (плотность) капиллярного русла в 1 мм3 ткани (мм), (1 - средний диаметр (мкм), 5 - площадь обменной поверхности капилляров в 1 мм3 (мм2), V - объем капиллярного русла в 1 мм3 ткани (мм3 х 103), V, - кол-во крови, приходящееся на единицу поверхности капилляра (мм3 / мм2 х 103), 3 Обозначения достоверности такие же, как и в таблице № 1

тсль характеризуется увеличением во всех изученных отделах ГП Описанные изменения и в собственно ГП, и в ЗИ составляют 11-18%

Согласно адаптационно-регуляторной теории В В Фролькиса (1991), «благодаря деятельности моз1 а в ходе возрастного развития мобилизуются приспособительные механизмы, направленные на увеличение продолжительности жизни» - процессы витаукта Состояние мозга определяет проявления компенсаторных реакций на уровне целостного организма, однако и в самом мозге развиваются процессы витаукта Вполне вероятно, что представленные особенности возрастных изменений морфометрических показателей капилляров ГП отражают компенсаторно-приспособительный процесс в данном отделе головного мозга

По нашему мнению, возрастное увеличение емкостных характеристик капиллярного русла (диаметра капилляров, объема крови, приходящейся на единицу поверхности капилляра в 1 мм3) и, как результат, относительную стабилизацию значений объема КР нужно анализировать с позиций витаукта С другой стороны, с увеличением диаметра снижается скорость кровотока по капиллярам, а, значит, замедляются и обменные процессы (Чернух А М и соавт , 1984) Об этом же свидетельствует возрастное уменьшение усредненных показателей активности ЩФ в эндотелии микрососудов, что опосредованно указывает на снижение интенсивности обменных процессов при старении (Черток В М, 1985) Увеличение емкостных параметров капилляров может являться и маркером хронического нарушения кислородного метаболизма (МаиЪеиэ РМ е1 а1, 1994) что, в свою очередь, может рассматриваться в качестве морфологической основы развивающейся с возрастом хронической циркуляторной гипоксии нервной ткани и связанной с ней гибелью части нейронов

Обобщая морфометрическое исследование компонентов системы «нейрон - глия - капилляр», можно констатировать, что в процессе старения происходит уменьшение линейных параметров КР с одновременным компенсаторным приростом его емкостных характеристик Вероятно, данную адаптационную реак-

цию нельзя признать полностью адекватной, так как она протекает одновременно с уменьшением числа нервных клеток во всех изученных компартмен-тах ГП

Параллелизм возрастной редукции церебральных капилляров и потери нейронов не позволяет рассматривать их гибель с позиции исключительно ишемического некроза Скорее всего, центральную роль в этом процессе играет апоптоз Как известно, механизмы апоптоза включаются тогда, когда вредное воздействие недостаточно сильно, чтобы вызвать некроз В этом случае апоптоз является своеобразной защитой от массовой гибели клеток Организм отвечает потерей небольшого числа клеток, чтобы последствия патологических воздействий оказались не так велики (Гусев Е И , Скворцова В И , 2001) Вполне вероятно, что возрастное уменьшение количества нейронов на фоне циркуляторной гипоксии можно рассматривать как программированную гибель какого-то числа нервных клеток Таким путем может быть достигнут определенный баланс между количественными характеристиками и функциональными возможностями капиллярного русла, с одной стороны, и количеством, активностью и метаболическими потребностями нейронов - с другой

Таким образом, три главных компонента системы «нейрон - глия - капилляр» в ГП функционируют и инволюционируют в рамках тесных структурно-функциональных взаимосвязей, которые во многом обусловлены особенностями кислородного метаболизма (Мотавкин П А и соавт, 1983, Шемяков С Е, 2003) В тоже время, метаболические реакции с использованием кислорода являются одними из основных генераторов свободнорадикальных повреждений (Биленко М В , 1989, Владимиров Ю А , 2000) Нами было проведено углубленное изучение процессов ПОЛ в ГП человека при старении

Результаты исследования показали, что по мере старения в ГП происходит накопление продуктов ПОЛ (табл 3) Установленная закономерность касается, прежде всего, первичных, вторичных, конечных продуктов ПОЛ в гепта-новой фазе липидного экстракта и конечных изопропанол растворимых липо-

перекисей Уровень названных продуктов ПОЛ прямо соотносится с возрастом человека и увеличивается в старческом возрасте относительно зрелого возраста в 2 - 4 раза Нарастание продуктов ПОЛ, сильно коррелирует в ГП с уменьшением числа нейронов (г = -0,61 - -0,72, р<0,05) и увеличением глиалыгого индекса (г = 0,63, р<0,05) Это напрямую соотносится с «перскисной гипотезой» гибели клетки (Владимиров 10 А , Арчаков А И , 1972) Одновременно, возрастные изменения глиальной гпотности не имеют достоверных корреляционных связей с динамикой накопления ПОЛ Это подтверждает вывод о том, что глия более устойчива к свободнорадикальным процессам, чем нейроны (Cafe С et al, 1995)

Таблица 3

ВОЗРАСТНЫЕ ИЗМЕНЕНИЯ СОДЕРЖАНИЯ ПРОДУКТОВ ПОЛ, ТБК-РЕАКТИВНЫХ ПРОДУКТОВ И ОКИСЛЯЕМОСТИ ЛИПИДОВ in vitro В ГИППОКАМПЕ ЧЕЛОВЕКА

ПАРАМЕТРЫ ВОЗРАСТ

1-й зрелый 2-й зрелый пожилой старческий

Г1 0 227±0,059 0,419±0,085 0,483±0,049' 0,591±0,051'

Г2 0,085±0,021 0,218±0,047' 0,234±0,052' 0 216±0,044'

Гк 0,037±0,012 0,108±0,036 0,091±0,028 0,109±0,0181

И1 0,406±0,021 0,441±0 011 0,542±0,03б'2 0,601±0,04612

И2 0,186±0,035 0,23 6±0,033 0,121±0,0382 0,077±0,00б'2

Ик 0,037±0,007 0,026±0 004 0,069±0,0092 0Л01±0,01112

ТБК 1 5±0,04 1,3±0,24 0,7±0,09' 0,7±0,12'

OK 32,9±4,52 70,5±27,95 140,4±39,71 123,0±6,34'

Примечание 1 Содержание первичных, вторичных и конечных продуктов ПОЛ представлено в виде индексов окисления (Е232/Е220, Е278/Е220 и Е400/Е220, соответственно), 2 Г1, И1 -обозначение гептан- и изопропанол-растворимых диеновых коньюгатов, соответственно (первичные продукты ПОЛ), 3 Г2, И2 - обозначение гептан- и изопропанол-растворимых кетодиенов и сопряженных триенов (вторичные продукты ПОЛ), 4 ГК, ИК - обозначение гептан- и изопропанол-растворимых шиффовых оснований (конечные продукты ПОЛ), 5 ТБК-уровень веществ, реагирующих с 2-тиобарбитуровой кислотой (Е532 х 10'3/мг) 6 OK -окисляемость липидов выражена в %, 7 Обозначения достоверности такие же, как в таблице №1

В динамике старения человека отмечается существенное увеличение чувствительности липидов нервной ткани ГП к оксидативному стрессу Это проявляется выраженным нарастанием окисляемости липидов ГП in vitro, которая достигает максимальных значений в старших возрастных группах У пожилых

людей отмечается более чем 4-х кратное увеличение окисляемости липидов ГП по сравнению с группой 1-го зрелого возраста

Вероятной причиной активации процессов ПОЛ и нарастания чувствительности нервной ткани к оксидативному стрессу (индукция ПОЛ m vitro) является дисбаланс в системе антиоксидантной защиты (Шемяков С Е, 2003) По всей видимости, в ГП человека с возрастом происходит сбой динамического равновесия между ПОЛ и антиоксидантной защитой Продукты ПОЛ обусловливают нарушение активности ферментов цикла трикарбоновых кислот и длинного пути биологического окисления (Биленко М В , 1989) Кроме того ПОЛ способствует повреждению и инволюции капиллярного русла (Надиров Н К, 1991, Михайлова Е В , 2000) В связи с этим важно подчеркнуть, что нами было установлено уменьшение линейных размеров капиллярного русла с компенсаторным увеличением его емкостных характеристик на фоне возрастного накопления продуктов ПОЛ в ГП

Из всего вышеизложенного следует, что в ГП человека при старении происходит ряд морфологических и биохимических сдвигов, характеризующихся гетеротопностью и гетерохронностью Они могут лежать в основе возрастных функциональных нарушений как самого ГП, так и морфофункционально связанных с ним структур

ВЫВОДЫ.

1 В гиппокампе человека с возрастом происходит гетерохронная потеря нервных клеток, увеличивающаяся в ряду, зубчатая извилина поле САЗ поле CAI

2 На фоне падения нейрональной плотности в большинстве компартмен-тов гиппокампа у людей 2-го периода зрелого и пожилого возраста наблюдается компенсаторное увеличение площади нейронов, сменяющееся ее уменьшением у людей старше 75 лет

3 Возрастные изменения суммарной плотности глиальных клеток в изу-

ченных структурах «старой коры» являются разнонаправленными В аммоно-вом роге происходит увеличение чисча глиоцитов (на 85%), тогда как в зубчатой извилине наблюдается его уменьшение (на 15-22%)

4 В собственно гиппокампе у людей зрелого возраста наблюдается преобладание оли1 одендроцитов над другими видами глиальных клеток, которое еще больше увеличивается с возрастом

5 Снижение числа нервных клеток и параллельный заместительный 1ли-оз обусчовливают возрастное увеличение глиального индекса в собственно гиппокампе Степень прироста глиального индекса в аммоновом роге на уровне ножки в 2,5-3,5 раза превосходит таковую на уровне его средней части В зубчатой извилине человека в процессе старения глиальный индекс меняется незначительно

6 Возрастное уменьшение линейных параметров капиллярного русла в гиппокампе в 1,3-1,7 раза происходит с одновременным компенсаторным приростом его емкостных характеристик на 11-18%

7 При старении человека в гиппокампе происходит усиление процессов липопсроксидации, проявляющееся 2-4 кратным приростом продуктов ПОЛ Установленная закономерность касается, прежде всего, первичных, вторичных, конечных продуктов в гептановой фазе липидного экстракта и конечных изо-пропанол растворимых липоперекисей

8 Возрастное увеличение показатетя окисляемости липидов и, как следствие, накопление продуктов ПОЛ является одной из причин морфологических изменений в гиппокампе человека Это подтверждается обратной корреляционной зависимостью морфометрических показателей (количество нейронов, суммарная длина капилляров) с изменениями содержания продуктов липоперокси-дации

СПИСОК РАБОТ, ОПУБЛИКОВАННЫХ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ.

