Автореферат и диссертация по ветеринарии (16.00.03) на тему:Эффективность системы противоэпизоотических мероприятий при копытной гнили овец

ДИССЕРТАЦИЯ
Эффективность системы противоэпизоотических мероприятий при копытной гнили овец - диссертация, тема по ветеринарии
АВТОРЕФЕРАТ
Эффективность системы противоэпизоотических мероприятий при копытной гнили овец - тема автореферата по ветеринарии
Кононов, Анатолий Николаевич Ставрополь 2004 г.
Ученая степень
доктора ветеринарных наук
ВАК РФ
16.00.03
 
 

Автореферат диссертации по ветеринарии на тему Эффективность системы противоэпизоотических мероприятий при копытной гнили овец

На правах рукописи

Кононов Анатолий Николаевич

ЭФФЕКТИВНОСТЬ СИСТЕМЫ ПРОТИВОЭПИЗООТИЧЕСКИХ МЕРОПРИЯТИЙ ПРИ КОПЫТНОЙ ГНИЛИ ОВЕЦ

16.00.03 — ветеринарная микробиология, вирусология, эпизоотология, микология с микотоксикологией и иммунология 16.00.02 — патология, онкология и морфология животных

АВТОРЕФЕРАТ диссертации на соискание ученой степени доктора ветеринарных наук

Ставрополь — 2004

Работа выполнена в ФГОУ ВПО Ставропольский государственный аграрный университет

Научные консультанты: заслуженный деятель науки РФ,

доктор биологических наук, профессор Дмитриев Анатолий Федорович;

доктор ветеринарных наук, профессор Сидорчук Александр Андреевич.

Официальные оппоненты: доктор биологических наук, профессор

Майский Виктор Григорьевич;

заслуженный ветеринарный врач РФ, доктор ветеринарных наук Николаенко Василий Павлович;

заслуженный деятель науки РФ, доктор медицинских наук, профессор Локтев Николай Анатольевич

Ведущая организация: Донской государственный

аграрный университет

Защита состоится « /Л /ЩЙ 2004 г. в /^^часов на заседании диссертационного совета'Д.^20.062.02 при ФГОУ ВПО Ставропольский государственный аграрный университет (355017, Ставрополь, пер. Зоотехнический, 12).

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке ФГОУ ВПО Ставропольский государственный аграрный университет

Автореферат разослан «

Ученый секретарь ^

диссертационного совета Ш¿С,Квочко А.Н.

1. ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность темы. Овцеводство является важнейшей отраслью животноводства, удовлетворяя потребность населения в мясе, а промышленности шерсти и кожевенном сырье. Ставропольский край является крупнейшим овцеводческим регионом России, где созданы и разводятся высокопродуктивные тонкорунные породы овец.

В то же время инфекционные болезни конечностей овец (копытная гниль, некробактериоз) занимают одно из ведущих мест в нозоологическом профиле этого вида животных, а трудности мер борьбы с ними серьезно сдерживают рост и развитие овцеводства.

Среди таких заболеваний наиболее значимой является копытная гниль, которая имеет широкое распространение в России, в том числе в Ставропольском крае, регистрируется ежегодно и наносит овцеводству большой экономический ущерб (М. Сидоров, А. Ляушкин, 1973; X. Абдурагимов, 1974, 1986; А. Сатаров, У. Акчурин, 1976; А. Сидорчук, 1980; М. Бектемиров, 1981,1983; А. Шматкова, Н. Щер-бань, 1982; А. Голиков, К. Мельникова 1984; Ш. Сукеев и др., 1987; M. Bulgin et al., 1985; J. Gradin et al., 1989; D. Marshall et al., 1991).

По мнению ряда исследователей, решающую роль в возникновении копытной гнили овец имеет возбудитель болезни Dichelobacter nodosus, а остальная микрофлора — фузобактерии, бактероиды, клостридии, спирохеты, кокки способствуют усилению тяжести инфекционного процесса (А. Свдорчук, Н. Масалски, 1983; А. Сидорчук, С. Панасюк, 1988; С. Панасюк и др., 1988, 1991, 1996; R. Katitch, 1976; J. Egerton et al., 1983).

Полифакторность копытной гнили овец, вовлечение в патологический процесс различных ассоциаций бактериальных агентов осложняет своевременную диагностику и резко снижает эффективность профилактических и лечебных мероприятий. Для успешной борьбы с копытной гнилью необходимо знать эпизоотическую ситуацию, этиологическую структуру болезни, источники и пути передачи инфекции, сезонность и ряд других вопросов.

Для профилактики и борьбы с копытной гнилью в XX веке были созданы моновалентные полиштаммовые вакцины Clovax,

3

РО<~. НАЦИОНАЛЬНАЯ БИБЛИОТЕКА С Петербург

Ргоуас, Боосах, КМеПап (Англия, Австралия, Новая Зеландия, Франция). Однако в условиях воздействия микробной ассоциации на пораженный орган применение моновалентных вакцин оказывается недостаточно эффективным (А. Сидорчук, С. Панасюк, 1988; Ъ. Су§ап Л а1., 1981; М. Калика, 1982).

Основываясь на проведенных эпизоотологических и микробиологических исследованиях, в нашей стране была создана ассоциированная инактивированная вакцина против инфекционных заболеваний конечностей овец «Овикон». Применение этого препарата позволяет одновременно проф ил актировать копытную гниль и не-кробактериоз конечностей овец и коз. До этого ассоциированные вакцины против копытной гнили в нашей стране не изготовляли и не применяли, не были разработаны методы оценки эффективности вакцинации при данной инфекции.

Учитывая сложность развития патологического процесса при копытной гнили, участия в нем, кроме возбудителя О.подовщ, сопутствующей микрофлоры стратегия профилактики и борьбы должна строиться на комплексном воздействии как на этиологические факторы болезни, так и на организм в целом.

Для осуществления этой концепции необходимо знание вопросов эпизоотологии, этиологической структуры и наличия эффективных средств для терапии и специфической профилактики копытной гнили.

Изложенное позволяет считать, что изучение вопросов эпизоотологии, этиологической структуры, диагностики, иммунитета, специфических и неспецифических средств профилактики и терапии болезни, и на основании этого разработка комплексной системы мероприятий по профилактике и борьбе с копытной гнилью является актуальной проблемой.

Цель и задачи исследования. Основной целью наших исследований явилась разработка рациональной научно обоснованной системы мероприятий по профилактике и борьбе с копытной гнилью овец.

Исходя из этого, в задачи исследований входило:

1. Изучить особенности проявления эпизоотического процесса копытной гнили овец в различных агроклиматических зонах Ставропольского края и роли сопутствующей микрофлоры в этиологии и патогенезе болезни.

2. Определить содержание макро- и микроэлементов в кормах и крови здоровых и больных копытной гнилью овец. Разработать состав солевого препарата для профилактики болезни в зависимости от уровня макро- и микроэлементов в кормах и крови овец и изучить его влияние на гематологические и биохимические показатели. Испытать солевой препарат для профилактики копытной гнили овец.

3. Определить эффективность различных препаратов для профилактики и лечения копытной гнили овец.

4. Определить эффективность ассоциированной вакцины «Овикон» при копытной гнили овец.

5. Разработать комплексную систему мероприятий по профилактике и борьбе с копытной гнилью овец.

6. Дать оценку экономической эффективности различных методов борьбы с копытной гнилью овец.

Научная новизна работы. Впервые в России, в соавторстве, разработана и испытана с положительным результатом ассоциированная вакцина «Овикон» против инфекционных заболеваний конечностей овец; представлены новые данные эпизоотической ситуации по копытной гнили овец в хозяйствах Ставропольского края; изучена роль сопутствующей микрофлоры в этиологии и патогенезе копытной гнили овец; установлена взаимосвязь между содержанием макро- и микроэлементов в кормах и крови овец и заболеванием их копытной гнилью; предложены новые эффективные средства и методы профилактики и борьбы с копытной гнилью овец.

Практическая значимость работы. Впервые в России разработана и внедрена в производство ассоциированная вакцина «Овикон» против инфекционных заболеваний конечностей овец, выпуск которой налажен на Ставропольской биофабрике. Патент 2098128. Приоритет изобретения 26.09.96 г. Зарегистрирован в Государственном реестре изобретений 10.12.97 г. Вакцина применяется в неблагополучных по копытной гнили и некробактериозу овцеводческих хозяйствах.

Материалы выполненных исследований вошли в «Методические рекомендации по профилактике и борьбе с копытной гнилью овец», одобренные секцией «Инфекционная патология животных» Отделения ветеринарной медицины РАСХН, протокол 3 от 25.09.2003 г.

и утвержденные Отделением ветеринарной медицины Россельхоз-академии 22 марта 2004 г., изданы в г. Москва 2004 г., внедрены в овцеводческих хозяйствах Ставропольского края.

Апробация работы. Основные положения и результаты исследований, изложенные в диссертационной работе, доложены и одобрены на научных конференциях СГСХА, СГАУ (1990-2003 гг.), Воронежского госагроуниверситета (1996г.), Международных научных конференциях (г. Махачкала, 1997г., г. Ставрополь, 1999, 2003 гг.), Всероссийской научной конференции ВГНКИ (г. Москва, 2001 г.) на заседании секции «Инфекционная патология животных» Отделения ветеринарной медицины РАСХН (г. Покров, 2003 г.).

Публикации. По материалам исследований опубликовано 26 работ, в которых отражены основные положения и выводы по теме диссертации.

Основные положения, выносимые на защиту:

— результаты изучения эпизоотического процесса при копытной гнили овец в Ставропольском крае, роль сопутствующей микрофлоры в этиологии и патогенезе болезни;

— результаты изучения эффективности солевого препарата при профилактике копытной гнили овец;

— практическая эффективность иммунизации и комплексной системы мероприятий по профилактике и борьбе с копытной гнилью овец, экономическая эффективность различных методов борьбы с болезнью.

Объем и структура диссертации. Диссертация изложена на 250 страницах машинописного текста, содержит 39 таблиц и 8 рисунков (фотографии). Состоит из введения, обзора литературы, материалов и методов, результатов исследований и их обсуждения, выводов, практических предложений, списка литературы, включающего 458 источников, в том числе 337 зарубежных авторов, и приложений.

2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

Диссертационная работа выполнена в 1986-2004 годах на кафедре эпизоотологии и микробиологии Ставропольского ГАУ, Ставропольской НИВС и в неблагополучных по копытной гнили овец хозяйствах Ставропольского края.

В проведении экспериментальных работ использовали:

— эпизоотические штаммы Dichelobacter nodosus, Fusobacterium necrophomm, Clostridium perfringens, Staphylococcus aureus, выделенные нами от животных;

— производственный штамм Dichelobacter nodosus N ПП-82/90, взятый на Ставропольской биофабрике.

Питательные среды и другие материалы: для исследований использовали плотную питательную среду ВИЭВ, тиамин-цистин-глутаминовый агар, глюкозо-кровяной агар, мясопептонный агар, среду Эндо, среду Левина, полужидкий мясопептонный печеночный бульон, среду Китта-Тароцци под вазелиновым маслом, мясопептонный бульон, глюкозо-сывороточный бульон, тиоглико-левый бульон и другие различные химические реактивы и препараты.

Приборы и оборудование: микроскопы: люминесцентный — «Лю-мам», биологический — «Биолам» с осветителями, анаэростаты, насос Камовского, иономер ЭВ-74, термостаты, сушильные шкафы, бытовые холодильники, автоклав, центрифуги, рефрактометр УРЛ-2, фотоэлектроколориметр ФЭК-2М, фотоэлектрический эрит-рогемометр, спектрофотометр, счетная камера Горяева, весы лабораторные, пипетки, пробирки, флаконы, чашки Петри, стекла предметные и покровные, шприцы «Рекорд», иглы инъекционные и для взятия крови.

Всего проведено 972 бактериологических, 1363 серологических, 265 гематологических, 534 биохимических исследований.

В ходе исследований было использовано 158 белых мышей, 58 морских свинок, 45 кроликов и 85 овец. Опыты в хозяйствах проведены на 33000 овцах, из которых 22175 животных были привиты против копытной гнили ассоциированной вакциной «Овикон».

Изучение эпизоотического процесса при копытной гнили овец проводили согласно методическим указаниям по эпизоотологичес-кому исследованию.

Диагностику копытной гнили и некробактериоза овец осуществляли комплексно с учетом эпизоотологических данных, клинических признаков болезни, патологоанатомических изменений и лабораторных методов исследований.

Выделение возбудителя копытной гнили О.поёовив, некробак-териоза Р.песгорЬогат и также сопутствующей микрофлоры проводили специальными и стандартными методами. Идентификацию выделенных культур осуществляли используя «Определитель бактерий Берги» (1980).

Анаэробные культуры на чашках Петри выращивали в анаэрос-татах. Тинкториальные, морфологические, культуральные, биохимические и гемолитические свойства микроорганизмов определяли общепринятыми методами. Протеолитическую активность оценивали по способности разжижать 10% желатин; свертывать молоко; пептонизировать свернутый молочный сгусток.

Типовую принадлежность изолированных культур С. регйптщепБ определяли в реакции нейтрализации токсинов типоспецифи-ческими антитоксическими сыворотками С. регМг^епв на белых мышах.

Для определения патогенности Г).пос1о5ш использовали метод заражения овец в кожу межкопытной щели. Патогенность культур Я. песгорИогиш, С. регМияет изучали общепринятыми методами. Для дифференциации патогенных и непатогенных культур Я.аигеив использовали 5%-ный кровяной агар, желточно-солевой агар и реакцию плазмокоагуляции.

В процессе работы использовали серологические методы исследований РА и РНИФ.

В рационе овец определяли количество кальция, фосфора, калия, натрия, магния, цинка, меди и марганца по общепринятым методикам.

Общее количество лейкоцитов в крови овец определяли путем подсчета их под микроскопом в счетной камере Горяева по общепринятому методу. Лейкоцитарную формулу подсчитывали при микроскопии мазков крови, окрашенных по Романовскому — Гим-за. Количество эритроцитов и гемоглобина устанавливали с помощью фотоэлектрического эритрогемометра по методике И. Сип-ко и др. (1968).

Общий белок сыворотки крови определяли рефрактометрическим методом, белковых фракций — нефелометрическим методом, глюкозы в реакции с ортотолуидином. Количество кальция в сыворотке крови определяли комплексно-метрическим методом по Вичеву, Каракашеву (1985). Уровень неорганического фосфора в

сыворотке крови определяли по методу Бригса в модификации С. Ивановского (1975). Количество калия и натрия в плазме крови определяли методом пламенной фотометрии. Определение микроэлементов в крови овец проводили методом атомной адсорбции спектрофотометром по С.Г. Кузнецовой и В.Д. Кальницкому (1983). Резервную щелочность крови определяли диффузным методом по И.П. Кондрахину (1985).

Бактерицидную активность сыворотки крови определяли фото-нефелометрическим методом по О. Смирновой и Т. Кузьминовой (1966). Лизоцимную активность сыворотки крови определяли по методу В. Дорофейчука (1968) в модификации И. Храбустовского и др. (1974). О псоно - фагоцитарную реакцию осуществляли по методике В. Гостева (1950).

При расчете экономической эффективности различных методов борьбы с копытной гнилью использовали «Методику определения экономической эффективности ветеринарных мероприятий», утвержденную Департаментом ветеринарии Минсельхоза РФ 21.02.1997 г.

Результаты экспериментальных исследований обрабатывали статистическим методом путем расчета средних арифметических величин и их статистических ошибок (М±т), а также определяли достоверность сравниваемых показателей по критерию Стьюдента. Статистическую обработку проводили методом вариационной статистики по А.Т. Усович, П. Лебедеву (1970).

В разные годы в исследованиях принимали участие кандидаты вет. наук С.Д. Панасюк, М.Г. Водолазский, с которыми совместно разрабатывались отдельные вопросы.

3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

3.1. Особенности эпизоотического процесса при копытной гнили овец в Ставропольском крае

Изучение эпизоотического процесса при копытной гнили овец проводили в 12 хозяйствах, расположенных в различных зонах края. Под наблюдением находились отары овец из трех хозяйств в каждой зоне. Результаты исследований представлены в таблице 1.

Таблица ]

Количество неблагополучных по копытной гнили отар в хозяйствах, расположенных в различных агроклиматических зонах края

№ Агроклиматические ■юны Среднегодовое количество осадков в мм Количество шар в хозяйствах Отары небпагополучные по копытной гнили

всего %

1 Очень засушливая 300-375 36 8 22

2 Засушливая 350-450 28 10 36

3 Неустойчиво влажная 450-550 21 10 47

4 Умеренно влажная 500-600 15 9 60

Как видно из данных таблицы 1, копытная гниль овец имеет широкое распространение во всех зонах Ставропольского края. Количество среднегодовых осадков и распространение копытной гнили имеют прямую связь: чем выше влажность, тем шире заболеваемость. При изучении распространения копытной гнили в хозяйствах, источников возбудителя инфекции и путей заноса в благополучные отары нами было установлено, что в одних хозяйствах копытная гниль регистрируется с давних пор, например, в предгорных районах, и районах, которые граничат с Карачаево-Черкесской Республикой. В других хозяйствах, расположенных в центральных и восточных районах края, копытная гниль появилась в результате завоза больных и переболевших овец, а также при контакте на пастбищах овец из благополучных и неблагополучных по данному заболеванию хозяйств. Источником возбудителя копытной гнили и фактором стационарности болезни в хозяйствах являются только больные и переболевшие овцы, в пораженных копытцах которых О.побовш, по нашим наблюдениям, сохраняет жизнеспособность не менее года.

Заболеваемость овец копытной гнилью по сезонам года в различных зонах края приведена в таблице 2.

Многолетние наблюдения показывают, что копытная гниль регистрируется во все сезоны года. Наибольшая заболеваемость в очень засушливой и засушливой зонах отмечается зимой соответственно 51,9 и 50,0%, а в неустойчиво влажной и умеренно влаж-

ной зонах — весной соответственно 45,4 и 47,3%. Летом количество новых случаев заболевания во всех зонах резко уменьшается до 0,5—3,7%. Но с появлением осенних дождей, выпадения снега (октябрь-ноябрь) число больных овец в отарах вновь возрастает до 5,0—10,3%. Таким образом, в условиях Ставропольского края наблюдается одна (зимне-весенняя) эпизоотическая вспышка копытной гнили овец. Нами установлено, что копытной гнилью болеют различные половозрастные группы животных, но наибольший процент больных отмечается среди овцематок старше трех лет (21,6%) и баранов-производителей (14,4%). Среди маток-первокоток и молодняка в возрасте 8—12 месяцев заболеваемость была незначительной и составляла в среднем соответственно 4,1 и 1,3%.

Таблица 2

Заболеваемость копытной гнилью овец по сезонам года в различных зонах Ставропольского края (в сумме за 3 года, в %)

А1роклиматические зоны Сезоны года

весна лето осень шма

Очень засушливая 42,6 0,5 5,0 51,9

Засушливая 42,7 0,8 6,5 50,0

Неустойчиво влажная 45,4 2,8 9,2 42,6

Умеренно влажная 47,3 3,7 10,3 38,7

Ягнята текущего года рождения, которые содержались в течение 3—4 месяцев совместно с больными овцематками, болеют копытной гнилью редко. По нашим данным, диагноз на копытную гниль был установлен в 9-ти маточных отарах из 17. Заболеваемость овцематок в неблагополучных отарах колебалась от 10 до 43%, в то время как копытная гниль у ягнят была зарегистрирована только в двух отарах в виде спорадических случаев, поражение копыт имели соответственно 3 (0,7%) и 5 (1,1%) животных. Устойчивость ягнят в возрасте 3~4 мес. к копытной гнили можно объяснить эластичностью молодого копытного рога, отсутствием в нем трещин, заломов, загибов и т.д., что предохраняет их от заболевания. Таким образом, копытная гниль является природно-факторным заболева-

нием, в возникновении и распространении которого существенную роль играют предрасполагающие условия, главными из которых являются повышенная сырость в кошарах и на пастбищах, грязь в базах, нерегулярная расчистка и обрезка копытец. При отсутствии предрасполагающих факторов болезнь распространяется медленно или совсем затухает.

Нами установлены три клинические формы проявления болезни: субклиническая, легкая и тяжелая.

При субклинической форме болезни овцы не хромают, однако кожа межкопытцевой щели бывает покрасневшей, влажной. Эпидермис кожи слегка набухший, легко соскабливается. При этой форме копытной гнили обычно заболевание диагностируют редко. Для легкой формы болезни характерна хромота, повышение местной температуры в области пораженных копытец. Кожа межпальцевой щели отечная, болезненная, на ней выявляли эрозии и серовато-желтый экссудат. При тяжелой форме копытной гнили отмечают резко выраженную хромоту. Больные овцы не опираются на пораженную конечность. При осмотре устанавливали отслоение боковых и пяточных частей копытного рога, неправильное разрастание, деформацию и некротический распад его. Пораженные копытца издают неприятный запах гниющего рога.

При копытной гнили отсутствуют на венчике абсцессы, свищи и язвы, столь свойственные некробактериозу, не поражаются суставы и сухожилия.

Патологоанатомические изменения при копытной гнили локализуются только в области копытец. Для болезни характерно гнойно-некротическое поражение кожи копыт, отсутствие купирования воспалительного процесса и прогрессирующий распад тканей.

В таблице 3 представлены данные по одновременному обнаружению О.поёовш от одних и тех же овец с заболеванием копытец при помощи световой и люминесцентной микроскопии.

Как следует из данных таблицы 3, количество положительных результатов исследований при люминесцентной микроскопии было в 3 раза больше, чем при световой, причем это увеличение происходило за счет уменьшения сомнительных и отрицательных показателей соответственно в 4,3 и 7 раз. Полученные нами результаты свидетельствует о преимуществе люминесцентной микроскопии при диагностике копытной гнили.

Таблица 3

Сравнительная эффективность световой и люминесцентной микроскопии по обнаружению возбудителя копытной гнили

Вид микроскопии Исследовано проб Результат микроскопии

положительный % сомнительный % отрицательный %

Световая 470 130 27,6 247 52,6 93 19,8

Люминесцентная 470 403 85,7 54 11,5 13 2,8

Нами как диагностический тест при копытной гнили были испытаны реакция агглютинации (РА) и реакция непрямой им-мунофлуоресценции (РНИФ). Мы не установили достоверной статистической разницы Р>0,05 при исследовании сыворотки крови больных и здоровых овец в РА соответственно 1:156+32 и 1:83+16 и в РНИФ соответственно 1:95±21 и 1:54±12, поэтому их нельзя использовать для серологической диагностики копытной гнили, но для контроля поствакцинального иммунитета и оценки эффективности вакцин эти реакции имеют определенное значение.

3.2. Роль сопутствующей микрофлоры в этиологии копытной гнили овец

Исходя из цели и задач исследований, нами была проведена работа по определению ассоциации микрофлоры пораженных копытец овец. Изучение роли различной микрофлоры в этиологии и патогенезе копытной гнили овец провели у 142 животных, имеющих поражение копытец из 16 хозяйств Ставропольского края. Из пораженных копытец овец выделили и идентифицировали 16 видов микроорганизмов. В большинстве случаев одновременно с Б.поёоБШ возбудителем копытной гнили (77%) из пораженных копытец овец выделяли С. регйч'^епв тип А (68%), 8.аигеш (42%), Е.соН (37%). Нередко изолировали также стрептококки (31%), Р.песгорЬогигп (25%), протей (24%), коринебактерии (12%). Другие виды микроорганизмов установлены в единичных случаях

(табл. 4). Чаще всего из пораженных копытец выделяли 4-5 видов микроорганизмов, что составило соответственно 42 и 46% от исследованных проб, в 12% установлены — 6 видов.

Таблица 4

Результаты исследований патологического материала от овец с заболеванием копытец

№ Идентифицированные % от общего числа

п/п микроорганизмы исследованных проб

1 Dichelobacter nodosus 77

2 Clostridium perfringens тип A 69

3 Staphylococcus aureus 42

4 Escherichia coli 37

5 Streptococcus sp 31

6 Fusobactenum necrophorum 25

7 Proteus vulgaris 24

8 Actinomyces (Corynebacterium) pyogenes 12

9 Leptostreptococcus anaerobius 8

10 Bacteroides melaninogenica 4

11 Clostridium septicum 4

12 Clostridium perfringens тип Д 3

13 Seiemonas ruminantium 3

14 Clostridium oedematiens 3

15 Clostridium perfringens тип С 2

16 Bacillus cereus 2

Проведенные нами исследования позволили констатировать факт наличия широкого спектра микроорганизмов, участвующих в патогенезе копытной гнили овец.

Полученные результаты позволяют несколько иначе посмотреть на этиологию и патогенез копытной гнили овец. Традиционный взгляд: один возбудитель — одно заболевание, по нашему мнению, не совсем применим при копытной гнили, так как не учитывает значения сопутствующей патогенной и сапрофитной микрофлоры в этиологии и патогенезе этого заболевания.

