Автореферат и диссертация по медицине (14.00.22) на тему:Репаративная регенерация травмированного спинного мозга при использовании нейральных стволовых клеток (экспериментальное исследование)

ДИССЕРТАЦИЯ
Репаративная регенерация травмированного спинного мозга при использовании нейральных стволовых клеток (экспериментальное исследование) - диссертация, тема по медицине
АВТОРЕФЕРАТ
Репаративная регенерация травмированного спинного мозга при использовании нейральных стволовых клеток (экспериментальное исследование) - тема автореферата по медицине
Карпенко, Дмитрий Олегович Москва 2005 г.
Ученая степень
кандидата медицинских наук
ВАК РФ
14.00.22
 
 

Автореферат диссертации по медицине на тему Репаративная регенерация травмированного спинного мозга при использовании нейральных стволовых клеток (экспериментальное исследование)

На правах рукописи

КАРПЕНКО ДМИТРИЙ ОЛЕГОВИЧ

РЕПАРАТИВНАЯ РЕГЕНЕРАЦИЯ ТРАВМИРОВАННОГО СПИННОГО МОЗГА ПРИ ИСПОЛЬЗОВАНИИ НЕЙРАЛЬНЫХ СТВОЛОВЫХ КЛЕТОК

(экспериментальное исследование)

14.00.22 - травматология и ортопедия 14.00.36 - аллергология и иммунология

Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата медицинских наук

Москва - 2005

Работа выполнена в Государственном учреждении науки Центральном научно-исследовательском институте травматологии и ортопедии им. Н.Н.Приорова МЗ РФ

Научные руководители:

доктор медицинских наук, профессор

Степанов Георгий Агасиевич

доктор медицинских наук, профессор, член-корреспондент РАМН

Сухих Геннадий Тихонович

Официальные оппоненты:

доктор медицинских наук, профессор

доктор биологических наук, профессор

Шевелев Иван Николаевич Лосева Елена Владимировна

Ведущая организация:

Российский университет Дружбы Народов

Защита диссертации состоится «20» мая 2005 г. в 13.00л на заседании диссертационного совета К 208.112.01. в ГУН Центральном научно-исследовательском институте травматологии и ортопедии им. Н.Н.Приорова МЗ РФ по адресу 127299, .Москва, ул. Приорова д. 10

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке ЦИТО по адресу: г. Москва, ул. Приорова д. 10

Автореферат разослан « I Я 2005г.

Ученый секретарь диссертационного совета

Родионова С.С.

Актуальность работы

Восстановление функций травмированного спинного мозга — один из самых актуальных вопросов медицины и нейробиологии (Chen HY et all., 1997, Karacan I et all., 2000).

По данным зарубежной печати, на миллион жителей Земли в среднем приходится до 49 случаев травмы спинного мозга. В каждом таком случае больные остаются инвалидами на всю жизнь, что приносит страдания не только им, но и их родным и близким. Средства, затраченные на лечение и содержание одного такого больного в развитых странах Европы и Северной Америки составляют около 65 тыс. долл.

За рубежем существуют многочисленные национальные программы исследований проблемы травмы спинного мозга: Майамский Проект Лечения Паралича (США), Сотрудничество по Восстановительным Открытиям (Канада), лаборатории в Каролинском Институте (Швеция) и многие другие (Cheng H et all., 1996, Harper G.P. et all., 1996, Ramer MS et all., 2000). Координацией работы ученых всего мира занимается Международное Объединение Спинальных Исследований (International Spinal Research Trust),

Несмотря на существование различных методик хирургических операций на травмированном спинном мозге и их эффективного анестезиологического обеспечения, отдельные успехи в ведении и послеоперационной реабилитации спинальных больных, до сих пор отсутствует по настоящему эффективное воздействие на процессы восстановления структур поврежденного спинного мозга. Изучение механизмов повреждения спинного мозга и восстановления нервной ткани на молекулярном и клеточном уровне позволит найти наиболее адекватные способы вмешательства в этот процесс. Этими вопросами занимается нейробиология и смежные с ней разделы науки (Zlokovic BV, Apuzzo ML, 1997).

Травма спинного мозга отражается на функции всех органов и систем человека, что позволило применять термин «травматическая болезнь».

РО( . и \цио!1 \лы| \я I

ьиьлиотскл j

^С Петербург |

2oos рк ;

Основные работы в исследованиях ведутся по пути поиска оптимальных условий регенерации нервных клеток и восстановления функций нервной ткани (Amar АР,Levy ML , 1999, Nicholls J.C., 1982, Privat. A, 1995).

Главная проблема в сохранении функции поврежденного спинного мозга является предотвращение вторичного повреждения его структур (апоптоза) и восстановление нервной ткани. С 80-х годов прошлого века, когда Aguoyo доказал возможность роста травмированных отростков нервных клеток (Aguayo A.J. et all., 1982) многие ученые с разных позиций изучают условия достижения стабильного и необратимого роста поврежденных волокон ЦНС. Появились многочисленные публикации об использовании в качестве трансплантатов различных биологических и искусственных материалов для замещения поврежденных нервных клеток или для создания условий регенерации и репарации нервной ткани. Используется клеточный материал (шванновские, оболочечные обонятельные, эмбриональные клетки) и другие органические материалы (коллаген, карбониловые нити, матригель, полигликоевая кислота).

Ведущая роль в изучении механизмов травмы спинного мозга и его регенерации безусловно принадлежит экспериментальным методам исследования на лабораторных животных, постольку получение таких данных в клинике у человека крайне проблематично. Не представляется возможным изучение динамики повреждения и на секционном материале в случаях острой спинномозговой травмы в связи с быстротечностью этих процессов и необходимостью забора ткани спинного мозга в ближайшее время после смерти.

Для достоверной качественной и количественной оценки процессов повреждения и регенерации необходимо использовать современные методы иммуногистохимии. Методики обнаружения маркеров регенерации позволяют точно идентифицировать процессы повреждения и регенерации,

растущие волокна как в нервной ткани, так и в сложном глиально -соединительнотканном рубце в области травмы.

Возможная корреляция результатов исследования механизмов повреждения и регенерации спинного мозга на экспериментальных животных и клинических данных является первоочередной задачей, от решения которой зависит дальнейшая возможность лечения больных с травматической болезнью спинного мозга. Кроме того, выявление общих процессов повреждения ткани спинного мозга может привести к появлению новых методов лечения практически безнадежных в настоящее время сгагаальных больных (Rajiv R. Ratan et all., 2001, Savitz SI, Rosenbaum DM, 1998).

Нейральная трансплантация — многообещающий метод для лечения травматических повреждений спинного мозга, базирующийся на возможности замещения утраченных клеточных элементов и стимуляции компенсаторно-восстановительных процессов (Blesch A., Lu P., Tuszynski М.Н., 2002, Bunge М.В., 2001, Lokatos A., Franklin R.J., 2002, Schwab M.E., 2002). Фетальные стволовые клетки, происходящие из мозга, наиболее пригодны для трансплантации, так как они являются потенциальным источником всех типов клеток центральной нервной системы человека, включая нейроны, астроциты и олигодендроциты (Gage F.H., 2000, Poltavtseva R.A. et all., Rossi F., Cattaneo E., 2002). Эмбриональные нейральные стволовые клетки сохраняют и размножают в культуре ткани in vitro и затем используют для трансплантации с целью восстановления поврежденных функций головного и спинного мозга (Aleksandrova М.А. et all., Wu S., Suzuki Y. 2002).

В настоящей работе исследовали поведение и дифференцировку культивированных фетальных стволовых/прогениторных клеток мозга человека после их трансплантации в травмированный спинной мозг у лабораторных животных.

Цель исследования:

Цель настоящего исследования — экспериментальная разработка методики введения нейральных стволовых клеток (НСК) человека, изучение их развития и дифференцировки в спинном мозге при травме различной степени тяжести у взрослых крыс и анализ влияния НСК на посттравматические процессы.

Задачи исследования:

Для достижения цели исследования предполагалось решить следующие задачи:

1. Стандартизировать методику экспериментальной травмы спинного мозга.

2. Разработать методику введения культуры НСК в качестве биологических трансплантатов.

3. Изучить восстановление неврологических функций у животных после использования НСК в спинном мозге.

4. Провести морфологическое исследование спинного мозга при введении НСК в различные сроки после операции (до 9 месяцев).

Экспериментальную работу проводили на базе отдела экспериментальной травматологии и ортопедии [руководитель — д.м.н., Шальнев А.Н.] Государственного учреждения науки Центрального научно-исследовательского института травматологии и ортопедии им. Н.Н.Приорова [директор — академик РАН и РАМН, профессор Миронов С.П.].

Культивирование нейральных стволовых клеток проводили в отделе клинической иммунологии [руководитель — член-корреспондент РАМН, профессор Сухих Г.Т.] Научного центра акушерства, гинекологии и перинатологии Российской академии медицинских наук [директор академик РАМН, профессор Кулаков В.И. ]

Морфологические исследования проводили в лаборатории экспериментальной нейробиологии [руководитель — д.б.н., Александрова М.А.] Института биологии развития им. Н.К.Кольцова Российской академии наук [директор - д.б.н., профессор Озернюк Н.Д.]

Научная новизна

Впервые использованы нейральные стволовые клетки человека при исследовании экспериментальной травмы (ушиба) спинного мозга в опытах на животных.

Впервые разработана методика билатерального введения нейральных стволовых клеток в область повреждения спинного мозга в экспериментальных исследованиях с использованием стереотаксической установки и микрошприца (Hamilton), что позволяет вводить НСК в строго определенное место травмы спинного мозга и позволяет трансплантировать в зону повреждения строго определенное количество клеток. Экспериментально доказана малая травматичность прокола спинного мозга при введении клеток через микроиглу.

Морфологический анализ с применением имунногистохимических методов исследования показал жизнеспособность нейральных стволовых клеток, введенных в область травмы, в течении всего времени наблюдений, свойство клеток реципрокно мигрировать в область травмы спинного мозга, способность дифференцировки части клеток по нейрональному и глиальному типу.

Впервые в эксперименте получены данные, свидетельствующие о частичном восстановлении функции спинного мозга в результате использования НСК человека при травме спинного мозга.

Практическая ценность работы

Полученные в ходе работы результаты могут стать основой для дальнейшего совершенствования и разработки новых методик лечения

больных со спинномозговой травмой с использованием нейральных стволовых клеток.

Анализ результатов лечения травмы спинного мозга в эксперименте в раннем и позднем послеоперационном периоде, при максимальном сроке наблюдения до 199 суток позволил создать предпосылки для использования методики введения НСК и начала разработки показаний для применения методики при травмах спинного мозга в клинике.

Следствием применения стволовых клеток может стать возможность частичной компенсации осложнений и последствий повреждения спинного мозга. Результаты исследования показали, что в некоторых случаях возможно восстановление кожной чувствительности и улучшение двигательной активности животных. Все вышеперечисленное при разрешении использования нейральных стволовых клеток в клинике улучшит качество жизни больных со спинномозговыми травмами, и возможность самообслуживания.

Положения, выносимые на защиту

1. Нейральные стволовые клетки человека, введенные при острой экспериментальной травме спинного мозга, остаются жизнеспособными длительное время, тормозят глиальную реакцию, уменьшают возможность формирования глиального рубца, подавляют образование кист в месте травмы спинного мозга, тормозят процесс дегенерации нейронов. Часть НСК дифференцируется по нейрональному и глиальному типу.

2. Введение НСК снижает степень посттравматических осложнений у животных с травмой спинного мозга.

Апробация и реализация работы:

■ на научно-практической конференции «От современной фундаментальной биологии к новым наукоемким технологиям» 1114 ноября 2002г России, Москва.

М на конференции «Стволовые клетки и перспективы их использования в здравоохранению) 22-23 мая 2003 Россия, Москва

■ на симпозиуме Second Symposium on Therapeutic Applications of Human Stem and Precursor Cells. 6-8 ноября 2002г., Германия, Ганновер.

■ на международном междисциплинарном семинаре «Новые технологии в медицине и экологии, интегративная медицина» январь

' 2003 Словения, г Высокие Татры.

■ на 2-ом Московском международном Крнгрессе «Биотехнология: • состояние и перспективы развития» 10-14 ноября 2003 г. Россия,

Москва.

