Автореферат и диссертация по медицине (14.00.15) на тему:Глиоваскулярные взаимоотношения в анапластических астроцитарных опухолях головного мозга (электронно-микроскопическое и иммуногистохимическое исследование)

ДИССЕРТАЦИЯ
Глиоваскулярные взаимоотношения в анапластических астроцитарных опухолях головного мозга (электронно-микроскопическое и иммуногистохимическое исследование) - диссертация, тема по медицине
АВТОРЕФЕРАТ
Глиоваскулярные взаимоотношения в анапластических астроцитарных опухолях головного мозга (электронно-микроскопическое и иммуногистохимическое исследование) - тема автореферата по медицине
Мозеров, Сергей Алексеевич Москва 2005 г.
Ученая степень
доктора медицинских наук
ВАК РФ
14.00.15
 
 

Автореферат диссертации по медицине на тему Глиоваскулярные взаимоотношения в анапластических астроцитарных опухолях головного мозга (электронно-микроскопическое и иммуногистохимическое исследование)

На правах рукописи

МОЗЕРОВ Сергей Алексеевич

ГЛИОВАСКУЛЯРНЫЕ ВЗАИМООТНОШЕНИЯ В АНАПЛАСТИЧЕСКИХ АСТРОЦИТАРНЫХ ОПУХОЛЯХ ГОЛОВНОГО МОЗГА (электронно-микроскопическое и иммуногистохимическое исследование)

14.00.15 - патологическая анатомия, 03.00.25 - гистология, цитология, клеточная биология

Автореферат диссертации на соискание ученой степени доктора медицинских наук

МОСКВА 2005

Работа выполнена в Медицинском институте Пензенского государственного университета.

Научные консультанты:

доктор медицинских наук Чаиркин И. Н.;

доктор медицинских наук, профессор Сосунов А. А.

Официальные оппоненты:

доктор медицинских наук, профессор Швалев В. Н.;

доктор медицинских наук, профессор Туманов В. П.;

доктор медицинских наук, профессор Райхлин Н. Т.

Ведущая организация - ГУ НИИ морфологии человека РАМН.

Защита состоится «_»_200_г., в «_» часов, на заседании диссертационного совета Д 208.072.04 ГОУ ВПО Российский государственный медицинский университет Министерства здравоохранения Российской Федерации (117997, г. Москва, ул. Ост-ровитянинова, д. 1).

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке университета (117997, г. Москва, ул. Островитянинова, д. 1).

Автореферат разослан «_»_2005_г.

Ученый секретарь

диссертационного совета

доктор медицинских наук, профессор

Щеголев А. И.

ОБЩАЯ характеристика работы

Актуальность темы. Кровоснабжение опухолевой ткани имеет огромное значение для ее прогрессии и прогноза. Известно, что для любой опухоли требуется образование новых сосудов, этот процесс необходим для роста опухоли более 0,2 см в диаметре (Demeule M, Regina A., 2004). В последнее время достигнут значительный прогресс в понимании механизмов неоангиогенеза, охарактеризованы индукторы и ингибиторы ангиогенеза, которые регулируют пролиферацию и миграцию эндотелиальных клеток (Hanahan, 1996). В то же время литературные данные показывают, что большее внимание уделяется морфологическому исследованию клеточного состава, строению опухолевых клеток, тканевому атипизму, наличию или отсутствию вторичных изменений в опухоли (некроз и кровоизлияние (Nafe R., Schlote W., 2004)), а ультраструктурное исследование сосудов и периваскулярной области практически не проводилось.

В настоящее время морфологическому изучению опухолей нервной системы посвящено большое число исследований (Wahl et. al, 1991; Rutten et. al, 1992; Pascual-Castroviejo et. al, 1995; Liberski, Kordek, 1997; Demuth Т., Berens M. E., 2004; Hartmann C, et al., 2005). Однако данный раздел онкологии остаётся одним из наименее изученных, что связано со сложностью структурной организации нервной системы (Zorzi et. al, 1992; Scarpelli et. al, 1994; Tomlinson et. al, 1994).

Наиболее распространенным видом опухолей головного мозга являются астроцитарные опухоли, отличающиеся значительной вариабельностью структуры в зависимости от степени анаплазии (Burger, Scheithauer, 1994; Escalone Zapata, 1994; Bertossi et. al, 1997). В последнее время в диагностике опухолей стали широко использоваться иммуногистохимические методы, основанные на выявлении белков, специфичных для клеток разного гистогенетического происхождения (Zorzi et. al, 1992; Luo, 1993; Huang et al., 1996). Несмотря на значительные достижения в этой области, многие вопросы остаются недостаточно выясненными: в частности, некоторые антигенные характеристики клеток пролиферирующих сосудов и гигантских клеток, распределение трех изоформ NO синтазы в тканях опухолей. Противоречивые данные относятся даже к выявлению глиального фибриллярного кислого белка (ГФКБ) - иммуноположительные клетки

встречаются при всех опухолях астроцитарного ряда, но степень реакции различается и зависит не только от степени злокачественности опухоли, но и от местных тканевых особенностей строения опухолей (Березин, 1985; Burger P. С. et al., 1991; Коршунов А. Г., Лахтее-ва С. В., 1998).

В прогрессии опухолей головного мозга немаловажное значение придается пролиферации кровеносных сосудов (Jansen M.et al., 2004; Demeule Met al., 2004). Взаимосвязь опухолевых клеток с кровеносными сосудами, хотя и описана в ряде работ (Sumpio В. Е. et al., 2002), остается недостаточно выясненной, особенно методом имму-ногистохимии и электронной микроскопии.

Также в работе большое внимание уделяется важной проблеме, которая нередко становится основной причиной смерти больных -проблеме нарушения гематоэнцефалического барьера (ГЭБ). Морфологическому изучению нарушения гематоэнцефалического барьера при опухолях головного мозга посвящено большое число исследований (Bertossi M. et al., 1997; Demeule M. et al., 2004). Однако остается множество нераскрытых вопросов и самый главный из них: каковы структурные причины нарушения гематоэнцефалического барьера.

Цель исследования. Целью работы является изучение ультраструктурных и иммуногистохимических особенностей пролифери-рующих сосудов микроциркуляторного русла и периваскулярной области в анапластических астроцитарных опухолях головного мозга, а также исследование экспрессии белков промежуточных фила-ментов и других антигенных свойств опухолевой ткани астроцитом разной степени дифференцировки.

Задачи исследования. В связи с вышеизложенным были поставлены следующие задачи:

1. Электронно-микроскопически и иммуногистохимически исследовать структурные проявления нарушения гематоэнцефалического барьера при астроцитарных анапластических опухолях головного мозга.

2. Исследовать изменения в ультраструктуре эндотелиоцитов, перицитов и астроцитов (в области контактов отростков астроцитов с базальной мембраной эндотелия).

3. Электронно-микроскопически и иммуногистохимически изучить перифокальную зону при анапластическх астроцитарных опухолях головного мозга.

4. Изучить экспрессию ряда иммуногистохимических маркеров (ГФКБ, виментин, белок S-100, нейрофиламенты, коллаген IV типа, пролиферационный маркер К-67, онкопротеин р53) в анапластиче-ских астроцитарных опухолях головного мозга и в периопухолевой зоне.

5. Провести анализ экспрессии NO-синтазы (три изоформы) в опухолях головного мозга астроцитарного ряда.

Научная новизна работы. В результате проведенных исследований получены следующие основные новые данные:

♦ интерстициальный отек и набухание отростков и тел астроци-тов наиболее выражены в тех периваскулярных пространствах, где наблюдается значительное утолщение базальной мембраны со снижением ее электронной плотности;

♦ пролиферирующие кровеносные капилляры отличаются спаз-мированным просветом и усиленным развитием внеклеточного пе-риваскулярного компонента (резкое утолщение эндотелиальной ба-зальной мембраны и большое число волокон коллагена);

♦ в сосудистых клубках пролиферирующий эндотелий является виментин-иммунопозитивным и N0 синтаза (три изоформы) - имму-нонегативным;

♦ некоторые периваскулярные гигантские клетки глиобластом являются ГФКБ-иммунонегативными и не содержат промежуточные филаменты в цитоплазме перикариона;

♦ многие опухолевые астроциты в астроцитарных опухолях являются N0 синтаза (три изоформы) - иммунопозитивными. Максимальная степень иммунореактивности выявлена для индуцибельной формы N0 синтазы;

♦ в анапластических опухолях встречается большое число атипических клеток, которые теряют способность экспрессировать ГФКБ; характерный маркер для данного типа клеток.

• установлено, что в периопухолевой зоне возникает гиперплазия астроцитарной глии и многие ГКФБ-иммунопозитивные реактивные астроциты не экспрессируют виментин.

Научно-практическое значение работы. Результаты исследований значительно расширяют представления о межклеточных взаимосвязях в ткани опухолей головного мозга и периопухолевой зоне, структурных причинах нарушения гематоэнцефалического барьера и функционально неполноценного ангиогенеза. Полученные данные позволяют дифференцированно подходить к выбору иммуногисто-химических маркеров в диагностике конкретно взятой опухоли. Эти данные могут быть использованы патоморфологами при диагностике и дифференциальной диагностике опухолей головного мозга, а также материал может быть использован в учебных курсах гистологии, патологии и невропатологии.

Основные положения, выносимые на защиту

1. Ультраструктурная и иммуногистохимическая характеристика пролиферирующих кровеносных сосудов и неопластических астро-цитов в опухолевой ткани и периопухолевой зоне.

2. Экспрессия белков цитоскелета и других иммуногистохимиче-ских маркеров в анапластических опухолях головного мозга.

3. Закономерности экспрессии 3-х изоформ КО-синтазы в астро-цитарных опухолях головного мозга.

Апробация работы. Материалы и основные положения диссертации доложены и обсуждены на конференции «Гистохимический анализ изменчивости и регенерации тканей» (г. С.-Петербург, 1997); конференциях молодых ученых Мордовского госуниверситета им. Н. П. Огарева (Саранск, 1997, 1998); Международном симпозиуме «Структура и функции вегетативной нервной системы» (г. Воронеж, 1998); Областной научно-практической конференции «Актуальные вопросы клинической и экспериментальной медицины» (Пенза, 2000); Областной научно-практической конференции «Актуальные вопросы клинической медицины» (Пенза, 2004).

Внедрение в практику. Полученные данные позволяют дифференцированно подходить к выбору иммуногистохимических марке-

ров в диагностике конкретно взятой опухоли. Эти данные могут быть использованы патоморфологами при диагностике и дифференциальной диагностике опухолей головного мозга; также материал может быть использован в учебных курсах гистологии, патологии и невропатологии.

По материалам диссертации опубликовано 18 научных работ.

Структура и объем диссертации. Диссертация изложена на 211 страницах машинописи, состоит из введения, 4 глав, заключения, выводов, списка литературы, 87 рисунков. Список литературы включает 430 наименований, из которых 44 отечественных и 386 иностранных.

ОСНОВНОЕ СОДЕРЖАНИЕ РАБОТЫ

Материалы и методы исследования

Исследования выполнены на материале астроцитарных опухолей головного мозга человека.

Использовали операционный материал, полученный из нейрохирургического отделения Областной клинической больницы им. Н. Н. Бурденко (г. Пенза), Республиканской клинической больницы (г. Саранск) и института нейрохирургии им. А. Л. Поленова (г. С.-Петербург).

После получения операционного материала кусочки ткани без видимого некроза и кровоизлияний фиксировали в фиксаторе в глута-ровом альдегиде на фосфатном буфере от 12 до 24 часов и заливали в эпон-аралдитовые блоки.

Количество изученных опухолей по отдельным нозологиям представлено в табл. 1.

Нозологическая Количество изученных случаев

форма опухоли Электронная микроскопия Иммуногистохимия

Астроцитома 13 58

- фибриллярная 3 23

- протоплазматическая 2 8

- пилоцитическая 3 12

- анапластическая 5 15

Глиобластома 9 17

Гемангиобластома 1 4

Всего опухолей 23 79

Электронно-микроскопическое исследование

Для разрешения поставленных задач мы забирали и фиксировали удаленные во время операций участки тканей исследуемых опухолей.

Фиксацию материала осуществляли погружением кусочков ткани в 2 %-м растворе параформа с 2 %-м раствором глутарового альдегида на 0,1M фосфатном буфере (рН 7,2) в течение 12-24 часов при 14-5 °С. Затем материал промывали 0,15М (рН 7,2) фосфатным буфером (3 смены по 30 минут) и производили дополнительную постфиксацию в 1%-м растворе осмиевой кислоты на 0,2М фосфатном буфере (рН 7,2) - 2 часа (t 4-5 °С).

Для обезвоживания кусочки постепенно проводили через спирты возрастающей концентрации до абсолютного этанола (50, 70, 96, 100% - 3 смены по 30 минут), затем использовали две смены ацетона.

Перед заливкой проводили пропитку материала в смеси эпоксидных смол с ацетоном в соотношении 1:1 в течение 24 часов. Для полного замещения органических растворителей кусочки помещали в чистую заливочную смесь без ацетона на 30 минут при t 60-50 °С. Полимеризацию проводили в течение 2 суток при 60-50°С.

Перед приготовлением ультратонких срезов делали полутонкие срезы, окрашенные толуидиновым синим по J. Lynn (1965).

После обнаружения в полутонких срезах наиболее интересных участков и прицельной заточки пирамидки получали ультратонкие срезы на ультрамикротоме Ultrocut-Reichert. Контрастировали ура-нилацетатом и цитратом свинца по J. Venable, R. Coggeshal (1965) и просматривали в электронном микроскопе ЭБМ-100 при ускоряющем напряжении 75-80 кв.

Иммуногистохимическое исследование

Материал фиксировали в 4%-м параформальдегиде и 0,25%-м глу-таровом альдегиде на ОД М фосфатном буфере (рН 7,2) в течение 4 часов. После традиционного обезвоживания кусочки ткани заливали в парафин. С полученных таким образом блоков на микротоме готовились срезы толщиной по 5-7 микрон. Срезы снимались специальной кисточкой в ванночку на воду, температура которой была 36-38,5 °С. В дальнейшем переносились на чистые предметные стёкла, предварительно обработанные белком. Затем срезы подвергались сушке в термостате при температуре 37-50 °С в течение суток и охлаждались до комнатной температуры. Процесс дальнейшей обработки срезов включал в себя депарафинирование и регидратацию, которые заключались в следующем: ксилол 2 - смены по 1,5 минуты каждая, абсолютный спирт - 1 минута, 90%-й спирт - 1 минута, 70%-й спирт - 1 минута, 50%-й спирт - 1 минута. Далее срезы промывались в нескольких сменах фосфатного буфера.

Для иммуногистохимического исследования использовали первичные антитела против:

ГКФБ - поликлонал из кролика DAKO (Z 0334) 1:1000, виментин - поликлонал из овцы Affinity Biologicals Inc. (CAVM-AP) 1:1000,

коллаген 4 моноклонал (Клон ]У-4Н12) Calbiochem 1:1000, SI00 бета-поликлонал из кролика DAKO (А 5110) 1:500, енолаза нейрональная моноклон (клон NSE-P2) BD Biosciences Phanningen 1:1000,

нейрофиламенты 200 поликлонал из кролика SIGMA (N4112)1:1000,

нейрофиламенты 160 моноклонал (Клон NN18) SIGMA 1:1000.

nNOS polyclonal from rabbit ALEXIS (ALX-210-529) 1:500, eNOS polyclonal from rabbit ALEXIS (ALX-210-505) 1:1000, iNOS polyclonal from rabbit ALEXIS (ALX-210-503) 1:200, P53 monoclonal (clone 80) BD Biosciences Pharmingen 1:250, Ki-67 monoclonal (Clone Ki67) Chemicon 1:500. MIB polyclonal (RB4537/4538) Abgent 1:100.

В связи с тем, что проведение иммуногистохимической реакции встречает ряд трудностей, необходимо создать определённые оптимальные условия, которые, с одной стороны, повысили бы эффективность взаимодействия антигена с антителом, а с другой, свели бы к минимуму неспецифическое окрашивание - фон. С этой целью использовали целый набор приёмов обработки срезов перед их инкубацией с первыми специфическими антителами. Для этого в методику были включены ещё два этапа. Первый - инкубация с 0,1%-м раствором протеолитического фермента трипсина («Sigma», США) при температуре 37,5 °С в течение 20 минут. Второй - инкубация срезов в 10%-м растворе неимунной сыворотки крупного рогатого скота, приготовленной на фосфатном буфере в течение 20 минут при комнатной температуре.

Процент разведения растворов определялся опытным путём. После инкубации в сыворотке срезы не промывались и не высушивались, а обводились вокруг фильтровальной бумагой. В связи с тем, что на части материала в качестве маркера антител использовалась пероксидаза хрена, в методику включался ещё один этап - ингибиро-вание эндогенной пероксидазы.

Срезы инкубировались с 0,2%-й перекисью водорода на фосфатном буфере в течение 20 минут при комнатной температуре. После инкубации срезы подвергались двухкратной промывке в фосфатном буфере по 5 минут.

Иммуногистохимический анализ опухолей был проведён «непрямым» пероксидазным методом, когда в качестве метки «вторых» антител использовалась пероксидаза хрена (фирма «Sigma», США).

Результаты собственных исследований

1. Характеристика кровеносных сосудов в опухолевой ткани.

Основное внимание в данной части работы будет уделено ультраструктуре пролиферирующих кровеносных сосудов и окружающих клеток в опухолях. Сосудистый компонент в строении нейроэкто-дермальных новообразований может быть сложного состава, обусловленного разнообразием строения кровеносных сосудов в различных опухолях одного гистогенеза и даже в различных участках одной и той же опухоли.

Эндотелий капилляров центральной нервной системы отличается от эндотелия других сосудов наличием плотных межклеточных контактов, малой пиноцитозной активностью и отсутствием пор и фе-нестр. Именно такие структурные особенности эндотелия наряду с периваскулярными клетками и астроцитарной периваскулярной оболочкой, как полагают (Kimelberg Н. К., 2004; Banks W. А, 2005), определяют барьерную функцию кровеносных капилляров центральной нервной системы.

Собственное электронно-микроскопическое исследование показало значительное изменение в строении стенки капилляров при ана-пластических опухолях астроцитарного ряда. Изученные новообразования отличались значительной пролиферацией кровеносных сосудов. Выраженность пролиферации кровеносных сосудов прямо зависела от степени анаплазии опухолей. В опухолях происходит разрастание мелких сосудов со значительной перестройкой структуры их стенки вследствие беспорядочного размножения клеток (в основном эндотелиальных).

В исследованных опухолях мы часто обнаруживали набухание эндотелиальных клеток, выстилающих просвет кровеносного сосуда, который при этом максимально суживался или практически перекрывался.

Морфология эндотелиальных клеток отличалась выраженным полиморфизмом. Размеры, форма и степень осмиофилии цитоплазмы значительно варьировались. Ядра эндотелиоцитов также отличались разнообразием форм - от округлых до веретено- и палочковидных, наиболее часто встречались овальные ядра. Отдельные клетки имели

неправильные «контуры» ядер и отличались глубокими инвагинациями ядерной оболочки.

Встречались многоядерные эндотелиоциты с ядрами разнообразной формы и величины, а также эндотелиальные клетки с сегментированными ядрами, разделенными узкими перемычками.

Значительная вариабельность была отмечена со стороны ядерного хроматина: в отдельных клетках он был гомогенно диспергированный, в других находился в виде крупных глыбок обычно вблизи ка-риолеммы, изредка встречались крупные ядрышки.

Сужение просвета микрососудов в основном было связано с большими размерами эндотелиальных клеток, причем их люминаль-ная поверхность имела незначительное число выростов. Только единичные микрососуды имели переплетающиеся выросты люминаль-ной поверхности эндотелиальных клеток.

Электронно-микроскопически эндотелиальные клетки отличались низкой электронной плотностью цитоплазматического матрикса и . многочисленными органеллами, в частности большим числом митохондрий, многие из которых были с редуцированными кристами. Особенностью эндотелиальных клеток в опухолевой ткани глиобла-стом и анапластических астроцитом является наличие хорошо развитого белоксинтетического аппарата, который зачастую находился в периферических отделах клеток. В эндотелиоцитах находились большое количество свободных рибосом и рибосом, связанных с расширенными, беспорядочно расположенными мембранами эндоплазма-тической сети, а также крупный пластинчатый комплекс Гольджи, хотя встречаются капилляры, в которых цитоплазма набухших эндо-телиальных клеток как бы гомогенизирована, «запустевшая». В ней обнаруживаются лишь мелкие единичные цистерны эндоплазматиче-ского ретикулума и набухшие митохондрии.

Отдельные эндотелиальные клетки содержали осмиофильные структуры тельца Вейбеля-Паладе - органеллы, связанные с плазмо-леммой и содержащие фактор Виллебранда. Они имели вид овальных, ограниченных элементарной мембраной, осмиофильных образований размером от 0,3 до 1,5 мкм. Эти тельца часто находились в крупных отростках клеток и располагались без какой-либо связи с другими органеллами. Органеллы скапливались в основном в пери-

ферических отделах клеток. Количество телец Вейбеля-Паладе увеличивалось в наиболее злокачественных опухолях (большее количество обнаруживалось в глиобластомах).