Изучение морфологических, биохимических и биологических свойств П.поск^ия показало, что это крупные грамотрицательные палочки с утолщением на одном или обоих концах, спор и капсул не образуют. В мазках из патологического материала возбудитель копытной гнили бывает окружен в виде ресничек более мелкими грамотрицательными палочками — феномен Бевериджа. Этот феномен характерен для данного микроорганизма и служит одним из признаков бактериоскопического диагноза на копытную гниль. Возбудитель копытной гнили свертывает и пептонизирует молоко, разжижает желатин, образует сероводород, не лизирует эритроциты лошади, не продуцирует индол, не имеет ферментов, расщепляющих углеводы. Нашими исследованиями установлено, что 5 из 13 культур Б.поёокш при заражении овец оказались патогенными. При этом три штамма О.посккш вызывали легкое переболевание и быстрое заживление пораженных копытец, а два штамма вызывали у животных типичные признаки копытной гнили. Остальные восемь культур В.по(1о5ш оказались при заражении овец непатогенными. Наши эксперименты показали, что вызвать копытную гниль при заражении овец чистой культурой О.побовш удается не всегда. Это может быть связано с тем, что при аппликации культуры на скарифицированную кожу межпальцевой щели не удается количественно оценить заражающую дозу и обеспечить выживание возбудителя в процессе заражения, а также отсутствием других микроорганизмов, которые в естественных условиях принимают участие в патологическом процессе при данном заболевании.

При изучении биологических свойств шести культур возбудителя некробактериоза установлено, что они вызывали гемолиз эритроцитов барана, обладали седиментацией при росте на среде Китга-Тароцци, в неодинаковой степени ферментировали углеводы, не разжижали желатину, не свертывали молоко, обладали патогенными свойствами для кроликов и белых мышей.

При изучении биологических свойств 19 культур С.регйц^ет, выделенных из пораженных копытец овец, нами установлено, что все они свертывали молоко, токсичными для белых мышей были 15 культур, 12 из них были отнесены к типу А, две — к типу С и одна к типу Д. Четыре культуры С.регйчг^епя типировать не удалось. Патогенными свойствами для морских свинок обладали 7 из 19 культур С.регМг^епБ.

Нами было установлено, что из 22 культур S.aureus, выделенных из пораженных копытец овец, 10 обладали гемолитической активностью, 13 и 12 культур давали соответственно реакцию плазмокоагуляции и лецитиназную реакцию. Патогенные стафилококки характеризуются тем, что обладают гемолитической активностью, дают реакцию плазмокоагуляции и лецитиназную реакцию.

Проведенные нами исследования дают основания говорить о полимикробной этиологии копытной гнили овец в Ставропольском крае с участием, в первую очередь, D.nodosus, F.necrophorum, а также клостридий, стафилококков, которые регулярно обнаруживали в патологическом материале и выделяли в чистой и смешанной культурах.

Патогенные свойства выделенных культур сопутствующих микроорганизмов C.perfringens, S.aureus подтверждают их роль в патологическом процессе при инфекционных заболеваниях копытец у овец (копытной гнили и некробактериозе).

3.3. Содержание макро- и микроэлементов в рационе и крови овец в хозяйствах, неблагополучных по копытной гнили

Работу по оценке рационов овец и крови здоровых и больных копытной гнилью животных на предмет содержания в нем макро-и микроэлементов проводили в АОЗТ «Дружба» и колхозе «Красносельский», расположенных в различных зонах края. В рационе определяли содержание кальция, фосфора, калия, натрия, магния, цинка, меди, марганца и кобальта, в крови овец выявляли концентрацию тех же элементов, что и в рационе, за исключением кобальта. При анализе рациона овец АОЗТ «Дружба» установили, что дефицит фосфора в нем составлял 7%, натрия — 31 %, меди — 45%, цинка — 35%, кобальта — 33% от потребности, при избытке калия в 1,8 раза, а кальция и магния соответственно на 20% и 15%. В рационе овец колхоза «Красносельский» было выявлено недостаточное содержание натрия на 47%, калия — на 32%, фосфора — на 28%, меди — на 39%, цинка — на 36%, кобальта — на 16% и марганца — на 6%. В то же время в кормах уровень магния и кальция был соответственно выше в 1,9 — 1,6 раза, чем это необходимо

для жизнедеятельности животных. Нами установлено, что при избытке кальция в рационе овец, его уровень в сыворотке крови был несколько ниже минимальной границы физиологических колебаний (АОЗТ «Дружба» 2,38±0,07—2,35±0,13ммоль/л, колхоз «Красносельский» 2,2б±0,05—2,27±0,05ммоль/л, при норме 2,50— 3,13 ммоль/л).

Недостаток фосфора, натрия и избыток магния не сказался на концентрации их в крови, которые у овец были в основном в пределах нормы.

Пониженное содержание цинка в рационах привело к снижению его концентрации в крови здоровых и больных копытной гнилью овец в АОЗТ «Дружба» до 41,12+3,11-42,20±4,5мкмоль/л, а в колхозе «Красносельский» до 38,84+3,10—38,96±1,52мкмоль/л, при норме 46,2—77,0 мкмоль/л. На концентрацию цинка в крови влияет содержание в рационе одного из главных его антагонистов — кальция. При недостатке меди и марганца в рационах овец концентрация меди в крови у животных АОЗТ «Дружба» была в пределах нормы, а у овец колхоза «Красносельский» она составляла 11,93±1,56—7,08+0,98мкмоль/л (Р<0,05) при норме 12,6—18,9 мкмоль/л. Таким образом, нами установлено, что рационы овец не сбалансированы по макро- и микроэлементам, это отрицательно сказывается на естественной устойчивости животных к копытной гнили.

3.4. Разработка солевого препарата

для профилактики копытной гнили с учетом уровня содержания минеральных веществ в кормах овец

Исследование химического состава рациона овец проводили в 10 хозяйствах Ставропольского края. В кормах овец определяли содержание кальция, фосфора, магния, меди, цинка, марганца и кобальта. При определении состава солевого препарата для профилактики копытной гнили использовали результаты собственных исследований и данные лаборатории по изучению незаразных болезней овец Ставропольской НИВС по исследованию макро- и микроэлементов в кормах овец. По нашим данным, в рационах овец 10 хозяйств дефицит цинка составлял 20%, меди — 53%, кобальта — 44%. В то же время в кормах уровень кальция был выше на

40%, фосфора, магния и марганца соответственно на 7%, 4% и 5%, чем это необходимо для жизнедеятельности животных.

Таким образом, при анализе полученных данных нами было установлено, что в рационе овец недоставало цинка, меди и кобальта, а в крови животных — цинка, меди и марганца (З.З.). Исходя из анализа результатов исследований кормов и крови овец, нами в состав солевого препарата для профилактики копытной гнили были включены следующие микроэлементы: сернокислый цинк — 500 мг, сернокислая медь — 15 мг, сернокислый марганец — 10 мг, сернокислый кобальт — 1,5 мг на одну овцу в сутки.

3.5. Влияние солевого препарата для профилактики копытной гнили на гематологические и биохимические показатели крови овец

Учитывая тот факт, что все виды обмена веществ тесно связаны между собой и изменение одного из них ведет к изменению других, нами проведены исследования по влиянию скармливания солевого препарата на клиническое состояние, гематологические и биохимические показатели крови овец.

Животным опытной группы ежедневно в течение трех месяцев скармливали с концентратами солевой препарат в дозе 526,5 мг на 1 овцу в сутки (сернокислый цинк — 500 мг, сернокислую медь — 15 мг, сернокислый марганец — 10 мг, сернокислый кобальт — 1,5 мг). Непрерывный цикл дачи овцам солевого препарата составлял один месяц. Затем делали двухнедельный перерыв и вновь повторяли месячный цикл применения препарата. Овцы контрольной группы солевой препарат не получали. До начала опыта и после каждого месячного цикла дачи солевого препарата в крови овец определяли содержание эритроцитов, гемоглобина, лейкоцитов, общего белка, белковых фракций, глюкозы, резервной щелочности, калия, натрия, фосфора, магния, цинка, меди, марганца.

Нами установлено, что количество эритроцитов и лейкоцитов у опытных и контрольных животных изменялось, не выходя за пределы нормы. В то же время через два и три месяца количество эритроцитов и лейкоцитов у опытных овец увеличилось по сравнению с контролем соответственно на 9,6%, 5,7% и на 16,2%, 18,2% (Р>0,05). К концу опыта уровень глюкозы в крови животных обе-

их групп снизился, не выходя за пределы нормы. Содержание гемоглобина у опытных овец в конце исследований было на 5,7% выше, чем у контрольных (Р>0,05). Резервная щелочность у овец до опыта и в течение двух месяцев была в пределах физиологической нормы. Через три месяца этот показатель у опытных животных составил 52,5+1,7об%СОг, а у контрольных овец он снизился до 44,1±1,5об%СОг (Р<0,05) при норме 48-60об%С02.

На протяжении всего периода исследований нами установлено уменьшение концентрации общего кальция в сыворотке крови опытных животных до 1,85+0,05 ммоль/л, у контрольных овец этот показатель составил 2,38+0,14 ммоль/л (Р<0,05) при норме 2,5— 3,1 ммоль/л. Очевидно цинк, являясь антагонистом кальция, снизил его усвояемость организмом овец опытной группы. Концентрация кальция в сыворотке контрольных животных претерпевала незначительные изменения и была несколько ниже нормы. После увеличения концентрации фосфора через 1 месяц у овец опытной и контрольной групп до 3,20+0,19 — 4,04±0,20 ммоль/л, его уровень к концу исследований снизился до нормы. На всем протяжении опыта содержание калия в плазме крови у животных обеих групп было выше нормы, также у овец увеличилась концентрация натрия, не выходя за пределы нормы.

Концентрация цинка в крови опытных животных возросла пропорционально вводимому в составе солевого препарата данного элемента в 1,6 раза с 46,52+3,21 мкмоль/л до 73,8±4,45 мкмоль/л. Уровень цинка у опытных овец на всем протяжении исследований был достоверно выше (Р<0,05), чем в контроле, но не выходил за границу нормы. Мы объясняем это избытком у овец калия, который является антагонистом цинка.

После увеличения через один месяц концентрации меди с 9,93±1,88 мкмоль/л до 14,56+0,73 мкмоль/л ее уровень к концу исследований снизился до 9,91+0,69мкмоль/л, при норме 14,0— 15,7 мкмоль/л. По нашему мнению, поступление в рацион овец сернокислого цинка в составе солевого препарата препятствовало усвоению организмом животных меди, так как цинк является антагонистом меди.

К концу опыта уровень марганца в крови опытных овец увеличился за счет вводимого в составе солевого препарата данного элемента в 1,5 раза и был достоверно выше (Р < 0,05), чем в контро-

ле, но не выходил за пределы нормы. Очевидно, фосфор, которого в крови животных было в избытке, как антагонист марганца снизил его усвояемость организмом овец.

На всем протяжении опыта уровень общего белка в сыворотке крови опытных овец был выше по сравнению с контролем, не выходя за пределы нормы. Через два и три месяца содержание общего белка в сыворотке крови овец опытной группы было соответственно на 15% (Р<0,05) и 7% выше, чем у контрольных животных.

В то же время содержание альбуминов в течение опыта у контрольных животных было выше, чем у опытных овец. Это происходило за счет снижения концентрации альфа- и бета-глобулинов в сыворотке крови овец контрольной группы.

Уровень альфа- и бета-глобулинов опытных животных был в пределах физиологических колебаний, у контрольных овец эти показатели были ниже нормы.

Что касается гамма-глобулинов, то их содержание в крови у овец опытной группы за время опыта повысилась с 35,86±0,90% до 43,59+2,62% (Р<0,05), в то время как у контрольных животных этот показатель достоверно снизился с 35,93±2,37% до 28,37±1,74% (Р<0,05), не выходя за пределы нормы.

В результате проведенных клинических исследований было установлено, что температура тела, частота пульса и дыхания у животных опытной и контрольной групп в период опыта не имели существенных различий и находились в пределах физиологических колебаний.

Таким образом, результаты проведенных исследований показали, что применение в течение трех месяцев солевого препарата не оказывало отрицательного влияния на клиническое состояние овец и не вызывало отклонения гематологических и биохимических показателей от физиологических норм, за исключением содержания в крови животных кальция и меди.

3.6. Результаты испытания лечебно-профилактического солевого препарата при копытной гнили овец

Для проведения опыта в хозяйстве были подобраны по принципу аналогов две отары овцематок, неблагополучные по копытной гнили.

Всем животным опытной отары скармливали в смеси с концентратами солевой препарат в дозе 526,5 мг (сернокислый цинк — 500 мг, сернокислую медь — 15 мг, сернокислый марганец — 10 мг, сернокислый кобальт — 1,5 мг на одну овцу в день) ежедневно в течение месяца. Затем делали двухнедельный перерыв и вновь повторяли месячный цикл применения солевого препарата. Овцы контрольной отары получали обычный рацион.

У десяти животных из опытной и контрольной отары до начала опыта и после каждого месячного цикла скармливания солевого препарата определяли содержание эритроцитов, гемоглобина, лейкоцитов, общего белка, бактерицидную, лизоцимную и фагоцитарную активность. Один раз в месяц в отарах выявляли овец больных копытной гнилью, определяли падеж и вынужденный убой овец и выход шерсти на одно животное.

Как показали результаты исследований, у овец опытной отары количество эритроцитов и гемоглобина увеличилось соответственно с 8,11±0,21И1012/л до 9,45±0,28Я1012/л (Р<0,05) и с 90±2,1г/л до 9б±1,7г/л (Р<0,05). Количество эритроцитов и уровень гемоглобина у животных контрольной отары было ниже данных показателей у овец опытной отары. У овец опытной и контрольной отар на всем протяжении опыта не было отмечено достоверной разницы в уровне содержания лейкоцитов и общего белка, но эти показатели были выше у животных, получавших солевой препарат. У овец опытной отары достоверно повысилась бактерицидная и лизоцимная активность сыворотки крови и фагоцитарная активность нейтрофилов.

В опытной отаре за два месяца применения препарата вновь заболело копытной гнилью 58 овец. В контрольной отаре за этот период вновь заболело 119 животных (Р<0,05). При осмотре больных копытной гнилью овец в опытной отаре у большинства животных отмечали доброкачественное течение патологического процесса, а 54 овцы (29%) через 2 месяца после скармливания препарата выздоровели. В контрольной отаре за это время случаев выздоровления у животных не отмечали. Применение препарата позволило за время опыта снизить в опытной отаре заболеваемость, падеж й вынужденный убой в 2 раза и увеличить настриг шерсти с одной овцы на 130 г (3,4%).

Нежелательных последствий при использовании препарата — ухудшения общего состояния, отрицательного влияния на беременность и на приплод не отмечали.

Таким образом использование солевого препарата повышает естественную резистентность овец, оказывает положительное влияние на гематологические показатели. Применение препарата позволило сократить заболеваемость копытной гнилью в два раза и способствовало выздоровлению 54 (29%) больных овец.

3.7. Эффективность различных препаратов при лечении копытной гнили овец

Изучение лечебного действия растворов формалина, сульфата меди, сульфата цинка провели в неблагополучной по копытной гнили отаре.

Для этого из 35 овец, больных копытной гнилью со средней степенью поражения, сформировали 7 групп. Всем животным провели хирургическую обработку копытец. Пораженные копытца овец первой группы обрабатывали 10%-ным раствором формалина, второй группы — 10%-ным раствором сульфата меди, третьей группы — 10%-ным раствором сульфата цинка. Для лечения пораженных конечностей у животных четвертой, пятой и шестой групп применяли соответственно 10%-ные растворы формачина, сульфата меди, сульфата цинка в сочетании с 3%-ным раствором дезоно-ла. Пораженные копытца овец обрабатывали с двухдневным интервалом с экспозицией их в растворе в течение двух минут. Седьмая группа животных служила контролем. После обработки овец выдерживали 1 час на сухой подстилке.

В результате осмотра овец в группах установлено:

— в первой группе лечебное действие наблюдали после пяти обработок. Выздоровление у всех животных наступило через 10,2±1,58 дня;

— во второй группе выздоровление отмечали через 12,2±2,61 дней после шести обработок у четырех овец из пяти;

— в третьей группе выздоровление наблюдали у всех животных через 9,0+1,88 дня после четырех обработок;

— в четвертой группе выздоровление установили через 12 дней после шести обработок у одной овцы из пяти;

— в пятой группе выздоровление у всех животных наступило через 8,4±1,63 дня после четырех обработок;

— в шестой группе выздоровление у всех овец отмечали после трех обработок через 6,8±0,90 дней;

— в контроле выздоровления животных, больных копытной гнилью, не было.

В результате проведенных исследований установлено, что сульфат цинка оказался более эффективным препаратом при лечении копытной гнили по сравнению с формалином и сульфатом меди. Это выражалось, с одной стороны, в сокращении времени на выздоровление животных, а с другой — в уменьшении количества обработок.

Комбинированное применение 10%-ных растворов сульфата цинка и сульфата меди с 3%-ным раствором дезонола способствует более быстрому выздоровлению овец при копытной гнили. Применение формалина с дезонолом не дало положительного результата при лечении ввиду их противоположного действия.

3.8. Лечебный эффект при копытной гнили ассоциированной вакцины «Овикон»

Опыт по применению вакцины «Овикон» с терапевтической целью проводили в неблагополучной по копытной гнили отаре. Для этого 40 овец с клиническими признаками копытной гнили, характерными для легкой и средней формы поражения копытец, иммунизировали однократно двойной дозой вакцины. В контроле находилось 20 овец с аналогичными признаками копытной гнили. Перед началом опыта у животных обеих групп провели расчистку и обрезку копытец. До вакцинации и через каждые 10 дней в течение 30 дней проводили исследование сыворотки крови на наличие антител к возбудителю копытной гнили в РА у 10 овец из каждой группы. Животных опытной и контрольной групп осматривали через каждые 10 дней.

При осмотре, проведенном в опытной группе через 10, 20 и 30 дней после иммунизации, отметили выздоровление соответственно у пяти, семи и десяти овец. Всего за 30 дней из 40 вакцинированных животных выздоровление было зарегистрировано у 22 овец (55%) При осмотре у выздоровевших животных отметили отсут-

ствие хромоты, исчезновение гнойного экссудата и других клинических признаков, характерных для копытной гнили.

При осмотре овец контрольной группы через 30 дней только у двух животных наблюдали выздоровление. У остальных 18 овец патологический процесс прогрессировал вплоть до отслоения рогового башмака и его спадания у отдельных животных.

Нами установлено, что до опыта средние титры агглютинирующих антител у овец обеих групп были низкими — 1:150 — 1:145. Через 30 дней после вакцйнации у опытных животных установлено резкое повышение уровня специфических антител к О.поёошк в 7,2 раза (1:1080). У овец контрольной группы не отмечено существенного изменения титров антител 1:140 до начала опыта и 1:170 через 30 дней.

Таким образом, результаты исследований показывают, что ассоциированная вакцина «Овикон» обладает лечебным действием при легкой и средней форме копытной гнили.

Терапевтический эффект при копытной гнили вакцины «Овикон» мы объясняем тем, что специфические антитела сыворотки крови через стенку капиллярных сосудов проникают в пораженную ткань копытец и оказывают на возбудителя бактерицидное действие, тем самым способствуют выздоровлению животных.

3.9. Эффективность ассоциированной вакцины «Овикон» в системе мероприятий при копытной гнили овец

Исследования по определению эффективности ассоциированной вакцины «Овикон» и системы мероприятий против копытной гнили проводили в неблагополучных по данному заболеванию хозяйствах. Диагноз на копытную гниль ставили комплексно на основании клинико-эпизоотологических данных, патологоанатомических изменений и лабораторных исследований. Перед началом опыта в отарах проводили осмотр овец на копытную гниль. Вакцину «Овикон» вводили согласно «Наставлению по применению».

В двух хозяйствах СХП «Новомарьевское» и СПК «Кучерлинс-кий» для борьбы с копытной гнилью овец использовали только ассоциированную вакцину «Овикон».

В трех хозяйствах СХП «Каменнобалковское», СПК «Родина», СПК им. Чапаева применяли систему мер по оздоровлению от копытной гнили, таких как: изоляцию больных; расчистку и обрезку копытец; вакцинацию овец с профилактической и лечебной целями; ножные ванны; сдача на убой овец, не поддающихся лечению; смена пастбищ; улучшение условий содержания; профилактика травматизма. При этом основным звеном в системе мероприятий по оздоровлению хозяйств от копытной гнили была вакцинация. Контролем служили овцы неблагополучных по копытной гнили отар, в которых вакцину «Овикон» и систему мероприятий не применяли. Об эффективности вакцины «Овикон» и системы мероприятий судили по количеству овец больных копытной гнилью в опытных и контрольных отарах.

Таблица 5

Результаты испытаний вакцины «Овикон» и системы мероприятий против копытной гнили овец

« Поражен ность

Хозяйство 1 & а V 5 а 5 ё X О к X Кол-во вакцинированных овец ДО вакцинации после вакцинации Снижение заболеваемости, раз

X X Й-£ К кол-во £ кол-во £

СХП «Новомарьевское» - + 2357 242 10,3 61 2,6 4,1

СПК «Кучерлинский» - + 3997 320 8,0 60 1,5 5,3

СХП «Каменнобалковское» + + 3635 218 6,0 18 0,5 оздоров

СПК «Родина» + + 8708 1135 13,1 36 0,4 оздоров.

СПК им. Чапаева + 2701 656 24,3 27 1,0 оздоров.

Полученные данные по испытанию в полевых условиях вакцины «Овикон» показывают, что иммунизация является эффективным средством в борьбе с копытной гнилью овец. Она позволила в СХП «Новомарьевское» и СПК «Кучерлинский» снизить заболеваемость животных соответственно в 4—5 раза (Р<0,05).

В СХП «Каменнобалковское», СПК «Родина» и СПК им. Чапаева для борьбы с копытной гнилью овец применяли систему мероп-

риятий с использованием вакцины «Овикон». При осмотре, проведенном до внедрения комплексной системы мероприятий в этих хозяйствах, было выявлено соответственно 218 (6,0%), 1135 (13,1%) и 656 (24,3%) овец с заболеванием копытец. Через 4—5 месяцев после применения системы мероприятий в хозяйствах было выявлено соответственно 18 (0,5%), 36 (0,4%) и 27 (1,0%) овец, пораженных копытной гнилью (Р<0,05). Применение комплексной системы мероприятий с использованием иммунизации как основного звена способствовало оздоровлению хозяйств от копытной гнили (табл. 5). В то же время в контрольных отарах вышеуказанных хозяйств, где вакцину «Овикон» не применяли, заболеваемость овец копытной гнилью составила 10—25%.

Об эффективности вакцины «Овикон» мы судили не только по количеству заболевших копытной гнилью овец в опытных и контрольных отарах, но и по количеству пораженных конечностей у животных. При осмотре 370 овец опытной отары выявили 13 больных животных, у которых было поражено 15 конечностей, что составляет 1,0% от общего количества конечностей у овец отары. Клинические признаки копытной гнили у привитых животных были характерны в большинстве случаев для начальной и легкой стадии болезни. В контрольной отаре при осмотре 363 овец копытную гниль зарегистрировали у 52 животных, у которых было выявлено 78 пораженных конечностей, что составляет 5,4% от общего количества конечностей у овец отары. У контрольных овец поражения в основном были характерны для средней и тяжелой формы копытной гнили.

Таким образом, результаты производственного испытания вакцины «Овикон» показали ее эффективность, проявляющуюся в существенном снижении заболеваемости копытной гнилью среди привитых животных в 4—5 раза.

Однако полной ликвидации копытной гнили в неблагополучных хозяйствах можно добиться при использовании вакцинации в системе мероприятий по оздоровлению хозяйств отданной инфекции.

У овец, привитых вакциной «Овикон», количество пораженных конечностей было в 5 раз меньше по сравнению с контролем, а также у них отмечали более доброкачественное течение копытной гнили.

3.10. Эффективность вакцины «Овикон» в комплексе с препаратом «Цинкосол» при копытной гнили овец

Испытание эффективности вакцины «Овикон» в сочетании с препаратом «Цинкосол» провели в неблагополучном по копытной гнили хозяйстве. «Цинкосол» — это комплексный препарат, в состав которого входит сульфат цинка и ПАВ. Он обладает антисептическим, дерматотропным и регенеративным действием. Препарат применяется для профилактики и лечения копытной гнили овец местно при помощи ножных ванн.

Опыт проводили в трех отарах неблагополучных по копытной гнили. Четвертая отара была контрольной.

Диагноз на копытную гниль ставили комплексно на основании клинико-эпизоотологических данных, патологоанатомических изменений и результатов бактериоскопии.

Овцы первой и третей опытных отар были иммунизированы против копытной гнили вакциной «Овикон» согласно наставлению по ее применению.

Животных второй опытной отары пропускали через ножную ванну с 10%-ным раствором цинкосола с интервалом 10 дней в течение трех месяцев.

Овец третьей отары после вакцинации дополнительно обрабатывали в ножной ванне с 10%-ным раствором цинкосола с интервалом 10 дней в течение трех месяцев.

В контрольной отаре овец не прививали вакциной «Овикон» и не обрабатывали в ножной ванне.

До начала опыта заболеваемость копытной гнилью в отарах составляла 1,3—1,8%. Эти животные были оставлены в отарах в качестве источника возбудителя инфекции. При осмотре, проведенном через три месяца в первой опытной отаре, было выявлено 14 овец вновь заболевших копытной гнилью. При этом было установлено, что поражения, у вновь заболевших вакцинированных животных характерны для начальной и легкой формы болезни. У четырех из семи больных овец, которые находились в 1-й отаре до начала опыта, через один месяц после вакцинации отмечали выздоровление.

