Автореферат и диссертация по медицине (14.00.41) на тему:Влияние некоторых неспецифических факторов трансплантации на жизнеспособность пересаженной ткани аденогипофиза (экспериментальное исследование)

ДИССЕРТАЦИЯ
Влияние некоторых неспецифических факторов трансплантации на жизнеспособность пересаженной ткани аденогипофиза (экспериментальное исследование) - диссертация, тема по медицине
АВТОРЕФЕРАТ
Влияние некоторых неспецифических факторов трансплантации на жизнеспособность пересаженной ткани аденогипофиза (экспериментальное исследование) - тема автореферата по медицине
Титаров, Дмитрий Леонидович Москва 2004 г.
Ученая степень
кандидата медицинских наук
ВАК РФ
14.00.41
 
 

Автореферат диссертации по медицине на тему Влияние некоторых неспецифических факторов трансплантации на жизнеспособность пересаженной ткани аденогипофиза (экспериментальное исследование)

На правах рукописи

Титаров Дмитрий Леонидович

ВЛИЯНИЕ НЕКОТОРЫХ НЕСПЕЦИФИЧЕСКИХ ФАКТОРОВ ТРАНСПЛАНТАЦИИ НА ЖИЗНЕСПОСОБНОСТЬ ПЕРЕСАЖЕННОЙ ТКАНИ АДЕНОГИПОФИЗА

(экспериментальное исследование)

14.00.41 —трансплантология и искусственные органы

АВТОРЕФЕРАТ

диссертации на соискание ученой степени кандидата медицинских наук

Москва - 2004

Работа выполнена на кафедре оперативной хирургии и клинической анатомии с курсами андрологии и трансплантологии медицинского факультета Российского университета дружбы народов.

Научные руководители:

доктор медицинских наук, профессор

доктор медицинских наук, профессор

Официальные оппоненты:

доктор медицинских наук, профессор

доктор медицинских наук, профессор

Ведущая организация

Научно-исследовательский институт органов МЗ РФ

Смирнова Элионора Дмитриевна

Лысенко Анатолий Иванович

Готье Сергей Владимирович

Бабиченко Игорь Иванович

и искусственных

Защита состоится «_»_2004 года в_часов

на заседании диссертационного совета Д.212.203.09 в Российском Университете дружбы народов (117198, ГСП, ул. Миклухо-Маклая, д.6) С диссертацией можно ознакомиться в Научной библиотеке Российского Университета дружбы народов (117198, ГСП, ул. Миклухо-Маклая, д.6)

Автореферат разослан «_»_

Ученый секретарь

диссертационного совета

доктор медицинских наук, профессор

.2004 года

Э.Д.Смирнова

Актуальность проблемы

В связи с многогранным регулирующим влиянием, оказываемым гипофизом в организме, нарушение, в частности ослабление деятельности этой железы, отражается на течении многих физиологических реакций, что приводит к развитию различных патологических процессов. При гипофизарной недостаточности заместительная гормональная терапия не всегда в состоянии полностью возместить недостаточность функции желез внутренней секреции. Поэтому и в настоящее время велико внимание исследователей и клиницистов к пересадке гипофиза, которая может применяться наряду с медикаментозным лечением эн-докринопатий для восполнения утраченной гормональной функции (Т. Е. Гни-лорыбов, В. М. Казаченок, 1970; Хенкин В. Л., 1973; И.Д.Кирпатовский, 1998).

Известно несколько вариантов этой операции: пересадка целого органа с восстановлением питающих его сосудов (Н. А. Богораз, 1948; Г. Е. Гнилоры-бов, 1966, 1970; Хенкин В. М., 1973; И.Д.Кирпатовский, 1990); свободная пересадка тканевых фрагментов (Е.П.Володина, 1972; M.Matsuda с соавт., 1995; F.Obal с соавт., 1997) и пересадка культуры клеток (В.Н.Блюмкин с соавт., 1990; В.И.Шумаков с соавт., 1994; И.Д.Кирпатовский с соавт., 1998, 2003; З.С.Каитова, 1996,2003).

Важную роль в приживлении и длительном функционировании тканевых и клеточных трансплантатов играет место пересадки. Свободную пересадку ткани гипофиза целесообразно осуществлять в иммунологически привилегированные области: желудочки мозга (Falconi G. и Rossi G.L., 1964, Knigge К.М.,1980), под капсулу почки, в переднюю камеру глаза (Мартинович П. И., с соавт., 1974; Siperstein E.R., Greer MA, 1956; Goldberg R.C. и Knobil E., 1957; Funguist В., 1968), под белочную оболочку семенника (Кирпатовский И.Д., Нурманбетов Д.Н., Дендеберов Е.С., 1993, Лысенко А.И., Смирнова Э.Д., 1996; Aron M., с соавт., 1962, 1964,), где наблюдается их длительное переживание.

Существенное влияние на приживление и длительное функционирование как органного, так и свободного тканевого или клеточного трансплантата оказывает временная ишемия. В клинической практике для аллотрансплантации, как правило, используются органы и ткани от трупов, подвергшиеся повреждающему воздействию ишемии, которое продолжается и во время консервации. Поэтому для практических трансплантологов всегда остается острым вопрос о безопасных сроках забора трансплантата после прекращения кровообращения в донорском органе. Хорошо изучены безопасные сроки забора таких крупных жизненно важных органов, как сердце, почки, легкие, печень (В.И.Шумаков, Н.А.Онищенко, 1994). Однако проблема своевременного изъятия эндокринных органов, в частности, гипофиза и способность их тканей противостоять повреждающему воздействию временной ишемии освещена недостаточно. Единственное исследование, посвященное изучению влияния временной ишемии на ткань задней доли гипофиза, проведено на кафедре оперативной хирургии и клиниче-

0ОС- НАЦИОНАЛЬНА« »МСДИОГСКД

ской анатомии РУДН И.С.Зиминой (1988). В нем с помощью биохимического анализа и электронной микроскопии установлено, что максимальный срок ишемии, при котором клетки нейрогипофиза сохраняют свою структуру, составляет 6 часов.

В доступной нам литературе отсутствуют сведения о безопасных сроках забора и методах консервации аденогипофиза при его трансплантации.

Цель работы: изучить влияние места пересадки, различных сроков ишемии и методов консервации на жизнеспособность ткани аллогенного аденогипофиза при его трансплантации.

Задачи исследования

1. Изучить влияние места пересадки на жизнеспособность ткани аллогенного аденогипофиза при пересадке его под капсулу почки, в паренхиму семенника, под белочную оболочку семенника в различные сроки после трансплантации.

2. Изучить клеточный состав аллогенного аденогипофиза в различные сроки после его тканевой трансплантации под белочную оболочку семенника.

3. Изучить влияние различных сроков тепловой ишемии на жизнеспособность ткани аллогенного аденогипофиза при пересадке его под белочную оболочку семенника.

4. Изучить влияние консервации на жизнеспособность ткани аллогенного аденогипофиза при пересадке его под белочную оболочку семенника.

Научная новизна

• Показано длительное (до 13 месяцев) выживание тканевого трансплантата аденогипофиза при его пересадке в паравазальную клетчаточную щель под белочную оболочку семенника. Доказано преимущество этой модели трансплантации, дающей максимальную сохранность семенника.

• Впервые изучен клеточный состав аденогипофиза, пересаженного в парава-зальную клетчаточную щель под белочную оболочку семенника, и выявлено выживание различных типов клеток до 6 месяцев после трансплантации.

• Установлены максимально допустимые сроки ишемии для забора донорского аденогипофиза в качестве трансплантата: до 6 часов при немедленной пересадке и до 4 часов при гипотермической консервации и последующей его пересадке.

Практическая значимость Максимально допустимые сроки ишемии (4 и 6 часов) для забора аденоги-пофиза в качестве трансплантата, установленные в работе, могут быть использованы в клинической трансплантологии.

Минимальная травматизация мужской половой железы при тканевой субкап-сулярной пересадке гипофиза в паравазальную клетчаточную щель с использо-

ванием микрохирургической техники позволяет рекомендовать эту модель трансплантации гипофиза в клиническую практику.

Апробация работы

Основные разделы диссертации доложены и обсуждены на научно-практической конференции «Новые оперативные технологии (анатомические, экспериментальные и клинические аспекты)» (Москва, 2002), на конференции молодых ученых (Эндокринологический научный центр РАМН, Москва, 2002), на научно-практических конференциях кафедры оперативной хирургии и клинической анатомии РУДН (Москва, 2001-2004).

Публикации

По теме диссертации опубликовано 7 работ, из них 2 статьи в центральной печати.

Структура и объем диссертации

Диссертация изложена на 146 страницах и содержит введение, обзор литературы, описание материалов и методов исследования, изложение собственных результатов исследования в 4 главах, общее заключение, выводы, практические рекомендации, указатель литературы. Содержит 57 рисунков и 10 таблиц. Библиография включает 88 отечественных и 125 зарубежных источников.

Содержание работы Материал и методы исследования

Эксперименты по пересадке аллогенного аденогипофиза выполнены на 384 нелинейных белых крысах-самцах в 4 сериях опытов. Общий объём исследова-

ний [Яеяр.'*делением :ериям представлен в таблице 1 .

_Таблица 1

№ Серия Кол-во животных

1 Пересадка аллогенного аденогипофиза крысы под капсулу почки, в паренхиму семенника и под белочную оболочку семенника. 72/72*

2 Пересадка аллогенного аденогипофиза крысы под белочную оболочку семенника для оценки клеточного состава в различные сроки после операции 20/20

3 Пересадка аллогенного аденогипофиза крысы под белочную оболочку семенника после тепловой ишемии 40/40

4 Пересадка аллогенного аденогипофиза крысы под белочную оболочку семенника после тепловой ишемии, гипотермической консервации и крио-консервации. 60/60

Итого 192/192

Всего. 384

*-донор/реципиент

Методы исследования 1. Хирургический эксперимент

Все операции проводили с использованием микрохирургической техники. Забор трансплантата аллогенного аденогипофиза

После вскрытия полости черепа удалялись большие полушария мозга с пересечением зрительных нервов. Рассекалась твердая мозговая оболочка на основании черепа по периметру гипофиза, последний удалялся и помещался в физиологический раствор в чашке Петри. Отсекалась заднюю долю гипофиза - нейро-гипофиз. Аденогипофиз разделялся на фрагменты размерами до 1 мм3 лезвием бритвы.

