Автореферат и диссертация по медицине (14.00.25) на тему:Фармакодинамика даптомицина и ванкомицина в системах in vitro, моделирующих фармакокинетику антибиотиков: прогнозирование антистафилококкового эффекта и развития резистентности

ДИССЕРТАЦИЯ
Фармакодинамика даптомицина и ванкомицина в системах in vitro, моделирующих фармакокинетику антибиотиков: прогнозирование антистафилококкового эффекта и развития резистентности - диссертация, тема по медицине
АВТОРЕФЕРАТ
Фармакодинамика даптомицина и ванкомицина в системах in vitro, моделирующих фармакокинетику антибиотиков: прогнозирование антистафилококкового эффекта и развития резистентности - тема автореферата по медицине
Смирнова, Мария Владимировна Москва 2008 г.
Ученая степень
кандидата биологических наук
ВАК РФ
14.00.25
 
 

Автореферат диссертации по медицине на тему Фармакодинамика даптомицина и ванкомицина в системах in vitro, моделирующих фармакокинетику антибиотиков: прогнозирование антистафилококкового эффекта и развития резистентности

¡х.О

На правах рукописи

Смирнова Мария Владимировна

ФАРМАКОДИНАМИКА ДАПТОМИЦИНА И ВАНКОМИЦИНА В СИСТЕМАХ IN VITRO, МОДЕЛИРУЮЩИХ ФАРМАКОКИНЕТИКУ АНТИБИОТИКОВ- ПРОГНОЗИРОВАНИЕ АНТИСТАФИЛОКОККОВОГО ЭФФЕКТА И РАЗВИТИЯ РЕЗИСТЕНТНОСТИ

14 00 25 - фармакология, клиническая фармакология

АВТОРЕФЕРАТ

диссертации на соискание ученой степе1

кандидата биологических наук ООЗ 170969

Москва 2008

003170969

Работа выполнена в ГУ НИИ по изысканию новых антибиотиков им Г Ф Гаузе Российской академии медицинских наук

Научный руководитель:

доктор биологических наук,

профессор Фирсов Александр Алексеевич

Официальные оппоненты:

доктор медицинских наук,

профессор Жердев Владимир Павлович

доктор биочогических наук Сингин Александр Стефанович

Ведущая организация:

Российский государственный медицинский университе1

Защита диссертации состоится «_»_2008 I в_час на заседании

диссертационного совета Д 001 024 01 в ГУ НИИ фармакологии имени В В Закусова РАМН по адресу 125315, Москва, ул Балтийская, д 8

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке ГУ НИИ фармакологии им В В Закусова РАМН по адресу 125315, г Москва, ул Балтийская, д 8

Автореферат разослан «_»_2008г

Ученый секретарь диссертациониого совета, доктор медицинских наук

Е А Вальдман

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ.

Актуальность проблемы Широкое распространение антибиотико-устойчивых возбудителей инфекционных заболеваний диктует необходимость создания новых антибиотиков, способных воздействовать не только на чувствительные, но и на резистентные бактерии Это обстоятельство потребовало внести серьезные коррективы в методологию фармакодинамических исследований, в частности предусмотреть возможность прогнозирования и предотвращения процессов селекции резистентных мутантов при различных режимах введения антибиотика Для достижения указанных целей все чаще применяются динамические системы, которые позволяют изучать фармакодинамику антибиотиков m vitro и оценивать их эффективность при фармакокинетически обусловленных изменениях концентрации препаратов [Фирсов А А и соавт , 1989, Bergan Т, 1986, Blaser J , 1985, Firsov A A et al, 2007, Zinner S H , 1987] Благодаря использованию таких систем оказалось возможным успешно прогнозировать эквиэффективные уровни и дозы новых фторхинолонов [Firsov A A et al, 1998 и 2000, Vostrov SN et al, 2000], а также установить зависимость селекции резистентных стафилококков [Фирсов А А и соавт, 2003, Firsov A A et al, 2003], пневмококков [Zinner et al, 2003] и псевдомонад [Tarn V H , et al, 2005] от отношения площади под фармакокинетической кривой в пределах 24 ч (ПФК24) фторхинолона к его минимальной подавляющей концентрации для данного штамма бактерии (МПК) - ПФК24/МПК Кривые зависимости резистентности к фторхинолонам от ПФК24/МПК имели куполообразную форму, что согласуется с недавно выдвинутой гипотезой об «окне селекции мутантов» (ОСМ - «mutant selection window») [Zhao X, Drlica К, 2001] Согласно этой гипотезе селекция устойчивых мутантов наиболее вероятна, когда концентрации антибиотика попадают в ОСМ, ограниченный снизу уровнем МПК, а сверху - минимальной концентрацией, предотвращающей рост устойчивых мутантов (МПКм - MPC)

В связи с этим проверка гипотезы ОСМ для антибиотиков других групп, в частности новых липо- и гликопептидов, а также оценка их фармакодинамических свойств в динамических системах in vitro весьма актуальны

Цель работы. Прогнозирование антистафилококкового эффекта нового липопептидного антибиотика даптомицина при моделировании его терапевтических концентраций, а также прогнозирование способности даптомицина предотвращать селекцию резистентных мутантов при моно- и комбинированной терапии

Для достижения этой цели предстояло решить следующие задачи

1 Выбрать оптимальный метод количественной оценки антимикробного эффекта на примере анализа кинетики гибели и вторичного роста стафилококков под действием липо- и гликопептида (даптомицин и ванкомицин) в динамической системе in vitro

2 Установить зависимость антистафилококкового эффекта даптомицина и ванкомицина от моделируемого значения ПФК24/МПК на основе сравнительного изучения их фармакодинамики

3 Оптимизировать условия выявления резистентных стафилококков in vitro и установить зависимость их селекции от ПФК24/МПК даптомицина (при его введении отдельно и в сочетании с рифампицином) и ванкомицина

Научная новизна работы. В результате проведенных исследований

1 Теоретически обоснован интегральный метод количественной оценки антимикробного эффекта даптомицина и ванкомицина в динамической системе, моделирующей их фармакокинетику у человека, по площади между кривыми гибели/вторичного роста бактерий в присутствии антибиотика и их роста в его отсутствие (интенсивность эффекта - параметр /Е)

2 Впервые установлена инвариантная относительно бактериального штамма и антибиотика зависимость антистафилококкового эффекта даптомицина и ванкомицина, выраженного параметром /Е, от отношения ПФК24/МПК

3 Разработаны новые методические подходы к выявлению in vitro даптомицино- и ванкомицинорезистентных мутантов Staphylococcus aureus и установлена зависимость их селекции от моделируемого значения ПФК24/МПК

4 На основе зависимости от ПФК24/МПК численности колоний S aureus, резистентных к антибиотику, или изменений в МГЖ после многократного введения даптомицина и ванкомицина установлено, что наибольшие потери в чувствительности к ним стафилококков, а также максимальная селекция резистентных мутантов происходят при значениях ПФК24/МПК, равных 32-64 ч, которые ниже терапевтических

5 Доказана принципиальная возможность подавления селекции даптомицино-резистентных мутантов S aureus при сочетанием применении даптомицина с рифампицином

Научно-практическая значимость работы

1 Интегральный метод количественной оценки антимикробного эффекта, апробированный для даптомицина и ванкомицина, может быть использован при фармакодипамичееком изучении других липо- и гликопептидов

2 Благодаря инвариантности зависимости между /Е и ПФК24/МПК относительно бактериального штамма, она может быть использована для прогнозирования действия липо- и гликопептидов на репрезентативные штаммы S aureus, в частности на те, для которых МПК равна МПК50 или МПК90 По результатам такого прогноза, эффективность даптомицина в терапевтических дозах примерно равна эффективности ванкомицина

3 Разработанные методические подходы к выявлению и прогнозированию селекции мутантов S aureus, резистентных к даптомицину и ванкомицину, по величине ПФК24/МПК могут быть использованы и для других антибиотиков

4 Продемонстрированное подавление селекции даптомицинорезистентных мутантов при сочетанном применении даптомицина с рифампицином является предпосылкой для испытаний указанной комбинации в клинике

Апробация работы Материалы диссертации были представлены на 7-й Международной конференции MAKMAX/ESCMID «Антимикробная терапия» (Москва, 2005), 7-м Европейском конгрессе по химиотерапии и инфекциям (7th ECCI, Флоренция, 2005), 15-м Европейском конгрессе по клинической микробиологии и инфекционным болезням (15th ECCMID, Копенгаген, 2005)

Публикации. По теме диссертации опубликовано 6 работ, из них 3 статьи в центральных журналах и 3 тезисов

Объем и структура диссертации Диссертационная работа содержит следующие разделы введение, обзор литературы, материалы и методы, результаты собственных исследований, обсуждение результатов исследования, выводы и список литературы, включающий 16 отечественных и 215 зарубежных источников Работа иллюстрирована 5 таблицами и 53 рисунками Диссертация изложена на 170 страницах машинописного текста

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

Антибиотики и бактериальные штаммы Даптомицин был предоставлен компанией Cubist Pharmaceuticals, Inc (Лексингтон, США), а ванкомицин и рифам-

пицин были приобретены у компании MP Biomedicals, Inc (Солон, США)

В работе использовали штаммы Staphylococcus aureus, поддержание бактериальных культур обеспечивали путем их периодического посева на плотную питательную среду - агар Мюллера-Хинтон II (МХА II) Для изучения фармакодинамики даптомицина и ванкомицина были выбраны клинические штаммы - метициллиноустойчивый S aureus 866 и метициллиночувствительный S aureus 10 В экспериментах с даптомицином и рифампицином использовали метициллиноустойчивые штаммы S aureus АТСС 43300 и S aureus 866 Значения МПК антибиотиков устанавливали методом серийных разведений в бульоне Мюллера-Хинтон (МХБ, в случае с даптомицином обогащен С а*'), содержащем 24-часовую культуру стафилококка с исходной численностью клеток, равной 5x105 колониеобразующих единиц (КОЕ) в мл (КОЕ/мл) Для более точной оценки МПК антибиотиков использовали серийные разведения с различными значениями исходной концентрации Значения МПК антибиотиков для изученных штаммов приведены в таблице 1