Во 2-й опытной отаре заболевание копытец было установлено у 23 овец. Характер поражения в основном тот же, что и у животных первой отары.

За время исследований в 3-й опытной отаре овец больных копытной гнилью не было выявлено.

При осмотре, проведенном в контрольной отаре через три месяца, было зарегистрировано 73 пораженных животных, не считая шести овец, больных копытной гнилью, которые находились в отаре до начала опыта (табл. 6).

Таблица 6

Эффективность вакцины «Овикон» в комплексе с цивкосолом

при копытной гнили

Количество овец Пораженность (гол, %)

Отара Метод обработки до обработки после Обработки

Опытная № 1 Вакцинация 403 7(1,7%) 14 (3,5%)*

Опытная №2 Ножная ванна с цинкосолом 387 7(1,8%) 23 (5,9%)*

Опытная №3 Вакцинация +ножная ванна с цинкосолом 374 5(1,3%)

Контрольная - 380 6(1,6%) 73(19,2%)

Примечание: * — Р<0,05

Таким образом, применение вакцины «Овикон» в сочетании с ножной ванной, содержащей 10%-ный раствор цинкосола, позволило оздоровить отару от копытной гнили. Среди животных первой и второй опытных отар заболеваемость копытной гнилью была соответственно в 5 и 3 раза достоверно ниже по сравнению с контролем (Р<0,05).

3.11. Система мероприятий по профилактике и борьбе с копытной гнилью овец

1. Профилактика копытной шили

Мероприятия по профилактике копытной гнили овец включают комплекс мер, основными из которых являются:

— недопущение заноса возбудителя болезни в благополучное хозяйство;

— сохранение целостности и устойчивости копытного рога;

— повышение естественной резистентности животных;

— улучшение условий содержания, препятствующие размягчению копытного рога, и профилактика травматизма;

— недопущение контакта овец благополучных хозяйств с неблагополучными отарами на пастбищах, местах водопоя и т.д.;

— профилактические обработки конечностей в ножных ваннах не менее 2-х раз в год, перед выгоном животных на пастбище и перед постановкой на стойловое содержание;

— профилактические дезинфекции кошар, базов, инвентаря и тд.;

2. Мероприятия по борьбе с копытной гнилью

Меры борьбы с копытной гнилью строятся на основе научно обоснованной системы, включающей комплекс мероприятий в неблагополучном хозяйстве, ведущими из них являются:

— изоляция больных и подозреваемых по заболеванию копытной гнилью овец;

— осмотр и расчистка копытец, обрезка копытного рога, удаление пораженных тканей;

— вынужденная иммунизация животных с профилактической и лечебной целью;

— профилактические и лечебные ножные ванны для обработки конечностей;

— лечение больных овец или сдача на убой неподдающихся лечению животных;

— вынужденная дезинфекция кошар, базов, инвентаря и т.д., санация пастбищ;

— мероприятия по повышению естественной резистентности животных;

— мероприятия по улучшению условий содержания и профилактика травматизма.

Иммунопрофилактика. Для специфической профилактики копытной гнили в России применяют инактивированную ассоциированную вакцину против инфекционных заболеваний конечностей овец «Овикон» согласно «Наставлению по применению», утвержденному 05.11,97г. ДВ МСХ РФ, для активной иммунизации здоровых и больных животных старше 6-ти месяцев с профилактической и терапевтической целью.

Лечение овец больных копытной гнилью. Перед началом лечения проводят хирургическую обработку — удаляют пораженные ткани, экссудат, гной, излишне отросший рог. Лечение проводят как групповым методом, так и индивидуально.

Групповой метод лечения копытной гнили. Для группового лечения применяют ножные ванны, заполненные растворами дезинфицирующих средств: 10%-ный раствор сернокислого цинка, 10%-ный раствор формалина (или 5%-ный раствор параформа), 10%-ный раствор сернокислой меди, 3%-ный раствор феносмолина, 4— 5%-ный раствор глутарового альдегида и др.

Основные принципы применения ножных ванн — секцион-ность и комбинированность. Ванны должны состоять не менее чем из двух секций. Первая секция заполняется водой и служит для мойки копытец, а вторая секция с дезинфицирующим раствором. Больное животное должно находиться в ножной ванне не менее 2—3 минут, после этого овец выдерживают не менее 1 часа на сухой подстилке.

Индивидуальный метод лечения копытной гнили. Для индивидуального лечения при копытной гнили предложены мази, эмульсии, присыпки, порошки, содержащие антибиотики и сульфаниламиды. Применение их эффективно, но более трудоемко, так как при этом обычно требуется наложение повязок на пораженное копытце.

В тяжелых случаях больным животным вводят антибиотики: ле-вомицетин, пенициллин, тетрациклин, эритромицин, дибиоми-цин, дитетрациклин, бициллин-3, бициллин-5.

Для местного лечения эффективно применение аэрозольных форм антибиотиков на основе левомицетина, хлормицетина, окситетра-циклина.

Применение препаратов цинка при копытной тили. Из препаратов на основе сернокислого цинка для ножных ванн наиболее эффективен «Цинкосол», который используют в соответствии с «Временным наставлением по применению препарата «Цинкосол» в ветеринарии», утвержденным 05.11.97 г. ДВ МСХ РФ.

С профилактической и лечебной целью при копытной гнили показано применение сернокислого цинка в дозе 0,5-0,75 г/гол. в сутки, для чего препарат добавляют в комбикорм в сухом виде или в виде концентрированного раствора (обрызгивают грубый корм).

3.12. Оценка экономической эффективности различных методов борьбы с копытной гнилью овец

Экономическую эффективность различных методов борьбы с копытной гнилью определяли на примере одного хозяйства, где меры борьбы осуществляли по трем вариантам:

а) обработка овец в ножной ванне с 10%-ным раствором сернокислой меди с интервалом в 5 дней (базовый вариант);

б) иммунизация овец против копытной гнили ассоциированной вакциной «Овикон» (предлагаемый вариант I);

в) сочетание иммунизации вакциной «Овикон» с ежедекадной обработкой животных в ножной ванне с 10%-ным раствором «Цинкосола» (предлагаемый вариант II).

При этом экономический эффект на весь объем внедрения при первом варианте составил 6032,9 руб., а при втором варианте — 5677,3 руб. Экономический эффект на одно обработанное животное при обоих вариантах борьбы составил соответственно 15 и 15,2 руб.

4. ВЫВОДЫ

1. Копытная гниль овец имеет распространение во всех агроклиматических зонах Ставропольского края. Процент неблагополучных по данному заболеванию отар выше в хозяйствах, расположенных в зонах с большим количеством среднегодовых осадков (умеренно влажная — 60%, неустойчиво влажная — 47%, засушливая — 36% и очень засушливая — 22%). Копытной гнилью поражаются овцы различных половозрастных групп, но наибольший процент больных отмечается среди овцематок старше 3-х лет (21,6%) и баранов-производителей (14,4%). Ягнята до 3—4-месячного возраста болеют копытной гнилью очень редко (0,7—1.1%). Болезнь регистрируется во все сезоны года. В условиях Ставропольского края наблюдается одна (зимне-весенняя) эпизоотическая вспышка копытной гнили.

2. Для диагностики копытной гнили более эффективным оказался метод непрямой иммунофлуоресценции, который позволяет сочетать визуальную микроскопию со специфичностью серологической реакции. При люминесцентной микроскопии положительный результат был получен при исследовании патологического материала от 85,7%, при световой — от 27,6% животных.

3. Средние титры антител сыворотки крови больных овец в РА и РНИФ были 1:156 и 1:95, а у здоровых овец соответственно 1:83 и 1:54 (разница статистически недостоверная, Р>0,05). Поэтому эти реакции нельзя использовать для серологической диагностики копытной гнили.

4. В патологическом процессе при копытной гнили овец наряду с основным возбудителем болезни В.поёояш (77% исследованных проб) принимает участие сопутствующая микрофлора — С.регй-^еш тип А (69%), стафилококки (42%), эшерихии (37%), стрептококки (31%), некробактерии (25%), протей (24%), корине -бактерии (12%) и другие микроорганизмы, которые установлены в единичных случаях.

5. Патогенными свойствами для овец обладали 5 из 13 культур возбудителя копытной шили. При этом три штамма были слабопатогенными, а два штамма патогенными и вызывали у животных типичные признаки копытной гнили. Вызвать копытную гниль при заражении овец чистой культурой В.посЬяия удается не всегда. Это связано с тем, что при аппликации культуры на скарифицированную кожу межпальцевой щели не удается количественно оценить заражающую дозу, а также отсутствием сопутствующих микроорганизмов, которые в естественных условиях принимают участие в патологическом процессе при этом заболевании.

6. В состав солевого препарата для профилактики копытной гнили были включены следующие элементы: сернокислый цинк — 500 мг, сернокислая медь — 15 мг, сернокислый марганец — 10 мг, сернокислый кобальт — 1,5 мг. Дозы микроэлементов указаны на одну овцу в сутки. Скармливание солевого препарата не оказывало отрицательного влияния на клиническое состояние овец и не вызывало отклонения гематологических и биохимических показателей от физиологических норм, за исключением уменьшения содержания в крови животных кальция и меди соответственно до 1,85+0,05 ммоль/л и 9,91+0,69 мкмоль/л при норме 2,5— 3,1 ммоль/л и 14,0 — 15,7 мкмоль/л.

7. Солевой препарат обладает профилактическим и лечебным действием при копытной гнили, повышает естественную резистентность овец, оказывает положительное влияние на гематологические показатели. Применение с концентратами в неблагополучной по копытной гнили отаре солевого препарата позволило

сократить заболеваемость в два раза и способствовало выздоровлению 29% овец.

8. Водный 10%-ный раствор сульфата цинка оказался более эффективным препаратом для ножных ванн при лечении копытной гнили по сравнению с 10%-ными растворами формалина или сульфата меди. Это выражалось в сокращении времени на лечение и в количестве выздоровевших животных. Комбинированное применение 10%-ных растворов сульфата цинка и сульфата меди с 3%-ным раствором дезонола способствовало более быстрому выздоровлению овец соответственно на 3 и 4 дня.

9. Ассоциированная вакцина «Овикон» является эффективным средством в борьбе с копытной гнилью овец. Она позволяет значительно снизить заболеваемость среди вакцинированных животных в 4—5 раз. У иммунизированных овец количество пораженных конечностей было в 5 раз меньше по сравнению с контролем, а также у них отмечали более доброкачественное течение копытной гнили. Вакцина кроме профилактического обладает и лечебным действием: из 40 привитых овец выздоровело 22 (55%) животных.

10. Применение вакцины «Овикон» в сочетании с ножной ванной, содержащей 10%-ный раствор цинкосола, позволило оздоровить от копытной гнили четыре отары овец.

11. Использование комплексной системы мероприятий по борьбе с копытной гнилью овец, где вакцинация является ведущим звеном, позволяет оздоровить хозяйства, неблагополучные поданной инфекции.

12. Из испытанных методов борьбы с копытной гнилью овец наиболее экономически эффективным является иммунизация овец вакциной «Овикон». При этом методе экономический эффект на одно обработанное животное составляет 15,0 руб., а на каждый затраченный рубль — 3,74 руб.

5. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

1. Разработана и внедрена в производство ассоциированная вакцина «Овикон» против инфекционных заболеваний конечностей овец (копытной гнили и некробактериоза), выпуск которой налажен на Ставропольской биофабрике. Патент 2098128. Вакцина

применяется в неблагополучных по копытной гнили и некробакте-риозу овцеводческих хозяйствах.

2. Разработано наставление по применению вакцины против инфекционных заболеваний конечностей овец, инактивированной, ассоциированной «Овикон», утвержденное Департаментом ветеринарии Минсельхозпрода России 13—4—2/078 от 5.11.97 г.

3. Разработаны и внедрены в ветеринарную практику «Методические рекомендации по профилактике и борьбе с копытной гнилью овец». Одобрены секцией «Инфекционная патология животных» Отделения ветеринарной медицины Российской академии сельскохозяйственных наук (РАСХН) протокол 3 от 25 сентября 2003 года. Утверждены Отделением ветеринарной медицины Рос-сельхозакадемии 22 марта 2004 года.

4. На основании результатов исследований кормов и крови овец разработан солевой препарат для профилактики и лечения копытной гнили овец, в состав которого вошли следующие микроэлементы: сернокислый цинк, сернокислая медь, сернокислый марганец и сернокислый кобальт.

СПИСОК ОПУБЛИКОВАННЫХ РАБОТ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ

1. Кононов, А.Н. Восприимчивость овец и ягнят к копытной гнили / А Н. Кононов // Бюлл. ВИЭВ. — 1984. — Вып. 56. — С. 74-76.

2. Кононов, А.Н. Образование специфических антител при введении овцам антигена B.nodosus / А.Н. Кононов // Бюлл. ВИЭВ. — 1986. - Вып. 62. - С. 9-10.

3. Кононов, А.Н. Некоторые вопросы эпизоотологии копытной гнили овец в хозяйствах Ставропольского края / А.Н. Кононов // Диагностика, лечение, профилактика инфекционных и паразитарных заболеваний сельскохозяйственных животных: Сб. науч. тр. / Ставроп. СХИ. — Ставрополь, 1987. - С. 74-77.

4. Архангельский, И.И. Динамика антителообразования при иммунизации овец вакциной ВИЭВ против копытной гнили / И.И. Архангельский, Ю.Д. Караваев, A.A. Сидорчук, А.Н. Кононов //Диагностика, лечение, профилактика инфекционных и паразитарных заболеваний сельскохозяйственных животных: Сб. науч.т р. / Ставроп. СХИ. - Ставрополь, 1987. - С. 8-10.

5. Кононов, А.Н. Профилактика и меры борьбы с копытной гнилью овец: Рекомендации / А.Н. Кононов, В.Г. Жаров, Б.Н. Афанасьев и др. — Ставрополь, 1987. — 13 с.

6. Архангельский, И.И. Комплексный метод профилактики копытной гнили / И.И. Архангельский, Ю.Д. Караваев, A.A. Сидорчук, А.Н. Кононов // Болезни овец в Ставропольском крае: Сб. науч. тр. / Ставроп. НИВС. — Ставрополь, 1991. — С. 18-21.

7. Архангельский, И.И. Сравнительная эффективность вакцин против копытной гнили в полевых условиях / И.И. Архангельский, Ю.Д. Караваев, A.A. Сидорчук, А.Н. Кононов //Болезни овец в Ставропольском крае: Сб. науч. тр. / Ставроп. НИВС. — Ставрополь, 1991. - С. 21-24.

8. Караваев, Ю.Д. Специфическая профилактика копытной гнили овец / ЮД. Караваев, A.A. Сидорчук, С.Д. Панасюк, И.Н. Семенова, И.И. Архангельский, Г.Г. Абсатиров, А.Н. Кононов//Труды ВИЭВ. - Москва, 1991. - Т. 69. - С. 33-43.

9. Кононов, А.Н. К вопросу этиологии инфекционных болезней конечностей у овец в условиях Ставропольского края / А.Н. Коно-

нов, В.Г. Новиков //Диагностика, лечение и профилактика заболеваний сельскохозяйственных животных: Сб. науч. тр. / Ставроп. СХИ. — Ставрополь, 1993. — С. 71-73.

10. Новиков, В.Г. Бактерицидная активность дезонола для микроорганизмов, выделенных из пораженных копытец овец /В.Г. Новиков, А.Н. Кононов // Диагностика, лечение и профилактика заболеваний сельскохозяйственных животных: Сб. науч. тр. / Ставроп. СХИ. - Ставрополь, 1993. - С. 74-75.

И. Кононов, А.Н. Применение столбнячного анатоксина при лечении овец, больных копытной гнилью / А.Н. Кононов,

B.Г. Новиков, A.B. Остров // Диагностика, лечение и профилактика заболеваний сельскохозяйственных животных: Сб. науч. тр. / Ставроп. ГСХА. — Ставрополь, 1995. — С. 42-44.

12. Панасюк, С.Д. Специфическая профилактика инфекционных болезней конечностей крупного рогатого скота и овец /

C.Д. Панасюк, H.H. Кружнов, JI.B. Кириллов, A.A. Сидорчук, Г.И. Устинова, А.Н. Кононов: Сб. науч. тр. ВГНКИ. — Москва, 1996. — Т. 59. - С. 76-82.

13.Панасюк, С.Д. Новые препараты для профилактики и терапии инфекционных заболеваний конечностей у крупного и мелкого рогатого скота / С.Д. Панасюк, H.H. Кружнов, JI.B. Кириллов, A.A. Сидорчук, А.Н. Кононов и др. // Диагностика, лечение и профилактика заболеваний сельскохозяйственных животных: Сб. науч. тр. / Ставроп. ГСХА. — Ставрополь, 1996. — С. 24-27.

14. Свдорчук, A.A. Перспективы применения цинкосодержащих препаратов при инфекционных болезнях конечностей жвачных / A.A. Сидорчук, С.Д. Панасюк, А.Н. Кононов и др. // Вестник ветеринарии. - 1997. - 5 (3/1997). - С. 78-81.

15. Пат. 2098128 РФ. Ассоциированная вакцина «Овикон» против инфекционных заболеваний конечностей овец / С.Д. Панасюк, Л.В. Кириллов, H.H. Кружнов, A.A. Сидорчук, А.Н. Кононов. — Заявка 96119161. Заявлено 26.08.1996. Приоритет 26.09.1996. -12 с.

16. Кононов, А.Н. Эффективность препаратов при копытной гнили овец / А.Н. Кононов //Диагностика, лечение и профилактика заболеваний сельскохозяйственных животных: Сб. науч.тр. / Ставроп. ГСХА. — Ставрополь, 1998. — С. 40- 42.

17. Кононов, А.Н. Изучение влияния микроэлементов на гематологические и биохимические показатели крови овец / А.Н. Кононов, М.Г. Водолазский //Диагностика, лечение и профилактика заболеваний сельскохозяйственных животных: Сб. науч. тр. / Став-роп. ГСХА. — Ставрополь, 1999. - С. 105-107.

18.Сидорчук, A.A. Система мероприятий по борьбе с некро-бактериозом крупного рогатого скота и копытной гнилью овец / A.A. Сидорчук, С.Д. Панасюк, H.H. Кружнов, JI.B. Кириллов, Г.И. Устинова, А.Н. Кононов и др. // Ветеринария. — 1999. — 6. — С. 23-27.

19. Кононов, А.Н. Эффективность цинксодержащего солевого препарата при копытной гнили овец / А.Н. Кононов // Актуальные вопросы диагностики, профилактики и борьбы с болезнями сельскохозяйственных животных: Материалы Междунар. науч.-практ. конф., посвященной 70-летию Ставропольской НИВС. — Ставрополь, 1999. - С. 84-85.

20. Кононов, А.Н. Эпизоотология и специфическая профилактика копытной гнили овец в Ставропольском крае / А.Н. Кононов, С.Д. Панасюк, H.H. Кружнов и др.: Сб. науч. тр. ВГНКИ. — Москва, 2001.-Т.62.-С. 113-117.

21. Кононов, А.Н. Специфическая профилактика копытной гнили овец/А. Н. Кононов, A.A. Сидорчук, С.Д. Панасюк //Диагностика, лечение и профилактика заболеваний сельскохозяйственных животных: Сб. науч. тр. / Ставроп. ГАУ. — Ставрополь, 2001. — С. 34-36.

22. Кононов, А.Н. К вопросу профилактики копытной гнили овец / А.Н. Кононов // Диагностика, лечение и профилактика заболеваний сельскохозяйственных животных: Сб. науч. тр. / Ставроп. ГАУ. - Ставрополь, 2003. - С. 42-44.

23. Кононов, А.Н. Влияние микроэлементов на естественную резистентность овец / А.Н. Кононов, Л.В. Иванова // Актуальные вопросы зоотехнической науки и практики как основа улучшения продуктивных качеств и здоровья сельскохозяйственных животных: Материалы II Междунар. науч.-практ. конф. / Ставроп. ГАУ. — Ставрополь, 2003. — С. 343-345.

24. Кононов, А.Н. Эпизоотология и этиология копытной гнили / А.Н. Кононов // Вестник ветеринарии. — 2004. — 29 (2/2004). — С. 49-53.

25. Кононов, АН. Лечебно-профилактическое действие солевого препарата при копытной гнили овец / А.Н. Кононов // Вестник ветеринарии. — 2004. — 29 (2/2004). - С. 53-56.

26. Кононов, А.Н. Методические рекомендации по профилактике и борьбе с копытной гнилью овец / А.Н. Кононов, А.Ф. Дмитриев, В.И. Заерко и др. — Москва, 2004. — 18 с.

Подписано в печать 24.09.2004 Формат 60х84'/16 Бумага офсетная Гарнитура «Times» Печать офсетная. Усл. печ. л 2,33 Тираж 100 экз. Заказ 571.

Издательство СтГАУ «АГРУС», г. Ставрополь, пер. Зоотехнический, 12. Тел/факс (8652) 35-06-94. E-mail:agrus@stgau.ru; http://www.agrus.stgau.ru.

Отпечатано в типографии издательско-полиграфического комплекса СтГАУ «АГРУС», г Ставрополь, ул. Мира, 302.

РНБ Русский фонд

2007-4 4787

г* S V

Г * 9 %

I î I

 
 

Оглавление диссертации Кононов, Анатолий Николаевич :: 2004 :: Ставрополь

ВВЕДЕНИЕ.

1 .ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1. История вопроса

1.2. Эпизоотический процесс при копытной гнили, экономический ущерб.

1.3 .Патогенез копытной гнили.

1.4. Диагностика копытной гнили.

1.5. Биологические свойства Б1с11е1оЬас1ег поск^ш.

1.6. Антигенная структура О.поёозш.

1.7. Иммунитет при копытной гнили.

1.8. Специфическая профилактика и терапия.

1.9. Мероприятия по профилактике копытной гнили.

1.10. Меры борьбы.

 
 

Введение диссертации по теме "Ветеринарная эпизоотология, микология с микотоксикологией и иммунология", Кононов, Анатолий Николаевич, автореферат

Актуальность темы. Овцеводство является важнейшей отраслью животноводства, удовлетворяя потребность населения в мясе, а промышленность шерстью и кожевенным сырьем. Ставропольский край является крупнейшим овцеводческим регионом России, где созданы и разводятся высокопродуктивные тонкорунные породы овец.

В то же время инфекционные болезни конечностей овец (копытная гниль, некробактериоз) занимают одно из ведущих мест в заразной патологии этого вида животных, а трудности мер борьбы с ними серьезно сдерживают рост и развитие овцеводства.

Среди таких заболеваний наиболее значимой является копытная гниль, которая имеет широкое распространение в России, в том числе в Ставропольском крае, регистрируется ежегодно, в значительных масштабах и наносит овцеводству большой экономический ущерб (М.Сидоров, А.Ляушкин 1973; Х.Абдурагимов 1986, 1974; А.Саттаров, У.Акчурин 1976; А.Сидорчук 1980; М.Бектемиров 1981, 1983; А.Шматкова, Н.Щербань 1982; А.Голиков, К.Мельникова 1984; Ш.Сукеев и др. 1987; М.Ви1^п ег а1. 1985; .Шга&п ег а1. 1989; Б.МагзЬаП «* а1. 1991).

По мнению ряда исследователей, решающую роль в возникновении копытной гнили овец имеет возбудитель болезни 01сЬе1оЬас1ег поскэБиэ, а остальная микрофлора, фузобактерии, бактероиды, клостридии, спирохеты, кокки, способствуют усилению тяжести инфекционного процесса (А.Сидорчук, Н.Масалски 1983; А.Сидорчук, С.Панасюк 1988; С.Панасюк и др. 1988, 1991, 1996; ЫХа^сИ 1976; 1.Е§еПоп ег а1. 1983).

Полифакторность копытной гнили овец, вовлечение в патологический процесс различных ассоциаций бактериальных агентов осложняет современную диагностику и резко снижает эффективность профилактических и лечебных мероприятий.

Для успешной борьбы с копытной гнилью необходимо знать в регионе эпизоотическую ситуацию, этиологическую структуру болезни, источники и пути передачи инфекции, сезонность и ряд других вопросов.

Для профилактики и борьбы с копытной гнилью в 20-м веке были созданы моновалентные-полиштаммовые вакцины С1оуах, Ргоуас, Боосах, Г^еИап (Англия, Австралия, Новая Зеландия, Франция). Однако в условиях воздействия микробной ассоциации на пораженный орган, применение существующих моновалентных средств специфической профилактики оказывается недостаточно эффективным (А.Сидорчук, С.Панасюк 1988; Z.Cygan & а1. 1981; М.КаЦшка 1982).

Основываясь на проведенных эпизоотологических и микробиологических исследованиях, в нашей стране была создана ассоциированная инактивированная вакцина против инфекционных заболеваний конечностей овец «Овикон». Применение этого препарата позволяет одновременно профилактировать копытную гниль и некробактериоз конечностей овец и коз. До этого ассоциированные вакцины против копытной гнили в нашей стране не изготовляли и не применяли, не были разработаны методы оценки эффективности вакцинации при данной инфекции.

Учитывая сложность развития патологического процесса при копытной гнили, участия в нем кроме возбудителя В.поёоБиэ сопутствующей микрофлоры, стратегия профилактики и борьбы должна строиться на комплексном воздействии, как на этиологические факторы болезни, так и на организм в целом.

Для осуществления этой концепции необходимо знание вопросов эпизоотологии, этиологической структуры и наличия эффективных средств для терапии и специфической профилактики копытной гнили.