Пересадка аллогенного аденогипофиза под капсулу почки

Разрез кожи проводился параллельно позвоночнику слева от него между рёберной дугой и гребнем подвздошной кости длиной 1 см. Рассекалась кожа, подкожная клетчатка, мышцы спины. В рану выводилась левая почка. Рассекалась капсула почки на участке 0,2 см микрохирургическим скальпелем и глазным шпателем отслаивалась от паренхимы. Под капсулу помещался трансплантат аденогипофиза с помощью специально изготовленной тупой иглы и мандрена. На капсулу накладывался один шов нитью 7/0. Почка помещалась на место. Рана послойно ушивалась наглухо.

Пересадка аллогенного аденогипофиза в паренхиму семенника

Нижнесрединная лапаротомия. Семенник выводился в рану. Производился разрез белочной оболочки длиной 1 мм в бессосудистой зоне микрохирургическим скальпелем. В паренхиму семенника с помощью тупой иглы и мандрена вводились фрагменты аденогипофиза. На разрез белочной оболочки яичка накладывался один узловой шов атравматической иглой с нитью 7-0. Семенник погружался в брюшную полость. Разрез передней брюшной стенки ушивался послойно наглухо.

Пересадка аллогенного аденогипофиза под белочную оболочку семенника

Нижнесрединная лапаротомия. Семенник выводился в рану. Производился разрез белочной оболочки семенника в бессосудистой зоне микрохирургическим скальпелем длиной 1 мм. Создавался туннель под белочной оболочкой в парава-зальной клетчаточной щели над паренхимой семенника глазным микрохирургическим шпателем. В образованный туннель с помощью тупой иглы и мандрена вводились фрагменты аденогипофиза. На разрез белочной оболочки яичка накладывался один узловой шов с помощью атравматической иглы с нитью 7-0. Семенник погружался в брюшную полость. Разрез передней брюшной стенки ушивался послойно наглухо.

Тепловая ишемия аденогипофиза

Экспериментальное животное умерщвлялось с помощью передозировки эфирного наркоза и оставлялось в помещении с температурой воздуха не ниже

+20°С на срок, необходимый по условиям эксперимента (1,2,3,4,5,6,8 часов). Затем осуществлялся забор трансплантата. Гипотермическая консервация аденогипофиза

После забора, который проводился с соблюдением правил асептики и антисептики, трансплантат аллогенного аденогипофиза помещался в стерильные пени-циллиновые флакончики со стерильным раствором Евроколлинз, как часто употребляемым в трансплантологии для консервации органов, и закрывался стерильной пробкой. В этих флаконах материал сохранялся при температуре не выше +4°С в течение 24 ч до трансплантации. Криоконсервация аденогипофиза

Метод криоконсервации использовался для сохранения тканевых фрагментов аденогипофиза до операции и включал 3 этапа:

1. подготовка трансплантата к низкотемпературному хранению, с использованием криозащитного раствора, приготовленного на основе раствора Евро-коллинз с добавлением криопротектора диметилсульфоксида (ДМСО), 0,5 М сахарозы и 2% альбумина;

2. непосредственно низкотемпературное хранение при -50°С в течение 10 суток;

3. отмывка трансплантата от криозащитного раствора перед пересадкой. 2. Морфологические методы

Во всех сериях экспериментов оценка жизнеспособности трансплантата ал-логенного аденогипофиза проводилась с помощью приготовления препаратов семенника с пересаженным гипофизом по стандартной методике и их гистологической окраски гематоксилин-эозином.

Во второй серии опытов клеточный состав трансплантата оценивался гистохимическим методом - окраской срезов семенника с пересаженным под белочную оболочку аллогенным аденогипофизом специфическими красителями:

• оранжевым G - для выявления ацидофильных аденоцитов, продуцирующих соматотропный гормон (СТТ);

• ШИК-реакция с тианином и альдегидфуксином - для выявления базофиль-ных клеток аденогипофиза, продуцирующих тиреотропный гормон (ТТГ), фолликулостимулирующий гормон (ФСГ), лютеинизирующий гормон (ЛГ), адренокортикотропный гормон (АКТГ);

• Эритрозином - для выявления лактотропоцитов - клеток, продуцирующих пролактин.

Результаты исследования

Влияние места пересадки на жизнеспособность аллогенного аденогипофиза после его тканевой трансплантации Для изучения влияния места пересадки на жизнеспособность аллогенного аденогипофиза крысы проводили его тканевую трансплантацию под капсулу почки, в паренхиму семенника и в паравазальную клетчаточную щель под белочной оболочкой семенника в различные сроки (3,7,10.14 суток, 1,3,5 месяцев) после операции (табл. 2). В группе экспериментов по пересадке аллогенного аденогипофиза под белочную оболочку семенника максимальный срок наблюдения составил 13 месяцев.

Таблица 2

Условия эксперимента Кол-во пересадок

под капсулу почки 21

в семенник в паренхиму 21

под белочную оболочку 30

Итого: 72

После пересадки аллогенного аденогипофиза под капсулу почки трансплантат в 16 из 21 случая оказался жизнеспособным. В 5 случаях трансплантат аллогенно-го аденогипофиза был замещен соединительной тканью: через 3 месяца в 2 из 3 опытов и через 5 месяцев во всех 3 опытах. Во всех 16 случаях, когда пересаженный аденогипофиз оказался жизнеспособным, при гистологическом исследовании трансплантат располагался сразу под капсулой почки и представлял скопление эпителиальных клеток: базофильных и ацидофильных, в виде трабе-кулярных структур, разделённых скудной стромой с большим количеством си-нусоидных органоспецифических капилляров. Такая картина наблюдалась преимущественно в периферических участках трансплантата. В его центральной части отмечалось замещение некротизированных участков соединительной тканью. Из этих данных следует, что при пересадке ткани аллогенного аденогипофиза под капсулу почки наблюдается различная морфологическая картина трансплантата в одни и те же сроки экспериментов - как его приживление, так и отторжение. При приживлении трансплантата во все сроки до 3 месяцев наблюдения строение его периферических участков сравнимо с интактным аденоги-пофизом. Однако в некоторых случаях к этому сроку и во всех экспериментах к 5 месяцам трансплантат обильно инфильтрируется лимфоцитами, ткань гибнет с формированием очагов склероза, сохраняются лишь отдельные трабекулы и рассеянные клетки.

При пересадке аденогипофиза как в паренхиму, так и под белочную оболочку семенника фрагменты тканевого трансплантата аллогенного аденогипофиза обнаружены во все сроки наблюдения во всех 51 случаях. При гистологическом исследовании на 3 сутки центральная часть трансплантата подвергается некрозу, а жизнеспособные клетки занимают его периферическую область. Репара-

тивные процессы протекают быстро: к 7 суткам некротические участки рассасываются и замещаются рыхлой соединительной тканью, а к 10 суткам — рубцовой. К 14 суткам на периферии трансплантата аденоциты формируют тяжи, которые оплетаются синусоидными кровеносными капиллярами, и трансплантат приобретает органоидную структуру, т.е. в нем к этому сроку завершаются все репаративные процессы. Через 1,3,5 и даже 13 месяцев (для пересадки под белочную оболочку семенника) гистологическая картина тканевых трансплантатов аденогипофиза оставалась аналогичной 14 суткам: жизнеспособные клетки в виде колонок аденоцитов, тесно соседствующих с синусоидными капиллярами, располагаются на периферии трансплантата, в то время как его центральная часть замещена соединительной тканью. Учитывая вышеизложенное, срок 14 суток выбран нами для выведения животных из эксперимента в других сериях опытов как прогностический показатель приживления ткани аденогипофиза.

Различная гистологическая картина наблюдалась только в ткани семенника. Так, при пересадке в паравазальную клетчаточную щель под белочной, оболочкой семенника в примыкающих к трансплантату извитых канальцах структура часто сохранена, в них активно протекает сперматогенез с образованием сперматозоидов, или изредка лишь в одном слое канальцев, непосредственно окружающих аденогипофиз, наблюдается картина повреждения сперматогенного эпителия, проявляющаяся запустеванием просвета канальцев или их склерозом. Однако это не оказывает влияния на хорошую сохранность структуры извитых канальцев в других отделах семенника. Совсем иная картина обнаруживается при пересадке в паренхиму семенника, когда наблюдается множественные повреждения извитых канальцев, как вокруг трансплантата, так и по ходу туннеля, созданного при его проведении в глубину семенника. Таким образом, при пересадке ткани аллогенного аденогипофиза, как в паренхиму, так и под белочную оболочку семенника наблюдается выживание трансплантатов во всех случаях во все сроки наблюдения (максимальный срок при пересадке под белочную оболочку семенника — 13 месяцев). Различным является степень воздействия на паренхиму семенника: минимальная ее травматизация при трансплантации в паравазальную клетчаточную щель под белочной оболочкой семенника, и более выраженное повреждение паренхимы семенника при пересадке в его глубину.

Оценка клеточного состава аллогенного аденогипофиза крысы, пересаженного под белочную оболочку семенника Вопрос о клеточном составе аллогенного аденогипофиза, пересаженного в различные области, исследовался многими авторами (В.В.Никитина, 1972; Е.П.Володина, 1968, 1970, 1972; П. Н. Мартинович с соавт., 1974; RM.May, 1935-1955; B.R.Settebrini, M.G.Gallardo, J.H.Tramezzani, 1991; T.K.Bera с соавт., 1994). Однако мнение о типах клеток аденогипофиза, выживших после пересадки в различные иммунологически привилегированные области, неоднозначно.

Как показали наши исследования, через 14 дней после пересадки наблюдается выживание соматотропоцитов (СТ) и хромофобных клеток во всех 5 случаях, лактотропоцитов (ЛТ) - в 2 случаях, а клеток с сине-красным окрашиванием, характерным для гонад отропоцитов (ГТ) - только в 1 случае из 5 (табл. 3). На 30-ые сутки после пересадки при гистохимическом исследовании были обнаружены соматотропоциты и хромофобы во всех трансплантатах, лактотропоци-ты — в 3, а в 1 случае из 5 - клетки с сине-фиолетовым окрашиванием, характерным для тиреотропоцитов (ТТ). Через 3 месяца наблюдается выживание соматотропоцитов и хромофобов во всех 5 случаях, а лактотропоцитов — только в 1 из 5. Через 6 месяцев в трансплантатах аденогипофиза были обнаружены соматотропоциты и хромофобы во всех 5 препаратах, тиреотропоциты, лактотропо-циты и клетки с красно-розовым окрашиванием, характерным для кортикотро-поцитов в — 3-х препаратах из 5.