Публикации

По изучаемой проблеме опубликовано 8 печатных работ. Область внедрения

Полученные данные могут быть использованы для дальнейшей разработки методов хирургического лечения травматической болезни спинного мозга.

1

Объем и структура работы

Диссертационная работа изложена на 131 странице: из них 96 страниц собственно текст. Содержит 52 рисунка и 4 таблицы.

Состоит из введения, 5 глав, заключения, выводов и списка использованной литературы, содержащего 169 источников, из них 41 отечественный и 128 иностранных авторов.

Материалы и методы исследования

Работа является экспериментальным исследованием.Для ее проведения были использованы лабораторные крысы породы "Вистар" весом 200 - 260 г, возрастом до 1 года.

В ходе проведения работы было оперировано 102 животных, из которых 22 крысы были использованы для отработки методики ламинэктомии и техники ушиба спинного мозга. В эксперименте было использовано 80 животных.

Операции проводили в экспериментальной операционной, с использованием операционного микроскопа и микрохирургического инструментария.

Наркоз проводили внутрибрюпшнным введением 2,0 -3,0 мл 2% раствора калипсола в зависимости от веса и индивидуальной реакции животного, из расчета 50 мг/кг веса крысы.

В течение нескольких недель до формирования автоматизма мочевого пузыря 2 раза в сутки выполняли ручной массаж мочевого пузыря через брюшную стенку.

С целью профилактики инфекционных осложнений в течение недели после операции животным внутримышечно вводили ампиокс из расчета 50 мг/кг веса.

Оперативный доступ к спинному мозгу осуществляли линейным разрезом кожи в нижнегрудном отделе позвоночника. Выполняли ламинэктомию на уровне ТЬ8-Т119 позвоночника. Спинной мозг выделяли с помощью операционного микроскопа и микрохирургической техники.

В дальнейшем выполнялись те или иные манипуляции, в зависимости от цели серии экспериментов - производили ушиб спинного мозга без введения нейральных стволовых клеток, прокол спинного мозга без ушиба и введения НСК, ушиб спинного мозга с введением НСК. После тщательного

гемостаза, рану ушивали наглухо. Животное помещали в отдельную клетку для постоянного наблюдения.

В зависимости от задачи исследования проведены 3 серии экспериментов:

- ламинэктомия и ушиб спинного мозга без введения нейральных стволовых клеток (НСК) человека (44 животных);

- прокол ткани спинного мозга с введением физиологического раствора (6 животных);

- нанесение травмы спинного мозга различной степени тяжести с последующим введением НСК (30 животных).

Первая серия опытов проведена с целью отработки методики ушиба спинного мозга (СМ), подбора и стандартизации интенсивности травмы СМ. Кроме того, морфологическая картина препарированного СМ, клиническая картина поведения животных явились контролем для исследования процессов, происходящих в травмированном СМ до 166 суток с момента травмы.

Дозированный ушиб СМ производили при помощи устройства, состоящего из стеклянной трубки, устанавливаемой вертикально и тарированного груза.

Груз представлял собой металлический цилиндр с площадью сечения на 2 мм меньше диаметра трубки. Верхний конец груза фиксировался шелковой нитью, нижний представлял собой усеченный конус с площадью поверхности 0,3 см2. Стекло трубки позволяло свободно скользить металлическому грузу, сила трения при этом практически отсутствовала.

Интенсивность удара дозировали в зависимости от массы груза и высоты его падения.

После проведения оперативного доступа к СМ животного (ламиннэктомии) стеклянную трубка устанавливали строго перпендикулярно

к поверхности выделенного СМ. В этом положении на той или иной высоте устанавливали металлический груз конусообразным концом вниз. В момент отпускания шелковой нити груз начинал свободно падать по трубке под действием собственной силы тяжести и производил удар той или иной степени интенсивности.

Вторую серию экспериментов проводили с целью изучения влияния прокола СМ и введения объема жидкости (стерильного физраствора) в интактный СМ как дополнительного травмирующего фактора.

Эту серию опытов проводили с использованием стереотаксической установки, представляющую собой модернезированный штатив светового микроскопа с держателем для микрошприца фирмы Hamilton. Движения установочных винтов позволяли перемещать микрошприц в трехмерном пространстве и производить прокол наружних оболочек СМ с высокой степенью точности. Шприц Hamilton позволял набирать строго определенный объем жидкости с точностью до микролитров.

После проведения оперативного доступа к СМ над операционным полем устанавливали держатель стереотаксической установки с закрепленным в нем микрошприцом, в котором содержалось 3 мкл физраствора. Установочными винтами перпендикулярно к поверхности выделенного СМ подводили иглу микрогаприца. Производили прокол мягкой мозговой оболочки с введением жидкости в медуллярную ткань на глубину 2 мм.

Третью серию опытов проводили с целью изучения поведения нейральных стволовых клеток, введенных в травмированный спинной мозг животного и их влияние на развитие травматической болезни. На основе методов нанесения тарированного ушиба СМ и введения физиологического раствора в СМ была разработана и применена методика введения НСК в травмированный участок СМ. Вводимые нейральные стволовые клетки культивировались по оригинальной методике в отделе клинической

11

иммунологии Научного центра акушерства, гинекологии и перинатологии Российской академии медицинских наук.

После проведения оперативного доступа к СМ под контролем операционного микроскопа производили дозированный ушиб медуллярной ткани спинного мозга по описанной выше методике. Трансплантацию культивированных нейральных стволовых клеток проводили с использованием стереотаксической установки в которую закрепляли микрошприц (Hamilton). Клетки вводили билатерально на расстоянии 5 мм от эпицентра травмы на глубину 2 мм, в количестве 600000 кл в объеме 3 мкл.

В работе применялись клинический, гистологический и иммуногистохимический методы исследования.

Для динамического контроля восстановления двигательных функций задних конечностей животных ежедневно тестировали, начиная со 2-ой недели после операции, на стенде, представляющем собой металлическую решетку с размерами ячеек 8x14 см.. Способность оперированных животных переступать с одной перекладины на последующую говорила о той или иной степени восстановления двигательных и нейральных функций мышц задних конечностей. Способность же захватывать пальцами задних конечностей перекладину свидетельствовало о восстановлении тонкой моторики.

Ежедневно проводили мониторинг восстановления функций мочевыделения. Фиксировали степень наполнения мочевого пузыря, количество и цвет выделяемой мочи.

С целью морфологических исследований оперированных крыс на 1-е, 5-е, 15-е, 30-е, 60-е сутки после эксперимента и в более поздние сроки (до 166 суток) наркотизировали хлоралгидратом, и перфузировали транскардиально 4% параформом на фосфатном буфере. Спинной мозг извлекали и помещали в фиксатор на 24 часа, а затем в 30% сахарозу при +4 С. На криостате делали срезы 20-40 мкм толщиной и натягивали на стекла. По люминисцентному свечению клеток, окрашенных бисбензимидом,

отбирали срезы с трансплантированными клетками. Срезы окрашивали гематоксилин-эозином, суданом-3, крезилвиолетом, а также иммуногистохимическими методами с применением различных первичных антител.

После этого обрабатывали раствором биотинилированных вторичных антител и окрашивали раствором стрептавидина, меченого флуоресцентным красителем или авидин-биотин-пероксидазного комплекса с последующим проявлением пероксидазы диаминобензидином. При двойном иммуноцитохимическом окрашивании использовали вторичные антитела, меченые флюоресцентными красителями. Препараты просветляли 50 % раствором глицерина в фосфатном буфере и рассматривали срезы в свете люминисценции или при комбинированном освещении.

Результаты исследования и их обсуждение

В первой серии опытов с нанесением тарированного удара без введения НСК было прооперированно 44 белых крыс. Спинной мозг 34-х крыс был подвергнут воздействию удара с высоты 6 см, 10-ти животным удар производился с высоты 12,5 см.

Непосредственно после травмы в области нанесения ушиба наблюдался отек мозговой ткани, мелкие кровоизлияния под мягкой мозговой оболочкой, иногда тромбоз, разрыв задней спинальной артерии. В 5 случаях произошел разрыв мягкой мозговой оболочки с пролабированием медуллярной ткани.

Из 34 животных, перенесших травму средней степени тяжести, погибло 14 животных (41,17%) на 8-19 сутки от спинального шока, прогрессирующей инфекции мочевыводящих путей и прогрессирующего паралича. Из 10 животных с тяжелой степенью ушиба СМ погибло 5 животных (50%) из них 3 крысы - на 1-е, 2-е, 6-е сутки без позитивной динамики неврологического статуса. 2 погибли на 13-е и 17-е сутки со слабовыраженными рефлекторными движениями задних конечностей. Причина их гибели - прогрессирующий паралич.

25 выживших животных (20 с травмой средней тяжести и 5 с тяжелой травмой) были зафиксированы в лаборатории экспериментальной нейробиологии Института биологии развития РАН (ЛЭН ИБР РАН) на сроках наблюдения от 1 до 166 сут. В качестве контрольных животных были выбраны животные со стандартизированной травмой средней степени тяжести, наносимой грузом весом 10 г и высотой падения 6,5 см.

У 4-х животных, зафиксированных в 1-е сутки наблюдений, восстановления функций мочеиспускания и движений задних конечностей не произошло. Морфологические исследования показали следующее. У животных со времени фиксации 5-6 часов после эксперимента наблюдается сходная морфологическая картина травматического повреждения спинного мозга. Зона области повреждения размером 2-2,5 мм. Обширная зона кровоизлияний по всей поверхности среза на уровне дорзальных рогов спинного мозга и до уровня вентральной комиссуры. Есть участки механического повреждения ткани спинного мозга. Деградации миелиновых оболочек у поврежденных проводящих волокон не выявлено. Наблюдается инфильтрация лимфоцитов в областях повреждения и кровоизлияний. Глиальной реакции нет. В зоне повреждения нейроны не окрашиваются крезилвиолетом и здесь видна зона «пустоты» с отдельными кровеными клетками и глиальными элементами. В пограничных областях (проксимальном и дистальном) видны механически поврежденные нейроны, дегенерирующие нейроны и клетки тени. Далее от места повреждения располагаются гиперхромные и вакуолизированные крупные нейроны, а для интернейронов характерно слабо окрашенное бледное ядро, которое слабо контурируется в цитоплазме. В зоне практически нет нормальных нейронов, встречаются клетки в стадии гиперхромии, часть клеток имеет округлые контуры, что характерно для начальных стадий дегенерации отростков .

У 3-х животных со сроком наблюдения 5 суток на 3-е и 4-е сутки восстановились только рефлекторные движения задних конечностей. У 2-х (зафиксированных на 6 сутки) на 2-е сутки появлялись рефлекторные

движения в ответ на болевой раздражитель на одной из задних лап. У этих животных область повреждения спинного мозга составила от 5 до 8 мм. Выраженный некроз участков ткани в зоне механического повреждения. Начальная фаза формирования кист. Мелкие полости уже отчетливо выражены и часть из них сливаются в более крупные. По периферии травматической зоны начинается глиоз и идет развитие рубцов. В месте травмы окрашенных крезилвиолетом нейронов нет, только лимфоидные и астроцитарные клетки. Значительная часть моторных нейронов в различных стадиях дегенерации. Много дегенерировавших нейронов, сморщенные нейроны, клетки в состоянии хроматолиза, клетки тени. Формирование кист наблюдается и в областях кровоизлияний. Сильнейшая инвазия лимфоцитарных клеток.

У крысы со сроком наблюдения 15 суток частичное восстановление утраченных функций без дальнейшей динамики произошло на 3-е сутки Из двух крыс, зафиксированных на 16-е сутки, у одной из них функции мочеотделения частично вернулись к 5 суткам. У второй восстановления функций не произошло. На гистологических препаратах СМ тотальной деструкции ткани спинного мозга в области повреждения не наблюдается, хотя уже выявляются очаги деградации миелина. Видна область травмы с мелкими кистами и глиозом. Область повреждения СМ около 1,2 мм. В сером веществе, над областью вентральной комиссуры четко выражена зона глиоза. Обнаруживаются нервные клетки различных типов в различных стадиях патологических изменений. В другом случае видно повреждение ткани спинного мозга на протяжении 5 мм. В области повреждения идет формирование кист. Значительные зоны некроза. Отчетливая лимфоцитарная реакция, множество макрофагов в областях кровоизлияний. В областях поврежденных проводящих волокон наблюдается дегенерация, которая сопровождается деструкцией миелина с образованием жировых капель. В этих же зонах идет формирование глиального рубца. Сохраняется множество лимфоцитов и глиальных клеток в области травмы. Нейроны

вокруг зоны повреждения в разных фазах патологических изменений. Наиболее характерные изменения выражаются в хроматолизе или гиперхромии.