1 Саркисян К Д, Шемяков С Е Современная классификация гиппокампа человека//Морфология -2006 -Т 129,№4.-С 110

2 Шемяков С Е , Саркисян К Д Возрастная динамика морфометрических показателей головного мозга человека // Морфология - 2006 - Т 129, №4 -С 142

3 Шемяков С Е, Саркисян К Д Регионарные особенности и возрастные изменения капиллярного русла ГП человека // Астраханский медицинский журнал -2007 -Т 2, №2 - С 209-210

4 Саркисян К Д Морфологические проявления компенсаторных изменений в гиппокампе человека при старении // Вестник РГМУ - 2008 - № 5 - С 71-74

5 Шемяков С Е, Саркисян К Д Морфобиохимические изменения гиппокампа человека при старении // Морфология - 2008 - Т 133, № 4 - С 105

6 Шемяков С Е, Саркисян К Д Возрастные изменения нейронов гиппокампа человека // Материалы Международной конференции «Проблемы современной морфологии человека», посвященной 75-летию Б А Ники-тюка -Москва -2008 - С 117-119

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ

ГИ - глиальныи индекс

ГП - гиппокамп

ЗИ - зубчатая извилина

КР - капиллярное русло

МЦР - микроциркуляторное русло

ПОЛ - перекиспое окисление липидов

ТБК-тиобарбитуровая кислота

ЦНС - центральная нервная система

ЩФ - щелочная фосфатаза

Подписано в печать 08 10 2008 г

Печать трафаретная

Заказ №915 Тираж 100 экз

Типография «11-й ФОРМАТ» ИНН 7726330900 115230, Москва, Варшавское ш, 36 (499) 788-78-56 www autoreferal ru

 
 

Оглавление диссертации Саркисян, Карен Джаникович :: 2008 :: Москва

ВВЕДЕНИЕ.

Глава 1. Возрастные изменения нейро — глио — капиллярных взаимоотношений и процессов ПОЛ в гиппокампе человека (Обзор литературы).

1.1. Гиппокамп. Классификация, строение, функции.

1.2. Система «нейрон — глия - капилляр» в головном мозге.

1.2.1. Возрастные изменения морфометрических показателей нейронов в гиппокампе

1.2.2. Возрастные изменения морфометрических показателей глиальных клеток в гиппокампе.

1.2.3. Возрастные изменения морфометрических показателей капиллярного русла в гиппокампе.

1.3. Возрастные изменения процессов ПОЛ в головном мозге.

Глава 2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ.

2.1. Материал исследования.

2.2. Методы исследования.

Глава 3. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ.

3.1. Возрастные изменения нейро — глио — капиллярных взаимоотношений в гиппокампе человека.

3.1.1. Возрастные изменения морфометрических показателей нейронов в гиппокампе человека.

3.1.2. Возрастные изменения морфометрических показателей глиальных клеток в гиппокампе человека.

3.1.3. Возрастные изменения морфометрических показателей капиллярного русла в гиппокампе человека.

3.2. Возрастные изменения содержания продуктов липопероксидации в гиппокампе человека.

 
 

Введение диссертации по теме "Анатомия человека", Саркисян, Карен Джаникович, автореферат

В настоящее время существует необходимость междисциплинарного подхода к решению наиболее актуальных проблем медицинской науки. Одной из них, несмотря на большой накопленный материал, остается проблема структурно-функциональных преобразований нервной системы в онтогенезе.

Именно изучение интегративной деятельности нервной системы в норме и патологии является одним из приоритетных направлений фундаментальных медицинских исследований (Боголепов Н.Н. и соавт., 1999).

В последние десятилетия утвердилось положение о микроединице центральной нервной системы (ЦНС), как о совокупности нейрона с его ближайшим глиальным и микрососудистым (капиллярным) окружением (Мотавкин П.А. и соавт., 1983; Адрианов О.С., 1987; Семенова JI.K., 1989; Козлов В.И. и г соавт., 1994; Семченко В.В. и соавт., 1999; Турыгин В.В1 и соавт., 2001; Ше-мяков С.Е., 2003; Holton J.L. et al., 1997).

Не вызывает сомнений факт, что возрастные изменения; происходящие в головном мозге во многом'определяют изменения-организма в целом (Дильман В.М., 1987; Фролькис В.В., 1991). Именно старение ЦНС обуславливает j сдвиги в поведенческих неэмоциональных реакциях, нарушение памяти, снижение умственной и физической работоспособности, двигательной активности, возрастные изменения психики, сенсорных функций, регуляции внутренней среды организма и многое другое (Фролькис В.В., 1991; Hikosaka О., 1998; Martin W.R. et al., 1998; Munoz M., Insausti R., 2005; Gogtay N. et al., 2006 и др.).

Одной из структур головного мозга, играющих важную роль в реализации когнитивных функций является гиппокамп (ГП) (Боголепова И.Н., 1970, 1977, 1985; Отмахов^ А., 1993; Арушанян Э.Б., 1999; Sloviter R.S. et al., 1996; Saitoh О. et al., 2001; Isaacson R.L., 2002; Bartesaghi R., 2004; Czapinski P. et al., 2005; Munoz M., Insausti R., 2005; Gogtay N. et al., 2006). ГП является объектом пристального внимания кардиологов, эндокринологов, неврологов и геронтологов. Это связано с тем, что нейродегенеративные и сенильные поражения данного отдела головного мозга сопровождаются развитием когнитивных и аффективных расстройств при артериальной гипертонии, сахарном диабете, болезни Альцгеймера и «нормальном» старении человека (Peila R. et al., 2002; Schmidt R. et al., 2004; Vincent A.M. et al., 2004).

Во многих работах показано, что ГП имеет отношение к механизмам эмоций и памяти, к образованию временных связей и регулированию висцеральной активности, к формированию мотиваций и является одной из структур корково-подкорковой интегрирующей системы. Доказана роль гиппокам-па в процессе обучения (Гамбарян JI.C., Коваль И:Н., 1972; Виноградова 0;С., 1975; Zaidel D.W., 1999; Munoz М., Insausti R., 2005). Однако целый ряд вопросов, касающихся морфологии гиппокампа, остается не решенным. Отсутствуют работы, с комплексной морфометрической характеристикой всех составляющих структурно-функциональной единицы ЦНС (нейронов, глиаль-ных клеток, капилляров) во взаимосвязи между собой, отражающей их топические особенности в гиппокампе. В тоже время, именно возрастные изменения нейро-глио-капиллярных взаимоотношений составляют структурную основу поддержания функций вЦНС при старении (Фролькис ВВ;, 1991; Гусев Е.И., Скворцова В.И., 2001).

В этой связи, количественные и качественные изменения в системе «нейрон-глия-капилляр», происходящие на поздних этапах онтогенеза, можно рассматривать как некую «форму», отражающую неизбежно меняющееся внутреннее содержание. Последнее выражается, прежде всего, в возрастных сдвигах биохимических процессов, протекающих в нервной ткани.

Хорошо известно, что одной из ведущих клеточных теорий старения является свободнорадикальная; теория (Harman D., 1981; Mattson М.Р: et al., 2002; Favier A., 2006). Она основывается на том, что в процессе восстановления кислорода происходит образование активных и токсических интермедиа-тов (Обухова Л.К., Эмануэль Н;М., 1983; Биленко М.В., 1989; Ланкин В.З. и соавт., 2000), которые при взаимодействии с липидами приводят к их пере-кисному окислению (Владимиров Ю.А., Арчаков А.И., 1972; Владимиров Ю.А., 2000).

В настоящее время именно перекисное окисление липидов (ПОЛ) привлекает наибольшее внимание, как неспецифический механизм повреждений на клеточном, тканевом и органном уровнях (Шемяков С.Е., 2003; Butterfield D.A., 2002; Mattson М.Р. et al., 2002; Mariani E. et al., 2005; Favier A., 2006; Szeto H.H., 2006).

Применительно к головному мозгу, многие авторы отмечают роль сво-боднорадикальных реакций, вообще, и ПОЛ, в частности, в процессе «нормального» старения нервной ткани и в развитии нейродегенеративных заболеваний (Михайлова Е.В., 2000; Шемяков С.Е., 2003; Волчегорский И.А. и соавт., 2003, 2005; Martin W.R. et al., 1998; Mariani E. et al., 2005; Favier A., 2006; Szeto H.H., 2006). Известно, что чрезмерная активация свободно-радикального окисления сопровождается широким вовлечением нейронов архикортекса в. процессы апоптоза, что ведет к снижению объема ГП и сопутствует формированию когнитивных дисфункций (Lobnig В.М. et al.,2005). Вместе с тем, мы не встретили в литературе данных о возрастных сдвигах процессов липоперок-сидации в гиппокампе человека. Отсутствуют сведения о взаимосвязи процессов ПОЛ с морфологическими изменениями и морфометрическими характеристиками нейронов, глиоцитов и капилляров в гиппокампе при старении.

ЦЕЛЬ ИССЛЕДОВАНИЯ.

Установить закономерности изменений в системе "нейрон - глия - капилляр" и охарактеризовать их связь с процессами перекисного окисления липидов в гиппокампе человека при старении.

ЗАДАЧИ ИССЛЕДОВАНИЯ.

1. Исследовать морфометрические показатели нейронов в различных отделах гиппокампа человека при старении.