В неизмененных микрососудах опухолей эндотелиальные клетки содержали большое количество пиноцитозных пузырьков, обычно находящихся на аблюминальной поверхности. В то же время в про-лиферирующих микрососудах, в цитоплазме эндотелиальных клеток, микропиноцитозные везикулы отсутствовали.

Отростки клеток, в безъядерной части цитоплазмы, различались по ультраструктуре цитоплазмы, некоторые содержали большое число микротрубочек и филаментов, другие - преимущественно вытянутые, узкие цистерны зернистой эндоплазматической сети. Электронная плотность цитоплазматического матрикса отростков также значительно изменялась и соответствовала как «темным» гиперхром-ным, так и «светлым» клеткам.

Таким образом, эндотелиальные клетки, в основном в пролифери-рующих кровеносных сосудах, также подвержены значительным изменениям.

Проведенное исследование показало, что эндотелиальные клетки, в анапластических астроцитарных опухолях, обычно формировали специализированные плотные контакты разной протяженности друг с другом, нарушения межэндотелиальных соединений не было обнаружено.

В скоплениях пролиферирующих клеток стенок кровеносных сосудов часто встречались апоптически измененные клеточные профили. Они отличались высокой степенью конденсации ядерного хроматина и наличием фрагментации цитоплазмы на отдельные, окруженные мембранами осмиофильные образования.

Характерным признаком большинства микрососудов в глиобла-стомах является значительное изменение периваскулярной области. Особенно ярко такие изменения были выражены около сосудов мик-роциркуляторного русла. Здесь, во-первых, происходило значительное утолщение нередко до нескольких микрометров базальной мембраны эндотелия. Во-вторых, отростки астроцитов выглядели утолщенными, вероятно, за счет их набухания; в-третьих, повышалось число коллагеновых волокон.

Иногда даже рядом расположенные сосуды значительно различались по строению базальной мембраны, в одних она имела вид тонкой осмиофильной пластинки, в других наблюдалось значительное утолщение нередко до нескольких микрометров. Степень электронной плотности материала базальной мембраны неодинакова, встречаются участки с низкой электронной плотностью и участки с высокой степенью электронной плотности.

Возможно, что низкая электронная плотность материала базаль-ной мембраны отдельных кровеносных сосудов может свидетельствовать о нарушении клеток, ее производящих. Интересной особенностью являлся тот факт, который подтверждал данную теорию: процессы интерстициального отека и набухание отростков и тел астро-цитов наиболее выражены в тех периваскулярных пространствах, где наблюдалось значительное утолщение базальной мембраны со снижением ее электронной плотности.

Электронно-плотный материал «утолщенной» базальной мембраны часто определялся между пролиферирующими клетками стенки сосудов, что приводило к «нарушению целостности» ее контуров.

Коллагеновые волокна обычно располагались со стороны астро-цитарных отростков, окружающих периваскулярное пространство, в некоторых сосудах их количество было значительным. Развитие волокон коллагена вокруг сосудов значительно изменялось - от небольшого их числа до образования больших прослоек, располагающихся и в широких межклеточных пространствах,окружающих сосуды астроцитов. Около сосудов нередко определялись клетки без ба-зальной мембраны, окруженные широкими пространствами, заполненные волокнами коллагена.

Высокое содержание коллагена подтверждалось и иммуногисто-химически - большая часть кровеносных сосудов и клубки пролифе-рирующих капилляров в тканях анапластических астроцитарных опухолей отличались высокой иммунореактивностью на коллаген IV. Положительная реакция на коллаген IV отмечалась также в перива-скулярном пространстве. Возможно, что усиленный синтез коллагена связан с несостоятельностью новообразованных кровеносных сосудов и связанной с этим гипоксией.

Можно отметить, что выраженность изменений периваскулярной оболочки прямо коррелировала со степенью анаплазии опухолей;в анапластических астроцитомах и глиобластомах было значительно больше периваскулярного соединительно-тканного компонента в сравнении с низкозлокачественными опухолями.

Межклеточный матрикс имел практически всегда низкую электронную плотность. «Просветление» внеклеточного матрикса может быть связано как с особенностями его организации, большого содержания гиалуроновой кислоты, так и с отеком.

При электронно-микроскопическом исследовании астроцитом с выраженной атипией опухолевой ткани (Ш-ГУ степени) на малых увеличениях микроскопа отмечается большое сходство их субмикроскопического строения со строением доброкачественных астроцитом (ЬП степени). Прежде всего, обращает на себя внимание характерная рыхлость расположения опухолевых клеток и их отростков, между которыми выражены разные по величине свободные межклеточные пространства. Даже в местах более тесного расположения опухолевых клеток их цитоплазматические тела обычно на большем протяжении своей периферии не соприкасаются непосредственно с телами прилежащих клеток. Обычно широкие межклеточные пространства на разном протяжении заняты многочисленными клеточными отростками, которые на поперечных ультратонких срезах представлены округлыми или неправильно-овальной или продолговатой лентовидной формы профилями. На поперечных или косых срезах отростков в их цитоплазме видны мелкие митохондрии, гладкостенные везикулы и глиофибриллы. В тех же отростках опухолевых клеток, в которых ультратонкий срез прошел вдоль их продольной оси, видны продольные укладки глиофибриллярных структур.

Форма опухолевых клеток анапластических астроцитом самая различная, но в основном можно различать не совсем правильную округлую, овальную или угловатую форму с небольшим числом первичных отростков. Опухолевые клетки значительно различались по степени осмиофильности цитоплазматического матрикса.

Цитоплазма опухолевых клеток, в разных участках одной опухоли, может существенно отличаться своим строением. В одних опухолевых клетках на большем протяжении ультратонкого среза цито-

плазма выполнена нежно-хлопьевидными уплотнениями цитоплаз-матического матрикса, на фоне которого располагаются единичные рибосомы или полисомы, единичные небольшие гладкостенные везикулы. В целом везикулярный компонент цитоплазмы опухолевых клеток атипических астроцитом слабо выражен.

Цитоплазма отдельных опухолевых клеток относительно бедна органоидами, в них отмечают явления набухания или конденсирования. Низкая степень «насыщенности» рибосомами шероховатого эн-доплазматического ретикулума, относительно небольшое количество свободных рибосом также было типично для многих клеток, особенно глиобластом.

Однако некоторые опухолевые астроциты характеризовались гиперплазией гладкого эндоплазматического ретикулума, узкие цистерны и канальцы которого нередко образовывали крупные скопления, занимающие значительную часть перикариона клеток. В области пластинчатого комплекса Гольджи находилось большое число полиморфных везикул с электронно-светлым содержимым. В околоядерной области и начальных отделах крупных отростков часто определялись липидные капли, нередко образующие большие скопления. Около липидных включений встречались и неправильной формы осмиофильные образования.

Также анализ ультраструктуры опухолевых клеток показал, что большинство из них астроцитарного происхождения, так как содержат большое число глиофиламентов, образующих компактные скопления и нередко высокоосмиофильные агрегаты - волокна Розента-ля. Большая часть периваскулярных астроцитов, содержащих глио-филаменты, были в состоянии набухания.

Значительная вариабельность была отмечена со стороны ядерного хроматина - в отдельных клетках он был гомогенно диспергированный, в других находился в виде крупных глыбок обычно вблизи ка-риолеммы, изредка встречались крупные ядрышки. Обращала внимание «изрезанность» контуров ядер большинства клеток вследствие глубоких инвагинаций ядерной оболочки.

В опухолевых клетках одних наблюдений встречается большое количество небольших митохондрий правильной овальной формы со сравнительно хорошо сформированными кристами. Кристы часто

полностью пересекают плотный митохондриальный матрикс от стенки к стенке. В опухолевых клетках других наблюдений чаще встречаются митохондрии неправильной овально вытянутой формы с булавовидными расширениями на обоих концах или с одной стороны.

Матрикс большинства митохондрий нежно-хлопьевидный уплотненный, причем в участках митохондрий, лишенных крист, он менее плотен и светлее, и более плотный по периферии в зоне расположения крист.

При набухании митохондрии округляются, матрикс их просветляется, кристы укорачиваются и как бы разбухают, внутрикристное пространство становится шире.

Среди астроцитом с выраженной атипией опухолевой ткани встречаются опухолевые клетки, в цитоплазме которых располагаются митохондрии гигантских размеров.

Характерно, что в пределах ультратонкого среза опухолевой клетки мы обычно обнаруживаем тесно прилежащие к ее плазматической мембране отростки других опухолевых клеток. Иногда в таких отростках осмиофильные структуры формировали сетевидные образования. По данным субмикроскопических исследований макроглиаль-ных и других опухолей мозга мы не встречали в публикациях описаний подобных структур.

Некоторые гигантские клетки в расширенных цистернах эндо-плазматической сети содержали слабоосмиофильный гомогенный материал.

Перифокальная зона опухолей головного мозга астроцитарного ряда

Перифокальная зона является продуктом жизнедеятельности опухолевых клеток и в то же время предохраняет ткань мозга от непосредственного контакта с очагом злокачественного роста.

По нашим данным, в ближайших к очагу опухоли участках мозга отмечаются гиперплазия астроцитов (реактивной астроглии) и выраженный отек.

Отек проявляется скоплением жидкости как вокруг кровеносных сосудов, так и диффузно между миелиновыми волокнами, что приводит к их разрежению.

При отеке мозга также наблюдаются набухание и пролиферация различных видов клеток глии. Изменение со стороны астроцитов проявляется в виде разрыхления контуров клеток, увеличения объема клеток и распада отростков. Олигодендроциты также подвергаются набуханию, при этом тела олигодендроцитарных клеток увеличиваются и подвергаются гидропической дистрофии, часто в цитоплазме появляются многочисленные лизосомы.

При электронно-микроскопическом исследовании перифокальной зоны опухолей обнаруживались капилляры диаметром от 4 до 8 мкм и более крупные кровеносные сосуды с нормальным строением их стенок. Стенка многих капилляров была сформирована одним слоем эндотелиальных клеток, к которым снаружи в виде чехла на всем их протяжении сравнительно плотно прилежала однослойная базальная мембрана, к которой тесно прилежат отростки астроцитов. Базальная мембрана представлена тонким слоем нежно-фибриллярного уплотненного материала толщиной 20-45 нм, который окутывает слой выстилающих просвет сосуда эндотелиальных клеток на всем протяжении. Иногда в расщеплениях базальной мембраны в плоскости ультратонкого среза встречались фрагменты перицита.

Практически во всех опухолевых клетках отмечаются изменения со стороны митохондрий. Они утрачивают свою овальную форму, матрикс их становится светлее, и наблюдается разрыв митохондри-альной мембраны.

В участке мозга, непосредственно примыкающем к опухоли, выявляются выраженные изменения - очаги размягчения и демиелини-зации. Кроме того, определяется область повреждения с различной величины полостями округлой формы и заполненными отечной жидкостью.

При исследовании кровеносных сосудов периопухолевой ткани мы не выявили заметной гиперплазии эндотелиальных клеток, формирующих однослойную выстилку просветов сосудов. Стыкующиеся между собой эндотелиальные клетки, накладываясь друг на друга истонченными узкими участками периферии цитоплазмы, формируют плотные контакты, в цитоплазме эндотелиоцитов отмечается повышенное количество микропиноцитозных пузырьков.

Иммуногистохимическая характеристика опухолей астроцитарного ряда

Степень иммунореактивности и число ГКФБ-иммунопозитивных клеток глиобластом и анапластических астроцитом значительно колебались от опухоли к опухоли, при этом были выявлены противоречивые данные: чаще при нарастании анаплазии число ГФКБ-по-зитивных клеток в опухоли уменьшается (~70-80%), реже наблюдается повышение реакции (^О—30%). Но в то же время выявлена интересная закономерность: вблизи пролиферирующих микрососудов и очагов некроза количество иммунопозитивных клеток и степень реакции возрастают.

Нередко в мультиформных глиобластомах встречались участки, представленные пролифератами из новообразованных кровеносных сосудов, которые были иммунонегативны на ГФКБ, однако рядом с ними нередко в прямом контакте находились иммунопозитивные клетки. Это означает, что типичных астроцитов в этих клубках нет.

Наибольшее число ГФКБ-позитивных клеток находилось вблизи пролиферирующих кровеносных сосудов. Здесь же отмечается увеличение количества, и интенсивность реакции на ГФКБ более выражена в гигантских многоядерных клетках и гемистоцитических аст-роцитах, а в небольших по размерам перикариона клетках реакция на ГФКБ слабая или вообще отсутствует. В пролиферирующих «сосудистых клубках», представленных большим числом переплетающихся капилляров с большим числом окружающих их клеток, реакция на ГКФБ отсутствовала и проявлялась только в астроцитах, находящихся по их периферии. Следует отметить, что если судить по иммуно-гистохимическим реакциям на ГФКБ, астроциты отсутствуют в клеточных пролифератах сосудистых стенок мелких и крупных сосудов. Только изредка в больших разрастаниях клеточных стенок обнаруживались клетки с положительной реакцией на ГФКБ. Возможно, это были астроциты, окруженные разрастающимися клетками стенок сосуда.

Интенсивная реакция определялась в клетках, образующих пери-васкулярные оболочки. Как правило, продукт реакции хорошо выявлялся не только в телах клеток, но и в их отростках.

При сравнительном анализе астроцитарных опухолей разной степени злокачественности на виментин также была выявлена прямая корреляция между степенью анаплазии опухолей и интенсивностью иммуногистохимической реакции. Максимальная выраженность реакции (по числу иммунопозитивных клеток и степени окраски) выявлена в глиобластомах, причем опухоли с гигантскими многоядерными клетками содержали большое число иммунопозитивных преимущественно гигантских опухолевых клеток. Часть эндотелия в пролиферирующих кровеносных сосудах и сосудах без признаков пролиферации была виментин +.

Представляет интерес, что гигантские виментин-позитивные клетки в гигантоклеточных глиобластомах часто находились в непосредственной близости от эндотелия, нередко контактируя с вимен-тин-позитивными эндотелиальными клетками.

Особенно часто гигантские виментин-иммунопозитивные клетки определялись около пролиферирующих кровеносных сосудов, образующих переплетающиеся клубки с крупными эндотелиальными клетками.

В высокоанапластических астроцитомах число клеток с иммуно-позитивной реакцией на виментин было значительно больше (+++), чем в малозлокачественных опухолях (+), виментин-содержащие ас-троциты обычно располагались или по одиночке среди иммунонега-тивных клеток или, что наблюдалось чаще, находились в скоплениях разной величины, разделенных участками опухолевой ткани без им-мунопозитивных клеток. Степень иммунореактивности астроцитов (если судить по степени окраски) варьировалась от светло-коричневого до темно-коричневого цвета.

Нередко в гигантоклеточных глиобластомах встречались участки, представленные крупными клетками с оптически «пустой» цитоплазмой. Такие клетки не давали положительной реакции на ГФКБ и виментин, однако, рядом с ними нередко в прямом контакте находились иммунопозитивные клетки.

Уже отмечалось, что большинство кровеносных сосудов имело хорошо выраженную периваскулярную астроцитарную оболочку и розетковидные астроцитарные структуры (как в высокоанапластиче-

ских формах опухолей, так и доброкачественных), состоящие из им-мунопозитивных клеток и на ГФКБ и на виментин.

Наоборот, иммунореактивность на виментин в «сосудистых клубках» была выражена интенсивно, и большинство клеток в сосудистых клубках были виментин-позитивны. Отдельные клетки в сосудистых клубках были виментинегативны. Интенсивную реакцию на виментин давали также интимальные клетки в пролиферирующих сосудах с тонкими стенками.

Яркой особенностью гигантоклеточных глиобластом является наличие в опухолевой ткани большого количества гигантских клеток самой разнообразной формы и величины. Встречаются гигантские многоядерные клетки самого различного вида. В многоядерных клетках расположение ядер и структура последних могут быть разнообразны. В большинстве случаев ядра в одной и той же гигантской клетке самой разнообразной формы, величины и структуры. Иногда они равномерно располагаются по всему клеточному телу, иногда имеет место как бы нагромождение ядер в одном полюсе клетки. Большинство таких клеток иммунопозитивны на ГФКБ и виментин.

Если сравнивать интенсивность иммуногистохимической реакции (число иммунопозитивных клеток и интенсивность их окраски) в ткани опухолей на ГФКБ и виментин, то, по нашему мнению, в первом случае число иммунопозитивных клеток было несколько меньше (по сравнению с реакцией на виментин). Можно также отметить, что при обработке препаратов на ГФКБ чаще выявлялись разветвленные клеточные отростки.

В периопухолевой зоне увеличивалось количество астроцитов, т. е. возникала гиперплазия астроглии (реактивная астроглия), количество и степень иммунопозитивных клеток на ГФКБ были значительно выше, чем виментин-иммунопозитивных клеток. Также выявлено, что интенсивность реакции была значительно выше в высокоанапластич-ных опухолях (+++), чем в доброкачественных астроцитомах (+).

Для выявления в ткани анапластических астроцитарных опухолей кровеносных сосудов использовали моноклональные антитела против коллагена IV. С помощью данного маркера коллаген IV равномерно определялся по всей толще стенки кровеносных сосудов, а также вокруг сосудов положительно реагировал соединительно-

тканный компонент. Интенсивная реакция отмечалась как в артериях большого диаметра, так и в клубках пролиферирующих капилляров.

Интерес представляет тот факт, что в опухолевой ткани изредка выявлялась слабоположительная реакция на нейрофиламенты. Возможно, что в ткани глиобластом встречаются участки, состоящие из клеток нейронального происхождения, - это могут быть зрелые нервные клетки или их эмбриональные предшественники нейробласты.

Нейронспецифическая енолаза (NSE) выявлялась практически во всех опухолях, однако распределение фермента сильно варьировалось не только от опухоли к опухоли, но и в различных участках в пределах одной опухоли. Некоторые клетки реагировали более интенсивно в сравнении с соседними участками.

Нейрофиламенты и являются маркерами нейронов, и различие в экспрессии нейрофиламентов и говорит о том, что они реагируют на разные антигены, так как такая закономерность была во всех астроцитарных опухолях без зависимости от степени анаплазии.

В работе была изучена иммунореактивность на три изоформы NO синтазы. Иммунопозитивные клетки на все 3 изоформы можно было обнаружить практически во всех изученных случаях астроци-тарных опухолей, однако в высокоанапластических астроцитомах и глиобластомах их число и степень окраски были значительно выше (+++), чем в доброкачественных (+). Следует отметить, что в неопухолевой ткани пМОБ-позитивные клетки не выявлялись.

В опухолевой ткани анапластических астроцитом и глиобластом многие астроциты были иммунореактивны на эндотелиальную форму N0 синтазы. Реакция эндотелия на эту форму N0 синтазы различалась в разных сосудах и зависела от характера их пролиферации. В сосудах с тонкой эндотелиальной выстилкой без пролиферации интимальных клеток реакция на eNOS была обычно положительной и, наоборот, в сосудистых клубках с массивной пролиферацией клеток реакция была отрицательной.

Аналогичная закономерность в отношении реагирования эндотелия была отмечена и при реакции на iNOS. Использование антител на nNOS не давало положительной реакции эндотелиальных клеток.

В астроцитомах с низкой степенью злокачественности наблюдались единичные NOS-позитивные клетки, которые располагались в опухолевой ткани разрозненно. Реакция наблюдалась в основном в телах астроцитов, отростки практически не окрашивались.

В высокоанапластичных астроцитомах положительная реакция наблюдалась гораздо чаще. Иммунопозитивные клетки располагались в опухоли либо поодиночке, либо в виде скоплений на фоне отрицательно реагирующих клеток.

iNOS-иммунореактивные клетки часто находились около фокусов некроза и в периваскулярных розетках анапластических форм опухолей. Интересно также, что митотически делящиеся клетки, особенно в глиобластомах, нередко были iNOS-иммунопозитив-ными.

Отмечена прямая зависимость между размером анапластических астроцитов и интенсивностью иммуногистохимической реакции: в крупных и гигантских клетках степень окраски была выше, чем в мелких клетках. При этом положительная реакция была как в доброкачественных астроцитомах, так и в злокачественных.

Интерес вызывают гигантские клетки с эксцентрично расположенными ядрами и резко NOS-положительной (на все 3 изоформы) цитоплазмой. Данные клетки располагались либо поодиночке, либо группами среди мелких иммунонегативных клеток.

Белок S-100 бета - это белок, типичный для нейроглии. Проведенное исследование показало, что в большинстве изученных опухолей имеются $-100-иммунореакгивные клетки. Какой-либо зависимости от степени злокачественности опухоли установить не удавалось. Иммунопозитивные клетки даже в одном поле зрения значительно отличались по форме и размерам и встречались как маленькие, так и гигантские многоядерные $-100-иммунопозитивные клетки. S-100 определялся преимущественно в телах и только в некоторых крупных отростках. Интенсивная реакция была отмечена в ядрах клеток.

Иммуноположительные клетки локализовались вне всякой зависимости от их расположения по отношению к сосудам и другим структурным компонентам клетки, и степень их окраски была различной. Иммуноположительная, слабая реакция отмечалась во многих клетках. Однако по сравнению с реакцией на ГФКБ и виментин

количество S-100-положительно реагирующих клеток было значительно меньше.