У животного со сроком наблюдения 31 сутки полное восстановление функции левой задней конечности произошло к 25 суткам, восстановление мочеиспускания - к 10 суткам, что связано с автоматизмом мочеотделения. Функция задней правой конечности не восстановилась.

У 8-и крыс с большими сроками наблюдений (138—166 суток) полного восстановления двигательных функций задних конечностей и мочеиспускания не произошло. У этих животных травма мозга распространяется до 8 мм. Обширная зона некротической ткани, четко выражен глиальный рубец. Множественные кисты. Вокруг травмы области с макрофагами, что свидетельствует о незаконченном воспалительном процессе. Нейроны в проксимальном и дистальных отделах в состоянии дегенерации.

Определенный интерес вызывает картина повреждения при тяжелой степени травмы (вес 10 г, высота 12,5 см). Уже в первые сутки на гистологическом препарате наблюдается область травматического повреждения размером 5-6 мм. Механическое повреждение волокон и клеток выражено значительно больше, чем при травме средней тяжести. В зоне повреждения много очагов обильного кровоизлияния в области ткани мозга и под твердой мозговой оболочкой. Сильная инвазия лимфоцитов по всей области травмы. Наблюдается выраженный отек мозговой ткани. В дистальном и проксимальном отделах двигательные нейроны веретеновидные, сплюснутые, гиперхромные с нечеткими контурами ядер. Отдельные интернейроны в состоянии дегенерации (сморщенные ядра, вакуолизированная цитоплазма), встречаются клетки тени. В крупных нейронах по периферии области травмы встречаются пикнотические ядра.

Во второй серии контрольных опытов с проколом спинного мозга и

введением физиологического раствора без нанесения травмы и без введения НСК было оперировано 6 животных. У всех животных произошло полное восстановление утраченных функций уже на 3-5 сутки наблюдений.

Гистологический анализ выявил, что в спинном мозге всех животных практически не определяется область введения физиологического раствора. Не было отмечено глиальной реакции и развития кист. Ткань спинного мозга выглядит нормально. У двух животных выявлена незначительная лимфоцитарная реакция, в областях повреждения кровеносных сосудов.

В третьей серии с нанесением стандартизированного тарированного удара средней степени тяжести и с введением НСК было оперировано 30 крыс.

8 крыс (26,6% от общего числа животных с НСК) погибли в различные сроки после операции. Из них 1 погибла от передозировки наркоза на 1-е сутки, 4 - без признаков восстановления функций на 3-е, 9-е и 13-е сутки после операции от прогрессирующего паралича. У 3-х животных со сроками наблюдения 10-11 суток на 3-4-е сутки появились рефлекторные движения задних конечностей в ответ на раздражение.

Выжило 22 крысы с НСК, которые были зафиксированы в ЛЭН ИБР РАН для морфологического анализа.

У 2-х со сроками наблюдений 5 и 6 суток восстановления не произошло. У 1 животного со сроком наблюдения 5 суток к 3 суткам появились только слабые рефлекторные движения в правой задней конечности.

В этих случаях на препаратах спинного мозга были выявлены значительные участки повреждения ткани и обширные зоны кровоизлияния. Иногда наблюдался полный перерыв волокон, среди которых располагались геморрагические очаги. Во всех случаях по краям области механического повреждения ткани наблюдались очаги новообразования сосудов. Трансплантированные клетки, выявленные окраской Hoechst и антителами к

ядрам человека, располагались во всех структурах, расположенных по ходу прохождения инъекционной иглы. Плотность распределения трансплантированных клеток уменьшалась с удалением от места инъекции. Клетки мигрировали среди волоконных путей в дистальном и проксимальном направлениях, вдоль сосудов, частично располагались в клеточных зонах и в области повреждения среди клеток крови. Иммуногистохимическая окраска с использованием антител к Human Nestin показала, что среди трансплантированных клеток сохраняются истинно стволовые клетки. Нестин- позитивные клетки располагались единично или группами по краям области повреждения и имели длинные отростки.

Из 2-х животных со сроком наблюдения 15 суток у одного появились рефлекторные движения в правой и левой задних конечностях к 10-м и 8-м суткам соответственно. У второго - полное восстановление утраченных функций к 3 суткам наблюдения.

На препаратах СМ окраска антителами на Human Nuclei показала группы и единично расположенные клетки трансплантатов. Окраска антителами к Human Nestin выявила среди трансплантированных клеток стволовые клетки. Часто наблюдалась картина группирования нестин-позитивных стволовых клеток с длинными отростками вокруг сосудов. Часть нестин- позитивных клеток мигрировала от места введения по ткани мозга реципиента. Глиальная реакция была незначительной и не наблюдалось формирования кист.

У 2-х животных со сроками 30 суток полное восстановление наступило на 10-е и 15-е сутки. У 2-х крыс со сроками наблюдений 33 суток полное восстановление функций произошло к 8-м и 20-м суткам.

Гистологический анализ препаратов окрашенных крезилвиолетом показал, что в этих случаях зона повреждения была от 3-4 мм до 6-7 мм. Во всех случаях не наблюдалась отечность ткани и формирование кист. В зоне травмы отсутствовали нейроны и была выражена глиальная реакция, однако не было обнаружено очагов формирования глиальных рубцов. В зонах

повреждения располагалось большое число мелких новообразованных сосудов. В дистальных и проксимальных отделах нейроны (двигательные, интернейроны) имели нормальную морфологическую структуру. На всех препаратах спинного мозга реципиентов были выявлены трансплантированные культивированные клетки, окрашенные Hoechst. Двойная иммуногистохимическая окраска антителами на Human Nuclei и нестин показала, что вокруг области травмы располагались трансплантированные клетки. При окраске антителами к GFAP или антителами к Vimentin было показано, что часть пересаженных клеток дифференцировались по глиальному типу. Значительное число имплантированных клеток сохранялось в недифференцированной форме, что было показано с использованием антител к Human Nestin. Скопления стволовых клеток располагались около сосудов и практически не обнаруживали миграции в окружающую ткань, что было четко выражено в случае, где повреждение было слабым.

Из 9-ти крыс со сроками наблюдения 60 дней полное восстановление всех функций произошло лишь у 2-х животных - на 9-е и 17-е сутки. У 2-х животных частичное восстановление движений задних конечностей без восстановления мочеиспускания наступило к 6-м и 7-м суткам наблюдения. У остальных 5 крыс наблюдалось восстановление функции мочевыделения и неполное восстановление функций задних конечностей в различной степени в сроки от 8 до 20 суток .

Иммуногистохимические исследования с антителами на ядра клеток человека показали, что клетки трансплантатов располагались единично и группами. Клетки мигрировали среди волоконных путей в дистальном и проксимальном направлениях, вдоль сосудов канала спинного мозга, частично распределялись в клеточных зонах и в области повреждения среди клеток крови. В некротических очагах многие трансплантированные клетки дегенерировали. Окраска антителами к нестину человека показала, что среди трансплантированных клеток сохранялись стволовые клетки. Отдельные

нестин- позитивные клетки широко мигрировали от места введения по ткани мозга реципиента, другие группировались вокруг сосудов. Часть трансплантированных клеток начинала дифференцировку, о чем можно было судить по экспрессии виментина и глиального белка. Во всех случаях при трансплантации культивированных стволовых клеток в области травмы наблюдалась активная реваскуляризация и не происходило формирования кист.

Из 2-х животных со сроками наблюдений 105 суток у одной произошло полное восстановление утраченных функций ко 2-м суткам. Поведенческий контроль: активна на лесенке, опирается на обе ноги и нормально держится пальчиками. Область травмы составила 1,5-2 мм, повреждены волокна с левой стороны спинного мозга. Небольшая зона глиоза, без глиального рубца. Кист в области травмы нет. Трансплантированные клетки определяются в обоих местах введения -проксимально и дистально к области травмы. В области введения много трансплантированных клеток окрашенных Human Nuclei, где не формируется глиальный рубец.

У второй крысы самостоятельное мочеиспускание восстановилось на 10-е, а неполная опора левой задней лапы - на 15-е сутки. Отмечается горб на спине, что связано, очевидно с нестабильностью позвоночного столба. Поведенческий контроль: на лесенке - правая задняя лапка практически не работает, левая атоничная, но пальчиками прихватывает, быстро утомляется. На веревке и на палочке не держится правой ногой, только левой задней. При морфологическом исследовании область травмы 11,5 мм. С правой стороны полной перерыв волоконного пути, почти на весь поперечник спинного мозга. Значительные расширения спино- мозгового канала в области травмы. Трансплантированные клетки определяются с обеих сторон травмы. Часть клеток дифференцируется по нейронному типу, что определено антителами к III-beta-tubulin. В области травмы значительный глиоз и достаточно плотный слой глиальных волокон. Часть глиальных клеток происходят из

трансплантированных клеток, что показано двойной меткой на GFAP и Hoechst.

У крысы со сроком наблюдения 114 суток восстановление опорности правой задней конечности происходило в сроки от 6-х до 10-х суток, левой задней - от 10-х до 15-х суток, самостоятельное мочеиспускание восстановилось к 15 суткам. Поведенческий контроль: на лесенке тащит левую заднюю лапу, не опирается. Пальчиками не работает на обеих ногах. При положении вниз не держится ногами. В этом случае произошло нарушение техники введения НСК, клетки были введены только в проксимальный отдел травмированного участка СМ.

У животного со сроком наблюдения 119 суток восстановление опорности правой задней конечности происходило в сроки от 2-х до 3-х суток, левой задней - от 2-х до 8-х суток, самостоятельное мочеиспускание восстановилось к 8 суткам. Поведенческий контроль: На лесенке хорошо опирается на лапы и держится всеми пальчиками. Морфологический анализ показал, что область повреждения 5 мм, у поверхностных слоев перерыв волокон на левой стороне спинного мозга. В области травмы умеренная глиальная реакция без образования грубого рубца. Нервные клетки по сторонам от травмы морфологически нормальные. Кист в области травмы практически нет (отдельные мелкие). Трансплантированные клетки обнаружены в обоих местах введения. По люминисцентному свечению видна миграция клеток от области введения. Антитела к Human Nuclei выявили в области введения клетки, экспрессирующие этот белок. Клетки с экспрессией нестина не обнаружены.

При анализе исходов экспериментальных операций учитывалась выживаемость животных, длительность восстановления или появление функций мочевыводящей системы и движений задних конечностей, наличие осложнений и связанная с ними гибель животных. Ведущим критерием

наших исследований служила морфологическая картина травмированного спинного мозга, изменяющаяся под воздействием вводимых НСК.

В первые несколько суток у животных без введения и с введением НСК сходны. Везде наблюдается картина катастрофической травмы с участками механического повреждения ткани спинного мозга, зон кровоизлияния, инфильтрации лимфоцитов в областях повреждения, поврежденные, раздробленные и дегенерирующие нейроны и клетки ткани, а также признаки начальных стадий дегенерации аксонов. Однако, начиная с 5 суток, морфологическая картина начинает отличаться.

Уже на 5-е сутки в СМ без НСК появляется выраженный некроз медулярной ткани, начинается формирование мелких кист, часть из которых уже сливается в более крупные. Наблюдается обильная инвазия лимфоцитарных клеток. По периферии травмированного участка начинается формироваться вал глиальных клеток. Продолжается дегенерация моторных нейронов. В отличии от них с НСК по краям области некроза наблюдались очаги новообразования сосудов.