2. Изучить возрастные изменения количества глиальных клеток (астроцитов, олигодендроцитов и микроглиоцитов) в гиппокампе человека.

3. Исследовать особенности капиллярного русла гиппокампа у людей зрелого, пожилого и старческого возрастных периодов.

4. Определить содержание продуктов перекисного окисления липидов в гиппокампе человека с учетом изучаемых периодов онтогенеза.

5. Выявить функциональные взаимосвязи между возрастными изменениями морфометрических показателей нейронов, глиальных клеток, особенностями кровоснабжения гиппокампа и процессами липопероксидации в нем.

Научная новизна. Впервые проведено комплексное морфометрическое исследование каждого из компонентов системы "нейрон — глия - капилляр" в гиппокампе человека. Установлено, что интенсивность возрастного падения нейрональной плотности в аммоновом роге в 1,2-1,8 раза больше, чем в зубчатой извилине. Данный процесс сопровождается компенсаторной гипертрофией нейронов и заместительным глиозом. Впервые установлено, что возрастное увеличение суммарной глиальной плотности в собственно гиппокампе достигает 85%. Основной вклад в этот процесс вносят олигодендроциты, процентное содержание которых превалирует над астро- и микроглией. Впервые показано, что в зубчатой извилине глиальная плотность уменьшается с возрастом на 21,2-21,9%, при этом доминирующим видом глиоцитов в зубчатой извилине являются астроциты. Впервые показано, что в процессе старения в гиппокампе человека на фоне снижения линейных параметров капиллярного русла происходит компенсаторное увеличение его емкостных характеристик. Описаны топические особенности возрастных изменений морфометрических показателей ГП, установлены корреляционные взаимосвязи между компонентами системы «нейрон-глия-капилляр». Впервые исследованы особенности процессов перекисного окисления липидов в гиппокампе людей разного возраста. Показано, что с возрастом уменьшается устойчивость липидов ГП к оксида-тивному стрессу. Впервые, на основании полученных результатов, установлены онтогенетические взаимоотношения морфологических изменений с процессами липопероксидации гиппокампа, что позволяет составить комплексное представление о возрастных преобразованиях в гиппокампе человека и дополняет сведения о механизмах старения головного мозга.

Практическая и теоретическая ценность работы.

Работа носит фундаментально - теоретический характер.

На основании анатомического, гистологического, гистохимического, биохимического и статистического исследования установлены закономерности онтогенетических сдвигов и их топические особенности в гиппокампе человека.

Результаты проведенного морфо-гисто-биохимического исследования значительно дополняют и расширяют существующие представления о структуре и функции системы "нейрон - глия — капилляр" в/Типпокампе человека и могут быть использованы в учебном процессе на кафедрах анатомии, гистологии, биохимии, физиологии, неврологии и других.

Сведения о механизмах старения нервной системы могут использоваться при подготовке студентов на кафедрах медико-биологического профиля и врачей - курсантов на курсах повышения квалификации.

Выявленные взаимосвязи морфогистохимических изменений с процессами липопероксидации в гиппокампе могут быть использованы как теоретическая основа для разработки новых подходов к профилактике и терапии ней-родегенеративных заболеваний и сенильных расстройств.

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 6-научных работ (в том числе 4 работы — в центральных журналах).

Апробация работы. Основные положения работы доложены на VIII Конгрессе: Международной Ассоциации морфологов (Орел, 2006), на международной научной конференции «Структурные преобразования органов и тканей на этапах онтогенеза: в норме и. при воздействии антропогенных факторов. Экология; и здоровье, населения. Актуальные проблемы биологии и медицины» (Астрахань, 2007); на расширенном заседании кафедры анатомии человека и гистологии ЕГМУ (2007, 2008); на научной конференции; посвященной 100-летию со дня: рождения.' академика АМН СССР Жданова Дмитрия Аркадьевича (Москва, 2008); на международной' научно-практической конференции. «Проблемы.современной морфологии человека» (Москва, 2008).

Основные положения диссертации, выносимые па защиту:.

1. В процессе старения- в гиппокампе человека наблюдается гетеро-хронное и гетеротопное уменьшение, количества нервных клеток с компенсаторным- увеличением площади- профильного поля нейроцитов. Эти: процессы наиболее выраженыш поле:€А1?собственно:ЕЖ

2. Уменьшение числа нейронов в аммоновом роге сопровождается заместительным глиозом, связанным с пролиферацией олигодендроцитов; Нарастание глиального индекса: в собственногЕШпроисходит на фоне уменыие-ния^суммарного'числа глиоцитов в зубчатой извилине:

3. Морфологические: проявления? нейрональной инволюции гиппо-кампа человека сопровождаются нарастающей редукциейькапиллярного русла с компенсаторным увеличением емкостных параметров резидуальных капилляров.

4. Увеличение; чувствительности нервной? ткани к оксидативному стрессу и нарастание уровня; продуктов ПОЛ является одной; из причин морфологических изменений в гиппокампе человека при старении.

 
 

Заключение диссертационного исследования на тему "Взаимосвязь морфогистохимических изменений с процессами липопероксидации в гиппокампе человека при старении"

ВЫВОДЫ.

1. В гиппокампе человека с возрастом происходит гетерохронная потеря нервных клеток, увеличивающаяся в ряду: зубчатая извилина поле САЗ -> поле СА1.

2. На фоне падения нейрональной плотности в большинстве компартментов гиппокампа у людей 2-го периода зрелого и пожилого возраста наблюдается компенсаторное увеличение площади нейронов, сменяющееся ее уменьшением у людей старше 75 лет.

3. Возрастные изменения суммарной плотности глиальных клеток в изученных структурах «старой коры» являются разнонаправленными. В аммоновом роге происходит увеличение числа глиоцитов (на 85%), тогда как в зубчатой извилине наблюдается его уменьшение (на 15-22%).

4. В собственно гиппокампе у людей зрелого возраста наблюдается преобладание олигодендроцитов над другими видами глиальных клеток, которое еще больше увеличивается с возрастом.

5. Снижение числа нервных клеток и параллельный заместительный глиоз обусловливают возрастное увеличение глиального индекса в собственно гиппокампе. Степень прироста глиального индекса в аммоновом роге на уровне ножки в 2,5-3,5 раза превосходит таковую на уровне его средней части. В зубчатой извилине человека в процессе старения глиальный индекс меняется незначительно.

6. Возрастное уменьшение линейных параметров капиллярного русла в гиппокампе в 1,3-1,7 раза происходит с одновременным компенсаторным приростом его емкостных характеристик на 11-18%.

7. При старении человека в гиппокампе происходит усиление процессов липопероксидации, проявляющееся 2 — 4 кратным приростом продуктов ПОЛ. Установленная закономерность касается, прежде всего, первичных, вторичных, конечных продуктов в гептановой фазе липидного экстракта и конечных изопропанол растворимых липоперекисей.

8. Возрастное увеличение показателя окисляемости липидов и, как следствие, накопление продуктов ПОЛ является одной из причин морфологических изменений в гиппокампе человека. Это подтверждается обратной корреляционной зависимостью морфометрических показателей (количество нейронов, суммарная длина капилляров) с изменениями содержания продуктов липопероксидации.

 
 

Список использованной литературы по медицине, диссертация 2008 года, Саркисян, Карен Джаникович

1. Автандилов Г.Г. Введение в количественную патологическую морфологию. — М.: Медицина, 1980. 216с.

2. Автандилов Г.Г. Медицинская морфометрия: Руководство. — М.: Медицина, 1990.-384с.

3. Адрианов О.С. О принципах организации интегративной деятельности мозга. М.: Медицина, 1976. - 279с.

4. Адрианов О.С. Структурно-функциональные основы сложных форм высшей нервной деятельности // Журн. высш. нервной деятельности. — 1986. — Т. 36, №2.-С. 265-276.

5. Адрианов О.С. О теоретических аспектах онтогенеза мозга // Физиол. журн. СССР. 1987. - Т. 73, № 2. - С. 184-189.

6. Амунц В.В., Федотова К.Ф. Структурная организация некоторых подкор-ково-стволовых образований мозга человека в процессе старения // Журн. невропатологии и психиатрии. 1987. - Т. 87, №7. - С. 979-982.

7. Антонов В.Ф. Биофизика мембран // Сорос, образоват. журн. 1996. - № 6. -С. 4-12.

8. Антонова A.M. Нейроархитектоника и межнейронные связи как основа со-матотопической организации коры мозга человека // Архив анатомии, гистологии и эмбриологии. 1981. - Т. 80, № 3. — С. 18-27.

9. Антонова A.M. Пространственная организация и взаимоотношение структурных элементов I слоя неокортекса // Архив анатомии, гистологии и эмбриологии. 1984. - Т. 86, № 5. - С. 16-24.

10. Ю.Арушанян Э.Б. Хронофармакология гиппокампа // Эксперим. и клинич. фармакология. 1999. - Т. 62, № 6. - С. 3-10.

11. Ахунжанов Р. А., Касым-Ходжаев И.К. Изменения пирамидных нейронов в слое III поля 8 коры большого мозга в постнатальном онтогенезе // Морфология. 1998. - Т. 113, вып. 3. - С. 20.

12. Бабик Т.М. Кровеносное русло продолговатого мозга человека в онтогенезе: Автореф. дис. . канд. мед. наук. Оренбург, 1998. - 20с.

13. Банин В.В. Механизмы обмена внутренней среды. — М.: Изд-во РГМУ. — 2000.-278с.

14. Батуев А.С., Бабминдра В.П. Системный принцип организации нейронов, осуществляющих корковое торможение // Физиол. журн. 1989. — Т. 35, № З.-С. 84-91.

15. Бейер Э.В., Локтев Н.А., Арушанян Э.Б. Гистохимические и морфологические изменения в различных областях крыс при плавательном стрессе // Рос. физиологии, журн. им. И. М. Сеченова. 2001. - Т. 87, № 3. - С. 314318.

16. Беличенко П.В. Морфометрическая характеристика непирамидных нейронов поля СА1 гиппокампа мозга человека // Морфология. — 1993. — Т. 104, № 1-2.-С. 33-40.