Таблица 3

Срок забора материала после трансплантации Кол-во трансплантатов Выявленные клетки аденогипофиза

СТ ТТ кт хромофобы ЛТ ГТ

14 дней 5 5 - 5 2 1

30 дней 5 5 1 5 3 -

3 месяца 5 5 - 5 1 -

6 месяцев 5 5 3 3 5 3 -

Итого"" 20 20 4 3 20 9 1

Таким образом, выживание соматотропоцитов в аденогипофизе, пересаженном в семенник, наблюдается во всех случаях во все сроки наблюдения. Аналогичная картина отмечается в отношении хромофобных клеток, - они обнаружены во всех 20 трансплантатах, и, как известно, могут формировать камбиальный резерв. Остальные типы клеток аденогипофиза были выявлены не во всех препаратах и не во все сроки. Так, тиреотропоциты были обнаружены только через 1 и 6 месяцев, причем в одном и 3-х случаях соответственно. Кортикотропоци-ты удалось выявить только через 6 месяцев в 3-х из 5 препаратов трансплантата аденогипофиза. Гонадотропоциты были обнаружены в пересаженных аденоги-пофизах только в 1 случае через 14 дней после операции. Лактотропоциты выявлены во все сроки наблюдения в 9 трансплантатах аденогипофиза из 20. Появление кортикотропоцитов и выявление большего количества тиреотропоцитов и лактотропоцитов на более поздних сроках исследования (6 месяцев), по нашему мнению, связано с регенерацией их из клеток камбиального резерва, сформированного хромофобами.

Влияние тепловой ишемии на жизнеспособность аллогенного аденогипофиза после его тканевой трансплантации в семенник Через 14 суток после пересадки под белочную оболочку семенника аденогипофиза, ишемизированного в течение 1-8 часов, пересаженный аденогипофиз в 32 случаях из 40 опытов оказался жизнеспособным и был замещен соединительной тканью в 8 случаях: при 2-часовой ишемии - в 2 из 6 опытов, при 3-часовой - в 1 из 8 опытов, при 4-часовой - в 1 из 6, при 6-часовой - в 2 из 8 и

при 8-часовой - в 2 из 4 опытов (табл. 4). Во всех 32 случаях, когда пересаженный аденогипофиз оказался жизнеспособным, при гистологическом исследовании трансплантат был обнаружен сразу под белочной оболочкой и представлял скопление базофильных и ацидофильных эпителиальных клеток в виде трабе-кулярных структур или неупорядоченных комплексов, разделённых скудной стромой с большим количеством синусоидных органоспецифических капилляров. Такая картина наблюдалась преимущественно в периферических участках трансплантата, а в его центре отмечалось разрастание соединительной ткани. Несколько прилежащих к трансплантату извитых семенных канальцев были повреждены. Остальные извитые семенные канальцы были хорошо сохранены, содержали свыше 5 слоев эпителиальных клеток. Сперматогенез завершался в них образованием сперматозоидов.

Таблица4

Трансплантат аденогипофиза

Условия эксперимента Всего Обнаружен обнаружен

тепловая ишемия аденогипофиза 1 ч 4 4

тепловая ишемия аденогипофиза 2 ч 6 4 2

тепловая ишемия аденогипофиза 3 ч 8 7

тепловая ишемия аденогипофиза 4 ч 6 5 1

тепловая ишемия аденогипофиза 5 ч 4 4 -

тепловая ишемия аденогипофиза 6 ч 8 6 2

тепловая ишемия аденогипофиза 8 ч 4 2 2

Итого: 40 32 8

Из этих данных следует, что жизнеспособность пересаженного аллогенного аденогипофиза сохраняется даже после 8-часовой ишемии, хотя половика трансплантатов в этот срок погибает. С практической точки зрения, важным является тот факт, что подавляющее число трансплантатов выдерживает 6-часовую тепловую ишемию. Поэтому можно считать данный срок ишемии максимально допустимым периодом для забора донорского аденогипофиза в качестве трансплантата.

Влияниегипотермическойконсервации икриоконсервации на жизнеспособность аллогенного аденогипофиза после его тканевой трансплантации в семенник Через 14 суток после пересадки аденогипофиза, ишемизированного в течение 1 -8 часов и сохранявшегося до трансплантации в консервирующем растворе Ев-роколлинз в течение 24 часов при +4°С, из 40 опытов пересаженный аденогипофиз в 23 случаях оказался жизнеспособным. В 17 случаях трансплантат аллогенного аденогипофиза был замещен соединительной тканью: при 2-часовой ишемии - в 1 из 4 опытов, при 3-часовой - в 2 из 7, при 4-часовой - в 1 из 5, при 5-часовой - в 2 из 4, при 6-часовой - в 5 из 7 опытов и при 8-часовой - во всех 6

опытах (табл. 5). Во всех 23 случаях, когда пересаженный аденогипофиз оказался жизнеспособным, при гистологическом исследовании трансплантат располагался сразу под белочной оболочкой в виде колонок аденоцитов, соседствующих с синусоидными капиллярами на периферии трансплантата, и участков соединительной ткани его центре. В нескольких непосредственно прилежащих к трансплантату извитых семенных канальцах наблюдалось запустевание или повреждение с заполнением просвета некротическими массами. Остальная паренхима семенника была не изменена, а в семенных канальцах обнаруживались сперматозоиды.

Таблица 5

Трансплантат аденогипофиза

Условия эксперимента Всего Обнаружен Не обнаружен

тепловая ишемия 1 ч + гипотермическая консервация 24 ч 4 4 -

тепловая ишемия 2 ч + гипотермическая консервация 24 ч 4 3 1

тепловая ишемия 3 ч + гипотермическая консервация 24 ч 7 5 2

тепловая ишемия 4 ч + гипотермическая консервация 24 ч 4 3 1

тепловая ишемия 5 ч + гипотермическая консервация 24 ч 4 2 2

тепловая ишемия 6 ч + гипотермическая консервация 24 ч 7 2 5

тепловая ишемия 8 ч + гипотермическая консервация 24 ч 6 - 6

Итого' 36 19 17

Из этих данных следует, что ишемия до 4 часов и последующая 24-часовая консервация в растворе Евроколлинз при +4°С не оказывает выраженного повреждающего воздействия на ткань аденогипофиза, что проявляется сохранением структуры пересаженного аденогипофиза к 14 суткам после операции почти во всех опытах. Однако после 6 часов тепловой ишемии и гипотермической консервации подавляющее число трансплантатов оказались погибшими, а после 8 часов ишемии и консервации ни один трансплантат аденогипофиза не выжил. Поэтому можно считать 4 часа ишемии сроком, максимально допустимым для забора донорского аденогипофиза, в качестве трансплантата при планируемой в дальнейшем гипотермической консервации.

Через 14 суток после пересадки аллогенного аденогипофиза, ишемизированного в течение 3 или 6 часов и подвергнутого криоконсервации, ни в одном препарате не была обнаружена пересаженная ткань аденогипофиза (табл. 6). Во всех 20

случаях на месте трансплантата под белочной оболочкой семенника обнаружен соединительнотканный рубец.

Таблица 6

Условия эксперимента Трансплантат аденогипофиза

Всего Обнаружен Не обнаружен

интактный аденогипофиз + криоконсервация 5 - 5

аденогипофиз тепловая ишемия 3 ч + криоконсервация 5 - 5

аденогипофиз тепловая ишемия 6 ч + криоконсервация 5 - 5

аденогипофиз тепловая ишемия 3 ч + гипотермическая консервация 24 ч + криоконсервация 5 - 5

Итого- 20 - 20

Таким образом, результаты исследования свидетельствуют о том, что предложенная схема криоконсервации не обеспечивает сохранность ткани аденогипо-физа при его трансплантации под белочную оболочку семенника. Дальнейшее изучение влияния криоконсервации на ткань аденогипофиза и разработка другой схемы криопротекции и низкотемпературного хранения, возможно, могут обеспечить сохранность и жизнеспособность ткани аденогипофиза.

ВЫВОДЫ

1. Пересадка аденогипофиза под белочную оболочку семенника, в паренхиму семенника, под капсулу почки подтвердила преимущество первой модели и привилегированность семенника как места пересадки.

2. Ткань аллогенного аденогипофиза сохраняет жизнеспособность при пересадке под белочную оболочку семенника до 13 месяцев (срок наблюдения).

3. В трансплантате аллогенного аденогипофиза, пересаженного под белочную оболочку семенника, через 6 месяцев после пересадки выживают соматотропо-циты, лактотропоциты и хромофобы. Появление на более поздних сроках кор-тикотропоцитов и тиреотропоцитов обусловлено, по-видимому, их дифферен-цировкой из клеток камбиального резерва, сформированного хромофобами.

4. Жизнеспособность ткани аденогипофиза при его трансплантации под белочную оболочку семенника зависит от срока тепловой ишемии. Максимально допустимым сроком тепловой ишемии можно считать 6 часов.

5. Длительные сроки ишемии и последующая консервация отчетливо влияют на выживаемость ткани аденогипофиза при его трансплантации под белочную оболочку семенника. Максимально допустимым сроком ишемии при гипотер-мической консервации после тепловой ишемии аденогипофиза можно считать 4 часа.

6. Применённая схема криоконсервации ткани аденогипофиза не обеспечивает

его выживаемость при трансплантации под белочную оболочку семенника.

Практические рекомендации.

1. Забор аденогипофиза в качестве трансплантата можно осуществлять в сроки ишемии до 6 часов для немедленной пересадки и до 4 часов для последующей гипотермической консервации в растворе Евроколлинз.

2. Минимальная травматизация паренхимы гонады при тканевой пересадке гипофиза в паравазальную клетчаточную щель под белочной оболочкой семенника с использованием микрохирургической техники позволяет рекомендовать эту модель трансплантации гипофиза в клиническую практику.

Список работ, опубликованных по теме диссертации.