Табл 1 Значения МПК (в мкг/мл)/МПКм (в мкг/мл) антибиотиков

антибиотик S aureus 866 S aureus 10 S aureus АТСС 43300

даптомицин 0,35/1,1 1,1/5,5 0,39/12,5

ванкомицин 0,70/2,4 1,3/11 _*

рифампицин 0,012/>800 _* 0,012/>800

*3начения МПК и МПКм антибиотика для данного штамма не определяли

Оценку МПКм осуществляли методом X Zhao и К Drlica (2001) (рис 1) После инкубирования при 37°С в течение суток, суспензию клеток стафилококка в МХБ концентрировали для достижения численности клеток, равной 10|о-10" КОЕ/мл, путем центрифугирования (4000xg в течение 10 мин) Полученную суспензию высевали на чашки Петри, содержащие антибиотик Точное значение МПКм Для каждой пары антибиотик - микроорганизм рассчитывали по результатам регрессионного анализа зависимости числа колониеобразующих единиц стафилококка от концентрации антибиотика, содержавшегося в МХА II - см рис 1 Значения МПКм антибиотиков для изученных штаммов приведены в таблице 1

о 2 4 6 8 10 12

Концентрация антибиотика, мкг/мл

Рис 1 Оценка МПКм даптомицина (темные символы) и ванкомицина (светлые символы) в отношении S aureus 866 (треугольники) и S aureus 10 (кружки) Цифрами на графике обозначены значения МПКм антибиотиков

Моделируемые фармакокииетические профили Во всех случаях моделировали моноэкспоненциальные фармакокииетические профили антибиотиков со значениями периода полувыведения (Г1/2), соответствующими установленным при клиническом изучении фармакокинетики даптомицина (9 ч), ванкомицина (6 ч) и рифампицина (3 ч)

В экспериментах с однократным введением даптомицина и двукратным введением ванкомицина с интервалом в 12 ч моделируемые значения отношения ПФК в пределах от 0 ч до бесконечности (ПФК0.„) к МПК (ПФК0,/МПК) составляли соответственно 67-540 и 33-540 ч (S aureus 866) и 43-970 и 73-1150 ч (S aureus 10) При 5-дневном введении даптомицина и ванкомицина значения ПФК24/МПК составляли 16-256 (S aureus 866) и соответственно 16-256 и 14-432 ч (S aureus 10) При моделировании сочетанного применения даптомицина с рифампицином (опыты с 5-дневным введением антибиотиков) значение ПФК24/МПК даптомицина составляло 64 ч, а рифампицина - 100 и 500 ч Большинство экспериментов были проведены в двух и более повторностях

Динамическая система in vitro Для моделирования фармакокинетических профилей и изучения фармакодинамики антибиотиков использовали динамическую систему, описанную ранее [Фирсов А А и соавт, 1989] Такая система состоит из соединенных между собой сосудов - вспомогательного, содержащего свежий МХБ («растворитель»), и основного (№1), содержащего МХБ с бактериальной культурой без (контроль) или с антибиотиком (опыт) (рис 2 (а))

Рис 2 Принцип воспроизведения моноэкспоненциального снижения концентрации антибиотика (а) и одновременного воспроизведения моноэкспоненциальных профилей двух антибиотиков (б) в динамической системе

С помощью перистальтического насоса МХБ из вспомогательного сосуда подается в основной сосуд, из которого с той же объемной скоростью (F) удаляется МХБ с бактериальной культурой (контроль) или с культурой и антибиотиком (опыт) При этом объем МХБ в сосуде №1 (V{) остается постоянным Таким образом, соотношение объемной скорости и объема жидкости в основном сосуде моделируют соотношение общего клиренса и кажущегося объема распределения антибиотика у человека

Расчет величины F, необходимой для обеспечения заданной скорости элиминации антибиотика при выбранном значении V\, осуществляется по формуле [1]

F=Vxx\.rQJTm [1]

Согласно формуле [1] для 60-мл объема среды в сосуде №1 расчетные значения F составляли 4,6 мл/ч для даптомицина (/"дан) и 6,9 мл/ч для ванкомицина (^ван)

Для одновременного моделирования моноэкспоненциальных профилей двух антибиотиков (даптомицин и рифампицин), характеризующихся разными значениями Тю, был использован принцип суперпозиции потоков, поскольку каждому из антибиотиков соответствует свое собственное значение F (/*ддп и FPm) При этом использовалась более сложная динамическая система [Blaser J, 1985], состоящая из 3 сосудов (рис 2 (б))

В этом случае вспомогательный сосуд параллельно соединен с двумя сосудами - основным (№1) и дополнительным (№2), который в свою очередь соединен с сосудом №1 В начальный момент времени в сосуд №1, содержащий МХБ с бактериальной культурой, добавляются оба антибиотика, а в сосуд №2 -только один антибиотик, характеризующийся более высоким значением Тц2 (даптомицин), в количестве, необходимом для достижения заданных значений их начальной концентрации Для воспроизведения неодинаковой скорости элиминации

даптомицина и рифампицина МХБ из вспомогательного сосуда подастся в сосуд №1 с объемной скоростью РДАП, а в сосуд №2 - с объемной скоростью РРИф - /-дли С той же объемной скоростью />Нф - /7дЛП МХБ с даптомицином подается из сосуда №2 в сосуд №1 При этом результирующая объемная скорость подачи МХБ из вспомогательною сосуда и МХБ с даптомицином из сосуда №2 в сосуд №1 складывается из £~дап и (Рриф - ^дап), т е равна />иф Таким образом, удается предотвратить слишком быстрое выведение даптомицина из основного сосуда, определяемое величиной /-"риф, и сохранить постоянство его объема Поскольку с той же объемной скоростью удаляется содержимое сосуда №1, его объем сохраняется постоянным При этом значения /'ддп и />иф рассчитываются по формуле [1] Для 85-мл объема среды в сосуде №1 (У\) значения /'"дли и составляли 6,5 и 19,6 мл/ч, соответственно, а объем сосуда №2 (У2), рассчитанный по формуле У2 = [(^риф - /гдап)//гдап]х^ь составлял 170 мл

Перед началом каждого эксперимента систему стерилизовали, заполняли свежим МХБ и термостатировали при 37°С В сосуд №1 вносили 18-часовую бактериальную культуру (106 КОЕ/мл в опытах с однократным или двукратным введением антибиотика или 108 КОЕ/мл в опытах с многократным введением), а затем, после получасовой инкубации, вводили антибиотик В течение эксперимента из сосуда №1 отбирали пробы, которые после разведения стерильной дистиллированной водой высевали на чашки Петри с МХА II без антибиотика (оценка численности бактериальной популяции) и с антибиотиком (оценка численности устойчивой субпопуляции) Нижний предел определения численности клеток бактерии составлял 1х102 и 1 х 101 КОЕ/мл, соответственно

Оценка антимикробного эффекта в отношении чувствительной и устойчивой субпопуляций и его зависимость от ПФКо-»/МПК пли ПФКм/МПК

Антимикробный эффект характеризовали временем снижения численности жизнеспособных бактерий в 10 (Тда>/,) и 100 раз (Т9д%), минимальной численностью жизнеспособных клеток (¿Умш), числом клеток в момент времени г, кратный интервалу дозирования, например, через 48 ч от начала эксперимента (Лу, площадью между кривыми изменения численности клеток в контроле и опыте в пределах г, например, от 0 до 48 ч (АВВС) и от 0 ч до того момента, когда указанные кривые совмещаются (/Е) (рис 3)

При однократном введении даптомицина и двукратном введении ванкомицина зависимость эффекта от ПФКо-«/МПК описывали уравнением [2]

¥=ах\в(х) + Ь, [2]

где х - ПФК0.И/МПК, Y Л'мин, Л« АВВС или 1Е, а а и Ь -параметры, при многократном введении - уравнением [3]

Е = £мин+(£шкс - £мин)/[1+(*/х5о,) Ч, [3]

где х - ПФК24/МПК, Е - /Е,

Емакс Ц ^мин

- максимальное и минимальное значения антимикробного эффекта, х50 -значение д:, определяемое выражением (Еыш+Еткс)/2, as- параметр

Селекцию резистентных мутантов S aureus характеризовали разностью логарифмов максимального (iVMai<c) и исходного (Д'исх) числа колоний на среде с антибиотиком, отношением величины МПК в конце эксперимента (МПКкон) к исходному значению МПК (МПКИСХ), а также площадью под кривой «логарифм числа мутантов - время» (AUBCu) Зависимость lg (NmJN„m) или МПКкон/МПК„сх от ПФК24/МПК описывали уравнением [4]

Y= Уо + а ехр [-0,5 (х - xcf/b2], [4]

где Y - lg (NmJNKCK) или МПКкон/МПКисх, У0 - минимальное значение Y, х - lg (ПФК24/МПК), хс - значение lg (ПФК24/МПК), соответствующее максимальному значению lg (Л'макс/Д'исх) или МПКкон/МПКисх, а а и b - параметры

Методические подходы к оценке антистафилококкового эффекта даптомицина и ванкомицина

В связи с тем, что вид зависимости антистафилококкового эффекта даптомицина и ванкомицина от концентрации неизвестен, на первом этапе фармакодинамических исследований была оптимизирована методология оценки этого эффекта, обеспечивающая установление количественных соотношений «ПФК/МПК - эффект» С этой целью изучена кинетика гибели/вторичного роста клеток S aureus 866 и S aureus 10 при моделировании в динамической системе однократного введения даптомицина и двукратного введения ванкомицина с интервалом в 12 ч

