Автореферат и диссертация по медицине (14.00.02) на тему:Возрастные преобразования центров иннервации прямой кишки в норме и в условиях химической десимпатизации и деафферентации
- Ученая степень
- кандидата медицинских наук
- ВАК РФ
- 14.00.02
Оглавление диссертации Фоканова, Ольга Анатольевна :: 2006 :: Ярославль
Перечень условных обозначений
ВВЕДЕНИЕ
1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
1.1. Морфологические особенности и нейронная 13 организация интрамуральных ганглиев органов пищеварительной системы
1.2. Морфологические особенности и нейронная 21 организация тазовых ганглиев
1.3. Возрастные особенности интрамуральных ганглиев 25 органов пищеварения
1.4. Компенсаторно-приспособительные изменения 31 нейроцитов интрамуральных ганглиев при денервациях
2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДИКИ ИССЛЕДОВАНИЯ
3. ВОЗРАСТНЫЕ ПРЕОБРАЗОВАНИЯ НЕЙРОЦИТОВ ИНТРАМУРАЛЬНЫХ ГАНГЛИЕВ ПРЯМОЙ КИШКИ БЕЛОЙ КРЫСЫ
3.1. Морфометрическая характеристика нейроцитов 46 межмышечных ганглиев прямой кишки у белых крыс разного возраста
3.2. Активность холинэстеразы в нейроцитах 52 интрамуральных ганглиев прямой кишки белых крыс разного возраста
3.3. Возрастные преобразования активности 55 моноаминоксидазы в интрамуральных ганглиях прямой кишки белых крыс
3.4. Активность НАДФ-Д в нейроцитах интрамуральных 56 ганглиев прямой кишки у белых крыс разного возраста
Введение диссертации по теме "Анатомия человека", Фоканова, Ольга Анатольевна, автореферат
Согласно современным представлениям процессы пре- и постнатально-го развития организма протекают при непосредственном участии различных механизмов. Среди них значительное место отводится нейрогуморальной регуляции. Состояние и уровень развития ее отдельных звеньев во многом определяют возможности адаптации организма к среде обитания. Уже с момента закладки органов развивающаяся нервная система оказывает существенное влияние на их формообразование (Голуб Д.М., 1966; Корочкин Г.И., 1965; Амвросьев А.П., 1970; Волкова и соавт., 1971; Кнорре А.Г., Суворова JI.B., 1984; Леонтюк A.C., 1996). Ослабление нервных влияний определяет характер и темпы вторичных изменений в обмене, функции и структуре тканей и органов целостного организма (Bellinger D.L. с соавт., 1993; Andrews T.J. с соавт., 1996; Akoev G.N., ChalisovaN.I., 1997).
Нарушения иннервации органов таза остаются важной проблемой современной медицины.
Нервный аппарат прямой кишки длительное время является объектом особого внимания морфологов и физиологов. Вместе с тем вопросы структурно-функциональных изменений в системе её иннервации в различные периоды пре- и постнатального онтогенеза в полном объеме не разработаны. Совершенно недостаточны сведения о структурных и гистохимических изменениях, возникающих в процессе развития в экстра- и интрамуральных нервных образованиях прямой кишки, для которой характерны высокая степень иннервации (Амвросьев А.П., 1970, 1972, 1977) и централизации (Булы-гинИ.А., 1966).
До сих пор еще нет точных данных о возрастных преобразованиях ней-роцитов интрамуральных и экстрамуральных ганглиев прямой кишки, а также их гистохимической профилизации на этапах постнатального развития белой крысы - экспериментального животного, широко используемого в исследованиях. В литературе отсутствуют сведения об особенностях структурно-химических изменений в различных периферических звеньях иннервации этого органа на этапах постнатального онтогенеза.
Имеющиеся в настоящее время данные об иннервации прямой кишки, как правило, базируются на анатомических методах исследования, результатах невротомий, ганглиоэктомий, резекции части органа, которые имеют существенные недостатки.
Исследования отечественных нейроморфологов и физиологов показали различия влияний афферентных и симпатических центров на ткани-мишени, выделили специфику развития дистрофических и компенсаторных изменений при разных видах денервации (Пекарский М.И., 1963; Григорьева Т.А., 1966; Корытный Е.Я., 1966; Червова И.Д., 1966; Крыжановский Н.Г. с соавт., 1973, 1974; Строганова А.Б., 1972; Волкова О.В., 1978 и др.).
Известно, что нарушения симпатической иннервации приводят к нарушению адаптационных реакций (Гинецинский А.Г., 1923; Орбели JI.A., 1923; Червова И.А., 1966; Говырин В.А., 1967; Cannon с соавт., 1929, 1949), а деафферентация вызывает комплекс изменений, определяемых как асептическое воспаление и являющихся типичными для различного рода органов (Григорьева Т.А., 1951-1967; Зайденберг М.Д., 1963; Пекарский М.И., 1963; Волкова О.В., 1973, 1978; Елецкий Ю.К., 1984; и др.).
В меньшей степени изучены изменения нейроцитов и компенсаторные процессы в ганглиях, которые при нарушении межнейрональных связей также становятся мишенями нейродистрофического процесса (Милохин A.A., 1967; Зайко H.H., 1974; Румянцева Т.А., 2002).
Некоторые авторы указывали на реакцию нейроцитов в ганглиях при хирургической денервации органов (Рудик Е.А., 1952; Картавенко А.Н., 1955; Ярыгин Н.Е., Шепелева Н.С., 1957; Зайденберг М.Д., 1960; Мосеев В.П., 1970; Елецкий Ю.К., 1984; Когут Б.М., 1984; Шаширина М.И., 1986; Оррин Т. с соавт., 1998; Schmid W., van der Zypen E., KellerH., 1979; Suzuki Т. с соавт., 1997), в единичных работах показано влияние внутриутробной химической десимпатизации или химической десимпатизации половозрелых крыс на нейроциты чувствительных ганглиев (Руденок В.В., Сысов А.В., 1991; Шилкин В.В. с соавт., 1999; Румянцева Т.А., 2002), иммунологической де-симпатизации на интрамуральные нейроциты сердца и матки у мышей (Волкова О.В., 1978), химической деафферентации на симпатоциты шейно-грудных ганглиев, на нейроциты интрамуральных ганглиев желудка и двенадцатиперстной кишки (Румянцева Т.А., 2001; Воробьева О.Б., 2005).
Появление веществ, обладающих избирательным токсическим действием на нейроциты разной природы, позволяет моделировать «чистые» избирательные денервации, определить особенности влияния разных частей нервной системы на органы-мишени, выявить особенности дистрофических и компенсаторных процессов в развивающемся организме.
Вышеизложенное и определило цель и задачи настоящего исследования.
Цель работы: изучить преобразования различных центров иннервации прямой кишки в постнатальном онтогенезе белой крысы в норме и в условиях химической денервации.
Для достижения этой цели определены следующие задачи:
1. Получить нормативные данные о возрастных преобразованиях нейро-цитов интрамуральных ганглиев прямой кишки и большого тазового ганглия на протяжении первого полугодия жизни белой крысы.