1. Влияние неспецифических факторов трансплантации на аллогенный адено-гипофиз при свободной пересадке в семенник крыс. Смирнова Э.Д., Лысенко А.И., Титаров Д.Л. //Матер. II Международной научно-практич. конф. «Здоровье и образование в XXI веке». М., 2001, С.118

2. Изучение клеточного состава аллогенного аденогипофиза при его тканевой пересадке в семенник крысы. Титаров Д.Л., Юшков П.В. //Сб. матер, клинич. конф. молодых ученых ФППО ММА им. И.М. Сеченова «Актуальные вопросы клинической медицины». М., 2002, С. 169-170

3. Оценка клеточного состава аллогенного аденогипофиза при тканевой пересадке в семенник крысы. Титаров Д.Л., Юшков П.В. //Матер. III Международной научно-практ. конф. «Здоровье и образование в XXI веке». М., 2002, С. 393

4. Клеточный состав аллогенного аденогипофиза, пересаженного в семенник крысы. Титаров Д.Л., Юшков П.В. //Сб. матер, научн. конф. «Новые оперативные технологии (анатомические, экспериментальные и клинические аспекты)» М., 2002, С. 272

5. Морфологическая оценка жизнеспособности ишемизированной и консервированной ткани, аллогенного аденогипофиза, пересаженной в семенник. Лысенко А.И., Смирнова Э.Д., Титаров Д Л., Соловьева НА//Вестник трансплантологии и искусственных органов.-2002.- № 4,С. 33-35

6. Тканевая трансплантация аденогипофиза при воздействии на него ишемии, гипотермической консервации и криоконсервации. Смирнова Э.Д., Титаров Д.Л., Кирпатовский В.И. //Сб. матер, научн. конф. «Актуальные проблемы прикладной анатомии, оперативной и клинической хирургии». С-Пб., 2004.С. 139-141

7. Влияние ишемии, гипотермической консервации и криоконсервации на тканевой трансплантат аденогипофиза. Титаров Д.Л., Смирнова ЭД//Вестник РГМУ, М.-.ГОУ ВПО РГМУ.-2004.-№8(39),С231-233

Тита ров Дмитрий Леонидович (Россия) Влияние некоторых неспецифических факторов трансплантации на жизнеспособность пересаженной ткани аденогипофиза (экспериментальное исследование)

Диссертация посвящена изучению влияния места пересадки, временной тепловой ишемии и различных видов консервации на жизнеспособность тканевого трансплантата аденогипофиза крыс, а также изучению его клеточного состава при пересадке под белочную оболочку семенника. Эксперименты выполнены на 384 нелинейных животных.

На основании результатов собственных исследований показано преимущество модели пересадки тканевых фрагментов аденогипофиза в паравазальную клетчаточную щель под белочной оболочкой семенника, где наблюдается длительное (до 13 месяцев) выживание трансплантата.

В трансплантате аллогенного аденогипофиза, пересаженного под белочную оболочку семенника, на всех сроках до 6 месяцев после пересадки обнаруживаются соматотропоциты, хромофобы и лактотропоциты. Установлено, что жизнеспособность ткани аденогипофиза при его трансплантации под белочную оболочку семенника зависит от срока тепловой ишемии. Максимально допустимым сроком тепловой ишемии можно считать 6 часов. Длительные сроки ишемии и последующая консервация отчетливо влияют на выживаемость ткани адено-гипофиза при его трансплантации под белочную оболочку семенника. Максимально допустимым сроком ишемии при гипотермической консервации после тепловой ишемии аденоги-пофиза можно считать 4 часа. Применённая схема криоконсервации ткани аденогипофиза не обеспечивает его выживаемость при трансплантации под белочную оболочку семенника.

Titarov Dmitry L. (Russia) Evaluation of several nonspecific factors influenced the survival of adenohypophysis tissue in transplantation.

The dissertation studies the influence of the factors like: site of grafting, temporary ischemia and different conservation techniques on the survivability of tissue transplant from rat's adenohypophysis inserted under tunica albuginea of testicle and assesses the composition of ceils in the transplant. Experiments were driven on 384 nonlineal rats.

The data confirm the preference of technique provided the grafting of adenohypophysis tissue in paravasal cellular fissure under tunica albuginea of testicle. The technique ensures long-term survival ofthe tissue (up to 13 months).

The transplant of allogenic adenohypophysis grafted under tunica albuginea of testicle contains somatotropocytes, chromophobes and lactotropocytes within 6 months. It was shown that the heat ischemia noticeably affects the survivability of adenohypophysis tissue in transplantation. Maximum period of heat ischemia withstood may not exceed 4 hours. No scheme of cryoconservation ensures the survival of the transplant when grafted under tunica albuginea of testicle.

29 08

Подписано в печать^ ОФормат60х84/16. Тираж '{00 экз. Усл. печ. л. . Заказ /О9у

Типография Издательства РУДН 117923, ГСП-1, г. Москва, ул. Орджоникидзе, д. 3

 
 

Оглавление диссертации Титаров, Дмитрий Леонидович :: 2004 :: Москва

ВВЕДЕНИЕ 4

ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ 8

1.1. Пересадка гипофиза в эксперименте и клинике 9

1.2. Влияние неспецифических факторов трансплантации и консервации на жизнеспособность пересаженного гипофиза

1.2.1. Влияние места пересадки на жизнеспособность пересаженного гипофиза

1.2.2. Влияние ишемии на жизнеспособность пересаженного гипофиза

1.2.3. Влияние консервации на жизнеспособность пересаженного гипофиза

1.3. Клеточный состав аденогипофиза 33-

ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ 37-

ГЛАВА 3. Влияние места пересадки на жизнеспособность аллогенного аденогипофиза после его тканевой трансплантации

3.1. Пересадка аллогенного аденогипофиза крысы под капсулу почки

3.2. Пересадка аллогенного аденогипофиза крысы в паренхиму семенника

3.3. Пересадка аллогенного аденогипофиза крысы под белочную оболочку семенника

ГЛАВА 4. Оценка клеточного состава аллогенного аденогипофиза крысы, пересаженного под белочную оболочку 75-86 семенника

ГЛАВА 5. Влияние тепловой ишемии на жизнеспособность аллогенного аденогипофиза крысы после его тканевой 87-97 трансплантации в семенник

ГЛАВА 6. Влияние гипотермической консервации на ' жизнеспособность аллогенного аденогипофиза крысы после его 98-112 тканевой трансплантации в семенник

6.1. Гипотермическая консервация в растворе Евроколлинз 99

6.2. Криоконсервация 110-112 ЗАКЛЮЧЕНИЕ И ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ 113-119 ВЫВОДЫ 120 ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ 121 СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ 122

 
 

Введение диссертации по теме "Трансплантология и искусственные органы", Титаров, Дмитрий Леонидович, автореферат

Актуальность проблемы

В связи с многогранным регулирующим влиянием, оказываемым гипофизом в организме, нарушение, в частности, ослабление деятельности этой железы, отражается на течении многих физиологических реакций, что приводит к развитию различных патологических процессов. При гипофизарной недостаточности заместительная гормональная терапия не всегда в состоянии полностью возместить недостаточность функции этой железы внутренней секреции. В качестве метода, который применяется наряду с медикаментозным лечением эндокринопатий, для восполнения утраченной гормональной функции может быть использована аллотрансплантация гипофиза. Поэтому внимание к пересадке гипофиза исследователей теоретических и клинических медицинских дисциплин очень велико (Гнилорыбов Т. Е. и Казаченок В. М., 1970; Хенкин В. Л., 1973; Казаченок В. М., 1974, Кирпатовский И.Д., 1998). Известно несколько вариантов этой операции: пересадка целого органа с восстановлением питающих его сосудов; свободная пересадка тканевых фрагментов и пересадка культуры клеток (Богораз Н. А., 1938, 1948; Гнилорыбов Г. Е., 1956-1966, 1970; Хенкин В. М., 1973; Казаченок В. И., 1973, 1974; З.С.Каитова, 1996, 2003; Кирпатовский И.Д., 1996, 1998). Существенную роль в приживлении и длительном функционировании тканевых и клеточных трансплантатов играет место пересадки. Свободную пересадку ткани гипофиза целесообразно осуществлять в иммунологически привилегированные области: желудочки мозга (Falconi G. и Rossi G.L., 1964, Knigge К.М.,1980, Tulipán N.B. с соавт., 1985), под капсулу почки, в переднюю камеру глаза (Siperstein E.R., Greer М.А., 1956; Goldberg R.C. и Knobil E., 1957; Funguist В.,1968; Мартинович П. И., с соавт., 1974), под белочную оболочку семенника (Кирпатовский И.Д.,

Нурманбетов Д.Н., Дендеберов Е.С., 1993; Лысенко А.И., Смирнова Э.Д., 1996; Aron М. с соавт., 1962, 1964), где наблюдается их длительное переживание.

Мнения авторов о функции таких трансплантатов существенно расходятся. Одними было показано, что такой аденогипофиз секретирует все гормоны (Мартинович П. Н. и др., 1974) или некоторые из них: тиреотропный (Martini L. с соавт., 1959), адренокортикотропный, соматотропный (Cheng С.Р. с соавт., 1949; Goldberg R.C. и Knobil Е., 1957), хотя и на более низком уровне, чем интактный гипофиз. По мнению Goldberg R.C. и Knobil Е. (1957), Мартинович П. Н.5 Павич Д., Живкович Н. (1974), аллотрансплантат аденогипофиза в передней камере глаза может секретировать также ФСГ и ЛГ, но большинство исследователей не придерживается этого взгляда.

В связи с практикой пересадки органов и тканей от трупа, в том числе и эндокринных желез, всегда требуется четкий ответ о жизнеспособности трансплантата. После забора органа у донора его обычно сохраняют в консервирующем растворе. В связи с этим важное значение имеет вопрос о максимально допустимых безопасных сроках забора гипофиза от трупа и способах его сохранения до пересадки. Имеются лишь единичные работы, посвященные этому вопросу. Так на кафедре оперативной хирургии и клинической анатомии РУДН изучалось состояние нейрогипофиза при тепловой ишемии в различные сроки с использованием метода электронной микроскопии (Зимина И.С., 1988). Других работ по этой проблеме в доступной литературе нами не обнаружено.

Неоднозначность и противоречивость данных о клеточном составе тканевых трансплантатов аденогипофиза, а так же отсутствие в литературе сведения о безопасных сроках забора гипофиза от трупа и его консервации различными методами с целью дальнейшей трансплантации, подтвержденных в прямых опытах его пересадки, определило цель и задачи данного исследования.

Цель и задачи исследования

Целью настоящей работы явилось изучение влияния места пересадки, различных сроков ишемии и методов консервации на жизнеспособность ткани аллогенного аденогипофиза при его трансплантации.

Для достижения этой цели были поставлены следующие задачи:

1. Изучить влияние места пересадки на жизнеспособность ткани аллогенного аденогипофиза при пересадке его под капсулу почки, в паренхиму семенника, под белочную оболочку семенника в различные сроки после трансплантации.

2. Изучить клеточный состав аллогенного аденогипофиза в различные сроки после его тканевой трансплантации под белочную оболочку семенника.

3. Изучить влияние различных сроков тепловой ишемии на жизнеспособность ткани аллогенного аденогипофиза при пересадке его под белочную оболочку семенника.

4. Изучить влияние консервации на жизнеспособность ткани аллогенного аденогипофиза при пересадке его под белочную оболочку семенника.

Научная новизна

• Показано длительное (до 13 месяцев) выживание тканевого трансплантата аденогипофиза при его пересадке в паравазальную клетчаточную щель под белочную оболочку семенника. Доказано преимущество этой модели трансплантации, дающей максимальную сохранность семенника.