17. Бериашвили Р.В. Морфологические особенности отдельных форм глиоцитов и глиоцитарно-нейрональных взаимоотношений в процессе старения: Автореф. дис. . канд. мед. наук. Тбилиси, 1990. 27с.

18. Бизольд Д. Закономерности ранних этапов развития мозга // Роль сенсорного притока в созревании функции мозга. М.; 1987. - С. 5-10.

19. Биленко М.В. Ишемические и реперфузионные повреждения органов. М.: Медицина, 1989. - 367с.

20. Блинков С.М., Моисеев Г.Д. Определение плотности капиллярной сети в органах и тканях человека и животных независимо от толщины среза // Докл. АН СССР. Сер. биол. 1961. - Т. 140, вып. 2. - С. 456^168.

21. Блинков С.М., Глезер И.И. Мозг человека в цифрах и таблицах. Л: Медицина, 1964.-471с.

22. Боголепова И.Н. Строение и развитие гиппокампа человека в пренатальном онтогенезе // Журн. невропатологии и психиатрии. 1970. - Т. 70, № 6. - С. 857-863.

23. Боголепова И.Н. Онтогенез мозга человека и обезьяны (Лимбической области, энторин. области коры, гиппокампа и гипоталамуса): Автореф. дис. . д-ра мед. наук.-М., 1977.-43с.

24. Боголепова И.Н. Цитоархитектонические критерии индивидуальной вариабельности мозга человека // Морфология. — 2000. Т. 117, № 3. - С. 24.

25. Боголепова И.Н., Амунц В.В., Оржеховская Н.С., Малофеева Л.И. Некоторые цитоархитектонические особенности старения корковых и подкорковых структур мозга человека // Развивающийся мозг: Сб. науч. тр. Вып. 13. -М., 1984.-С. 27-29.

26. Боголепова И.Н., Амунц В.В., Оржеховская Н.С., Малофеева Л.И. Некоторые закономерности структурных изменений коры и подкорковых образований мозга человека в процессе старения // Журн. невропатологии и психиатрии. 1985. - Т. 85, вып. 7. - С. 965-968.

27. Боголепова И.Н., Малофеева Л.И. и соавт. Принципы индивидуальной вариабельности мозга человека // Морфология. 2008. - Т. 133, № 4. - С. 59.

28. Брускина Л.И. Реактивность нейроглии при экспериментальном аллергическом энцефаломиелите: Автореф. дис. канд. мед. наук. — М., 1976. 19с.

29. Брюккнер Г., Мюллер Д., Бизольд Д. Цитохимическое исследование глика-новых компонентов коры головного мозга крыс в процессе начальной дифференцировки в пренатальном периоде // Роль сенсорного притока в созревании функции мозга. — М.; 1987. С. 11—14.

30. Васильева В.А. Ансамблевая организация зрительной и задней ассоциативной области коры большого мозга человека в онтогенезе // Тез.докл. XI съезда анатомов, гистологов и эмбриологов. — Полтава, 1992. С. 43.

31. Виноградова О.С. Гиппокамп и память. М.: Наука, 1975. — 333с.

32. Владимиров Ю.А., Арчаков А.И. ПОЛ в биологических мембранах. М.: Наука, 1972.-251с.

33. Владимиров Ю.А. Свободные радикалы в биологических системах // Сорос. образоват. Журн. 2000. - Т. 6, № 12. - С. 13-19.

34. Войно-Ясенецкий М.В., Жаобтинский Ю.М. Источники ошибок при морфологических исследованиях. Л.: Медицина, 1970. — 319с.

35. Волков В.И., Полежаев А.А., Чернавский Д.С. Роль структурных свойств плазматической мембраны и процессов свободнорадакального окисления липидов в регуляции метаболизма в норме и патологии // Сб. науч. тр. М., 1982.-233с.

36. Волчегорский И.А., Налимов А.Г., Яровинский Б.Г., Лифшиц Р.И. Сопоставление различных подходов к определению продуктов перекисного окисления липидов в гептан-изопропанольных экстрактах крови // Вопр. мед. химии. 1989.-№1.-С. 127-131.

37. Волчегорский И.А., Долгушин И.И., Колесников О.Л., Цейликман В.Э. Экспериментальное моделирование и лабораторная оценка адаптивных реакций организма. Челябинск: Изд-во ЧГПУ, 2000. — 167с.

38. Волчегорский И.А., Шемяков С.Е. и соавт. Возрастная динамика липопе-роксидации в различных отделах центральной нервной системы // Физиология человека. 2005. - Т. 31, № 2. - С. 108-115.

39. Гамбарян JI.C., Коваль И.Н. Гиппокамп // Успехи физиол. наук. 1972. — Т. 3, № 2. - С. 21-51.

40. Голиков А.П., Бойцов С.А. и соавт. Свободнорадикальное окисление и сердечно-сосудистая патология: коррекция антиоксидантами // Лечащий врач. -2003.-№4.-С. 70-74.

41. Греченко Т.Н. Нейрофизиологические механизмы памяти. — М.: Наука, 1979.-163с.

42. Гусев Е.И., Скворцова В.И. Ишемия головного мозга. М.: Медицина, 2001.-327с.

43. Демченко И.Т. Кровоснабжение бодрствующего мозга. М.: Наука. 1983. -173с.

44. Дильман В.М. Четыре модели медицины. — Л.: Медицина, 1987. 288с.

45. Дойников Б.С. К сравнительной анатомии аммонова рога. В кн.: Избранные труды по нейроморфологии и невропатологии. — М.: Медицина, 1955. -С. 19-58.

46. Долгих В.Т., Кочетов A.M. и• соавт. Активация процессов перекисного окисления липидов в постреанимационном периоде // Анестезиология и реаниматология. 1988. - № 1. - С. 24-29.

47. Жалилов Ш.Х. Развитие пирамидных клеток в поле 8 III слоя большого мозга человека в постнатальном онтогенезе // Мат. 3-го съезда анатомов, гистологов, эмбриологов РФ. — Тюмень, 1994. — С. 72.

48. Каган В.Е., Орлов О.Н., Прилико Л.Л. Проблема анализа эндогенных продуктов перекисного окисления липидов // Итоги науки и техники ВИНИТИ. Сер. биофизика. - 1986. - Т. 18. - С. 1-136.

49. Касым-Ходжаев И.К., Тухтабаев И.Т. Цитоархитектоники зрительной коры (поле 17) в постнатальном онтогенезе // Материалы 3-го съезда анатомов, гистологов, эмбриологов Российской Федерации. — Тюмень, 1994. — С. 96.

50. Касым-Ходжаев И.К., Хатамов А.И. Возрастные, индивидуальные изменения площади тел нейронов слоев коры (поле 28) обонятельного мозга у человека в постнатальном онтогенезе // Российские морфологические ведомости. 2001.-№ 1-2.-С. 132-133.

51. Квитницкий-Рыжов Ю.Н., Матвиенко А.В. Современные представления о нейроглии головного мозга и ее реакциях на воздействие химических факторов // Журн. Невропатологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 1988. -Т. 88, №7.-С. 134-145.

52. Кладкевич Е.Б. Морфологический контроль повреждения нейронов СА1 области гиппокампа под воздействием глутамата in vitro: Автореф. дис. . канд. мед. наук. М., 1994. 25с.

53. Климов А.Н., Никульчева Н.Г. Липиды, липопротеиды и атеросклероз. -Спб. : Питер, 1995. 304с.

54. Клосовский Б.Н., Космарская Е.Н. Деятельное и тормозное состояние мозга. М.: Медгиз, 1961. - 412с.

55. Коваль И.Н., Саркисов Г.Т., Гамбарян Л.С. Септо-гиппокампальная система и организация поведения. — Ереван: Изд-во АН Армянской ССР, 1986. — 127с.

56. Козлов В.И. Морфофункциональные преобразования в системе микроциркуляции на разных этапах онтогенеза // Физиология человека. 1983. — Т. 9,№ 1.-С. 43-49.

57. Козлов В.И., Мельман Е.П. и соавт. Гистофизиология капилляров. — Спб.: Наука, 1994.-232с.

58. Козлов Ю.П. Структурно-функциональные аспекты ПОЛ в биологических мембранах // Липиды: структура, биосинтез, превращения и функции: Сб. статей. М., 1977. - С. 80-92.

59. Кольс О.Р., Ревин В.В., Свердлова Е.А., Федоров Г.Е. Участие антиокси-дантов в регуляции процессов распространения возбуждения // Биоантиокислители в регуляции метаболизма в норме и патологии: Сб. науч. тр. — М., 1982.-С. 100-112.

60. Косимходжаева Д.И. Изменения количества глиоцитов в разных слоях коры мозга (поля 17) в постнатальном онтогенезе // Морфология. 1998. — Т. 113, № 3. — С. 61.

61. Куприянов В.В. Спиралевидное расположение мышечных элементов в стенке кровеносных сосудов и его значение для гемодинамики // Архив анатомии, гистологии и эмбриологии. — 1983. — Т. 85, вып. 9. С. 46—54.

62. Куприянов В.В. Новое в изучении микроциркуляции // Чтения им. А.М.Чернуха. М., 1986. - С. 6-22.

63. Куприянов В.В. Старые и новые концепции ангиогенеза и васкулогенеза // Морфология. 1998. - Т. 113, № 3. - С. 67.

64. Куприянов В.В., Караганов Я.Л., Козлов В.И. Микроциркуляторное русло. -М.: Медицина, 1975. 216с.

65. Ланкин В.З., Тихадзе А.К., Беленков Ю.Н. Свободнорадикальные,процессы при заболеваниях сердечно-сосудистой системы // Кардиология. 2000. -Т. 40, №7.-С. 48-61.

66. Лемешко В.В., Никитченко Ю.В. и соавт. Перекисное окисление липидов биомембран и его ферментативная регуляция при старении крыс // Укр. биохим. журн. 1987. - Т. 59, № 2. - С. 50-57.

67. Лойда 3., Госсрау Р., Шиблер Т. Гистохимия ферментов: Пер. с англ. М.: Мир, 1982.-272с.