К 15-м суткам у животных без НСК начинают выявляться очаги деградации, сопровождающейся деструкцией миелина и образованием жировых капель миелина, мелкие кисты все более сливаются в более крупные. В очаге травмы нейроны в различных фазах патологических изменений. Зона глиоза становится более четко выраженной. Зона некроза расширяется. Лимфоцитарная реакция более выражена. У животных с НСК глиальная реакция незначительная, кисты не формируются. Наблюдалась группирование введенных стволовых клеток с длинными отростками вокруг сосудов СМ. К 30-м суткам отечности и кист не наблюдалось. Глиальная реакция выраженная, но рубца не образовывалось. Наблюдалось большое число мелких новообразованных сосудов, не происходило дальнейшей дегенерации нейронов. Часть пересаженных клеток начинала дифференцироваться по нейрональному и глиальному типу. В случаях со

слабым ударом стволовые клетки концентрировались вокруг сосудов. НСК мигрировали вдоль сосудов и волоконных трактов.

К 166 суткам без НСК функции задних конечностей не восстановились. Волоконный путь в месте травмы полностью прерван глиальным рубцом. В случае с более сильной травмой к 167-м суткам функции мочевыделения и задних конечностей не восстановились, что связано с формированием грубого соединительно-тканного глиального рубца. В другом случае, на 162 сутки восстановились лишь рефлекторные движения задних конечностей. В <

обоих случаях наблюдались обширная зона некроза, четко выраженный глиальный рубец, множество кист, незавершенный воспалительный процесс. - .

У животных с НСК на поздних сроках наблюдения более 100 суток наблюдалось значительное восстановление функций задних конечностей и полное восстановление мочеиспускания. Зона глиоза без формирования рубца. Кисты в области травм не обнаруживались или обнаруживались единичные, малых размеров. НСК дифференцировались в нейроны и глию. В одном случае, где клетки были введены только в одном месте, наблюдалось образование кисты. В другом из-за нестабильности позвоночного столба, нарушилась его фронтальная ось, клетки не дошли до места травмы и сформировался глиальный рубец.

Укол в СМ с введением физиологического раствора показал, что он не является заметной травмой для СМ. Функции СМ восстанавливаются в с!

течении до 5 суток. Факт прокола СМ не влияет на динамику клинической картины течения травматической болезни. Гистологическая картина при ^

уколе характеризовалась лишь умеренной лимфоцитарной реакцией в местах повреждений кровеносных сосудов.

Таким образом, можно заключить, что культивированные стволовые клетки мозга человека трансплантированные в спинной мозг крыс после нанесения механической травмы, переживали и сохраняли способность к миграции и дифференцировке. Трансплантированные клетки мигрировали вдоль волокон, сосудов и обнаруживались в зонах некроза. Среди

имплантированных клеток сохранялись нестин-положительные стволовые клетки не начавшие дифференцировку. Интересно, что нестин-положительные стволовые клетки могли формировать плотные группы и мигрировать по ткани мозга реципиента. Было обнаружено, что плотные скопления стволовых клеток характерны для случаев, где наблюдалась слабая травма спинного мозга. Это могло быть связано с недостатком факторов "травмы", которые стимулируют миграцию и дифференцировку.

Скопления стволовых клеток, как правило, наблюдались вокруг кровеносных сосудов.

Часть трансплантированных клеток начинала дифференцировку в нейроны и глию, о чем можно было судить по экспрессии виментина, бета-тубулина-3 и ГКФБ.

Во всех случаях, при трансплантации культивированных стволовых клеток наблюдалась активная реваскуляризация и не происходило формирования кист в области травмы, что было характерно для животных контрольной группы. Это свидетельствовало о том, что нейральные стволовые клетки человека оказывали положительное влияние на посттравматические процессы в спинном мозгу взрослых крыс.

На основании результатов проведенной экспериментальной работы, доказывающей факт сохранения и дифференцировки введенных стволовых клеток, положительных клинических результатов в эксперименте, а также исходя из типов и характера позвоночно-спинномозговой травмой (ПСМТ); вида, уровня и степени повреждения спинного мозга; периода течения ПСМТ; характера осложнений и последствий ПСМТ можно предложить возможность использования методики введения НСК в клинической практике.

выводы

1. Динамика восстановления функции спинного мозга животных после травмы зависит от степени повреждения ткани спинного мозга. Смертность при ушибе спинного мозга прямо пропорциональна силе механического воздействия.

2. Механическая травма спинного мозга тяжелой степени вызывает сильнейшее травматическое поражение спинного мозга с формированием кист, грубоволокнистого глиального рубца и распадом миелиновых оболочек поврежденных волокон спинного и длительно текущей (до 130 суток) воспалительной реакцией.

3. При механической травме средней степени стадия воспаления длится в течение 14-20 дней, после чего область травмы освобождается от кровяных элементов и миелинового детрита и замещается реактивными астроцитами. Кисты и глиоз в разной степени у разных животных сохраняются в течении 4-5 месяцев после травмы.

4. Нейральные стволовые клетки человека, трансплантированные билатерально в области нанесения механической травмы, сохраняют жизнеспособность до 115 суток после пересадки, способны мигрировать вдоль волокон и сосудов и обнаруживаются в зонах некроза.

5. Дифференцировка части трансплантированных клеток в нейроны и глию, подтверждается экспрессией виментина, Iü-бета тубулина и глиального белка.

6. Трансплантация культивированных стволовых клеток в область травмы приводит к активной реваскуляризации и практически блокирует формирование кист.

1 .Ксенотрансплантация культивированных стволовых клеток человека на моделе поврежденного спинного мозга у крыс. // Бюллетень экспериментальной биологи и медицины 2003г.;г.135,№4, ст. 466-470. (соавт. Г.А.Степанов, М.В. Марей, М.А. Александрова, О.В. Подгорный P.A. Полтавцева, A.B. Ревищин, Г.Т. Сухих.)

2.Xenotransplantation of Human Embrionic neural Stem Cels into Cerebrum and Spinal Cord of Adult Rats. // Experimental hematology, n 31 №7 Sopp 1, 2003 (mit Aleksandrova M., Poltavtseva R,, Ayvazyan A., Revishin A., Podgorny O., Stepanov G., Aprikyan A., Sukhikh G.)

3.Иммуногистохимическое исследование фетальных стволовых/прогениторных клеток мозга человека трансплантированых в травмированный спинной мозг взрослых крыс. // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины.2004 г. том 137, №3 ст.471-475. (соавт. О.В. Подгорный, М.В. Марей, Г.А. Степанов, М.А. Александрова, P.A. Полтавцева, A.B. Ревищин, Г.Т. Сухих.

4.Возможности использования комбинированных биологических трансплантатов при острой травме спинного мозга (экспериментальное исследование). // Вестник травматологии и ортопедии им. Н.Н.Приорова 2004г. №1, ст 4-8. (соавт. С.П.Миронов, Г.А.Степанов, Г.Т.Сухих, И.Г.Гришин, В.В.Троценко, А.И.Крупаткин, А.Ю.Моргунов, М.А.Александрова, М.Марей, Р.А.Полтавцева, А.В.Ревищин, О.В.Подгорный).

5.Трансплантация нейральных стволовых/прогениторных клеток человека в головной и спинной мозг взрослых крыс. // Материалы

конференции «От современной фундаментальной биологии к новым наукоемким технологиям» 11-14 ноября 2002 г, г. Пущино. ст.46 (соавт. Александрова М.А., Полтавцева P.A., Ревищин A.B., Подгорный A.B., Черкасова JI.B., Клещинов В.Н., Степанов Г.А., Корочкин Л.И., Сухих Г.Т.)

6. Трансплантация нейральных стволовых/прогениторных клеток человека в головной и спинной мозг взрослых крыс. // Материалы Международного междисциплинарного семинара «Новые технологии в медицине и экологии, интегративная медицина» январь 2003 Словения, г Высокие Татры, ст. 100 (соавт. Александрова М.А., Полтавцева P.A., Ревищин A.B., Подгорный О.В., Черкасова Л.В., Степанов Г.А., Сухих Г.Т.)

7. Transplantation of Neural Stem/Progesteron Cels into Forebrain and Spinal Cord of Adult Rats // Second Symposium on Therapeutic Applications of Human Stem and Precursor Cells. 6-8 November Hannover, Germany (mit Aleksandrova M.A, Poltavtseva R.A., Revishchin A.V., Podgorniy O.V., Stepanov G.A., Korochkin L.I., Sukhikh G.T., Viktorov I.L.).

8. Трансплантация культивированных фетальных клеток мозга человека в поврежденный спинной мозг взрослых крыс. // Материалы 2-го Московского международного Конгресса «Биотехнология: состояние и перспективы развития» 10-14 ноября 2003 г. Россия, часть 1, ст. 129 (соавт. Александрова М.А., Подгорный О.В., Ревищин A.B., Полтавцева P.A., Марей М.В., Степанов Г.А., Корочкин Л.И., Сухих Г.Т.).

«

Типография ООО «Телер» 127299 Москва, ул. Космонавта Волкова, 12 Лицензия на полиграфическую деятельность ПД № 00595

Подписано в печать 4.04.2005 г. Формат 60x90 1/16. Тираж 100 экз. Бумага «Снегурочка» 1,5 печ.л. Заказ № П 225

РНБ Русский фонд

2005-4 47789

2561

22 ï^13'Г>5

 
 

Оглавление диссертации Карпенко, Дмитрий Олегович :: 2005 :: Москва

ВВЕДЕНИЕ

ГЛАВА 1. Обзор литературы

1.1. Общие представления о патогенезе повреждения спинного мозга. ^

1.2. Процессы регенерации в травмированном спинном мозге (СМ).

1.3. Вопросы лечения при повреждениях спинного мозга.

ГЛАВА 2. Характеристика материалов и методов исследования

2.1. Общая характеристика экспериментального материала.

2.2. Объект исследования и методики экспериментов.

2.2.1. Методика механической травмы спинного мозга.

2.2.2. Методика проведения контрольных экспериментов с проколом СМ.

2.2.3. Методика культивирования нейральных стволовых клеток (НСК).

2.2.4. Методика введения НСК в травмированный спинной мозг.

2.3. Методы исследования.

2.3.1. Клинический метод исследования.

2.3.2. Морфологический метод исследования.

2.4. Объем проделанной работы.

ГЛАВА 3. Оценка исходов опытов.^

3.1. Оценка клинической картины состояния животных в ^ ходе экспериментов.

3.1.1. Опыты с нанесением тарированного удара без введения НСК. ^

3.1.2. Контрольные опыты с проколом спинного мозга и введением физиологического раствора без нанесения ^ g травмы и без введения НСК.

3.1.3. Опыты с нанесением тарированного удара с введением НСК.

3.2. Анализ результатов морфологических исследований.

3.2.1. Морфологический анализ опытов с нанесением тарированного удара без введения НСК. ^

3.2.2. Морфологический анализ контрольных опытов с проколом спинного мозга и введением физиологического раствора без нанесения травмы и без введения НСК.

3.2.3. Морфологический анализ опытов с нанесением тарированного удара с введением НСК. jg

ГЛАВА 4. Анализ экспериментальных исследований исходов травм спинного мозга.

ГЛАВА 5. Корреляция данных экспериментальной травмы спинного мозга и клинических случаев. Возможные показания к применению метода.

 
 

Введение диссертации по теме "Травматология и ортопедия", Карпенко, Дмитрий Олегович, автореферат

Актуальность работы

Восстановление функций травмированного спинного мозга — один из самых актуальных вопросов медицины и нейробиологии [68, 99].

По данным зарубежной печати, на миллион жителей Земли в среднем приходится до 49 случаев травмы спинного мозга. В' каждом таком случае больные остаются инвалидами на всю жизнь, что приносит страдания не только им, но и их родным и близким. Средства, затраченные на лечение и содержание одного такого больного в развитых странах Европы и Северной Америки составляют около 65 тыс. долл.

За рубежем существуют многочисленные' национальные программы исследований, проблемы травмы спинного мозга: Майамский Проект Лечения Паралича (США), Сотрудничество по Восстановительным Открытиям (Канада), лаборатории в Каролинском Институте (Швеция) и многие другие [69, 89, 131].