2. Изучить влияние десимпатизации на нейроциты интрамуральных ганглиев прямой кишки и большого тазового ганглия развивающейся белой крысы.
3. Установить влияние деафферентации на нейроциты интрамуральных ганглиев прямой кишки и большого тазового ганглия развивающейся белой крысы.
4. Выявить особенности влияния десимпатизации и деафферентации на морфометрические и гистохимические характеристики нейроцитов интраму-рального нервного сплетения прямой кишки и большого тазового ганглия.
Работа выполнена на 495 самках белых крыс линии Вистар разного возраста.
Возрастные морфологические и гистохимические особенности нейро-цитов изучены в интрамуральных ганглиях ампулы прямой кишки и большого тазового ганглия. Возраст исследуемых крыс выбирался в соответствии с периодизацией онтогенеза крыс, предложенной И.П. Западнюком (1974), от 3 до 180 суток.
Десимпатизация проводилась путем длительного введения гуанетиди-на, что позволяет достичь 95-97% убыли нейроцитов в шейно-грудном ганглии, т.е. создать модель «полной десимпатизации».
Химическая деафферентация проводилась путем однократного введения капсаицина новорожденным крысам в дозе 100 мг/кг, что позволяет достичь гибели почти позволило достичь гибели 22-24% нейроцитов спинномозговых ганглиев (Порсева В.В., 2006), т.е. создать модель «частичной деаффе-рентации».
Животных выводили из опыта в разные сроки - от 3 до 180 суток жизни.
В работе использовались нейрогистологические (окраска по Нисслю), гистохимические (выявление активности холинэстеразы (ХЭ), моноаминок-сидазы (МАО), НАДФ-диафоразы (НАДФ-Д)), морфометрические и статистические методики.
Для оценки стабильности, упорядоченности, зрелости системы нейроцитов, для сопоставления состояния совокупности нейроцитов- ганглиев разной природы использовали информационный анализ (Кадыров Х.К., Анто-монов Ю.Г., 1974; Леонтюк A.C., Леонтюк Л.А., Сыкало А.И., 1981; Слука Б.А., 1983).
Анализ возрастных преобразований нейроцитов интрамуральных и тазовых ганглиев позволил установить общие и органоспецифичные черты их развития в первом полугодии жизни крысы, отличия в темпах роста и сроках достижения ими дефинитивного состояния.
Научная новизна исследования заключается в установлении общих и органоспецифичных черт развития нейроцитов интрамуральных ганглиев прямой кишки и больших тазовых ганглиев в первом полугодии жизни крысы, проявляющихся в темпах роста и сроках достижения ими дефинитивного состояния по размерам, и количественного состава отдельных ХЭ-, МАО-, НАДФ-Д-позитивных субпопуляций.
Впервые доказано, что дефинитивное состояние популяций нейроцитов интрамуральных ганглиев прямой кишки и тазовых ганглиев белой крысы по размерам клеток и активности ХЭ, МАО и НАДФ-Д достигается гетерохрон-но.
Информационный анализ позволил выявить, что для развивающейся системы нейроцитов в период активного роста характерно постепенное увеличение гетерогенности по метрическим параметрам и волнообразные изменения состояния системы по активности ферментов.
Доказано, что в изученных ганглиях существуют нейроциты чувствительные к гуанетидину. В результате исследования получены оригинальные данные о влиянии этого нейротоксина на нейроциты интрамуральных ганглиев прямой кишки и большого тазового ганглия белой крысы, выявлены органные особенности выраженности нейродистрофического процесса в изучаемых ганглиях при десимпатизации. С учетом количества нейроцитов, погибших в ранние сроки при первичном воздействии нейротоксина и в отдаленные сроки вследствие вторичного эффекта - нейродистрофического процесса, показано, что более устойчивой к десимпатизации является популяция нейроцитов интрамуральных ганглиев прямой кишки.
Впервые установлено, что часть нейроцитов интрамуральных ганглиев прямой кишки и большого тазового ганглия гибнут при первичном воздействии капсаицина. Их количество особенно велико в интрамуральных ганглиях, в которых более выражена и вторичная гибель нейроцитов вследствие развития дистрофического процесса.
Гибель афферентных нейроцитов приводит к задержке роста остальных клеток и к нарушению нормальной возрастной динамики активности ХЭ, МАО и НАДФ-Д в изученных ганглиях. Установлены органные особенности реакции ферменто-позитивных субпопуляций на введение нейротоксина и развитие вторичного дистрофического процесса.
В результате исследования установлено, что во всех ганглиях присутствуют капсаицин-чувствительные и гуанетидин-чувствительные нейроциты, гибель которых происходит непосредственно после введения нейротоксина. Первичной чувствительностью к гуанетидину обладают ХЭ и МАО-позитивные нейроциты, субпопуляция НАДФ-Д-позитивных нейроцитов устойчива к прямому воздействию этого симпатолитика. Первичной чувствительностью к капсаицину обладают НАДФ-Д-позитивная и МАО-позитивная субпопуляции, устойчивой к прямому действию нейротоксина является ХЭ-позитивная субпопуляция.
Выявлена степень нарушения состояния систем нейроцитов разных субпопуляций и оценена направленность патологического процесса, развивающегося в них.
В результате проведенного исследования впервые получены нормативные возрастные характеристики нейроцитов вегетативных ганглиев, участвующих в иннервации прямой кишки, у белой крысы первого полугодия жизни, которые могут служить основой для морфо-функциональных исследований органов и тканей в эксперименте, и значительно расширяют представления об особенностях возрастных изменений в системе иннервации прямой кишки. Установлено, что любой вид химической денервации (десим-патизация, деафферентация) является только относительно избирательным, приводя к развитию нейродистрофического процесса в других центрах, что необходимо учитывать в экспериментальной и клинической работе.
Результаты исследования нейроцитов различных ганглиев при химической денервации свидетельствуют о возможности использования десимпати-зации, деафферентации для моделирования состояний приобретенного в периоде раннего развития дефицита симпатоцитов и афферентных нейроцитов, в целях фундаментальных исследований структуры и функции органов, адаптивных возможностей организма в целом и его отдельных систем при воздействии различных факторов, а также механизмов действия лекарственных препаратов.
Полученные нормативные данные, данные о динамике развития нейро-дистрофического процесса и об особенностях компенсаторных преобразований в нервной ткани могут использоваться в учебном процессе при обучении специалистов медицинского и биологического профилей.
На защиту выносятся следующие положения:
1. Нейроциты интрамуральных ганглиев прямой кишки и большого тазового ганглия белой крысы гете рогенны по морфометрическим и гистохимическим характеристикам.
2. Достижение дефинитивного уровня морфометрических и энзи-могистохимических характеристик нейроцитов ганглиев, участвующих в иннервации прямой кишки у белых крыс, происходит гетерохронно и зависит от вида ганглия.
3. Нейроциты изученных ганглиев обладают различной чувствительностью к нейротоксинам. Первичное действие капсаицина и гуанетидина сопровождается ранней гибелью нейроцитов, отсроченная реакция нейроцитов на десимпатизацию и деафферентацию проявляется нейродистрофиче-скими изменениями.