68. Ломакин А.В. Развитие сосудисто-капиллярной сети двигательных центров мозга человека и млекопитающих: Автореф. дис. . канд. мед. наук. — Владивосток, 1981. —28с.

69. Луппа X. Основы гистохимии. М.: Мир, 1980. - 343с.

70. Львовская Е.И., Волчегорский И.А., Шемяков С.Е., Лифшиц Р.И. Спектро-фотометрическое определение конечных продуктов перекисного окисления липидов // Вопр. мед. химии. 1991. -№ 4. — С.92-93.

71. Международная анатомическая терминология / Под ред. Л.Л. Колесникова. М.: Медицина, 2003. - 424с.

72. Меринг Т.А. Некоторые структурно-функциональные особенности гиппо-кампа // Успехи физиол. наук. — 1974. — Т. 5, № з. — с. 102—122.

73. Могильницкая Л.В., Прокофьев В.Н. и соавт. Влияние гипоксии на состояние мембран и перекисное окисление липидов в легких и крови крыс // Вопр. мед. химии. 1993. - Т. 39, № 6. - С. 34-36.

74. Моренков Э.Д., Петрова Л.П. Усиление пероксидации липидов в коре мозга крыс с возрастом, после пинеалэктомии и стресса // Цитология. — 1999. — Т. 41, №9.-С. 788.

75. Мотавкин П.А., Ломакин А.В., Черток В.М. Капилляры головного мозга. -Владивосток, 1983.- 140с.

76. Никитченко Ю.В. Ферментативня регуляция свободнорадикального окисления липидов при действии факторов, влияющих на скорость старения // Цитология. 1999. - Т. 41, № 9. - С. 788.

77. Пермяков Н.К., Хучуа А.В., Туманский В.А. Постреанимационная энцефалопатия. М.: Медицина, 1986. - 240с.

78. Петренко А.Г. Сравнительная характеристика капиллярного русла коры г височной доли большого мозга и сосцевидных тел гипоталамуса человека в; возрастном аспекте // Архив анатомии, гистологии1 и эмбриологии.— 1986. -Т. 91, вып. 2.-С. 10-13.

79. Резников К.Ю. Пролиферация и цитогенез клеток мозга позвоночных в нормальном развитии и при травме мозга: Автореф. дис. .д-ра биол. наук. -М., 1983.-45с.

80. Ройтбак А.И. Глия и ее роль в нервной деятельности. — СПб.: Наука, 1993. -351с.

81. Ряскова И.В. Методика импрегнации нервных клеток и кровеносных сосудов в веществе головного мозга // Архив анатомии, гистологии и эмбриологии. 1984. - Т. 86, № 5. - С. 97-99.

82. Сапин М.Р. Состояние и перспективы развития исследований в области анатомии человека // Архив анатомии, гистологии и эмбриологии. — 1990. — Т. 98, №2. -С. 5-11.

83. Сапожников Ф.Г., Доросевич А.Е. Гистологическая и микробиологическая техника. Смоленск: Изд-во САУ, 2000. — 476с.

84. Саркисов Д.С., Перов Ю.П. Микроскопическая техника: руководство. -М.: Медицина, 1996. 544с.

85. Свиридов А.В., Колесникова Л.И., Семенюк А.В. Перекисное окисление липидов в раннем онтогенезе // Бюл. Сиб. отд-ния АМН СССР. 1991. - № 1.-С. 44-47.

86. Семенова Л.К., Васильева В.А., Цехмистренко Т.А., Шумейко Н.С. Особенности ансамблевой организации,коры большого мозга человека от рождения до 20 лет // Архив анатомии, гистологии и эмбриологии. 1989. - Т. 97, № 12.-С. 15-24.

87. Семенченко И.И. Межклеточные взаимоотношения в процессе возрастных изменений и в условиях длительного иммобилизационного стресса //

88. Материалы 3-го съезда анатомов, гистологов, эмбриологов Российской Федерации. — Тюмень, 1994. С. 179.

89. Семченко В.В., Степанов С.С., Алексеева Г.В. Постаноксическая энцефалопатия. — Омск, 1999. 446с.

90. Сидорик Е.П., Баглей Е.А., Данко М.И. Биохемилюминисценция клеток при опухолевом процессе. Киев: Наук, думка, 1989. — 216с.

91. Сосунов А.А., Челышев Ю.А. Стволовая нервная клетка мозга // Успехи физиол. Наук. 2002. - Т. 33, № 1. - С. 17-28.

92. Старение мозга / Под ред. В.В. Фролькиса. — JL: Наука, 1991. 277с.

93. Телешева И.Б. Оксидативный стресс и морфогенез в спинном мозге на этапах старения человека: Автореф. дис. . д-ра мед. наук. Челябинск, 2008.-38с.

94. Туманян В.А. Активность нейронов гиппокампа и височной коры в процессе обучения. — Ереван: Изд-во АН Армянской ССР, 1988. 188с.

95. Турыгин В.В. Некоторые закономерности ангиоархитектоники коры прецентральной и постцентральной извилин полушарий большого мозга // Микроциркуляторное кровеносное русло нервной системы: Тр. каф. анатомии. Челябинск. - 1988. - С. 4-16.

96. Турыгин В.В., Шемяков С.Е., Бабик Т.М., Иванов А.Ю., Анопина Е.В. Микроциркуляторное русло головного мозга человека // Морфология. -1996.-Т. 109,№2.-С. 96.

97. Филимонов И.Н. Избранные труды М.: Медгиз, - 1974. - 340с.г

98. Чеботарев Е.Е., Барабой В.А., Дружинина Н.А. Окислительные процессы при гамма-нейронном облучении организма. Киев: Наук, думка. — 1986.-216с.

99. Чепелев Н.Н. Метод определения длины внутримозгового микроцирку-ляторного русла (по Блинкову-Моисееву ) // Вопр. нейрохирургии. — 1987. -№ 3. С. 49-52.

100. Чернух A.M., Александров П.Н., Алексеев О.В. Микроциркуляция. М.: Медицина, 1984.-429с.

101. Черток В.М., Ломакин А.В., Мирошниченко Н.В. Возрастные преобразования активности транспортных ферментов капилляров головного мозга человека // Развивающийся мозг: Сб. науч. тр. Вып. 16. М., 1987. — С. 111-113.

102. Чизмаджев Ю.А. Мембранная биология: от липидных бислоев до молекулярных машин // Сорос, образоват. журн. 2000. - Т. 6, № 8. - С. 12-17.

103. Шворак И.И. Морфология гемомикроциркуляторного русла- среднего мозга в онтогенезе: Автореф. дис. . канд. мед. наук. СПб, 1992. - 18с.

104. Шемяков С.Е. Взаимосвязь морфометрических показателей капиллярного русла с процессами перекисного окисления липидов в мозговых структурах зрительного анализатора человека при старении // Морфология. -2001.-Т. 120, №4.-С. 36-38.

105. Шемяков С.Е., Михайлова Е.В. Динамика морфогистохимических показателей и перекисного окисления липидов в процессе старения коры полушарий большого мозга человека // Морфология. — 2002. — Т. 121, № 1. — С. 31-33.

106. Шемяков С.Е., Турыгин В.В. и соавт. Морфобиохимические параллели при старении головного мозга человека // Морфология. 2002. - Т. 121, № 2-3.-С. 80-81.

107. Шемяков С.Е. Взаимосвязь морфогистохимических изменений с процессами липопероксидации в головном мозге человека при старении: Ав-тореф. дис. . д-ра мед. наук. М., 2003. 39с.

108. Шеффер В.Ф. Патология гиппокампа как один из возможных факторов в патогенезе некоторых деменций позднего возраста // Журн. Невропатолгии и психиатрии им. С.С. Корсакова. — 1976. — № 7. — С. 1032-1036.

109. Шумейко Н.С. Возрастные изменения цитоархитектоники сенсомотор-ной коры человека // Морфология. 1997. - Т. 111, № 2. — С. 31—34.

110. Яковенко В.А. Морфология капиллярной сети базальных ядер мозга человека // Микроциркуляторное кровеносное русло нервной системы: Тр. каф. анатомии. Челябинск, 1988. - С. 54-56.

111. Adibhatla R.M., Hatcher J.F., Dempsey R.J. Phospholipase A2, hydroxy 1 radicals, and lipid peroxidation in transient cerebral ischemia // Antioxid. Redox Signal. 2003. - Vol. 5, № 5. - P. 647-654.

112. Agrawal A., Shukla R., Tripath L. M., Pandey V. S. Permeability function related to cerebral microvessel enzymes during aging in rats // Int. J. Dev. Neurosch 1996. - Vol: 14, № 2. - P. 87-91.

113. Amador-Ortiz C., Ahmed Z., Zehr C., Dickson D.W.' Hippocampal sclerosis dementia differs from hippocampal sclerosis in frontal lobe degeneration // Acta• Neuropathol. 2007. - Vol. 113, № 3. - P. 245-252.

114. Anderson J.M., Hubbard B.M., Corhill G.R. et al. The effect of advanced old age on the neuron content of the cerebral cortex: Observation with an automatic image analyzer point counting method // J. Neurol. Sci. — 1983. Vol. 58. — P. 233-244.

115. Balaceanu C., Simion N., Adam G. et al. Neuromorphological study of the cerebral cortex and thalamus in the course of aging // Rom. J. Gerontol. And Geriart. 1981. - Vol. 2. - P. 105-109.

116. Bartesaghi R. Effect of early isolation on the synaptic function in the dentate gyrus and field CA1 of the guinea pig // J. Neurosci. 2004. — Vol. 14, № 4. — P. 482-498.

117. Bell M.A., Ball M.J. Morphometric comparison of hippocampal microvasculature in ageing and demented people: diameters and densities // Acta Neuropathol. 1981. - Vol. 53. -P. 299-318.

118. Betz A.L., Firth J., Goldstein G. W. Polarity of the brain-barrier: distribution of enzymes between the luminal and antiluminal membranes of brain capillary endothelial cells // Brain Res. 1980. - Vol. 192, № 1. - P. 17-28.