Изложенное позволяет считать, что изучение вопросов эпизоотологии, этиологической структуры, диагностики, иммунитета, специфических и неспецифических средств профилактики и терапии, и на основании этого разработка комплексной системы мероприятий по профилактике и борьбе с копытной гнилью является актуальной проблемой.

Цель работы. Основной целью наших исследований явилась разработка рациональной научно-обоснованной системы мероприятий по профилактике и борьбе с копытной гнилью овец.

Исходя из этого, в задачи исследований входило:

1. Изучить особенности проявления эпизоотологического процесса копытной гнили овец в различных агроклиматических зонах Ставропольского края и роли сопутствующей микрофлоры в этиологии и патогенезе болезни.

2. Определить содержание макро- и микроэлементов в кормах и крови здоровых и больных копытной гнилью овец. Разработать состав солевого препарата для профилактики болезни в зависимости, от уровня макро- и микроэлементов в кормах и крови овец и изучить его влияние на гематологические и биохимические показатели. Испытать солевой препарат для профилактики копытной гнили овец.

3. Определить эффективность различных препаратов для профилактики и лечения копытной гнили овец.

4. Определить эффективность ассоциированной вакцины «Овикон» при копытной гнили овец.

5. Разработать комплексную систему мероприятий по профилактике и борьбе с копытной гнилью овец.

6. Дать оценку экономической эффективности различных методов борьбы с копытной гнилью овец.

Научная новизна работы. Впервые в России, в соавторстве, разработана и испытана с положительным результатом ассоциированная вакцина «Овикон» против инфекционных заболеваний конечностей овец; представлены новые данные эпизоотической ситуации по копытной гнили овец в хозяйствах Ставропольского края; изучена роль сопутствующей микрофлоры в этиологии и патогенезе копытной гнили овец; установлена взаимосвязь между содержанием макро- и микроэлементов в кормах и крови овец и заболеванием их копытной гнилью; предложены новые эффективные средства и методы профилактики и борьбы с копытной гнилью овец.

Практическая значимость работы. Впервые в России разработана и внедрена в производство ассоциированная вакцина «Овикон» против инфекционных заболеваний конечностей овец, выпуск которой налажен на Ставропольской биофабрике. Патент № 2098128. Приоритет изобретения 26.09.96г. Зарегистрирован в Государственном реестре изобретений 10.12.97г. Вакцина применяется в неблагополучных по копытной гнили овцеводческих хозяйствах.

Материалы выполненных исследований вошли в «Методические рекомендации по профилактике и борьбе с копытной гнилью овец», одобренные секцией «Инфекционная патология животных» Отделения ветеринарной медицины РАСХН, протокол №3 от 25.09.2003г. и утвержденные Отделением ветеринарной медицины Россельхозакадемии 22 марта 2004г., изданы в г. Москва 2004г., внедрены в овцеводческих хозяйствах Ставропольского края.

Апробация работы. Основные положения и результаты исследований, изложенные в диссертационной работе, доложены и одобрены на научных конференциях СГСХА, СГАУ (1990-2003гг.), Воронежского госагроуниверситета (1996г.), международных научных конференциях (г. Махачкала, 1997, г.Ставрополь, 1993, 2003), Всероссийской научной конференции ВГНКИ (г. Москва, 2001), на заседании секции «Инфекционная патология животных» Отделения ветеринарной медицины РАСХН (г. Покров, 2003).

Публикации. По материалам исследований опубликовано 26 работ, в которых отражены основные положения и выводы по теме диссертации, в том числе получен патент на изобретение.

Объем и структура диссертации. Диссертация изложена на 250 страницах машинописного текста, содержит 39 таблиц и 8 рисунков (фотографии). Состоит из введения, обзора литературы, материалов и методов, результатов исследований и их обсуждения, выводов, практических предложений, списка литературы, включающего 458 источников, в том числе 337 зарубежных авторов, и 11 приложений.

 
 

Заключение диссертационного исследования на тему "Эффективность системы противоэпизоотических мероприятий при копытной гнили овец"

4. ВЫВОДЫ

1. Копытная гниль овец имеет распространение во всех агроклиматических зонах Ставропольского края. Процент неблагополучных по данному заболеванию отар выше в хозяйствах, расположенных в зонах с большим количеством среднегодовых осадков (умеренно влажная - 60%, неустойчиво влажная - 47%, засушливая - 36% и очень засушливая - 22%). Копытной гнилью поражаются различные половозрастные группы животных, но наибольший процент больных отмечается среди овцематок старше 3-х лет (21,6%) и баранов-производителей (14,4%). Ягнята до 3 - 4-х месячного возраста болеют копытной гнилью очень редко (0,7 - 1,1%). Болезнь регистрируется во все сезоны года. В условиях Ставропольского края наблюдается одна (зимне-весенняя) эпизоотическая вспышка копытной гнили.

2. Для диагностики копытной гнили более эффективным оказался метод непрямой иммунофлуоресценции, который позволяет сочетать визуальную микроскопию со специфичностью серологической реакции. При люминесцентной микроскопии положительный результат был получен при исследовании патологического материала от 85,7%), при световой - от 27,6%) животных.

3. Средние титры антител сыворотки крови больных овец в РА и РНИФ были 1:156 и 1:95, а у здоровых овец соответственно 1:83 и 1:54 (разница статистически недостоверная, Р>0,05). Поэтому эти реакции нельзя использовать для серологической диагностики копытной гнили.

4. В патологическом процессе при копытной гнили овец наряду с основным возбудителем болезни D.nodosus (77% исследованных проб) принимает участие сопутствующая микрофлора - C.perfringens тип А (69%), стафилококки (42%), эшерихии (37%), стрептококки (31%), некробактерии (25%), протей (24%), коринебактерии (12%) и другие микроорганизмы, которые установлены в единичных случаях.

5. Патогенными свойствами для овец обладали 5 из 13 культур возбудителя копытной гнили. При этом три штамма были слабопатогенными, а два штамма патогенными и вызывали у животных типичные признаки копытной гнили. Вызвать копытную гниль при заражении овец чистой культурой О.посЗоБиБ удается не всегда. Это связано с тем, что при аппликации культуры на скарифицированную кожу межпальцевой щели не удается количественно оценить заражающую дозу, а также отсутствием сопутствующих микроорганизмов, которые в естественных условиях принимают участие в патологическом процессе при данном заболевании.

6. В состав солевого препарата для профилактики копытной гнили были включены следующие элементы: сернокислый цинк - 500мг, сернокислая медь — 15мг, сернокислый марганец — 10мг, сернокислый кобальт - 1,5мг. Дозы микроэлементов указаны на одну овцу в сутки. Скармливание солевого препарата не оказывало отрицательного влияния на клиническое состояние овец и не вызывало отклонения гематологических и биохимических показателей от физиологических норм, за исключением уменьшения содержания в крови животных кальция и меди соответственно до 1,85±0,05ммоль/л и 9,91±0,69мкмоль/л при норме 2,5 - 3,1ммоль/л и 14,0 - 15,7мкмоль/л.

7. Солевой препарат обладает профилактическим и лечебным действием при копытной гнили, повышает естественную резистентность овец, оказывает положительное влияние на гематологические показатели. Применение с концентратами в неблагополучной по копытной гнили отаре солевого препарата позволило сократить заболеваемость в два раза и способствовало выздоровлению 29% овец.

8. Водный 10%-ный раствор сульфата цинка был более эффективным препаратом для ножных ванн при лечении копытной гнили по сравнению с 10%-ными растворами формалина или сульфата меди. Это выражалось в сокращении времени на лечение и в количестве выздоровевших животных.

Комбинированное применение 10%-ных растворов сульфата цинка и сульфата меди с 3%-ным раствором дезонола способствовало более быстрому выздоровлению овец соответственно на 3 и 4 дня.

9. Ассоциированная вакцина «Овикон» является эффективным средством в борьбе с копытной гнилью овец. Она позволяет значительно снизить заболеваемость среди вакцинированных животных в 4 — 5 раз. У иммунизированных овец количество пораженных конечностей было в 5 раз меньше по сравнению с контролем, а также у них отмечали более доброкачественное течение копытной гнили. Вакцина кроме профилактического обладает и лечебным действием: из 40 привитых овец выздоровело 22 (55%) животных.

10. Применение вакцины «Овикон» в сочетании с ножной ванной, содержащей 10%-ный раствор цинкосола позволило оздоровить от копытной гнили четыре отары овец.

11. Использование комплексной системы мероприятий по борьбе с копытной гнилью овец, где вакцинация является ведущим звеном, позволяет оздоровить хозяйства, неблагополучные по данной инфекции.

12. Из испытанных методов борьбы с копытной гнилью овец наиболее экономически эффективным является иммунизация овец вакциной «Овикон». При этом методе экономический эффект на одно обработанное животное составляет 15,0 руб., а на каждый затраченный рубль - 3,74 руб.

5. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ.

1. Разработана и внедрена в производство ассоциированная вакцина «Овикон» против инфекционных заболеваний конечностей овец, выпуск которой налажен на Ставропольской биофабрике. Патент №2098128. приоритет изобретения 26.09.97г. вакцина применяется в неблагополучных по копытной гнили и некробактериозу овцеводческих хозяйствах.

2. Наставление по применению вакцины против инфекционных заболеваний конечностей овец, инактивированной, ассоциированной «Овикон» утвержденное Департаментом ветеринарии Минсельхозпрода России № 13-4-2/078 от 5.11.97г.

3. Разработаны и внедрены в ветеринарную практику «Методические рекомендации по профилактике и борьбе с копытной гнилью овец». Одобренные секцией «Инфекционная патология животных» Отделения ветеринарной медицины Российской академии сельскохозяйственных наук (РАСХН) протокол №3 от 25 сентября 2003 года. Утверждены Отделением ветеринарной медицины Россельхозакадемии 22 марта 2004 года.

4. На основании результатов исследований кормов и крови овец разработан солевой препарат для профилактики и лечения копытной гнили овец в состав* которого вошли следующие микроэлементы: сернокислый цинк, сернокислая медь, сернокислый марганец и сернокислый кобальт.

1.11. Заключение.

Копытная гниль - широко распространенная в овцеводческих странах болезнь, наносящая значительный экономический ущерб данной отрасли животноводства.

В нашей стране также имеются сообщения о значительном распространении копытной гнили в ряде овцеводческих зон. Заболеваемость овец в неблагополучных отарах по данным многих авторов колебалась от 25 до 90% и зависела от многих факторов. В стационарно-неблагополучных по копытной гнили отарах пораженность животных было обычно меньше. Хотя данный факт не всегда признавался всеми исследователями, в том числе и нами.

Почти все авторы сообщают, что к копытной гнили восприимчивы взрослые животные независимо от пола. В отношении влияния возраста на заболеваемость у авторов нет единого мнения. Одни исследователи утверждают, что поражаются овцы всех возрастов. По данным других авторов ягнята до 3 - 6 месячного возраста почти не болеют копытной гнилью.

Нет единого мнения по вопросу выживания возбудителя копытной гнили во внешней среде и сезонности болезни. Многие исследователи считают, что Б.поёозиз сохраняется во внешней среде не более 2-х недель, по данным других авторов при определенных условиях в почве возбудитель может выживать в течение нескольких месяцев.

Одни авторы утверждают, что строгой сезонности при копытной гнили нет, другие говорят, сезонные колебания болезни обусловлены главным образом влиянием предрасполагающих факторов (осадки, теплое время года).

Несмотря на открытие возбудителя копытной гнили до настоящего времени среди специалистов нет единого мнения о причине болезни. Одни указывают на ведущую роль Б.поёоэиз в возникновении копытной гнили, не отрицая полностью значения Р.песгорЬогит и других микроорганизмов, но отводят им роль сопутствующей микрофлоры.

Однако ряд других авторов указывают на то, что в этиологии копытной гнили участвуют два анаэробных возбудителя Э.поск^из и Р.песгорЬогит в форме синергизма. В то же время в этих двух концепциях главная роль Б.поёозиз не ставится под сомнение.

В то же время не до конца установлена роль наряду с возбудителем копытной гнили и сопутствующей микрофлоры таких важных факторов как природно-климатических, хозяйственных, социально-экономических и др.

Имеется не так много работ, которые посвящены изучению гематологических и биохимических показателей при копытной гнили. На распространение и течение болезни большое влияние оказывают предрасполагающие факторы, в том числе недостаток в рационе макро- и микроэлементов.

Работы по созданию моновалентных, а в дальнейшем поливалентных и ассоциированных вакцин против копытной гнили проводились в нашей стране и за рубежом. В целом, проведенные многолетние производственные испытания показали, что вакцины против копытной гнили эффективны. Иммунизация профилактирует заболевание и способствует выздоровлению уже пораженных животных. Кроме того, длительное применение вакцины в неблагополучных отарах приводит к ограничению распространения инфекции. Вместе с тем применение только одной вакцины против копытной гнили не приводит к оздоровлению неблагополучных отар, для этого необходимо использовать комплекс мероприятий, в которых иммунизация является ведущим звеном.

2. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ.

2.1. Материалы и методы исследований.

Исследования по теме диссертации выполнены в 1986-2004 годах на кафедре эпизоотологии и микробиологии Ставропольского государственного аграрного университета, Ставропольской научно-исследовательской ветеринарной станции и в неблагополучных по копытной гнили овец хозяйствах Ставропольского края.

В эксперименте использовано 158 нелинейных белых мышей, 58 морских свинок, 45 кроликов и 85 овец. Опыты в хозяйствах проведены на 33000 овцах, из которых 22175 животных были привиты против копытной гнили ассоциированной вакциной «Овикон».

При выполнении отдельных фрагментов исследований в разные годы принимали участие кандидат ветеринарных наук, ведущий научный сотрудник ВГНКИ С. Д. Панасюк, кандидат ветеринарных наук, заведующий лабораторией Ставропольской НИВС М.Г. Водолазский, за что автор выражает им свою благодарность.

Изучение эпизоотического процесса копытной гнили овец проводили согласно методическим указаниям по эпизоотологическому исследованию утвержденным ГУВ Мицсельхоза СССР в 1982 году.

В ходе определения эпизоотической ситуации в неблагополучных по копытной гнили хозяйствах выявляли источник возбудителя инфекции, механизм передачи возбудителя, выяснили пути заноса и дальнейшего распространения болезни, обращали внимание на стационарность болезни, наличие предрасполагающих факторов, климатические условия.

Эпизоотическую ситуацию выясняли при помощи изучения и анализа ветеринарных документов по учету и отчетности, опроса и бактериологического метода исследований. Изучение документов характеризующих эпизоотическое состояние по копытной гнили овец проводили в отделе ветеринарии Минсельхоза Ставропольского края, в районных ветеринарных станциях по борьбе с болезнями животных и в конкретных хозяйствах. Изучали и анализировали журналы учета больных животных (форма №1вет.), записи противоэпизоотических мероприятий (форма №2 вет.) и эпизоотического состояния (форма №3 вет.), ветеринарные отчеты о заразных болезнях животных (форма №1вет.), а также служебную переписку, касающуюся вопросов эпизоотической ситуации по копытной гнили овец.

Диагностику копытной гнили овец и некробактериоза овец осуществляли комплексно на основании «Методических указаний по лабораторной диагностике копытной гнили овец», утвержденных ГУВ Минсельхоза СССР 25.12.1985 года и «Методических указаний по лабораторной диагностике некробактериоза», утвержденных ГУВ Минсельхоза СССР 12.02. 1985 года, с учетом эпизоотологических данных, клинических признаков болезни, патологоанатомических изменений и лабораторных методов исследований.

Выделение возбудителя копытной гнили (В1сЬе1оЬас1ег поск^иэ), некробактериоза (РиБоЬа^егшт песгорЬогит) и также сопутствующей микрофлоры проводили специальными и стандартными методами путем посева на питательные среды с последующим выделением чистых культур.

Идентификацию культур осуществляли, используя «Определитель бактерий Берги» (1980).

Для выделения и культивирования Б. поск^иБ использовали плотную питательную среду ВИЭВ, тиамин-цистин-глутаминовый агар с 10% крови лошади (ТЦГА) и мясо-пептонный печеночный бульон с кусочками печени и 0,1% агара, в пробирках под вазелиновым маслом (полужидкий МППБ). Выделение и культивирование Р. песгорЬошш осуществляли на глюкозо-кровяном агаре и на мясопептонном печеночном бульоне (среда Китта-Тароцци). С целью выделения из пораженных копыт овец сопутствующей микрофлоры использовали плотные питательные среды: мясопептонный агар (МПА), глюкозо-кровяной агар, тиогликолевый агар, среду Эндо, среду Левина; жидкие среды: мясопептонный бульон (МПБ), глюкозосывороточный бульон, тиоглюколевый бульон, мясопептонный печеночный бульон (МППБ). Контроль и измерение рН питательных сред проводили с помощью иономера универсального ЭВ-74 в соответствии с инструкцией по его применению.

Жидкие и плотные среды для культивирования анаэробов перед засевом регенерировали для удаления остатков кислорода, путем кипячения в водяной бане в течение 20-30 минут. Анаэробные культуры на чашках Петри выращивали в анаэростатах, создавая анаэробные условия, путем откачивания воздуха. Культивирование посевов проводили при +37° С. Культурально-морфологические свойства штаммов определяли общепринятыми методами. Тинкториальные свойства выделенных микроорганизмов изучали при окраске их методом Грама и Романовского-Гимза.

Биохимические свойства выделенных культур изучали на полужидкой (МППБ) среде с добавлением 0,5% соответствующего углевода или многоатомного спирта и индикатора Андреде в течение 7 суток. Протеолитическую активность оценивали по способности разжижать 10% желатин в процессе роста; свертывать молоко; пептонизировать (расплавлять) свернутый молочный сгусток. Для этого цельную культуру вносили в пробирки, содержащие соответственно 10% гель желатина или обезжиренное молоко. Пробирки помещали в термостат при +37°С и ежедневно в течение 30 суток учитывали результат.

Для определения образования индола и сероводорода использовали полоски индикаторной бумаги. Индикаторную бумагу для выявления индола пропитывали насыщенным раствором щавелевой кислоты, индикаторную бумагу на сероводород- раствором уксуснокислого свинца. Полоски индикаторной бумаги помещали в пробирки над растущей культурой. Результаты тестов на индол и сероводород оценивали в течение 4-6 суток инкубации посевов.

Гемолитические свойства выделенных культур изучали при росте их в анаэробных и аэробных условиях на МПА и ТЦГА с кровью.

Типовую принадлежность изолированных культур С. perfringens определяли в реакции нейтрализации токсинов типоспецифическими антитоксическими сыворотками С. perfringens. Реакцию ставили на белых мышах, Смесь сыворотки и токсина вводили белым мышам внутрибрюшинно в дозе 0,5 мл. Токсичность культуры С. perfringens определяли путем введения её белым мышам внутрибрюшинно в дозе 0,5 мл.

Для определения патогенности D.nodosus использовали метод заражения овец в кожу межкопытной щели. Межкопытную щель промывали водой и на её боковых стенках делали скарификатором несколько поверхностных, чтобы не вызвать появления крови, насечек. После чего в указанное место жесткой кисточкой втирали культуру D.nodosus и вкладывали в межкопытную щель ватный тампон, пропитанный этой же культурой. Для фиксации тампона накладывали на копыто крестообразную повязку сроком на 5 дней. После снятия повязок в межкопытной щели в положительных случаях имеет место начало патологического процесса.

Патогенность выделенных культур (F.necrophorum, C.perfringens) изучали общепринятыми методами путем заражения белых мышей, морских свинок, кроликов.

Для дифференциации патогенных и непатогенных культур S.aureus использовали 5%-ный кровяной агар, желточно-солевой агар и реакцию плазмокоагуляции.

На желточно-солевом агаре патогенные стафилококки, образующие ле-^цитиназу, дают реакцию, проявляющуюся в образовании вокруг колонии зоны помутнения с радужным венчиком по периферии.

Для постановки реакции плазмокоагуляции использовали кроличью плазму. Одну петлю чистой суточной культуры стафилококка вносили в 1 мл стерильной плазмы и помещали в термостат при +37°С. Результаты оценивали через 30 мин., 2, 4 и 24 часа. Одновременно ставили контроли: пробирки с плазмой без добавления культуры и с плазмой, в которую внесен заведомо плазмокоагулирующий стафилококк. При положительном результате плазма превращается в плотный сгусток. Культуры S.aureus, обладающие гемолитической и лецитовителазной активностью, коагулирующие кроличью плазму считали патогенными.

В процессе работы использовали серологические методы исследований: пробирочную реакцию агглютинации (РА) с антигеном D.nodosus по методике лаборатории по изучению болезней овец ВИЭВ; реакцию непрямой иммунофлуоресценции (РНИФ), согласно временным методическим указаниям по обнаружению возбудителя копытной гнили в патологическом материале с помощью непрямого метода иммунофлуоресценции, утвержденным ГУВ Минсельхоза СССР 11.12. 1978 года и в разработанной сотрудниками лаборатории по изучению болезней овец ВИЭВ модификации метода для обнаружения антител к антигену D.nodosus.

В своей работе мы использовали два вида антигенов D.nodosus. Инактивированный антиген для реакции агглютинации (РА) и инактивированный антиген для реакции непрямой и иммунофлуоресценции. Антигены готовили на Ставропольской биофабрике совместно с ведущим научным сотрудником ВГНКИ, кандидатом ветеринарных наук С.Д. Панасюком.

Концентрацию микробных тел антигенов и жидких культур определяли используя стандартные образцы мутности производства ГИСК им. Тарасевича, методом визуального сравнения со стандартом 10 единиц мутности.

Инактивированный антиген для постановки реакции агглютинации (РА) готовили культивированием штамма D.nodosus ВИЭВ 1111-82/90 на питательной среде ВИЭВ при температуре +37°С в течение 2-2,5 суток с периодическим пропусканием через среду газообразного азота. При появлении бактериального роста проводили контрольную микроскопию и концентрирование микробной массы центрифугированием при 3000 об./мин. в течение 30 мин. Надосадочную жидкость сливали, а к осадку добавляли стерильный физиологический раствор рН 7,2 - 7,4 до конечной концентрации 10 млрд. микробных тел в 1 мл по оптическому стандарту мутности. Затем культуру инактивировали добавлением 0,3%-ного формалина в течение 24 часов при комнатной температуре. Полноту инактивации антигена О.поскззиз контролировали путем высева его на жидкую питательную среду ВИЭВ. При отсутствии роста В.пос1озиз на жидкой питательной среде в течение 7 суток (срок наблюдения) антиген считали полностью инактивированным. Полученный инактивированный антиген хранили при температуре +4°С в условиях бытового холодильника.

Изготовленный антиген проходил контроль на специфическую активность постановкой реакции агглютинации с положительной сывороткой крови кроликов гипериммунизированных антигеном В.шхЗозив и с нормальной сывороткой крови овец. Антиген считали активным и специфичным при положительной РА (++++ или +++) с положительной сывороткой в титре не ниже 1:800 и при отрицательных результатах в титре 1:100 и выше с нормальной сывороткой.

Для получения гипериммунной сыворотки в качестве продуцентов использовали 3-х кроликов массой 3 - 4 кг в возрасте 10-12 месяцев. В качестве антигена использовали смывы физраствором агаровых культур В.поск^иБ. Антиген 0.пос1озиз в концентрации 2млрд. микробных тел в 1мл вводили кроликам в краевую ушную вену с интервалом 3 суток в дозах 0,3; 0,6; 1,0; 2,0; 3,0 мл. Через 6 суток после последнего введения антигена у кроликов в РА определяли титры антител к О.жкк^из. Если в сыворотке крови титры антител в РА были не ниже 1:800 (++++ или +++), то у кроликов брали тотальным способом кровь, отстаивали сыворотку, консервировали ее борной кислотой, фильтровали через стерилизующие пластины, проверяли на стерильность, разливали в стерильные ампулы по 2 мл. Ампулы запаивали и гипериммунную сыворотку хранили в замороженном виде в морозильной камере бытового холодильника.

Кровь для иммунологических, серологических и гематологических исследований брали у овец из яремной вены. Пробы крови отстаивали, сыворотку центрифугировали и хранили в замороженном виде или консервировали хлороформом и хранили при температуре +5-8°С. Для контроля использовали нормальные (полученные от здоровых животных-доноров) и позитивные (от вакцинированных или гипериммунизированных животных) сыворотки крови овец. Контрольные сыворотки лиофилизировали в ампулах по 1-2 мл и хранили при +5-10°С. Позитивные овечьи сыворотки имели титры в РА 1:1600-1:6400.

Плазму получали путем смешивания цельной крови овец в пробирке с гепарином. После центрифугирования полученная таким образом кровь расслаивается на плазму (вверху) и форменные элементы (внизу).

В стойловый и пастбищный периоды содержания в рационе овец определяли количество кормовых единиц, уровень кальция, фосфора, калия, натрия, магния, цинка, меди и марганца по общепринятым методикам с целью установления их влияния на степень распространения инфекции и тяжести патологического процесса при копытной гнили.