• Впервые изучен клеточный состав аденогипофиза, пересаженного в паравазальную клетчаточную щель под белочную оболочку семенника, и выявлено выживание различных типов клеток до 6 месяцев после трансплантации.

• Установлены максимально допустимые сроки ишемии для забора донорского аденогипофиза в качестве трансплантата: до 6 часов при немедленной пересадке и до 4 часов при гипотермической консервации и последующей его пересадке. Практическая значимость.

Максимально допустимые сроки ишемии (4 и 6 часов) для забора аденогипофиза в качестве трансплантата, установленные в работе, могут быть использованы в клинической трансплантологии.

Минимальная травматизация семенника при тканевой субкапсулярной пересадке гипофиза в паравазальную клетчаточную щель с использованием микрохирургической техники позволяет рекомендовать эту модель трансплантации гипофиза в клиническую практику.

Апробация работы

Результаты диссертационной работы доложены и обсуждены:

1. На II Международной научно-практической конференции «Здоровье и образование в XXI веке», Москва, 2001 г.

2. На клинической конференции молодых ученых ФППО ММА им. И.М. Сеченова «Актуальные вопросы клинической медицины», Москва, 2002 г.

3. На научно-практической конференции «Новые оперативные технологии (анатомические, экспериментальные и клинические аспекты)», Москва, 2002 г.

4. На конференции молодых ученых, Эндокринологический научный центр РАМН, 2002 г.

5. На научно-практических конференциях кафедры оперативной хирургии и клинической анатомии РУДН в 2001-2004 гг.

 
 

Заключение диссертационного исследования на тему "Влияние некоторых неспецифических факторов трансплантации на жизнеспособность пересаженной ткани аденогипофиза (экспериментальное исследование)"

выводы

1. Пересадка аденогипофиза под белочную оболочку семенника, в паренхиму семенника, под капсулу почки подтвердила преимущество первой модели и привилегированность семенника как места пересадки.

2. Ткань аллогенного аденогипофиза сохраняет жизнеспособность при пересадке под белочную оболочку семенника до 13 месяцев (срок наблюдения).

3. В трансплантате аллогенного аденогипофиза, пересаженного под белочную оболочку семенника, через 6 месяцев после пересадки выживают соматотропоциты, лактотропоциты и хромофобы. Появление на более поздних сроках кортикотропоцитов и тиреотропоцитов, по-видимому, обусловлено их дифференцировкой из клеток камбиального резерва, сформированного хромофобами.

4. Жизнеспособность ткани аденогипофиза при его трансплантации под белочную оболочку семенника зависит от срока тепловой ишемии. Максимально допустимым сроком тепловой ишемии можно считать 6 часов.

5. Длительные сроки ишемии и последующая консервация отчетливо влияют на выживаемость ткани аденогипофиза при его трансплантации под белочную оболочку семенника. При гипотермической консервации после тепловой ишемии аденогипофиза максимально допустимым сроком ишемии можно считать 4 часа.

6. Применённая схема криоконсервации ткани аденогипофиза не обеспечивает его выживаемость при трансплантации под белочную оболочку семенника.

Практические рекомендации.

1. Забор аденогипофиза в качестве трансплантата можно осуществлять в сроки ишемии до 6 часов для немедленной пересадки и до 4 часов для последующей гипотермической консервации в растворе Евроколлинз.

2. Минимальная травматизация паренхимы гонады при тканевой пересадке гипофиза в паравазальную клетчаточную щель под белочной оболочкой семенника с использованием микрохирургической техники позволяет рекомендовать эту модель трансплантации гипофиза в клиническую практику.

 
 

Список использованной литературы по медицине, диссертация 2004 года, Титаров, Дмитрий Леонидович

1. Арапов Д.А., Ауслендер Е.М. Проблема пересадки эндокринных желез. // В кн.: Физиология и патология эндокринной системы. — М.,1936, №2,с.102-104

2. АтабекА. Проблемы эндокринологии. //1940, №2, с.45-47

3. Биленко М.В Ишемические и реперфузионные повреждения органов.// М: Медицина, 1989, 362с.

4. Блюмкин В.Н., Шумаков В.И. Лечение больных инсулинзависимым сахарным диабетом с помощью свободной трансплантации островковых клеток поджелудочной железы. //Транспл. органов. Тез. Доклад. XI Всес. н. к. Львов, 1990, с.38-40

5. Богораз H.A. Acta Media USSR, 1938, №3-4, с.521

6. Богораз H.A. Восстановительная хирургия. // М., 1948, т.2, с.259-263

7. Буглова Г.П., Жученко П.Г. Пересадка аллогенной ткани яичника как метод лечения привычных выкидышей.// Тез. докл. V съезда акушеров-гинекологов УССР. Киев: Б. и.,1971, с.74-75.

8. Вакуленко М.В. Врачебная газета, 1925, 30, №8-9, с.469-470

9. Вишневский A.A., Мазаев Н.П., Чепова П.М. и др. Проблема пересадки органов и тканей.// Хирургия, 1952, №8, с.5

10. Войткевич A.A. Возрастные изменения гормональной активности передней доли гипофиза и щитовидной железы человека.// Тез. IV науч. конф. по возрастной морфологии, физиологии и биохимии, М., 1960, с.351-354

11. Володина Е.П. О пересадке передней доли гипофиза. //Бюлл. экс. биол. и мед., 1968, №10, с.75

12. Володина Е.П. О совместных пересадках.//Вопросы морфогенеза и регенерации органов и тканей. Оренбург, 1972, с. 11-14

13. Володина Е.П. Пересадка АГ в костный мозг. //Транспл. орг. и тканей., Горький, 1970, с.367-368

14. Володина Е.П. Гипоталамо-гипофизарный комплекс и периферические железы-мишени.// Сб. научн. трудов., Куйбышев, 1984, с. 8-55.

15. Гистология (введение в патологию): Руководство под ред. Э.Г. Улумбекова, Ю.А. Челышева. -М.: ГЭОТАР, 1997. с.436-437.

16. Гнилорыбов Т.Е. Пересадка гипофиза на сосудистой ножке. // Проблемы эндокринологии и гормонотерапии, 1956,№5, с. 104-109

17. Гнилорыбов Т.Е. Пересадка гипофиза при гомопластических пересадках. //В кн.: Сборник научных работ Днепропетровского медицинского института, 1958, т.9, с. 161-167

18. Гнилорыбов Т.Е. Гомотрансплантация эндокринных желез.//В кн.: Трансплантация органов и тканей. М., 1966, - С.67-69

19. Гнилорыбов Т.Е. Результаты гомотрансплантации желез внутренней секреции за 30 лет. // Трансплантация органов и тканей. Горький, 1970, с.168-169

20. Гнилорыбов Т.Е., Казаченок В.М. К вопросу о функциональной сохранности трансплантированного гипофиза в организм реципиента. // В кн.: Материалы конф. Оценка жизнеспособности органов и тканей, 20-21 марта 1970. -М., с. 17-18

21. Говоруха Т.П., Чуйко В.А., Скорняков Б.А. Ультраструктурные особенности тироцитов при различных условиях замораживания щитовидной железы человека. //Криобиология. — Киев: Наук.думка., 1987, №2, с.33-37.

22. Головко М.И. Пересадка гипофиза на артериально-венозных связях.//Автореф. дисс. канд. мед. наук. — М., 1981

23. Гоциридзе O.A. Ранние проявления тканевой несовместимости в условиях аллотрансплантации яичка. //Ранние проявления тканевой несовместимости, М.,1976, с.24

24. Грищенко В.И., Демина Л.Г., Чадаев В.Е., Лобынцева Г.С., Чуб H.H. Создание банка криоконсервированной овариальной ткани человека для аллогенных трансплантаций в акушерско-гинекологической практике. //Криобиология. Киев: Наук.думка., ,1987, №3, с.7-11.

25. Грязнова И.М., Моломина Г.Г., Балиос Л. В. Лечение больных тяжелыми формами аменореи, гипоменструального и посткастрационного синдромов методом пересадки ткани яичника в амниотической оболочке.// Акушерство и гинекология., 1977, №2, с.30-33.

26. Губина Н.Ф., Беркало Л.В., Утевский A.M. Адренергические процессы в коре надпочечников быка в условиях низкотемпературного замораживания. //Криобиология. Киев: Наук.думка., 1989, №4, с.27-30

27. Дедов И.И., Мельниченко Г.А., Фадеев В.В. Эндокринология.-М.: Медицина, 2000. с.83-84.

28. Дегтярев С.С., Килимник A.M. Проточно-перфузионное консервирование гипофиза. //В. сб.: Трансплантация органов и тканей, Ростов-на-Дону, 1976, с. 137

29. Джорбенадзе Т.А., Хучуа A.B., Мампорил И.А. Морфологические изменения аденогипофиза в постреанимационном периоде.// Известия академии наук ГССР, серия биологическая, т. 10, №2, 1984.

30. Дубинская Е.П., Гробель В.Ф. Аллогенная пересадка яичника у больных с патологическим климаксом. // Тр. 2-ого Моск. мед. ин-та., 1978, Вып.23, с. 10-11.

31. Жаныбеков Д.Е. Анатомо-экспериментальные аспекты пересадки гипоталамо-гипофизарного комплекса на сосудистых связях.//Автореф. дисс. докт. мед. наук. — М., 1990

32. Зимина И. С. Ультраструктура нейрогипофиза в процессе аутолиза. -Бюллетень экспериментальной биологии и медицины, 1988, №9, с.371-374

33. Кадысева Н.М. К проблеме пересадок эндокринных желез. // Пробл. Эндокр., 1939, т.4, №2, с.22-34

34. Казаченок В.М. Обоснование метода трансплантации гипофиза в большой сальник. //В кн.: Материалы УПсъезда хирургов БССР, Минск, 1974, с.ЗО 1-304

35. Казаченок В.М. Оценка жизнеспособности эндокринной ткани для целей трансплантаций. //Сб.: Трансплантация органов и тканей, Минск, 1974, с.52-54

36. Казаченок В.М. Трансплантация гипофиза. //Проблемы эндокринологии, 1973, т.19, с.112-116

37. Казаченок В.М., Бурейко J1.B. Способы консервации передней доли гипофиза. //В сб.: Трансплантация органов и тканей, Минск, 1969, с.52-53

38. Каитова 3. С. Варианты клинической пересадки гипофизарных клеток в мужскую половую железу. //Материалы 1-й международной выставки «Мужское здоровье и долголетие», М., 20-22 февраля 2003, с.64-65

39. Каитова 3. С. Трансплантация культуры ткани неонатального гипофиза. //Автореф. дисс. канд. мед. наук. -М., 1996

40. Кейсевич JI.B. Консервирование гипофиза быстрым замораживанием. //Дисс. . канд. мед. наук, Киев, 1967, 185с.