119. Bondolfi L., Calhoun M., Ermini F. et al. Amyloid-associated neuron loss and gliogenesis in the neocortex of amyloid precursor protein transgenic mice // J. Neurosci. 2002. - Vol. 22, № 2. - P. 515-522.

120. Bothwell M., Giniger E. Alzheimer's Disease: Neurodevelopment Converges with Neurodegeneration // Cell. 2000. - Vol. 102. - P. 271-273.

121. Brizzee K.R., Ordy J.M., Bartus R.T. Localization of cellular changes within multimodal sensory regions in aged monkeys brain: possible implications for age-related cognitive loss // Neurobiol. Aging. — 1980. — Vol. 1. — P. 45-52.

122. Burd G.D., Nottebohm F. Ultrastructural characterization of synaptic terminals formed on newiy generated neurons in a song control nucleus of the adult canary forebrain // J. Сотр. Neurol. 1985. - Vol. 240. - P. 143-152.

123. Butterfield D.A. Amyloid AY-peptide (l-42)-induced Oxidative Stress and Neurotoxicity: Implications for Neurodegeneration in Alzheimer's disease Brain //Free Radic. Res.-2002.-Vol. 36, № 12.-P. 1307-1313.

124. Cafe C., Torri C., Bertorelli L., Tartara F. et al. Oxidative events in neuronal and glial cell-enriched fraction of rat cerebral cortex // Free Radic. Biol. Med. -1995. Vol. 19, № 6. - P. 853-857.

125. Cajal R.S. Studies on the cerebral cortex. London. Lloyd-Luke. 1955. — P. 75-79.

126. Camandola S., Polli G. The Lipid Peroxidation Product 4-Hydroxy-2,3-Nonenal Increases AP-1-Binding Activity Through Caspase Activation in Neurons // J. Neurochem. 2000. - № 74. - P. 159-168.

127. Cameron H.A., McKay R.D.G. Restoring production of hippocampal neurons in old age // J. Nat. Neurosci. 1999. - № 2. - P. 894-897.

128. Cooper M.S. Intercellular signaling in neuronal-glial networks // Biosystems. 1995. - Vol. 34; № 1-3. - P. 65-85.

129. Czapinski P., Blaszczyk В., Czuczwar S.J. Mechanisms of Action of Antiepileptic Drugs // Curr. Top. Med. Chem. 2005. - № 5. - P. 3-14.

130. Dam A.M. The dencity of neurons in the human hippocampus // Neuropathol. Appl. Neurobiol. 1979. - Vol. 5. - P. 249-264.

131. Damier P., Hirsch E.C., Zang P. et al. Glutathione peroxidase, glial cells and Parkinson's disease // Neurosci. 1993. - Vol. 52, № 1. - P. 1-6.

132. Devaney K.O., Johnson H.A. Changes in cell density within the human hippocampal formation as a function,of age // Gerontology. 1984. - Vol. 30, №. 2.-P. 100-108.

133. Dmitrieva N.I. Hippocampal dimensions, memory and learning during rat ontogenesis // Zh. Evol. Biokhim. Fiziol. 1976. - Vol. 12, № 3 - P. 250-255.

134. Dole V.P. A relation between non-esterified fatty acids in plasma and the metabolism of glucose // J. Clin. Invest. 1956. - Vol. 35. - P. 150-154.

135. Dong Y., Mao J., Shangguan D., Zhao R., Liu G. Acetylcholine release in the hippocampus during the operant conditioned reflex and the footshock stimulus in rats // Neurosci. Lett. 2004. - Vol. 369, № 2. - P. 121-125.

136. Dogry-Abbosogly S., Namer Toptane S., Ugurnal B. et al. Lipid peroxidation and antioxidant enzymes in liver and brains of aged rats // Mech. Aging Dev. — !997. — Vol. 98,№2.-P. 177.

137. Dunkan G.E., Stump W.E., Pilgrim C. Cerebral metabolic mapping at theзcellular level with dry mount autoradiography of H. 2-deoxyglucose // Brain. Res. 1987. - Vol. 401. - P. 43^19.

138. Egan C.G. Differentiation of hippocampal stem cells into functional neurons: evolving our understanding of monoamine oxidase-A inhibition // Br. J. Pharmacol. 2006. - Vol. 148. - P. 563-564.

139. Encinas J.M., Vaahtocary A., Enikolopov G. Fluoxetine targets early progenitor cells in the adult brain // J. Neurosci. 2006. - Vol. 103, № 21. - P. 8233-8238.

140. Eriksson P.S., Perfilieva E. et al. Neurogenesis in the adult human hippocampus // J. Nat. Med. 1998. - Vol. 4. - P. 1313-1317.

141. Farooqui A.A., Horrocks L.A., Faroogui T. Interactions between neural membrane glycerophospholipid and sphingolipid mediators: A recipe for neural cell survival or suicide // J. Neurosci. Res. 2007. - Vol. 85, № 9. - P. 18341850.

142. Favier A. Oxidative stress in human diseases // Ann. Pharm. Fr. 2006. -Vol. 64, №6. -P. 390-396.

143. Forster E., Zhao S., Frotscher M. Laminating the hippocampus // Nat. Rev. Neurosci. 2006. - Vol. 7, № 4. - P. 259-268.

144. Frisen J. Determinants of axonal regeneration // Histol. Histopathol. 1997. — Vol. 12, №3.-P. 857-868.

145. Fukuda Т., Kosaka T. Gap junctions linking the dendritic network of GABAergic interneurons in the hippocampus // J. Neurosci. 2000. - Vol. 20. -P. 1519-1528.

146. Gaeta A., Hider R.G. Crucial role of metal ions in neurodegeneration // Br. J. Pharmacol. 2005. - Vol. 146, № 8. - P. 1041-1059.

147. Galderisi S., Mucci A. Emotions, brain development, and psychopathologic vulnerability // CNS Spectr. 2000. - Vol. 5, № 8. - P. 44-48.

148. Gelman B.B. Diffuse microgliosis associated with cerebral atrophy in the acquired immunodeficiency syndrome // Ann. Neurol. — 1993. Vol. 34, № 1. -P. 65-70.

149. Gogtay N., Nugent Т.Е., Herman D.H. Dynamic mapping of normal human hippocampal development I I J. Neurosci. 2006. - Vol. 16, № 8. - P. 664-672.

150. Gold G., Giannakopoulos P., Herrmann F.R., Bouras C. Identification of Alzheimer and vascular lesion thresholds for mixed dementia // Brain. 2007. -Vol. 130, № 11. — P. 2830-2836.

151. Goldschmidt-Clermont P.J., Moldovan L. Stress, superoxide, and signal transduction // Gene Expr. 1999. - Vol. 7, № 4-6. - P. 255-260.

152. Gould E., McEwen B.S. et al. Neurogenesis in the Dentate Gyrus of the Adult Tree Shrew Is Regulated by Psychosocial Stress and NMDA Receptor Activation // Soc. Neurosci. 1997. - Vol. 17, № 7. - P. 2492-2498.

153. Gould E., Tanapat P. et al. Regulation of hippocampal neurogenesis in adulthood // Biol. Psychiatry. 2000. - Vol. 48, № 8. - P. 715-720.

154. Guidi S., Ciani E. et al. Postnatal neurogenesis in the dentate gyrus of the guinea pig // Neuroscience. 2004. - Vol. 15, № 3. - P. 285-301.

155. Gulyas A.I., Toth K., McBain C.J., Freund T.F. Stratum radiatum giant cells: A type of principal cell in the rat hippocampus // Europ. J. Neurosci. 1998. -Vol. 10.-P. 3813-3822.

156. Gray's Anatomy. Edited by P.L. Williams. Ed. 38. New York Edinburgh -London - Tokyo - Madrid - Melbourne. - 1995. - P. 2092.

157. Hampton D.W., Rhodes K.E., Zhao C., Franklin R.J., Fawcett J.W. The responses of oligodendrocyte precursor cells, astrocytes and microglia to a cortical stab injury, in the brain // Neuroscience. 2004. — Vol. 127, № 4. - P. 813-820.

158. Harman D. The aging process // Proc. Nat. Acad. Sci. USA Biol. Sci. 1981. -Vol. 79, № 11.-P. 7124-7128.

159. Hayakawa N., Kato H., Araki T. Age-related changes of astorocytes, oligodendrocytes and microglia in the mouse hippocampal CA1 sector // Mech. Ageing Dev. 2007. - Vol. 128, №4.-P. 311-316.

160. Haynes R.L., Folkerth R.D. Lipid peroxidation during human cerebral myelination // J. Neuropathol. Exp. Neurol. 2006. - Vol. 65, № 9. - P. 894904.

161. Henderson G., Tomlison B.E., Gibson P.H. Cell counts in human cerebral cortex in normal adults throughout life using an image analysing computer // J. Neurol. Sci. 1980. - Vol. 45. - P. 113-136.

162. Hikosaka O. Neural systems for control of voluntary action a hypothesis // Adv. Biophys. - 1998. - Vol. 35. - P. 81-102.

163. Hilke S., Theodorsson A. et al. Estrogen induces a rapid increase in galanin levels in female rat hippocampal formation-possibly a nongenomic/indirect effect // Eur. J. Neurosci. 2005. - Vol. 21, № 8. - P. 2089-2099.

164. Hishikawa N., Hashizume Y., Yoshida M., Sobue G. Widespread occurrence of argyrophilic glial inclusions in Parkinson's disease // Neuropathol. Appl. Neurobiol. -2001. Vol. 27, № 5. -P. 362-372.

165. Hof P.R., Nimchinsky E.A., Young W.G., Morrison J.H. Numbers of meynert and layer IVB cells in area VI: a stereologic analysis in young and aged macaque monkeys // J. Сотр. Neurol. 2000. - Vol. 420, № 1. - P. 113-126.

166. Horsky J., Horska M. Localization of protease activities in rat brain // Folia morphol. 1987. - Vol. 35, № 1. - P. 82-85.

167. Hunziker O., Frey H., Schulz U. Morphometric investigations of capillaries in the brain cortex of the cat // Brain Res. 1974. - Vol. 65, № 1. - P. 1-11.