Координацией работы ученых всего мира занимается Международное Объединение Спинальных Исследований (International Spinal Research Trust),

Несмотря на существование различных методик хирургических операций на травмированном спинном мозге и их эффективного анестезиологического обеспечения, отдельные успехи в ведении и послеоперационной реабилитации спинальных больных, до сих пор отсутствует по настоящему эффективное воздействие на процессы восстановления структур поврежденного спинного мозга. Изучение механизмов повреждения спинного мозга и восстановления нервной ткани на молекулярном и клеточном уровне позволит найти наиболее адекватные способы вмешательства' в этот процесс. Этими вопросами занимается нейробиология и смежные с ней разделы науки [168].

Травма спинного мозга отражается на функции всех органов и систем человека, что позволило применять термин «травматическая болезнь».

Основные работы в исследованиях ведутся по пути поиска оптимальных условий регенерации нервных клеток и восстановления функций нервной ткани [47, 124, 127].

Главная проблема в> сохранении функции поврежденного спинного мозга -- предотвращение вторичного повреждения его структур (апоптоза) и восстановление нервной ткани. С 80-х годов прошлого века, когда Aguoyo доказал возможность роста травмированных отростков нервных клеток [42] многие ученые с разных позиций изучают условия достижения стабильного и необратимого роста поврежденных волокон ЦНС. Появились многочисленные публикации об использовании в качестве трансплантатов различных биологических и искусственных материалов для замещения поврежденных нервных клеток или для создания условий регенерации и репарации нервной ткани. Используется клеточный материал (шванновские, обол очечные обонятельные, эмбриональные клетки) и другие органические материалы (коллаген, карбониловые нити, матригель, полигликоевая кислота).

Ведущая роль в изучении механизмов травмы спинного мозга и его регенерации безусловно принадлежит экспериментальным методам исследования на лабораторных животных, постольку получение таких данных в клинике у человека крайне проблематично. Не представляется возможным изучение динамики повреждения и на секционном материале в случаях острой спинномозговой травмы в связи с быстротечностью этих процессов и необходимостью забора ткани спинного мозга в ближайшее время после смерти.

Для достоверной качественной и количественной оценки процессов повреждения и регенерации необходимо использовать современные методы иммуногистохимии. Методики обнаружения маркеров регенерации позволяют точно идентифицировать процессы повреждения и регенерации, растущие волокна как в нервной ткани, так и в сложном глиально -соединительнотканном рубце в области травмы.

Возможная корреляция результатов исследования механизмов повреждения и регенерации спинного мозга на экспериментальных животных и клинических данных является первоочередной задачей, от решения которой зависит дальнейшая возможность лечения больных с травматической болезнью спинного мозга. Кроме того, выявление общих механизмов повреждения ткани спинного мозга может привести к появлению новых методов лечения практически безнадежных в настоящее время спинальных больных [130, 140].

Нейральная трансплантация ~ многообещающий метод для лечения травматических повреждений спинного мозга, базирующийся на возможности замещения утраченных клеточных элементов и стимуляции компенсаторно-восстановительных процессов [54, 63, 64, 117, 142]. Фетальные стволовые клетки, происходящие из мозга, наиболее пригодны для трансплантации, так как они являются потенциальным источником всех типов клеток центральной нервной системы человека, включая нейроны, астроциты и олигодендроциты [86, 126, 139]. Эмбриональные нейральные стволовые клетки сохраняют и размножают в культуре ткани in vitro и затем используют для трансплантации с целью восстановления поврежденных функций головного и спинного мозга [45, 164].

В настоящей работе исследовали поведение и дифференцировку культивированных фетальных стволовых/прогениторных клеток мозга человека после их трансплантации в травмированный спинной мозг у лабораторных животных.

Цель исследования:

Цель настоящего исследования — экспериментальная разработка методики введения нейральных стволовых клеток (НСК) человека, изучение их развития и дифференцировки в спинном мозге при травме различной степени тяжести у взрослых крыс и анализ влияния НСК на посттравматические процессы.

Задачи исследования:

Для достижения цели исследования предполагалось решить следующие задачи:

1 .Стандартизировать методику экспериментальной травмы спинного мозга.

2.Разработать методику введения культуры НСК в качестве наполнителей биологических трансплантатов.

3.Изучить восстановление неврологических функций у животных после использования НСК в спинном мозге.

4.Провести морфологическое исследование спинного мозга при введении биологических трансплантатов в различные сроки после операции (до 9 месяцев).

Экспериментальную работу проводили на базе отдела экспериментальной травматологии и ортопедии [руководитель — д.м.н., Шальнев А.Н.] Государственного учреждения науки Центрального института травматологии и ортопедии им. Н.Н.Приорова [директор — академик РАН, РАМН, профессор Миронов С.П.].

Культивирование нейральных стволовых клеток проводили в отделе клинической иммунологии [руководитель — член-корреспондент РАМН, профессор Сухих Г.Т.] Научного центра акушерства, гинекологии и перинатологии Российской академии медицинских наук [директор -академик РАМН, профессор Кулаков В.И. ]

Морфологические исследования проводились в лаборатории экспериментальной нейробиологии [руководитель — д.б.н., Александрова М.А.] Института биологии развития им. Н.К.Кольцова Российской академии наук [директор - д.б.н., профессор Озернюк Н.Д.]

Научная новизна

Впервые использованы нейральные стволовые клетки человека при исследовании экспериментальной травмы (ушиба) спинного мозга в опытах на животных. Морфологический анализ с применением имунногистохимических методов исследования показал жизнеспособность введенных НСК в течении всего времени наблюдений, свойство клеток реципрокно мигрировать в область травмы спинного мозга, способность дифференцировки части клеток по нейрональному и глиальному типу.

Впервые разработана методика билатерального введения нейральных стволовых клеток в область повреждения спинного мозга в экспериментальных исследованиях с использованием стереотаксической установки и микрошприца (Hamilton), что позволяет вводить НСК в строго определенное место травмы спинного мозга и позволяет трансплантировать в зону повреждения строго определенное количество клеток. Экспериментально доказана малая травматичность прокола спинного мозга при введении клеток через микроиглу.

Впервые в эксперименте получены данные, свидетельствующие о частичном восстановлении функции спинного мозга в результате использования НСК человека при травме спинного мозга.

Практическая ценность работы

Полученные в ходе работы результаты могут стать основой для дальнейшего совершенствования и разработки новых методик лечения больных со спинномозговой травмой с использованием НСК.

Анализ результатов лечения травмы спинного мозга в эксперименте в раннем и позднем послеоперационном периоде, при максимальном сроке наблюдения до 199 суток позволил создать предпосылки для использования методики введения НСК и начала разработки показаний для применения методики прИ(Травмах спинного мозга в клинике.

Следствием применения стволовых клеток может стать возможность частичной компенсации осложнений и последствий повреждения1 спинного мозга. Результаты исследования показали, что в некоторых случаях можно ожидать восстановления кожной чувствительности и улучшения имеющейся двигательной активности больных. Все вышеперечисленное улучшит качество жизни больных со спинномозговыми травмами, и возможность самообслуживания.

Положения, выносимые на защиту

1. Нейральные стволовые клетки человека, введенные при острой экспериментальной травме спинного мозга, остаются жизнеспособными длительное время, тормозят глиальную реакцию, уменьшают возможность формирования глиального- рубца, подавляют образование кист в месте травмы спинного мозга, тормозят процесс дегенерации нейронов. Часть НСК дифференцируется по нейрональному и глиальному типу.

2. Введение НСК снижает степень посттравматических осложнений у животных с травмой спинного мозга.

Апробация и реализация работы: на ' научно-практической конференции «От современной фундаментальной биологии-к новым наукоемким технологиям» 1114 ноября 2002г России, Москва. на конференции «Стволовые клетки и перспективы их использования в здравоохранении» 22-23 мая 2003 Россия, Москва на симпозиуме Second Symposium on Therapeutic Applications of

Human Stem and Precursor Cells. 6-8 ноября 2002г., Германия, Ганновер. на международном междисциплинарном семинаре «Новые технологии в медицине и экологии, интегративная медицина» январь 2003 Словения, г Высокие Татры. на 2-ом Московском международном Крнгрессе «Биотехнология: состояние и перспективы развития» 10-14 ноября 2003 г. Россия, Москва.

Публикации

По изучаемой проблеме опубликовано 8 печатных работ. Область внедрения

Полученные данные могут быть использованы для дальнейшей разработки методов хирургического лечения травматической болезни спинного мозга.

Объем и структура работы

Диссертационная работа изложена на 131 странице: из них 96 страниц собственно текст. Содержит 52 рисунка и 4 таблицы.

Состоит из введения, 5 глав, заключения, выводов и списка использованной литературы, содержащего 169 источников, из них 41 отечественный и 128 иностранных авторов.

 
 

Заключение диссертационного исследования на тему "Репаративная регенерация травмированного спинного мозга при использовании нейральных стволовых клеток (экспериментальное исследование)"

выводы

1. Динамика восстановления функции спинного мозга животных после травмы зависит от степени повреждения ткани спинного мозга. Смертность при ушибе спинного мозга прямо пропорциональна силе механического воздействия.

2. Механическая травма спинного мозга тяжелой степени вызывает сильнейшее травматическое поражение спинного мозга с формированием кист, грубоволокнистого глиального рубца и распадом миелиновых оболочек поврежденных волокон спинного и длительно текущей (до 130 суток) воспалительной реакцией.

3. При механической травме средней степени стадия воспаления длится в течение 14-20 дней, после чего область травмы освобождается от кровяных элементов и миелинового детрита и замещается реактивными астроцитами. Кисты и глиоз в разной степени у разных животных сохраняются в течении 4-5 месяцев после травмы.

4. Нейральные стволовые клетки мозга человека, трансплантированные билатерально в области нанесения механической травмы, сохраняют жизнеспособность до 115 суток после пересадки, способны мигрировать вдоль волокон и сосудов и обнаруживаются в зонах некроза.

5. Дифференцировка части трансплантированных клеток в нейроны и глию, подтверждается экспрессией виментина, Ш-бета тубулина и глиального белка.

6. Трансплантация культивированных стволовых клеток в область травмы приводит к активной реваскуляризации и практически блокирует формирование кист.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Рост числа больных с тяжелым видом патологии, которой является травматическая болезнь спинного мозга диктует необходимость поиска новых подходов к решению этой проблемы.

Широко применяющийся в клинической практике метод введения больших доз метилпреднизолона в первые часы после травмы вызывает все больше и больше сомнений. В практике лечение больных сводится к различного рода мероприятиям реабилитации, опирающиеся на использовании сохранившихся после травмы СМ функций человека. Велик процент смертности от вторичных осложнений. Качество жизни оставшихся резко ограничено вследствие снижения уровня самообслуживания.

Наиболее перспективным подходом в решении этой проблемы следует признать лечение данного вида травмы на клеточном уровне. В последнее время большой интерес получили методики трансплантации биологических тканей, а также искусственных веществ с целью замещения разрушенной ткани мозга и стимуляции роста нервных клеток. В качестве трансплантатов используются как клетки нервной ткани - шванновские, оболочечные обонятельные, стволовые клетки костного мозга, так и неклеточные материалы - полимеризованный коллаген, матригель, полигликоевая кислота, карбониловые нити. Методы трансплантации основаны на возможности замещения утраченных клеточных элементов и стимуляции компенсаторно-восстановительных процессов.

Нейральные стволовые клетки, происходящие из головного мозга, наиболее пригодны для трансплантации, так как они являются потенциальным источником всех типов клеток центральной нервной системы человека, включая нейроны, астроциты и олигодендроциты.

Это подтверждают исследования, проводимые за рубежом. В экспериментах на крысах использовались человеческие стволовые клетки для введения в травмированный СМ [89, 109]. При этом было доказано, что человеческие НСК могут давать олигодендроциты, которые миелинизируют проводящие пути СМ [44]. В других исследованиях НСК уменьшали глиальный рубец [150]. и уменьшили количество и размеры кист [43], образующихся в месте травмы СМ. Опыты Барами (Barami, 2001) с использованием стволовых клеток головного мозга человека показали, что НСК могут дифференцироваться во все типы нейральных клеток, в то время как стволовые клетки СМ только в глиальные [50].