1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
Заключение диссертационного исследования на тему "Возрастные преобразования центров иннервации прямой кишки в норме и в условиях химической десимпатизации и деафферентации"
193 ВЫВОДЫ
1. Интрамуральные межмышечные ганглии прямой кишки и большого тазового ганглия гетерогенны по составу нейроцитов. В них выявляются ХЭ-позитивные, НАДФ-диафораза-позитивные, МАО-позитивные и ферменто-негативные субпопуляции. Позитивность нейроцитов к НАДФ-Д и ХЭ выявляется с 3 суток, к МАО - с 10 суток жизни крысы.
2. Становление активности ХЭ, МАО, НАДФ-Д происходит в нейроцитах ганглиев прямой кишки и в большом тазовом ганглии волнообразно и имеет выраженные органоспецифичные черты, дефинитивное состояние нейроцитов по активности ферментов достигается гетерохронно. В нейроцитах интрамуральных ганглиев прямой кишки ранее других на 90 сутки стабилизируется активность ХЭ и МАО, НАДФ-Д на 120 сутки. В большом тазовом ганглии ранее других стабилизируется НАДФ-Д - позитивная субпопуляция - 90 сутки, вслед за ней - МАО-позитивная субпопуляция - 120 сутки, позже других - 150 сутки - ХЭ-позитивная субпопуляция нейроцитов.
3. Достижение нейроцитами ганглиев прямой кишки и больших тазовых ганглиев дефинитивного состояния по морфометрическим характеристикам происходит неодновременно, на 60 и 90 сутки соответственно, нейроциты интрамуральных ганглиев увеличиваются в течение первого полугодия жизни крысы в 4 раза, тазовых ганглиев - в 5,8 раза.
4. Изменения нейроцитов интрамуральных ганглиев прямой кишки и большого тазового ганглия по метрическим и гистохимическим параметрам позволяют выделить в течение первого полугодия жизни крысы по развитию центров иннервации прямой кишки ряд фаз: первая фаза - до 30 суток - характеризуется интенсивными процессами роста нейроцитов, выраженными колебаниями активности ферментов и количественного состава субпопуляций, вторая фаза продолжается до 90 суток в прямой кишке и до 120 суток в тазовом ганглии и характеризуется достижением ганглиями по части изучаемых параметров дефинитивного уровня, третья фаза, после 120 суток в прямой кишки и после 150 суток в большом тазовом ганглии и далее, - достижение дефинитивного состояния по всем изучаемым параметрам.
5. Информационные характеристики выявляют основные тенденции развития систем нейроцитов интрамуральных ганглиев прямой кишки и большого тазового ганглия в первом полугодии жизни у белой крысы - это повышение гетерогенности по большинству параметров, а также чередование периодов возрастания резервов системы и их активной мобилизации, что является одним из проявлений волнообразности становления структурно-функциональной организации ганглиев прямой кишки.
6. Десимпатизация вызывает в интрамуральных ганглиях прямой кишки и в большого тазового ганглия прогрессирующий дистрофический процесс, который затрагивает все популяции нейроцитов, особенно ХЭ- и МАО-позитивные, и продолжается в течение всего периода наблюдения, проявляясь гибелью нейроцитов в ранние сроки при первичном воздействии нейротоксина и в отдаленные сроки, вследствие вторичного эффекта, высоким «дистрофическим индексом», нарушением активности ферментов, задержкой роста сохранившихся нейроцитов. Изменения более выражены в большом тазовом ганглии, где они длительно не имели тенденции к компенсации.
7. Деафферентация приводит к нарушению нормальной возрастной динамики метрических и гистохимических характеристик нейроцитов ганглиев прямой кишки и большого тазового ганглия, что проявляется гибелью в ранние сроки части нейроцитов, особенно МАО- и НАДФ-Д-позитивных и является признаком первичного действия капсаицина, а также отсроченной гибелью преимущественно ХЭ-позитивных нейроцитов вследствие вторичного эффекта нейротоксина.
8. Органные различия в реакции на неонатальную деафферентацию капсаицин состоят в следующем: первичная реакция сильнее выражены в ганглиях прямой кишки, что связано, очевидно, с большей долей афферентных нейроцитов в составе интрамуральных ганглиев, но отсроченная реакция преобладает в большом тазовом ганглии, который реагирует, вероятно, на дефицит афферентных влияний персистирующими дистрофическими изменениями.
195
Список использованной литературы по медицине, диссертация 2006 года, Фоканова, Ольга Анатольевна
1. Автандилов Г.Г. Медицинская морфометрия. М: Медицина, 1990.-383 с.
2. Автандилов Г.Г. Морфология в патологии. М: Медицина, 1973. 248 с.
3. Аккуратов Е.Г., Воробьева О.Б., Ноздрачев А.Д., Обрезчикова М.Н., Румянцева Т.А., Филимонов В.И., Шилкин В.В. Морфология и реактивные изменения нервных структур при химической десимпатизации //Физи-ол.журн.им. И.М.Сеченова, 1995. -№10. С.44-50.
4. Амвросьев А.П. Анатомия афферентных систем пищеварительного тракта. Минск: Наука и техника, 1972. 312 с.
5. Амвросьев А.П. Закономерности развития и строение афферентных систем толстого кишечника. Автореф. дисс. докт.биол.наук. Л. 1968. 398 с.
6. Амвросьев А.П. Об изменениях активности щелочной фосфатазы в нейронах спинальных ганглиев кошки после резекции прямой и сигмовидной ободочной кишок // ДАН БССР, 1966.-т.10.-№ 9.-С.710-714.
7. Амвросьев А.П., Рыхликова Г.Г. Строение афферентного звена периферических висцеро-висцеральных рефлекторных механизмов поперечной ободочной кишки//ДАН БССР, 1973.-Т. 17.-№ 11.-С. 1061-1065.
8. Амвросьева С.П. Структурная организация иннервационного аппарата тощей кишки// Функциональная нейроморфология. Фундаментальные и прикладные исследования. К 100-летию академика Д.М. Голуба. Минск, 2001. С. 39-41.
9. Арчакова Л.И. Изучение передачи нервных импульсов по кишечнику в условиях его денервации на различном протяжении // В сб.: Нервные и гуморальные механизмы рефлекторных реакций. Минск, 1968. С.50.
10. Бабурин В.Э., Суворова Л.В. Ферментативная активность нейронов разных отделов пищеварительной трубки в постнатальном онтогенезе крыс // Архив анат.,гист.,эмбриол., 1988. Т. 95.- № 8. - С. 27-32.
11. Булыгин И.А. Цепные и кольцевые нейрогуморальные механизмы висцеральных рефлекторных реакций. Минск: Наука и техника, 1970. 289 с.
12. Булыгин И.А., Арчакова Л.И.; Бортник Э.М. Электронномикроскопиче-ский анализ представительства в спинном мозгу периферических афферентных нейронов желудка // ДАН БССР, 1972.- В.16.-№ 10.-С. 954.
13. Булыгин И.А., Солтанов В.В. Происхождение С-афферентов толстой кишки // Вести АН БССР, серия биол., 1971.-№ 6.-С. 121.