Во всех случаях кинетические кривые изменения численности жизнеспособных клеток 5 aureus характеризовались сокращением численности кле-

о ь

Ф

л

I-

о

0

X

1 ю о о

с о S X

|д«т

Рис 3 Параметры антимикробного эффекта

ток стафилококка под влиянием антибиотиков с последующим возобновлением их роста (рис 4)

S aureus 866 . 67

S aureus 10

/

540

S'

j 135 ' S f 270

/ S

s

85

y //

f 170 *

340

970 t

Рис 4 Кинетические кривые изменения численности клеток S aureus 866 и .S' aureus 10 под действием даптомицина и ванкомицина Цифрами у кривых обозначены моделируемые значения ПФКо-^/МПК (в часах) Остачьные обозначения те же, что на рис 1

В целом, повышение моделируемого значения ПФКо-*/МПК приводило к снижению минимальной численности жизнеспособных клеток S1 aureus 10 и вызывало задержку возобновления их роста Менее определенной оказалась взаимосвязь между моделируемым значением ПФК0.И/МПК и параметрами кинетических кривых, отражающих процессы гибели/вторичного роста клеток S aw eus 866 Так, повышение величины ПФК0-«/МПК даптомицина и ванкомицина от 135 до 540 ч практически не оказывало влияния на динамику гибели/роста стафилококка в динамической системе

Кроме того, визуальное сравнение кинетических кривых при одинаковых или сопоставимых значениях ПФКо-*/МПК не позволяло объективно сравнивать эффекты антибиотиков, что указывает на необходимость их параметризации

Описанные кинетические кривые были охарактеризованы 6 параметрами (рис 5)

10 8 6 4 2 0

R 2 = 0,69

20 т

15

10

r 2 = 0,09

R2~ 0,46

ют

R 2 = 0,88

r2= 0,87 ж

g 61 i: D>

7- 4

R2= 0,31

r 2 = 0,44

300r

£ 20(H S

n

О 100 $

m ч

10

r 2 = 0,84 *

400

100

1000

10000 10 ПФК^/МПК, ч

100

1000

10000

Рис 5 Зависимость параметров антистафилококкового эффекта даптомицина (непрерывная линия) и ванкомицина (пунктирная линия) от ПФКо^УМПК, описанная уравнением [2], для S aureus 866 и S aureus 10 Обозначения те же, что на рис 1

Как видно на рисунке, параметры Т90% и Т<><>%, отражающие скорость гибели клеток под действием антибиотика в начальной фазе кинетической кривой, не коррелируют с логарифмом моделируемого отношения ПФК0-»/МПК ванкомицина (Я2 0,03-0,09) и слабо коррелируют с логарифмом ПФКо®/МПК даптомицина (R 0,46-0,69) Более того, по крайней мере, для ванкомицина полученные зависимости Тдо% и 7д9% от ПФКо-оо/МГЖ парадоксальны вопреки логике эффект, выраженный этими параметрами, слабее при высоких значениях ПФК0 „/МПК, чем при низких

В отличие от 7'90% и Гд9о/о, параметр /VM„„, характеризующий центральную фазу

кривой, коррелирует с логарифмом ПФК0.оо/МПК (Л2 0,87 и 0,88 для даптомицина и ванкомицина, соответственно), а параметр Л:'т, характеризующий конечную фазу кривой, - нет Как видно на рисунке, величина /V, практически не изменяется при увеличении моделируемого значения ПФК0.оо/МПК даптомицина и ванкомицина (R2 0,44 и 0,31, соответственно) Оба интегральных параметра — АВВС и /Е - одинаково четко коррелируют с ПФКо-ю/МПК даптомицина (R2 0,84 и 0,81, соответственно) и ванкомицина (Л2 0,92 и 0,90, соответственно)

Проведенный анализ свидетельствует о меньшей информативности параметров Г90%, Г99% и Nx, традиционно используемых при анализе кинетических кривых гибели/роста бактерий под действием антибиотиков, по сравнению с таковой параметров Л^„„, АВВС и Поскольку точечные параметры, к числу которых относится и AU„, характеризуются меньшей точностью, чем интегральные (АВВС и /Е), которые отражают особенности кинетической кривой в целом, АВВС и /Е обладают преимуществами перед Л'мин Вместе с тем, параметр /Е предпочтительнее параметра АВВС, поскольку отражает всю совокупность наблюдаемых процессов - от гибели клеток до завершения периода их вторичного роста, - а АВВС может отражать лишь фрагмент кинетической кривой

Полученные результаты сопоставления применимости различных параметров для установления зависимости «ПФК/МПК - антимикробный эффект» согласуются с описанными ранее в фармакодинамических исследованиях со фторхинолонами [Firsov A A at al, 1997] В связи с этим, именно параметр /Е был использован в дальнейшей работе

Фармакодинамика даптомицина и ванкомицина при моделировании фармакокинетических профилей, наблюдаемых после многократного введения

антибиотиков

С целью приближения к реальным условиям клинического применения антибиотиков (7-10-дневные курсы) фармакодинамику даптомицина и ванкомицина исследовали при их ежедневном введении в динамическую систему на протяжении 5 дней, варьируя значения ПФК24/МПК даптомицина и ванкомицина, вводимых соответственно 1 и 2 раза в сутки в 16-кратном диапазоне

Как видно на рис 6, кинетические кривые изменения численности клеток S aureus 866 под воздействием даптомицина и ванкомицина имели сходный характер По мере повышения ПФК24/МПК от 16 до 256 ч, величина ZVM„„ систематически уменьшалась, а время возобновления роста бактерий возрастало Особенно отчетливо это прослеживалось применительно к воздействию на клетки S aureus 866 ванкоми-

с s

а

S

ш о

Ьй Л I-о о

X X 0) С о S 3"

256

2-

24

48

120

144

72 96

Время, ч

Рис 6 Кинетика изменения численности клеток S aureus 866 под действием даптомицина и ванкомицина Стрелками указаны моменты введения антибиотиков, цифрами у кривых -моделируемые значения ПФК24/МПК (в часах) Остальные обозначения те же, что на рис 1

цина Аналогичная закономерность отмечена и в опытах с S aureus 10, хотя кинетические кривые носили менее регулярный характер

Для количественной оценки антимикробного эффекта использовали параметр /е, который в этом случае отражает кумулятивный эффект, достигающийся к концу

курсового введения антибиотика Для каждой пары антибиотик - микроорганизм установлена зависимость /Е от ПФК24/МПК, которая отражает систематическое увеличение антистафилококкового эффекта по мере повышения ПФК24/МПК

При каждом из смоделированных значений ПФК24/МПК эффекты дапто-мицина и ванкомицина, выраженные параметром /Е, практически не отличались (для S aureus 866) или отличались незначительно (для S aureus 10) Это позволило объединить данные по обоим штаммам S aureus и антибиотикам и аппроксимировать их уравнением сигмоиды (рис 7)

ПФК24/МПК, ч

Рис 7 Зависимость антистафилококковых эффектов даптомицина и ванкомицина от моделируемого значения ПФК24/МПК, описанная уравнением [3] Обозначения те же, что на рис 1

Ввиду штаммо-независимого характера зависимости «/е - ПФК24/МПК», она может быть использована для прогнозирования антимикробных эффектов даптомицина и ванкомицина при терапевтических значениях ПФК24/МПК (создаются при клинических дозах антибиотиков) в отношении гипотетического штамма S aureus с МПК, равной МПК90

С учетом приведенных в литературе значений МПК90 (1 мкг/мл для даптомицина и 2 мкг/мл для ванкомицина [Snydman D.R et al, 2000]) терапевтические значения ПФК24/МПК для даптомицина составляют 380 ч (доза 4 мг/кг) и 570 ч (6 мг/кг), а для ванкомицина (2x1 г) - 200 ч Как видно на рис 7, прогнози-

руемая эффективность антибиотиков практически одинакова при столь разных значениях ПФК24/МПК, поскольку все они попадают в диапазон, соответствующий фазе насыщения эффекта

Устойчивость S aureus к даптомицину и ванкомицину при моделировании их фармакокннетических профилей in vitro

С целью оценки влияния ПФК24/МПК на селекцию стафилококков, устойчивых к даптомицину и ванкомицину, моделируемые значения ПФК24/МПК были выбраны так, чтобы соответствующие максимальные концентрации антибиотиков были близки к МПК, находились в пределах между МПК и МПКм, т е внутри ОСМ, или превышали МПКм Три фармакокинетические кривые, отвечающие этому критерию в наибольшей степени, показаны на рис 8 (а) - на примере штамма 5 aureus 866 при 5-дневном введении даптомицина На том же рисунке представлены результаты популяционного анализа (рис 8 (б), (в)) и динамика изменения чувствительности S aureus 866 к даптомицину (рис 8 (г))

Как видно на левой панели рисунка, при минимальном значении ПФК24/МПК, когда уровни антибиотика едва достигали МПК и на протяжении большей части интервала дозирования были вне ОСМ, ни селекции резистентных мутантов, ни потерь в чувствительности S aureus 866 не было Подобные результаты были получены и при максимальном значении ПФК24/МПК, когда уровни даптомицина превышали МПКм и также были за пределами ОСМ (правая панель рисунка) В то же время, при концентрациях даптомицина, находящихся внутри ОСМ на протяжении большей части интервала дозирования (ПФК24/МПК = 32 ч) происходила селекция даптомицино-устойчивых клеток и снижение их чувствительности, выраженное отношением МПК, (значение МПК в момент времени t) к МПКИСХ - центральная панель рис 8

Аналогичная взаимосвязь наблюдалась между селекцией антибиотико-устойчивых клеток S aureus 866 и моделируемым значением ПФК24/МПК ванкомицина