Общее количество лейкоцитов в крови овец определяли путем подсчета их под микроскопом в счетной камере Горяева по общепринятому методу. Лейкоцитарную формулу подсчитывали при микроскопии мазков цельной крови, окрашенных по Романовскому — Гимза с фиксацией результатов на клавишном счетчике форменных элементов. Количество эритроцитов и гемоглобина устанавливали с помощью фотоэлектрического эритрогемометра по методике И.И. Сипко и др. (1968). Общий белок сыворотки крови определяли рефрактометрическим методом, белковых фракций — турбидиметрическим (нефелометрическим) методом, глюкозы в реакции с ортотолуидином. Количество кальция в сыворотке крови определяли комплексно-метрическим методом с индикатором флуорексоном по Вичеву, Каракашеву. Уровень неорганического фосфора в сыворотке крови определяли по методу Бригса в модификации С.А. Ивановского (1975). Количество калия и натрия в плазме крови определяли методом пламенной фотометрии. Определение микроэлементов цинка, меди, марганца, магния в крови овец проводили методом атомной адсорбции спектрофотометрии по С.Г. Кузнецовой и В.Д. Кальницкому (1983). Резервную щелочность крови определяли диффузным методом с помощью сдвоенных колб по И.П. Кондрахину.

Биохимические исследования крови проводили в лаборатории по изучению незаразных болезней Ставропольской НИВ С совместно с кандидатом ветеринарных наук М.Г. Водолазским.

Бактерицидную активность сыворотки крови определяли фотонефелометрическим методом по О.В. Смирновой и Т.А. Кузьминовой (1966).

Для этого в пробирки с 0,5 мл мясопептонного бульона вносили 1 мл испытуемой сыворотки и 1 каплю суточной культуры 2 млрд. взвеси культуры Е.соИ 078. В качестве контроля брали пробирку с бульоном и культурой без сыворотки крови, вместо которой добавляли 1 мл 0,5%-ного раствора хлористого натрия. После перемешивания определяли оптическую плотность среды опыта и контроля в фотоколориметре. Затем пробирки со смесью помещали в термостат при температуре +37°С на 3 часа. Таким образом, сразу получали два показателя: первый характеризует исходную оптическую плотность бульона с культурой и сывороткой сразу после смешивания; второй - оптическую плотность той же смеси после 3 часов инкубации в термостате. Бактерицидную активность определяли разницей между оптической плотностью опытных и контрольных пробирок, выраженной в процентах по отношению к контрольным.

Лизоцимную активность сыворотки крови определяли по методу В.Г. Дорофейчука (1968) в модификации Украинского НИИЭВ (И.Ф. Храбустовский с соавт., 1974). В качестве индикатора лизоцима использовали стандартный порошок суточной культуры Micrococcus lysodeicticus, штамм 2665.

Опсонофагоцитарную реакцию осуществляли по методике B.C. Гостева (1950). В качестве объекта фагоцитоза использовали суточную агаровую культуру E.coli 078. Фагоцитарную реакцию ставили с цельной гепарированной кровью овец и инактивированной нагреванием культурой Е. Coli. Пробы крови после добавления культуры выдерживали в термостате в течение 30 минут с периодическим встряхиванием. Затем из смеси делали мазки,. окрашивали по Романовскому - Гимза и подсчитывали под микроскопом количество бактерий, захваченных нейтрофилами (в 100 клетках).

Температуру тела, пульс и дыхание определяли у овец в состоянии покоя общепринятыми методами.

Оценку эффективности вакцины «Овикон» и в сочетании её с «Цинкосолом» проводили по следующей методике. В неблагополучном по копытной гнили хозяйстве подбирали по принципу аналогов (порода, возраст, упитанность, условия содержания и кормления, заболеваемость копытной гнилью) две охары овец, которые расположены недалеко друг от друга. В отарах проводили тщательный осмотр копыт у всех животных, а при необходимости и обрезку излишне отросшего копытного рога у больных и здоровых животных. Одну отару вакцинировали, другую оставляли непривитой (контрольной). Эффективность вакцинации оценивали путем сравнения количества больных копытной гнилью овец при клинических осмотрах копыт через 3-5 месяцев опыта. При этом в отарах всегда оставляли некоторое количество больных копытной гнилью животных в качестве источника возбудителя инфекции.

При расчете экономической эффективности различных методов борьбы с копытной гнилью использовали «Методику определения экономической эффективности ветеринарных мероприятий», утвержденную Департаментом ветеринарии Минсельхоза РФ 21.02.1997г. Для определения экономической эффективности ветеринарных мероприятий использовали следующие показатели: а) Ущерб от снижения мясной продуктивности овец, вследствие их заболеваемости определяли по формуле:

У! = М3 X (В3 - Вб) х Ц, где: М3 - количество заболевших овец, гол.;

В3 - продуктивность (живая масса) здоровой овцы, кг.;

Вб - продуктивность (живая масса) больной овцы, кг.;

Ц - средняя цена реализации 1 кг живой массы, руб. б) Ущерб от снижения шерстной продуктивности овец вследствие их заболеваемости определяли по формуле:

У2 = М3х(В3-Вб)хЦ, где: М3 - количество заболевших овец, гол.;

В3 - продуктивность (настриг шерсти) от здоровой овцы, кг.;

Вб - продуктивность (настриг шерсти) от больной овцы, кг.;

Ц - средняя цена реализации 1 кг шерсти, руб.

Общую величину экономического ущерба определяли как сумму составных частей этого ущерба.

У0=У1+У2

Расчет годового экономического эффекта проводили по «Методике определения экономической эффективности использования в сельском хозяйстве результатов научно-исследовательских и опытно-конструкторских работ, новой техники, изобретений и рационализаторских предложений», утвержденной Минсельхозом СССР 26.02.1979г. по формуле:

Э = [(Сб-Уб)-(Сн+Ун)]хАн, где: Э - фактический годовой экономический эффект;

Сб, Сн - себестоимость обработки одного животного в базовом

Сб) и новом (Сн) варианте, Уб, Ун - удельные суммы экономического ущерба причиненного копытной гнилью в базовом (Уб) и новом (Ун) варианте; А„ - количество обработанных животных. Экономический эффект от проведения профилактических и лечебных мероприятий на рубль затрат (Эр) определяли по формуле: где: Эв - экономический эффект полученный в результате проведенных профилактических и лечебных мероприятий;

Зв - затраты на ветеринарные мероприятия.

Математические методы обработки и анализ полученных результатов.

Результаты экспериментальных исследований обрабатывали статистическим методом средних арифметических величин и их статистических ошибок (М±т), а также определяли достоверность сравниваемых показателей по критерию Стьюдента. Статистическую обработку проводили методом вариационной статистики по А.Т. Усович, П.Т. Лебедеву (1970).

2.2. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ 2.2.1. Особенности эпизоотического процесса при копытной гнили овец в Ставропольском крае.

В документах государственной ветеринарной отчетности сведения о копытной гнили овец не совсем точно отражают эпизоотическую ситуацию в крае по этому заболеванию. Данные по эпизоотологии копытной гнили нами были получены на основании проведенных собственных исследований.

Изучение распространения заболевания в хозяйствах, источника возбудителя инфекции и путей заноса в благополучные отары проводили на основе документальных данных движения овцепоголовья. Обращали внимание на формирование отар в зависимости от их благополучия по копытной гнили, а также на условия содержания и кормления овец, состояния копытного рога. Заболеваемость и её динамику по сезонам года, восприимчивость животных к копытной гнили в зависимости от возраста изучали непосредственно в неблагополучных отарах.

Изучение эпизоотического процесса при копытной гнили овец проводили в 12 хозяйствах расположенных в различных агроклиматических зонах края. Под наблюдением находились отары овец из трех хозяйств в каждой зоне. По условиям влагообеспеченности на территории Ставропольского края выделено 4 основных агроклиматических зоны: очень засушливая, засушливая, неустойчиво влажная и умеренно влажная. В среднем за год в этих агроклиматических зонах выпадает соответственно 300-375, 350-450, 450-550 и 500-600 мм осадков. Результаты исследований представлены в таблице 1.

 
 

Список использованной литературы по ветеринарии, диссертация 2004 года, Кононов, Анатолий Николаевич

1. Абдурагимов, Х.А. Наблюдение за течением опытной гнили у овец/ Х.А. Абдурагимов.// Ветеринария. 1974. - №1. — С.57 — 58.

2. Абдурагимов, Х.А. Применение дибиомицина при копытной гнили овец/ Х.А. Абдурагимов, П.А. Маликов.// Ветеринария. — 1968. -№5.-С.57.

3. Абсатиров, Г.Г. Из опыта борьбы с копытной гнилью овец/ Г.Г. Абсатиров// Бюл. ВИЭВ. - 1983. - вып. - 50. - С.28 - 30.

4. Абсатиров, Г.Г. Влияние сульфата цинка на иммунитет при копытной гнили/ Г.Г. Абсатиров.// Ветеринария. 1984. - №9. - С.34.

5. Абсатиров, Г.Г. Сравнительная оценка методов борьбы с копытной гнилью овец: Автореф.дис. канд. вет.наук/ Г.Г. Абсатиров. -М., 1985.-21с.

6. Абсатиров, Г.Г. Лизоцинк лечебно-профилактический солевой брикет против копытной гнили овец/ Г.Г. Абсатиров, A.A. Сидорчук, К.В. Мельникова и др.;// Бюл. - ВИЭВ. - 1986. - вып. - 62. - С.11 - 12.

7. Артамохин, И.С. Копытная гниль овец/ И.С. Артамохин// Сельское хозяйство Сибири. 1958. - №4. - С.64 - 66.

8. Артюшина, И.А. Применение иммуноферментного метода для дифференциации штаммов возбудителя копытной гнили овец/ И.А. Артюшина, Ю.Д. Караваев, И.Н. Семенова// Бюл. ВИЭВ. - вып. — 65. -С.66-68.

9. Архангельский, И.И. Люминесцентный метод диагностики копытной гнили овец/ И.И. Архангельский, A.B. Ляушкин, Ю.Д. Караваев и др.;// Ветеринария. 1976. - №6. - С.51 - 53.

10. Архангельский, И.И. К диагностике и лечению копытной гнили овец/ И.И.Архангельский, Ю.Д. Караваев, A.B. Ляушкин и др.;// Ветеринария. 1976. - №2. - С. 102.

11. Архангельский, И.И. Биологические свойства возбудителя копытной гнили овец / И.И. Архангельский, Ю.Д. Караваев, A.B. Ляушкин и др.;// Труды ВИЭВ. 1979. - т. - 49. - С.76 - 80.

12. Архангельский, И.И. Препараты цинка в борьбе с копытной гнилью овец/ И.И. Архангельский, A.A. Сидорчук, Г.Г. Абсатиров// Ветеринария. 1985. - №9. - С.35 - 36.

13. Архангельский, И.И. Роль цинка в заболевании конечностей овец в условиях повышения влажности и температуры/ И.И. Архангельский, A.A. Сидорчук, Г.Г. Абсатиров// Основы повышения продуктивности сельского хозяйства развивающихся стран. — М., 1985. -С.125.

14. Архангельский, И.И. Копытная гниль овец/ И.И. Архангельский, A.A. Сидорчук, Ю.Д. Караваев. М.: Агропромиздат, 1986. 95с., илл. — (Б-ка практ. вет. врача).

15. Ахметов, Р.Г. Борьба с копытной гнилью овец/ Р.Г. Ахметов.// Ветеринария. 1986. - №6. - С. 15.

16. Аухадиев, Т.К. К вопросу лечения некробактериоза овец/ Т.К. Аухадиев// Вестник сельскохозяйственной науки. — 1965. №2. - С.39 -41.

17. Балабанов, В.А. Некробактериоз животных/ В.А. Балабанов. -М.: Колос, 1971.

18. Бектемиров, М.А. Разработка методов диагностики копытной гнили овец, выделение и изучение биологии возбудителя: Автореф. дис. канд. вет. наук/М.А. Бектемиров. -М., 1978. 23с.

19. Бектемиров, М.А. Разработка методов диагностики копытной гнили овец, выделение и изучение биологии возбудителя: Автореф. дис. канд.вет.наук/ М.А. Бектемиров. М., 1978. — 23с.

20. Бектемиров, М.А. Диагностика копытной гнили овец/ М.А. Бектемиров.//Ветеринария. 1979. - №1. - С.46.

21. Бектемиров, М.А. Диагностика и меры борьбы с копытной гнилью овец и коз/ М.А. Бектемиров// Научные рекомендации. — Махачкала, 1981.

22. Бектемиров, М.А. Копытная гниль овец/ М.А. Бектемиров.// Ветеринария. 1983. - №2. - С.40 - 42.

23. Бектемиров, М.А. Выделение D.nodosus от больных копытной гнилью овец/ М.А. Бектемиров, Ю.Д. Караваев.// Ветеринария. 1984. -№11. -С.71.

24. Волкова, A.A. Некробактериоз овец/ A.A. Волкова, P.C. Галиев, В.И. Овчаренко. Фрунзе. - «Илим», 1965.

25. Голиков, A.B. Сульфат цинка при копытной гнили овец/ A.B. Голиков, К.В. Мельникова.// Ветеринария. 1982. - №9. - С.41 -42.

26. Голиков, A.B. Лечение при копытной гнили овец/ A.B. Голиков, К.В. Мельникова.// Ветеринария. 1984. - №6. - С. 35 - 36.

27. Голиков, А.В: Поверхностно-активные вещества при копытной гнили овец/ A.B. Голиков, К.В. Мельникова, Е.А. Ломова и др.// Ветеринария. 1987. - №6. - С.36 - 37.

28. Голубев, Н.Ф. Опыт оздоровления овец от копытной гнили/ Н.Ф. Голубев, И.П. Мосолов.// Овцеводство. 1958. - №7. - С.38 -39.

29. Гончаров, А.Ф. Об этиологии копытной гнили овец/ А.Ф. Гончаров.// Ветеринария. 1955. - №12. - С. 30 - 32.

30. Гришаев, Н.Е. Копытная гниль и некробактериоз у овец и коз/ Н.Е. Гришаев.// Ветеринария. 1969. - №3. - С. 37 - 40.

31. Гришаев, Н.Е. Об этиологии копытной гнили овец/ Н.Е. Гришаев.// Доклады ВАСХНИЛ. 1969. - №11. - С.31 - 34.

32. Гришаев, Н.Е. Лечение овец при копытной гнили/ Н.Е. Гришаев.// Ветеринария. 1970. - №1. - С. 60 - 62.

33. Гришаев, Н.Е. Методика выделения чистых культур D.nodosus/ Н.Е. Гришаев.// Ветеринария. 1970. - №11. - С. 110 - 111.

34. Гришаев, Н.Е. Влияние хранения на биологические свойства культур возбудителя копытной гнили/ Н.Е. Гришаев.// Доклады ВАСХНИЛ. 1971. - №6. - С. 33.

35. Гришаев, Н.Е. Чувствительность Ф.нодозус к антибиотикам/ Н.Е. Гришаев.// Ветеринария. 1971. - №7. - С. 112 - 113.

36. Гришаев, Н.Е. Об иммунитете при копытной гнили овец/ Н.Е. Гришаев.// Ветеринария. 1972. - № 1. - С. 40.

37. Гришаев, Н.Е. Некоторые свойства протеаз Ф.нодозус/ Н.Е. Гришаев.// Доклады ВАСХНИЛ. 1972. - №6. - С. 40 - 42.

38. Гришаев, Н.Е. Чувствительность возбудителя копытной гнили овец и его ассоциантов к антибиотикам/ Н.Е.Гришаев, Н.И. Шепетова.// Вестник сельскохозяйственной науки. — Алма — Ата. — 1971. №8. - С. 60 - 65.

39. Дылько, Н.И. О статье доцента А.Ф.Гончарова Об этиологии копытной гнили овец/ Н.И. Дылько.// Ветеринария. — 1956. №11. -С.92-93.

40. Егошин, И.С. Итоги изучения патоморфологических изменений при копытной гнили у овец/ И.С. Егошин, Д. Раимбеков.// Патоморфология, патогенез и диагностика болезней сельскохозяйственных животных. — М., 1980. С. 143 — 145.

41. Елисеев, А.Н. Групповая профилактика и лечение болезней пальцев/ А.Н. Елисеев.// Ветеринария. 1982. - №12. - С. 68 - 69.

42. Есютин, Л.В. Лечение овец при копытной гнили/ Л.В. Есютин, М.В. Березин, В.Г. Леонов и др.// Ветеринария. 1977. - №5. - С. 88 -90.

43. Заблоцкий, Т.М. Об этиологии копытной гнили овец/ Т.М. Заблоцкий.// Каракулеводство и звероводство. 1953. - №3. - С. 51 -53.

44. Инфекционные болезни овец и борьба с ними/ A.A. Волкова.// 1971.-С. 17-24.

45. Кашов, Н.М. Экономическая оценка разных методов лечения овец больных копытной гнилью/ Н.М. Кашов.// Достижения ветеринарной и зоотехнической наук в животноводстве. Казань, 1988. -С. 93-94.

46. Караваев, Ю.Д. Эпизоотология копытной гнили/ Ю.Д. Караваев, A.A. Сидорчук, И.Н. Семенова.// Актуальные проблемы эпизоотологии. -Казань, 1983.-С. 140.

47. Кащенко, С.С. Сравнительная эффективность некоторых препаратов/ С.С. Кащенко.// Бюл. ВИЭВ. 1986. - вып. 62. - С. 12 - 14.

48. Коваленко, Я.Р. Анаэробные инфекции/ Я.Р. Коваленко. — М., 1954.

49. Кононов, А.Н. Восприимчивость овец и ягнят к копытной гнили/ А.Н. Кононов.// Бюл. ВИЭВ. 1984. - вып. 56. - С. 74 - 76.

50. Кононов, А.Н. Образование специфических антител при введении овцам антигена Бактериодес нодозус/ А.Н. Кононов.// Бюл. ВИЭВ. 1986. - вып. 62. - С. 9 - 10.

51. К патоморфологии при копытной гнили овец/ 3. Варфоломеева// Краевая патология сельскохозяйственных животных. Уфа. 1978. - С. 22-23.

52. Кузнецов, Г.О. Лечение и ликвидация копытной гнили у овец/ Г.С. Кузнецов.// Ветеринария. 1961. - № 10. - С. 44 - 48.

53. Лазуткина, A.A. Об эффективности некоторых лекарственных веществ/ A.A. Лазуткина.// Ветеринария. — 1961. №5. — С. 42 — 43.

54. Ляушкин, A.B. Изучение заболевания конечностей овец/ A.B. Ляушкин.// Бюл. ВИЭВ. 1971. - вып. 11. - С. 17 - 19.

55. Ляушкин, A.B. Копытная гниль овец// Болезни овец и коз. — М., Колос, 1973. С. 108-114.

56. Копытная гниль овец, профилактика и меры борьбы// Профилактика и меры борьбы с болезнями овец. Махачкала, 1973. — С. 46-47.

57. Майгулакова, JI.Т. Клиника и эпизоотология копытной гнили крупного рогатого скота/ Л.Т. Майгулакова.// Меры борьбы с болезнями сельскохозяйственных животных и птиц в Киргизии. — 1988. -2.-С. 73 -78.

58. Мельникова, К.В. Терапевтическое действие различных форм медного купороса на копытную гниль зимой/ К.В. Мельникова.// Болезни овец и меры борьбы с ними. — Чита, 1980, С. 70 — 71.

59. Мельникова, К.В. Борьба с копытной гнилью овец/ К.В. Мельникова.//Ветеринария. 1984. - №4. - С. 32.

60. Мельникова, К.В., Голиков, А.В. Новый метод лечения копытной гнили овец: Информ. листок №60/ ЦНТИ. Белгород, 1982. -2 с.

61. Мельникова, К.В. Опыт борьбы с копытной гнилью овец на крупных овцеводческих фермах/ К.В. Мельникова, А.Т. Добродомов.// Бюл. ВИЭВ. 1979. - вып. 37. - С. 27 - 29.

62. Мельникова, К.В. К изучению патогенеза копытной гнили овец/ К.В.Мельникова, С.Н. Кулаченко, А.Г. Добродомов.// Болезни овец и меры борьбы с ними. Чита, 1980. - С. 72 - 73.

63. Мельникова, К.В. Повышение эффективности дезинфектантов при копытной гнили овец/ К.В. Мельникова, Е.А. Ломова.// Бюл. ВИЭВ. 1986. - вып. 62. - С. 7 - 9.

64. Мошкин, Н.И. Лечение и профилактика копытной гнили у овец в хозяйстве/ В.И. Мошкин.// Ветеринария. 1963. - №12. - С. 28 - 30.

65. Мутовин, В.И. О мероприятиях по борьбе с копытной гнилью овец/ В.И. Мутовин.// Ветеринария. 1953. - №3. - С. 26 - 30.

66. Мутовин, В.И. О мероприятиях по ликвидации копытной гнили овец/ В.И. Мутовин.// Ветеринария. 1953. - №4. — С. 30 - 36.

67. Мутовин, В.И. Копытная гниль овец и меры борьбы с ней/ В.И. Мутовин.// Сельхозгиз, 1955. С. 108 - 113.

68. Мутовин, В.И. Об этиологии и эпизоотологии копытной гнили овец/ В.И. Мутовин.// Ветеринария. 1955. - №10. - С. 53 - 57.

69. Надточей, Г.А. Электронная микроскопия возбудителя копытной гнили овец/ Г.А. Надточей, И.Н.Семенова.// Бюл. ВИЭВ. 1985. - вып. 59.-С. 58-60.

70. Нахлупин, Н.Г. Предупреждение копытных заболеваний овец/ Н.Г. Нахлупин.// Социалистическое животноводство. 1950. - №12. -С. 89-90.

71. Нахлупин, Н.Г. Гнилостный распад капсулы копытец у овец/ Н.Г. Нахлупин.// Болезни копыт у овец. 1950. - С. 29.

72. Носов, И.И. Этиология и лечение копытной гнили у овец/ И.И. Носов.// Тез. докл. молодых ученых. Л., 1955. - С. 11 — 12.

73. Островский, Н.С. Эффективное средство лечения копытных заболеваний овец/ Н.С. Островский.// Овцеводство. — 1958. №5. - С. 45.

74. О патоморфологии гнойно-некротических заболеваний пальцев у овец/ Д. Бондарько.// Диагностика, лечение и профилактика незаразных болезней сельскохозяйственных животных. — М., 1980. С. 36 — 39.

75. Панасюк, С.Д. Иммунологическая оценка антигена Б.нодозус, примененного с различными адъювантами/ С.Д. Панасюк.// Бюл. ВИЭВ. 1982. - вып. 48. - С. 29 - 32.

76. Панасюк, С.Д. Изучение вирулентных и иммуногенных свойств Б.нодозус на лабораторных моделях/ С.Д. Панасюк.// Труды ВИЭВ. т. -57.-С. 69-73.

77. Панасюк, С.Д: Эффективность ассоциированных вакцин против копытной гнили овец/ С.Д. Панасюк, А.А. Сидорчук, Ю.Д. Караваев.// Материалы пленума секции паразитоценологии АН СССР. Витебск, 988.-С.

78. Панасюк, С.Д. Значение ассоциаций микроорганизмов в этиологии болезней конечностей овец и крупного рогатого скота/ С.Д.

79. Панасюк, A.A. Сидорчук, Ю.Д. Караваев и др.// Совершенствование методов государственного контроля ветеринарных препаратов: Тезисы докладов Всесоюзной научной конференции. — М., 1999. — С. 179 — 80.

80. Панасюк, С.Д. Значение ассоциаций анаэробных микроорганизмов в норме и патологии сельскохозяйственных животных/ С.Д. Панасюк.// Сб. науч. тр. ВГНКИ. М., 1999. - т.61. - С. 64-73.

81. Подбуцкий, Б. Организационные и хозяйственные мероприятия по профилактике и ликвидации копытной гнили овец/ Б. Подбуцкий.// Болезни овец и меры борьбы с ними. Чита, 1980. - С. 82 - 84.

82. Копытная гниль и ее дифференциальная диагностика/ Д. Раимбеков.// Сб. тр. аспирантов и молодых ученых Кирг. НИИиВ. -Фрунзе, 1975. вып. 6. - С. 87 - 90.

83. Раимбеков, Д. Копытная гниль овец и меры борьбы с ней/ Д. Раимбеков.// Фрунзе, 1979. 12с.

84. Раимбеков, Д. Копытная гниль овец в Киргизии: Автореф. дисс. канд. вет. наук/ Д. Раимбеков. 1980. - 22с.

85. Раимбеков, Д. Рекомендации по профилактике и лечению копытной гнили овец в Киргизской ССР/ Д. Раимбеков. Фрунзе, 1989. - 14с.

86. Раимбеков, Д. Опыты по лечению копытной гнили овец/ Д. Раимбеков, И.С. Егошин.// Инфекционные болезни овец. Фрунзе, 1976. -С. 197-201.

87. Саттаров, A.C. Эпизоотология копытной гнили овец на башкирском южном Урале и опыт оздоровления неблагополучных хозяйств от этой инфекции/ A.C. Саттаров, У.М. Акчурин.// Инфекционные болезни овец. Фрунзе, 1976. С. 195 - 197.

88. Селиванов, A.B. Влияние условий содержания и кормления на возникновение копытной гнили овец/ A.B. Селиванов.// Ветеринария. -1952.-№2.-С. 61-65.

89. Селиванов, A.B. Опыт ликвидации копытной гнили овец/ A.B. Селиванов.//Ветеринария. 1955. - №12. - С. 31.

90. Селиванов, A.B. Влияние условий содержания и кормления на устойчивость овец к копытной гнили/ A.B. Селиванов.// Сб. науч. работ СибНИВИ. 1956. - т.6. - С. 17-23.