14. Виноградова О.Н. Рецепторы пищеварительного тракта лошади // Архив анат., гист., эмбр., 1952.- Т. 29.- №4.- С. 48-53.
15. Волкова О.В. Нейродистрофический процесс. М., Медицина, 1978. 256 с.
16. Воробьева О.Б. Возрастные преобразования сократительной активности двенадцатиперстной кишки белой крысы в норме и при химической де-нервации. Автореферат.дисс.канд.биол.наук, Ярославль, 2005.26 с.
17. Гилинский Е.Я. Материалы по морфологии рецепторного аппарата желудка позвоночных. М.-Л., 1958.
18. Говырин В.А. Трофическая функция симпатических нервов сердца и скелетных мышц. М.: Наука, 1967.
19. Голуб Д.М. Многоступенчатая чувствительная иннервация внутренних органов II Докл.АН БССР, 1966. Т. 10. - С.222-224.
20. Григорьева Т.А. Морфологические изменения лимфатических узлов при их чувствительной денервации // Лимфоидная ткань в восстановительных и защитных процессах. М., 1966.- С. 105.
21. Догель A.C. (Dogiel A.S.) Zwei Arten sympathischer Nervenzellen. Anat.Res. 1896. Bd. 11. - S.679-687.
22. Дьячкова Л.И. Чувствительная иннервация и состояние тканевых элементов в стенке желудка при перерезке блуждающих нервов // Архив анат., гист., эмбр., 1963.- № 12. С. 30-34.
23. Жаботинский Ю.М. Нормальная и патологическая морфология вегетативных ганглиев. М.: Изд-во АМН СССР, 1953. 292 с.
24. Жук В.В. Реиннервация желудка после ваготомии // Авто-реф.дисс.канд.мед.наук. Минск, 1988. 24 с.
25. Зайденберг М.Д. Об изменениях слизистой оболочки желудка при его чувствительной денервации // Бюлл. Москов. об-ва испыт. природы. Отдел биол., 1960.-Т.65.- № 2.- С. 159-160.
26. Западнюк И.П., Западнюк В.И., Захария Е.А. Лабораторные животные. Разведение, содержание, использование в эксперименте // Киев, «Вища школа», 1974, 304 с.
27. Зуга М.В. Нитрооксидситетаза легких и значение NO-ергического механизма в регуляции проходимости бронхов. Автореф.дисс.канд.мед.наук, Владивосток, 1996.-21 с.
28. Иванов Н.М., Чаиркин И.Н. Нервный аппарат мочевого пузыря в норме и при перевязке внутренней подвздошной артерии//В сб.: Структура и функции вегетативной нервной системы. Материалы 1-го международного симпозиума.- Воронеж, 1995. С.36-37.
29. Иванова Т.С. Рецепторная иннервация тонкой кишки. JL: Наука, 1967. 139 с.
30. Кадыров Х.К., Антомонов Ю.Г. Синтез математических моделей биологических и медицинских систем. Киев, Наукова думка, 1974. 224 е.
31. Калиниченко С.Г., Дудина Ю.В., Дюйзен И.В., Мотавкин П.А. Индукция NO-синтазы и глиального кислого фибриллярного белка в астроцитах височной коры крыс с аугенной эпилептиформной реакцией // Морфология, 2004. Т. 125. - №3. - С. 68-73.
32. Картавенко А.Н. Роль неврогенного фактора в патогенезе и клинике язвенной болезни желудка и 12-перстной кишки. Дисс.докт.мед.наук, Смоленск, 1955. 325 с.
33. Кнорре А.Г., Суворова JI.B. Развитие вегетативной нервной системы в эмбриогенезе. М.: Медицина, 1984. 272 с.
34. Князева JI.A., Ван Хэмин, Чарыева И.Г., Гаман С.А., Пылаев A.C. SIF-клетки вегетативных ганглиев // В сб.: Структура и функции вегетативной нервной системы. Материалы 1-го международного симпозиума.- Воронеж, 1995 С.43-44.
35. Ковалева Н.М. Структура ганглиев тазового сплетения самцов белых крыс в норме и в межорганном сращении. Автореф.канд дисс.биол. наук. Москва, 1983. 18 с.
36. Колосов Н.Г., Забусов Г.И. Zur Frage über den Bau des autonomen Nerversystems //Anat.Anz., 1932.- Bd. 74.- S. 417.
37. Корочкин Л.И. Дифференцировка и старение вегетативного нейрона. М.-Л.: Наука, 1965. 188 с.
38. Косицкий Г.И., Червова И.А. Сердце как саморегулирующаяся система. М., 1968. 131 с.
39. Крохина Е.М. Функциональная морфология и гистохимия вегетативной иннервации сердца. М., 1973. 136 с.
40. Кругляков П.П. Вегетативная система млекопитающих животных и человека в онтогенезе. Автореф.дисс.докт.биол.наук, Саранск. 1996. 36 с.
41. Кругляков П.П., Одыванова Л.Р. Чаиркина И.Н., Гуски Г., Швалев В.Н., Сосунов A.A. Межнейрональные взаимоотношения в вегетативных ганглиях (ультраструктурные аспекты) //Морфология, 1997.-T.III.,N. 1.-С. 35-39.
42. Кулькин С.Г. К эмбриогенезу нервного аппарата мочевого пузыря человека. Автореф. канд. дисс. Волгоград, 1957. 18 с.
43. Лакин Г.Ф. Биометрия. М., «Высшая школа», 1990, 352 с.
44. Лапша В.И. Роль интрамуральных ганглиев и сплетений в осуществлении периферических рефлексов с желудка на кишечник // В сб.: Нервные и гуморальные механизмы регуляции функций. Минск, 1969. С.61.
45. Ле-Ван Минь Строение и связи нервных сплетений желудка у человека и животных. Автореф.дисс.канд.мед.наук. Киев, 1978. 20 с.
46. Леонтюк A.C. Структурное разнообразие как критерий системной характеристики процессов морфогенеза. Морфология, 1996, т. 104, вып.2, с. 67.
47. Леонтюк A.C., Леонтюк Л.А., Сыкало А.И. Информационный анализ в морфологических исследованиях. Минск, 1981. 160 с.
48. Лойко Л.А. Структурно-функциональные особенности аффрентных систем илеоцекального отдела кишечника. Автореф.дисс.канд.мед.наук, Минск, 1972. 26 с.
49. Марков В.Н., Древаль A.A., Ярыгин В.Н. Радиографический и электрон-номикроскопический анализ симпатических невроцитов после частичной химической десимпатизации крыс разного возраста // Архив анат., гист., эмбр. 1982. -Т. 83. Вып. 10. - С. 35-42.
50. Мельман Е.П. Функциональная морфология иннервации органов пищеварения. М.: Медицина. 1970. 328 с.
51. Мещеряков A.M. Вегетативное нервное сплетение таза (экспериментально-морфологическое исследование). Автореф. докт. дисс. Казань, 1951. 26 с.
52. Милохин A.A. К вопросу о собственной рефлекторной дуге кишечника // Докл. АН СССР, 1953.-Т.93, №5.-С.933-935.