Подобным образом, наиболее выраженная селекция резистентных клеток S aureus 10 с сопутствующим снижением их чувствительности к даптомицину или ванкомицину происходила только тогда, когда их концентрации были внутри ОСМ, но не вне его

Для установления зависимости между селекцией резистентных мутантов S aureus от ПФК24/МПК, результаты популяционного анализа были выражены лога-

О 24 48 72 36 1 20

0 24 48 72 96 120 Время, ч

0 24 48 72 96 120

Рис 8 Фармакокинетические профили даптомицина (а), а также кривые роста клеток S aureus 866 на чашках, содержащих даптомицин в концентрациях 2хМПК (б) и 4хМПК (в) и динамика изменения чувствительности S aureus 866, выраженная отношением МПК/МПК„СХ (г) Цифрами на графиках обозначены моделируемые значения ПФК24/МПК (в часах)

рифмом отношения максимальной численности клеток стафилококка {Nuакс) в агари-зованной среде, содержащей даптомицин или ванкомицин, к исходной численности жизнеспособных клеток (Nmx) Динамика изменений чувствительности стафилококков под воздействием антибиотиков была выражена отношением МПКк0„ к МПКИСХ

Как видно на рис 9, применительно к селекции клеток S aureus 866 и 10, устойчивых к 2хМПК даптомицина или ванкомицина, зависимость логарифма отношения Л'макс/Л'исх от моделируемого значения ПФК24/МПК оказалась сходной (рис 9 (а))

По мере повышения ПФК24/МПК значения lg (/VMaKC//V„C)<) вначале увеличивались, достигая максимума в интервале от 32 до 64 ч, а затем уменьшались

Это обстоятельство позволило сгруппировать данные и аппроксимировать их равнением [4]

Подобно описанному для фторхинолонов [Фирсов А А и соавт, 2004, Firsov A A et al, 2003], график зависимости lg (iVMAx) ОТ ПФК24/МПК для липо- и гликопептида имеет куполообразную форму Та же форма была характерна и для зависимости «lg (NmJNmx) -ПФК24/МПК» применительно к клеткам, устойчивым к 4хМПК даптомицина или ванкомицина (рис 9 (б)), с максимумом в интервале значений ПФК24/МПК от 32 ч до 64 ч Подобная зависимость от ПФК24/МПК была установлена и для отношения МПКко„/МПК„сх (рис 9 (в))

Как видно на рис 9, селекция устойчивых клеток S aureus происходит в интервале значений ПФК24/МПК, ограниченном 30 и 100-200 ч («диапазон резистентности») При меньших и более высоких значениях ПФК24/МПК резистентность стафилококков не выявляется

Рис 9 Зависимость селекции клеток S aureus,

устойчивых к 2хМПК (а) и 4*МПК (б) BW4H штаммо-независимы-

даптомицина и ванкомицина, а также ми, установленные соотношения

изменений чувствительности (в), от м резистентностью и ото-

моделируемого значения ПФК24/МПК,

описанная уравнением [4] Обозначения те же, шением ПФК24/МПК, могут быть что на рис 1 использованы для прогнозирования

селекции устойчивых мутантов любого штамма S aureus, в том числе уже

ю

200 380570 100 1000

упомянутого выше гипотетического штамма, для которого значения МПК даптоми-цина и ванкомицина равны соответствующим значениям МПК90

Как видно на рис 9, терапевтические значения ПФК24/МПК даптомицина (380 и 570 ч) для такого штамма находятся за пределами «диапазона резистентности» Что касается терапевтического значения ПФК24/МПК ванкомицина (200 ч), оно практически совпадает с верхней границей указанного диапазона В связи с этим вероятность селекции резистентных стафилококков при ванкомицинотерапии выше, чем при использовании даптомицина

Анализ описанных выше результатов свидетельствует об относительно слабой выраженности процессов селекции устойчивых мутантов S aureus Так, к концу 5-дневного введения даптомицина численность клеток, резистентных к 2* и 4><МПК антибиотика, возрастала лишь на 2-3 порядка, а МПК- в 6-8 раз (2-3 шага при серийных разведениях)

Для того чтобы понять, чреваты ли эти изменения дальнейшим отбором резистентных мутантов и снижением их чувствительности при более длительном применении даптомицина, в динамической системе были смоделированы режимы 10-дневного введения антибиотика при значениях ПФК24/МПК, которые ассоциировались с максимальной селекцией мутантов в 5-дневных экспериментах (ПФК24/МПК = 32 или 64 ч)

Как видно на рис 10(a), на всем протяжении 10-дневного курса введения даптомицина (ПФК24/МПК = 64 ч) численность клеток S aureus АТСС 43300,

Время, сутки

Рис 10 Кинетические кривые изменения численности клеток 5 аигеи.ч ЛТСС 43300 (а), на чашках, не содержащих (ОхМПК) и содержащих даптомицин (2хМПК и 4хМПК), а также динамика изменений чувствительности клеток (б) при моделировании значения ПФК24/МПК, равного 64 ч

устойчивых к 2х и 4хМПК антибиотика, систематически возрастала, достигая к концу эксперимента ~107 КОЕ/мл Если на 5-й день наблюдения она превышала исходную на 4-5 порядков, то на 10-й - на 6 порядков Сопутствующие изменения чувствительности клеток S aureus АТСС 43300 к даптомицину также характеризовались постепенным повышением значений МПК - в 9 раз как на 5-й, так и на 10-й день (рис 10 (б)) При моделировании значения ПФК24/МПК даптомицина, равного 32 ч, изменения численности резистентных клеток стафилококка и их чувствительности к даптомицину были аналогичными

Таким образом, относительно небольшая продукция резистентных стафилококков, наблюдаемая при моделировании 5-дневного введения даптомицина, является предвестником значительного возрастания их численности при последующих введениях С другой стороны, удлинение продолжительности введения даптомицина с 5 до 10 дней сопровождалось лишь количественными (но не качественными) изменениями в популяции - чем продолжительнее воздействие антибиотика, тем больше устойчивых мутантов и тем ниже чувствительность Более того, различия в потерях чувствительности стафилококка на 5-й и 10-й дни оказались относительно незначительными

Анализ полученных данных позволяет предположить, что 5-дневные эксперименты достаточно объективно отражают динамику даптомицино-резистентности в бактериальной популяции

Фармакодинамика даптомицина и его способность к предотвращению селекции резистентных стафилококков при сочетанном применении с

рифампицином

Как было отмечено выше, селекция стафилококков, резистентных к даптомицину и ванкомицину, наблюдалась при значениях ПФК24/МПК, равных 32 - 64 ч, которые ниже соответствующих терапевтических значений ПФК24/МПК90, по крайней мере, для даптомицина Вместе с тем, в процессе клинического применения даптомицина терапевтические значения ПФК^/МПКзд могут постепенно снижаться (как это произошло в результате длительного использования ванкомицина) В таких случаях единственным выходом из положения является комбинированная антибиотикотерапия Для того чтобы оценить перспективы снижения риска развития устойчивости стафилококков к даптомицину при его сочетанном применении с другими противо-стафилококковыми антибиотиками, изучена селекция резистентных мутантов на примере комбинации даптомицина с рифампицином

Фармакодинамическое взаимодействие даптомицина (ПФК24/МПК = 64 ч) и рифампицина (ПФК24/МПК = 100 и 500 ч) выразилось в значительно более быстром и резком снижении численности чувствительных к ним клеток S aureus 866, чем при использовании антибиотиков по отдельности (рис 11 (а))

Время, ч

Рис 11 Кинетика изменения численности клеток S aureus 866 под действием даптомицина (ДАП) и рифампицина (РИФ), используемых по отдельности и в комбинации а) - чувствительных, б) - устойчивых к 4хМПК даптомицина, в) -устойчивых к 16хМПК рифампицина Цифры в скобках отражают моделируемое значение ПФК24/МПК (в часах)

В результате сочетанного применения даптомицина с рифампицином не только снижалась минимальная численность жизнеспособных клеток S aureus 866, но и увеличивалась длительность проявления антимикробного эффекта

Та же закономерность была отмечена и для S aureus АТСС 43300 При этом влияние рифампицина на наблюдаемый антимикробный эффект было тем большим, чем выше была доля рифампицина в комбинации Так, при сочетанном применении даптомицина с рифампицином в большей дозе (ПФК24/МПК = 500 ч) их антимикробный эффект (/Е) в отношении S aureus 866 возрастал в 15 раз, а в меньшей дозе (ПФК24/МПК = 100 ч) - в 10 раз по сравнению с величиной /Е при введении даптомицина без рифампицина Применительно к S aureus АТСС 43300, соответствующее увеличение /Е было 60- и 30- кратным

Сочетанное применение даптомицина с рифампицином приводило к замедлению (S aureus АТСС 43300) или к предотвращению (S aureus 866) селекции даптомицинорезистентных мутантов Если на фоне введения даптомицина численность устойчивых мутантов 5 aureus 866 неуклонно возрастала, то в присутствии рифампицина она снижалась относительно исходного уровня (рис 11 (б)) Соответственно, величина AUBCu, характеризующая интенсивность продукции мутантов, устойчивых к 4хМПК даптомицина, при моделировании комбинированного применения антибиотиков была меньше установленной при введении даптомицина отдельно на 5-34% (S aureus АТСС 43300) и 64-66% (S aureus 866)

В целом, комбинация даптомицина с рифампицином сильнее снижала селекцию даптомицинорезистентных мутантов S aureus 866, чем мутантов S aureus АТСС 43300, причем эффективность этой комбинации не зависела от моделируемого значения ПФК24/МПК рифампицина