91. Селиванов, A.B. Копытная гниль овец и меры борьбы с ней/ A.B. Селиванов, Г.А. Гриницина.// Методическое письмо. Омск, 1954. 11с.

92. Семенова, И.Н. Реакция агглютинации при копытной гнили овец/ И.Н. Семенова.// Разработка, апробация и госконтроль вет. препаратов. М., 1981. С. 138 - 139.

93. Семенова, И.Н. Реакция непрямой гемагглютинации для диагностики копытной гнили овец/ И.Н. Семенова.// Бюл. ВИЭВ. — 1985.-вып. 59.-С. 26-29.

94. Сидоров, М.А. Некоторые вопросы эпизоотологии и бактериологии заболеваний конечностей овец/ М.А. Сидоров, A.B. Ляушкин.// Бюл. ВИЭВ. 1973. - вып. 16. - С. 20 - 22.

95. Сидорчук, A.A. Предупреждение копытной гнили у овец/ A.A. Сидорчук, Н.М. Масалски.// Ветеринария. 1983. - №3. - С. 39 - 41.

96. Сидорчук, A.A. Комбинированные и секционные ножные ванны при копытной гнили овец/ A.A. Сидорчук, К.В. Мельникова, Г.Г. Абсатиров.// Ветеринария. 1986. - №1. - С. 35 - 37.

97. Сидорчук, A.A. Дифференциальная диагностика болезней конечностей у овец/ A.A. Сидорчук, И.Н. Семенова.// Ветеринария. -1987.-№2.-С. 31-34.

98. Сидорчук, A.A. Копытная гниль овец: профилактика, меры борьбы/ A.A. Сидорчук, М.К. Штефан.// Газета плакат. 1987. - С. 5.

99. Сидорчук, A.A. Роль ассоциаций анаэробных бактерий в патологии сельскохозяйственных животных/ A.A. Сидорчук, С.Д. Панасюк.// Материалы пленума секции паразитоценологии АН СССР. Витебск, 1988. С.56

100. Сидорчук, A.A. Перспективы применения цинкосодержащих препаратов при инфекционных болезнях конечностей жвачных/ A.A. Сидорчук, С.Д. Панасюк, А.Н. Кононов и др.// Вестник ветеринарии. Ставрополь, 1997. №5. - С. 78 - 81.

101. Сидорчук, A.A. Система мероприятий по борьбе с некробактериозом крупного рогатого скота и копытной гнилью овец/ A.A. Сидорчук, С.Д. Панасюк, H.H. Кружнов и др.// Ветеринария. — 1999.-№6.-С. 23-27.

102. Смирнов, Л.Ф. Профилактика копытной гнили овец/ Л.Ф. Смирнов, Г.Н. Воскобойников.// Соц. Животноводство. — 1953. №4. — С. 87-88.

103. Смирнов, В. Копытные заболевания овец/ В. Смирнов, В. Готлиб, С. Старостин и др.//Ярославль, 1952.

104. Серологические методы диагностики копытной гнили овец и коз/ М.А. Бектемиров.// Труды Дагестанского НИВИ. Махачкала, 1981.-т. 12. - С. 119-122.

105. Специфическая профилактика инфекционных болезней конечностей крупного рогатого скота и овец/ С.Д. Панасюк, H.H. Кружнов, Л.В. Кириллов и др.// Сб. науч. тр. ВГНКИ. М., 1996. - т. 59.-С. 76-82.

106. Сравнительная оценка некоторых средств и способов лечения овец, больных копытной гнилью/ В.Г. Леонов.// Труды MBA. М., 1975. - т. 79. - ч. 3. - С. 59 - 63.

107. Сукеев, Ш.С. К эпизоотологии копытной гнили мелкого и крупного рогатого скота/ Ш.С. Сукеев.// Болезни овец и меры борьбы с ними. Чита, 1980. С. 110 - 112.

108. Сукеев, Ш.С. Закономерности распространения и течения при копытной гнили овец/ Ш.С. Сукеев.// Бюл. ВИЭВ. — вып. 40. С. 37 — 40.

109. Сукеев, Ш.С. Лечение копытной гнили овец/ Ш.С. Сукеев, А. Абдурахманов.// Сельское хозяйство Киргизии. 1981. - №11. - С. 25.

110. Сукеев, Ш.С. Источники инфекции и пути перезаражения при копытной гнили овец/ Ш.С. Сукеев, А. Бакиев, Л. Майгулакова и др.// Труды Киргизского НИВИ. Фрунзе, 1987. - т. 1. - С. 75 - 78.

111. Сукеев, Ш.С. О копытной гнили овец в Киргизии/ Ш.С. Сукеев, И.С. Егошин, Д. Раимбеков.// Ветеринария. 1974. - №3. - С. 58 - 59.

112. Сукеев, Ш.С. К эпизоотологии копытной гнили в хозяйствах Иссык-Кульской области/ Ш.С. Сукеев, JI.T. Майгулакова.// Труды Кирг. НПОЖ. 1979. - вып. 30. - С. 56 - 61.

113. Сукеев, Ш.С. Вопросы дифференциальной диагностики и взаимосвязи некробактериоза, контагиозной эктимы и копытной гнили/ Ш.С. Сукеев, JI.T. Майгулакова, М. Абышев.// Болезни овец и меры борьбы с ними. Чита, 1980. - С. 112 - 114.

114. Шматкова, А.И. Копытная гниль/ А.И. Шматкова, Н.Ф. Щербань.// Сб. науч. тр. Северокавказского зонального НИВИ. -Новочеркасск, 1982. С. 45 - 50.

115. Щербань, Н.Ф. Копытная гниль овец/ Н.Ф. Щербань, А.И. Шматкова.// Рекомендации. Новочеркасск, 1982. - с.

116. Эпизоотология и клинические признаки копытной гнили овец/ С.М. Жолмагамбетов.// Сб. науч. тр. MBA. М., 1979. - т. 108. - С. 91 -93.

117. Этиология, течение и лечение овец больных копытной гнилью/ Н.М. Кашов.// Науч. тр. Казанского вет. института. — Казань, 1981. С. 64-67.

118. Anderson, B.J. Cloning and expression in Escherichia coli of the gene encoding the structural subunits of Bacteroides nodosus fibriae/ B.J. Anderson, M.M. Bills, J.R. Egerton et al.// J. Bacter. 1984. - V. 160. - №2. -P. 748-754.

119. Anderson, B.J. Variation in the structural subunit and basal protein antigens of Bacteroides nodosus fibriae/ B.J. Anderson, C.L. Kristo, J.R. Egerton et al.// J. Bacter. 1986/ - V. 166. - P. 453 - 460.

120. Anderson, B.J. Western blot (immunoblot) analysis of the fibrial antigens of Bacteroides nodosus/ B.J. Anderson, J.S. Mattick, P.T. Cox et al.// J. Bacter. 1987. - V. 169. - P. 4018 - 4023.

121. Bagley, C.V. Comparison of treatments for ovine foot rot/ C.V. Bagley, M.C. Healey, R.L. Hurst.// JAVMA. - 1987. - 191. - 5. - 541 - 546.

122. Bailey, D. Control of foot rot in sheep/ D.Bailey, C. Bagley, M. Bulgin.// SID Res Digest. - 1985. - №1. - P. 17 - 23.

123. Banting, L. Essai de traitement du pietin du mouton avec une preparation a base de'sulfate de zinc associee ou non a la vaccination/ L. Banting, M. Bellenger, V. Turpin.// Rev. med. veter. 1977. - № 8 - 9. - P. 1121-1132.

124. Banting, L. Un nouveau systeme de notation des lesions de pietin Application lors d'une experimentation en milieuinfecte/ L.Banting, J.M. Delsaux, D. Dupeux et al.// Rev. med. veter. 1977. - V. 129. - №12. - P. 1657-1670.

125. Barber, DML. Foot-rot in sheep/ DML. Barber.// Veter. Rec. 1979. -V. 104.-P. 194-195.

126. Baudon, J.J. -Traitaient par le sulfate de zinc Acrodermatitis enteropathica/ J.J. Baudon, J.L. Fontaine, M. Larregue et al.// La Nouv. Pr. Med. 1975. - V. 20. - P. 1507.

127. Beck, C.C. contagion foot-rot in sheep/ C.C. Beck, K.G. Blane.// Sheep dreeder. 1971. - V. 91. - №6. - P. 12 - 13. 56 - 58.

128. Belshner, H.G. Foot-rot in sheep/ H.G. Belshner.// Austr. vet. j. -1939.-№15.-P. 119-122.

129. Benito, M. Etiologie et pathogenie du pietin chez les ovins et les bovin/ M. Benito.// Rev. med. veter. 1974. - V. 125. - №5. - P. 611 - 620.

130. Berg, J.N. Efficacy of ethylene diaminedihydriodide es an agent to prevent experimentally induced bovine foot-rot/ J.N. Berg, J.P. Maas, J.A. Paterson.// Am. j. vet. Res. 1984. - V. 45. - №6. - P. 1073 - 1078.

131. Bagley, C. Dry weather helps foot-rot/ C. Bagley.// Utah farmer -Stockman. 1990.-V. 10. - P. 70A10.

132. Bergey's Manual of systematic bacteriology. 9-th Edd. 1981. - v. -1.

133. Bernard, Y. Essai de traitment du pietin des ovins dans le department de laNievre/ Y. Bernard, D. Boucomont, H. Vinsent.// Bull. Soc. Veter. Prat. Fr. 1978. - V. 62. - №6. - P. 423 - 426.

134. Beveridge, WIB. The control of foot rot in sheep/ WIB. Beveridge.// J. Council. Sei. Industrial. Res. 1938. - V. №1. - P. 14 - 20.

135. Beveridge, WIB. Foot-rot in sheep: a transmissible disease due to infection with Fusiformis nodosus/ WIB. Beveridge.// Bull. Counc. Sei. Industr. Res.- 1941. -V. 140. -№1.-P. 1-64.

136. Beveridge, WIB. Föot-rot in sheep — a modern approach to an old problem/ WIB. Beveridge.// Vet. Ree. 1956. - V. 68. - P. 963 - 965.

137. Beveridge, WIB. Canberra ANU. The early history of foot-rot/ WIB. Beveridge.// Ovine foot-rot Rep. workshop. Sydney. 1981. - P. 202 - 203.

138. Bilic, V. Bacteroides nodosus — prvi slucajevi izolacije u hrvatskoj iz patoloskin promjena kod zarazne sepavosti ovaca/ V. Bilic, B. Pavelin, M. Zutic.// Vet. Archiv. 1982. - V. 52. - №6. - P. 225 - 233.

139. Brenner, K. Erfahrungen bei dee theropig der moderninke des schafes mit dem chloramfenicol preparat Berlicetin - spray/ K. Brenner.// Mh. Vet. Med.-1973.-V. 28.-№3.-P. 103-105.

140. Broad, TE. Partial purification and properties of extracellular proteolitic activity of Bacteroides nodosus/ TE Broad, TM. Skerman.// N. Z.j. Agr. Res. 1976. - V. 19. - №3. - P. 317 - 322.

141. Buchwalder, R. Immunoprofilaxy bei nutztieren/ R. Buchwalder, HW. Fuche, G. Heider et al.// Ind. 1977. - P. 30 - 303.

142. Bulgin, MS. Foot-rot.Good news for sheepman.May be/ MS. Bulgin.// National Wool Grower. 1983. - №11. - P. 10 - 13.

143. Bulgin, MS. Diagnosis of lameness in sheep/ MS. Bulgin.// Compendium. 1986. - V. 8. - №12. - P. 123 - 128.

144. Bulgin, MS. New foot-rot vaccine slashes disease in Idaho flocks/ MS. Bulgin, PJ. South.// Sheep breeder and sheepman. 1983. - V. 103. -№8.-P. 31 -40.

145. Bulgin, MS. Comparison of treatment methods for the control of contagious ovine foot-rot/ MS. Bulgin, SD. Lincoln, VM. Lane et al.// JAVMA.- 1986.-V. 189. №2. - P. 194-196.

146. Bulgin, MS. Evaluation an ovine foot-rot vaccine/ M.S Bulgin, SD. Lincoln, VM. Lane et al.// Vet. med. 1985. - V. 80. - P. 105 - 113.

147. Bulgin, M.S. Genetic associated resistence to foot-rot in selected Targnee sheep/ MS. Bulgin, SD. Lincoln, CF. Parcer et al.// JAVMA.1988.-V. 192.-№4.-P. 512.

148. Cakala, S. Clinical and serological investigation on the application of clovac vaccine in cattle/ S. Cakala, J. Pulaszek, J. Lubiarz et al.// Bull. Vet. Inst. Pulawy.- 1984. V. 27.-№1 -4.-P. 12-15.

149. Cameron, CM. Method of production and antibody response to an oil adjuvant Bacteroides nodosus bacterin/ CM. Cameron, WJP. Fuis.// Onderstpoort j. vet. res. 1978. - V. 45. - №3. - P. 143 - 147.

150. Carmody, MJ. An economic evaluation of the foot-rot Nothern Tablelands of New South/ MJ. Carmody.// Agr. Econom. Bull. Univ. New Ingland. 1981. - V. 25.

151. Casey, RH. Effect of paring of sheep affected with foot-rot on response to zinc sulphate/ sodium lauryl sulphate foot bathing treatment/ RH. Casey, PAJ. Martin.// Austral, vet. J. 1988. - V. 65. - №8. - P. 258 - 259.

152. Chetwin, DH. The serological response in sheep to immunization at varying intervals with a multistrain foot-rot vaccine/ DH. Chetwin, DM. Liardet, DF. Kingsley et al.// Foot-rot in ruminants CSIRO. Australia.1989.-P. 165- 167.

153. Chauveau, J. Le panaris interdigital des bovines traitment par la spiramicine/ J. Chauveau, P. Royer.// Bull. Soc. Veter. Prat. Fr. 1977. - V. 61.-№4.-P. 255-268.

154. Claxton, PD. Serogrouping of Bacteroides nodosus in relation to protection by vaccination/ PD. Claxton.// Ovine foot-rot Un. Sidney press. -1981.-P. 16-34.

155. Claxton, PD. Serogrouping of Bacteroides nodosus isolates/ PD. Claxton.// Foot-rot in ruminants CSIRO. Australia. 1986. - P. 131 - 134.

156. Claxton, PD. Foot-rot in goat and characterization of carpine isolates of Bacteroides nodosus/ PD. Claxton, KC. O'Grady.// Foot-rot in ruminants. CSIRO. Australia. 1986. - P. 119 - 123.

157. Claxton, PD. Classification of Bacteroides nodosus by agglutination tests/ PD. Claxton, LA. Ribeiro, JR. Egerton.// Austral, vet. j. 1983. - V. 60.-№1.-P. 331 - 334.

158. Cooper, BC. Immunilogical factors associated with foot-rot of sheep/ BC. Cooper.// PhD. thesis. Massey univ. N. Z. 1972.

159. Cooper, BC. Vaccination against foot-rot in sheep: a review of recept work/ BC. Cooper.// N. Z. sheep soc. Seminar. 1973. - P. 119 - 126.

160. Cooper, BC. Differenses in morphology of Bacteroides nodosus attributable to culture media/ BC. Cooper.// N. Z. vet. j. 1977. - V. 25. - P. 16-20.

161. Cristea, I. Cu privire la profilaxia si tratamentul integral al pododermatitei gangrenose a oilor/ I. Cristea.// Rev. Cresterea anim. 1978. -V. 28.-№11.-P. 43-44.

162. Cross, RF. Influence of environmental factors on transmission of ovine contagious foot-rot/ RF. Cross.// JAVMA. 1978. - V. 173. - 12. - P. 1567-1568.

163. Cross, RF. Response of sheep to various topical oral and parenteral treatment for foot-rot/ RF. Cross.// JAVMA. 1978. - №12. - P. 1569 -1570.

164. Cross, RF. Contagious foot-rot in common sheep disease/ RF. Cross, PD. Moorhead.// Ohio Rept. res. develor. agr. home econ. and nature resour. 1976. - V. 61. - №5. - P. 75 - 76.

165. Cross, RF. Oral administration of zinc sulfate for control of ovine foot-rot/ RF. Cross, CF. Parker.// JAVMA. 1981. - V. 178. -№7. - P. 704 -705.

166. Cross, RF. Zinc sulfate foot bath for control of ovine foot-rot/ RF. Cross, CF. Parker.// JAVMA. 1981. - V. 178. - №7. - P. 706 - 707.

167. Cygan, Z. Wystepowanie elastolitycznej microfloiy tlenowej w Kulawsne owiec/ Z. Cygan, J. Barcz.// Med. Weter. 1978. - V. 34. - №4. -P. 196-199.

168. Cygan, Z. Niektore zagadnienia zwiazane z immunoprofilactyka w zanokcicy owiec/ Z. Cygan, I. Barcz, D. Deptula.// Med. Veter. 1978. - V. 34. - №4.-P. 199-202.

169. Cygan, Z. Wspotezesne poglady na taksonomic I role w patologii gramujemnych, niezarodnikujacych pateczek beztlenowych/ Z. Cygan, T. Jastrzebski.// Med. Veter. 1975. - V. 31. - №4. - P. 195 - 198.

170. Cygan, Z. Badamia nad etiología stanow zapalnych racia owiec/ Z. Cygan, T. Jastrzebski, S. Uchacz.// Med. Veter. 1974. - V. 30. - №7. - P. 392.

171. Cygan, Z. Quelques donnees nouvelles sur l'etiologie et la pathogenie de pietin du mouton en pologne/ Z. Cygan, J. Wiercinski, I. Barcz et al.// Rev. med. veter. 1985. -V. 136. - №1. - P. 73 - 77.

172. Day, SEJ. Serotiping of Bacteroides nodosus: proposal for 9 further serotypes (J R) and study of the antigenic cjmplexity of B. nodosus pili/ SEJ. Day, CM. Thorley, JE. Beesley.// Foot-rot in ruminants. CSIRO. Australia. - 1986.-P. 147-159.

173. Debald, H. Traitment des boiteriess du mouton au moyen de pierres a lecher/ H/ Debald, M. Turpin.// L'Elevage Ovin. 1978. - P. 137.

174. Debald, H. Le zinc danc l'eradication du pietin. SM. Buclet.

175. Debald, H. Traitment du pietin du mouton par la vaccination associee a la distribution de pierres a lecher. Buclet. 1978.

176. Demertzis, PN. Posthitis and vulvitis in experimentally induced zinc efficient lambs/ PN. Demertzis.// Bull. Hell. vet. med. soc. 1972. - V. 23. -P. 256-258.

177. Demertzis, PN. Oral zinc the rapy the control of infectious pododermatitis in young bulls/ PN. Demertzis, CF. Mills.// Vet. Rec. 1973. - V. 93. - №11. - P. 219 - 222.

178. Demertzis, PN. Zinc therapy in the control of foot-rot in sheep/ PN. Demertzis, AG. Spais, AA. Papasteriadis.// Vet. med. review. 1979. - №1. -P. 101-106.

179. Demertzis, PN. Zinktherapie bei der bekampfung der moderhinke des schafes/ PN. Demertzis, AG. Spais, AA. Papasteriadis.// Vet. med. Nachr. -1978.-№1.-P. 101-106.

180. Demertzis, PN. Observation on the effect of zinc feeding in young bulls and cows/ PN. Demertzis, D. Yiannacoulas, D. Goulianias, M. Hassirtzoglov, S. Papandopoulos, G. Xenoc.// Proc. 20 World vet. cong. Greese.- 1975.-P. 117-1122.

181. Depiazzi, LJ. A degrading proteinase test to distinguish benigh and virulent ovine isolates of Bacteroides nodosus/ LJ. Depiazzi, RB. Richards.// Austral, vet. j. 1979. - V. 55. - №1. - P. 25 - 28.

182. Depiazzi, LJ. Motility in relation to virulence of Bacteroides nodosus/ LJ. Depiazzi, RB. Richards.// Vet. microbial. 1985. - V. 10. - №2. - P. 107 -116.

183. Depiazzi, LJ. Virulense, protease, pilus and motility characteristics of Bacteroides nodosus/ LJ. Depiazzi, RB. Richards, NC. McQuade, JI. Rood.// Foot-rot in ruminants. CSIRO. Australia. 1986. - P. 103 - 107.

184. Deweese, WP. Contagions foot-rot / WP. Deweese, T. Clay, DG. Ely, GLM. Chappell.// Sheep breeder. 1982. - V. 102. - №9. - P. 134, 136, 138.

185. Диманов, Д. Към вопроса за лечението и профилактиката на копытният гнилец по овцете. Д. Диманов.// Науч. тр. Висш. ин-т зооинж. и вет. Ст. Загора. 1986. - Т. 33. - С. 417 - 422.

186. Egerton, JR. Treatment of ovine Foot-rot/ JR. Egerton.// Wool, techn. and sheep breeding. 1966. - V. 13. - №11. - P. 90 - 92.

187. Egerton, JR. Influence of environment on parenteral treatment of ovine foot-rot/ JR. Egerton.// Austral, vet. j. 1968. - V. 44. - №9. - P. 441.

188. Egerton, JR. Succesful vaccination of sheep against foot-rot/ JR. Egerton.// Austral. Vet. J. 1970. - V. 46. - P. 114 - 115.

189. Egerton, JR. Surface and somatic antigens of Fusioformis nodosus/ JR. Egerton.// J. comp. path. 1973. - V. 83. - P. 151 - 159.

190. Egerton, JR. Significance of F. nodosus serotypes in resistance of vaccinated sheep to experimental foot-rot/ JR. Egerton.// Austral, vet. j. — 974. V. 50. - №2. - P. 59 - 62.

191. Egerton, JR. New foot-rot vaccines/ JR. Egerton.// Austr. advances vet. sci.- 1980,250.

192. Egerton, JR. Control and eradication of ovine foot-rot/ JR. Egerton.// Foot-rot in ruminants. CSIRO. Australia. 1986. - P. 35 - 41.

193. Egerton, JR. Prophylactic and Therapeutic vaccination against ovine foot-rot/ JR. Egerton, DH. Burrell.// Austral, vet. j. 1970. - V. 46. -№11. -P. 517-522.

194. Egerton, JR. Protection of sheep against foot-rot with a recombinant DNA-based fibrial vaccine/ JR. Egerton, PT. Cox, BJ. Anderson, C. Kristo, M. Norman, JS. Mattigk.// Vet. microbial. 1987. - V. 14. - №4. - P. 393 -409.

195. Egerton, JR. Characterization B.nodosus isolated from cattle/ JR. Egerton, EA. Laing.// Vet. Microbial. 1979. - V. 3. - №4. - P. 269 - 279.

196. Egerton, JR. Effect of Guil A, a saponin derivation on the response of sheep to alum precipitated B.nodosus vaccines/ JR. Egerton, EA. Laing, CM. Thorley.// Vet. sci. commun. 1978. - V. 2. - №3. - P. 247 - 252.

197. Egerton, JR. The occurrence of bactericidal antibodies against Fusiformis nodosus in sheep serum/ JR. Egerton, GC. Merritt.// J. comp. path. 1970. - V. 80. - P. 369 - 376.

198. Egerton, JR. Serology of foot-rot: antibodies against Fusiformis nodosus in normal, affected, vaccinated and passively immunised sheep/ JR. Egerton, GC. Merritt.// Austral, vet. j. 1974. - V. 49. - №7. - P. 139 - 145.

199. Egerton, JR. Treatment and prevention of foot-rot in sheep with Fusiformis nodosus vaccine/ JR. Egerton, IR. Morgan.// Vet. Rec. 1972. -V. 91.-№19.-P. 453-457.

200. Egerton, JR. Foot-rot in vaccinated and unvaccinated sheep/ JR. Egerton, IR. Morgan, DH. Burrell.// Vet. Rec. 1972. - V. 91. - №19. - P. 447-453.

201. Egerton, JR. Benigh foot-rot a specific interdigital dermatitis of sheep associated with infection by less proteolytic strains of Fusiformis nodosus/ JR. Egerton, JM. Parsonson.// Austral, vet. j. 1969. - V. 45. - №8. - P. 345 -349.

202. Egerton, JR. Parenteral chemotherapy of ovine foot-rot/ JR. Egerton, IM. Parsonson, NPH. Graham.// Austral, vet. j. 1968. - V. 44. - №6. - P. 275-283.

203. Egerton, JR. Vaccination against ovine foot-rot/ JR. Egerton, DS. Roberts.//J.comp. path.-1971.-V. 81. №2.-P. 179 - 185.

204. Egerton, JR., Roberts DS., Graham NPH.// Austral, vet. j. 1988. -V. 66.-№42.-P. 440.

205. Egerton, JR. Onsent and remission of foot-rot/ JR. Egerton, LA. Ribeiro, PJ. Kieran, CM. Thorley.// Austral, vet. j. 1983. - V. 60. - №11. -P. 334-336.

206. Egerton, JR. The aetiology and pathogenesis of foot-rot/ JR. Egerton, DS. Roberts, IM. Parsonson.// J. comp. path. 1969. - V. 79. - P. 207 - 219.

207. Egerton, JR. Effect of alum-precipitated or oil-adjuvant Bacteroides nodosus vaccines on the resistence of sheep to experimental foot-rot/ JR. Egerton, CM. Thorley.// Res. vet. sci. 1981. - V. 30. - №1. - P. 28 - 31.

208. Egerton, Jr. Isolation of F. nodosus from cattle/ JR. Egerton, IM. Parsonson.// Austral, vet. j. 1966. - V. 42. - P. 425 - 429.