В пролиферирующих сосудистых клубках, представленных большим числом переплетающихся капилляров с большим числом окружающих их клеток, реакция на белок S-100 отсутствовала.

Несмотря на многочисленные исследования, показывающие, что белок S-100 в нервной ткани в основном сосредоточен в астроцитах ((до 85-90%) Bottiger et al., 2001; Мотин и др., 2002; Heizmann et al., 2002), проведенное нами исследование показывает, что в астроци-тарных опухолях зачастую клетки, положительно реагирующие на ГФКБ, иммунонегативны на белок S-100 и, наоборот, положительно реагирующие клетки на белок S-100 не дают положительную окраску на ГФКБ.

Для изучения закономерностей экспрессии онкобелка р53 в аст-роцитарных глиомах были изучены опухоли с различной степенью злокачественности.

Следует отметить, что нередко в пределах одной и той же опухоли в одних клетках наблюдалась выраженная иммунореактивность ядер, в других же выявлялась более слабая реакция.

В доброкачественных астроцитомах выявлялись единичные р53-позитивные клетки, равномерно разбросанные на значительном расстоянии друг от друга. Анапластические астроцитомы и глиобласто-мы отличались от предыдущих опухолей большей степенью положительной экспрессии онкопротеина р53: в большинстве случаев ана-пластических опухолей выявлялись очаговые скопления окрашенных ядер.

Экспрессия на пролиферационный маркер Ki-67 в опухолях давала противоречивые данные. Проведенное нами исследование показало, что реакция на пролиферационный маркер Ki-67 была выше в доброкачественных астроцитарных опухолях по сравнению с анапла-стическими астроцитомами и глиобластомами, что не соответствует литературным данным о митотической активности в опухолях (Са-valla et al., 1997; Coons et al., 1997; Cunningham et al., 1997; Madsen, Schroder, 1997; Schifferal., 1997).

Также проводилось исследование на другой пролиферационный маркер - МШ. Исследование показало наличие положительной реакции в ядрах лишь единичных клеток. Отмечено, что чем выше была степень анаплазии опухоли, тем в большей степени выявлялась позитивная реакция на МШ в ядрах опухолевых клеток. В сравнении с доброкачественными астроцитомами, где положительная реакция на пролиферативные маркеры либо вовсе не выявлялась, либо выявлялась в единичных опухолевых клетках, при анапластической астроци-томе частота положительно реагирующих клеток на МЮ возрастает.

В работе также проводился анализ ангиобластом (гемангиобла-стом). Диффузная виментин-положительная реакция отмечалась в эндотелиальных клетках сосудов (как пролиферирующих, так и неизмененных), а также полигональных клетках, расположенных как по периферии, так и в центральной части опухоли. На ГФКБ положительно реагировали стромальные клетки опухоли.

В отличие от глиобластом, где имеется выраженный ГФКБ + пе-риваскулярный соединительно-тканный компонент, положительная реакция на коллаген IV выявлялась только в стенке кровеносных сосудов.

Обсуждение

В настоящем исследовании основное внимание обращалось на пролиферирующие сосуды, поскольку процессы ангиогенеза имеют огромное значение для морфогенеза любой опухоли и без развития собственных кровеносных сосудов опухоли не достигают размера более 2 мм (Alberts et al., 2004). Известно, что интенсивность их пролиферации в опухолях головного мозга имеет прямую зависимость от степени анаплазии опухолей, что особенно ярко выражено в аст-роцитарных опухолях (Bertossi et. al., 1997; Burger, Scheithauer, 1994; DeAngelis, 2001; Demeule et al., 2004), и поэтому в работе большое место уделено анализу материала глиобластом и анапластических астроцитом.

Во всех изученных опухолях умеренной или высокой степени анаплазии обнаруживалось большое число пролиферирующих кровеносных сосудов. Обычно они располагались компактно, и в разных

участках опухоли число пролиферирующих сосудов могло значительно различаться.

Подобные пролиферации часто обнаруживаются вокруг очагов некроза, и, по-видимому, они указывают на неполноценность вновь образованных сосудов, которые не способны обеспечить достаточный кровоток и питание ткани опухоли.

Следует обратить внимание на то, что большое число вновь образованных сосудов микроциркуляторного русла определялось только при электронно-микроскопическом исследовании. На гематоксилин-эозиновых препаратах они не идентифицируются или выглядят как округлые образования неясной природы, и только сопоставление электронно-микроскопических препаратов с полутонкими срезами позволяет отнести маленькие клеточные агрегаты, как они выглядят в световом микроскопе, с кровеносными сосудами.

Эндотелиальные клетки, образующие однослойную выстилку или «конгломераты» из пролиферирующих клеток, отличались большим числом осмиофильных гранул Вейбеля-Паладе. Эти гранулы определись как в околоядерной области, так и в крупных клеточных отростках. По данным ряда авторов (Miyagami, Nakamura, 1996), эти тельца преобладают в эндотелии микрососудов в периферических отделах опухолей и в периопухолевой зоне,и с увеличением степени злокачественности увеличивается число таких телец. Наши данные подтверждают данные исследования.

С патологией кровеносных сосудов, в частности с нарушением пористости их стенки, связывают развитие отека мозговой ткани -типичного признака многих опухолей, имеющего большое значение для клинического течения опухоли и прогноза. Структурно, по мнению ряда авторов, это выражается в появлении фенестр, увеличении пиноцитоза в аблюминальной поверхности эндотелия, нарушений базальной мембраны (Hirano et al., 1994; Bertossi et al., 1997; Sumpio et al., 2002; Jansen, 2004).

В изученных опухолях астроцитарного ряда нами также были обнаружены выраженные изменения сосудистой стенки. В эндотелии пролиферирующих микрососудов опухолей мы не обнаружили пи-ноцитозные пузырьки, так же как фенестры и нарушенные межэндо-телиальные контакты, наоборот, эндотелиальные клетки отличались

значительными размерами и толстыми отростками. Все изученные эндотелиальные клетки, ограничивающие просвет сосудов, были связаны друг с другом плотными контактами.

Большое внимание привлекает наружная оболочка вновь образованных сосудов. Из данных литературы известно, что при опухолях головного мозга астроцитарного ряда вокруг кровеносных сосудов утолщается базальная мембрана и происходит ее «расщепление» (Bertossi et al., 1997; Sumpio et al, 2002; Jansen, 2004). Как показало проведенное исследование, характерным признаком большинства кровеносных сосудов в глиобластомах являлось значительное утолщение базальной мембраны эндотелия, нередко до нескольких микрометров , и обильное развитие периваскулярной соединительной ткани, отделяющей сосуды от окружающих опухолевых клеток. Гомогенный материал утолщенной базальной мембраны нередко достигал размеров нескольких микрометров, в нем определялись участки низкой электронной плотности, клеточные отростки, волокна коллагена, что, возможно, и послужило основанием для термина «расщепление» базальной мембраны.

Необходимо обратить внимание, что утолщенная мембрана, прилежащая к эндотелию кровеносных капилляров, может быть следствием изменения не только самих эндотелиальных клеток, но и других клеточных элементов, в частности перицитов и гладкомышечных клеток в мелких артериолах.

Представляет интерес, что большинство пролиферирующих микрососудов было окружено не только утолщенной базальной мембраной, но и большим числом волокон коллагена. Последние обычно лежали ближе к астроцитарным периваскулярным отросткам и практически отсутствовали около интимальных клеток сосудов.

Не совсем ясно происхождение периваскулярного коллагена в опухолевой ткани. Следует рассмотреть несколько возможностей. Во-первых, это активизация синтеза коллагена клетками, которые способны его продуцировать в норме фибробластами. Такая возможность вероятна в более крупных сосудах - артериолах или венулах. Значительно сложнее объяснить процесс коллагенообразования вокруг капилляров, где, как известно, фибробласты отсутствуют. Здесь коллаген-синтетическую способность, возможно, могут проявлять

измененные адвентициальные клетки, нельзя исключить, что часть трансформированных астроцитов также способна к экспрессии белка коллагенов.

Особенностью эндотелиальных клеток в анапластических астро-цитарных опухолях являлось то, что они содержали выраженный бе-локсинтетический аппарат. Поэтому не исключено, что они также принимают участие в образовании коллагена.

В работе было установлено, что гигантские клетки часто обнаруживаются около пролиферирующих сосудов. Обычно гигантские клетки рассматриваются как производные трансформированных аст-роцитов. Однако мы показали, что к стенке некоторых пролифери-рующих сосудов прилежат ГФКБ-иммунонегативные гигантские клетки, такие же клетки определяются и вблизи сосудов, т. е. не все гигантские клетки являются ГКФБ+.

Ультраструктурные исследования подтверждают иммуногисто-химические данные о неравномерном содержании глиальных фила-ментов в клетках, когда наряду с клетками, содержащими большие скопления компактно лежащих филаментов, имелись клетки с немногочисленными диффузно расположенными филаментами. А также встречались гигантские клетки и клетки, похожие на астроциты, не имеющие в цитоплазме глиофиламентов, возможно, что часть из них содержит ГКФБ в нефибриллярной форме в виде протофибрил.

Следует отметить, что вопрос о происхождении гигантских клеток, особенно находящихся в некоторой близости от пролифери-рующих кровеносных сосудов, вызывает большой интерес и до сих пор остается дискутабельный (Mischel et al, 2003; Doolittle, 2004; Merlo A., 2003; Pulford et al., 2004).

Следует отметить, что, несмотря на выраженную активацию ан-гиогенеза, он во многом «несовершенен» и поэтому в ткани опухоли отмечаются застойное полнокровие, сужение просвета, явления стаза, тромбоза, а также гиперплазия эндотелия. Известно: при опухолях стенка отдельных сосудов подвергается гиалинозу и склерозу; встречаются также периваскулярные кровоизлияния и воспалительные инфильтраты (Земская, Лещинский, 1985).

Большинство опухолевых клеток в изученных астроцитарных опухолях содержало большое число глиальных филаментов, при

этом в доброкачественных астроцитомах (I-II степени) было больше клеток с большим количеством глиофиламентов. Они обнаруживались и в околоядерной области, и в клеточных отростках разной величины. Часто обнаруживались компактные, осмиофильные скопления филаментов - розенталевские волокна.

По данным некоторых авторов наблюдается закономерность в экспрессии ГФКБ и виментина в опухолях разной степени злокачественности: в менее дифференцированных опухолях (глиобластомы и аннапластические астроцитомы) увеличивается число виментин-им-муноположительных клеток, в астроцитомах - относительно больше клеток иммуноположительных на ГФКБ (Березин, Белик, 1990; Вяльцева и др., 1996).

Проведенное исследование также показало, что число ГФКБ-им-мунопозитивных клеток примерно на 20-30 % уменьшалось, а число виментин-иммунопозитивных клеток возрастало также на 20-30 %, с увеличением степени злокачественности. Характерной чертой гли-областом является их резко выраженная склонность к некрозам коа-гуляционного типа, и особенно характерны милиарные некрозы, которые бывают различной величины (Bell, 2001; DeAngelis, 2001). Собственное исследование показало, что такие некрозы обычно окаймлены зоной мелких опухолевых клеток вытянутой формы, дающие интенсивную реакцию на ГФКБ и виментин.

В настоящем исследовании впервые показано, что некоторые гигантские клетки, расположенные около сосудов, были иммунонега-тивны на глиальный фибриллярный кислый белок.

Представляют большой интерес природа и происхождение проли-ферирующих клеток в стенке вновь образованных кровеносных сосудах. Традиционно данные клетки рассматривались как эндотелиаль-ные. Однако в последнее время появились данные, что, по крайней мере, их часть может являться гладкомышечными клетками и перицитами (Stiles et al., 1997; Du Plessis et al., 2004). Иммуногистохимически нами выявлено, что только часть клеток в пролиферирующих кровеносных сосудах, положительно реагирует на виментин.

При ультраструктурном исследовании не всегда представлялось возможным однозначно установить гистогенетическую принадлежность клеток в пролиферирующих сосудах. Более правомерно счи-

тать, что в разных сосудах может быть разное соотношение между числом пролиферирующих клеток разной природы: в одних размножаются преимущественно эндотелиальные клетки, в других - перициты или гладкомышечные элементы.

Уже отмечалось, что изменения в периопухолевой зоне имеют большое клиническое значение и нередко определяют прогноз заболевания. В периопухолевой зоне анапластических астроцитом и гли-областом большое число отростчатых клеток, дающих интенсивную реакцию на ГФКБ, которые можно считать реактивными астроцита-ми. Количество ГФКБ+ клеток возрастает с увеличением степени злокачественности. Напротив, реакция на виментин не всегда была положительной в периопухолевой зоне и встречались участки как с реактивными виментин-отрицательными клетками, так и виментин-положительными клетками, в которых продукт реакции выявлялся в телах и отростках клеток. Такие наблюдения могут отражать разное состояние клеток и неоднородность популяции реактивных астроци-тов как клеток, экспрессирующих ГФКБ в больших количествах.

Реактивные астроциты периопухолевой зоны нередко группировались вблизи кровеносных сосудов, где их отростки формировали периваскулярную манжетку. С чем связана такая особенность в расположении реактивных астроцитов не выяснено. Можно предположить, что кровеносные сосуды - клетки их стенки или проникающие агенты из крови - вызывают изменения фенотипа окружающих аст-роцитов. Интимальная оболочка большинства кровеносных сосудов в периопухолевой зоне была иммунопозитивна на виментин, однако, окружающие сосуды астроциты не всегда были виментин-иммуно-позитивны.

В периопухолевой зоне анапластических астроцитом, и особенно глиобластом, картина гиперплазии астроцитарной глии значительно более выражена, особенно по ходу сосудов. Увеличивается число реактивных ГКФБ-положительных клеток, по сравнению с количеством виментин-положительных клеток. Это может свидетельствовать о том, что «типичные» реактивные астроциты - зрелые клетки, так как, уже отмечалось выше, виментин появляется на более ранних сроках созревания клеток.

По литературным данным (Preusser et al., 2005; Huber et al., 2005), моноклональное антитело Ki-67 узнает ядерные антигены только пролиферирующих клеток. Данные нашего исследования показывают, что степень реакции не всегда зависит от степени анаплазии опухоли; так как несмотря на то, что в анапластических астроцитомах и глиобластомах число митотически делящих клеток было выше, чем в доброкачественных астроцитомах, степень реакции была ниже.

Параллельно проводилось исследование на другой пролифераци-онный маркер - МШ. Исследование показало наличие положительной реакции в ядрах лишь единичных клеток. Отмечено, что чем выше была степень анаплазии опухоли, тем в большей степени выявлялась позитивная реакция на МШ в ядрах опухолевых клеток.

Таким образом,наше исследование показывает, что антитело Ki-67 не всегда может служить достоверным пролиферационным маркером в отличие от пролиферационного маркера - МГО.

Заключение

По результатам эпидемиологических исследований, проведенных в экономически развитых странах в течение последних 10-20 лет, наблюдается тенденция неуклонного роста заболеваемости первичными и метастатическими опухолями головного мозга, заболеваемость первичными доброкачественными и злокачественными опухолями головного мозга в настоящее время составляет 10,9-12,8 на 100 тысяч населения (Chozick et al., 1994). Среди первичных опухолей головного мозга приблизительно 60% - злокачественных, 40% -доброкачественных (Danks et al., 1995).

В связи с этим значительным ростом числа онкологических больных во всем мире в настоящее время растет интерес к неоваскулоге-незу в опухолевой ткани, так как кровоснабжение опухоли имеет большое значение в ее прогрессии.

Основное внимание в данной части работы будет уделено ультраструктуре пролиферирующих кровеносных сосудов и окружающих их клеток в опухолях. В работе показаны электронно-микроскопические и иммуногистохимические особенности ангиогенеза в опухолях головного мозга. Как уже отмечалось, наиболее ярко эти процессы происходят в анапластических опухолях астроцитарного ряда

(анапластическая астроцитома и глиобластома). Поэтому основная часть работы посвящена именно данным опухолям.

Часть работы посвящена изучению морфологических основ нарушения гематоэнцефалического барьера. Известно, что гематоэнце-фалический барьер принимает участие в обеспечении нормального функционирования центральной нервной системы. Гематоэнцефали-ческий барьер имеет своеобразную структуру и характерное взаимоотношение отдельных клеточных элементов, выполняя барьерную и транспортную функции. Для гематоэнцефалического барьера характерны плотное соединение эндотелиоцитов, отсутствие пор и фене-страций в капиллярах головного мозга, целостность цитоплазматиче-ских мембран, обилие пиноцитозных везикул в цитоплазме эндоте-лиоцитов, близкое соприкосновение астроцитов и эндотелиальных клеток (Kim et al., 2005; Sobaniec-Lotowska, 2005; Melgar et al., 2005).

Многие авторы указывают на прорыв гематоэнцефалического барьера при опухолях головного мозга, структурно это выражается в появлении фенестр, нарушении межэндотелиальных соединений. Некоторые авторы свидетельствуют о полном отсутствии гематоэнцефалического барьера (Wahl S.M., et al., 1991; Steuer et al., 2005).

Наше исследование показало отсутствие структурных вышеперечисленных нарушений при анапластических опухолях головного мозга астроцитарного ряда. В эндотелиальных клетках пролифери-рующих микрососудов мы вообще не обнаружили микропиноцитоз-ные пузырьки на аблюминальной поверхности клеток.

Нами выявлено, что отек ткани головного мозга наиболее выражен в тех периваскулярных областях, где имелось значительное утолщение базальной мембраны со снижением ее степени электронной плотности.

Как уже отмечалось выше, возможно, что низкая электронная плотность материала базальной мембраны, отдельных кровеносных сосудов может свидетельствовать о нарушении клеток ее производящих. Как мы считаем, причиной нарушения гематоэнцефалическо-го барьера служит разрыхление базальной мембраны. Это доказывалось еще тем, что интерстициальный отек и набухание отростков и тел астроцитов наиболее были выражены в тех периваскулярных

пространствах, где наблюдалось значительное утолщение базальной мембраны со снижением ее электронной плотности.

Изученные анапластические астроцитарные опухоли отличались значительной пролиферацией кровеносных сосудов. Выраженность пролиферации кровеносных сосудов прямо зависела от степени ана-плазии опухолей. В опухолях происходит разрастание мелких сосудов со значительной перестройкой структуры их стенки вследствие беспорядочного размножения клеток.

При гистологическом исследовании в глиобластомах отмечали, во-первых, увеличение числа новообразованных тонкостенных кровеносных сосудов, заполненных кровью, и, во-вторых, образование «сосудистых клубков», представляющих собой конгломераты крупных эндотелиальных клеток и перициов зачастую без просвета.

По-видимому, образование «сосудистых клубков» связано с тем, что эндотелиоциты в недостаточном количестве выделяют протеазы (например активатор плазминогена), которые необходимы, для того, чтобы разрушить базальную мембрану материнского капилляра или венулы и проложить себе путь для дальнейшего роста; или за счет повышенного синтеза факторов (кислый фактор роста фибробластов и основной фактор роста фибробластов), стимулирующих пролиферацию фибробластов и выработку ими большого количества коллагена и компонентов аморфного вещества базальной мембраны, что также затрудняет нормальный рост капилляров, но не останавливает пролиферацию эндотелиоцитов.

Имеется информация об иммунологических и иммуногистохими-ческих свойствах опухолевых клеток (Janish et al., 1986; Cervos Navarro et al., 1999). Степень иммунореактивности и число ГФКБ-позитивно реагирующих клеток глиобластом значительно колебались от опухоли к опухоли, при этом были выявлены противоречивые данные: чаще при нарастании анаплазии число ГФКБ-позитив-ных клеток в опухоли уменьшается, реже наблюдается повышение реакции. Но в то же время выявлена интересная закономерность: вблизи пролиферирующих микрососудов и очагов некроза количество иммунопозитивных клеток и степень реакции возрастают.

Иммуногистохимическое изучение кровеносных сосудов опухолей показало, что эндотелиальные клетки сосудов обладали выра-

женнои иммунореактивностью на виментин, что подтверждает способность этого маркера выявлять мезенхимальную дифференцировку клеток. Однако с нарастанием анаплазии опухоли в пролиферирую-щих микрососудах не все клетки были виментинпозитивны.

Особенно часто гигантские виментин-иммунопозитивные клетки определялись около пролиферирующих кровеносных сосудов, образующих переплетающиеся клубки с крупными эндотелиальными клетками.

Показательной была реакция сосудов на коллаген IV. С помощью этих маркеров можно выявить даже самые мелкие новообразованные сосуды в опухолях, которые не улавливаются с использованием классических методик.

В работе была изучена иммунореактивность на три изоформы N0 синтазы. Иммунопозитивные клетки можно было обнаружить практически во всех изученных опухолях, однако, в высокоанапластиче-ских астроцитомах и глиобластомах их число и степень окраски были значительно выше. При анализе опухолей выявлена вариабельная реакция астроцитов на 3 изоформы NO-синтазы. Степень иммуноре-активности опухолевых клеток находилась в прямой зависимости от степени анаплазии опухоли. Следует отметить, что в неопухолевой ткани - nNOS-позитивные клетки.