В свою очередь, даптомицин оказывал воздействие на процессы селекции рифампицинорезистентных стафилококков Как видно на рис 11 (в), в отличие от быстрого замещения чувствительных к рифампицину клеток S aureus 866 устойчивыми, отмеченного при его введении отдельно, численность рифампицинорезистентных мутантов при сочетанном применении рифампицина с даптомицином незначительно отличалась от исходной на протяжении всего периода наблюдения Аналогичный эффект комбинации отмечен в экспериментах с S aureus АТСС 43300 Под влиянием даптомицина величина AUBCu, характеризующая численность мутантов S aureus АТСС 43300 и S aureus 866, устойчивых к 16хМПК рифампицина, снижалась соответственно на 59-71% и 80-82%

выводы-

1 На примере изучения фармакодинамики даптомицина и ванкомицина в динамической системе in vitro доказано, что оптимальным параметром, отражающим степень и длительность антистафилококкового эффекта, является площадь между кривыми изменения численности колониеобразующих единиц в присутствии и в отсутствие антибиотика (¡¿)

2 При моделировании режимов многократного введения даптомицина и ванкомицина установлена зависимость h от отношения площади под фармакокинетической кривой в пределах 24 ч к минимальной подавляющей концентрации (ПФК24/МПК), которая оказалась нсспсцифичной как для штаммов Staphylococcus aw eus, так и для антибиотиков

3 Зависимость «/Е - ПФК24/МПК» позволяет осуществлять прогноз эффективности даптомицина и ванкомицина при стафилококковой инфекции, согласно которому их терапевтические значения ПФК24/МПК могут обеспечивать одинаковый антистафилококковый эффект

4 Оптимизированы условия выявления мутантов S aureus, резистентных к даптомицину и ванкомицину, - моделирование 5-дневного введения антибиотиков, популяционный анализ с ежедневной оценкой антибиотико-чувствительности

5 Доказано, что селекция резистентных стафилококков происходит только при концентрациях антибиотиков, попадающих в «окно селекции мутантов» (ОСМ)

6 Установлена зависимость резистентности от ПФК24/МПК, инвариантная относительно бактериального штамма и антибиотика

7 Прогнозированное с помощью указанной зависимости антимутантное значение ПФК24/МПК (200 ч) для даптомицина оказалось в 2-3 раза ниже терапевтических (380-570 ч), а для ванкомицина - соизмеримым с терапевтическим (200 ч)

8 Продемонстрирована принципиальная возможность предотвращения селекции даптомицинорезистентных стафилококков путем сочетанного применения даптомицина с рифампицином при субтерапевтических значениях ПФК24/МПК

СПИСОК РАБОТ, ОПУБЛИКОВАННЫХ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ

1 Востров С Н , Лубенко И Ю , Смирнова М.В , Фирсов А А Прогноз развития устойчивости стафилококков к 8 антибиотикам по концентрации, предотвращающей селекцию мутантов // Клин Микробиол Антимикроб Терапия, 2005, т 7 (Прилож 1), с 18

2 Firsov А А , Alferova I V , Smirnova М V , Lubenko I Yu , Vostrov S N , Mirchink E P , Portnoy Yu A , Zinner S H Relative abilities of daptomycin (DAP) and vancomycin (VAN) to prevent the enrichment of resistant Staphylococcus aureus mutants in an in vitro dynamic model // Clin Microbiol Infection, 2005, v 11, Suppl 2, p 518

3 Smirnova M.V., Alferova I V , Lubenko I Yu , Vostrov S N , Zinner S H , Firsov A A Daptomycin and vancomycin pharmacodynamics with differentially susceptible Staphylococcus aureus multiple-dose simulations using an in vitro dynamic model Hi Chemotherapy, 2005, v 17, Suppl 3,p 8

4 Смирнова M.B., Алферова И В , Востров С Н , Лубенко И Ю , Портной Ю А , Фирсов А А Сравнительная фармакодинамика антистафилококкового эффекта даптомицина и ванкомицина в динамической системе in vitro // Клин Микробиол Антимикроб Терапия, 2006, т 8, №2, с 186-192

5 Firsov А А , Smirnova M.V., Lubenko I Yu , Vostrov S N , Portnoy Yu A Testing the mutant selection window hypothesis with Staphylococcus aureus exposed to daptomycin and vancomycin in an in vitro dynamic model // J Antimicrob Chemotherapy, 2006, Vol 58 (6), p 1185-1190

6 Smirnova M.V., Lubenko 1 Yu, Portnoy Y A, Zinner S H , Firsov A A Concentration-response relationships as a basis for choice of the optimal endpoints of the antimicrobial effect daptomycin and vancomycin pharmacodynamics with staphylococci in an m vitro dynamic model // Int J Antimicrob Agents, 2007, Vol 29, p 165-169

 
 

Оглавление диссертации Смирнова, Мария Владимировна :: 2008 :: Москва

СПИСОК ИСПОЛЬЗУЕМЫХ ОБОЗНАЧЕНИЙ И СОКРАЩЕНИЙ.

ВВЕДЕНИЕ.

ЧАСТЬ 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

Глава 1. Фармакодинамика антибиотиков — особый случай фармакодинамических исследований.

1.1. Фармакокинетико-фармакодинамические исследования в клинике.

1.2. Фармакокинетико-фармакодинамические исследования in vivo на инфицированных животных.

1.3. Фармакокинетико-фармакодинамические исследования in vitro.

Глава 2. Динамические системы in vitro

2.1. Воспроизведение моноэкспоненциального фармакокине-тического профиля антибиотика в динамической системе имитация одномоментного внутривенного введения).

2.2. Одновременное воспроизведение фармакокинетических профилей двух антибиотиков, характеризующихся неодинаковыми значениями экспоненты.

2.3. Трудности, возникающие при использовании динамических систем, и пути их решения.

2.4. Применение динамических систем.

Глава 3. Прогнозирование эффекта антибиотиков в отношении чувствительных к ним бактерий.

3.1. Оценка антимикробного эффекта антибиотика.

3.2. Зависимость «концентрация - эффект» и прогнозирование эффективных концентраций антибиотика.

Глава 4. Прогнозирование способности антибиотиков предотвращать селекцию резистентных бактерий.

Глава 5. Даптомицин, ванкомицин и рифампицин: фармакокинетика у человека и фармакодинамика в динамических системах in vitro.

5.1. Даптомицин.

5.1.1. Фармакокинетика даптомицина у человека.

5.1.2. Фармакодинамика даптомицина в динамических системах in vitro.

5.1.3. Селекция резистентных бактерий к даптомицину.

5.1.4. Фармакодинамика даптомицина при сочетанном применении с другими антибиотиками.

5.2. Ванкомицин.

5.2.1. Механизм возникновения резистентности у бактерий к ванкомицину.

5.2.2. Фармакокинетика ванкомицина у человека.

5.2.3. Фармакодинамика ванкомицина в динамических системах.

5.2.4. Селекция резистентных бактерий к ванкомицину.

5.3. Рифампицин.

5.3.1. Механизм возникновения резистентности у бактерий к рифампицину.

5.3.2. Фармакокинетика рифампицина у человека.

5.3.3. Фармакодинамика рифампицина в динамических системах.

5.3.4. Селекция резистентных бактерий к рифампицину.

ЧАСТЬ 2. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

Глава 6. Материалы и методы исследования

6.1. Бактериальные штаммы, оценка МПК и МПКм.

6.2. Моделируемые фармакокинетические профили.

6.3. Динамическая система in vitro.

6.3.1. Динамическая система для воспроизведения моноэкспоненциального снижения-концентрации антибиотика.81.

6.3.2. Динамическая система для одновременного воспроизведения фармакокинетических профилей двух антибиотиков.

6.4. Количественная оценка антимикробного эффекта.

6.5. Анализ зависимости антистафилоккового эффекта отПФК24/МПК.

6.6. Анализ зависимости селекции резистентных мутантов

S. aureus отПФК24/МПК.

Глава 7. Фармакодинамика даптомицина и ванкомицина: кинетика гибели клеток S. aureus и развитие резистентности в динамической системе, моделирующей in vitro фармакокинетику антибиотиков.

7.1. Методические подходы к оценке антистафилококкового эффекта даптомицина и.ванкомицина.

7.1.1. Кинетические кривые гибели/роста S. aureus под действием даптомицина и ванкомицина.

7.1.2. Зависимость антистафилококкового эффекта от ПФКо-оо/МПК.

7.2. Фармакодинамика даптомицина и ванкомицина при моделировании фармакокинетических профилей, наблюдаемых после многократного введения антибиотиков.

7.2.1. Кинетические кривые гибели S. aureus под действием даптомицина и ванкомицина.

7.2.2. Количественный анализ зависимости антистафилококкового эффекта даптомицина и ванкомицина от ПФК24/МПК.

7.3. Устойчивость S. aureus к даптомицину и ванкомицину при моделировании их фармакокинетических профилей in vitro.

7.3.1. Селекция мутантов S. aureus, резистентных к даптомицину-и ванкомицину.

7.3.2. Зависимость селекции мутантов S. aureus, резистентных к даптомицину и ванкомицину, от моделируемого значения ПФК24/МПК.:.:.

Глава 8. Фармакодинамика даптомицина и его способность к предотвращению селекции резистентных стафилококков при сочетанном применении с рифампицином.

8.1. Обоснование оптимальной длительности многократного введения даптомицина, необходимой для селекции резистентных стафилококков.

8.2. Фармакодинамика даптомицина при его сочетанном применении с рифампицином.

8.3. Устойчивость S. aureus к даптомицину при его сочетанном применении с рифампицином.

Глава 9. Обсуждение результатов исследования.

ВЫВОДЫ.