41. Килимник A.M., Яблокова В.И. Пересадка яичника и эндометрия в гинекологической практике.// Трансплантация органов и тканей: Тез. докл. VII Всесоюз. конф. по пересадке органов и тканей. Ростов н/Д: Б. и, 1976, с.47.

42. Кирпатовский В.И. Механизмы развития и принципы профилактики низкотемпературных повреждений консервированных почек. //Автореф. дисс. . д-ра мед. наук. -М., 1993, 30с.

43. Кирпатовский В.И., Фролова Е.В. Организационные и биологические проблемы функционирования банка органов.// Под ред. проф. Н.А.Онищенко, М., 1988, (Медицина и здравоохранение. Сер. Хирургия: Обзор информ./ ВНИИМИ; Вып. 4).

44. Кирпатовский ИД. Избранные лекции по трансплантологии. // М.: Медицина, 1969. 182с.

45. Кирпатовский ИД. Нейроэндокринная трансплантация в андрологии. //Материалы 1-й международной выставки «Мужское здоровье и долголетие», М., 20-22 февраля 2003, с.76-77

46. Кирпатовский ИД. Новый способ пересадки кадавернозного яичка человеку на артериально-венозной ножке с использованием нижних эпигастральных сосудов. //В кн.: Материалы I научной конференции мед. факультета УДН, М., 1967, с. 11-12

47. Кирпатовский ИД., Васильев В.И., Смирнова ЭД. Микрохирургическая техника при пересадке яичка. //Хирургия, 1977, №8, 135с.

48. Кирпатовский И.Д., Голубева И. В. Патология и коррекция пола. //М.: Изд. Росс. Универ. дружбы народов, 1992. 229с.

49. Кирпатовский И Д., ГорбатюкД.Л. Хирургическая коррекция эндокринной импотенции. // М., изд. УДН им. П.Лумумбы. 1986. -172с

50. Кирпатовский И.Д., Дендеберов Е.С. Пересадка гипофиза на артериально-венозной ножке в клинике. //Материалы 1-й международной выставки «Мужское здоровье и долголетие», М., 2022 февраля 2003, с.73-74

51. Кирпатовский И Д., Дендеберов Е.С. Разработка методики субкапсулярной интратестикулярной пересадки гипофиза. //Проблемы репродукции. — 2000. №5. - с.75-77

52. Кирпатовский И Д., Каитова З.С. Особенности сочетанного культивирования аденогипофизарных клеток. //Материалы 1-й международной выставки «Мужское здоровье и долголетие», М., 2022 февраля 2003, с.74-75

53. Кирпатовский И Д., Каитова З.С., Лысенко А.И. Пересадка клеток эндокринных органов при мужском бесплодии. //Актуальные вопросы андрологии Мат. Конф. - М., 1999. - с25-27

54. Кирпатовский И.Д., Нурманбетов Д.Н., Дендеберов Е.С. II Здравоохранение Кыргызстана. 1993.-№4. — с.61-62.

55. Кирпатовский ИД., Смирнова ЭД. Основы микрохирургической техники. // М., Медицина, 1978. — 135с.

56. Кирпатовский И.Д., Смирнова Э.Д. Основы оперативной техники пересадки органов. // М, Медицина, 1972.

57. Кирпатовский ИД., Смирнова Э.Д., Лысенко А.И., Каитова З.С. Сочетанная клеточная трансплантация органов гипоталамо-гипофизарной системы. // Трансплантация и искусственные органы. — 1998, №4, с.62-64

58. Кирпатовский ИД., Чемоданов В.И. Клинические аспекты трансплантации яичка. //Хирургия, 1973, №2, с.22-27

59. Коваленко П.П., Зубахин В.Г. Аллотрансплантация щитовидной железы, гипофиза и яичка. //В. кн.: Трансплантация органов и тканей. Ростов на -Дону, 1976. — с.44-45

60. Кованое В.В., Оксман Т.М. Острая ишемия — биологический процесс.-В кн.: Острая ишемия органов и меры борьбы с постишемическими расстройствами. М., 1973, с.3-6.

61. Колосков В.И Пересадка консервированного гипофиза и гипоталамо-гипофизарного комплекса на нижние эпигастральные сосуды. // Автореф. дисс. канд. мед. наук. -М., 1985.

62. Меркулов Г. А. Курс патологогистологичекой техники. // Медицина, Ленинградское отд., 1969

63. Никитина В.В. Гомотрансплантация гипофиза в эксперименте. // В сб.: Научные труды Рязанского медицинского института. Рязань, 1976, т.54, вып.2, с.72-80

64. Никитина В.В. К вопросу гомотрансплантации гипофиза. // В кн.: Очерки по гомопластике и регенерации у млекопитающих. — Рязань. 1970. с.140.

65. Онищенко H.A. Медикаментозная противоишемическая защита почек при трансплантации. // Автореф. дисс. . д-ра мед. наук., М., 1982, 50с.

66. Пушкарь Н.С., Чуйко В.А., Цариковская Н.Г. Низкотемпературное консервирование и аутоимплантация щитовидной железы человека.// Актуальные вопросы криобиологии и криомедицины. Киев: Наук.думка., 1981, с. 110-115.

67. Пушкарь Н.С., Чуйко В.А., Утевский А.М. Консервация и трансплантация эндокринных органов и тканей. — Харьков, ХГУ,1981, с.2-28

68. Сабурова Л.М. О возможностях биохимической характеристики процесса острой ишемии.- В кн.: Острая ишемия органов и меры борьбы с постишемическими расстройствами. М., 1973, с. 19-21.

69. Савченко Н.Е. и др. Наш опыт консервации органов. //НЕ. Савченко, Г.Т. Козлов, B.C. Пилотович, И.Н. Скобеюс, В.И. Соклаков. В кн.: Консервация органов. Тезисы докладов симпозиума по консервации органов, М., Тбилиси, 1975, с.29-31

70. Савченко Н.Е. и др. Сохранение почек для аллотрансплантации. // Н.Е. Савченко, Г.Т. Козлов, B.C. Пилотович и др. В кн.: Материалы научной конференции по вопросам теоретической и клинической медицины, Минск, 1977, с.223-227

71. Соклаков В.И. Изменения активности окислительно-восстановительных ферментов в почке при острой ее ишемии.- В кн.: Острая ишемия органов и меры борьбы с постишемическими расстройствами. М., 1973, с.111-112.

72. Стадников A.A. Изучение вопросов гипоталамического контроля в реализации детерминационных свойств железистого эпителия аденогипофиза.// В кн.: Гипоталамо-гипофизарный комплекс и периферические железы-мишени, Куйбышев, 1984, с.65-74

73. Тарабарко Н.В. Руководство по трансплантологии.// М., 1995, с.29-30

74. Туракулов Я.Х., Мухамедзянова И.Р., Исмаилов С.И., Ташходжаева Т.П. Биохимические показатели функции тиреоидной ткани при криоконсервации. //Криобиология. Киев: Наук.думка., 1986, №2, с.7-10.

75. Утевский A.M., Чуйко В.А., Беркало Л.В., Македонская В.А. Захват и органификация иодидов после замораживания щитовидной железы с димексидом. //Криобиология. Киев: Наук.думка., 1986, №4, с. 16-18.

76. Фролова E.B. Роль липидов в развитии клеточного повреждения при тепловой ишемии и гипотермической консервации органов //Проблемы низкотемпературной консервации органов и методы борьбы с низкотемпературном повреждением / ВИНИТИ, 1987, т.8, с.5-57

77. Хенкин В.Л. Пересадка гипофиза в клинике. //Клиническая хирургия, 1970., №5, с.Ю

78. Хенкин В.Л. Гомопересадка гипофиза в клинике. // Клиническая хирургия, 1973, №12, с. 16-19

79. Хенкин В.Л. Гомопересадка эндокринных желез на сосудистой ножке в клинике. //В кн.: Восстановит, хирургия. Выпуск II. Ростов-на-Дону. 1974. - с.13-16

80. Шумаков В.И. Проблемы низкотемпературной консервации органов, методы борьбы с низкотемпературным повреждением. //М.: ВИНИТИ, 1987, 199с (Итоги науки и техники. Сер. Общие проблемы биологии; т.8).

81. Шумаков В.И. Трансплантология: Руководство. //М.: Медицина -Тула: Репроникс ЛТД., 1995. 391с.

82. Шумаков В.И., Онищенко H.A. Патофизиологические механизмы основных факторов консервация жизненно важных органов. (Научный обзор) //Актуальные вопросы консервации органов, М.: ВНИИМИ, 1978, 134с.

83. Шумаков В.И., Онищенко H.A. Лечение печеночной недостаточности методами трансплантации и экстракорпорального подключения печени и других тканей (биологические и клинические аспекты). Под ред. В.И. Шумакова, H.A. Онищенко. //М.: ВИНИТИ, 1994, 141с.

84. Шумаков В.И., Онищенко H.A., Кирпатовский В.И. Фармакологическая защита трансплантата.// М.: Медицина, 1983, 230с.

85. Шумаков В.И., Штейгольд Е.Ш., Онищенко H.A. Консервация органов. //М.: Медицина, 1975, 250с.

86. Abuona G.M., Sutherland D.E., Florack G., Najarian J.S. Function of transplanted human pancreatic allografts after preservation in cold storage for 6 to 26 hours.// Transplantation, 1987, May; 43 (5): 630-6

87. Adler R.A., Farrell M.E., Krieg R. J., Deiss W.P. Hypogonadism does not mediate urinary calcium loss in pituitary-grafted rats. //Metabolism. — 1989. Vol.38. №8. P.805-809.

88. Akalan N., Pamir M.N., Benli K., ErbengiA., Arbengi T. Fetal pituitary transplants into the hypothalamic arae of liypophysectomized rats. //Surg Neurol. 1988. - Vol. 30.- №5. -p.342-349

89. ArceA., Castrillon P.O., Cardinali D.P., Esquifino A.I. Age-dependent effect of pituitary transplants on immune response in rat spleen: modulatory effect of cyclosporine. // Biol-Signals. 1997 - Vol.6 - №1 - P.l 1-20

90. Aron M., Marescaux J., Rebel A. Role des facteurs, raciaux dans ladurce de servie d'heterotransplans de glande pituitare chez cobaye. // Compt. rend. Soc. biol. 1964, v.158, №1, p. 190-192

91. Aron M., Petfovie A. Greffes hypophysaires intratesticulaires et hypophysectomies particeles chezle cobaye.//Biol. med., 1962, v. 51, №3, p. 284-292

92. Bain J., Ezrin C. Immunofluorescent localization of the LH cell of the human adenohypophysis. //J. Clin. Endocrinol., 30, 181 (1970).