Несмотря на многочисленные исследования (Bottiger et al, 2001; Donato, 2001; Du Plessis et al., 2004), показывающие, что белок S-100 в нервной ткани в основном сосредоточен в астроцитах, проведенное нами исследование показывает, что зачастую клетки, положительно реагирующие на ГФКБ, иммунонегативны на белок S-100 и наоборот, положительно реагирующие клетки на белок S-100 не дают положительную окраску на ГФКБ. Возможно что экспрессия белка в нормальной нервной ткани совсем иная, не такая, как в опухолях.

По мнению ряда авторов (Graf et al., 1999; Fuller et al., 2001), накопление в нейронах промежуточных нейрофиламентов может рассматриваться в качестве маркеров нейрональной дифференцировки опухолевых клеток. Нейрофиламенты обнаруживают в нейробласто-мах, ганглиоглиомах, первичных герминогенных опухолях, медул-лобластомах и пинеобластомах.

Собственное исследование показало, что в опухолевой ткани гли-областом и анапластических астроцитом выявлялась слабоположительная реакция на нейрофиламенты. Возможно, что в ткани глиоб-ластом встречаются участки, состоящие из клеток нейронального происхождения - это могут быть зрелые нервные клетки или их эмбриональные предшественники - нейробласты.

Исследование степени экспрессии на пролиферационный маркер Ш-67, выявляемый митотическую активность опухолевых клеток, показал, что не всегда можно доверять данному маркеру. Часто более высокая иммунореактивность обнаруживалась в доброкачественных астроцитомах, где митотическая активность ниже.

ВЫВОДЫ

1. Электронно-микроскопически в опухолевой ткани глиобластом и анапластических астроцитом в пролиферирующих сосудах установлено отсутствие нарушений межэндотелиальных соединений (области простых и специализированных контактов между соседними клетками имеют неизмененную ультраструктуру, сохраняется большое число плотных контактов между эндотелиальными клетками).

2. Нарушение трансэндотелиального транспорта в пролифери-рующих кровеносных микрососудах проявляется в отсутствии мик-ропиноцитозных пузырьков в отростках эндотелиальных клеток.

3. Установлено, что интерстициальный отек и набухание отростков и тел астроцитов наиболее выражены в тех периваскулярных пространствах, где наблюдается значительное утолщение базальной мембраны со снижением ее электронной плотности.

4. Иммуногистохимически выявлено, что с увеличением степени злокачественности в анапластических астроцитарных опухолях головного мозга количество клеток экспрессирующих ГКФБ и вимен-тина возрастает, причем количество ГФКБ-позитивных клеток меньше, чем количество виментин-позитивных клеток.

5. Иммунореактивность на S-100 выражена в меньшей степени (степень окраски и число иммунопозитивных клеток) в анапластиче-ских опухолях головного мозга астроцитарного ряда в сравнении с реакцией на ГКФБ и виментин.

6. Установлена неравномерная реакция клеток на виментин в пролиферирующих клетках стенки кровеносных сосудов в астроци-тарных опухолях (доброкачественных астроцитомах, анапластиче-ских астроцитомах и глиобластомах), что может свидетельствовать о разной гистогенетической их природе или неодинаковой степени дифференцировки.

7. В пролиферирующих кровеносных сосудах глиобластом выявлено наличие периваскулярных гигантских клеток, которые иммуно-гистохимически не давали положительной реакции на ГКФБ, а на ультраструктурном уровне в них отсутствовали глиофиламенты.

8. Установлено, что опухолевые астроциты во всех астроцитар-ных новообразованиях являются иммунопозитивными на три изо-формы (нейрональную, индуцибельную и эндотелиальную) N0 син-тазы с максимальной реакцией (увеличение количества иммунопози-тивных клеток) на индуцибельную форму фермента. Также установлено, что в высокоанапластических астроцитомах и глиобластомах их число и степень окраски были значительно выше, чем в доброкачественных астроцитомах.

9. Выявлено, что N0 синтаза - иммунореактивные клетки на все три изоформы преимущественно локализуются около пролифери-рующих кровеносных сосудов и участков некроза и многие митоти-чески делящиеся клетки являются N0 синтаза - иммунопозитивны-ми. В нормальной периопухолевой ткани положительная реакция была только на ¡N08 и eNOS, а на ^ОЯ не давало положительной реакции.

10. Установлено, что в периопухолевой зоне анапластических ас-троцитарных опухолей (аналластические астроцитомы и глиобла-стомы) ГКФБ-иммунопозитивные реактивные астроциты не экспрес-сируют виментин, а также интенсивность реакции была значительно выше в высокоанапластичных опухолях (+++), чем в доброкачественных астроцитомах (+).

11. Выявлено, что в доброкачественных астроцитомах степень иммунореактивности на антитело Ш-67 выше, чем в злокачественных астроцитомах и глиобластомах, что может свидетельствовать о незавершенности митотического цикла в низкоанапластических опухолях.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

Результаты исследований значительно расширяют представления о межклеточных взаимосвязях в ткани опухолей головного мозга и периопухолевой зоне, межклеточных основах нарушения гематоэн-цефалического барьера и функционально неполноценного ангиогене-за. Полученные данные позволяют дифференцированно подходить к выбору иммуногистохимических маркеров в диагностике конкретной опухоли. Эти данные могут быть использованы патоморфологами при диагностике и дифференциальной диагностике опухолей головного мозга; материал также может быть использован в учебных курсах гистологии, патологии и невропатологии.

СПИСОК ОПУБЛИКОВАННЫХ РАБОТ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ

1. Экспрессия NO-синтазы астроцитами in vivo и in vitro / А. А. Сосунов, И. Н. Чаиркин, Л. Р. Одыванова, С. А. Мозеров // Гистологический анализ пластичности и регенерации тканей. - С.-Петербург, 1997.

2. Одыванова Л. Р. Экспрессия NO-синтазы астроцитами в культуре клеток / Л. Р. Одыванова, К. Кодина-Жанет, С. А. Мозеров // Тезисы докладов второй конференции молодых ученых. - Саранск: Изд-во НИИ регионологии, 1997.

3. Мозеров С. А. Экспрессия глиального фибриллярного кислого белка и виментина при опухолях головного мозга астроцитарного ряда / С. А. Мозеров, Л. Р. Одыванова, И. Н. Чаиркин // Тезисы докладов второй конференции молодых ученых. - Саранск: Изд-во НИИ регионологии, 1997.

4. Иммуногистохимическое исследование экспрессии трех изо-форм NO-синтазы в опухолях головного мозга /С. А. Мозеров, А. А. Сосунов, А. В. Ховряков, И. Н. Чаиркин, Л. Р. Одывано-ва // Тезисы докладов третьей конференции молодых ученых. - Саранск: Изд-во Мордов. ун-та, 1998.

5. Чаиркин И. Н. Астроцитарные опухоли головного мозга и висцеральная патология / И. Н. Чаиркин, С. А. Мозеров // Тезисы докладов второго Международного симпозиума «Структура и функ-

ции вегетативной нервной системы». - Воронеж: Изд-во Московской мед. академии, 1998.

6. Мозеров С. А. Иммуногистохимическая диагностика астрог-лиальных опухолей головного мозга / С. А. Мозеров, И. Н. Чаир-кин // Материалы конференции молодых ученых России с международным участием «Фундаментальные науки и прогресс клинической медицины». -М.: Изд-во Московской мед. академии, 1998.

7. Ultrustracture and immunohistochemistny of blood vessels in glioblastomas (Иммуногистохимическое и ультраструктурное исследование глиобластом) / Chovrykov A., Sosunov S., Chairkin L, Moze-rov S. // Abstract of the 14 International Medical Sciences Student Congress. - Istanbul, Turkey, 1998 (Тезисы 14 международного медицинского студенческого конгресса. - Стамбул, Турция, 1998).

8. Ультраструктурные особенности опухолей головного мозга астроцитарного ряда / С. А. Мозеров, А. А. Сосунов, И. Н. Чаиркин, С. П. Кемайкин // Актуальные вопросы клинической и экспериментальной медицины. - Пенза: Изд-во ПТУ, 2000.

9. Иммуногистохимические особенности опухолей головного мозга астроцитарного ряда / С. А. Мозеров, А. А. Сосунов, И. Н. Ча-иркин, С. П. Кемайкин // Актуальные вопросы клинической и экспериментальной медицины. - Пенза: Изд-во 111 У, 2000.

10. Экспрессия глиального фибриллярного кислого белка (ГФКБ) в опухолях головного мозга / И. Н. Чаиркин, С. А. Мозеров, А. А. Сосунов, Пат С. (Берлин), С. П. Кемайкин // Морфология. -С.-Петербург, 2000.

11. Мозеров С. А. Мышечные и нервные ткани: Учеб. пособие. -Пенза: Изд-во ПГУ, 2000.

12. Мозеров С. А. Нарушение гематоэнцефалического барьера и экспрессия глиального фибриллярного кислого белка в опухолях голового мозга // Известия вузов. Поволжский регион // Медицинские науки.-2003.-№34 (12).

13. Мозеров С. А. О состоянии гематоэнцефалического барьера (ГЭБ) при опухолях головного мозга // Известия вузов. Поволжский регион // Медицинские науки. - 2003. -№ 4 (7).

14. Изменение эндотелиоцитов и базальной мембраны пролифе-рирующих микрососудов при глиобластомах //И. Н. Чаиркин, С. А. Мозеров, Г. Гуски (Берлин), Цервос-Наварро (Барселона) // Морфологические ведомости. - 2004. -№ 1-2.

15. Мозеров С.А Экспрессия глиального фибриллярного белка в опухолях головного мозга астроцитарного происхождения и в пе-риопухолевой ткани // С. А. Мозеров, И. Н. Чаиркин // Морфологические ведомости. - 2004. - № 1-2.

16. Патоморфологическая диагностика глиобластом /С. А. Мозеров, А. Н. Мялин, А. В. Сергеев, У. В. Баулина // Актуальные вопросы современной клинической медицины. - Пенза: Изд-во ПГУ,

2004.

17. Мозеров С. А. Улътраструктурные основы нарушения гема-тоэнцефалического барьера при анапластических опухолях астроци-тарного ряда / С. А. Мозеров, А. А. Сосунов, И. Н. Чаиркин // Морфологические ведомости. - 2005. - № 1.

18. Чаиркин И. Н. Иммуногистохимическое исследование экспрессии NO-синтазы в опухолях головного мозга астроцитарного ряда/ И. Н. Чаиркин, С. А. Мозеров // Морфологические ведомости. -

2005.-№1.

МОЗЕРОВСергей Алексеевич

ГЛИОВАСКУЛЯРНЫЕ ВЗАИМООТНОШЕНИЯ В АНАПЛАСТИЧЕСКИХ АСТРОЦИТАРНЫХ ОПУХОЛЯХ ГОЛОВНОГО МОЗГА

(электронно-микроскопическое и иммуногистохимическое исследование)

14.00.15 - патологическая анатомия, 03.00.25 - гистология, цитология, клеточная биология

Редактор Т. В. Веденева Технический редактор Н. А. Вьялкова

Корректор Н. А. Сидельникова Компьютерная верстка М. Б. Жучковой

ИД №06494 от 26.12.01 Сдано в производство 27.04.2005. Формат 60х84 1/16. Бумага писчая. Печать офсетная. Усл. печ. л. 2,32. Заказ № 332. Тираж 100.

Издательство Пензенского государственного университета. 440026, Пенза, Красная, 40.

im m

'. i*i JlfJTt« I

£.î3«tj % ' / V

 
 

Оглавление диссертации Мозеров, Сергей Алексеевич :: 2005 :: Москва

1. ВВЕДЕНИЕ

2. ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Строение нейроглии и микрососудов головного мозга в 8 норме

1.2. Морфология опухолей астроцитарного ряда.

3. ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

4. ГЛАВА З.ИЗМЕНЕНИЕ КОМПОНЕНТОВ 57 ГЕМАТОЭНЦЕФАЛИЧЕСКОГО БАРЬЕРА В ОПУХОЛЯХ ГОЛОВНОГО МОЗГА АСТРОЦИТАРНОГО РЯДА И В ПЕРИОПУХОЛЕВОЙ ЗОНЕ

5. ГЛАВА 4.ИММУНОГИСТОХИМИЧЕСКАЯ 102 ХАРАКТЕРИСТИКА ОПУХОЛЕЙ АСТРОЦИТАРНОГО

 
 

Введение диссертации по теме "Патологическая анатомия", Мозеров, Сергей Алексеевич, автореферат

В настоящее время морфологическому изучению опухолей нервной системы посвящено большое число исследований (Wahl et. al, 1991; Rutten et. al, 1992; Pascual-Castroviejo et. al, 1995; Liberski, Kordek, 1997; Demuth T., Berens M. E., 2004; Hartmann C, et al., 2005). Однако данный раздел онкологии остаётся одним из наименее изученных, что связано со сложностью структурной организации нервной системы (Zorzi et. al, 1992; Scarpelli et. al, 1994; Tomlinson et. al, 1994).

Наиболее распространенным видом опухолей головного мозга человека, как известно, являются астроцитарные опухоли, отличающиеся значительной вариабельностью структуры в зависимости от степени анаплазии (Burger , Scheithauer, 1994; Escalone Zapata, 1994; Bertossi et. al, 1997). В последнее время в диагностике опухолей начали использоваться некоторые иммуногистохимические методы, основанные на выявлении белков, специфичных для клеток разного гистогенетического происхождения (Zorzi et. al, 1992; Luo, 1993; Huang et al., 1996). Несмотря на значительные достижения в этой области, многие вопросы остаются недостаточно выясненными: в частности, некоторые антигенные характеристики клеток пролиферирующих сосудов и гигантских клеток, распределение трех изоформ NO синтазы в тканях опухолей. Противоречивые данные относятся даже к выявлению глиального фибриллярного кислого белка (ГФКБ) - иммуноположительные клетки встречаются при всех опухолях астроцитарного ряда, степень реакции различается и зависит не только от степени злокачественности опухоли, но и от местных тканевых особенностей строения опухолей (Березин, 1985; Burger Р. С. et al., 1991; Коршунов А. Г., Лахтеева C.B., 1998).

В прогрессии опухолей головного мозга немаловажное значение придается пролиферации клеток кровеносных сосудов (Jansen M.et al., 2004; Demeule Met al., 2004). Взаимосвязь опухолевых клеток с кровеносными сосудами описана в ряде работ (Sumpio В. Е. et al., 2002), однако остается недостаточно выясненной, особенно методом иммуногистохимии и электронной микроскопии.

Морфологическому изучению нарушения компонентов гематоэнцефалического барьера при опухолях головного мозга посвящено большое число исследований (Bertossi M. et al., 1997; Demeule M. et al., 2004). Однако остается множество нераскрытых вопросов, и самый главный из них: каковы структурные причины нарушения гематоэнцефалического барьера.

Целью работы является изучение ультраструктурных и иммуногистохимических особенностей клеток пролиферирующих сосудов микроциркуляторного русла и периваскулярной области в анапластических астроцитарных опухолях головного мозга человека, а также исследование экспрессии белков промежуточных филаментов и других антигенных свойств опухолевой ткани астроцитом разной степени дифференцировки.

Задачи исследования.

1. Электронно-микроскопически и иммуногистохимически исследовать структурные проявления нарушения компонентов гематоэнцефалического барьера при астроцитарных анапластических опухолях головного мозга человека.

2. Исследовать изменения в ультраструктуре эндотелиоцитов, перицитов и астроцитов (в области контактов отростков астроцитов с базальной мембраной эндотелия).

3. Электронно-микроскопически и иммуногистохимически изучить перифокальную зону при анапластических астроцитарных опухолях головного мозга на нейрохирургическом материале.

4. Изучить экспрессию ряда иммуногистохимических маркеров (ГФКБ, виментин, белок 8-100, нейрофиламенты, коллаген IV типа, пролиферационный маркер Кл-67, онкопротеин р53) в анапластических астроцитарных опухолях головного мозга и в периопухолевой зоне.

5. Провести анализ экспрессии >Ю-синтазы (три изоформы) в опухолях головного мозга астроцитарного ряда.

Научная новизна работы. Впервые проведено комплексное морфологическое исследование анапластических астроцитарных опухолей головного мозга на разных уровнях структурной организации. Установлено что, интерстициальный отек и набухание отростков и тел астроцитов наиболее выражены в тех периваскулярных пространствах, где наблюдается значительное утолщение базальной мембраны со снижением ее электронной плотности. Это является причиной нарушения гематоэнцефалического барьера.

Электронно-микроскопически и иммуногистохимически впервые выявлено что, пролиферирующие кровеносные капилляры отличаются суженным просветом и усиленным развитием внеклеточного периваскулярного компонента (резкое утолщение эндотелиальной базальной мембраны и большое число волокон коллагена), таким образом, периваскулярный компонент уплотняется и, это является компенсаторным механизмом для предупреждения дальнейшего нарушения гематоэнцефалического барьера.

Изучение и сопоставление операционного и аутопсийного материала показало что, в сосудистых клубках пролиферирующий эндотелий является виментиниммунопозитивным и N0 синтаза (три изоформы) — иммунонегативным, что говорит о мезенхимальном происхождении пролиферирующего эндотелия и о не способности пролиферирующего эндотелия продуцировать N0.

Впервые выявлены морфологические особенности периваскулярных гигантских клеток глиобластом, иммуногистохимически установлено, что часть из них являются ГФКБ-иммунонегативными и электронно-микроскопически не содержат промежуточные филаменты в цитоплазме перикариона.

На основе последовательного анализа выявлено что, многие опухолевые астроциты в астроцитарных опухолях являются N0 синтаза (три изоформы) -иммунопозитивными. При этом в высокоанапластических астроцитомах положительная реакция наблюдалась гораздо чаще, чем в низкоанапластических. Максимальная степень иммунореактивности выявлена для индуцибельной формы N0 синтазы.

На фоне выраженной неоднородности морфологической картины впервые установлено что, в анапластических опухолях встречается большое число гигантских атипических клеток, которые теряют способность экспрессировать ГФКБ, характерный маркер для данного типа клеток. Напротив реакция на виментин практически всегда была положительной. Данная закономерность указывает на то, что данные клетки идут по пути дедифференцировки, так как виментин появляется на более ранних сроках созревания клеток.

Установлено, что в периопухолевой зоне анапластических астроцитом и глиобластом гиперплазия астроцитарной глии более выражена по сравнению с доброкачественными астроцитомами и многие ГКФБ-иммунопозитивные реактивные астроциты не экспрессируют виментин. Это свидетельствует о том, что реактивные астроциты зрелые клетки.

Научно-практическое значение работы. Результаты исследований значительно расширяют представления о межклеточных взаимосвязях в ткани опухолей головного мозга и периопухолевой зоне. Изучены структурные основы нарушения гематоэнцефалического барьера и функционально неполноценного ангиогенеза. Полученные данные позволяют дифференцированно подходить к выбору иммуногистохимических маркеров в диагностике астроцитарных опухолей головного мозга человека. Эти данные используются патоморфологами при диагностике и дифференциальной диагностике опухолей головного мозга. Материал может быть использован в учебных курсах гистологии, патологической анатомии и нейрохирургии.

Основные положения, выносимые на защиту

1. Особенности ультраструктурной организации и иммуногистохимической характеристики пролиферирующих кровеносных сосудов и неопластических астроцитов в опухолевой ткани и периопухолевой зоне.

2. Структурные основы нарушения гематоэнцефалического барьера при анапластических астроцитарных опухолях головного мозга человека.

3. Экспрессия белков цитоскелета и других иммуногистохимических маркеров в анапластических астроцитарных опухолях головного мозга человека.

4. Закономерности экспрессии 3-х изоформ NO-синтазы в астроцитарных опухолях головного мозга человека.

Апробация работы. Материалы и основные положения диссертации доложены и обсуждены на конференции «Гистохимический анализ изменчивости и регенерации тканей» (г. С.-Петербург, 1997); конференциях молодых ученых Мордовского госуниверситета им. Н. П. Огарева (Саранск, 1997, 1998); Международном симпозиуме «Структура и функции вегетативной нервной системы» (г. Воронеж, 1998); Областной научно-практической конференции «Актуальные вопросы клинической и экспериментальной медицины» (Пенза, 2000); Областной научно-практической конференции «Актуальные вопросы клинической медицины» (Пенза, 2004).

Внедрение в практику. Полученные результаты исследования позволяют дифференцированно подходить к выбору иммуногистохимических маркеров в диагностике анапластических астроцитарных опухолей головного мозга в практике патологоанатомов, онкологов. Эти данные используются при чтении лекций и на практических занятиях по гистологии и патологической анатомии в Казанском государственном медицинском университете, Саратовском государственном медицинском университете, Пензенском медицинском институте.

По материалам диссертации опубликовано 23 научные работы.

Структура и объем диссертации. Диссертация изложена на 217 страницах машинописи, состоит из введения, 4 глав, заключения, выводов, списка литературы, 87 рисунков. Список литературы включает 430 наименований, из которых 44 отечественных и 386 иностранных.