 
 

Введение диссертации по теме "Фармакология, клиническая фармакология", Смирнова, Мария Владимировна, автореферат

Актуальность проблемы. Широкое распространение антибиотико-устойчивых возбудителей инфекционных заболеваний диктует необходимость создания новых антибиотиков, способных воздействовать не только на чувствительные, но и на резистентные бактерии. Это обстоятельство потребовало внести серьезные коррективы в методологию фармакодинамических исследований, в частности предусмотреть возможность прогнозирования и предотвращения процессов селекции резистентных мутантов при различных режимах введения антибиотика. Именно поэтому для достижения указанных целей все чаще применяются динамические системы, которые позволяют изучать фармакодинамику антибиотиков in vitro и оценивать их эффективность при фармакокинетически обусловленных изменениях концентрации препаратов [Фирсов A.A. и соавт., 1989; Bergan Т. 1986; Blaser J., Zinner S.H. 1987; Firsov A.A. et al., 2007]. Благодаря использованию таких систем оказалось возможным успешно прогнозировать эквиэффективные уровни и дозы новых фторхинолонов [Firsov A.A. et al., 1998 и 2000; Vostrov S.N. et al., 2000]; a также установить зависимость селекции резистентных стафилококков [Фирсов A.A. и соавт., 2003; Firsov A.A. et al., 2003], пневмококков [Zinner et al., 2003] и псевдомонад [Tam V.H. et al., 2005] от отношения площади под фармакокинетической кривой в пределах 24 ч (ПФК24) фторхинолона к его МПК (ПФК24/МПК). Кривые зависимости резистентности к фторхинолонам от ПФК24/МПК по своей форме напоминали гауссову кривую, что согласуется с недавно выдвинутой гипотезой об «окне селекции мутантов» (ОСМ - «mutant selection window») [Zhao X., Drlica К., 2001]. Согласно этой гипотезе селекция устойчивых мутантов наиболее вероятна, когда концентрации антибиотика попадают в ОСМ, ограниченный снизу уровнем МПК, а сверху - минимальной концентрацией, предотвращающей рост устойчивых мутантов (МГЖм - MPC).

В связи с этим проверка гипотезы ОСМ для антибиотиков других групп, в частности новых липо- и гликопептидов, а также оценка их фармакодинамических свойств в динамических системах in vitro весьма актуальны.

Цель работы. Прогнозирование антистафилококкового эффекта нового липопептидного антибиотика даптомицина при моделировании его терапевтических концентраций, а также прогнозирование способности даптомицина предотвращать селекцию резистентных мутантов при моно- и комбинированной терапии.

Для достижения этой цели предстояло решить следующие задачи:

1. Выбрать оптимальный метод количественной оценки антимикробного эффекта на примере анализа кинетики гибели и вторичного роста стафилококков под действием липопептидного антибиотика даптомицина и гликопептидного антибиотика ванкомицина в динамической системе in vitro.

2. Установить зависимость антистафилококкового эффекта даптомицина и ванкомицина от моделируемого значения ПФК24/МПК на основе сравнительного изучения их фармакодинамики.

3. Оптимизировать условия выявления резистентных стафилококков in vitro и установить зависимость их селекции от ПФК24/МПК даптомицина (при его введении отдельно и в сочетании с рифампицином) и ванкомицина.

Научная новизна работы. В результате проведенных исследований:

1. Теоретически обоснован интегральный метод количественной оценки антимикробного эффекта даптомицина и ванкомицина в динамической системе, моделирующей их фармакокинетику у человека, по площади между кривыми гибели/вторичного роста бактерий в присутствии антибиотика и их роста в его отсутствие (интенсивность эффекта - параметр /е).

2. Впервые установлена инвариантная относительно бактериального штамма и антибиотика зависимость антистафилококкового эффекта даптомицина и ванкомицина, выраженного параметром Те, от отношения ПФК24/МПК.

3. Разработаны новые методические подходы к выявлению in vitro даптомицино- и ванкомицинорезистентных мутантов Staphylococcus aureus и установлена зависимость их селекции от моделируемого значения ПФК24/МПК.

4. На основе зависимости от ПФК24/МПК численности колоний S. aureus, резистентных к антибиотику, или изменений в МПК после многократного введения даптомицина и ванкомицина установлено, что наибольшие потери в чувствительности к ним стафилококков, а также максимальная селекция резистентных мутантов происходят при значениях ПФК24/МПК, равных 32-64 ч, которые ниже терапевтических.

5. Доказана принципиальная возможность подавления селекции дапто-мицинорезистентных мутантов S. aureus при сочетанном применении даптомицина с рифампицином.

Научно-практическая значимость работы.

1. Интегральный метод количественной оценки антимикробного эффекта, апробированный для даптомицина и ванкомицина, может быть использован при фармакодинамическом изучении других гликопептидов.

2. Благодаря инвариантности зависимости между /Е и ПФК24/МПК относительно- бактериального- штамма она может быть использована- для-прогнозирования действия гликопептидов на репрезентативные штаммы S. aureus, в частности на те, для которых МПК равна МПК50 или МПК90. По результатам такого прогноза, эффективность даптомицина в терапевтических дозах примерно равна эффективности ванкомицина.

3. Разработанные методические подходы к выявлению и прогнозированию селекции мутантов S. aureus, резистентных к даптомицину и ванкомицину, по величине ПФК24/МПК могут быть использованы и для других гликопептидов.

4. Продемонстрированное подавление селекции даптомицинорезистентных мутантов при сочетанном применении даптомицина с рифампицином является предпосылкой для испытаний указанной комбинации в клинике.

 
 

Заключение диссертационного исследования на тему "Фармакодинамика даптомицина и ванкомицина в системах in vitro, моделирующих фармакокинетику антибиотиков: прогнозирование антистафилококкового эффекта и развития резистентности"

Выводы:

1. На примере изучения фармакодинамики даптомицина и ванкомицина в динамической системе in vitro доказано, что оптимальным параметром, отражающим степень и длительность антистафилококкового эффекта, является площадь между кривыми изменения численности колониеобразующих единиц в присутствии и в, отсутствие антибиотика

4).

2. При моделировании режимов многократного введения даптомицина и ванкомицина установлена зависимость 1Е от отношения площади под фармакокинетической кривой в пределах 24 ч к минимальной подавляющей концентрации (ПФК24/МПК), которая оказалась неспецифичной как для штаммов Staphylococcus aureus, так и антибиотиков.

3. Зависимость «/Е - ПФК24/МПК» позволяет осуществлять прогноз эффективности даптомицина и ванкомицина при стафилококковой инфекции, согласно которому! их терапевтические значения ПФК24/МПК могут обеспечивать одинаковый антистафилококковый эффект.

4. Оптимизированы условия выявления мутантов S. aureus, резистентных к

- даптомицину " и" ванкомицину, —- моделирование-5-дневного -введения-антибиотиков, популяционный анализ с ежедневной оценкой антибиотико-чувствительности.

5. Доказано, что селекция резистентных стафилококков происходит только при концентрациях антибиотиков, попадающих в «окно селекции мутантов» (ОСМ).

6. Установлена зависимость резистентности от ПФК24/МПК, инвариантная относительно бактериального штамма и антибиотика.

7. Прогнозированное с помощью указанной зависимости антимутантное значение ПФК24/МПК (200 ч) для даптомицина оказалось в 2-3 раза ниже терапевтических (380-570 ч), а для ванкомицина - соизмеримым с терапевтическим (200 ч).

8. Продемонстрирована принципиальная возможность предотвращения селекции даптомицинорезистентных стафилококков путем сочетанного применения даптомицина с рифампицином при субтерапевтических значениях ПФК24/МПК.

 
 

Список использованной литературы по медицине, диссертация 2008 года, Смирнова, Мария Владимировна

1. Дьяков С.И., Чижов Н.П., Сидоренко C.B. Современные антибиотики и противовирусные препараты в экспериментальной химиотерапии бактериальных и вирусных инфекций. Мн.: Беларусь, 1988. - 191 с.

2. Егоров Н.С. Основы учения об антибиотиках: Учебник. 5-е изд., перераб. и доп. - М.: МГУ, 1994. - 512 с.

3. Ланчини Д., Паренти Ф. Антибиотики. Пер с англ. М.: Мир. 1985. - 272 с.

4. Сидоренко С. В. Механизмы резистентности микроорганизмов. В кн.:

5. Практическое руководство по антиинфекционной химиотерапии. Под ред. Страчунского Л. С., Белоусова Ю. Б., Козлова С. H. М.: Боргес. 2002. - с. 21— 31.

6. Сидоренко C.B., Тишков' В.И. Молекулярные основы резистентности к антибиотикам: // Успехи биологической химии. 2004, т. 44, с. 263-306.

7. Соловьев В.Н. Стратегия современной химиотерапии бактериальных- инфекций.--М.:-Медицина,-1973.^г320х

8. Соловьев В.Н., Фирсов A.A., Филов В.А. Фармакокинетика: Руководство. -М.: Медицина. 1980. - 423 с.

9. Страчунский JI.C., Козлов С.Н. Современная антимикробная химиотерапия: Руководство, для врачей. Практическое руководство по антиинфекционной химиотерапии. М.: Боргес. - 2001. - 432 с.

10. Тренин A.C. Резистентность к гликопептидным антибиотикам. // Антибиотики и химиотерапия. 1996, т.41, №5, с. 49-60.

11. Фирсов A.A., Востров С.Н., Лубенко И.Ю., Портной Ю.А. Предотвращение селекции резистентных стафилококков в динамической системе in vitro,моделирующей* фармакокинетику фторхинолонов. // Клин Микробиол Антимикробн Хшшотер. 2004, 6 (3), с. 252-259.

12. Фирсов А.А, Назаров А.Д, Черных В.М. Фармакокинетические подходы к оптимизации антибиотикотерапии. Итоги науки и техники. ВИНИТИ, "Москва. 1989; 17:1-228.

13. Харкевич Д.А. Фармакология: Учебник. 8-е изд, перераб. и- доп. - М.: ГЭОТАР-Медиа, 2005 - 736 с.