168. Hunziker О., Abdel Al.S., Schulz U. The aging human-cerebral characterization of changes in the capillary net // J. Cerontol. 1979. - Vol. 34. -P. 345-350.

169. Hussain S., Slikker W.Jr., Ali S.F. Agerelated changes in antioxidant enzymes, superoxide dismutase, catalase, glutathione peroxidase and glutathione in different regions of mouse brain // Int. J. Dev.Neurosci. —1995. — Vol. 13, № 8. — P. 811-817.

170. Itchev K., Surtchev L. Stades cytochemiques sur les membranes plasma tiques des cellules endothelials des capillaries cerebraux // Arch. Union. Med. Balkan. 1984. - Vol. 22, № 5. - P. 702-703.

171. Isaacson R.L. Unsolved Mysteries: The Hippocampus // Behav. Cognitive Neurosci. Rev. 2002. - Vol. 1, № 2. - P. 87-107.

172. Jancso G., Toth L., Karcsu S. Histochemical localization of capillary enzyme activities in brain smears // Arch. Mikrosk. Anat. Forsch. — 1975. Bd. 89, № 6. - S. 983-990.

173. Jeynes В., Provias J. The possible role of capillary cerebral amyloid angiopathy in Alzheimer lesion development: a regional comparison' // Acta Neuropathol. 2006. - Vol. 112, № 4. - P. 417-427.

174. Ji J., Maren S. Differential roles for hippocampal areas CA1 and CA3 in the contextual encoding and retrieval of extinguished fear // Learn Mem. 2008. — Vol. 15, №4.-P. 244-251.

175. John T. Glia: The brain's other cells // Science. 1994. - Vol. 266, № 5187. -P. 970-972.

176. Johnson P.C. Active and passive determinants of capillary densily : a historical perspective // Int. J. Microcirc. Clin. Exp. 1995. - Vol. 15, № 5. - P. 218-222.

177. Kalytka V.V., Doncheko H.V. The antioxidant system and lipid peroxidation inchickens during postnatal ontogenesis // Ukr. Biochim. Zh. 1995. - Vol. 67, №2.-P. 80.

178. Kato M., Ueno H., Black P. Regional cerebral blood flow of the main visual pathways during photic stimulation of the retina in intact and split-brain monkeys // Exptl. Neurol. 1976. - Vol. 42. - P. 65-77.

179. Kempermann G., Kuhn H.G., Gage F.H. Experience-Induced Neurogenesis in the Senescent Dentate Gyrus // J. Neurosci. 1998. - Vol. 18, № 9. - P. 32063212.

180. Kempermann G. They are not too excited: the possible role of adult-born neurons in epilepsy // Neuron. 2006. - Vol. 52, № 6. - P. 1047-1059.

181. Keuker J.I., Luiten P.G., Fuchs E. Capillary changes in hippocampal CA1 and CA3 areas of the aging rhesus monkey // Acta Neuropathol. 2000. — Vol. 100, № 6. - P. 665-672.

182. Kim M.J., Lim H.S. et al. Expression of CD95 and CD95L on astrocytes in the CA1 area of the immature rat hippocampus after hypoxia-ischemia injury // Сотр. Med. 2007. - Vol. 57, № 6. - P. 581-589.

183. Kling M.A., Kellner C.H., Post R.M. neuroendocrine effects of limbic activation by electrical, spontaneous and pharmacological modes // Progr. Neuro-Psychopharmacol. and Biol. Psychiat. 1987. - Vol. 11. - P. 459-481.

184. Korbo L., Amrein I., Lipp H.P., Wolfer D. No evidence for loss of hippocampal neurons in non-Alzheimer dementia patients // Acta Neurol. Scand. -2004.-Vol. 109, №2.-P. 132-139.

185. Lai K., Kasper B.K. et al. Sonic hedgehog regulates adult neuralprogenitor proliferation in vitro and in vivo // Nat. Neurosci. 2003. - № 6. - P. 21-27.

186. Landfield P.W., Rose G. et al. Patterns of astroglial hypertrophy and neuronal degeneration in the hippocampus of aged memory-deficient rats // J. Gerontilogy 1977.-Vol. 32, № l.-P. 3-12.

187. Landfield P.W., Braun L.D. et al. Hippocampal aging in rats: a morphometrical study of multiple variables in semithin sections // Neurobiol. Aging 1981. - Vol. 2. - P. 265-275.

188. Landfield P.W., Pitler T.A., Applegate M.D. The aged hippocampus: A model system for studies on mechanisms of behavioral plasticity and brain aging // The Hippocampus 1986. - Vol. 3. - P. 323-367.

189. Lee T.S., Paz C. et al. GAT1 and GAT3 expression are differently localized in the human epileptogenic hippocampus // Acta Neuropathol. 2006. - Vol. Ill, №4. -P. 351-363.

190. Lehrmann E., Guidetti P., Williamson J., Bertram E.H., Schwarcz R. Glial activation precedes seizures and hippocampal neurodegeneration in measlesvirus-infected mice // Epilepsia — 2008. Vol. 49, № 2. - P. 13-23.

191. Leibnitz L., Bar B. et al. The glia types in the visual system of adult rats // J. Hirnforsch. 1982. - Vol. 23. - P. 225-238.

192. Leys D., Henon M., Pasquier F. Alteration of the blood-brain barrier and glial cells in white matter lesions in cerebrovascular and Alzheimer's disease patients // Stroke. 1997. - Vol. 28, № 4. - P. 87Ф-876.

193. Lobnig B.M., Kromeke O. et al. Hippocampal volume and cognitive performance in longstanding Type 1 diabetic patients without macrovascular complications // Diabetes. 2005. - № 23. - P. 32-39.

194. Long J.M., Mouton P.R., Jucker M., Ingram D.K. What counts in brain aging? Design-based stereological analysis of cell number // J. Gerontol. A Biol. Sci. Med. Sci. 1999. - Vol. 54, № 10. - P. 407^17.

195. Lorente de No. Studies on the structure of the cerebral cortex. II. Continuation of the study of the Ammonic system // J. Physiol. Neurol. 1934. -Vol. 46, №> 2-3. - P. 113-117.

196. Lu L., Airey D.C, Williams R.W. Complex trait analysis of the hippocampus: mapping and biometric analysis of two novel gene loci with specific effects on hippocampal structure in mice // J. Neurosci. 2001. - Vol. 21, № 10. - P. -3503-3514.

197. Mani R.B., Lohr J.B. et al. Hippocampal pyramidal cells and aging in the human: a quantitative study of neuronal loss in sectors CA1 to CA4 // Exp. Neurol. 1986. - Vol. 94. - P. 29-40.

198. Mann D.M.A. et al. Some morphometric observations on the cerebral cortex and hippocampus in presenile Alzheimer's disease, senile dementia of Alzheimer type and Down's syndrome in middle age // J. Neurol. Sci. 1985. -Vol. 69.-P. 139-159.

199. Mariani E., Polidori M.C., Cherubini A. Oxidative stress in brain aging, neurodegenerative and vascular diseases: an overvier // J. Chromatorg. В Analyt. Technol. Biomed. 2005. - Vol. 827, № 1. - P. 65-75.

200. Marlatt M., Lee H. et al. Sources and mechanisms of cytoplasmic oxidative damage in Alzheimer's disease // Acta Neurobiol. Exp. 2004. - № 64. — P. 81— 87.

201. Martin W.R., Ye F.Q., Allen P.S. Increasing striatal iron content associated with normal aging // Mov. Disord. 1998. - Vol. 13, № 2. - P. 281-286.

202. Martinez M., Ferrandiz M.L., De Juan E., Miquel J. Age-related changes in glutathione and lipid peroxide content in mouse synaptic mitochondria: relationship to cytochrome С oxidase decline // Neurosci. Lett. 1994. — Vol. 170, № l.-P. 121-124.

203. Matthews P.M., Nagy Z., Brown G.K. et al. Isolated capillary proliferation Leigh's syndrome // Clin. Neuropat. 1994. - Vol. 13, № 3. - 139-141.

204. Mattia С. V., Adams J. D. Jr., Bondy S. C. Free radical induction in the brain and liver by products of toluene catabolism // Biochem. Pharmacol. 1993. -Vol. 46, № l.-P. 103-110.

205. Mattson M.P., Chan S.L., Duan W. Modification of Brain Aging and Neurodegenerative Disorders by Genes, Diet, and Behavior // Physiol. Rev. -2002. Vol. 82, № 3. - P. 637-672.

206. McLone D.G. Development of the limiting glial membrane of the brain // Chilas Brain. 1980. - Vol. 6, № 3. - P. 150.

207. Meier-Ruge W., Hunziker O., Schulz U. et al. Stereological changes in the capillary network and nerve cells of the aging human brain // Mech. Ageing Develop. 1980. - Vol. 14.-P. 233-243.

208. Meunier M.T., Bouchaud C. Contribution a l'edude histoenzymologique de la barriere hemato-encephalique cher le rat // Arch. Anat. Microsc. Morphol. Exp.- 1978.-Vol. 67, №2.-P. 81-98.

209. Miller A.K.H., Alston R.L., Mountjoy C.Q. et al. Automated differential cell couting on a sector of the normal human hippocampus: the influence of age // Neuropathol. Appl. Neurobiol. 1984. - Vol. 10. - P. 123-141.

210. Montoliu C., Valles S., Renau-Piqueras J., Guerri C. Ethanol-induced oxygen radical formation and lipid peroxidation in rat brain: effect of chronic alcohol comsumption // J. Neurochem. 1994. - Vol. 63, № 5. - P. 1855-1862.

211. Mori S., Nagano M. Electron-microscopic cytochemisrty of alkalaine phosphatase activity in endothelium, pericytes and oligodendrocytes in the rat brain // Histochem. 1985. - Vol. 82, № 3. - P. 225-231.

212. Munch G., Gerlach M. et al. Advanced glucation end products in neurodegeneration: more than early markers of oxidative stress? // Ann. Neurol.- 1998. Vol. 44, № 1. - P. 85-88.