53. Милохин A.A. Чувствительная иннервация вегетативных нейронов. Л., «Наука», 1967, 68 с.
54. Мосеев В.П. Морфологические и функциональные изменения желудка после частичной его денервации. Дисс.канд.мед.наук, Ярославль, 1970. 269 с.
55. Мотавкин П.А., Зуга М.В. Окись азота и её значение в регуляции легочных функций // Морфология, 1998. Т. 114.- №5. - С. 99-111.
56. Никифоров А.Ф. Афферентный нейрон и нейродистрофический процесс. М., Медицина. 1973. - 192 с.
57. Николаев Г.М.и Шилкин В.В. Опыт определения активности ацетилхо-линэстеразы в структурах периферической нервной системы // Проблемы морфогенеза периферических нервов: сб. трудов ЯМИ.-Ярославль, 1983. -С. 64-72.
58. Ноздрачев А.Д. Адренэргические, холинэргические, серотонинэргиче-ские и пептидэргические нейроны метасимпатической нервной системы // Физиол. журн. СССР, 1984.-Т.70, N5.-C.649-661.
59. Ноздрачев А.Д. Анатомическая структура вегетативной нервной системы // Физиология вегетативной нервной системы. Л.: Наука, 1981. С. 31-34.
60. Ноздрачев А.Д. Физиология вегетативной нервной системы. Л.: Медицина, 1983. 296 с.
61. Ноздрачев А.Д. Химическая структура периферического автономного (висцерального) рефлекса // Успехи физиол. наук, 1996.-Т.27, N2.-C.28-60.
62. Пак Бон Ик Морфологические и гистохимические закономерности развития иннервации прямой кишки в онтогенезе белой крысы. Авто-реф.канд.биол.наук, Москва, 1985, 24 с.
63. Пилипенко В.И. Материалы к функциональной морфологии периферической нервной системы // Бюлл. экспер. биол. и мед., 1957.-Т.41, № 5.-С.70.
64. Реутов В.П., Сорокина Е.Г., Охотин В.Е., Косицын Н.С. Циклические превращения оксида азота в организме млекопитающих. М: Наука. 1997.
65. Родин В.Н. Морфологическая характеристика нервного аппарата стенки тонкой кишки в эмбриогенезе// Современные проблемы нейробиологии. Матер.З-го международ.симпозиума, 21-22 июня 2001 г., Саранск. Тез.докл. Саранск, 2001. С.67-68.
66. Родионов И.М., Ярыгин В.Н., Мухаммедов А.А Иммунологическая и химическая десимпатизация. М.: Наука, 1988. 152 с.
67. Руденок В.В., Сысов A.B. Строение нейронов шейных спинномозговых узлов плода белой крысы при химической десимпатизации гуанетидином беременной самки // 2-й съезд анатомов, гистологов, эмбриологов Белоруссии: Тез.докл. Минск, 1991. С. 150.
68. Рудик Е.А. Морфологические изменения желудка при перерезке блуждающих нервов. // Архив патол., 1952.-Т.14, №6.-С.59-63.
69. Румянцева Т.А. Влияние введения капсаицина на развитие нейроцитов чувствительных узлов белой крысы // Функциональная нейроморфология. Фундаментальные и прикладные исследования. К 100-летию академика HAH Беларуси Д.М.Голуба. Минск. 2001.-С.163-166.
70. Румянцева Т.А. Влияние химической десимпатизации и деафферента-ции на нейроциты экстра- и интрамуральных ганглиев в постнатальном онтогенезе белой крысы. Дисс. докт.мед.наук. Ярославль, 2002. 384 с.
71. Румянцева Т.А. Изменения нейроцитов интрамуральных ганглиев желудка у десимпатизированной и деафферентированной белой крысы // Мор-фология.-2001 -Т. 120, № 4.-С.82-83.
72. Румянцева Т.А. Энзимохимическая характеристика нейроцитов интрамуральных ганглиев желудка белой крысы при химической десимпатизации // Российские морфологические ведомости, 2001. № 1-2. - С. 77-79.
73. Румянцева Т.А., Шилкин В.В., Ковригина Т.Р., Филимонов В.И. Влияние введения капсаицина на нейроциты спинномозговых ганглиев белой крысы // Российские морфологические ведомости, 1999.-№1-2.-С.167-168.
74. Русова Э.М. Состояние интрамуральной нервной системы сердца при воздействии инадекватного раздражителя на некоторые органы // Вопросы морфологии в теоретической и клинической медицине. Труды Крымского медицинского института.-1982.-Т.91.-С.30-33.
75. Рыбаченко П.В. Микроциркуляторное русло межмышечного нервного сплетения толстой кишки в норме, при её парасимпатической децентрализации и моделировании проникающих ранений. Автореф.канд.мед.наук.
76. Ивано-Франковск, 1973, 24 с.
77. Ряховская Л.В., Адамацкий А.И. Связи нейронов симпатических ганглиев с миэнтеральным нервным сплетением ободочной кишки млекопитающих // Архив анат.,гист.,эмбриол., 1986.-Т.91, №10.-С. 15-21.
78. Слука Б.А. Информационный анализ нейроцитов некоторых периферических ганглиев и критические периоды их функционирования // Архив анат., гист., эмбр., 1983. Т.84. - №2. - С.16-22.
79. Слука Б.А. Структура нейронов симпатических ганглиев при химической десимпатизации гуанетидином // Архив анат.,гист.,эмбриол.-1987.-Т. 93, В.9.-С.64-70.
80. Смирнов В.М. Гипотеза о серотонинергической иннервации желудка и кишечника // В сб.¡Механизмы функционирования висцеральных систем. Тез.докл. междунар. Конференции, посвящен. 150-летию И.П.Павлова, СП6.-1999.-С.350-351.
81. Солтанов В.В. Электрофизиологический анализ афферентных систем желудочно-кишечного тракта. Автореф. дисс.докт.мед.наук, Минск, 1975. 24 с.
82. Сосунов A.A. Оксид азота как межклеточный посредник // Соросов-ский Образовательный Журнал, 2000 № 12 - с.27-34.
83. Столяров В.А. Микроморфология интрамуральной нервной системы тонкой кишки у новорожденных телят // Современные проблемы нейробиологии. Матер.З-го между народ, симпозиума, 21-22 июня 2001 г., Саранск. Тез.докл. Саранск, 2001.-С.72.
84. Струков А.И., Ярыгин Н.Е., Лапин С.К. Вопросы классификации структурных изменений элементов нервной системы // В кн.: Вопросы морфологии нервной системы. М.-1960.-С.69.
85. Тельцов Л.П., Кизим Э.В. Периодизация развития нервной ткани стенки тонкого и толстого кишечника// Современные проблемы нейробиологии. Матер.З-го международ.симпозиума, 21-22 июня 2001 г., Саранск. Тез.докл. Саранск.-2001.-С.74-75.
86. Червонная И.П. Сердечная деятельность у неонатально десимпатизи-рованных животных // В сб.: Механизмы функционирования висцеральных систем. Тез. докл. междунар. конференции, посвящен. 150-летию И.П.Павлова, СП6.-1999.-С.394-395.