209. Egerton, JR. Comparison of oil adjuvant and alum precipitated Bacteroides nodosus vaccines in treatment of foot-rot/ JR. Egerton, JJ. Thompson, GC. Merritt.// Vet. Ree. 1979. - V. 104. - №5. - P. 98 - 100.

210. Eikelenboom, G. Voorlopig resultaat van een onderoch naar het affects van een vaccine tegen rotkreupel bij Schapen/ G. Eikelenboom.// Tijdschz. diergeneesk. 1976. - V. 101. - №2. - P. 1207 - 1214.

211. Elleman, TC. Nucleotide sequence of the gene encoding pilin of Bacteroides nodosus the causal organism of ovin foot-rot/ TC. Elleman, PA. Hoyne.// J. bact. — 1984. — V. 160.-P. 1184-1187.

212. Elleman, TC. Isolation of the gene encoding pilin of Bacteroides nodosus strain 198, the causal organism of ovin foot-rot/ TC. Elleman, PA. Hoyne, DL. Emery, DJ. Stewart, BL. Clark.// FEBS Letters. 1984. - V. 173.-№1.-P. 103-106.

213. Elleman, TC. Nucleotide sequence of the gene encoding the two-subunit pilin of Bacteroides nodosus 265/ TC. Elleman, PA. Hoyne, NM. McKern, DJ. Stewart.// J. bact. 1986. - №167. - P. 243 - 250.

214. Elleman, TC. Expression of the pilin gene from Bacteroides nodosus in Escherichia coli/ TC. Elleman, PA. Hoyne, DL. Emery, DJ, Stewart, BL. Clark.// Inf. and Immun. 2986. - V. 51. - №1. - P. 187 - 192.

215. Elleman, TC. Efficasy against foot-rot of a Bacteroides nodosus 265 (serogroup H) pilus vaccine expressed in Pseudomonas aeruginosa/ TC. Elleman, DJ. Stewart.// Inf. and Immun. 1988. - V. 56. - №3. - P. 595 -600.

216. Emery, DL. Analisis of the outer membrane proteins of Bacteriodes nodosus, the causal organism of ovine foot-rot/ DL. Emery, BL. Clark, DJ. Stewart, IJ. O'Donnell, DR. Hewish.// Vet. Microb. 1986. - V. 4. - №9. -P. 155- 168.

217. Emery, DL. Immunity against anaerobic bacterial infection/ DL. Emery.// Vet. immune, and immunopath. 1987. - V. 1 - 2. - P. 1-59.

218. Emery, DL. Reactivity of sera from sheep immunized with individual outer membrane proteins of Bacteroides nodosus agdinst heterologous bacterial strains/DL. Emery// Vet. Microb. 1984. - V. 9. - №5. - P. 461 -466.

219. Emery, DL. The structural integrity of pili from Bacteroides nodosus is required to elicit protective immunity against foot-rot in sheep/ DL. Emery, DJ. Stewart, BL. Clark.// Austral, vet. j. 1984. - №61. - P. 237 -238.

220. Emery, DL. The comparative susceptibility of five breeds of sheep to foot-rot/ DL. Emery, DJ. Stewart, BL. Clark.// Austral, vet. j. 1984. - V. 61. - №3. — P. 85-88.

221. Every, D. Purification of pili from Bacteroides nodosus and an examination of their chemical, physical and serological properties/ D. Every// J. gen. microb. 1979. - №115. - P. 309 - 316.

222. Every, D. Ovine foot-rot/ D. Every// Rep. workshop Univ. Sydney. -1985.-P. 9-15.

223. Every, D. Proteinase isozyme patterns od Bacteroides nodosus: distinction between ovine virulent isolates, ovine benigh isolated and bovine isolated/ D. Every// J. gen. microb. 1982. - №128. - P. 809 - 812.

224. Every, D. Ultrastructure of the Bacteroides nodosus cell envelope layers and surface/ D. Every, TM. Skerman.// J. bacter. 1980. - №141. - P. 855-857.

225. Every, D. Protection of sheep against experimental foot-rot by vaccination with pili purified from Bacteroides nodosus/ D. Every, TM. Skerman.//N. Z. Veter. J. 1982. - №30. - P. 156 - 158.

226. Every, D. Surface structure of Bacteroides nodosus in relation to virulence and immunoprotection in sheep/ D. Every, TM. Skerman.// J. gen. microb. 1983. - №129. - P. 225 - 243.

227. Иванов, И.Н. Заразни заболевания по копитата на овцете/ И.Н. Иванов, Н.М. Масалски.// София, 1970. 40с.

228. Иванов, И. Копитният гнилец по овцете/ И. Иванов, Н. Масалски.// Вет. Сб. 1975. -Т. 75. - №6. - С. 9 - 11.

229. Иванов, И. Запо-успешна борба с копитния гнилец по овцете/ И. Иванов, Н. Масалски// Вет. сб. 1977. - Т. 75. - №7. - С. 10 - 14.

230. Иванов, И. Копытният гнилец по овцете състояние и перспективы за борба/ И. Иванов, Н. Масалски// Вет. сб. - 1978. — Т. 76. - №9.-С. 10-13. '

231. Иванов, И. Изпользоването на цинка в борбата с копитния гнилец/ И. Иванов, Н. Масалски// Вет. сб. 1979. - Т. 77. - №9. - С. 20 -23.

232. Иванов, И. Проучване върху епизоотологията на коптния гнилец по овцете/ И. Иванов, И. Масалски, М. Дрюганов и др.// Вет. мед. науки. 1977. - Т. 14. - №9. - С. 3 - 9.

233. Иванов, И. изучение копытной гнили овец/ И.Иванов, М. Христов, Н. Масалски// Рез. докл. XX вет. конг. Греция. 1975. — С. 894.

234. Frisch, I. The comparative incidence of foot-rot in bos Taurus and bos indicus cattle/1. Frisch// Austral. Vet. J. 1976. - V. 52. - №5. - P. 228 -229.

235. Fahey, KJ. Quantitation by ELISA of pili of Bacteroides nodosus/ KJ. Fahey, PG. McWaters, DJ. Stewart et al.// Austral, vet. j. 1983. - V. 60. -№4.-P. 111-116.

236. Ferriez, GR. Antibody responces of sheep vaccinated with foot-rot vaccines/ GR. Ferriez, TL. Spenser, SC. Smith// Res. vet. sci. 1988. — V. 45. - №1. — P. 68-71

237. Finney, KG. Nucleotide sequence of the pilin gene of Dacteroides nodosus 340 (serogroup D) and Implication for the relatedness of serogroups/ KG. Finney, TC. Elleman, DJ. Stewart// J. gen. microb. 1988. -V. 134.-№3.-P. 575-584.

238. Foot-rot of sheep. Farmer's bull. 2206. USDA. 1972. - P. 1 - 15.

239. Foot-rot in sheep. M. A. F. and Food. 1978. - P. I - 8.

240. Footvax. Technical Notes. Cooper Animal Health. 1984.

241. Forshell, LP. Infektion med Bacteroides nodosus vid klovspaltdermatis hos ko/ LP. Forshell, L. Anderson// Sven. Veter. — 1981. — V. 33.-№20.-P. 551 -553.

242. Gleen, J. A field trial to assess the therapeutic and prophylactic effect of a foot-rot vaccine in sheep/ J. Gleen, TE. Carpenter, DW. Hird// JAVMA.- 1985. V. 187. - №10. - P. 1009 - 1012.

243. Gradin, JL. Selective medium for isolation of Bacteroides nodosus/ JL. Gradin, JA. Schmitz// J. clin. Micrib. 1977. - №6. - P. 298 - 302.

244. Gradin, JL. Susceptibility of Bacteroides nodosus/ JL. Gradin, JA. Schmitz// JAVMA. 1983. - V. 183. - P. 434 - 437.

245. Gradin, JL. Diversity of pilin of serologically distinct Bacteroides nodosus/ JL. Gradin, JA. Stephen, GE. Pluhar et al.// Oregon agr. exper. station. Tech. bull. 8855. - 1989.

246. Graham, NP. Pathogenesis of ovin foot-rot. The role of some environmental factors/ NP. Graham, JR. Egerton// Austral, vet. j. 1968. -№44.-P. 235-240.

247. Gregory, TS. Foot-rot in sheep: A progress report on field trials/ TS. Gregory// J. Counc. sei. indust. res. 1938. - V. 11. - №1. - P. 330 - 338.

248. Gregory, TS. Foot-rot in sheep/ TS. Gregory// Austral, vet. j. 1939.- №6.-P. 160-167.

249. Ghimize, SC. Identification and characterization of serogroup Mamang Nepalese isolated of Dichelobacter nodosus, the transmitting agentof foot-rot in small ruminants/ SC. Ghimize, JR. Egerton// Veter. Microbiol.- 1998. V. 62. - №3. - P. 217 - 233.

250. Hamilton, RC. An association between fimbriae and pores in the wall of Fusiformis nodosus/ RC. Hamilton, FG. Bover, TJ. Mason// J. gen. microb. 1975. - №91. - P. 421 - 424.

251. Handley, BG. Electrophoretic mobility of Bacteroides nodosus pilus antigens/ BG. Handley, MN. Ng, CL. Schwarzkofff/ Austral, vet. j. 1986. -№63.-P. 62-63. •

252. Harding, RB. Efficacy of, a new Oxytetracycline aerosol against foot-rot in sheep/ RB. Harding, R. Joby, JI. Maidment et al.// Vet. Ree. 1981. -V. 109.-№5.-P. 95-96.

253. Harris, DJ. Field observation on parenteral antibiotic trestment of ovine foot-rot/ DJ. Harris// Austral, vet. j. 1968. - №44. - P. 284 - 286.

254. Heitz, F. Control on foot-rot in sheep. 4th int. symp. Disorders rumin. digit. Paris. -1982.

255. Hieppe, TH. Moderhinke/ TH. Hieppe// Schafkrankheiten. VEB G. F. V. Jena. 1975. - №36.

256. Hieppe, T. Ezfahzimgen bei der berenmkfimg der infectiozen klanenentzundungen/ T. Hieppe, H. Gurtler, R. Kastner// Munatsh. vet. med.- 1958. — V. 19.

257. Hidmarsh, F. Efficacy of multivalent Bacteroides nodosus vaccine against foot-rot in sheep in Britain/ F. Hidmarsh, J. Fräser, K. Scott// Vet. Ree. 1989. - V. 125. - №6. - P. 128 - 130.

258. Hinton, DJ. Iradication of actively spreading ovin foot-rot/ DJ. Hinton// Austral, veter. j. 1991. - V. 68. -№3. -P. 118 — 119.

259. Holderman, LV. Anaerobe laboratory manual/ LV. Holderman, EP. Cato, WEC. Moore// 1974. 4th Edd.

260. Holmes, P. Foot-rot vaccine not magic/ P. Holmes// Land. 1981. — juli 9.

261. Hooper, RS. Corono-pedal abscedissation following the excessive use formalin as a treatment/ RS. Hooper, TW. Jones// Vet. Rec. 1972. - V. 90. -№25.-P. 697-699.

262. Hopkirk, CSM. Scald and foot-rot in sheep/ CSM. Hopkirk// N. Z. j. Agric. 21931. - №7. - P. 32 - 33.

263. Jastrzebski, T. Zanokcica zakazua owiec Panaritium infectiosum ovis/ T. Jastrzebski,.Z. Cygan, St. Uchacz// Med. weter. - 1974. - V. 30. -№2.-P. 65-67.

264. Jbrovic, M. Pokusi mechkamentoznog lijecenija i surbijanja zarazne sepavosti ovaca/M. Jbrovic, K. Janeski, B. Campa// Veter. 1977. - V. 26. -P. 265-263.

265. Jopp, AJ. An improved facility for the inspection, treatment and control of foot-rot/ AJ.Jopp, R. Jackson, CJ. Mulvaney// N. Z. vet. j. 1984. -V. 32.-№11.-P. 189- 190.

266. Jopp, AJ. A perspective on ovine foot-rot control/ AJ. Jopp, R. Jackson, CJ. Mulvaney// N. Z. vet. j. 1984. - V. 32. - №12. - P. 211 - 212.

267. Jorgensen, RJ. Parets ondartede klovesyge/ RJ. Jorgensen// Dansk vet. tidsskr. - 1988. - V. 71. - №8. - P. 431 - 434.

268. Jovjv, K. Nasa iskustva u sprovodenju profilakse I iskorj enjivanju zarazne sepavosti ovaca/ K. Jovov// Vet. Glas. 1982. - V. 36. - №9. - P. 795 - 797.

269. Katitch, RV. Contribution a l'etude du pietin du mouton/ RV. Katitch// Bull. Off. Int. Epizoot. 1967. - V. 67. - №11 - 12. - P. 1603 -1615.

270. Katitch, RV. Role des microbes anaerobies dans la pathogenic du pietin du mouton/ RV. Katitch// Rec. med. vet. 1971. - V. 147. - №2. - P. 179-186.

271. Katitch, RV. Etude comparative sur la valeur profilactique de 2 vaccins contre le pietin de mouton/ RV. Katitch// Bull. Soc. Se. veter. med. Comp. 1974. - V. 76. - №4. - P. 263 - 267.

272. Katitch, RV. Vaccination against sheep foot-rot/ RV. Katitch// Proc. XX vet. cong. Greese. 1975. - P. 591.

273. Katitch, RV. Resultati nasih ispitavania etiopatogenezc epizootscog oboljenja paraca/ RV. KatitchII Vet. Glas. 1976. - V. 30. - №6. - P. 507 -514.

274. Katitch, RV. Les problèmes de l'etiologie et de l'immunolo-prophylaxie dans le pietin du mouton/ RV. Katitch// Comp. immun microb. inf. dis. 1979. - №2. - P. 22 - 59.

275. Katitch, RV. Recherhe sur l'etiologie et la prophylaxie du pietin du mouton analyse critique/ RV. Katitch// Res. med. veter. 1983. - V. 159. -№1.-P. 41-43.

276. Katitch, RV. Resultati ispitivanja vzednosti simultané immunuprofilakse prçtiv enzootskog obojenja paraca I gangrenoznog mastitisa/ R. Katitch, Z. Vukicevic, L. Cvetkonic et al.// Vet. Glas. 1976. -V. 30. - №5.-P. 403-409.

277. Katitch, RV. Contribution a l'etiologie du pietin du mouton/ RV. Katitch, L. Gletkovitch, Z. Voukitchevitch et al.// Bull. Off. Int. Epizoot. -1967. V. 67. - №11 - 12. - P. 1603 - 1615.

278. Katitch, RV. Les problèmes de l'etioloqie et de l'immunoloprophylaxie dans le pietin du mouton/ RV. Katitch// Comp. immun. microb. inf. dis. 1979. - №2. - P. 22 - 59.

279. Katitch, RV. Recherhe sur l'etioloqie et la prophylaxie du pietin du mouton/ RV. KatitchII Res. med. veter. 1983. - V. 159. - №1. - P. 41 - 43.

280. Katitch, RV. Resultati ispitanja prakticne primene vaccine protivu oboljenja paraca ovaca/ R. Katitch, Z. Vukicevic, T. Petrof et al.// Vet. Glas. 1973.- № 11.-P. 809-812.

281. Katitch, RV. Resultati nasih istrazivanja u verisa mogucnoscu koziscenja paraca i gangrenjznog mastitisa ovaca/ R. Katitch, Z. Vukicevic, T. Petrof et al.// Vet. Glas. 1972. - V. 26. - № 8. - P. 590 - 593.

282. Katitch, RV. Immunostimulant effect of zinc sulphate on the immune response of sheep and rabitt to foot-rot vaccine/ RV. Katitch// Vet. Glas. — 1984.- № 11 -P. 919-923.

283. Katitch, RV. Resultati nasih istrazivanja practicne vrednosti Antikornulezina u arofilaksi episootskog oboljenja paraca ovaca/ R. Katitch, M. Katrinka, S. Odri// Vet. Glas. 1986. - V. 40. - № 7 - 8. - P. 555 - 559.

284. Katitch, RV. Recherches sur le role du sulphate de zinc et de la vitamine A dans la prophylaxie du pietin du mouton/ R. Katitch, M. Katrinka, M. Jovanovith et al.// Bull. acad. veter. Fr. 1986. - V. 59. - №2. -P. 139- 148.

285. Katitch, RV. Consideration critique a propos de Recherches sur l'etioloqie et la prophylaxie du pietin du mouton/ R. Katitch, M. Katrinka, M. Jovanovith et al.// Bull. acad. veter. Fr. 1988. - V. 61. - №1. - p. 119 — 124.

286. Katitch, RV. O vrednosti polivalente vaccine nad monovalentnom za suzbijanic enzootskog obolienja paraca/ R. Katitch, M. Katrinka, L. Mjatov// Vet. Glas. 1977. - V. 31. - № 7. - P. 519 - 522.

287. Katitch, RV. Etude compare chez la lapin du pouvoir pathogene de Ristella nodosa et de Spherophorus necrophorus/ RV. Katitch, J. Matitch// Bull. sic. sci. vet. med. comp. Lyon. 1977. - V. 79. - №4. - P. 189 - 195.

288. Katrinka, M. O savremenim vakcinama protiv anaerobnih obolienja domacih zivotinja/ M. Katrinka// Vet. Glas. 1981. - V. 35. - № 3. - P. 233 -235.

289. Katrinka, M. Kriticki osvrt na neka zapazanije u vesi sa etiologijom enzootskog oboljenja paraca ovaca/ M. Katrinka, L. Milic// Vet. Glas. -1980. V. 34. - № 8. - P. 753 - 755.

290. Katrinka, M. Ispitivanje immunogene vrednosti postojecih vakcina protiv enzootskog oboljenja paraca ovaca/ M. Katrinka, L. Mijatov, L. Milic et al.// Vet. Glas. 1980. - V. 36. - №8. - P. 701 - 707.

291. Kennedy, D. Vaccinating against foot-rot in sheep/ D. Kennedy// Agr. Gas. N. S. W. 1982. - V. 93. - №2. - P. 19-20.

292. Kerry, JB. Vaccinating against foot-rot/ JB. Kerry// Irish, vet. j. -1971. -№12.-P. 229-230.

293. Kerry, JB. Experience in the United Kingdom of the vaccination of sheep against foot-rot/JB. Kerry// Proc. XX vet. Cong. Gresse. 1975. - P. 893.

294. Kerry, JB. Effect of vaccination against foot-rot in young sheep wintered in straw yarsds/ JB. Kerry, GR. Graid// Vet. Ree. 1976. - V. 98. -№5.-P. 446-447.

295. Kidd, RM. The veterinary use of chloramphenicol in the United Kingdom/ RM. KiddII Ann. rech. vet. 1985. - V. 16. - №2. - P. 165 - 168.

296. Kieran, PJ. The use of oil adjuvant vaccines in veterinary medicine/ PJ. Kieran//Austral, vet. assn. annual, conf. 1982.

297. Killed oil adjuvanted multi-strain Bacteroides nodosus vaccine. Footvax. Tech. notes. C. A. H. N. Z. 1984. - P. 1 - 37.

298. Kirkpatrick, A. The vaccine potential of synthetic peptides based on pilin protein from Bacteroides nodosus/ A. Kirkpatrick, NM. McKern, JA. Maclaren et al.// Foot-rot in ruminants. CSIRO. Australia. 1986. - P. 233 -236.

299. Komar, E. Prybatnose badania krwi w diagnostyce zakaznej zanakocicy owiec w warunkach terenowych/ E. Komar, M. Komar, P. ZmudaII Ann. Univ. Mariae Curie Sklodowska. Sect. D. D. - 2001. - V. 56.-P. 117-121.

300. Kortt, AA. Ovine foot-rot vaccine: other potential host protective and diagnostic antigens of Bacteroides nodosus/ AA. Kortt// CSIRO Annual, rep. 1983- 1984.-1-45 p.

301. Kortt, AA. Activities and partial purification of extracellular proteases of Bacteroides nodosus from virulent and benigh foot-rot/ AA. Kortt, IJ. O'Donnel, Dj. Stewart et al.// Austral, j. biol. sci. 982. - №35. -P. 481-489.

302. Костов, И. Нашият опит в борбата с копитният гнилец по овцете/ Й. Костов// Вет. сб. 1971. - Т. 68. - №10. - С. 6 - 8.

303. Laing, Е. The occurrence, prevalence and transmission of В. nodosus infection in cattle/ E. Laing, J. Egerton// Res. vet. sci. 1978. - V. 24. - №3. -P. 300-304.

304. Lambell, RG. A field trial with a commercial vaccine against foot-rot in sheep/ RG. Lambell// Austral, vet. j. 1986. - V. 63. - №12. - P. 415 -418.

305. Lannetti, A. Lo zinco nei trattament dela pedaina negli ovini/ A. Lannetti, E. Marchezi// Clin, veter. 1980. - V. 103. - №3. - P. 115 - 117.

306. Lee, SW. Pugification characterization and serologic characterictics of bacteroides nodosus pili and use of a purified pili vaccine in sheep/ SW. Lee, B. Alexander, B. VcGovan// Am. j. vet. res. 1983. - V. 44. - №9. - P. 1676-1680.

307. Lehane, L. Foot-rot vaccines-past, present and future/ L. Lehane// Rural res. 1981. - № 113. - P. 23 - 26.

308. Levis, RD. Eggectiviness of vaccination in controlling ovine foot-rot/ RD. Levis, HH. Mayer, JL. Gradin et al.// J. anim. sci. 1989. - №67. - P. 1160-1166.

309. Littlejohn, Al. Field trial of a method for the eradication of foot-rot/ Al. Littlejohn// Vet. Rec. 1961. - №73. - P. 773 - 780.

310. Littlejohn, AI. Foot-rot in sheep/ AI. Littlejohn// Vet. Ree. 1967. -V. 81. - №5. - Clin, suppl. - 10. - P. 1 - 8.

311. Littlejohn, AI. The potential danger from the aisure of formalin in the treatment of foot-rot in sheep/ AI. Littlejohn// Vet. Ree. 1972. - V. 90. - P. 693-697.

312. Littlejohn, AI. Foot-rot in unweaned lambs/ AI. Littlejohn, CN. Hebert// Vet. Ree. 1968. - V. 82. - №24. - P. 690 - 694.

313. Ludovic, MM. Treponema podoris non sporing agent pathogene du pietin des moutons/ MM. Ludovic, P. Blaizot// Compt. rend. acad. sei. Paris. 1928.-187.-911.

314. MacKanzie, J. Foot-rot in sheep/ J. MacKanzie// Vet. Ree. 1956. -№68.-P. 1060.

315. Malecki, JC. Treatment of ovine virulent foot-rot with zinc sulphate/sodium laurel sulphate footbathing/ JC. Malecki, L. Coffey// Austral, vet. j. 1987. - V. 64. - №10.-P. 301 - 304.

316. Malecki, JC. In vitro penetration and absorption of chemicals into the ovine hoof/ JC. Malecki, IP. McCausland// Res. vet. sei. 1982. - V. 33. -P. 192-197.

317. Mantovani, A. Sulla transmissione di Sphaerophorus necrophorum tramite larve Strongiloides papillosus rela pecora/ A. Montovani, R. Restani, G. Ricci-Bitti et al.// Vet. Ital. 1974. - V. 25. - № 3 - 4. - P. 122 - 128.

318. Marshall, DJ. Protection against ovine foot-rot using a topical preparation of zinc sulphate/ DJ. Marshall, RI. Walker, RE. Coveny// Austral, veter. j.-1991.- V. 68. №5. - P. 186- 188.

319. Marshall, DJ. The effect of foot-rot on body weight ond wool growth of sheep/DJ. Marshall, RI. Walker, BR. Culis et al II Austral, veter. j.

320. Marshang, F. Beobachtungen über moderhinke der schafe Schwiz/ F. MarshangII Arsh. Tierheilk. 1970. - V. 112. - №2. - P. 66 - 71.

321. Marsh, H. Foot-rot and other diseases of the feet of sheep/ H. Marsh// JAVMA. 1954. - V. 124. - №992. - P. 1 - 4.

322. Marsh, H, The diagnosis of foot-rot in sheep/ H. Marsh, KD. Claus// Veter. 1970. - V. 60. - №2. - P. 309 - 317.

323. Marsh, H. Experimental studies of foot-rot in sheep/ H. Marsh, EA. Tunnioliff// Montana exp. stat. bull. 1934. - P. 285.

324. Маринов, E. Някои биохимични изследования на кръвни серуме при овце, болни от копитен гнилец/ Ею Маринов, Е. Арнаудова// Вет. сб. -1982.- №8. -Р. 15-17.

325. Martain, L. Ebpadero/ L. Martain, AL. Banting, Y. Soyeux// Bol. inform, cient. Labs. 1978. - V. 11. - №5. - P. 5 - 30.

326. Martain, L. Le pietin essai de synthese/ L. Martain, AL. Banting, Y. Soyeux// part. 1. Dossieurs L'Elevage. 1978. - V. 2. - №5. - P. 55 - 67.

327. Масалски, H. M. Использоването на антибиотице в борбата с копытния гнилец при овцете/ H. М. Масалски// Вет. сб. 1979. — Т. 77. -№10.-С. 27-29.

328. Масалски, H. М. Експериментално предизвикване на копытен гнилец по овцете/ H. М. Масалски// Вет. мед. науки. 1980. — Т. 17. -№8.-С. 14-18.