В своей работе мы использовали нейральные стволовые клетки, полученные по оригинальной методики в институте Акушерства и гинекологи, получающий абортивный материал из лицензированных учреждений МЗ РФ, действующих в рамках законодательства Российской Федерации об охране здоровья граждан и в соответствии с утвержденным перечнем медицинских показаний (приказ Минздрав № 302 от 28.12.1993 г. и приложения №3 от 05.04. 1994 г.). В качестве донорского материала использовали нежизнеспособные плоды человека весом менее 500 г, полученные от здоровых женщин, искусственно прерывающими беременность, по социальным показаниям на сроках гестации от 7 до 12 недель (согласно Рекомендациям ВОЗ, принятых Минздравом).

Эксперименты проводились на 3-х группах животных: — нанесение тарированного удара без введения НСК (44 животных) ~ нанесение укола и введение объема физиологического раствора без нанесения травмы и без введения НСК (6 животных) ~ нанесение тарированного удара с введением НСК (30 животных)

Для оценки результатов введения НСК применялись клинические и морфологические методы исследования.

В клиническую оценку исходов экспериментальных операций входило: выживаемость животных, длительность восстановления или появление функций мочевыводящей системы и движений задних конечностей, наличие осложнений и связанная с ними гибель животных. Ведущим критерием наших исследований была морфологическая картина травмированного спинного мозга, изменяющаяся под воздействием вводимых НСК.

У выживших крыс с НСК хорошие результаты наблюдались у 46,62 %(полное восстановление функций), удовлетворительные - у 6,66 % (неполное восстановление), неудовлетворительные - у 13,32% (частичное восстановление функции задних конечностей).

Животные с травмой СМ, которым вводились НСК погибают в 1,6 раза реже, причем в половине случаев от инфекции мочевых путей.

У выживших животных с НСК полное восстановление функций происходит в 1,86 раза чаще, а восстановление функции мочеотделения и частично функций задних конечностей в 2,9 раза чаще, чем у животных без введения НСК. Это связано с торможением глиальной реакции и подавлением образования кист в месте травмы СМ к 15-м суткам; отсутствием глиального рубца, ростом новообразованных сосудов, торможение процессов дегенерации нейронов, начала дифференцировки НСК по нейрональному и глиальному типу к 30-м суткам.

Действие НСК в области травмы СМ слабо выражены при нарушении методики введения клеток или при нестабильности позвоночного столба.

Результаты наблюдений на больших сроках (более 100 суток) указывают на отсутствие динамики восстановления функции после 30 суток.

Сопоставление клинической картины течения травматической болезни у крыс (как модели ушиба СМ) и у людей с травматической болезнью спинного мозга позволило предложить методику и показания для хирургического лечения с целью возможного использования в клинической практике.

Хирургическое лечение больных с травматической болезнью СМ -одна из актуальных проблем нейрохирургии. Тяжелое повреждение СМ на ограниченных сегментах приводит к рубцово-дистрофическим изменениям, нарушению проводимости СМ с тяжелыми последствиями в виде параплегии верхних и нижних конечностей, а также нарушению функции тазовых органов.

Проводимая научно-исследовательская работа имеет важное практическое значение. Создание биологических трансплантатов позволит обеспечить максимальные условия для регенерации и, возможно, прорастания аксонов в зоне повреждения СМ.

При экспериментальной травме спинного мозга повреждаются проводящие волокна, что сопровождается дегенерацией нейронов, деструкцией миелина с формированием глиального рубца и кист.

Культивированные стволовые клетки человека, пересаженные в СМ после дозированной травмы, переживают и сохраняют способность к миграции и дифференцировке. Эти клетки мигрируют вдоль волокон, сосудов и обнаруживаются в зонах некроза. При трансплантации НСК в зоне травмы СМ наблюдается активная реваскуляризация и не формируются кисты, что происходит у животных с одной травмой.

Создание биологического трансплантата на основе НСК позволит значительно улучшить качество хирургического лечения травмы СМ.

 
 

Список использованной литературы по медицине, диссертация 2005 года, Карпенко, Дмитрий Олегович

1. Амелина О.А. Травма спинного мозга // Клиническая неврология с основами медико-социальной экспертизы / Под ред. А.Ю.Макарова.-СПб.ЮОО Золотой век, 1998.- С.232-248.

2. Бабиченко Е.И. Классификация позвоночно-спинномозговой травмы // Нейротравматология: справочник /Под ред. А.Н.Коновалова, Л.Б.Лихтермана, А.А.Потапова.-М.:Вазар-Ферро,1994.-С.252-253.

3. Бабиченко Е.И. Травматическая болезнь спинного мозга // Нейротравматология: справочник /Под ред. А.Н.Коновалова, Л.Б.Лихтермана, ААПотапова.-М.:Вазар-Ферро,1994.-С.292-294.

4. Биохимия мозга: Учебное пособие /под. ред. Аммарина И.П., Стукалова П.В., Ещенко Н.Д. СПб., 1999, - 328с.

5. Благодатский М.Д., Суфианов А.А., Ларионов С.Н., Киборт Р.В., Семинский И.Ж., Манохин П.А. Трансплантация эмбриональной нервной ткани при сирингомиелии: первый клинический опыт.// Вопр. нейрохирургии 1994 №3 стр 27-29.

6. Богонатова Л.Н. Микро и ультраструктура посттравматических кист спинного мозга в позднем периоде травматической болезни. //Автореф. дис. доктор мед.наук Москва 1988, 22с.

7. Викторов И.В. Современное состояние исследований регенерации центральной нервной системы in vivo и in vitro.// Возбудимые клетки в культуре ткани.-Пущино,1984.- С.4-18.

8. Гайдар Б.В. , Королюк М.А., Кропотов С.П. Трансплантация нервной ткани при травмах спинного мозга: возможности и перспективы // Клин. Медицина и патофизиология.- 1996 №1.-С. 102-114.

9. Гайдар Б.В., Шулев Ю.А., Руденко В.В. и др. Реабилитация при позвоночноспинальной травме // Медицинская реабилитация раненых ибольных /Под ред. Ю.Н. Шанина. СПб:Специальная литература, 1997.-С.496-506.

10. Ю.Георгиева С.В, Бабиченко И.Е., Пучиньян Д.М. Гомеостаз, травматическая болезнь головного и спинного мозга. Изд-во Саратовского ун-та, 1993.С.223.

11. П.Гретен А.Г. Проблемные аспекты механизмов восстановительных процессов в мозге. Механизмы и коррекция восстановительных процессов мозга. Горький, 1982. С.5-1112.3яблов В.И. Проблемные вопросы регенерации нервной системы. -Симферополь, 1986.-38с.

12. З.Казакова П.Б. Морфология компенсаторных процессов в двигательном анализаторе при повреждениях спинного мозга // Автореф. дис. . доктор .мед.наук Москва, 1977, 34с.

13. Карлсон Б.М. Регенерация-М: Наука, 1986.-296с.

14. Коган О.Г. Реабилитация больных при травмах позвоночника и спинного мозга.- М. Медицина, 1975.

15. Котляр Б.И. Реорганизация ЦНС в процессе восстановления нарушенных нервных функций //Биологические науки .-1986.-№2.-С.23-34

16. Кривицкая Г.Н., Сатанова Ф. С. и др. Морфологические изменения в центральной нервной системе при различных видах повреждения ( травма спинного мозга, детский церебральный паралич)., Москва , 2000.- 186 с.

17. Кривицкая Т.Н. Патоморфология позвоночно-спинномозговой травмы //Нейротравматология: справочник /Под ред. А.Н.Коновалова, Л.Б.Лихтермана, А.А.Потапова.-М.:ВазарФерро,1994.-С.276-277.

18. Кукушкина Т.Н.,Докиш Ю.М., Чистякова Н.А. Руководство по реабилитации больных, частично утративших трудоспособность.-Л.: Медицина, 5 1981.

19. Лифшиц А.В. Нарушение тазовых функций при позвоночно-спинномозговой травме//Нейротравматология:справочник /Под ред. А.Н.Коновало ва, Л.Б.Лихтермана, А.А.Потапова. М.:Вазар-Ферро,1994.-С.289-292.

20. Луцик А.А. Оперативное лечение позвоночно-спинномозговой травмы //Нейротравматология:справочник /Под ред. А.Н.Коновалова, Л.Б.Лихтермана, А. А. Потапова. -М.:Вазар-Ферро,1994.-С.2б5-2б7.

21. Луцик А.А. Повреждения шейногоотдела спинного мозгаf

22. Нейротравматология:справочник /Под ред. А.Н.Коновалова, Л.Б.Лихтермана, А.А.Потапова.-М.:Вазар-Ферро,1994.-С.ЗОО-3()1.

23. Лысенко В.В. ,Розгонюк Ю.Д. Особенности формирования спинномозгового рубца после сшивания концов перерезанного спинного мозга у собак // Труды Крымского мед. института.-1983.Т.101.-С.151-152.

24. Меламуд Э.Е. Прогнозирование течения и исходов при позвоночно-спинномозговой травмы //Нейротравматологиясправочник /Под ред. А.Н.Коновалова, Л.Б.Лихтермана, А.А.Потапова.-М.:Вазар-Ферро, 1994.-С281.

25. Мошков В.Н. Лечебная физическая культура в клинике нервных болезней,-М.: Медицина, 1982.

26. Несмеянова Т.Н. Стимуляция восстановительных процессов при травме спинного мозга. М.: Наука, 1971.-255с.

27. Озеров С.С., Лалаянц И.Э. Апоптоз: механизм, регуляция и значение в нейроонкологии Вопросы нейрохирургии 2000 №4 с.28-30;

28. ПарфеновА.Я. Отек спинного озга//Нейротравматология:справочник /Под ред. А.Н.Коновалова, Л.Б.Лихтермана, А.А.Потапова.-М. :Вазар-Ферро, 1994.-С.272-273.

29. Подачин В.Н., Мусалов Г.Г., Незлина Н.И. Структурно-функциональные основы компенсации функций при травме спинного мозга. М.: Наука, 1983.-190с.

30. Радаева Т.М., Репаративная регенерация в системе задних канатиков спинного мозга и спинномозговых узлов. // Автореф. дис. . канд.мед.наук Москва, 1979, 20с.

31. Ромо данов А.П., Рудяк К.Э. Некоторые проблемы травмы позвоночника и спинного мозга по данным зарубежной литературы // Вопросы неййрохирургии.-1980.-№ 1 .-С.56-62.

32. Савченко А.Ю. Исходы позвоночно-спинномозговой травмы // Нейротравматология: справочник /Под ред. А.Н.Коновалова, Л.Б.Лихтермана, А.А.Потапова.-М.:Вазар-Ферро,1994.-С250.

33. Сатанова Ф. С. Деструктивные и репаративные процессы при травме спинного мозга (экспериментальное исследование). // Автореф. дис. . канд.мед.наук Москва, 1996, 111с.

34. Соленый В.И. Ортопедические последствия позвоночно-спинномозговой травмы // Нейротравматология :справочник /Под ред. А.Н.Коновалова, Л.Б.Лихтермана, А. А. Потапова.-М.:Вазар-Ферро, 1994.-С.267-268.

35. Степанян-Тараканова A.M. Травматическая болезнь спинного мозга.-М: Медгиз, 1959.-240с.

36. Терещенко Т.К. Гистологическое исследование спинного мозга белых крыс после его перерезки и сдавления. // Автореф. дис. . канд. мед.наук Симферополь 1974

37. Угрюмов В.М., Бабаченко Е.И. Закрытые повреждения позвоночника и спинного мозга. -М.: Медицина, 1973.

38. Усиков В.Д, Бонохов А.И., Островидова Г.Н. Функциональное лечение в системе раннего послеоперационного ведения больных с тяжелыми повреждениями позвоночника //Проблемы хирургии позвоночника и спинного мозга.- Новосибирск, 1996.- С.60-61.

39. Хренов А.П. Морфология восстановительных процессов в спинном мозге при травме и аутопластике (экспериментально —морфологическое исследование). // Автореф. дис. . доктор, мед.наук Москва 1984

40. Цивьян Я. Л. Хирургия позвоночника.-Новосибирск, 1993.

41. Шеперд Г. Нейробиология.-М.:Мир, 1987. Т.2.-С.260-265.

42. Aguayo A.J., David S., Richardson P., Bray G.M. Axonal elongation in peripheral and central nervous system transplants // Adv. Cell. Neurobiol.-1982.-Vol.3 P.215-234.