87. Чернышевская И.А. Гистохимия холинэстераз коры головного мозга. М., Наука. 1983. 104 с.
88. Шаширина М.И. Реакция нейронов интрамуральных ганглиев поджелудочной железы морской свинки на нарушение их связей с ЦНС// Архив анат.,гист.,эмбр., 1986.-Т.91, №10.-С.11-15.
89. Ярыгин Н.Е., Шепелева Н.С. Отдаленные результаты при двусторонней ваготомии // Архив патол., 1957.-Т.19, № 7.-С.41-44.
90. Ярыгин Н.Е., Ярыгин В.Н. Патологические и приспособительные изменения нейрона. М., Медицина, 1973. 190 с.
91. Aberg G., Eranko O. Localization of noradrenaline and acetylcholinesterase in the taenia of the guinea-pig caecum // Acta Physiol. Scand. 1967.- V.69.- P. 383.
92. Adnot S., Raffestin В., Eddahibi S. NO in the lung // Respir.Physiol.-1995.1. V.101, № 2.-P.109-120.
93. Aigner F, Zbar A.P., Ludwikowski B., Kreczy A., Kovacs P., Fritsch H. The rectogenital septum: m orphology, function, and clinical relevance // Dis Colon Rectum. 2004, Feb. - 47(2).-P.131-40.
94. Akoev G.N., Chalisova N.I. Role of neurotrophic factors in adaptational processes of the nervous system // Neurosci. Behav. Physiol.-1997.-V.27, №3.-P.207-211.
95. Aim P., Ekstrom J. Outgrowth of cholinergic nerves in the rat urinary bladder either partially denervated or partially denervated and decentralized // Acta Physiol. Scand.-1981 .-V. 112, №2.-P. 179-183.
96. Andrews T.J., Thrasivoulou C., Nesbit W., Cowen T. Target-specific differences in the dendritic morphology and neuropeptide content of neurons in the rat SCG during development and aging // J. Comp. Neurol.-1996.-V.368(1), №22.-P.33-44.
97. Arbuckle J.B., Docherty R.J. Expression of tetrodotoxin-resistant sodium channels in capsaicin-sensitive dorsal root ganglion neurons of adult rats // Neurosci. Lett. 1995. - 185 (1).- P. 70-73.
98. Auberson S., Lundberg J.M. Lactic acid-induced plasma protein extravasation in rat airways by stimulation of sensory nerves and NK1 receptor activation // Pharmacol .Toxicol. 1993 - 73(6). - P. 305-310.
99. Bakal R.S., Wright L.L. Postnatal neuron death in the nodose ganglia of the rat // Dev. Neurosci.-1993.-V. 15, №1.- P.22-26.
100. Baltazar E.T., Kitamura N., Hondo E., Yamada J., Maala C.P., Simborio L.T. Immunohistochemical study of endocrine cells in the gastrointestinal tract of the Philippine carabao (Bubalus bubalis) // Anat. Histol. Embryol.-1998.-V.27, №6.-P.407-411.
101. Barbiers M., Timmermans J.P., Scheuermann D.W., Adriaensen D., Mayer B., De Groodt-Lasseel M.H. -1993
102. Boyd I.D. Intermediate sympathetic ganglia // Brit. Med. Bull.-1957.-V.13.-P.207.
103. Brzozowski Т., Kontirek S.J., Pytko-Polonczyk J., Warzecha Z. Gastric adaptation to stress: role of sensory nerves, salivary glands and adrenal glands // Scand. J. Gastroenterol., 1995. 30 (1). - P. 6-16.
104. Burnstock I. 1986. / Цит.: Гнетов A.B., Ноздрачев А.Д., Степанова Т.П. Механизмы регуляции активности продольного слоя гладких мышц кишки мальмы // Физиол. журн. им.И.М.Сеченова. 1991. - Т.77. - № 8. - С. 122129.
105. Carlstedt A., Fasth S., Hulten L., Nordgren S. The sympathetic innervation of the internal anal sphincter and rectum in the cat. // Acta Physiol Scand. -.1988,Jul. 133(3). -P 423-31.
106. Chard P.S., Bleakman D. Capsaicin-induced neurotoxicity in cultured dorsal root ganglion neurons: involvement of calcium-activated proteases // Neuroscience. 1995.-65 (4).-P. 1099-1108.
107. Collier В., Iohnson G., Quik M., Welner S. Effect of chemical destruction of mechanisms in adult rat sympathetic ganglia // Brit. J. Pharmacol. 1984. - Vol. 82,N4.-P. 639-646.
108. Costa M., Furness J.B. The origins of the adrenergic fibres which innervate the internal anal sphincter, the rectum, and other tissues of the pelvic region inthe guinea-pig.// Z Anat Entwicklungsgesch. 1973,Jul 25. - 140(2). - P. 12942.
109. Cracco C., Filogamo G. Quantitative study of the NADPH-diaphorase-positive myenteric neurons of the rat ileum // Neuroscience.-1994.-V.61, №2.-P. 351-359.
110. Crowe R., Burnstock G., Light J.K. Intramural ganglia in the human urethra // J. Urol.-1988.-V.140, №1.-P. 183-187.
111. Dang K., Bielefeldt K., Gebhart G.F. Differential responses of bladder lumbosacral and thoracolumbar dorsal root ganglion neurons to purinergic agonists, protons, and capsaicin // J Neurosci. 2005, Apr 13. - 25(15). - P.3973-84.
112. Dixon J.S., Jen P.Y., Gosling J.A. A double-label immuno-histochemical study of intramural ganglia from the human male urinary bladder neck // J. Anat.-1997.-V.90, №Pt 1.-P.125-134.
113. Domoto T., Gonda T., Oki M., Yanaihara N. Coexistence of substance P-and methionine5-enkephalin-like immunoreactivity in nerve cells of the myenteric ganglia in the cat ileum // Neurosci. Lett.-1984.-V.l, №47(1).-P.9-13.
114. Echteler S.M., Nofsinger Y.C. Development of ganglion cell topography in the postnatal cochlea//J.Comp.Neurol.-2000.-V.25, №425 (3).-P.436-446.
115. Ekblad E., Ekelund M., Grafftier H., Hakanson R., Sundler F. Peptide-containing nerve fibers in the stomach wall of rat and mouse // Gastroenterology.-1985.-V.89, №l.-P.73-85.
116. Ekblad E., Ekman R., Hakanson R., Sundler F. Projections of peptide-containing neurons in rat colon // Neuroscience.-1988.-V.27, №2.-P.655-674.
117. Ekblad E., Mei Q., Sundler F. Innervation of the gastric mucosa // Microsc. Res. Tech.-2000.-V.l, №48(5).-P.241-257.
118. Ekblad E., Winther C., Ekman R., Hakanson R., Sundler F. Projections of peptide-containing neurons in rat small intestine // Neuroscience.-1987.-V.20, №1.-P.169-188.
119. Eranko O., Eranko L. Histochemical evidence of chemical sympathectomy by guanethidine in newborn rats // Ibid.-1971.-V.3, №6.-P. 451-456.