93. Bern Т.К., HwangS.I., Swanson S.M., Guzman R.C., Edery M., NandiS. In situ localization of prolactin receptor message in the mammary glands of pituitary-isografted mice.// Mol. Cell. Biochem. 1994. - Vol.132 - №2 -P.145-149

94. Bernard E., Tuch T.Y., Doran V., Mensel and J.R. Turtle. Typing of human fetal organs for the histocompafidility antigens А, В and DR. //Pathology, 1985, V.l7, №1, p.57-61

95. Bouchon R, Griebel G., Vogel E., Misslin R, Ropartz P. Prolactin similar to ectopic pituitary isograft restores responsiveness in Snelldwar mice. //Neuroreport. 1992. - Vol.3 - №2. -P.210-212.

96. Bouchon R, Ropartz P. Effect of age at the time of pituitary grafting on behavioral recovery in dwart mice. //Physiol. Behav. — 1990. Vol. 48. -№4. - P.501-505

97. Bouchon R, Ropartz P. Pituitary grafts and behavior in mice. Effects of sex of donor and number of pituitary grafts on exploratory and learning abilities. //Physiol. Behav. 1994. - Vol.55. - №4 -P.711-715.

98. Broocks D.R. Endocrine tissue transplantation. //New York, 1963, p.15-26

99. Brooks Y.R. — Цит. по И.Д. Кирпатовскому. // В кн.: Пересадка органов. -М., 1966, с. 244-258

100. Burgers А. С. J. Melanophore-stimulating hormones in vertebrates. // Ann., N. Y. Acad. Sci., 100, 699 (1963).

101. Campbell G.T., GoreA.C., Woller M. J., Blake C.A. Adenohypophysial allografts releasing prolactin decrease prolactin mRNA concentration in the host hamster's adenohypophysis in situ. //Neuroendocrinology. 1996. -Vol.63. - №5.-P.430-436

102. Campbell G.T., Horacek M.J., Blake C.A. Effects of hypothalamic neurohormones on prolactin release from pituitary allografts in the hamster. //Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 1987. - Vol.186. - №3. -P.344-347

103. Campbell G.T., Wagoner J., Borer K.T., Kelch R.P., CorleyK. Ontogenesis of corticotropes and lactotropes in situ in pituitary gland of the hamster. An immunhistochemical study. // Cell Tissue Res. — 1986. Vol.245. - №3 -P.673-679

104. Campbell G.T., Wagoner J., Colosi P., Soar es M.J., Talamantes F. Developement and retention of phenotypically specialized cells in pituitary allografts in the hamster (Mesocricetus auratus). //Cell Tissue Res. 1988. -Vol.251 - №1 -P.215-220

105. Carr F.K., Goldfarb R.D. Ischemia-induced myocardial lysosome labilisation: the role of endogenous prostaglandins and cyclic nucleotides.// Experimental and molecular pathology, 1980, 33, 36-42

106. Chen Z.P., Bao Y.D., Gorczyca W., Mohr G. Study of microencapslation for pituitary transplantation: capsule preparation and in vitro study. //Artif. Cells Blood Substit. Immobil. Biotechnol. 1995. - Vol.23. - №5. - P.597-604

107. Cheng C.P. et al. Discharge of adrenocorticotroic gormon in the absense of neural connections between the pituitary and hypothalamus. - /C.P. Cheng, G. Sayers, L.S. Goldman and C.A. Swynyard.- /m.J. Physiol., 1949 (a), vl58, №l,p. 45-56

108. Collins G.M., Greer R.D., Halasz N.A. In vitro regeneration of adenine nucleotide by ischemically injured kidney.// Wold I. Surg., 1979, 3, 367373

109. Costoff A. 1977. Ultrastructure of the pituitary gland. // Allen M. B. Jr., Mahesh V. B. (eds). The pituitary, a current review. Academic Press: New York: pp 59-76.

110. Cross R.J., Campbell J.L., Markesbery W.R., Roszman T.L. Transplantation of pituitary grafts fail to restire immune function and to reconstitute the thymus glands of aged mice. //Mech-Ageing-Dev. 1990 - V.56 - №1 — P. 11-22

111. Daniel P.M. The anatomy of the hypothalamus and pituitary gland. // Martini L., G anong W. F. (eds.) Neuroendocrinology, vol. 1, p. 15, New York, Academic Press, 1966.

112. Del Conte G. Einpflanzungen von embrionelen Gewebw ins Gehirn. // Liegeer's Beitr., Bd. 92, s. 193, 1904

113. Deslin L. Hypothalamus et lieretion d'hormone luteotrophque. Experiences de greffe hypophyseire ches le rat hypophysectomie. Action luteotrophique de l'oxytocine. //Annales d'endocrinologie, 1956, vol.17, №4, p.586-595

114. Esquifino A.I., Pazo D., Cutrera R.A., Cardinali D.P. Seasonally dependent effect of ectopic pituitary grafts on 24-hour rhythms in serum prolactin and gonadotropins in rats. //Chronobiol. Int. 1999 - Vol.16. - №4. - P.451-460

115. Esquifino A.I., Villanua M.A., Agrasal C., Reiter R.J., Tresguerres J.A. Melatonin effects on prolactin secretion in pituitary-grafted female rats. //J. Endocrinol. Invest. 1989. - Vol.12. - №3. - P. 171-176

116. Esquino A.I., SzaryA., Brown-Brong H.M., Bartke A. Age-related effects of ectopic pituitary transplants on the activations of Ames dwarf mouse lymphocytes in vitro. //Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 1996 - Vol.211. - №1 — P.87-93

117. Everett J.M.- Functional corpora lutea meintained for moths by autografts of rat hypophysies. // Endocrinology, 1956, v.58, №6, p. 786-796

118. Exner A. Uber Hypophyxentransplantationen und die Wirkung dieser experimentellen Hypersekretion. // Deutsche Zeitsehrift fur Chirurgie, 1910, №107, s. 172-181

119. Ezrin C. 1969. The Hypophysis, The Pineal Gland. // Netter F. H. (ed.) The Ciba Collection of Medical Illustrations, vol. 4, Endocrine System and Selected Metabolic Diseases, p. 3, Summit, N. Y. J. Ciba, 1963.

120. Ezrin C. Chapters 1-4. // Ezrin C., Codden J. O., Volpe R., Wilson R. (eds.) Systemic endocrinology, Hagerstown Md. Harper and Row, 1973.

121. Falconi G., Rossi G.L. Method for placing a pituitary graft into the evacuated pituitary capsule of the hypophysectomised rat or mouse. // Endocrinolody, 1964, v. 75, №6, p. 964-967

122. Farber J.L., Chien K.R., Mittnacht St. The pathogenesis of irreversible cell injury in ischemia.//Amer. J. Pathol., 1981, 102, 2, p.271-281.

123. Farquhar M. G. Fine structure and function in capillaries of the anterior pituitary gland. //Angiology, 12, 270 (1961).

124. Farquhar M.G. Processing of secretory products by cells of the anterior pituitary gland, Men. Soc. Endocrinol., 19, Subcellular Organization and function. // Heller H., Lederis K. (end.); Endocrine Tissues. London, Cambridge University Press, 1971.

125. Ferguson J., Scothorne R.J. Extended survival of pancreatic islet allografts in the testis of guinea-pigs. //J.Anat. 1977. - Vol.124. - P.l-5

126. Funkguist В., Obel N., Ploen L. Transplantation of homologeus neonatal anterior hypophysis to the posterior surface of the cornea in dogs. // Transplantation, 1968, v. 6, №1, p.1-12

127. Goldberg R.C., Enogle E. Structure and function of intraocular hypophyseal grafts in the hypophysectomized male rat. //Endocrinology -1957.-vol.61.-P.742-752

128. Goldberg R.C., Knobile E. Stracture and function of intraocular hypophyseal grafts in the hypophysectomised male rat. //Endocrinolody, 1957, v. 61, p. 742-752

129. Green J. D. The comparative anatomy of the portal vascular system and the innervation of the hypophysis. //Harris G. W., Donovan В. T. (eds.): The Pituitary Gland, vol. 1, p. 127. Berkeley, University of California Press, 1966.

130. Green J. D., Harris G. W. Observation of the hypophysioportal vessels of the living rat. // J. Physiol., 1949. - 108, 359.137 (Ham A. W., Cormack D.H.) Хэм А., КормакД. II Гистология: пер. с англ. — М.: Мир, 1983. -Т.5 с.56-64.

131. Halmi N. S., McCormick W. F., Decker D. A., jr. The natural history of hyalinization of ACTH-MSH cells in man.// Arch. Pathol., 1971, 91, 318.

132. Halsted W.S. Auto- And Isotransplantation, in Dogs, of The Parathyroid Glandules.// Journal of Experimental Medicine., 11, 1909, p. 175-199.

133. Harris G. W., Donovan B. T. (eds) The pituitary gland. //Butterworths: London, 1966.

134. Harris G.W. Neural control of the pituitary gland.// E. Arnold. London, 1955

135. Head J.R., Neaves W.B., BillinghamR.E. Immune privilege in the testis. //Transplantation. 1983. - Vol.36. - P.423-431

136. Herlant M. The cells of the adenohypophysis and their functional significance. // Int. Rev. Cytol., 17 (1964).

137. Hokao R., Saito T.R., Tacahashi K. W. Copulatory behavior after ectopic pituitary grafting in male rats. // Jikken Dobutsu,1993, Okt., 42(2), 579-83

138. Holmes R. L., Ball J. N. The Pituitary Gland. A Comparative Account.// Biological Structure and Function Series, vol. 4, London, Cambridge University Press, 1974.

139. HoracekM.J., Campbell G.T., Blake C.A. Effects of corticotrophinreleasing hormone on corticotroohs in anterior pituitary gland allografts in hypophysectomized, orchidectomized hamsters. //Cell Tissue Res. — 1989 — Vol.258.-№1.- P.65-68

140. Horacek M.J., Campbell G.T., Blake C.A. Effects of growth hormonereleasing hormone on somatotrophs in anterior pituitary gland allografts in hypophysectomized, orchidectomised hamsters. //Cell Tissue Res. 1988. - Vol.253. - №2. -P.287-290.

141. Ishibashi 71, Shiino M. Ultrastructural and immunocytochemical studies of prolactin-secreting cells (PRL cells) in the anterior pituitary gland of the female musk shrew (Suncus murinus L.). //Anat. Rec. 1988. - Vol.220. -№4. -P.415-423.