43. Akesson E., Kjaeldgard F., Seiger A. Human embryonic spinal cord grafts in adult rat spinal cord cavities survival, growth and interactions with the host. // J Orthop Sci. 2004 9(1) P. 108-112.

44. Akiyama Y, Homoun O. et all. Transplantation of clonar neural precursor cells derived from adult human brain establishes functional peripheral myelin in the rat spinal cord .// Exp. Neurol. 2001. Jan. 167(1) P. 48-58.

45. Aleksandrova M.A., Saburina I.N., Poltavtseva R.A., et al. Behavior of human neural progenitor cells transplanted to rat brain. // Dev. Brain Res. 2002. V.134. P. 143-148.

46. Alnemri ES, Livingston DJ, Nicholson DW, et al: Human ICE/CED-3 protease nomenclature. // Cell 87:171, 1996 (Letter)

47. Amar AP,Levy ML: Pathogenesis and pharmacological strategies for mitigating secondary damage in acute spinal cord injury. // Neurosurgery. 44(5): 1027-39; discussion 39-40, 1999

48. Anderson DK, Howland DR, Reier PJ: Fetal neural grafts and repair of the injured spinal cord. //Brain Pathol. 5(4): 451-57, 1995.

49. Aoki M, Fujito Y, Satomi H, et ai,: The possible role of collateral sprouting in the functional restitution of corticospinal connections after spinal hemisection. //Neurosci Res. 3(6): 617-27, 1986.

50. Barami К, Zhao J, Diaz FG, Luman WD Comparison of neural precursor cell fate in second trimester human brain and spinal cord.// Neurol Res 2001. Mar-Apr 23(2-3) P. 260-266

51. Basset C.A.Z., Campbell J.B., Husby J. Peripheral nerve and spinal cord regeneration: factors leading to success of tubulation technique employing Millipore. // Exp .Neurol. -1959. Vol .1-P.386-406.

52. Bastmeyer M, Bahr M, Stuermer CA: Fish optic nerve oligodendrocytes support axonal, regeneration of fish and mammalian retinal ganglion cells. // Glia. 8(1): 1-11, 1993.

53. Beattie MS, Leedy MG, Bresnahan JC: Evidence for alterations of synaptic inputs to sacral spinal reflex circuits after spinal cord transaction in the cat. //ExpNeurol. 123(1): 35-50, 1993.

54. Blesch A., Lu P., Tuszynski M.H. Neurotrophic factors, gene therapy, and neural stem cells for spinal cord repair // Brain Res Bull. 2002. V.57. № 6. P. 833-838.

55. Blight A.R. Cellular morphology of chronic spinal cord injury in the cat: analisis of myelinated axons by linesampling // Neuroscience.- 1983.-Vol.lO-P.521-543

56. Blight AR Delayed demyelination and macrophage invasion: a candidate for secondary cell damage in spinal cord injury. // Cent Nerv Syst Trauma 1985 ,2:299-315

57. Borgens R., J. Toombs, G. Breur, W. Widmer, D. Waters, A. Harbath, P. March, and L. Adams An Imposed Oscillating Electrical Field Improves the Recovery of Function in Neurologically Complete Paraplegic Dogs // J Neurotrauma 16(7), 639-657 (1999)

58. Bracken M/B., Shepard M.J.,Hellenbrand K.G. et.al. Methylprednisolone and neurological function 1 year after spinal cord injury // J.Neurosurg. -1985.-Vol.63- N.5.-P.704-713.

59. Bregman B.S. et al. Recovery from cord injury mediated by antibodies to neurite growth inhibitors. //Nature -1995-Vol. 378-P.498-502

60. Bregman B.S. et al. Recovery of function after spinal cord injury: mechanismes undelying transplant-mediated recovery of function differ after spinal cord injury in newborn and adult rats. // Exp.Neurol.- 1993-Vol. 123-P.3-16.

61. Bresnahan JC, Shuman SL, Beattie MS (1996) Evidence for apoptosis of oligodendroglia in long tracts undergoing wallerian degeneration after spinal cord injury (SCI) in monkeys. // Soc Neurosci Abstr 22:1185

62. Bunge M.B. Bridging areas of injury in the spinal cord. // Neuroscientist. 2001. V № 4. P. 325-339.

63. Bunge M.B. Transplantation of purified populations of Schwann cells into lesioned adult rat spinal cord. // J. Neurol.- 1994-Vol. 242 (1 Suppl 1)-P.36-39.

64. Bunge RP el al. Observations on the pathology of human spinal cord injury: A review and classification of 22 new cases with details from a case of chronic cord impression with extensive focal domiciliation. // Advances in Neurology 1993; 59: 75 -89.

65. Cajal S.R. Degeneration and regeneration of nervous system. // Hafner Publishing Co.New York.-1959.-Vol.l.-396p.

66. Calancie B: Interlimb reflexes following cervical spinal cord injury in man. // Exp Brain Res. 85: 458-69,1991.

67. Chen HY; Chiu WT; Chen SS; Lee LS; Hung CI; Hung CL; Wang YC; Hung CC; Lin LS; Shih YH A nationwide epidemiological study of spinal cord injuries in Taiwan from July 1992 to June 1996. // Neurol Res 1997 Dec;19(6):617-22

68. Cheng H., Cao Y.H., Olson L. Spinal cord repair in adult paraplegic rats-partial restoration of hind-limb function. // Science- 1996Vol. 273-P.510-513.

69. Chung Hua Wai Ко Traumatic ascending ischemic injury of the spinal cord . // Tsa Chih 1997 Oct;3 5(10):623-625

70. Cohen JJ: Apoptosis. // Immunol Today 14:126-130, 1993.

71. Davies S., Illis L.S., Raisman G. Regeneration in the central nervous system and related factors. // Summary of the Bermuda Paraplegia Conference, April 1994/International Spinal Research Trust //Paraplegia.1995.-Vol.33-N.I.- P.10-17.

72. Dou C-L, Levine J.M. Inhibition of neurite growth by the NG2 chondroitin suifate protroglycan. //J. Neurosci.- 1994- Vol. 14-P.7616-7628.

73. Ducker T.B., Zeidman S.M. Spinal cord ingury. Role of steroid therapy // Spin.- 1994.-Vol. 19.- N.20.-P.2281-2287

74. Dunnet S.B., Bjorklund A. Mechanisms of function of neural grafts in the adult mammalian brain // J. Exp. Biol. 1987.- Vol.132.- P.265-289.

75. Efficasy mechanism of action of methylprednisolone in acute spinal cord trauma // Innovation in trauma management.- The Upjohn Company.-1991.-Vol.l.-l lp.

76. Efficasy mechanism of action of methylprednisolone in acute spinal cord trauma // Innovation in trauma management.- The Upjohn Company.-1991.-Vol.l.-l lp.

77. Enomoto M., Shinomiya K., Okabe S. Migration and differentiation of neural progenitor cells from two different regions of embryonic central nervoussystem after transplantation into the intact spinal cord. // Eur.J.Neurosci. 2003. V.17. №6.P. 1223-1232.

78. Faden A.I. Experimental neurology of central nervous system trauma // Cri. Rev. Neurobiol.- 1993.-Vol.7,-N.3-4,-P.175-186.

79. Faden A.I., Simon R.P. A potential role for exitotoxins in the pathophisyiology of spinal cord injury // Ann. Neurol. -1988.-Vol.23.-P.623-626.

80. Fawcett J.W. Astrocytic and neuronal factors affecting axon regeneration in the damaged central nervous system. // Cell Tissue Res.-1997-Vol.290-P.371-377.

81. Feigin I, Cravioto H. A histochemical study of myelin: A difference in the solubility of the glycolipid components in the central and peripheral nervous systems. //Neuropath Exp Neurol 1961:20:245 253.

82. Frank E. Adaptive and maladaptive regeneration in the spinal cord //Repair and regeneration of the nervous system. Ed.Nicholl J.G. Dahlem Conferenzen. Berlin,Heidelberg, New York /Springer -Verlag.1982.-P.243-254.

83. Gage F.H. Mammalian neural stem cells. // Science. 2000. V. 287. P. 1433-1438.

84. Gerhard K.A. et al. Utilisation and effectivness of methylprednisolone in a population based sample of spinal cord injured persons. // Paraplegia 1995;33:316-321.

85. Guenard V, Kleitman N. Morrissey TK, et al,: Syngeneic Schwann cells derived from adult nerves seeded in semipermeable guidance channels enhance peripheral nerve regeneration.//J Neurosci. 12(9): 3310-20, 1992.

86. Harper G.P., Banyard P.J., Sharpe P.C. : The international spine research trust's strategic approach to the development of treatments for the repair of spinal cord injury. //Spinal Cord 34, 449-459, 1996

87. Jakeman LB, Reier PJ: Axonal projections between fetal spinal cord transplants and the adult rat spinal cord: a neuroanatomical tracing study of local interactions. // J Comp Neurol. 307(2): 311-34, 1991.

88. Joosten E, Bar P, Gispen W: Collagen Implants and Cortico-Spinal Axonal Growth After Mid-Thoracic Spinal Cord Lesion in the Adult Rat. // J Neurosci Res. 40: 1-11, 1995.

89. Jorgensen M.B., Diemer N.H., Selective neuron loss after cerebral ischemia in the rat: possible role of transmitter glutamate // Acta Neurol. Scand. -1982.-Vol.66.-P.536-546.

90. Kafitz KW, Greer CA: Olfactory ensheathing cells promote neurite extension from embryonic olfactory receptor cells in vitro. // Glia. 25(2): 99-110, 1999.

91. Kakulas B.A. Pathology of spinal injuries // Cent. Nerv.Syst.Trauma -1984-Vol.l,N.2-P.l 17-129

92. Kakulas B.A. The applied neuropathology of human spinal cord injury 1999 // Spinal cord (37), 79-88

93. Kao C.C., Chang L.W., Bloodworth J.M. Axonal regeneration across transected mammalian spinal cord: an electron microscopic study of delayed microsurgical nerve grafting // Exp. Neurol. -Vol.54.-P.591-615

94. Karacan I; Koyuncu H; Pekel O; Sumbuloglu G; Kirnap M; Dursun H; Kalkan A; Cengiz A; Yalinkilic A; Unalan Ш; Nas K; Orkun S; Tekeoglu Traumatic spinal cord injuries in Turkey: a nation-wide epidemiological study. // Spinal Cord 2000 Nov;38(l 1):697-701

95. Keirstead H.S. et al. Axonal regeneration and physiological activity following transection and immunological disruption of myelin within the hatchling chick spinal cord. // J.Neurosci. -1995 Vol. 15 -P.6963-6974.

96. Kermer P, Klocker N, Labes M, et al,: Inhibition of CPP32-like proteases rescues axotomized retinal ganglion cells from secondary cell death in vivo. // J Neurosci. 18(12): 4656-62, 1998.

97. Kerr J.F., Wyllie A.H., Currie A.R. Apoptosis : a basic biological phenomenon with wide ranging implication in tissue kinetics //Brit. J. Cancer. 1972. Vol.26, N4, P.239- 257

98. Khan T, Dauzvardis M, Sayers S: Carbon Filament Implants promote growth across the transacted rat spinal cord. // Brain Res. 541: 139-45, 1991.

99. Kieman J.A. Hypotheses concerned with axonal regeneration in the mammalian nervous system // Biol.Rev. Camb.Philos. Soc.-1979.-Vol.54,N.2-155-197.

100. Kirschenbaum B, Nedergaard M, Preuss A, et a.,: In vitro neuronal production and differentiation by precursor cells derived from the adult human forebrain. // Cereb Cortex. 4(6): 576-89, 1994.

101. Kiyotani T, Teramachi M, Takimoto Y, et al,: Nerve regeneration across a 25-mm gap bridged by a polyglycolic acid- collagen tube: a histological and electrophysiological evaluation of regenerated nerves. // Brain Res. 740(1-2): 66-74, 1996.