329. Масалски, Н. Свойства на В. nodosus изолиран от говеда/ Н. Масалски// Вет. мед. науки. 1986. - Т. 23. - №10. - С. 32 - 36.

330. Mattick, JS. The isolation and characterization of the fibriae of bacteroides nodosus: structural subunit and basal protein antigens/ JA. Mattick, BJ. Anderson, MR. Mott et al.// J. Bacter. 1984. - V. 160. - P. 740 - 747.

331. McGillivery, DJ. A role for DNA characterization in ovine foot-rot/ DJ. McGillivery, JJ. Webber, LA. Toohey// Austral, vet. j. 1989. - V. 66. -№4.-P. 106-108.

332. McGovan, B. Foot-rot of sheep description and control/ B. McGovan// Sheep breeder and sheepman. 1974. - V. 94. - №8, 46, 48. - P. 50-51.

333. McKern, NM. Ovine foot-rot vaccine: molecular basis of antigenic variation in B.nodosus pili/ NM. McKern// CSIRO. Annual rept. 1983 -1984.-P. 41-43.

334. McKern, NM. BL. Amino acid sequence of pilin from Bacteroides nodosus (strain the causative organism of ovin foot-rot)/ FEBS Letters. -1983. -№164.-P. 149- 153.

335. McKern, NM. Amino acid sequence of pilin from serologically distinct strain of Bacteroides nodosus/ NM. McKern, DJ. Stewart, PM. Strike// J. protein chem. 1988. - V. 7. - №2. - P. 157 - 164.

336. Merritt, GE. The isolation of Fusiformis nodosus/ GE. Merritt// Austral, vet. j. 1960. - V. 36. - №9. - P. 338.

337. Merritt, GE. JgG-1 and JgG-2 immunoglobulins to Bacteroides nodosus protease in infected and immunized sheep/ GE. Merritt, JR. Egerton// Inf and Immun. 1978. - V. 22. - №1. - P. 1 - 4.

338. Miller, JA. Foot-rot scheme successfully operated/ JA. Miller// J. agric. 1962. - V. 100. - №2. - P. 322 - 324.

339. Minzat, R. Izolarea si cultivarea speciei Bacteroides nodosus si rolus sau in etipatogenia pododermatitei infectiosa a oilor/ R. Minzat, C. Vintila// Rev. crester. anim. 1980. - V. 30. - №7. - P. 53 - 58.

340. Misza, RK. Jenetic resistence of a Heterogenous sheep population to contagious foot-rot epidemic/ RK. Misza, VK. Singh// Food farmg. Agr. -1976.-V. 8.-№6.-P. 7-9.

341. Mohler, JR. Foot-rot of sheep/ JR. Mohler, HJ. WashburgII USDA BAI, Bull.-1904.-63.

342. Moldovan, M. Bacteroides nodosus isolate la vaci cu dermatita interdigitala/ M. Moldovan, R. Moga-Manzat, S. Bolte et al.// Lucrari sti. zootehn. med. veter. 1986. - №21. - P. 99 - 02.

343. Monrad, J. An epidemiological study of foot-rot in pastured cattle/ J. Monrad, AA. Kassuku-, P. Nadsen et al.// Acta. vet. Scand. 1983. - V. 24. -№4.-P. 403-417.

344. Morgan, IR. The incidence of incidence of inferdigital skin diseases in flocks of sheep free of virulent foot-rot/ IR. Morgan, DW. Piercy, JR. Egerton// Austral, vet. j. 1972. - №48. - P. 23 - 25.

345. Moriarty, K. Immunity in foot-rot infection/ K. Moriarty, BC. Cooper, BR. Ingram// N. Z. veter. j. 1976.

346. Moses, EK. Molecular analysis of one of multiple protease encoding genes from the prototype virulent strain of Bacteroides nodosus/ EK. Moses, JI. Rood, WK. Yong et al.// Gene. 1989. - V. 77. - №2. - P. 219 - 228.

347. Mulvaney, CJ. Field trial with a killed, nine-strain oil adjuvanted B.nodosus foot-rot vaccine in sheep/ CJ. Milvaney, R. Jackson, AJ. Jopp// N. Z. veter. j. 1984. - V. 32. - №8. - P. 137 - 139.

348. Oliveira, R. Foot-rot dos ovinos no Rio grande do sul: 1 epidemioloia/ R. Olivera// Des. fin. bol. inst. pesq. vet. 1978. - №5. — P. 67 - 70.

349. Outteridge, PM. / PM. Outteridge, DJ. Stewart, TM. Skerman// Austral, vet. j. 1989. - V. 66. - №6. - P. 175 - 179.

350. Parajkli, B. A comparison of the efficacy of footbaths containing formalin or zinc sulphate in treatment ovine foot-rot under field condition/ B. Parajkli, PJ. Goodard// Brit. Vet. J. 1989. - №145. - P. 467 - 472.

351. Parsonson, IM. Ovine interdigital dermatitis/ IM. Parsonson, JR. Egerton, DS. Roberts// J. comp. path. 1967. - V. 77. - №3. - P. 309 - 313.

352. Pavelin, B. Odnos vrijednosti monovalentne i polivalentne vaccine Bacteroides nodosus u immunoprofilaksi i immunoterapiji zarazne separosti ovaca/ B. Pavelin// Veter. Archiv. 1985. - V. 55. - №4. - P. 133 - 155.

353. Пейчев, Б. Ваксинопрофилактиката в комплексната борба с копитния гнилец по овцете/ Б. Пейчев, Н. Найденова// Веет. Сб. 1976. -V. 74.-№.4.-Р. 13-14.

354. Pilko, P. Vyuzitie linco-spectinu inject pri liecho infekcnej pododermatitidy oviec/ P. Pilko, L. Sustrova// Veterinarstvi. — 1988. — V. 38. -№10.-P. 428-430.

355. Popoff, M. Le-pietin: assai de vaccination/ M. РороШ/ Bull. soc. veter. prat. Fr. 1978. - V. 62. - №4. - P. 317 - 324.

356. Prietz, G. Zinc-praparate zur becampfung der moderhinke der schafe/

357. G. Prietz, S. Mauske// Monatsh. veterinarmed. 1981. - V. 36. - №3. - P. 97 -99.

358. Prior, WI. The treatment of contagious foot-rot in sheep/ WI. Prior// Austral, vet. j. 1954. -V. 30. - №12. - P. 385 - 388. ,

359. Prior, WI. The foot syndromes in sheep following excessive footbathing/ WI. Prior// Austral, vet. j. 1959. - V. 35. - №11. - P. 493 -494.

360. Provac-double adjuvant multistrain foot-rot vaccine for sheep// C. A.

361. H. Tech. bull. Canberra. 1982. - P. 1 - 20.

362. Racoczi, G. A field trial a vaccination against sheep foot-rot/ G. Racoczi// 32th annual meet. Europ. assn. anim. prod. Zagreb. 1981.

363. Reed, GA. Foot-rot vaccine have still not been proven/ GA. Reed// J. agric. 1973. - V. 71. - №9. - P. 322 - 323.

364. Reed, GA. The field evaluation of an experimental B.nodosus vaccine for sheep/ GA. Reed, GE. Shepherd, DKJ. Astill et al.// Ovine foot-rot. Rep. workshop. Sydney. 1981. - P. 113 - 118.

365. Reuss, U. Neue verfahren zur bekampfung der moderhinke bein schaf/ U. Reuss// Kleineveihzuchter. 1975. - V. 23. - №25. - P. 888 - 890.

366. Reuss, U. Neue verfahren zur bekampfung der moderhinke bein schaf/ U. Reuss// Der Tierzuch. 1975. - №9. - P. 384 - 386.

367. Reuss, U. Vaccination trial against foot-rot in sheep/ U. Reuss// Proc. XX vet. Cong. Greese. 1975. - P. 892.

368. Reuss, U. Vakcinationsversuche gegen die moderhinke der schafe/ U. Reuss, P. Conrad, W. Traeder// Tierarztl. Umsch. 1974. - V. 29. - №9. - P. 504-509.

369. Richard, Ch. Le pietinconception actuelles sur Tetiopathogenie et sur la vaccination/ Ch. Richard// Bull. soc. vet. prat. Fr. — 1977. V. 61. - №5. -P. 307-329.

370. Ristellan-vaccine inactive contre le pietin des ruminants. ICT Toulouse, France.

371. Roberts, DS. Ovine interdigital dermatitis and relationship to foot-rot and foot abscess/ DS. Roberts// Austral, vet. j. 1966. - №42. - P. 440.

372. Roberts, DS. Patient specification 135544/ DS. Roberts// GB. London. -1974.

373. Roberts, DS. The aetiology and pathogenesis of ovine foot-rot. The pathogenic association of Fusiformis nodosus and F. necrophorus/ DS. Roberts, JR. Egerton// J. comp. path. 1969. - №79. - P. 217 - 229.

374. Roberts, DS. An alum treated vaccine for the control of foot-rot in sheep/ DS. Roberts, WH. Foster, JB. Kerry et al.// Vet. Ree. 1972. - V. 91. -№10.-P. 428-429.

375. Roberts, D. Fluorescent-labelled antibody for the diagnosis of foot-rot/ D. Roberts, P. Walker// Vet. Ree. 1973. - V. 92. - №3. - P. 70 - 71.

376. Ross, AD. Injection site lesions of foot-rot vaccine in sheep/ AD. Ross, DM. Titterington// N. Z. vet. j. 1984. - V. 32. - №1 - 2. - P. 6 - 8.

377. Salman, MD. An economical evaluation of varios treatment for contagions foot-rot in sheep, using decision analisis/ MD. Salman, DA. Dargatz, CV. Kimberling et al.// JAVMA. 1988. - V. 193. - №2. - P. 195 - 204.

378. Schipper, IA. Foot-rot in sheep/ IA. Schipper// Sheep breeder. -1984. V. 104. - №5. - P. 14 - 16.

379. Schmitz, JA. Ovine foot-rot/ JA. Schmitz, JL. Gradin// a review. Proc. annual meet. US. anim. health assn. 1974. - №78. - P. 385 - 392.

380. Schmitz, JA. Research progression foot-rot in sheep/ JA. Schmitz, JL. Gradin// Proc. 81 annual meet. US anim. health assn. 1977.

381. Schmitz, JA. Serotypic and biochemical characterization of B.nodosus isolated from Oregon/ JA. Schmitz, JL. Gradin// J. comp. med. -1980.-№44.-P. 440-441.

382. Schmitz, JA. Treatment and control of foot-rot in sheep/ JA. Schmitz, JL. GradinII Nat. wool. Grower. 1982. - V. 72. - №4. - P. 10 - 12.

383. Short, JA. An electron microscope study of B.nodosus: ultrastructure of organism from primary isolated and different colony types/ JA. Short, CM. Thorley, PD. Walker// J. appl. bacter. 1976. - №40. - P. 311 - 315.

384. Sibley, PH. Foot-rot can be eradicated/ PH. Sibley// J. agric. 1960. -№18. — P. 151.

385. Skerman, TM. Vaccination against foot-rot in sheep/ TM. Skerman// N. Z. vet. j. 1971. -V. 19.-№5.-P. 112.

386. Skerman, TM. An evaluation of vaccination techniques for the control of ovine foot-rot under condition in New-Zealand/ TM. Skerman// Proc. XX vet. Cong. Greese. 1975. - P. 588.

387. Skerman, TM. Determination of some in vitro growth requirements of Bacteroides nodosus/ TM. Skerman// J. gen. microb. 1975. - №83. - P. 107- 109.

388. Skerman, TM. Bacteroides nodosus the causative agent of contagious foot-rot in sheep/ TM. Skerman// Actual, data biol. pathol. anaer. bact. Bucharest. 1977. - P. 327 - 333.

389. Skerman, TM. Genetic variation and inheritance of susceptibility of foot-rot in sheep/ TM. Skerman// Foot-rot in ruminants. CSIPO. Australia. — 1986.-P. 73-74.

390. Skerman, TM. Experimental observations on prophylactic and theraupeutic vaccination against foot-rot in sheep/ TM. Skerman, IM. Cairney// N. Z. vet. J. 1972. - №20. - P. 205 - 211.

391. Skerman, TM. Differentation of B.nodosus biotypes and colony variants in relation to their virulence and immunoprotective properties in sheep/ TM. Skerman, SK. Erasmuson, D. Every// Inf. and Immun. 1981. — V. 32.-№2.-P. 788-795.

392. Skerman, TM. Duration of resistance to experimental foot-rot infection in Romney and Merino sheep vaccinated with Bacteroides nodosus oil adjuvant vaccine/ TM. Skerman, SK. Erasmuson, LM. Morrison// N. Z. vet. j. 1982. - V. 30. - №3. - P. 27 - 31.

393. Skerman, TM. Comparison of footbathing treatment ovine foot-rot using formalin or zinc sulphate/ TM. Skerman, RS. Green, JM. Hughes et. al.// N. Z. vet. J. 1983. - №31. - P. 91-95.

394. Skerman, TM.'Clinical footscald and foot-rot in a New Zealand Romney flock: phenotypic and genetic parameters/ TM. Skerman, DL. Johnson, DW. Kane et al.// Austral, j. agric. res. 1988. - №39. - P. 907 -916.

395. Skerman, TM. Failure of orally administrated zinc to prevent experimentally induced foot-rot in sheep/ TM. Skerman, KR. Millar, AD. Sheppard et al.// N. Z. vet. j. 1983. - V. 31. - №4. - P. 54 - 57.

396. Skerman, TM. Broomfield Corriedale: A strain of sheep selectively breed for resistance to foot-rot/ TM. Skerman, SR. Moorhouse// N. Z. vet. j. 1987.-V. 35.-№7.-P. 101-106.

397. Smith, AW. Antigenic profiles of B.nodosus strain isolated from sheep given a polyvalent commercial foot-rot vaccine/ AW. Smith, JL. Gradin, MS. Bulgin// Small rumin. Res. 1989. - №2.

398. Spais, AG. Field evaluation of the combination of lincomycin and spectomycin for the treatment of foot-rot in sheep/ AG. Spais, S. Argyroudis// Bullhelen. vet. med. soc. 1982. - V. 33. - №4. - P. 363 - 370.

399. Sterk, V. Uticaj sastava na efikasnost vakcinisanja I otpornost prema zaraznoj sepavosti ovaca/ V. Sterk, R. Beslin, I. Vulic// Vet. Glas. 1976. -V.30.-№8.-P. 695-699.

400. Sterk, V. Prilog poznavanju zastitne vrednosti vaccine protiv zarazne sepavosti ovaca/ V. Sterk, R. Beslin, I. Vulic// Vet. Glas. 1976. - V. 30. -№12.-P. 1009-1011.

401. Stewart, DJ. An electron microscopie study of Fusiformis nodosus/ DJ. Stewart//Res. vet/sci.- 1973.- V. 14.-№1.-P. 132-134.

402. Stewart, DJ. Studies on the morphology and antigenic structure of Fusiformis nodosus/ DJ. Stewart// PhD thesis. Univ. Sydney. 1975.

403. Stewart, DJ. Antigen of Fusiformis nodosus and their relation to immunity of shhep to foot-rot/ DJ. Stewart// Proc. XX. vet. cong. Greese. — 1975.-P. 589.

404. Stweart, DJ. Studies on the antigenic structure of Bacteroides nodosus/ DJ. Stewart// Res. vet. sci. 1978. - V. 24. - №3. - P. 293 - 299.

405. Stewart, DJ. The role of various antigenic fractions of B. nodosus in eliciting protection against foot-rot in vaccinated sheep/ DJ. Stewart// Res. vet. sci. 1978. - V. 24. - №1. - P. 14 - 19.

406. Stewart, DJ. The role of elastase in differentiation of B. nodosus infections in sheep and cattle/ DJ. Stewart// Res. vet. sci. 1979. - №27. - P. 103- 105.

407. Stewart, DJ. Review of Foot-rot diagnisis and the role vaccination// DJ. Stewart// Sheep prod, and prev. med. Sydney. 1983. - №67. - P. 487 -490.

408. Stewart, DJ. A B. nodosus immunogen distinct from the pilus which induced cross-protective immunity in sheep vaccinated against foot-rot/ DJ. Stewart, BL. Clark, DL. Emery et al.// Austral, vet. j. 1983. - №60. - P. 83 -85.

409. Stewart, DJ. The phenomenon of cross protection against foot-rot induced by vaccination of sheep with B. nodosus/ DJ. Stewart, BL. Clark,

410. DL. Emery et al.// Foot-rot in ruminants. CSIRO. Australia. 1986. - P. 185 - 192.

411. Stewart, DJ. The role of surface antigen on B. nodosus vaccine/ DJ. Stewart, BL. Clark, JE. Peterson et al.// Austral, adv. vet. sci. 981. - №2. -P. 254-257.

412. Stewart, DJ. Importance of pilus-associated antigen in B. nodosus vaccines/ DJ. Stewart, BL. Clark, JE. Peterson et al.// Res. vet. sci. 1982. -V. 32.-№2.-P. 140-147.

413. Stewart, DJ. Effekt of pilus dose and type of Freunds adjuvant on the antibody and protective responses of vaccinated sheep to B. nodosus/ DJ. Stewart, BL. Clark, JE\ Peterson et al.// Res. vet. sci. 1983. - V. 35. - №2. -P. 130- 137.

414. Stewart, DJ. Studies on the ultrastructural morphology of Bacteroides nodosus/ DJ. Stewart, JR. Egerton// Res. vet. sci. 1979. - V. 26. - №2. - P. 227-235.

415. Stewart, DJ. Bacteroides nodosus pili vaccine produced by recombinant DNA for the prevention and treatment of foot-rot in sheep/ DJ. Stewart, TC. Elleman// Austral, vet. j. 1987. - V. 64. - №3. - P. 79 - 80.

416. Stewart, DJ. Application of recombinant DNA technology to the development of a B. nodosus pili vaccine for foot-rot in sheep/ DJ. Stewart, TC. Elleman, JS. Mattick// Abst. 23. vet. cong. Monreal. 1987.

417. Stewart, DJ. Bacteroides nodosus vaccines/ DJ. Stewart, AA. Kortt// Breven. US. 737. - 1988. - appl. - 810. - P. 152.

418. Stewart, DJ. Clinical and laboratory diagnosis of benigh, intermediate and virulent strains of B. nodosus/ DJ. Stewart, JE. Peterson, JA. Vaughan et al.// Foot-rot in ruminants. CSIRO. Australia. 1986. - P. 81 - 91.

419. Stewart, DJ. The patogenicity and cultural characterictics of virulent, intermediate and benigh strains of B. nodosus causing ovine foot-rot/ DJ. Stewart, JE. Peterson, JA. Vaughan et al.// Austral, vet. j. 1986. - V. 63. -P. 317-326.

420. Taylor, C. Foot-rot-keeping one step ahead/ C. Taylor// Sheep, farm. 1987. - V. 6. - №6. - P. 14 - 16.

421. Thomas, JH. A simple medium for isolation and cultivation of F. nodosus/ JH. Thomas//Austral, vet. j. 1958. - №34. - P. 411.

422. Thomas, JH. The bacteriology and histopathology of foot-rot in sheep/ JH. Thomas/ Austral, j. agr. res. 1962. - V. 13. - №4. - P. 725 -731.

423. Thomas, JH. The differentiatial diagnosis of foot-rot/ JH. Thomas// Austral, vet. j. 1962. — V. 38. - №4. - P. 159- 163.

424. Thomas, JH. A liquid medium for the growth of F. nodosus/ JH. Thomas// Austral, vet. j. 1963. - V. 39. - P. 434 - 437.

425. Thomas, JH. Proteolitic enzymes produced in liquid media by F. nodosus/ JH. Thomas// Austral, agr. res. 1964. - V. 15. - №3. - P. 417 -426.

426. Thorley, CM. A simplifield method for the isolation of Bacteroides nodosus from ovine foot-rot and studies on its colony morphology and serology/ CM. Thorley// J. appl. bacter. 1976. - №40. - P. 301 - 309.

427. Thorley, CM. Serotyping survey of 1296 strains of B. nodosus isolated from sheep and cattle in Great Britan and Western Europe/ CM. Thorley, SEJ. Day// Foot-rot in ruminants. CSIRO. Australia. 1986. - P. 135- 142.

428. Thorley, CM. A candidate saponin adjuvated, aluminium hydroxide precipitated, multistrain foot-rot vaccine for non Merino breed sheep/ CM. Thorley, JB. Kerry, HA. McCalder et al.// Foot-rot in ruminants. CSIRO. Australia. 1986. - P. 193 - 198.

429. Truszynski, M. Studies on the aetiology of foot-rot in sheep/ M. Truszynski, Z. Cygan, S. Ushacz// Proc. XX vet. cong. Greese. 1975. - P. 593.

430. Tulasne, JJ. Ovine foot-rot/ JJ. Tulasne, JC. Beguin// General report.it4 int. symp. disord. rumin. digit. Paris. — 1982.

431. Turpin, M. Essay de prevention et de traitment du fourchet et de Tulcere de la sole par administration orale de zinc associaciee a une vaccination spécifique/ M. Tuprin, M. Louseau, D. Dupeux// Rev. med. vet.- 1983. V. 134.-№1.-P. 19-24.

432. Vintila, C. Influenta temperature si imiditatii asupra incidentei pododermatitei ovine/ C. Vintila// Lucr. sti. inst. agron. 1979. - №16. - P. 117-122.

433. Vintila, C. Observatii privind etiologia pododermatitei infectioase a oilor/ C. Vintila, I. Tigu// Lucr. sti. inst. agron. 1979. - №16. - P. 123 -127.

434. Voelkel, Z. Leczenie gnicia vacic u owiec/ Z. Voelkel// Med. weter.- 1976. V. 32. - №12. - P. 742 - 743.

435. Vujic, B. Prilog discusiji o klostridiozama i zaraznoj sepavosri u ovaca/ B. Vujic, V. Boskovic, R. Markovic et al.// Vet. Glas. 1981. - V. 35.-№2.-P. 131-139.

436. Waal, J van der. Rotkreupel en schurff bij schapen/ J van der Waal// Tijdsch. voor diergen. 1963. - V. 88. - №25. - P. 1987 - 2000.

437. Wallace, J. What a load of foot-rot/ J. Wallace// Farm, weekly. -1987.-V. 107.-№19.-P. 32.

438. Walker, DJ. Foot-rot in sheep/ DJ. Walker// Agr. j. NSW. 1968. -№79.-P. 550-556.

439. Walker, PD. The fine structure of F. nodosus with special reference to the location of antigens associated with immunogenisity/ PD. Walker, J. Short, RO. Thomson et al.// J. gen. microb. 1973. - №77. - P. 351 - 361.

440. Watson, DF. Some aspects of foot-rot in sheep/ DF. Watson// JAVMA.-1961.-V. 139.-P. 1093-1094.

441. Wedel, D. Diseases in sheep/ D. Wedel// Sheep breeder and sheepman. 1976. - V. 96. - №8. - P. 130 - 132.

442. Werff, CD van der. Besrtijding en therapie van rotkeupel bij Schapen in Friesland/ CD van der. Werff. Versl. Land. Onderz. 1968. - №704. - P. 90-100.

443. Whittington, RJ. Antigens for serological diagnosis of ovin foot-rot/ RJ. Whittington, VF. Saunders, EK. Moses// Veter. Microbiol. 1997. - V. 54.-№3/4.-P. 255-274.

444. Whittington, RJ. Serum antibody responses in sheep after natural infection with B. nodosus/ RJ. Whittington, DJ. Marshall, RI. Walker et al.// Austral. Vet. J. 1990. - V. 67. - №3. - P. 98 - 101.

445. Wilkinson, FS. Transmission of D. nodosus infection from cattle to sheep/ FS. Wilkinson, JR. Egerton, J. Dickson// Austral. Vet. J. 1970. -№46.-P. 382-384.

446. Yalcin, N. Sheep vaccination against foot-rot/ N. Yalcin, Ch. Richard// Proc. XX vet. cong. Greese. 1975. - P. 592.

447. Young, D. Monoclonal antibodies olefining immunogenic regions of pili from B. nodosus strains 198, 265 and 336/ D. Young, DL. Emery, DJ. Stewart// Immun. cell. biol. 1989. - V. 67. - №1. - P. 71 - 78.

448. Yong, WK. Comparative antigenic analysis of extracellular proteins of B. nodosus isolated from virulent and benigh ovine foot-rot/ WK. Yong, LM. Gordon// Vet. microb. 1986. - V. 12. - №2. - P. 135 - 145.

449. Yong, WK. Characterization of virulence associated antigens for differentiating virulent and benigh strains of B. nodosus/ WK. Yong, EK. Moses, GG. Riffkin// Foot-rot in ruminants. CSIRO. Australia. 1986. - P. 109-117.

450. Zakaria, Z. Molecular analysis of Dichelobacter nodosus isolated from foot-rot in sheep in Malaysia// Z. Zakaria, S. Radu, AR. Sheikh-Omar et al.// Vet. microb. 1998. -V. 62. - №3. - P. 243 - 250.

451. Zannetti, G. Therapia e profilassi della pedaina ovi-caprina/ G. Zannetti, L. Andreoli// ODV Obiett. veter. 1987. - V. 8. - №12. - P. 25 -30.

452. Zhou, H. Eztensive diversity in New Zealand Dichelobacter nodosus strains from infected sheep and goats// Vet. microb. 2000. - V. 71. - №1/2. -P. 113-123.250