 
 

Заключение диссертационного исследования на тему "Глиоваскулярные взаимоотношения в анапластических астроцитарных опухолях головного мозга (электронно-микроскопическое и иммуногистохимическое исследование)"

ВЫВОДЫ

1. Электронно-микроскопически в пролиферирующих сосудах опухолевой ткани глиобластом и анапластических астроцитом выявлено отсутствие нарушений межэндотелиальных соединений (показано^ что области простых и специализированных контактов между соседними клетками имеют не измененную ультраструктуру, сохраняется? большое число плотных контактов между эндотелиальными клетками):

2. Доказано нарушение трансэндотелиального транспорта: в пролиферирующих кровеносных микрососудах проявляющееся в отсутствии микропиноцитозных пузырьков в цитоплазме эндотелиальных клеток.

3. Установлено, что межклеточный отек и набухание отростков и тел астроцитов наиболее выражены в тех периваскулярных пространствах, где наблюдается значительное утолщение базальной мембраны со снижением ее электронной; плотности, что свидетельствует о нарушении клеток ее производящих и является ведущей причиной нарушения гематоэнцефалического барьера.

4. Иммуногистохимически выявлено, что с увеличением степени злокачественности в анапластических астроцитарных опухолях головного мозга количество - клеток экспрессирующих ГКФБ и виментин возрастает, причем количество ГФКБ-позитивных клеток меньше, чем количество виментин-позитивных клеток.

5. Установлена неравномерная реакция клеток на виментин в пролиферирующих клетках стенки кровеносных сосудов в астроцитарных опухолях (доброкачественных астроцитомах, анапластических астроцитомах и глиобластомах), что может свидетельствовать о разной гистогенетической их природе или неодинаковой степени дифференцировки.

6. В периваскулярном пространстве пролиферирующих кровеносных сосудов глиобластом и анапластических астроцитом выявлено наличие гигантских клеток, которые иммуногистохимически не давали положительной реакции на ГКФБ, а на ультраструктурном уровне в них отсутствовали глиофиламенты, что свидетельствует о том, что данные клетки не астроцитарного происхождения.

7. Установлено, что опухолевые астроциты во всех астроцитарных новообразованиях являются иммунопозитивными на три изоформы (нейрональную, индуцибельную и эндотелиальную) N0 синтазы с максимальной реакцией (увеличение количества иммунопозитивных клеток и степени окраски) на индуцибельную форму фермента. Выявлено, что в высокоанапластических астроцитомах и глиобластомах число иммунопозитивных клеток и степень окраски были значительно выше, чем в доброкачественных астроцитомах.

8. Выявлено, что N0 синтаза - иммунореактивные клетки на все три изоформы преимущественно локализуются около пролиферирующих кровеносных сосудов и участков некроза и многие митотически делящиеся клетки являются N0 синтаза — иммунопозитивными, что свидетельствует в прямом их участии гиперпродукции N0 в васкуляризации опухолей мозга. В нормальной периопухолевой ткани положительная реакция была только на ¡N08 и еЖ)8, а на п>Ю8 не давало положительной реакции.

9. Установлено, что в периопухолевой зоне анапластических астроцитарных опухолей (анапластические астроцитомы и глиобластомы) ГКФБ-иммунопозитивные реактивные астроциты не экспрессируют виментин, а также интенсивность реакции была значительно выше в высокоанапластичных опухолях (+++), чем в доброкачественных астроцитомах (+).

10.' Выявлено, что в доброкачественных астроцитомах степень иммунореактивности на антитело Кл-67 выше, чем в анапластических астроцитомах и глиобластомах, что может свидетельствовать о низкой митотической активности в низкоанапластических опухолях.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

Результаты исследований значительно расширяют представления о межклеточных взаимосвязях в ткани опухолей головного мозга и периопухолевой зоне межклеточных основах нарушения гематоэнцефалического барьера и функционально неполноценного ангиогенеза. Полученные данные позволяют дифференцированно подходить к выбору иммуногистохимических маркеров в диагностике конкретно взятой опухоли. Эти данные могут быть использованы патоморфологами при диагностике и дифференциальной диагностике опухолей головного мозга, а также материал может быть использован в учебных курсах гистологии, патологии и невропатологии.

 
 

Список использованной литературы по медицине, диссертация 2005 года, Мозеров, Сергей Алексеевич

1. Авцын А.П., Вихерт Т.М., Касумова С.Ю. Международная гистологическая классификация опухолей центральной нервной системы (ВОЗ). Вопр. нейрохир.,- 1981, № 2, стр.45-51

2. Андрианов В.В., Гайнутдинов Х.Л., Гайнутдинова Т.Х., Мухамедшина Д.И., Штарк М.Б. Мембранотропные эффекты малых доз антител к белку S100 // Бюлл. экспер. биол. мед. 2003. - Прил. 1. - С.24-27.

3. Архангельский В.В., Касумова С.Ю. Опухоли центральной нервной системы // Патологоанатомическая диагностика опухолей человека: Рук-во в 2 т. — Т.2 / Под. ред. H.A. Краевского, A.B. Смольяникова, Д.С. Саркисова. —М.: Медицина, 1993. — С. 600-620.

4. Банин В.В., Алимов Г.А. Эндотелий как метаболически активная ткань: синтетические и регуляторные функции. //Морфология. 1992. - Т. 102.- N 2.-С. 10-35.

5. Белик Я.В. От химической топографии мозга к нейроспецифическим белкам и их функциям. Биохимия животных и человека: Биохимия белков нервной системы. 1980. Вып.4. С.11-22.

6. Бережной Г.А., Белик Я.В. Распределение нейроспецифических белков S-100 и антигена D в субклеточных фракциях головного мозга. Докл. АН УССР. Сер.Б. 1981. С.60-62.

7. Березин В.А., Белик Я.В. Специфические белки нервной ткани. Киев. Наукова думка. 1990.

8. Березин В.А., Жмарева E.H., Ромоданов С.А. и др. Нейроспецифические белки в диагностике опухолей головного мозга человека. Вопр. онкологии. 1985. Т.31. С.7-17.

9. Березин В.А., Жмарева E.H., Шаповал Т.И., Жолудь Л.М. Нейроспецифические мембранные антигены в опухолях мозга челоека. Нейрохимия. 1984. Т 3. С.269-275.

10. Ю.Березин В.А., Шевченко Г.М. Нейроспецифические белки цитоскелета. Укр. биохим. журн. 1987. Т.59. С.105-115.

11. П.Березин В.А., Шевченко Г.М., Жмарева E.H. и др. Кислый глиальный фибриллярный белок в опухолях головного мозга человека различной гистоструктуры и степени злокачественности. Нейрохимия. 1984. Т.53. С.327-328.

12. Березин В.А., Шевченко Г.М., Бунятян Г.Г. и др. Специфические белки промежуточных филаментов в нервной ткани и опухолях. Нейрохимия 1987. Т.7. С.77-82.

13. Вяльцева Ю.Ю. Использование отечественных моноклональных антител. в патоморфологической диагностике опухолей центральной нервной системы человека (Автореферат кандидатской диссертации). Москва, 1994.

14. Вяльцева Ю.Ю., Бухвалов И.Б., Василов Р.Г. Дифференциальная иммуноцитохимическая диагностика опухолей центральной нервной системы человека с помощью моноклональных антител. Арх. пат. 1996. № 2, С.28-32.

15. Гансбургский А.Н., Павлов A.B. Пролиферативные свойства клеточных дифферонов сосудистой стенки // Морфология. 1998. - Т. 113. - N 2. - С. 66 -70.

16. Гайдар Л.И., Березин В. А., Василов Р.Г. Экспрессия ГФКБ в развивающемся мозге человека. Биохимия. 1991. Т.56. С.1322-1323.

17. Готтшалк И., Ениш В. Возможности и пределы применения иммуногистохимической диагностики опухолей центральной нервной системы. Архив патологии. 1987. С.3-11

18. Григорьев Д.Г. Нейронально-глиальные опухоли ЦНС у детей // Избранные вопросы онкоморфологии: Сб. науч. работ / Под ред. проф. Г.И. Кравцовой. —Мн.: МГМИ, 2000. — С.45-53.

19. Зозуля Ю.А., Гридина Н.Я. Молекулярная генетика глиом и перспективы молекулярной нейрохимии//Вопр. нейрохирургии.— 1998.— 4.— С.45—51.

20. Киммельберг Г.К., Норенберг М.Д. Астроциты. В мире науки. 1989. № 6. С.32-41.

21. Козлов A.B. Биология менингиом: современное состояние проблемы // Вопросы нейрохирургии. — 2001. — № 1. — С. 32-37.

22. Коршунов А.Т., Галанов A.B., Сычева Р.В., Пронин И.Н. Прогностическое значение онкоассоциированных белков и апоптоза в глиобластомах больших полушарий головного мозга //Вопр. нейрохирургии.— 1999.— 1.— С.З—7.

23. Коршунов А.Г., Сычёва Р.В. Экспрессия глиального фибриллярного кислого белка и белка S- 100 в астроцитарных глиомах головного мозга различной степени злокачественности (Иммунногистохимические исследования). Арх. патол. 1995. № 4, С. 16-25.

24. Коршунов А.Г., Лахтеева C.B., Иммуногистохимическое изучение экспрессии эпителиального антигена ber ер4 и других тканеспецифических антигенов в первичных и метастатических опухолях головного мозга. Архив патологии № 6, 1998, стр. 40-47.

25. Коршунов А.Г, Сычёва Р.В. Иммунногистохимическое изучение экспрессии антител ядер пролиферирующих клеток в астроцитарных глиомах больших полушарий головного мозга. Арх. пат. 1996. № 2. С.32-37.

26. Коршунов А.Г, Сычёва Р.В. Иммунногистохимическое изучение экспрессии онкобелка р53 в астроцитарных глиомах больших полушарий головного мозга. Арх. пат. 1996. № 6. С.37-42.

27. Куприянов В.В., Миронов В.А., Миронов A.A., Турина О.Ю. Ангиогенез: Образование, рост и развитие кровеносных сосудов // М.: НИО Квартет, 1993.-201 с.

28. Мотин В.Г., Никитин В.П., Шерстнев В.В. Влияние антител против белка S100В на синаптическую передачу и долговременную потенциацию нейронов области CAI гиппокампа крысы // Бюлл. экспер. биол. мед. — 2002.-Т. 133. -№2. -С. 132-135.

29. Пальцев М. А., Иванов А. А. Межклеточные взаимодействия. М, 1995.

30. Райхлин Н.Т. Гистохимия в диагностике опухолей человека. Вопросы онкологии. 1984. Т.З. № 4. С.97-110.

31. Райхлин Н.Т., Петров C.B. Актуальные проблемы онкоморфологии. Сборник научн. трудов к 100-летию со дня рождения проф. М.Ф. Глазунова. Под редакц. Н.М. Аничкова, А.Е. Колосова. 1996. С.100-109.

32. Райхлин Н.Т., Петров C.B. Основные этапы иммуногистохимической диагностики опухолей человека. Арх. патол. 1997. № 4. С. 14-19.

33. Смирнов Л.И. Опухоли головного и спинного мозга.- М.,"Медгиз".,1962.

34. Сосунов. А.А., Чучков В.М. Концепции и принципы организации нервной системы. Российские морфологические ведомости. 1995. № 1. С.57-61.

35. Сосунов А.А., Чаиркин И.Н., Одыванова Л.Р., Гуски Г., Цервос-Наварро Д. Синтаза окиси азота в нейроэпителиальных опухолях головного мозга. Архив патологии 1997. № 6. С.61-65.

36. Фильченков А. А. Цитокины суперсемейства ЭФР и онкогенез. Эксперим. онкология.— 1998.— 20 (2).— С.83—108.

37. Челышев Ю.А. Курс гистологии. 2-е изд. Казань. 1995. С.34-40.

38. Штарк М.Б. Мозгоспецифические белки (антигены) и функции нейрона.-М.: Медицина, 1985.-319 с.

39. Adachi J., Kazumoto К., Uki J. Et al. Sekretory meningioma: a case report with immunohistochemical and ultrastructural study. Noshuyo. Biori. 1993. V.20. P.93-98.

40. Adamek D., Kaluza J., Stachura K. Primary ballon cell malignant melanoma of the right temporo-parietal region arising from meningeal naevus. Clin. Neuropathol. 1995. V.14. P.29-32.

41. Allcutt D., Michowiz S., Weizman S. et al. Primary leptomeningeal melanoma: an unusually aggressive tumor in childhood. Neurosurg. 1993. V.32. P.721-729.

42. Almqvist P.M, Mah R, Lendahl U, Jacobsson B, Hendson G. Immunohistochemical detection of nestin in pediatric brain tumors. J Histochem Cytochem. 2002 Feb. 50 (2): 147-58.

43. Alonso M, Tamasdan C, Miller D.C, Newcomb E.W. Flavopiridol induces apoptosis in glioma cell lines independent of retinoblastoma and p53 tumor suppressor pathway alterations by a caspase-independent pathway. Mol Cancer Ther. 2003 Feb; 2 (2): 139-50.

44. Altermatt H.J., Sheperd C.W., Scheithauer B.W., Gomez M.R. Subependymal giant cell astrocytoma. Zentralb. Pathol. 1991. V.137. P.105-116.

45. Amelio F.D., Gibbs M.A., Mehler W. Et al. Immuncytochemical localisation of glial fibrillary acidic protein (GFAP) in the area posteria of the cat. Light and electron microscopic study. In Brain research. 1985. V.330. P.146-149.

46. Anderson DJ: Stem cells and pattern formation in the nervous system: the possible versus the actual. Neuron 30: 19-35, 2001

47. Armond S.J. de, Eng L.F., Rubinstein L.J. The apposition of glial fibrillary acidic (GFA) protein immunohistochemistry in neurooncology. Path. Res. Pract. 1980. V.168. P.374-394.

48. Asa S.L., Kovacs K., Bilbao J.M., Penz G. Immunhistochemical localization of keratin in craniopharyngiomas and squamous cell nests of the human pituitary. Acta. Neuropathol. 1981. V.54. P.257-260.

49. Autilio-Gambetti L., Sipple J., Sudilovsky O., Gambetti P. Intermediate filaments of Schwann cells. J. Neurochem. 1982. V.38. P.774-780.

50. Bakshi A., Nag T.C., Wadhwa S. et al. The expression of nitric oxide synthase in human brain tumouros and peritumoral areas //J. Neurol. Sci.— 1998. — 155. — P. 196—203

51. Banks W.A. Blood-brain barrier transport of cytokines: a mechanism for neuropathology. Curr Pharm Des. 2005; 11 (8): 973-84.

52. Bar H., Schlote W. Malignant melanoma in the CNS, subtyping and immunocytochemistry. Clin. Neuropathol. 1997. V.16. P.337-345.

53. Barnett FH, Scharer-Schuksz M, Wood M, Yu X, Wagner TE, Friedlander M. Intra-arterial delivery of endostatin gene to brain tumors prolongs survival and alters tumor vessel ultrastructure. Gene Ther. 2004 Aug; 11 (16): 1283-9.

54. Bates S.E., Longo D.L. Tumor markers: Value and limitations in the management of cancer patients. Cancer Treat. Revs. 1985. V.12. P. 163-207.

55. Battifora H. Recent progress in the immunhistochemistry of solid tumours. Semin. Diagn. Pathol. 1984. V.l. P.251-268.

56. Becker I., Paulus W., Roggendorf W. Histogenesis of stromacells in cerebellar hemangioblastomas. An immunohistochemicäl study. 1989. Am. J. Pathol. V.134. P.271-275.

57. Bell H.S, Whittle I.R, Walker M, Leaver H.A, Wharton S.B. The development of necrosis and apoptosis in glioma: experimental findings using spheroid culture systems. Neuropathol Appl Neurobiol. 2001 Aug. 27 (4): 291-304.

58. Berezin V.A., Gajdar L.I. Analysis of human intermediate filament proteins by use of monoclonal antibody. 14th Int. Congr. Biochem. Prague: S.n. 1988.-MO: 350.-P.146.

59. Bertossi M., Virintino D., Maiorano E., Occhiogrosso M., Roncali L. Ultrastructural and morphometric investigation of human brain capillaries in normal and peritumoral tissues. Ultrastruct/ Pathol., 1997. 21(1). P.41-49.

60. Bhat V.R., Arimoto K., Warecka K., Brunngraber E.G. Expression of a2-glicoprotein by glial precursor cells: An immunocytochemical study with glial cultures. Rev. Brein Res. 1986. V.29. P.31-36.

61. Blottner D., Schmidt H., Baumgarten H. Nitroxergic autonomic neurones in rat spinal cord. Neuroreport. 1993. V.4. P.923-926.

62. Blumcke I, Luyken C, Urbach H, Schramm J, Wiestier O.D. An isomorphic subtype of long-term epilepsy-associated astrocytomas associated with benign prognosis. Acta Neuropathol (Berl). 2004 May; 107 (5):381-8.

63. Bo L., Dawson T.M., Wesselingh S., Mork S. et al. Induction of nitric oxide synthase in demyelinating regions of multiple sclerosis brains. Ann. Neurol. 1994. V.63. P.910-915.

64. Bottiger BW, Mobes S, Glatzer R, Bauer H, Gries A, Bartsch P, Motsch J, Martin E. Astroglial protein S-100 is an early and sensitive marker of hypoxic brain damage and outcome after cardiac arrest in humans. Circulation. 2001 Jun 5;103(22):2694-8.

65. Brady J, Neal J, Sadakar N, Gasque P. Human endosialin (tumor endothelial marker 1) is abundantly expressed in highly malignant and invasive brain tumors. J Neuropathol Exp Neurol. 2004 Dec; 63 (12): 1274-83.

66. Braus D.F., Schwechheimer K., Müller-Hermelink H.K. et al. Primary cerebral malignant non-Hodgkin's lymphomas: a retrospective clinical study. J. Neurol. 1992. V.239. P.l 17-124.

67. Bredt D.S., Glatt C., Hwang P.M., Fotuhi M., Dawson T.M., Snyder S.H. Nitrix oxide synthase protein and mRNA are discretely localized in neuronal populations of the mammalian CNS together with NADPH diaphorase. Neuron. 1991. V.7. P.615-620.

68. Bredt D.S., Hwang P.V., Glatt C.E., Lowenstein C., Reed R.R., Snyder S.H. Cloned and expressed nitric oxide synthase structurally resembles cytochrome P-450 reductase. Nature. 1991. V. 351. P.714-718.

69. Bredt D.S., Hwang P.M., Snyder S.H. Localisation of nitric oxide synthase indicating a neural role for nitric oxide. Nature. 1990. V. 347. P.768-771.

70. Brewton LS, Haddad L, Azmitia EC. Colchicine-induced cytoskeletal collapse and apoptosis in N-18 neuroblastoma cultures is rapidly reversed by applied S-lOObeta. Brain Res. 2001 Aug 31;912(1):9-16.

71. Broholm H, Laursen H. Vascular endothelial growth factor (VEGF) receptor neuropilin-l's distribution in astrocytic tumors. APMIS. 2004 Apr-May; 112 (45): 257-63.

72. Bullon M., Alvare-Gagu T. et al. Glial fibrillary acidic (GFA) protein in rat spinal cord. An immunoperoxidase study in semithin sections. Brain Res. 1984. V.309. P.79-83.

73. Burger P.C., Fuller G.N. Pathology — Trends and pitfalls in histologic diagnosis, immunopathology, and applications of oncogene research // Neurol. Clin. — 1991. — 9. — P. 249-272.

74. Burger P.C., Scheithauer B.W. Tumors of the central nervous system. Atlas of tumor pathology. Armed. Foces Institute of Pathology. Washington. 1994.

75. Bussolati G., Gulgiotta R., Sapino A., Eusebi V., Lloyd R.V. Chromogranin-reactive endocrine cells in argyrophilic carcinomas and normal tissue of the breast. Am. J. Pathol. 1985. V.120. P.186-192.

76. Butti G., Assietti R., Casalone R. et al. Multiph. Meningiomas: a clinical, surgical and cytogenetic analysis. Surg. Neurol. 1989. V.31. P.255-260.

77. Cameron P.L, Liu C, Smart D.K, Hantus S.T, Fick JR, Cameron R.S. Caveolin-1 expression is maintained in rat and human astroglioma cell lines Glia. 2002 Mar 1; 3 7(3): 275-90.

78. Cancilla P. A, Bready J., Berliner J. Brain endothelial-astro-cyte interaction // Pardridge W. M. The Blood-Brain Barrier. Cellular and Molecular Biology. -New York, 1993.-P. 25-46.

79. Carlei F., PolakJ.M., Ceccamea A., Marangos P.J., Dahl D., Cocchia D., Michetti F., Lezoche E., Speranza V. Neuronal and glial markers in tumours of neuroblastic origin. Virchows Arch. (Pathol. Anat.) 1984. V.404. P.313-324.

80. Cavalla P., Schiffer D. Cell cycle and proliferation markers in neuroepithelial tumors. Anticancer. Res. 1997. V.17. P.4135-4143.

81. Cervos Navarro J, Kunas RC, Sampaolo S, Mansmann U. Heart mitochondria in rats submitted to chronic hypoxia. Histol Histopathol. 1999 Oct; 14 (4): 104552.