120. Evans B.K., Burnstock G. Chronic guanethidine treatment of female rats including effects on the femus // J. Reprod. and Fert. 1979. - V. 56, N 2. - P. 715724.
121. Fang S., Christensen J. Distribution of NADPH diaphorase in intramural plexuses of cat and opossum esophagus // J. Auton. Nerv. Syst.-1994.-V.46, №1-2.-P.123-133.
122. Furness J.B., Costa M., Gibbins I.L., Llewellyn-Smith I.J., Oliver J.R. Neu-rochemically similar myenteric and submucous neurons directly traced to the mucosa of the small intestine // Cell Tissue Res.-1985.-V.241,№l. P.155-163.
123. Furness, J. B., Costa M. The Enteric Nervous SystemNew York // Churchill Livingstone. 1987. - P.306
124. Ganchrow J.R., Seltzer Z. The effect of neonatal treatment on gustatory behavior in the albino rat // Physiol. Behav., 1992 52 (6). - P.1037-1042.
125. Garrett J.R., Howard E.R. Myenteric plexus of the hind-gut: developmental abnormalities in humans and experimental studies. // Ciba Found Symp. 1981. -83. - P.326-54
126. Geirsson G., Fall M., Sullivan L. Clinical and urodynamic effects of intravesical capsaicin treatment in patients with chronic traumatic spinal detrusor hyperreflexia // J. Urol., 1995.-154 (5). P. 1825-1829.
127. Gillespie J.S., Maxwell J.D., Adrenergic innervation of sphincteric and non-sphincteric smooth musclein the rat intestine. // J Histochem Cytochem.1971,Nov. 19(11).-P.676-81.
128. Goldstein R. S. Axial level-dependent differences in size of avian dorsal root ganglia are present from gangliogenesis // J. Neurobiol.-1993.-V.24, №8.-P.l 121-1129.
129. Gonda T., Oki M., Distribution of cholinergic and catecholaminergic nerves in the colon of the rat with aganglionosis // Jikken Dobutsu. 1991,Oct. - 40(4). - P.471-84.
130. Gonella J. The physiological role of peripheral serotoninergic neurones. A review//J. Physiol. (Paris)-1981.-V.77, №2-3.-P.515-519.
131. Grunditz T., Ekman R., Hakanson R., Sundler F., Uddman R. Neuropeptide Y and vasoactive intestinal peptide coexist in rat thyroid nerve fibers emanating from the thyroid ganglion // Regul. Pept.-1988.-V.23, №2.-P. 193-208.
132. Guarini S., Bazzani C., Tagliavini S., Bertolini A., Ferrari W. Capsaicin prevents the adrenocorticotropin-induced improvement of cardiovascular function and survival in hemorrhage-shocked rats // Neurosci. Lett., 1992. 143 (1-2). -P. 181-184.
133. Hirose R., Nada O., Kawana T., Suita S. The intramural pelvic nerves im-munoreactive for calcitonin gene-peptide in the rectum of normal and aganglionosis rat // Anat. Embryol. (Berl).-1993.-V.187, №l.-P.37-44.
134. Hiura A., Ishizuka H., Sakamoto Y. Electron microscopic study of the effect of capsaicin on the mouse chorda tympani nerves // Arch.Oral.Biol.-1990.-V.35, №11.-P.913-916.
135. Hope B.T., Michael G.J., Knigge K.M., Vincent S.R. Neuronal NADPH diaphorase is a nitric oxide synthase. Neurobiology, 1991, v. 88, p. 2811-2814.
136. Jobling P., Gibbins I.L., Morris J.L., Functional organization of vasodilator neurons in pelvic ganglia of female guinea pigs: comparison with uterine motor neurons. // J Comp Neurol. 2003,May 5. - 459(3). - P.223-41
137. Johnson I.E., Manning P.T. Guanethidine-induced destruction of sympathetic neurons // Intern.Rev.Neurobiol.-1984.-V.25.-P.l-37.
138. Juul P., Melsaac R.L. The effect of guanethidine on the noradrenaline content of the adult rat superior cervical ganglion // Acta pharmacol.et toxicol.-1973.- V. 32.- N 5.-P. 382-389.
139. Kato A.C., Vrachliotis A., Fulpins B., Duant Y. Molecular forms of acetylcholinesterase in chick muscle and ciliary ganglion embryonic tissues and cultured cells // Develop.Biol., 1980. Vol. 76. - P. 222-228.
140. Keast J.R. Plasticity of pelvic autonomic ganglia and urogenital innervation. // Int Rev Cytol. 2006. - 248. - P. 141-208.
141. Keef K.D., Murray D.C., Sanders K.M., Smith T.K. Basal release of nitric oxide induces an oscillatory motor pattern in canine colon. // J. Physiol. (Lond). -1997. -V. 499. -P. 773-786.
142. Keller H. The development of the intramural nerve plexus of the gastrointestinal tract // Anat.Embryol.(Berl).-1976.-V.22, №150(l).-P.l-6.
143. Krantis, A., I. Glasgow, A. E. McKay, K. Mattar, F. Johnson. A method for simultaneous recording and assessment of gut contractions and relaxations in vivo // Can. J. Physiol. Pharmacol.-1996.-V. 74.-P. 894-903.
144. Kyosola K., Veijola L., Rechardt L. Cholinergic innervation of the gastric wall of the cat // Histochemistry.-1975.-V. 16, №44 (l).-P.23-30.
145. Kyosola K., Veijola L., Rechardt L. Immunohistochemical demonstration of choline acetyltransferase of a peripheral type (pChAT) in the enteric nervous system of rats // Acta Biol.Med.Ger.-1980.-V.39, №6.-P.687-696.
146. Lapsha V.I., Bocharova V.N. Microfluorimetric study of adrenergic structures in nerve plexuses of the pelvic cavity of the normal and decentralized cat. // Neirofiziologiia. 1986. - 18(4). -P.496-502.
147. Lerman S.H., Jacobowitz D.M., Mason G.R., Garber H.I., Ormsbee H.S. 3d. Gastric and pyloric motor response to sympathetic nerve stimulation after chemical sympathectomy // J.Auton.Nerv.Syst.-1981.-V.4, №3.-P.207-215.
148. Lolova I, Davidoff M, Itzev D, Apostolov A.Histochemical, immunocyto-chemical and ultrastructural data on the innervation of the smooth muscle of the large intestine in Hirschsprung's disease. // Acta Physiol Pharmacol Bulg. 1986. -12(2). -P.55-62
149. Luckensmeyer G.B., Keast J.R. Activation of alpha- and beta-adrenoceptors by sympathetic nerve stimulation in the large intestine of the rat. // J Physiol. -1998, Jul 15. 510 ( Pt 2). - P.549-61.
150. Luckensmeyer G.B., Keast J.R. Characterisation of the adventitial rectal ganglia in the male rat by their immunohistochemical features and projections. // J Comp Neurol. 1998,Jul 13. - 396(4). - P.429-41.