14. Ackerman В. Н, Taylor Е. Н, Olsen, К.М, Abdel-Malak W, Pappas А.А. Vancomycin serum protein binding determinationby ultrafiltration. // Drug Intellig Clin Pharm. 1988; 22, (4), pp. 300-303.

15. Andes D., Craig W.A. Animal model pharmacokinetics and pharmacodynamics: a critical review. // Int J Antimicrob Agents. 2002, 19 (4), pp. 261 -268.

16. Bacon* A.E., McGratlrS., Fekety R., Holloway W.J. In vitro synergy studies with Clostridium difficile. II Antimicrob Agents Chemother. 1991, 35 (3), pp. 582-583.

17. Barry A., Fuchs P.C., Brown S.D. In vitro activities of daptomycin against 2,789 clinical isolates from 11 North American medical centers. // Antimicrob Agents Chemother. 2001,45 (6); pp. 1919-1922.

18. Blackman H.J., Yoneda C., Dawson C.R.,,Schachter J. Antibiotic susceptibility of Chlamydia trachomatis. I I Antimicrob Agents Chemother. 1977, 12 (6), pp. 673-677.

19. Blaser J. In-vitro model for simultaneous simulation of the serum kinetics of two drugs with different half lives. // J Antimicrob Chemother. 1985, 15, suppl. A, pp. 125-130.

20. Blaser J., Stone B.B., Zinner S.H. Efficacy of intermittent versus continuous administration of netilmicin in a two-compartment in vitro model. // Antimicrob Agents Chemother. 1985, 27 (3), pp. 343-349. (a)

21. Blaser J., Stone B.B., Zinner S.H. Two compartment kinetic model with multiple artificial capillary units. // J Antimicrob Chemother. 1985, 15 (Suppl A), pp. 131-137. (b>

22. Blaser J., Zinner S.H. In,vitro models for the study of antibiotic activities. // Progr Drug Res. 1987, 31, pp. 349-381.

23. Blomberg B., Spinaci S., Fourie B., Laing R. The rationale for recommending fixed-dose combination tablets for treatment of tuberculosis. // Bulletin World Health Organization, 2001", 79 (1), pp. 61-68.

24. Blouin R.A., Bauer L.A., Miller D.D., Record K.E., Griffen Jr W.0. Vancomycin pharmacokinetics in normal and morbidly obese subjects. // Antimicrob Agents Chemother. 1982, 21 (4), pp. 575-580.

25. Boeckh M., Lode H., Borner K., Hoffken G., Wagner J., Koeppe P. Pharmacokinetics and serum bactericidal activity of vancomycin alone and in combination with ceftazidime in healthy volunteers. // Antimicrob Agents Chemother ~ 1988, 32(1), pp. 92-95.

26. Bonapace C.R., Friedrich L.V., Bosso J.A., White R.L. Determination of antibiotic effect in an in vitro pharmacodynamic model: comparison with an established animal model of infection. // Antimicrob Agents Chemother: 2002, 46 (11), pp. 3574-3579.

27. Gha R, Grucz Jr. R.G, Rybak M.J. Daptomycin dose-effect relationship against resistant gram-positive organisms. I I Antimicrob Agents Chemother. 2003, 47 (5), pp. 1598-1603. (b)

28. Cha R., Rybak M.J. Daptomycin against multiple drug-resistant staphylococcus and enterococcus isolates in an in vitro pharmacodynamic model with simulated endocardial vegetations. // Diagn Microbiol Infect Dis. 2003, 47 (3), pp. 539-546. (a)

29. Cha R., Rybak M.J. Influence of protein* binding under controlled conditions on the bactericidal activity of daptomycin in an in vitro pharmacodynamic model. // J Antimicrob Chemother. 2004, 54 (l)j pp. 259-262.

30. Chow A.W., Cheng N. In vitro activity of daptomycin (LY146032) and paldimycin (U-70,138F) against anaerobic grampositive bacteria. // Antimicrob Agents Chemother. 1988, 32 (5), pp. 788-790.

31. Coyle E.A., Kaatz G.W., Rybak MJ. Activities of newer fluoroquinolones against ciprofloxacin-resistant Streptococcus pneumoniae. II Antimicrob. Agents Chemother. 200 M5 (6), pp.1654-1659. ~

32. Craig W.A. Proof of concept: performance testing in models. // Clin Microbiol Infect. 2004, 10, (Suppl. 2), pp. 12-17.

33. Credito K., Lin G., Appelbaum P.C. Activity of daptomycin alone and in combination with rifampin and gentamicin against Staphylococcus aureus assessedby time-kill methodology. // Antimicrob Agents Chemother. 2007, 51 (4), pp. 15041507.

34. Cynamon M.H., Granato P.A. Comparison of the in vitro activities of teichomycin A2 and vancomycin against Staphylococci and-Enterococci. II Antimicrob Agents Chemother. 1982, 21 (3), pp. 504-505.

35. Dreses-Werringloer U., Padubrin I., Zeidler H., Kôhler L. Effects of azithromycin and rifampin on Chlamydia trachomatis infection in vitro. // Antimicrob Agents Chemother. 2001, 45 (11), pp. 3001-3008.

36. Drusano G.L., Townsend R. J., Walsh T.J., Forrest A., Antal E.J., Standiford'H.C. Steady-state serum pharmacokinetics of novobiocin and rifampin alone and1 in combination. // Antimicrob Agents Chemother. 1986, 30 (1), pp. 42-45.

37. Dudley M.N., Mandler H.D., Gilbert D., Ericson, J., Mayer K.H., Zinner S.H. Pharmacokinetics and'pharmacodynamics of intravenous ciprofloxacin? Studies" in" vivo and in an in-vitro model. II Am J Med. 1987, 82 (Suppl. 4A), pp. 363-368.

38. Duffull1 S.B., Begg E.J., Chambers S.T., Barclay M.L. Efficacies of different vancomycin dosing regimens, against Staphylococcus aureus determined' with a dynamic in vitro model. // Antimicrob Agents Chemother. 1994, 38 (10), pp. 24802482.

39. Dvorchik B.H., Brazier D:, DeBruin M.F., Arbeit R.D. Daptomycin pharmacokinetics and safety following administration of escalating doses once daily to healthy subjects. 11 Antimicrob Agents Chemother. 2003, 47 (4), pp. 1318-23.

40. Eliopoulos G.M., Tullis Firm J.L. Issues with glycopeptides in the treatment of serious gram positive infections. // National Foundation for Infectious Diseases.2006, VIII (3), pp. 1-6.

41. Eliopoulos G.M., Willey S., Reiszner E., Spitzer P.G., Caputo G., Moellering. Jr. R.C. In vitro and in vivo activity of LY 146032, a new cyclic lipopeptide antibiotic. // Antimicrob Agents Chemother. 1986, 30 (4), pp. 532-535.

42. Enne V.l., Delsol A.A., Roe J.M., Bennett P.M. Rifampicin resistance and its fitness cost in Enterococcus faecium. II J Antimicrob Chemother. 2004, 53 (2), pp. 203-207.

43. Fass R.J., Helsel V.L. In vitro activity of LY146032 against Staphylococci, Streptococci, and Enterococci. II Antimicrob Agents Chemother. 1986, 30 (5), pp. 781-784.

44. Firsov A.A., Vostrov. S;N., Lubenko LH., Zinner S.H. Comparative pharmacodynamics of moxifloxacin and grepafloxacin with Staphylococcus aureus in an in vitro dynamic model. // Antiinfect Drug Chemother. 2000, 17, pp. 77. (b)

45. Firsov A.A., Zinner S.H. Use of modeling techniques to aid'in antibiotic selection. // Curr Infect Dis Rep. 2001, 3 (1), pp. 35-43.

46. Firsov A.A., Zinner S.H., Lubenko I.Y., Portnoy Y.A., Vostrov S.N. Simulated in " vitro quinolone pharmacodynamics at' clinically achievable AUC/MIC ratios: advantage of /e over other integral parameters. // Chemotherapy. 2002, 48 (6), pp. 275-279. (a)

47. Forrest A., Nix D.E., Ballow C.H., Goss T.F., Birmingham M.C., Schentag J.J. Pharmacodynamics of intravenous ciprofloxacin in seriously ill patients. // Antimicrob Agents Chemother. 1993, 37 (), pp. 1073-1081.

48. Friedman» L., Alder J.D., Silverman J.A. Genetic changes that correlate with reduced'susceptibility to daptomycin* in, staphylococcus aureus. // Antimicrob Agents Chemother. 2006, 50 (6), pp. 2137-2145.

49. Fuchs PIC, Barry A.L., Brown S.D. Daptomycin susceptibility tests: interpretive criteria, quality control, and: effect of calcium on in vitro testsi // Diagn Microbiol Infect Dis. 2000,38 (1), pp. 51-58.

50. Fuchs P.G., Barry A.L., Brown S.D. In vitro bactericidal activity of daptomycin against Staphylococci. II JAntimicrob Chemother. 2002, 49 (3), pp. 467-470.

51. Grasso S. Historical review of in-vitro models. // J Antimicrob Chemother. 1985, 15 (Suppl A), pp. 99-102.

52. Harland S., Tebbs S. E., Elliott T.S.J. Evaluation of the in-vitro activity of the glycopeptide antibiotic LY333328 in comparison with vancomycin and teicoplanin. // J Antimicrob Chemother. 1998, 41 (2), pp. 273-276.

53. Healy D.P., Polk R.E., Garson-M.L., Rock D.T., Comstock T.J. Comparison of steady-state pharmacokinetics of two dosage regimens of vancomycin in normal volunteers. II Antimicrob Agents Chemother. 1987, 31 (3), pp. 393-397.