82. Cervos-Navarro J, Sharma HS, Westman J, Bongcam-Rudloff E. Glial reactions in the central nervous system following heat stress. Prog Brain Res. 1998; 115: 241-74.

83. Choi B.H., Kim R.S. Expression of glial fibrillary acidic protein in immature oligodendroglia. Science. 1984. V.223. P.407-409.

84. Chozick B.S., Pezullo J.C., Epstein M.H. et al. Neurosurgery. 1994. V.35. P.831-838.

85. Clark H.B., Hartman B.K. S-100 protein as an immunohistochemical marker for neoplasms of glial and Schwann cell origin. J. Neuropathol. Exp. Neurol. 1981. V40.P.335.

86. Coakham H.B., Garson J.A., Allan P.M., Harper E.I., Brownell B., Kemshead J.T., Lane E.B. Immunhistological diagnosis of central nervous system tumours using a monoclonal antibody panel. J. Clin. Pathol. 1985. V.38. P. 165-173.

87. Cobbs C.S., Brenman J.E., Aldape K.D., Bredt D.S., Israel M.A. Expression of nitric oxide synthase in human central nervous system tumors. Cancer Res. 1995. V.55. P.727-731.

88. Cocchia D., Miani N. Immunocytochemical localization of the brain-specific S-100 protein in the pituitary gland of adult rat. J. Neurocytol. 1980. V.9. P.771-782.

89. Cocchia D., Tiberio G., Santarelli R., Michetti F. S-100 protein in «follicular-dendritic» cells of rat lymphoid organs. An immunochemical and immunocytochemical study. Cell and Tissue Res. 1983. V.230. P.95-103.

90. Coffin C.M., Braun J.T., Wick M.R., Dehner L.P. Choroid plexus neoplasia: an immunohistochemical study with clinicopathologic correlation. Lab. Invest. 1985. V.52. P. 15.

91. Cohn D.V., Zangerle R., Fischer-Colbrie R., Chu L.L.H., Elting J.J., Hamilton J.W., Winkler H. Similarity of secretory protein I from parathyroid gland to chromogranin A from adrenal medulla. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1982. V.79. P.6056-6059.

92. Coons S.W., Johson P.C., Pearl D.K. The prognostic significance of Ki-67 labeling indices for oligodendrogliomas. Neurosurgery. 1997. V.41. P.878-884.

93. Cooper D., Schermer A., Sun T.T. Classification of human epithelia and their neoplasms using monoclonal antibodies to keratins: strategies, applications, and limitations. Lab. Invest. 1985. V.52. P.243-256.

94. Cowin P., Mattey D., Garrod D. Identification of desmosomal surface components (desmocollins) and inhibition of desmosome formation by specific Fab'. J. Cell. Sci. 1984. V.70. P.41-60.

95. Cowin P., Kapprell H.P., Franke W.W. The complement of desmosomal plaque proteins in different cell types. J. Cell. Biol. 1985. V.101. P.1442-1454.

96. Cowin P., Kapprell H.P., Franke W.W., Tamkun J., Hynes R.O. Plakoglobin: a protein common to different kinds of intercellular adhering junctions. Cell. 1986. V.46. P. 1063-1073.

97. Cras P., Martin J.J., Gheuens J. y-Enolase and glial fibrillary acidic protein in nervous system tumors. An immunhistochemical study using specific monoclonal antibodies. Acta. Neuropathol. 1988. V.75. P.377-384.

98. Cumming R., Burgoyne R.D. Compartmentalization of neuronal cytoskeletal proteins. Biosci. Rep. 1983. V.3. P.997-1006.

99. Cunningment J.M., Kimmel D.W., Scheithauer B.W. Analysis of proliferation markers and p53 expression in gliomas of astrocytic origin: relationships and prognostic value. J. Neurosurg. 1997. V.86. P. 121-130.

100. Dahl D., Bignami A. Intermediate filaments in nervous tissue. In: Shay J.W. Cell. And muscle motility. 1985. V.6. Plenum Press. New York. P.75-96.

101. Dahl D., Rueger D.C., Bignami A., Weber K., Osborn M. Vimentin, the 57000 molecular weight protein of fibroblast filaments, is the major cytoskeletal component in immature glia. Eur. J. Cell. Biol. 1981. V.24. P. 191-196.

102. Dahl D., Chi N.H., Miles L.E., Nguyen B.T. Glial fibrillary acidic (GFA) protein in Schwann cells: fact or artifact? J. Histochem. Cytochem. 1982. V.30. P.912-918.

103. Dai C, Holland EC: Astrocyte difeerentiation states and glioma formation. Cancer J 9: 72-81,2003

104. Daimaru Y., Hashimoto H., Enjoji M. Malignant peripheral nerve-sheath tumors (malignant schwannomas). An immunohistochemical study of 29 cases. Am. J. Surg. Pathol. 1985. V.9. P.434-444.

105. Damianov I. Antibodies to intermediate filaments and histogenesis. Lab. Invest. 1982. V.47. P.215-217.

106. Danks R.A., Chopra G., Gonzales M.F. et al. Neurosurgery. 1995. V.37. P.246-254.

107. Daugherty CK, Banik DM, Janish L, Ratain MJ. Quantitative analysis of ethical issues in phase I trials: a survey interview of 144 advanced cancer patients. IRB. 2000 May-Jun; 22(3):6-14.

108. Daumas-Duport C., Scheithauer B., O'Fallon J. et al. Grading of astrocytomas. A simple and reproducible method // Cancer. — 1988. — Vol. 62. — P. 2152-2165.

109. Daumas-Duport C., Scheithauer B.W., O'Fallon J.R., Kelly P.J. Cancer. 1988. V.62. P.2152-2165.

110. DeAngelis LM: Brain tumors. N Engl J Med 344: 114-123, 2001

111. DeArmond S.J., Eng L.F., Rubinstein L.J. The application of glial fibrillary acidic (GFA) protein immunhistochemistry in neurooncology. A progress. Report. Pathol. Res. Pract. 1980. V.168. P.374-394.

112. Dejana E., Corada M., Lampugnani M.G. Endothelial cell-to-cell junctions//FASEB J.- 1995,- v.9.- N.10.- p.910-918.

113. DeLellis R.A. Diagnostic immunohistochemistry. Masson. New York. 1981.

114. De Lellis R.A. Diagnostic Immunohistochemistry. 1988. New York.

115. DeLellis R.A. Advances in immunhistochemistry. Raven. Press. New York. 1988.

116. Demuth T, Berens M.E. Molecular mechanisms of glioma cell migration and invasion. J Neurooncol. 2004 Nov. 70 (2): 217-28.

117. Demeule M, Regina A, Annabi B, Bertrand Y, Bojanowski M.W, Beliveau R. Brain endothelial cells as pharmacological targets in brain tumors. Mol Neurobiol. 2004 Oct. 30 (2): 157-83.

118. Denk H. Morphologische Nachweismethoden: Methodisches Spektrum (Prinzipien, Mechanismen und Wertigkeit). Verh. Dtsch. Ges. Pathol. 1986. V.70. P. 18-27.

119. Denk H. Immunhistochemical Methods for the demonstration of tumor markers. In: Seifert G. Morphological tumor markers. General aspects and diagnostic relevance. Springer, Berlin Heidelberg. New York. 1987. P.47-69.

120. DeStephano D.B., Lloyd R.V., Pike A.M., Wilson B.S. Pituitary adenomas. An immunohistochemical study of hormone produktion and chromogranin localization. Am. J. Pathol. 1984. V.116. P.464-472.

121. Di X., Nishizaki T., Harada K., Kajiwara K., Nakayama H., Ito H. Proliferative potentials of glioma cells and vascular components determined with monoclonal antibody MIB-1. J. Exp. Clin. Cancer. Res. 1997. V.16. P.153-157.

122. Di Carlo E.F., Woodruff J.M., Bansal M., Erlandson R.A. The purely epithelioid malignant peripheral nerve sheath tumor. Am. J. Surg. Pathol. 1986. V.10. P.478-490.

123. Dinerman J.L., Dawson T.M., Schnell M.J., Snowman A., Snyder S.H. Endotelial nitric oxide synthaselocalized to hippocampal pyramidal cell: implication for synaptic plasticity. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1994. V.91. P.4214-4218.

124. Doglioni C., dell'Orto P., Coggi G., Iuzzolino P., Bontempini L., Viale G. Choroid plexus tumors. An immuncytochemical study with particular reference to the coexpression of intermediate filament proteins. Am. J. Pathol. 1987. V.127. P.519-529.

125. Donato R. SI 00: a multigenic family of calcium-modulated proteins of the EF-hand type with intracellular and extracellular functional roles. Int. J. Biochem. Cell. Biol. 33 (2001), pp. 637-668.

126. Doolittle N.D. State of the science in brain tumor classification. Semin Oncol Nurs. 2004 Nov; 20 (4):224-30.

127. Du Plessis D.G, Rutherfoord G.S, Joyce K.A, Walker C. Phenotypic and genotypic characterization of glioblastoma multiforme with epithelial differentiation and adenoid formations. Clin Neuropathol. 2004 Jul-Aug; 23 (4): 141-8.

128. Dupoury P., Lucas C.V., Gomes D., Jacque C. Immunohistochemical localization of the myelin basic protein and of the glial fibrillary acidic protein: comparative study of normal, quaking and simpi mice/ J. Neurosc. Res. 1980. V.5. P.387-398.

129. Ebhart G., Cervos-Navarro J. The fine structure of cells in astrocytomas of various grades of malignancy. Acta Neuropathol (Supp L). 1981. P.88-90.

130. Ehrmann J., Kolar Z., Kala M. et al. Expression of p53 in glioblastoma multiforme cells: relationship to survival, proliferation and glycosylation. Cesk. Pathol. 1995. V.3l.P.87-91.

131. Eiden L.E., Huttner W.B., Mallet J., O'Connor D.T., Winkler H., Zanini A. A nomenclature proposal for the chromogranin/ secretogranin proteins. Neuroscience 1987. V.21. P.1019-1021.

132. Eizaguirre B., Elizalde J.M., Martinez L.J. et al. Gliosarcoma. Case report with immunohistochemical study. Arch. Anat. Cytol. Pathol. 1994. V.42. P.54-56.

133. Eng L.F., Smith M.E., de Vellis J., Skoff P.P. Recent studies of the glial fibrillary acidic protein. Ann. NY. Acad. Sci. 1985. V.455. P.525-537.

134. Erdem O, Dursun A, Coskun U, Gunel N. The prognostic value of p53 and c-erbB-2 expression, proliferative activity and angiogenesis in node-negative breast carcinoma. Tumori. 2005 Jan-Feb;91(l):46-52.

135. Eriksen JL, Gillespie R, Druse MJ. Effects of ethanol and 5-HT(lA) agonists on astroglial S100B. Brain Res. Dev. Brain Res. 139 (2002), pp. 97-105.

136. Erlandson R.A. Diagnostic immunohistochemistry of human tumors. An interim evaluation. Am. J. Surg. Pathol. 1984. V.8. P.615-624.

137. Ferri G.L., Marangos P.J., Bloom S.R., Polak J.M. Intramural distribution of neuron specific enolase (NSE) in the human gastrointestinal tract. Experiental. 1983. V.39. P.622-623.

138. Figueroa P, Lupton J.R, Remington T, Olding M, Jones R.V, Sekhar L.N, Sulica V.l. Cutaneous metastasis from an intracranial glioblastoma multiforme. J Am Acad Dermatol. 2002 Feb; 46 (2): 297-300.

139. Finn P.E., Bjerkvig R., Pilkington G.I. The role of growth factors in the malignant and invasive progression of intrinsic brain tumours //Anticancer Res. — 1997.— 17.—P.4163—72.

140. Fischer-Colbrie R., Fischenschlager I. Immunological characterization of secretory proteins of chromaffin granules: chromogranins A, chromogranins B, and enkephalin-containing peptides. J. Neurochem. 1985. V.44. P.1854-1861.

141. Fischer-Colbrie R., Hagn C., Kilpatrick L., Winkler H. Chromogranin C: a-third component of the acidic proteins in chromaffin granules. J. Neurochem. 1986. V.47.P.318-321.

142. Forsman M, Kallioinen L, Kallioinen M, Ryhanen J. Dupuytren's contracture; increased cellularity—proliferation, is there equality? Scand J Surg. 2005;94 (l):71-5.

143. Franke3 W.W., Moll R., Schiller D.L., Schmid E., Kartenbeck J., Mueller H. Desmoplakins of epithelial and myocardial desmosomes are immunologically and biochemically related. Differentiation. 1982. V.23. P.l 15-127.

144. Franke W.W., Moll R., Mueller H., Schmid E., Kuhn C., Klepler R., Artlieb U., Denk H. Immuncytochemical identification of epithelium-derived human tumors with antibodiea to desmosomal plaque proteins. Proc. Natl. Acad. Sei. USA. 1983. V.80. P.543-547.

145. Fuller G.N. Central Nervous System Tumors In: Pediatric neoplasia. Morphology and biology / Ed D.M. Parham. — Lippincortt-Raven. — Philadelphia-New York. — 1996. — P. 153-204.

146. Fuller C.E, Frankel B, Smith M, Rodziewitz G, Landas S.K, Caruso R, Schelper R. Suprasellar monomorphous pilomyxoid neoplasm: an ultastructural analysis. Clin Neuropathol. 2001 Nov-Dec; 20 (6): 256-62.

147. Gao P, Shivers RR. Correlation of the presence of blood-brain barrier tight junctions and expression of zonula occludens protein ZO-1 in vitro: a freeze-fracture and immunofluorescence study. J Submicrosc Cytol Pathol. 2004 Jan; 36 (1): 7-15.

148. Gardner E.E., Dahl D., Bignami A. Formation of 10-nanometer filaments from the 150 K-Dalton neurofilament protein in vitro. J. Neurosci. Res. 1984. V.ll. P.145-155.

149. Garthwaite J. Neural nitric oxide signalling. Trends Neurosci. 1995. V.18. P.51-56.

150. Giannini C, Scheithauer B.W, Lopes M.B, Hirose T, Kros J.M, VandenBerg S.R. Immunophenotype of pleomorphic xanthoastrocytoma. Am J Surg Pathol. 2002 Apr; 26 (4): 479-85.

151. Ghandour M.S., Langley O.K., Gombos G. et al. Cellular localization of the brain specific a2-glicoprotein in rat cerebellum: an immunhistological study. Neurosciense. 1982. V.7. P.231-237.

152. Gould V.E., Wiedenmann B., Lee I., Schwechheimer K., Dockhorn-Dworniczak B., Radosevich J.A., Moll R., Franke W.W. Synaptophysin expression in neuroendocrine neoplasms as determined by immuncytochemistry. Am J. Pathol. 1987. V.126. P.243-257.

153. Gown A.M., Vogel A.M. Monoclonal antibodies to human intermediate filament proteins. II. Distribution of filament proteins in normal human tissues. Am. J. Pathol. 1984. V.l 14. P.309-321.

154. Guha A, Mukherjee J. Advances in the biology of astrocytomas. Curr Opin Neurol. 2004 Dec; 17(6):655-62.

155. Gullotta F., Schindler F., Schmutzler R., Week-Seifert A. GFAP in brain tumor diagnosis: possibilities and limitations. Pathol. Res. Pract. 1985. V.180. P.54-60.

156. Haan E.A., Boss B.D., Cowan W.M. Production and characterization of monoclonal antibodies against the «brain-specific» proteins 14-3-2 and S-100. Proc. Nat. Acad. Sei. USA Biol. Sei. 1982. V.79. P.7585-7589.

157. Hachisuka H., Mori O., Sakamoto F. et al. Immunohistological demonstration of S-100 protein in the cutaneous nervous system. Anat. Ree. 1984. V.210. P.639-646.

158. Heizmann CW, Fritz G, Schafer BW. SI00 proteins: structure, functions and pathology. Front Biosci. 2002 May 1; 7: P. 1356-68.

159. Nafe R, Schlote W. Histomorphometry of brain tumours. Neuropathol Appl Neurobiol. 2004 Aug;30 (4): 315-28.

160. Hagn C., Schmid K.W., Fischer-Colbrie R., Winkler H. Chromogranin A., B and C in human adrenal medulla and endocrine tissues. Lab. Invest. 1986. V.55. P.405-411.

161. Hall P., Lane D. J. Pathol. 1994. V. 172. P. 1 -4.

162. Halliday W.C., Yeger H., Duwe G.F., Phillips M.J. Intermediate filaments in meningiomas. J. Neuropathol. Exp. Neuronal. 1985. V.44. P.617-623.

163. Hartmann C, Mueller W, Lass U, Kamel-Reid S, yon Deimling A. Molecular genetic analysis of oligodendroglial tumors. J Neuropathol Exp Neurol. 2005 Jan; 64 (1): 10-4.

164. Nathoo N, Chahlavi A, Barnett: G.II, Toms S.A. Pathobiology of brain metastases. J Clin Pathol, 2005 Mar. 58 (3): 237-42.

165. Herpers MJ.II.M., Ramaekers F.C.S., Aldeweireldt J., Moesker O., Sloff J. Co-expression of glial fibrillary acidic protein- and vimentin- type intermediate filaments in human astrocytomas. Acta. Neuropathol. (Berl). 1986. V.70. P:333-339.

166. Heuschling P. Nitric oxide modulates y-interferon-induced MHC class II antigen expression on rat astrocytes. J. Neuroimmunol. 1995. V.57. P.63-69.

167. Higuchi Y., Hattori H., Hattori R., Furusho K. Increased neurons containing neuronal nitric oxide synthase in the brain of a hydroxic-ischemic neunatal rat model. Brain Dev. 1996. V.18. P.369-375.

168. Hirokawa N., Glicksman M.A., Willard M.B. Organization of mammalian neurofilament polypeptides within the neuronal cytoskeleton. J. Cell. Biol. 1984. V.98. P.1523-1536.

169. Hofkelt T., Johansson O., Goldstein M. Chemical anatomy of the brain. Science. 1984. V.225. P.1326-1334.

170. Holden J., Dolman C.L., Churg A. Immunohistochemistry of meningiomas including the angioblastic type. J. Neuropathol. Exp. Neurol. 1987. V.46. P.50-56.

171. Hong B.S., Devison P.F. Isolation and characterization of a soluble, immunoreactive peptide of glial fibrillary acidic protein. Biochim. Et Biophys. Acta. 1981. V.670. P.139-145.

172. Huber PE, Bischof M, Jenne J, Heiland S, Peschke P, Saffrich R, Grone HJ, Debus J, Lipson KE, Abdollahi A. Trimodal cancer treatment: beneficial effects of combined antiangiogenesis, radiation, and chemotherapy. Cancer Res. 2005 May l;65(9):3643-55.

173. Hulette C.M., Downey B.T., Burger P.C. Macrophage markers in diagnostic neuropathology. Am. J. Surg. Pathol. 1992. V.16. P.493-499.

174. Iadecola C., Zhang F., Casey R. et al. Inducible nitric oxide synthase gene expression in vascular cell after transsient focal cerebral ishemia //Stroke.— 1996.— 27.—P.1373—80.

175. Iadecola C. Bright and dark sides of nitric oxide in ischemic brain injury //Trends Neurosci. — 1997.— 20.— P. 132—9.

176. Ischida Y., Takahashi K., Nakazato Y. Immunhistochemical and electron-microscopie studies of experimental and human oligodendrogliomas. 11th. Int. Congr. Neuropathol. Vienna. 1982. P. 158.

177. Ischiuchi S., Tamura M. Central neurocytoma: an immunohistochemical, ultrastructural and cell culture study. Acta. Neuropathol. 1997. V.94. P.425-435.

178. Isner J.M., Asahara T. Therapeutic angiogenesis //Front Biosci.— 1998.— 3.—P.49—69.

179. Jänisch W., Lammel H., Staneczek W. Zur Epidemiologie der Geschwülste des Zentralnervensystems in der DDR. Zentralbl. Pathol. 1986. V.132. P.145.

180. Jänisch W., Schreiber D., Güthert H. Neuropathologies Tumores des Nervensystems. Fischer, Stuttgart New York. 1988.

181. Jansen M, de Witt Hamer P.C, Witmer AN, Troost D, van Noorden CJ. Current perspectives on antiangiogenesis strategies in the treatment of malignant gliomas. Brain Res Brain Res Rev. 2004 Jul; 45 (3): 143-63.

182. Jahn R., Schreiber W., Ouimet C., Greengard P. A 38000-dalton membrane protein (p38) present in synaptic vesicles. Proc. Natl. Acad. Sei. USA. 1985. V.82. P.4137-4141.

183. Janish BJ, Dorn J. How one hospital diversified. Plunging into publishing. Profiles Hosp Mark. 1986 3rd Quarter; (23):20-3.

184. Jenkins D.S., Charles I.G., Baylis S.A., Lelchuk M.W., Radomski M.W., Moncada S. Human colon cancer cell lines shows a diverse pattern of nitric oxide synthase gene expression and nitric oxide generation. Br. J. Cancer. 1994. V.70. P.847-849.

185. Jenkins D.C., Charles I.G., Thomsen L.L. et al. Role of nitric oxide in tumor growth //Proc. Natl. Acad. Sei. USA.— 1995 — 92 — P.4392—6.