151. Luo M.H., Li S.W., Zheng X.M., Hu L.Q., Luo Y., Zheng H. Impacts of denervation on the morphology and expression of neuronal nitric oxide synthase of prostate of adolescent rats // Zhonghua Nan Ke Xue. 2006,Feb. - 12(2). -P/112-4,119.
152. Lychkova A.E. Gradients of serotoninergic innervation of the large intestine // Bull Exp Biol Med. 2005,May. - 139(5). - P.550-3.
153. Manzini S., Maggi C.A., Meli A. Pharmocological evidence that at least two different non-adrenergic non-cholinergic inhibitory systems are present in the rat small intestine. // Eur. J. Pharmacol. 1986. -V. 123. -P.229-236.
154. Matharu M.S., Hollingsworth M. Purinoceptors mediating relaxation and spasm in the rat gastric fundus. // Br. J. Pharmacol. -1992-V.106. -P.395-403.
155. Mercier-Parot L., Tuchmann-Duplessis H. Abortifactent and teratogenic effect of suramin, a trypanocide. // Comptes Rendus des Seances de la Societe de
156. Biologie et de Ses Filiates. 1973. - 167. - P. 1518-1522.
157. Nagy I., Pabla R. Cobalt uptake enables identification of capsaicin- and bra-dykinin-sensitive subpopulations of rat dorsal root ganglion cells in vitro // Neu-roscience.-1993 .-V.56, №1 .-P.241 -246.
158. Nakajima K., Tooyama I., Yasuhara O., Aimi Y., Kimura H. Immunohisto-chemical demonstration of choline acetyl transferase of a peripheral type (pChAT) in the enteric nervous system of rats. // J Chem Neuroanat. 2000,Feb. - 18(1-2). -P.31-40
159. Nakanishi Y, Tooyama I, Yasuhara O, Aimi Y, Kitajima K, Kimura H Im-munohistochemical localization of choline acetyltransferase of a peripheral type in the rat larynx // J. Chem. Neuroanat. 1999 - 17 (l).-21-32.
160. Nelson D.K., Service J.E., Studelska D.R., Brimijoin S., Go V.L. Gastrointestinal neuropeptide concentrations following guanethidine sympathectomy // J.Auton.Nerv.Syst.-l988.-V.22, №3.-P.203-210.
161. Nichols K., Staines W., Wu J.-Y., Krantis A. Immunopositive GABAergic neural sites display nitric oxide synthase-related NADPH diaphorase activity in the human colon. // J. Auton. Nerv. Syst. 1995. - V.50. - P.253-262.
162. Nielsen G.D. Guanethidine induced sympathectomy in the adult rat. I. Functional e ffects following s ubacute administration // Acta p harmacol. ettoxicol.-1977.-V.41,N3.-P 203-208.
163. Orloff L.A., Orloff M.S., Bunnett N.W., Walsh J.H. Dopamine and norepinephrine in the alimentary tract changes after chemical sympathectomy and surgical vagotomy // Life Sci.-1985.-V.29, №36 (17).-P.1625-1631.
164. Ouyang A., Zimmerman K., Wong K.L., Sharp D., Reynolds J.C. Effect ofceliac ganglionectomy on tachykinin innervation, receptor distribution and intestinal responses in the rat // J.Auton.Nerv.Syst.-1996.-V.14, №61 (3).-P.292-300.
165. Patterson J.T., Chung K., Coggeshall R.E. Further evidence for the existence of the long ascending unmyelinated primary afferent fibers within the dorsal funiculus: effects of capsaicin // Pain, 1992.- 49 (l).-P. 117-120.
166. Phillips R.J., Kieffer E.J., Powley T.L. Aging of the myenteric plexus: neuronal loss is specific to cholinergic neurons. // Auton Neurosci. 2003 Jul 31. -106(2).-P.69-83.
167. Sanders KM, Ordog T, Koh SD, Torihashi S, Ward SM.Development and plasticity of interstitial cell of Cajal // Neurogastroenterol Motil.-1999.-V. 1 l.-P. 311-338.
168. Santicioli P., Del-Bianco E., Geppetti P., Maggy C.A. Release of calcitonin gene-related peptide-like immunoreactivity from rat isolated soleus muscle by low PH, capsaicin and potassium // Neurosci. Lett.- 1992.- 143 (1-2).- P. 19-22.
169. Simonsen U., Triguero D., Garcia-Sacristan A., Prieto D. Cholinergic modulation of non-adrenergic, non-cholinergic relaxation in isolated, small coronary arteries from lambs // Pflugers.Arch.-1999.-V.438, №2.-P.177-186.
170. Smith D.C. Sinaptic sites in sympathetic and vagal cardioaccelerator nerves of the dog // AmerJ.Physiol.-1970.-Vol.218, №6.-P.16.
171. Timmermans J.P., Barbiers M., Scheuermann D.W., Bogers J.J., Adriaensen
172. D., Fekete E., Mayer B., Van Marck E.A., De Groodt-Lasseel M.H. Nitric oxide synthase immunoreactivity in the enteric nervous system of the developing human digestive tract. // Cell Tissue Res. 1994, Feb. - 275(2). - P.235-45.
173. Uno H., Arakawa T., Fukuda T., Higuchi K., Kobayashi K. Involvement of capsaicin-sensitive sensory nerves in gastric adaptive relaxation in isolated guinea-pig stomachs // Digestion.-1997.-V.58, №3.-P.232-239.
174. Vizzard M.A., Erdman S.L., de Groat W.C. Localization of NADPH diaphorase in bladder afferent and postganglionic efferent neurons of the rat // J.Auton.Nerv.Syst.-1993.-V.44,№l.-P.85-90.
175. Wakade A.R. Recent developments in degeneration of the sympathetic neuron// Gen.Pharmacol.-1979.-Vol. 10, №5.-P.351-357.
176. Wester T., O'Briain S., Puri P. Morphometric aspects of the submucous plexus in whole-mount preparations of normal human distal colon // J.Pediatr.Surg.-1998.-V.33, №4.-P.619-622.
177. White C.B., Roberts A.M., Joshua I.G. Arteriolar dilation mediated by capsaicin and calcitonin gene-related peptide in rats // Am.J.Physiol., 1993, 265 (4 pt.2), p.1411-1415.
178. Yamada M. Observations on the morphology of the pelvic ganglion of the female rat (Nippon Sanka Fujinka Gakkai Zasshi. 1986 May;38(5):685-92).
179. Yoshida N., Tanaka C., Taniyama K., Kondo M. Cyclic adenosine 3!,5'-monophosphate levels in response to norepinephrine in rectum of postnatal rats. // Jpn J Pharmacol. 1979,Oct. - 29(5). - P.781-7.
180. Zhou Y., Tan C.K., Ling E.A. Distribution of NADPH-diaphorase and nitric oxide synthase-containing neurons in the intramural ganglia of guinea pig urinary bladder//J.Anat.-1997.-V.190, Pt. 1.-P.135-145.
181. Zoucas E., Nilsson C., Aim P., Ihse I. Selective microsurgical sympathetic denervation of the rat pancreas // Eur.Surg.Res.-1996.-V.28, №5.-P.367-373.