142. Jacobson D. Regeneration of hypophyseal portal vessels grafte of anterior pituitary in rabbits.//Acta endocrinology, 1954, №17, p.187-197

143. Kenji Sakai, Yasushi Abiko. A neural factor invobied in increase of the glycogen phosphorylase activity after coronary ligation in both ischemic and nonishemic areas of the dog heart.// Circulation Research, 1982, December, vol.51, №6, 733-742

144. Korbutt G.L., Pipeleers D.G. Cold storage of rat pancreas before purification of islet beta-cells.//Diabetes, 1992, Mar; 41 (3):299-307

145. Kurosumi K, Oota Y Electron microscopy of two types of gonadotrophs in the anterior pituitary glands of persistent estrus and diestrus rats. // Zellforsch. -1968.-85: 34-46.

146. Kylin E. Simmond's disease successfully treaded by transplant of pituitary. //Svenscka Lak-Tinding, 1936, v.10, №63, p.1009-1014.

147. Kylin E. Reults of pituitary tranplantation in 45 cases. //Svenska Lak-tidning, 1937, april, vol.16, №34, p.353-564

148. Kylin E. Hypophysentransplantation in einen Fall mit Dieoletes inipidus. //Actamed. Scand., 1939, №101, p.566-567

149. Kylin E. Transplantation in case of diabetes insipidus. //Svenska Lak-Tidining, 1940, May, v. 17, №37, p.911-914

150. Lafuente A., Marco J., Esquifino A.I. Possible changles in the regulatory mechanisms of pulsatile luteinizing hormone secretion in adult pituitary-grafted female rats. //Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 1995 - Vol.209. - №2 -P.163-169

151. Laursen H., Christensen L. Microvascular density, Microvascular surfase area and endocrine cell volume in pituitary transplants to the fourth ventricle of adult rats. //J. Hirnforsch. 1991. - Vol.32. - №5. - P.635-640

152. Leiflce E., Nieschlag E. Male infertility treatement in the light of evidenscebased medicine. //Andrologia, 1996, vol.28, №1, p.23-30.Review.

153. Lerner A. B., Takahashi Y. Hormonal control of melanin pigmentation. //Recent. Progr. Hormone Res., 12, 203 (1956).

154. Li Y.M., Brunke D.L., Dantzer R., Kelley K.W. Pituitary epithelial cell implants reverse the accumulation of CD4-CD8-lymphocytes in thymus glands of aged rats. // Endocrinology, 1992, №5, Vol.130, P.2703-2709.

155. Liguori L. Aspetti fisiopatologici della crioconservazione ed autotrapianto di paratiroidi.// Acta Chir. Italica, 1989, №45, p.68-69.

156. Losinski N. E., Horvath E., Kovacs K., Asa S. L. Immunoelectron microscopic evidence of mammosomatotrophs in human adult and fetal adenohypophyses, rat adenohypophyses and human and rat pituitary adenomas.//Anat Anz.- 1991.-172: 11-16.

157. Lu C.C., TsaiS.C., Huang W.J., Tsai C.L., Wang P.S. II Metabolism, 1999, Feb., 48(2): 221-6

158. Manning A.S., Hearse D.J., Dennis S.C., Bullok G.R., Coltart D.J. Myocardial ischemia: an isolated, globally perfused rat heart model for metabolic and pharmacological studies.// European journal of cardiology, 1980, 11, 1-21.

159. Martini L. et al. Functionaland morphological observations on the rat pituitary grafted into anterior chamber of the eye. // J. Endocr., 1959, v. 19, №2, p. 164-173

160. Mathur P.P., Chattopadhyay S. Effect of ectopic pituitary homograft on the physiological status of rat testis. //Andrologia, 1986, Jan-Feb, 18(1), 84-8

161. Matsuda M., Mori Т., Park M.k., Kawashima S. Modification of pancreatic digestive function by pituitary grafting in mice. //Eur. J. Endocrinol. -1995.-Vol.133. №2.-P.221-226

162. Maxwell M., Allegra C., MacGillivray J., Hsu D. W., Hedley-Whyte E. Т., Riskind P., Madsen J.R., Black P.M. Functional transplantation of the rat pituitary gland. //Neurosurgery. 1998. - Vol.43. - №5 - P. 1157-1163

163. May RM. Spermatogenesis induced in atrophied mouse testicle by brephopleastic grafts of the hypophysis under the tunica albuginea. //The anatomicel record, 1955, v. 122, №3, p.478

164. McCann S. M. Luteinizing-hormone-releasing hormone. //N. Engl. J. Med., 296, 797(1977).

165. Moriarty G. C. Electron microscopic-immunocytohistochemical studies of rat pituitary gonadotrophs: a sex difference in morphology and cytochemistry of LH cells.//Endocrinology.- 1975.-97: 1215-1225.

166. Naik D. Electron-microscopic immunocytochemical localization of adrenocorticotropin and melanocyte stimulating hormone in the pars intermedia cells of rats and mice.- "Z.Zellforsch.", 1973, 142, p. 305-328.

167. NaikD.R., Das S., Patnaik., Samantaray H. A novel and simple technique for ectopic transplantation of the pituitary gland. //Gen. Comp. Endocrinol. 1997. - Vol.107 - №3 -p.304-310

168. Najia A., Barker C. The influence of histocompatibility and transplant site on parathyroid allograft surviva. //J. Surg. Res. -1976.-voll.20, p.261-265.

169. Nakane P. K. Classifications of anterior pituitary cell types with immuonenzyme histochemistry. //J Histochem Cytochem.- 1970.-18: 9-20.

170. Naucler J., Jonsson O., Lundstam S., Petterson S., Schersten T., Stage L. Transmembrane fluxed of potassinm in dog kidney slices. A quantitation of the effect of warm ischemia.// Eur. Surg. Res., 1977, 9:384-396

171. Nemeskery A., Setalo G., Kacsoh B., HalaszB. Fetal pituitary graft is capable of initiating hormone synthesis in median eminence removed adult rat. //Endocrinol. Exp. 1990. - Vol.24. - №3 -p.283-292

172. Nicitovitch- Winer M., Everett J.M. Functional restitution of pituitary grafts re-transplanted from kidney to median eminence. // Endocr., 1958 /b/,v/63,p.916-930

173. Obal F. Jr., Kacsoh B., Bredow S., Guha-Thakurta N., Krueger J. M. Sleep in rats rendered cronically hyperprolactinemic with anterior pituitary grafts. //Brain res. 1997.-Vol.755. -№1 -p.130-136

174. Pelletier G., Robert F., Hardy H. Identification of human anterior pituitary cell by immunoelectron microscopy. // J Clin Endocrinol Metab.- 1978.-46: 534-542.

175. Phifer R. F, Midgley A. R., Spicer S. S. 1973. Immunologic and histologic evidence that follicle stimulating and luteinizing hormones are present in the same cell types in the human pars distalis. // J Clin Endocr Metab 36: 125-141.

176. Purves H. D. 1961 Morphology of the hypophysis related to its function. //Young W С (ed) Sex and internal secretion. Williams & Wilkins: Baltimore: pp 161-238.

177. Purves H. D. Cytology of the adenohypophysis. In: Harris G. W., Donovan В. T. (eds.) The Pituitary Gland, vol. 1, p. 147, Berkeley, University of California Press, 1966.

178. Reis F., Reis A. Effect of the prepuberal chronic morphine administration on the onset of puberty in pituitary-grafted female rats. //Braz. J. Med. Biol. Res. 1992. - Vol.25 - №2. -p.201-203

179. Sacerdotti, 1907. Цит. по А.А. Немилову. // В кн.: Основы теории и практики пересадки тканей органов. — М., 1940.

180. Saitoh Y., Gibson M.J., Silverman A.J. Targeting of gonadotropin-releasng hormone axons from preoptic area grafts to the median eminece. //J. Neurosci. Res. 1992. - Vol.33 -№3 - p.379-391

181. Solazar H., Peterson R. R. Morphologic observations concerning the release and transport of secretofy products in the adenohypophysis. //Am. J. Anat., 115, 199(1964).

182. Santolaya R.C., Rodriguez E.M. Ultrastructure of the male hypophysis chronically grafted under the kidney capsule.// Cell. Tiss. Res. — 1977 — 179, p. 271-284.

183. Schwartz J., Chenry R. Intercellular communication within the anterior pituitary influencing the secretion of hypophysial hormones. //Endocrine Rev .-1992.-13:453-475.

184. Selawri H.P., Wittington K. Extended allograft survival of islets grafted into intra-abdominally placed testis. //Diabetes. 1984. - Vol.33 -P.405-406

185. Settemrini B.P., Gallardo M.G., Tramezzani J.H. Release of prolactin and growth-hormone by pituitary graffts. Role of the neurointermediate lobe. //Acta Physiol. Pharmacol. Ther. Latinoam. 1991. - Vol.41. - №3. -p.337-347

186. Siperstein E.R., Greer M.A. Observation on the morphology end histochemistry of the mouse pituitary implanted in the anterior eye chamber. // J. Nat. Cancer Inst., 1956, v. 17, №5, p. 569-599

187. Tulipan N.B., Zacur H.A., Allen G.L. Pituitary transplantation: Part 1. Successful reconstitution of pituitary-dependent hormone levels.// Neurosurgery, 1985, Mar; 16(3):331-5

188. Von Lawzewitsch I., Sarrat R. Comparative anatomy and the evolution of the neurosecretory hypothalamic-hypophyseal system. //Acta anat., 81, 13 (1972).

189. Vuilles P., Moos F., Stoeckel M.E. Immunocytochemical and ultrastructural studies on allografts of the pituitary neurointermediate lobe in the third cerebral ventricle of the rat. //Cell Tissue Res. 1989. - Vol.255. - №2. -p.393-404

190. Wang Y.F., Lui C.L., ShiJ.X., Cheng H. W, Shao X.G., Liu W.X., Xu S.X., Yang W.R. An experimental study of pituitary transplantations in rabbits. //Chin Med. J. Engl. 1992. - Vol.105. - №5. -p.415-419

191. Wang. C.J., Howng S.L., Chuang M.C. Pituitary transplantation a study on the response of hypophysis-adrenal axis to physiolgical stress. //Kao Hsiung Hsueh Ko Hsueh Tsa Chih. - 1997. - Vol.13. - №2. -p.92-96

192. Weber R.F.A., Ooms M.P., Veeburg I.I.M. Effects of prolaction on testicular functions using an intratesticular pituitary graft. //Endocrinol., 1983, V.99, №3, p.435-440

193. Winters S.J. Curren status of testosterone replacement therapy in men. //Arch-Fam-Med., 1999, vol.8, №3, p.257-263

194. Zambrano D., Ameruo L., Dickmann G., Franke E. 1968. Ultrastructure of human pituitary adenomata. //Acta Neurochir 18: 78-94.