102. Krassioukov AV; Weaver LC Morphological changes in sympathetic preganglionic neurons after spinal cord injury in rats. // Neuroscience 1996 Jan;70(l):211-25

103. Lee VM, Hartley RS, Trojanowski JQ Neurobiology of human neurons (NT2N) grafted into mouse spinal cord: implications for improving therapy of spinal cord injury.// Prog. Brain Res. 2000, 128. P. 299-307.

104. Li GL; Farooque M; Holtz A; Olsson Y Increased expression of growth-associated protein 43 immunoreactivity in axons following compression trauma to rat spinal cord. // Acta Neuropathol (Berl) 1996 Jul;92(l): 19-26

105. Li M. et al. Myelin associated glicoprotein inhibits neurite / axon growth and causes growth cone collapse.// J. Neurosci. Res.- 1996- Vol. 46 -P.404-414.

106. Li R; Thode S; Zhou J; Richard N; Pardinas J; Rao MS; Sah DW Motoneuron differentiation of immortalized human spinal cord cell lines. // J Neurosci Res 2000 Feb l;59(3):342-352

107. Li Y., Field P.M. , Raisman G. Repair of adalt rat corticospinal tract by transplants of olfactory ensheathing cells. // Science- 1997- Vol. 277-P.2000-2002.

108. Li Y., Raisman G. Schwann cells induce sprouting in motor and sensory axons in the adult rat spinal cord. //J.Neurosci. 1994- Vol. 14(7) -P.4050-4063.

109. Liu Y, Himes ВТ, Solowska J, et al,: Intraspinal delivery of neurotrophin-3 using neural stem cells genetically modified by recombinant retrovirus. //ExpNeurol. 58(1): 9-26, 1999.

110. Lois C, Alvarez-Buylla A: Long-distance neuronal migration in the adult mammalian brain. // Science. 264(5162): 1145-8, 1994.

111. Lokatos A., Franklin R.J. Transplant mediated repair of the central nervous system: an imminent solution? // Curr. Opin. Neurol. 2002. V.15. № 6. P. 701-705.

112. Lu P., Snyder E.Y., Tuszynski M.H. Neural stem cells constitutively secrete neurotrophic factors and promote extensive host axonal growth after spinal cord injury. // Exp. Neurol. 2003. V. 181. № 2. P. 115-129.

113. Lurie DI,Seizer ME: Axonal regeneration in the adult lamprey spinal cord. // J Comp Neurol. 306(3): 409-16, 1991.

114. Marx J.L. Regeneration in the central nervous system // Science.-1980.-Vol.209, N.4454.-P.378-380

115. McDonald J.W., Liu X.Z., Qu Y., et al. Transplanted embryonic stem cells survive, differentiate and promote recovery in injured rat spinal cord. //Nat. Med. 1999. V.5. № 12. P. 1410-1412.

116. Mori F, Himes ВТ, Kowada M, et al,: Fetal spinal cord transplants rescue some axotomized rubrospinal neurons from retrograde cell death in adult rats. //Exp Neurol. 143(1): 45-60, 1997.

117. Mukhopadhyay et al. A novel role fir myelin-associated glycoprotein as an inhibitor of axonal regeneration. //Neuron- 1994- Vol. 13 P.757-767.

118. Nicholls J.C. Introduction // Repair and regeneration of nervous system. Dahlem Conferenzen.-1982.-P.l-6.

119. Ogawa Y., Sawamoto K., Miyata Т., et al. Transplantation of in vitro-expanded fetal neural progenitor cells results in neurogenesis and functional recovery after spinal cord contusion injury in adult rats. // J. Neurosci. Res. 2002. V. 69. P. 925-933.

120. Poltavtseva R.A., Marey M.V., Aleksandrova M.A. et al. Evaluation of progenitor cell cultures from human embryos for neurotransplantation. // Dev. Brain Res. 2002. V.134. P. 149-154.

121. Privat. A. Treatment of the future for spinal cord injuries //Rev. Prat. -1995.-Vol.45, N.16.-P.2051-2056.

122. Puchala E., Windle W.F. The possibility of structural and functional restitution after spinal cord injury. A review // Exp. Neurol.-1977.-Vol.55, N.1.-P.1-42.

123. Rabchevsky A.G., Streit W.J. Grafting of cultured cells into the lesioned spinal cord of adalt rats enhances neurite outgrowth // J.Neurosci. Res. 1997 -Vol. 47- P.34-48.

124. Rajiv R. Ratan et. al DNA-Binding Drugs Inhibit Stress-Induced Neuronal Death Ann //Neurol 2001;49:345-354.

125. Ramer MS; Harper GP; Bradbury EJ Progress in spinal cord research a refined strategy for the International Spinal Research Trust. // Spinal Cord 2000 Aug;38(8):449-72

126. Ramon C.A. , Plant G.W., Avila J., Bunge M.B. Long distance axonal regeneration in the transected adult rat spinal cord is promoted by olfactory ensheathing glia transplants.//J.Neurosci- 1998- Vol. 18 - P. 38033815.

127. Rawe S.E., Lee W.A., Perot P.J. Jr. The histopathology of experimental spinal cord trauma. The effect of systemic blood pressure // J. Neurosurg. 1989- Vol. 48.-P. 1002-1007.

128. Rawe S.E., Roth R.H., Collins W.F. Norepinephrine levels in experimental spinal cord trauma. Part 2. Histopathological studi of hemorragic necrosis //J. Neurosurg. 1977 -Vol.46.-P.350-357

129. Regeneration in the central nervous system. Ed. By Windle W. Charles Thomas Publisher Springfield. Illinois. USA. 1955

130. Reier P.J., Houle J.D., Tessler A., Jakeman L. Astrogliosis and regeneration: new perspectives to old hypothesis // Biochem. Pathol. Astrocytes: Proc.Satell/Symp. Int.Soc.Neurochem, Miami, Fla, May 26-29, 1987.-New York, -1988.-P. 107-122.

131. Reier P.J., Houle J.D., Tessler A., Jakeman L. Astrogliosis and regeneration: new perspectives to old hypothesis // Biochem. Pathol. Astrocytes: Proc.Satell/Symp. Int.Soc.Neurochem, Miami, Fla, May 26-29, 1987.-New York, -1988.-P. 107-122.

132. Reier P.J., Stokes B.T., Thompson R.J., Andersen D.K. Fetal cells grafts resection and compression injuries of the rat and cat spinal cord. // Exp. Neurol. 1992- Vol. 115- P. 177-188.

133. Rossi F., Cattaneo E. Opinion: neural stem cell therapy for neurological diseases: dreams and reality. // Nat. Rev. Neurosci. 2002. V. 3. № 5. P. 401-409.

134. Savitz SI, Rosenbaum DM: Apoptosis in neurological disease. //Neurosurgery 42:555-574, 1998

135. Schnell L., Schwab M.E. Axonal regeneration in the rat spine cord produced by an antibody against myelin-associated neurite growth inhibitors .// Nature -1990- Vol.345- P.269-272.

136. Schwab M.E. Repairing the injured spinal cord. Repairing the injured spinal cord. // Science. 2002. V. 295. № 5557. P. 1029-1031.

137. Schwab M.E., Kapfhammer J.P.,Bandtlow C.E. Inhibitors of neurite growth. // Annu. Rev.Neurosci.- 1993 -Vol. 16 P.565-595.

138. Shapiro S: Neurotransmission by neurons that use serotonin, noradrenaline, glutamate, glycine, and gamma-aminobutyric acid in the normal and injured spinal cord. //Neurosurgery. 40(1): 168-76; discussion 77, 1997 .

139. Shapiro S: Neurotransmission by neurons that use serotonin, noradrenaline, glutamate, glycine, and gamma-aminobutyric acid in the normal and injured spinal cord. // Neurosurgery. 40(1): 168-76; discussion 77, 1997 .

140. Short D.J., Mastry W.S. El, Jones P.W. High dose methylprednisolon in the managment of acute spinal cord injury a systematic review from a clinical perspective. // Spinal Cord 2000 38, 273 - 286

141. Stuermer CA, Bastmeyer M, Bahr M, et al,: Trying to understand axonal regeneration in the CNS of fish. // J Neurobiol. 23(5): 537-50, 1992.

142. Svendsen CN, Caldwell MA, Ostenfeld T: Human neural stem cells: isolation, expansion and transplantation. // Brain Pathol. 9(3): 499-513, 1999.

143. Tator CH. Update on the pathophysiology and pathology of acute spinal cord injury. // Bruin Pathology 1995; 5: 407 413.

144. Teng Y.D., Lavik E.B., Qu X., et al. Functional recovery following traumatic spinal cord injury mediated by a unique polimer scaffold seededwith neural stem cells. //Proc.Natl.Acad.Sci.USA. 2002. V.99. № 5. P.3024-3029.

145. Thalimair M, Metz G, Graggen W, et al,: Neurite growth inhibitors restrict plasticity and functional recovery following corticospinal tract lesions. // Nature Neurosci. 1: 124-31, 1998.

146. Tobin G. R., Chvapil M., Gildenberg P.L. Collagen biosynthesis in healing wounds of the spinal cord and surrounding membranes // Surgery.-I980.-Vol.88,N.2-P.231-238.

147. Travis J. Spinal cord injuries. New optimism blooms for developing treatmentes //Science.-1992.-Vol.258, N.5080.- P.218-220.

148. Virchow R. Cellular pathology as based upon physiological histology. Ed. 2 New York, 1971. P.356-382

149. Wang S, Wu H, Jiang J, et al.,: Isolation of neuronal precursors by sorting embryonic forebrain transfected with GFP regulated by the T alpha 1 tubulin promoter 1998 //Nat Biotechnol. 16(2): 196-201

150. Weiss S, Dunne C, Hewson J, et al,: Multipotent CNS stem cells are present in the adult mammalian spinal cord and ventricular neuroaxis. // J Neurosci. 16(23): 7599-609, 1996.

151. Wieloch T. Neurochtemical correlats to selective neuronal vulnerability// Prog. Brain Res. 1985,-Vol. 63, N.1.-P.69-85.

152. Wilson D.Z., Perry G.W. Some Hypotheses concerning axon regeneration // Restor.Neurol, and Neurosci.-1990.-Vol. 1 ,N.3-4.-P. 198-203.

153. Windle W, Smart J, Beers J: Residual function after subtotal spinal cord transaction in adult cats. // Neurology. 8: 518-21, 1958.

154. Windle W.F. Recollection of research in spinal cord regeneration // Exp. Neurol. -1981.-Vol.7, N.l-P.1-5

155. Woerly S. et al. Heterogenous PHPMA hydrogels for tissue repair and axonal regeneration in the injured spinal cord. // Biomater. Sci Polym Ed 1998 9(7): 681-711

156. Woolf CJ, Shortland P, Coggeshall RE: Peripheral nerve injury triggers central sprouting of myelinated afferents. // Nature. 355(6355): 758, 1992.

157. Wu S., Suzuki Y., Noda Т., et al. Immunohistochemical and electron microscopic study of invasion and differentiation in spinal cord lesion of neural stem cells grafted through cerebrospinal fluid in rat. // J. Neurosci. Res. 2002. V. 69. P. 940-945.

158. Xu X.M., Guenard V., Kleitman N., Bunge M.B. Axonal regeneration into Schwann cell-seeded guidance channels grafted into transected adalt rat spinal cord//J. Сотр. Neurol. 1995- Vol. 351 -P.145-160.

159. Yick LW; Wu W; So KF; Yip HK; Shum DK Chondroitinase ABC promotes axonal regeneration of Clarke's neurons after spinal cord injury. // Neuroreport 2000 Apr 7; 11(5): 1063-7

160. Z'Graggen W.J. et al. Functional recovery and enchanced corticofugal plasticity after unilateral pyramidal tract lesion and blocade of myelin associated neurite growth inhibitors in adalt rats. // J Neurosci. 1998- Vol. 18- P.4744-4757.

161. Zlokovic BV, Apuzzo ML: Cellular and molecular neurosurgery: pathways from concept to reality— part 1: target disorders and concept approaches to gene therapy of the central nervous system. // Neurosurgery. 40(4): 789-803; discussion 03-4, 1997

162. Zuo J; Neubauer D; Dyess K; Ferguson ТА; Muir D Degradation of chondroitin sulfate proteoglycan enhances the neurite-promoting potential of spinal cord tissue. // Exp Neurol 1998 Dec;154(2):654-62