186. Jensen R.L. Growth factor-mediated angiogenesis in the malignant progression of glial tumors: a review //Surg. Neurol.— 1998.— 49.— P. 189— 195.

187. Jay V., Edwards V., Varela-Stavrinou M., Rutka J. Unique intracerebral tumor with divergent differentiation in a patient presenting as NF2: report of acase with features of astrocytoma, ependymoma, and PNET. Ultrastruct. Pathol. 1997. V.21.P.57-71.

188. Junge C.E, Lee C.J, Hubbard K.B, Zhang Z, Olson J.J, Hepler J.R, Brat D.J, Traynelis S.F. Protease-activated receptor-1 in human brain: localization and functional expression in astrocytes. Exp Neurol. 2004 Jul; 188 (1): 94-103.

189. Kahn H.J., Marks A., Thorn H., Baumal R. Role of antibody to S-100 protein in diagnostic pathology. Am. J. Clin. Pathol. 1983. V.79. P.341-347.

190. Kajita Y., Takayasu M., Dietrich H.H., Dacey R.G. Possible Role of Nitric Oxide in Autoregulatory Response in Rat Intracerebral Arterioles-//Neurosurgery — 1998 — 42.— P.834—42.

191. Kandalkar B, Shah V, Shet T. Desmoplastic astrocytoma of infancy—a case.-, report. Indian J Pathol Microbiol. 2001 Jul; 44 (3): 329-32.

192. Kartenbeck J., Franke W.W., Moser J.G., Stoffels U. Specific attachment, of desmin filaments to desmosomal plaques in cardiac myocytes. EMBO. J. 1983. V.2. P.735-742.

193. Kartenbeck J., Schwechheimer K., Moll R., Franke W.W. Attachment of vimentin filaments to desmosomal plaque in human meningiomal cells and arachnoidal tissue. J. Cell. Biol. 1984. P. 1072-1081.

194. Kato M, Yano H, Okumura A, Shinoda J, Sakai N, Shimokawa K. A noninfantile case of desmoplastic infantile astrocytoma. Childs Nerv Syst. 2004 Jul; 20 (7): 499-501

195. Kepes J.J. The histopathology of meningiomas. A reflection of origin and expected behaviour? J. Neuropathol. Exp. Neurol. 1986. V.45. P.95-107.

196. Kimura T., Budka H., Soler-Federsppiel S. An immuncytochemical comparison of the glia-associated proteins glia fibrillary acidic protein (GFAP) and S-100 protein in human brain tumors. Clin. Neuropathol. 1986. V.5. P.21-27.

197. Kimelberg H.K. Water homeostasis in the brain: basic concepts. Neuroscience. 2004; 129(4):851-60. Review.

198. Kimelberg H.K., Norenberg M.D. Astrocytes. Sci. Am. 1989. V.260. P.66-76.

199. Kindblom L.G., Angervall L., Haglid K. An immuhistochemical analysis, of S-100 protein and glial fibrillary acidic protein in nasal glioma. Acta. Pathol. Microbiol. Scand. 1984. V.92. P.387-389.

200. Kitamura Y, Ota T, Matsuoka Y, Tooyama I, Kimura H, Shimohama S, Nomura Y, Gebicke-Haerter P.J, Taniguchi T. Hydrogen peroxide-induced apoptosis mediated by p53 protein in glial cells. Glia. 1999 Jan 15;25 (2): 154-64

201. Kitange G.J, Templeton K.L, Jenkins R.B. Recent advances in the molecular genetics of primary gliomas. Curr Opin Oncol. 2003 May; 15 (3): 197203.

202. Kleihues P., Burger P.C., Scheithauer B.W. Histological Typing of Tumours of the Central Nervous System. — Berlin, Springer-Verlag. — 1993.

203. Kleihues P, Cavanee W (eds): Tumours of the Nervous System. WHO Classification of Tumours. Pathology and Genetics. IARC Press, Lyon, 2000

204. Kleihues P., Kiessling M., Janzer R.S. Morphological markers in neuro-oncology. In: Seifert G. Morphological tumor markers. General aspects and diagnostic relevance. Springer, Berlin Heidelberg, New York. 1987. P.307-338.

205. Knowles R., Moncada S. Nitric oxide synthases in mammals. Biochem. J. 1994. V.298. P.249-258.

206. Kobayashi S. Meningioma, neurilemmoma and astrocytoma specimens obtaned with the squash method for cytodiagnosis. A cytologic and immunochemical study. Acta. Cytol. 1993. V.37. P.913-922.

207. Kobayashi S., Haba R., Hirakawa E. et al. Cytology and immunohistochemistry of anaplastic meningiomas in squash preparations. A report oftwo cases. Acta. Cytol. 1995. V.39. P.l 18-124. ,

208. Koga S., Zhang S., Kumanishi T. et al. Acta neuropathol. 1994. V.87. P.225-232.

209. Korkolopoulou P., Chistodoulou P., Kouzelis K. Et al. MDM2 and p53 expression in gliomas: a multivariate survival analysis including proliferation markers and epidermal growth factor receptor. Br. J. Cancer. 1997. V.75. P. 12691278.

210. Kornblum HI, Hussain R, Wiesen J, Miettinen P, Zürcher SD, Chow K, Derynck R, Werb Z: Abnormal astrocyte development and neuronal death in mice lacking the epidermal growth factor receptor. J Neurosci Res 53, 1998, 697 -717.

211. Koyama T., Ogawa M., Kurata S., Komazawa M., Murakami M. Meningeal malignant melanoma in a child: immunocytological diagnosis. Acta. Paediatr. Jpn. 1992. V.34. P.173-178.

212. Köhler G., Milstein C. Continuous cultures of fused cells secreting antibody of predefined specificity. Nature. 1975. V.256. P.495-497.

213. Kriho V.K., Yang H.Y., Moskal J.R., Skalli O. .Keratin expression in astrocytomas: an immunfluorescent and biochemical reassessment. Virchows. Arch. 1997. V.431. P. 139-147.

214. Kroh H., Figols J., Sobieraj A. Intracranial hemangiopericytomas. Histological and immunohistochemical study. Folia. Neuropathol. 1997. V.35. P.121-127.

215. Kroh H., Matyja E., Bidzinski J. Cerebral gangliogliomas. Morphological and immunohistochemical study. Folia. Neuropathol. 1996. V.34. P.107-113.

216. Kros J.M. Oligodendrogliomas: clinicopathological correlations. J. Neurooncology. 1995. V.24. P.29-31.

217. Kunishio K., Shiraishi T., Mishima N. Et al. Immunohistochemical study for choroid plexus papillomad and ependimomas. Neurol. Med. Chir. Tokio. 1991. V.31.P.859-866.

218. Kuwano R., Iwanaga T., Nakajima T. Et al. Immuncytochemical demonstration of hydroxyindol O-methyltransferase (HJOMT), neurospecific enolase (NSE) and S-100 protein in the bovine pineal gland. Brain Res. 1983. V.274. P.171-175.

219. Langford L.A., Barre G.M. Tanycytic ependymoma. Ultrastruct. Pathol. 1997. V.21.P.135-142.

220. Langley O.K.,Chandour M.S., Gombos G. Et al. Monoclonal antibodies as neural cell surface markers. Neurochem. Res. 1982. V.7. P.349-362.

221. Landsberg L. Chromogranin A. N. Engl. J. Med. 1984. V.311. P.794-795.

222. Lassmann H., Hagn C., Fischer-Colbrie R., Winkler H., Presence of chromogranin A, B and C in bovine endocrine and nervous tissues: a comparative immunohistochemical study. Histochem. J. 1986. V.18. P.380-386.

223. Lauriola L., Cocchia D., Sentinelli S., Maggiano N., Maira G., Michetti F. Immunohistochemical detection of folliculo-stellte cells in human pituitary adenomas. Virchows. Arch. (Cell. Pathol.) 1984. V.47. P. 189-197.

224. Lazarides E. Intermediate filaments as mechanical integration of cellular space. Nature. 1980. V.283. P.249-256.

225. Lee I., Gould V.E., Moll R., Wiedenmann B., Franke W.W. Synaptophysin expressed in the bronchopulmonary tract: neuroendocrine cells, neuroepithelial bodies, and neuroendocrine neoplasms. Differentiation. 1987. V.34. P. 115-125.

226. Lee V., Wu H.L., Schlaepfer W.W. Monoclonal antibodies recognize individual neurofilament triplet proteins. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1982. V79. P.6089-6092.

227. Leenstra S. Biology of Gliomas. Amsterdam. 1994.

228. Levine A.J., Schmidek H.H. Molecular genetics of nervous system tumors. New York. 1993.

229. Liberski P.P. The ultrastructure of glial tumors of astrocytic lineage: a review. Folia Neuropathol. 1998; 36 (3): 161-77.

230. Lloyd R.V., Wilson B.S. Specific endocrine tissue marker defined by a monoclonal antibody. Science. 1983. V.222. P.628-630.

231. Lloyd R.V., Mervak T., Schmidt K., Warner T.F.C.S., Wilson B.S. Immunhistochemical defection of chromogranin and neuron-specific enolase in pancreatic endocrine neoplasms. Am. J. Surg. Pathol. 1984. V.8. P.607-614.

232. Lopes M. B. S., VanderBerg S. R„ Scheithauer B. W. // Molec- 118. ular Genetics of Nervous System Tumors / Eds A. J. Levine, H. H. Schmidek. New York, 1993.-P. 1-36. 119.

233. Lorente M, Mirapeix RM, Miguel M, Longmei W, Volk' D, Cervos-Navarro J. Chronic hypoxia induced ultrastructural changes in the rat adrenal zona glomerulosa. Histol Histopathol. 2002 Jan; 17 (1): 185-90.

234. Louis D.N., von Deimling A., Chung R.Y. et al. J. Neuropathol. Exp. Neurol. 1993. V.52.P.31-38.

235. Lundberg J.M., Hofkelt T. Coexistence of peptides and classical neurotransmitters. Trends. Neurosci. 1983. V.6. P.325-333.

236. Ma L., Morita I., Murota S., Presence of constitutive type nitric oxide synthase in cultured astrocytes isolated from rat cerebra. Neurosci. Lett. 1994. V.174. P.123-126.

237. Madsen C., Schroder H.D. Ki-67 immunoreactivity in meningiomas-determination of the proliferative potential of meningiomas using the monoclonal antibody Ki-67. Clin. Neuropathol. 1997. V.16. P. 137-142.

238. Mahyar-Roemer M, Fritzsche C, Wagner S, Laue M, Roemer K. Mitochondrial p53 levels parallel total p53 levels independent of stress response in human colorectal carcinoma and glioblastoma cells. Oncogene. 2004 Aug 19; 23 (37): 6226-36.

239. Mannoji H., Becker L.E. Ependymal and choroid plexus tumors. ' Cytokeratin and GFAP expression. Cancer. 1988. V.61. P.1377-1385.

240. Marangos P.J. Basic and clinical neurobiological applications J of neuronal and nonneuronal enolase. Multiple Forms enzymes. Basel etc.: S.I., 1982- V.l. P.214-219.

241. Marangos P.J., Campbell I.C., Schmechel D.E. et al. Blood plateles contain a neuron-specific enolase subunit. J. Neurochem. -1980. V.34. P.1254-1258.

242. Marsden H.B., Kumar S., Kahn J., Anderton B.J. A study of glial fibrillary acidic protein (GFAP) in childhood brain tumours. Int. J. Cancer. 1983. V.31. P.43 9-445.

243. Maruyama R., Koga K., Nakahara T., Kishida K., Nabeshima K. Cerebral myxopapillary ependimoma. Hum. Pathol. 1992. V.23. P.960-962.

244. Matsuno A., Sasaki T., Nagashima T., Matsuura R., Tanaka H. et al. Immunohistochemical examination of proliferative potentials and the expressionof cell cycle-related proteins of intracranial chordomas. Hum. Pathol. 1997. V.28. P.714-719.

245. McConalogue K., Furness J.B. Projectionsof nitric oxide synthesising neurons in the gunea pig colon. Cell Tissue Res. 1993. V.271. P.545-553.

246. Meis J.M., Ordonez N.G., Bruner J.M. Meningiomas. An immunhistochemical study of 50 cases. Arch. Pathol. Lab. Med. 1986. V.110. P.934-937.

247. Melgar MA, Rafols J, Gloss D, Diaz FG. Postischemic reperfusion: ultrastructural blood-brain barrier and hemodynamic correlative changes in an awake model of transient forebrain ischemia. Neurosurgery. 2005 Mar;56(3):571-81.

248. Memoli V.A., Brown E.F., Gould V.E. Glial fibrillary acidic protein (GFAP) immunoreactivity in peripheral nerve sheath tumors. Ultrastruct. Pathol. 1984. V.7. P.269-275.

249. Mennel H.D, Lell B. Ganglioside (GD2) expression and intermediary filaments in astrocytic tumors. Clin Neuropathol. 2005 Jan-Feb; 24 (1): 13-8.

250. Merlo A. Genes and pathways driving glioblastomas in humansand murine, disease models. Neurosurg Rev. 2003 Jul; 26 (3): 145-58.

251. Mhiri C., Ben-Rhouma T., Djindjan M. et al. Pseudo-oligodendrogliomatous meningioma. Report of 2 cases and review of the literature. Neurochirurgie. 1991. V.37. P.398-402.

252. Michetti F., Rende M., Calagero . et al. Immunochemical detection of S-100 protein in non-nervous structures of the rabbit eye. Ibid. 1985. V.332. P.358-360.

253. Miettinen M., Clark R., Virtanen I. Intermediate filament proteins in choroid plexus and ependyma and their tumors. Am. J. Pathol. 1986. V.123. P.231-240.

254. Minc-Golomb D., Tsarfaty I., Schwartz J.P. Expression of inducible nitric oxide synthase by neurons following exposure to endotoxin and cytokine. Br. J. Pharmacol. 1994. V.112. P.720-722.

255. Mir C, Clotet J, Aledo R, Durany N, Argemi J, Lozano R, Cervos-Navarro J, Casals N. CDP-choline prevents glutamate-mediated cell death in cerebellar granule neurons. J Mol Neurosci. 2003 Feb; 20 (1): 53-60.

256. Mischel P.S, Nelson S.F, Cloughesy T.F. Molecular analysis of glioblastoma: pathway profiling and its implications for patient therapy. Cancer Biol Ther. 2003 May-Jun; 2 (3): 242-7.

257. Mizuno J., Iwata K., Takei Y. Immunohistochemical study of hemangioblastoma with special reference to its cytogenesis. Neurol. Med. Chir. Tokyo. 1993. V.33. P.420-424.

258. Miyagami M., Nakamura S., Tubular bodies in endothelial cells of glioblastomas and astrocytomas. Noshuyo Byori 1996. 13 (2). P. 107-113.

259. Moll R., Franke W.W., Schiller D.L., Geiger B., Krepler R. The catalog of human cytokeratins: patterns of expression in normal epithelial tumors and cultured cells. Cell. 1982. V.31. P. 11-24.

260. Moll R., Schweikart G., Czernobilsky B. Desmosomen-assoziirte Vimentin-Filamente als Cytoskelett-Merkmal von Granulosazell-Tumoren des Ovars. Verh. Dtsch. Ges. Pathol. 1985. V.69. P.628.

261. Moll R., Cowin P., Kapprell H.P., Franke W.W. esmosomal proteins: new markers for identification and classification of tumors. Lab. Invest. 1986. V.5. P.4-25.

262. Moncada S., Palmer R.M.J., Higgs E.A. Nitric oxide: Physiology, pathophysiology and pharmacology. Pharmacol. Rev. 1991. V.43. P. 109-142.

263. Montagne K, Marie B, Cahn V, Hennequin V, Didelot A, N'Seir R, Beauchesne P, Grignon Y. Systemic metastasis at the time of diagnosis of a glioblastoma. Ann Pathol. 2004 Jun; 24 (3): 268-70.

264. Nagashima T., DeArmond S J., Murovic J., Hoshino T. Acta neuropathol. 1985. V.67. P.155-159.

265. Nagle R.B., McDaniel K.M., Clark V.A., Payne C.M. The use of antikeratin antibodies in the diagnosis of human neoplasms. Am. J. Clin. Pathol. 1983. V.79. P.458-466.

266. Nakajima T., Watanabe S., Sato Y., Kameya T., Hirota T., Shimosato Y. An immunoperoxidase study of S-100 protein distribution in normal and neoplastic tissues. Am. J. Surg. Pathol. 1982. V.6. P.715-727.

267. Nakamura Y., Becker L.E., Marks A. Distribution of immunoreactive S-100 protein in pediatric brain tumors. J. Neuropathol. Exp. Neurol. 1983. V.42. P.136-145.

268. Nakazato Y., IshizekiJ., Takahashi K.,Yamaguchi H., Kamei T., Mori T. Localization of S-100 protein and glial fibrillary acidic protein-related antigen in pleomorphic adenoma of the salivery glands. Lab. Invest. 1982. V.46. P.621-625.

269. Nakazato Y., Ishida Y., Takahashi K., Suzuki K. Immunhistochemical distribution of -100 protein and glial fibrillary acidic protein in normal and neoplastic salivary glands. Virchows. Arch. (Pathol. Anat.) 1985. V.405. P.299-310.

270. Nestler E.J., Walaas S.I., Greengard P. Neuronal phosphoproteins: physiological and clinical implications. Science. 1984. V.225. P.1357-1364.

271. Nathan C., Sporn M. Cytokines in context. J. Cell. Biol. 1991. V.113. P.981-986.

272. Neumann M, Kunz U, Lehmann H, Gabel D. Determination of the subcellular distribution of mercaptoundecahydro-closo-dodecaborate (BSH) in human glioblastoma multiforme by electron microscopy. J Neurooncol. 2002 Apr; 57 (2): 97-104.

273. Ng H.K., Tse C.C.H., Lo S.T.H. Meningiomas and arachnoid cells: an immunohistochemical study of epithelial markers. Pathology. 1987. V.19. P.253-257.

274. Ng H.K., Lo K.W., Huang D.P., Poon W.S. Int. J. Surg. Pathol. 1994. V.l. P.163-170.

275. Nomura K., Karim A.B.M.F. Нейроэпителиальные опухоли мозга // Факторы прогноза в онкологии: Пер. с англ. / Под ред. В.Е. Кратенка. — Мн.: Белорусский центр научной медицинской информации, 2000. — С. 294-300.

276. Nowacki Р, Tabaka J, Jezewski D, Honczarenko К. Diagnosis of brain gliomas in stereotactic biopsy assisted by optical neuro-navigation systemNeurol Neurochir Pol. 2004 Jan-Feb; 38 (1): 3-8.

277. Ogawa H., Sato Y., Takeshita I. Et al. Transient expression of glial fibrillary acidic protein in developing oligodendrocytes in vitro. Develop. Brain. Res. 1985. V.18. P.133-141.

278. Osborn M., Weber K. Tumor diagnosis by intermediate filament typing: a novel tool for surgical pathology. Lab. Invest. 1983. V.48. P.372-394.

279. Osborn M., Franke W.W., Weber K. Direct demonstration of the presence of two immunologically distinct intermediate-sized filament systems in the same cell by double immunofluorescence microscopy. Exp. Cell. Res. 1980. V.125. P.37-46.

280. Osborn M., Geisler N., Shaw G., Weber K. Intermediate filaments. Cold. Spring. Harbor. Symp. Quant. Biol. 1982. V.46. P.413-429.

281. Osborn M., Dirk T., Käser K., Weber K., Altmannsberger M. Immunhistochemical localization of neurofilaments and neuron-specific enolase in 29 cases of neuroblastoma. Am. J. Pathol. 1986. V.122. P.433-442.

282. Papadopoulos M.C, Saadoun S, Davies D.C, Bell B.A. Emerging molecular mechanisms of brain tumour oedema. Br J Neurosurg. 2001 Apr. 15 (2): 101-8.

283. Peraud A, Mondal S, Hawkins C, Mastronardi M, Bailey K, Rutka J.T. Expression of fascin, an actin-bundling protein, in astrocytomas of varying grades. Brain Tumor Pathol. 2003; 20 (2): 53-8.

284. Perry A., Parisi J.E., Kurtin P.J. Metastatic adenocarcinoma to the brain: an immunhistochemical approach. Hum. Pathol. 1997. V.28. P.938-943.

285. Pixley S.K.R., De Vellis. Transition between immature radial glia and mature astrocytes studied with a monoclonal antibody to vimentin. Dev. Brain. Res. 1984. V.15. P.201-209.

286. Porter B.F, Summers B.A, Leland M.M, Hubbard G.B. Glioblastoma multiforme in three baboons (Papio spp). Vet Pathol. 2004 Jul. 41 (4): 424-8.

287. Pollack I.F., Campbell J.W., Hamilton R.L., Martinez A.J., Bozik M.E. Proliferation index as a predictor of prognosis in malignant gliomas of childhood. Cancer. 1997. V.79. P.849-856.

288. Pollack J.M., van Noorden S. Immuncytochemistry. Practical applications in pathology and biology. Wright. PSG, Bristol. London. Boston. 1983.