213. Munoz M., Insausti R. Cortical efferents of the entorhinal cortex and the adjacent parahippocampal region in the monkey // Eur. J. Neurosci. 2005. -Vol. 22, №6.-P. 1368.

214. Neuroscience. Edited by D. Purves. 3 rd. Publishers Sunderland, Massachusetts, USA, 2004. P. 773.

215. Noda Y., McGeer P.L., McGeer E.G. Lipid peroxide distribution in brain and the effect of hyperbatic oxygen // J. Neurochem. 1983. - Vol. 40. - P. 13291332.

216. Pardridge W.H. Neuropeptides and the bloodbrain barrier // Ann. Rev. Physiol. 1983. - Vol. 45. - P. 73-82.

217. Peila R., Rodriguez B.L., Launer L.J. Type 2 Diabetes, APOE Gene, and the Risk for Dementia and Related Pathologies // Diabetes. 2002. - № 51. - P. 1256-1262.

218. Peinado M.A., Anesada A., Pedrosa J.A. et al. Light microscopic quontification of morphological changes during aging in neurons and glia of the rat parietal cortex // Anat. Rec. 1997. - Vol. 247, № 3. - P. 420-425.

219. Plateel M., Teissier E., Cecchelli R. Hypoxia dramatically increases the nonspecific transport of blood-borne proteins to the brain // J. Neurochem. -1997. Vol. 68, № 2. - P. 874-877.

220. Rajakumar D.V., Rao M.N. Dehydrozingerone and it's analagues as inhibitors of nonenzymatic lipid peroxidation // Pharmazic. 1994. - Vol. 49, № 7.-P. 516-519.

221. Richter K., Hamprecht В., Scheich H. Ultrastructural localization of glycogen phosphorylase predominantly in astrosytes of the gerbil brain // Glia. 1996. -Vol. 17, №4.-P. 263-273.

222. Rietze R., Poulin P., Weiss S. Mitotically active cells that generate neurons and astrocytes are present in multiple regions of the adult mouse hippocampus // J.Comp. Neurol. 2000. - Vol. 424, № 3. - P. 397-408.

223. Roland P.E., Larsen В., Skinhoj E., Lassen N.A. Regional cerebral blood flow increase due to treatment of somatosensory and auditive information in man

224. In: Cerebral Fanction, Metabolism and Circulation, edited by Ingvar D.H., Lassen N.A. Copenhagen: Munksgaard. - 1977. - P. 540-541.

225. Saitoh O., Karns C.M., Courchesne E. Development of the hippocampal formation from 2 to 42 years // Brain. 2001. - Vol. 124, № 7. - P. 1317-1324.

226. Samjen G. Neuroogliand spinal fluidis // J. Exp. Biol. 1981. - Vol. 95. - P. 129.

227. Sanderson D.J., Pearce J.M. et al. The importance of the rat hippocampus for learning the structure of visual arrays // Europ. J. Neurosci. 2006. - Vol. 24, № 6.-P. 1781-1788.

228. Schmidt R., Launer L.J., Nilsson L.G. Magnetic Resonance Imaging of the Brain in Diabetes // Diabetes. 2004. - № 53. - P. 687-692.

229. Schmidt-Hieber C., Jonas P., Bischofberger J. Action potential initiation and propagation in hippocampal mossy fibre axons // J. Physiol. 2008. - Vol. 586, №7.-P. 1849-1857.

230. Seri В., Garcia-Verdugo J.M. et al. Astrocytes Give Rise to New Neurons in the Adult Mammalian Hippocampus // J. Neurosci. 2001. - Vol. 21, № 18. - P. 7153-7160.

231. Simonov P.V. Brain mechanisms of emotions // Neurosci Behav. Physiol. -1997. Vol. 27, № 4. - P. 405-413.

232. Sloviter R.S., Dichter M.A., Rachinsky T.L. Basal expression and induction of glutamate decarboxylase GABA in excitatory granule cells of the rat and monkey hippocampal dentate gyrus // J. Сотр. Neurol. 1996. - Vol. 373, № 4. -P. 593-618.

233. Smirnov E.B., Omelchenko N.V., Kirik O.V. Vascularization and development of the cytoarchitecture in the human neocorticalrudiment // Ontogenez. 2002. - Vol. 33, № 2. - P. 130-135.

234. Sokolov M.V., Rossokhin A.V. et al. Associative mossy fibre LTP induced by pairing presynaptic stimulation with postsynaptic hyperpolarization of CA3neurons in rat hippocampal slice // Eur. J. Neurosci. 2003. - Vol. 17, № 7. — P. 1425-1437.

235. Stark A.K., Petersen A.O. et al. Spatial distribution of human neocortical neurons and glial cells according to sex and age measured by the saucer method // J. Neurosci. Methods. 2007. - Vol. 164, № 1. - P. 19-26.

236. Sturrock R.R. A guantitative histological study of the indusium griseum and neostriatum in elderly mice // J. Anat. 1986. - Vol. 149. - P. 195-203.

237. Sturrock R.R. Age-related changes in the number of myelinated axons and glial cells in the anterior and posterior limbs of the mouse anterior commisure // J. Anat. 1987. - Vol. 150. - P. 111-127.

238. Sugaya K., Ruves M., Mekinney M. Topographic associations between DNA fragmentation and Alzheimer's disease neuropathology in the hippocampus // Neurochem. Int. 1997. - Vol. 31, № 2. - P. 275-281.

239. Szeto H.H. Mitochondria-Targeted Peptide Antioxidants: Novel Neuroprotective Agents // J. AAPS. 2006. - Vol. 8, № 3. - P. 521-531.

240. The Hippocampus. Volume 1: structure and development / Edited by R.L. Isaacson, K.H. Pribram. New York London. - 1975. - P. 440.

241. Thyagarajan P. Significance of ascorbic in developing rat brain // Indian J. Biochem. Biophys. 1981. - Vol. 18, № 4. - P. 286-290.

242. Tomimoto H., Akiguchi I., Nokita H., et al. Regressive changes of astroglia in white matter lesions in cerebrovascular disease and Alzheimer's disease patients // Acta Neuropathol. Berl. 1997. - Vol. 94, № 2. - P. 146-152.

243. Tsacopoulos M., Poitry Yamate C.L., Poitiy S., et al. The nutritive function of glia is regulated by signals released by neurons // Glia. 1997. - Vol. 21, № l.-P. 84-91.

244. Tsai A.G., Friesenecher В., Intaglietta M. Capillary flow impairment and functional capillary density // Int. J. Microsirc. Clin. Exp. 1995. - Vol. 15, № 5.-P. 238-243.

245. Vannucci S.I., Hagberg H. Hypoxia-ischemia in the immature brain // J. Exp. Biol. 2004. - № 207. - P. 3149-3154.

246. Varon S.S., Somjen G.G. Neuron-glia interactions // Neurosci. Res. Progr. Bull. 1979. - Vol. 17. - P. 1-239.

247. Vijayan V.K., Geddes J.W., Anderson K.J., Chang-Chui H., Ellis W.G., Cotman C.W. Astrocyte hypertrophy in the AlzheimerVs disease hippocampal formation // Exp. Neurol. 1991. - Vol. 112, № 1. - P. 72-78.

248. Vincent A.M., Russell J.W., Low F. Oxidative Stress in the Pathogenesis of Diabetic Neuropathy // Endocr. Rev. 2004. - № 25. - P. 612-628.

249. Wang L.N., Xu D. et al. Morphological and quantatitive capillary changes in aging human brain // Zhongguo. 2004. - Vol. 26, № 2. - P. 104-107.

250. Watanabe Y., Нага I., Li J., Matsumiga T. Interaction between neurons and astrocytes involved in brain regulatory function as assesed by in vitra brain ischemia models . // Nippon. Yakurigaku-Zasshi. 1997. - Vol. 109, № 3. - P. 119-128.

251. Weiss H.R., Buchweitz E., Murtha T.J., Auletta M. Quantitative regional determination morphometric indices of the total and perfused capillary network in the rat brain // Circul. Res. 1982. - Vol. 51, № 4. - P. 494-503.

252. White B.C., Daya A. et al. Fluorescent histochemical localization of lipid peroxidation during brain reperfusion following cardiac arrest // Acta Neuropathologica. 1993. - Vol. 86, № 1. - P. 1-9.

253. Williams P.A., Larimer P., Gao Y., Strowbridge B.W. Semilunar granule cells: glutamatergic neurons in the rat dentate gyrus with axon collaterals in the inner molecular layer // J. Neurosci. 2007. - Vol. 27, № 50. -P. 13756-13761.

254. Woodruff-Рак D.S., Gould T.J. Neuronal nicotinic acetylcholine receptors: involvement in Alzheimer's disease and schizophrenia // Behav. Cogn. Neurosci. Rev. 2002. - Vol. 1, № 1. - P. 5-20.

255. Xue Q.S., Sparks D.L., Streit W.J. Microglial activation in the hippocampus of hypercholesterolemic rabbits occurs independent of increased amyloid production // J. Neuroinflammation. 2007. - Vol. 24, № 4. - P. 20.

256. Yu R.K., Yanagisawa M. Glycobiology of neural stem cells // CNS Neurol. Disord. Drug Targets. 2006. - Vol. 5, № 4. - P. 415-423.

257. Zaidel D.W. Quantitave morphology of human hippocampus early neuron development // Anat. Rec. 1999. - Vol. 254, № 1. - P. 87-91.

258. Zhang J.R., Andrus P.H., Hall E.P. Age-related regional changes in hydroxyl radical stress and antioxidants in gerbil brain // J. Neurochem. — 1993. Vol. 61, №5.-P. 1640-1647.

259. Zhang W., Benson D.L. Development and molecular organization of dendritic spines and their synapses // Hippocampus. 2000. - Vol. 10, № 5. - P. 512-526.

260. Zoccoli G., Lucchi M.L., Andreoli E., Bach V., Cianci T. Brain capillary perfusion during sleep // J. Cereb. Blood Flow Metab. 1996. — Vol. 16, № 6. -P. 1312-1318.