289. Preusser M, Gelpi E, Matej R, Marosi C, Dieckmann K, Rossler K, Budka H, Hainfellner JA. No prognostic impact of survivin expression in glioblastoma. Acta Neuropathol (Berl). 2005 Apr 20;

290. Probst A., Anderton B., Ulrich J. Neurofibrillary changes in human brain: a neuropathologic revew and an immuncytochemical investigation. J. Submicrocs. Cytol. 1984. V.16. P.187.

291. Pulford K, Lamant L, Espinos E, Jiang Q, Xue L, Turturro F, Delsol G, Morris S.W. The emerging normal and disease-related roles of anaplastic lymphoma kinase. Cell Mol Life Sei. 2004 Dec; 61(23):2939-53

292. Quinlan R.A., Schiller D.L., Hatzfeld M., Achtstätter T., Moll R., Jorcano J.L., Magin T.M., Franke W.W. Patterns ofexpression and organization of cytokeratin intermediate filaments. Ann. NY Acad. Sei. 1985. V.455. P.282-306.

293. Radhakrishnan V.V., Saraswathy A., Radhakrishnan N.S.-, Rout D. Diagnostic utility of immunohistochemical techniques in intramedullary Schwann-cell tumours. Indian. J. Pathol. Microbiol. 1993. V.36. P.87-91.

294. Raff M.C., Miller R.H., Noble M. A glial progenitor cell that develops in vitro an astrocyte or an oligodendrocyte depending on culture medium. Nature. 1983. V.303. P.390-396.

295. Ramaekers F.C.S., Stedts F., Voolijs G.P. Current perspectives in molecular and cellular oncology. Ed. D. Spandidos. London. 1992. P.285-318.

296. Ramos C, Martinez A, Robert B, Soriano E. Msxl expression in the adult mouse brain: characterization of populations of beta-galactosidase-positive cells in the hippocampus and fimbria. Neuroscience. 2004; 127 (4): 893-900.

297. Rasmussen S., Bock E., Warecka K., Althages G. Quantation of glial fibrillary acidic protein in human brain humours. Brit. J. Cancer. 1980. V.41. P.113-116.

298. Rehm H., Wiedenmann B., Betz H. Molecular characterization of synaptophysin, a major calcium-binding protein of the synaptic vesicle membrane. EMBO. J. 1986. V.5. P.535-541.

299. Reifenberger G., Szymas J., Wechsler W. Differential expression of glial-and neuronal associated antigens in human brain tumors of the central and peripheral nervous system. Acta. Neuropathol. (Berl). 1987. V.74. P. 105-123.

300. Robles SG, Saldana C, Boto GR, Martinez A, Zamarron AP, Jorquera M, Mata P. Intradural extramedullary spinal ependymoma: a benign pathology? Spine. 2005 May 1;30 (9):E251-4.

301. Roelssman U., Velasco M.E., Sindely S.D., Gambetti P. GFAP in ependimal cells during development. An immuncytochemical study. Brain Res. 1980. V.200. P.13-21.

302. Roessmann U., Velasco M.E., Gambetti P., Autilio-Gambetti L. Vimentin intermediate filaments are increased in human neoplastic astrocytes. J. Neuropathol. Exp. Neurol. 1983. V.42. P.309.

303. Rogers N.E., Ignarro L.J. Constitutive nitric oxide synthase from cerebellum is reversibly inhibited by nitric oxide formed from L-arginine. Biochem. Biophys. Res. Commun. 1992. V.189. P.242-249.

304. Rojiani A.M, Dorovini-Zis K. Glomeruloid vascular structures in glioblastoma multiforme: an immunohistochemical and ultrastructural study. J Neurosurg. 1996 Dec. 85 (6): 1078-84.

305. Rosa P., Hile A., Lee R.W.H., Zanini A., DeCamilli P., Huttner W.B. Secretogranins I and II: two tyrosine-sulfated secretory proteins common to a variety of cells secreting peptides by the regulated pathway. J. Cell. Biol. 1985. V.101. P. 1999-2011.

306. Ross S.E, Greenberg M.E, Stiles C.D: Basic helix-loop-helix factors in cortical development. Neuron 39, 2003, 13-25.

307. Royds J.A., Ironside J.W., Taylor C.B., Graham D.I., Timperley W.R. An immunhistochemical study of glial and neuronal markers in primary neoplasms of the central nervous system. Acta. Neuropathol. (Berl). 1986. V.70. P.320-326.

308. Royds J.A., Parsons M.A., Taylor C.B., Timperley W.R. Enolase isoenzyme distribution in the human brain and its tumours. J. Pathol. 1982. V.137. P.37-49.

309. Royds J.A., Taylor C.B., Timperley W.R. Enolase isoenzymes as diagnostic markers. Neuropathol. Appl. Neurobiol. 1985. V.l 1. P. 1-16.

310. Rutten E.H., Doesburg W.H., Slooff J.L. Histologic factors in the grading and prognosis of astrocytoma grade I-IV. Journal of Neuro-Oncology 1992 Jul;13(3):223-30.

311. Russel D., Rubinstein L. Pathology of tumours of the nervous system. 5-th End. London. 1989.

312. Said J.W., Vimadalal S., Nash G., Shintaku LP. et al. Immunoreactive neuron-specific enolase, bombesin, and chromogranin as markers for neuroendocrine lung tumors. Hum. Pathol. 1985. V.16. P.236-240.

313. Sang Q., Young H.M. Chemical coding of neurons in the myenteric plexus and external muscle of the small and large intestine of the mouse. Cell Tissue Res. 1996. V.284. P.39-42.

314. Sarkar C, Sharma MC, Sudha K, Gaikwad S, Varma A. A clinico-pathological study of 29 cases of gliosarcoma with special reference to two unique variants.Indian J Med Res. 1997 Sep; 106: 229-35.

315. Sasaki A, Yoshida T, Kurihara H, Sasaki T, Nakazato Y. Glioblastoma with large numbers of eosinophilic hyaline droplets in neoplastic astrocytes. Clin Neuropathol. 2001 Jul-Aug. 20 (4): 156-62.

316. Sauvageot CM, Stiles CD: Molecular mechanisms controlling cortical gliogenesis. Curr Opin Neurobiol 12: 244 249, 2002

317. Saxon D.W., Beitz A.J. Cerebellar injury induces NOS in Purkinje cells and cerebellar afferent neurons. Neuroreport. 1994. V.21. P.809-825.

318. Schiffer D., Cavalla P., Chio A., Richiardi P., Giordana M.T. Proliferative activity and prognosis of low-grade astrocytomas. J. Neurooncol. 1997. V.34. P.31-35.

319. Schiffer D., Cavalla P., Dutto A., Borsotti L. Cell proliferation and invasion in malignant gliomas. Anticancer. Res. 1997. V.17. P.61-69.

320. Schiffer D., Giordana M.T., Mauro A., Migheli A., Germano I., Giaccone G. Immunohistochemical demonstration of vimentin in human cerebral tumors. Acta. Neuropathol. 1986. V.70. P.209-219.

321. Schindler E., Gullota F. Glial fibrillary acidic protein in medulloblastomas and other embryonic CNS tumours of children. Virchows. Arch. (Pathol. Anat.) 1983. V.398. P.263-275.

322. Schmechel D.E., Brightman M.W., Marangos P.J. Neurons switch from non-neuronal enolase to neuron-specific enolase during differentiation. Brain Res. 1980. V.190. P.195-214.

323. Schmelz M., Duden R., Cowin P., Franke W.W. A constitutive transmembrane glycoprotein of Mr 165000 (desmoglein) in epidermal and non-epidermal desmosomes. II. Immunolocalization and microinjection studies. Eur. J. Cell. Biol. 1986. V.42. P. 184-199.

324. Schmid K.W., Fischer-Kolbrie R., Hagn C. Et al. Chromogranin A and B and secretogranin II in medullary carcinomas of the thiroid. Am. J. Surg. Pathol. 1987. V.ll. P.551-556.

325. Schnitt S.J., Vogel H. Meningiomas. Diagnostic value of immunoperoxidase staining for epithelial membrane antigen. Am. J. Surg. Pathol. 1986. V.10. P.640-649.

326. Schnitzer J., Franke W.W., Schachner M. Immucytochemical demonstration of vimentin in astrocytes and ependymal cells of developing and adult mouse nervous system. J. Cell. Biol. 1981. V.90. P.435-447.

327. Schwechheimer K. Nervale Tumormarker. Verh. Dtsch. Ges. Pathol. 1986. V.70. P.82-103.

328. Schwechheimer K. Immuncytochemische Untersuchungen an Tumoren des zentralen, peripheren und autonomen Nervensystemes. Habilitationsschrift, Universität Heidelberg. 1987.

329. Schwechheimer K. The cytoskeleton: diagnostic possibilities and limitatios. In: Goerttler, Feichter G.E., Witte S. New frontiers in cytology. Modern aspects of research and practice. Springer, Berlin Heidelberg, New York, Tokyo. 1988. P.166-177.

330. Schwechheimer K. Spezielle Immunomorphologie neurogener Geschwulste. In: Doerr W., Seifert G. (Hrsg). Spezielle pathologische Anatomie, Bd 13/111. Springer. Berlin Heidelberg. New-York. Tokyo. 1988.

331. Schwechheimer K., Achtstàtter T., Franke W.W. Primàre epitheliale intracranielle Tumoren. Verh. Dtsch. Ges. Pathol. 1985. V.69. P.645.

332. Shafer R.A., Murphy S. Activated astrocytes induce nitric oxide synthase-2 in cerebral endothelium via tumor necrosis factor alpha. Glia. 1997. V.21. P.370-379.

333. Sharma S., Abbott R.I., Zagzag D. Malignant intracerebral nerve sheath tumor: a case report and review of the literature. Cancer. 1998. V.82. P.545-552.

334. Sheikov N, McDannold N, Vykhodtseva N, Jolesz F, Hynynen K. Cellular mechanisms of the blood-brain barrier opening induced by ultrasound in presence of microbubbles. Ultrasound Med Biol. 2004 Jul; 3 0 (7): 979-89.

335. Sheppard M.N., Marangos P.J., Bloom S.R., Polak J.M. Neuron specific enolase: a marker for the early development of nerves and endocrine cèlls in the homan lung. Life Sci. 1984. V.34. P.265-271.

336. Shimada H., Aoyama C., Chiba T., Newton W.A. Prognostic subgroups for undifferetiated neuroblastoma: immunhistochemical study with anti- S-100 protein antibody. Hum. Pathol. 1985. V.16. P.471-476.

337. Shih A.H, Holland E.C. Developmental neurobiology and the origin of brain tumors. JNeurooncol. 2004 Nov; 70 (2): 125-36.

338. Shuangshoti S, Rushing EJ, Mena H, Olsen C, Sandberg GD. Supratentorial extraventricular ependymal neoplasms. Cancer. 2005 Apr 28;

339. Smith T.W., Nikulasson S., De-Girolami U., De-Gennaro L.G. Immunohistochemistry of synapsin I and synaptophysin in human nervous system and neuroendocrine tumors. Applications in diagnostic neuro-oncology. Clin. Neuropathol. 1993. V.12. P.335-342.

340. Sobaniec-Lotowska ME. A transmission electron microscopic study of microglia/macrophages in the hippocampal cortex and neocortex following chronic exposure to valproate. Int J Exp Pathol. 2005 Apr;86(2):91-6.

341. Southam E., Morris R., Garthwaite J. Souces and targets of nitric oxide in rat cerebellum. Neurosci. Lett. 1992. V.137. P.241-244.

342. Stanton C.5 Perentes E., Collins V.P., Rubinstein L.J. GFA protein reactivity in nerve sheath tumors: a polyvalent and monoclonal antibody study. J. Neuropathol. Exp. Neurol. 1987. V.46. P.634-643.

343. Stefansson K., Wollmann R.L., Moore B.W. Distribution of S-100 protein outside the central nervous system. Brain Res. 1982. V.234. P.309-3L7.

344. Steinbach J.P, Weller M. Apoptosis in gliomas: molecular mechanisms and therapeutic implications. J Neurooncol. 2004 Nov. 70 (2): 245-54.

345. Stendel R, Scheurer L, Stoltenburg-Didinger G, Brock M, Mohler H. Enhancement of Fas-ligand-mediated programmed cell death by taurolidine. Anticancer Res. 2003 May-Jun; 23 (3B): 2309-14.

346. Stendel R, Stoltenburg-Didinger G, A1 Keikh C.L, Wattrodt M, Brock M. The effect of taurolidine on brain tumor cells. Anticancer Res. 2002 Mar-Apr; 22 (2A): 809-14.

347. Su M., Ono K., Tanaka R., Takahashi H. An unusual meningioma variant with glial fibrillary acidic protein expression. Acta. Neuropathol. 1997. V.94. P.499-503.

348. Sumpio B.E, Riley JT, Dardik A. Cells in focus: endothelial cell. Int J Biochem Cell Biol. 2002 Dec. 34 (12): 1508-12.

349. Takahashi D.K, Dinday M.T, Barbara N.M, Baraban S.C. Abnormal cortical cells and astrocytomas in the Eker rat model of tuberous- sclerosis complex. Epilepsia. 2004 Dec. 45 (12): 1525-30.

350. Tapscott S.J., Bennett G.S., Toyama Y., Kleinbart F., Holtzer H. Intermediate filament proteins in the developing chick spinal cord. Dev. Biol. 1981. V.86. P.40-54.

351. Taylor C.R. Principles of immunomicroscopy. In: Taylor C.R. Immunmicroscopy: a diagnostic tool for the surgical pathologist. Saunders, Philadelphia. 1986. P.l-22.

352. Taylor C.R., Cote C.R. Immunomicroscopy: a diagnostic tool for the surgical pathologist. Philadelphia. 1997.

353. Terenghi G., Polak J.M., Ballesta J. Et al. Immunocytochemistry of neuronal and glial markers in retinoblastoma. Vircows. Arch. Pathol. Anat. 1984. V.404. P.61-73.

354. Theaker J.M., Gatter K.C., Esiri M.M., Fleming K.A. Epithelial membrane antigen and cytokeratin expression by meningiomas: an immunhistological study. J. Clin. Pathol. 1986. V.39. P.435-439.

355. Thomas P., Manderino G.L., Patrick J. A monoclonal antibody against neuron-specific enolase. Immunhistichemical comparison with a polyclonal antiserum. Am. J. Clin. Pathol. 1987. V.88. P.146-152.

356. Toi M., Kondo Sh., Suzuki H. et al. Quantitative analysis of vascular endothelial growth factor in primary breast cancer //Cancer.— 1996. — 77.— P.1101— 6.

357. Tomimoto H., Nishimura M., Suenaga T. et al. Distribution of nitric oxide synthase in the human cerebral blood vessels and brain tissues. J. Cereb. Blood. Flow. Metab. 1994. V.14. P.930-938.

358. Trojanowski J.Q. Neurofilament proteins and human nervous system tumors. J. Histochem. Cytochem. 1987. V.35. P.999-1003.

359. Tsai J.C., Galdman C.K., Gillespie G.V. Vascular endothelial growth factor in human glioma cell lines: Induced secretion by EGF, PDGF-BB and EFGF // J. Neurosurgery.— 1995.— 82.— P.864—73.

360. Turpin G., Heshmati H.M., Kujas M., Gremain J., Jaque C.M., Racadot J. Immuncytochemical study of S-100 protein in human pituitary adenomas. Virchows. Arch. (Cell. Pathol.) 1988. V.55. P.107-109.

361. Van Mourik J.A, Romani De Wit T, Voorberg J. Biogenesis and exocytosis of Weibel-Palade bodies. Histochem Cell Biol. 2002 Feb. 117 (2): 113-22.

362. Van Noorden S., Polak J.M., Robinson M. et al. Neuron-specific enolase in the pituitary gland. Neuroendocrinology. 1984. V.38. P.309-316.

363. Viae J., Reano A., Brochier J., Staquet M.J., Thivolet J. Reactivity pattern of a monoclonal antikeratin antibody (KL-1). J. Invest. Dermatol. 1983. V.81. P.351-354.

364. Vigne P., Damais C., Frelin C. IL 1 and TNF alpha induce cGMP formation in C6 astrocytoma cells via the nitridergic pathway. Brain. Res. 1993. V.606. P.332-334.

365. Vinores S.A., Marangos P.J. A developmental study of neuron-specific enolase in rat adrenalin medulla. J. Neurochem. 1982. V.39. P. 1748-1750.

366. Vincent S.R. itric oxide: a radical neurotransmitter in the central nervous system. Progr. Neurobiol. 1994. V.42. P. 129-160.

367. Vincent S.R., Kimura H. Histochemical mapping of nitric oxide synthase in the rat brain. Neuroscience. 1992. V.46. P.755-765.

368. Von Eckardstein KL, Patt S, Zhu J, Zhang L, Cervos-Navarro J* Reszka R. Short-term neuropathological aspects of in vivo suicide gene transfer to the F98 rat glioblastoma using liposomal and viral vectors. Histol Histopathol. 2001 Jul; 16 (3): 735-44.

369. Wahl S.M., Allen J.B., Francis N. Macrophage- and astrocyte-derived transforming growth factor p as a meditor of CNS disfunction in acquired immune deficiency syndrome. J. Exp. Med. 1991. V. 173. P.981-991.

370. Wallace M.N., Bisland S.K. NADPH- diaphorase activity in activated astrocytes represents inducible nitric oxide synthase. Neuroscience. 1994. V.59. P.905-919.

371. Warecka K. Onto- and phylogenesis, maturation and genetic differences of glia specific glycoprotein. Neurological mutations affecting myelination: INSERM Symp. № 14.- North- Holland: Biomed. Press. -1980. P.321-326.

372. Weiss S.W., Langloss J.M., Enzinger F.M. Value of S-100 protein in the diagnosis of soft tissue tumors with particular reference to benign and malignant Schwann cell tumors. Lab. Invest. 1983. V.49. P.299-308.

373. Wiedenmann B., Franke W.W. Identification and localization of synaptophysin and integral membrane glycoprotein of Mr 38000 characteristic of presynaptic vesicles. Cell. 1985. V.41. P.1017-1028.

374. Wilson B.S., Lloyd R.V. Detection of chromogranin in neuroendocrine cells with a monoclonal antibody. Am. J. Pathol. 1984. V.l 15. P.458-468.

375. Whittle J.R., Collins F., Kelly P.A. et al. Nitric oxide synthase is expressed in experemental malignant glioma and influences tumor malignant glioma and influences tumour blood flow //Acta Neurochir (Wien). — 1996. — P. 870—6.

376. Wyatt-Ashmead J, Kleinschmidt-DeMasters B.K, Hill D.A, Mierau G.W, McGavran L, Thompson S.J, Foreman N.K. Rhabdoid glioblastoma. Clin Neuropathol. 2001 Nov-Dec; 20 (6): 248-55.

377. Yamaguchi H. Studies on the immunohistochemical localization of S-100 and glial fibrillary acidic proteins in the rat nervous system and human brain tumours. Brain. Nerve. (Tokio). 1980. V.32. P.287-303.

378. Yen S.H., Fields K.L. Antibodies to neurofilament, glial filament, and fibroblast intermediate filament proteins bind different cell types of nervous system. J. Cell. Biol. 1981. V.88. P.l 15-126.

379. Yokoyama R., Mukai K., Hirota T., Beppu Y., Fukuma H. Primary malignant melanoma (clear cell sarcoma) of bone: report of a case arising in the ulna. Cancer. 1996. V.15. P.2471-2475.

380. Yung W.K.A., Luna M., Borit A. Vimentin and glial fibrillary acidic protein in human brain tumors. J. Neuro-Oncol. 1985. V.3. P.35-38.

381. Zabel M., Dietel M. S-100 protein and neurospecific enolase in parathyroid glands and C-cells of the thyroid. Histochemie. 1987. V.86. P.3 89-392.

382. Zamecnik J, Vargova L, Homola A, Kodet R, Sykova E. Extracellular matrix glycoproteins and diffusion barriers in human astrocytic tumours. Neuropathol Appl Neurobiol. 2004 Aug. 30 (4): 338-50.

383. Zeillinger R., Tantscer E., Schneeberger C., Tschugguel W., Eder S., Sliutz G., Huber J.C. Simultaneous expression of nitric oxide synthase and estrogenreceptor in human breast cancer cell lines. Breast. Cancer. Res. Treat. 1996. V.40.P.205-207.

384. Zimmerman M., Seifert V. Endothelial and Subarachnoid Hemorrhage: An overview //Neurosurgery. — 1998. — 43. — P.863—76.

385. Zhu J, Abbruzzese JL, Izzo J, Hittelman WN, Li D. AURKA amplification, chromosome instability, and centrosome abnormality in human pancreatic carcinoma cells. Cancer Genet Cytogenet. 2005 May; 159(1): 10-7.

386. Zook B.C, Simmens S.J, Jones R.V. Evaluation of ENU-induced gliomas in rats: nomenclature, immunochemistry, and malignancy. Toxicol Pathol. 2000 Jan-Feb; 28 (1): 193-201.

387. Ztilch K.J. Brain tumors. Their biology and pathology. 3rd end. Springer. Berlin Heidelberg. New York. Tokio. 1986.