54. Hiramatsu K., Hanaki'H., Ino T., Yabuta K., Oguri T., Tenover F.C. Methicillin-resistant Staphylococcus aureus clinical strain with reduced vancomycin susceptibility. 11J Antimicrob Chemother. 1997, 40 (1), pp. 135-136.

55. Jones R.N., Barry A.L. Antimicrobial activity and spectrum of LY146032, a lipopeptide antibiotic, including susceptibility testing recommendations. // Antimicrob Agents Chemother. 1987, 31 (4), pp. 625-9.

56. Kaatz G.W., Seo S.M., Reddy V.N., Bailey <E.M., Rybak M.J. Daptomycin compared with teicoplanin and vancomycin for therapy of experimental, Staphylococcus aureus endocarditis. // Antimicrob Agents Chemother. 1990, 34 (11), pp. 2081-2085.

57. Kaplan S.L., Mason, Jr E.O. Management of infections due to antibiotic-resistant iStreptococcus pneumoniae. II Clin Microbiol Rev. 1998, 11 (4), pp. 628-644.

58. Keil S., Wiedemann' B. Mathematical corrections for bacterial loss in pharmacodynamic in vitro dilution models. // Antimicrob Agents Chemother. 1995, 39 (5), pp. 1054-1058.

59. Krogstad, D.s J., Moeliering, Jr. R. C., Greenblatt D. J. Single-dose kinetics of intravenous vancomycin'. // J Clin Pharmacol. 1980, 20 (4), pp. 197-201.

60. Kutlin A., Kohlhoff S., Roblin P., Hammerschlag M.R., Riska P. Emergence of resistance to rifampin and rifalazil in Chlamydophila pneumoniae and Chlamydia trachomatis. 11 Antimicrob Agents Chemother. 2005, 49 (3), pp. 903-907.

61. Lee B.L, Sachdeva M, Chambers H.F. Effect of protein binding of daptomycin on MIC and antibacterial activity. // Antimicrob Agents Chemother. 1991, 1 (35), pp. 2505-2508.

62. Lee B.L, Chambers H.F, Novak R.M. et al. Daptomycin versus conventional therapy in the treatment of endocarditis and bacteremia. Paper presented at 31st Interscience Conference on Antimicrobial Agents and Chemotherapy. Chicago. 1991, Sep.

63. Lister P.D., Sanders C.C. Pharmacodynamics of levofloxacin and ciprofloxacin against Streptococcus pneumoniae. II J Antimicrob Chemother. 1999, 43 (1), pp. 7986. (a) '

64. Lister P.D., Sanders C.C. Pharmacodynamics of trovafloxacin, ofloxacin, and" ciprofloxacin: against Streptococcus pneumoniae in an in vitro pharmacokinetic model. II Antimicrob Agents Chemother. 1999, 43 (5), pp. 1118-1123. (b)

65. Lorian V, Finland M. In vitro effect of rifampin on Mycobacteria. II Applied Microbiology. 1969, 17 (2), pp. 202-207.

66. Lundstrom T.S, SobeL J'.D. Antibiotics for gram-positive bacterial infections: vancomycin, quinupristin-dalfopristin; linezolid, and daptomycin. // Infect: Dis Clin North Am. 2004, (18), pp. 651-668.

67. MacGowan A., Rogers G., Bowker K. The use of in vitro pharmacodynamic models of infection to optimize fluoroquinolone dosing regimens. // J Antimicrob Chemother. 2000, 46 (2), pp. 163-170.

68. MacGowan A., Rogers C., Bowker K. In vitro models, in vivo models, and pharmacokinetics: what can we learn from in vitro models? // Clin Infect Dis. 2001, 33, (Suppl 3): S214-220.

69. Madaras-Kelly K.J;, Larsson A.J., Rotschafer J.C. A pharmacodynamics evaluation of ciprofloxacin and ofloxacin against two strains of Pseudomonas aeruginosa. II J Antimicrob Chemother. 1996, 37 (4), pp. 703-710. (a)

70. Maduri Traczewski Mi, Goldmann D.A., Murphy P. In vitro activity of rifampin in combination with oxacillin against Staphylococcus aureus. II Antimicrob Agents Chemother. 1983, 23 (4), pp. 571-576.

71. Mandell G.L., Moorman D.R. Treatment of experimental Staphylococcal infections: effect of rifampin alone and in combination on development of rifampin resistance. II Antimicrob Agents Chemother. 1980, 17 (14), pp. 658-662.

72. Matzke G.R., McGory R.W., Halstenson C. E., Keane W.F. Pharmacokinetics of vancomycin in patients with various degrees of renal function. // Antimicrob Agents Chemother. 1984, 25 (4), pp. 433-437.

73. Meier P.S., Utz S., Aebi S., Mühlemann K. Low-level resistance to rifampin in Streptococcus pneumoniae. II Antimicrob Agents Chemother. 2003, 47 (3), pp. 863868.

74. Mendelman P.M., Roberts M.C., Smith A.L. Mutation frequency of Haemophilus influenzae to rifampin resistance. // Antimicrob Agents Chemother. 1982, 22 (3), pp. 531-533.

75. Murakawa T., Sakamoto H., Hirose T., Nishida M. New in vitro kinetic model for evaluating bactericidal efficacy of antibiotics. // Antimicrob Agents Chemother. 1980, 18(3), pp. 377-381.

76. Navashin S.M., Fomina I.P., Chernykh V.M., Nazarov A.D., Firsov A.A.

77. Microcalorimetric method in kinetic study of aminoglycoside antimicrobial action onthgram-negative bacteria. IX International Congress of Infectious and Parasitic Diseases (Munich). 1986, abstr. 1394.

78. Navashin S.M., Fomina I.P., Firsov A.A., Chernykh V.M., Kuznetsova S.M. A dynamic model for in-vitro evaluation of antimicrobial action by simulation of the pharmacokinetic profiles of antibiotics. // J Antimicrob Chemother. 1989, 23 (3), pp. 389-399.

79. Niederman M., Traub S., Ellison W.T., Hopkins D.W., and the Trovan pneumonia

80. Preston S.E., Drusano G:E., Berman A.E., Fowler C.L., Chow A.T., Dornseif B., Reichl V., Natarajan J., Corrado M: Pharmacodynamics of levofloxacin: a new paradigm for early clinical trials.//Jama. 1998, 279 (2), pp. 125-129.

81. Ragan P. Community-acquired MRS A infection: an update. // Journal of the American Academy of Physician Assistants. 2006, 19 (4), pp. 24-29.

82. Rand K.H., Houck H. Daptomycin synergy with rifampicin and ampicillin against vancomycin-resistant Enterococci. II J Antimicrob Chemother. 2004, 53 (3), pp. 530532.

83. Rayner C.R., Forrest A., Meager A.K., Birmingham M.C., Schentag J.J. Clinical pharmacodynamics of linezolid in seriously ill patients treated in a compassionate use programme. // Clin Pharmacokinet. 2003, 42 (15), pp. 1411-1423.

84. Reyes N., Skinner R., Benton B.M., Krause K.M., Shelton J., Obedencio G.P., Hegde S.S. Efficacy of telavancin in a murine model of bacteraemia induced by methicillin-resistant Staphylococcus aureus. 11J Antimicrob Chemother. 2006, 58, pp. 462-465.

85. Richter S.S., Kealey D.E., Murray C.T., Heilmann K.P., Cofônan S.L., Doern G.V. The in vitro activity of daptomycin against Staphylococcus aureus and Enterococcus species. I IJ Antimicrob Chemother. 2003, 52 (1), pp. 123-127.

86. Rodvold K.A., Blum R.A., Fischer J.H., Zokufa H.Z., Rotschafer J.C., Crossley K.B., Rifes L.J. Vancomycin pharmacokinetics in patients with various degrees of renal function. // Antimicrob Agents Chemother. 1988, 32 (6), pp. 848-852.

87. Rotschafer J.C., Crossley K., Zaske D.E., Mead K., Sawchuk R.J., Solem L.D. Pharmacokinetics of vancomycin: observations in 28 patients and dosage recommendations. // Antimicrob Agents Chemother. 1982, 22 (3), pp. 391-394.

88. Rotstein C. Hospital-acquired methicillin-resistant Staphylococcus aureus: epidemiology, treatment and control. // Can J Infect Dis Med Microbiol. 2006, 17 (Suppl B), 13B-18B.

89. Rybak M J, Albrecht L.M, Berman J.R, Warbasse L.H, Svensson C.K. Vancomycin pharmacokinetics in burn patients and intravenous drug abusers. // Antimicrob Agents Chemother. 1990, 34 (5), pp. 792-795.

90. Rybak M.J, Allen G.P, Hershberger E. In vitro antibiotic pharmacodynamic models. In: Nightingale CH, Murakawa T, Ambrose PG, eds. Antimicrobial pharmacodynamics in theory and clinical practice. Marcell Dekker, Inc. (New York). 2001, pp. 41-65.

91. Sakamoto H, Hirose T, Murakawa T, Nishida M. Bactericidal activity of antibiotics in an in vitro model simulating antibiotic levels in body (3). Incorporation of cefazolin into the dialysis cell. // Chemotherapy. 1980, 28, pp. 842-849.

92. Sakoulas G, Eliopoulos G.M, Alder J, Thauvin-Eliopoulos C. Efficacy of daptomycin in experimental endocarditis due to methicillin-resistant Staphylococcus aureus. // Antimicrob Agents Chemother. 2003, 47 (5), pp. 1714-1718.

93. Sanfilippo A, Morvillo E. An experimental model for the study of the antibacterial activity of the sulfonamides. // Chemotherapy. 1968, 13 (1), pp. 54-60.

94. Schentag J.J, Meagher A.K, Forrest A. Fluoroquinolone AUIC break points and the link to bacterial killing rates. Part 1: In vitro and animal models. // Ann Pharmacotherapy. 2003, 37 (9), pp. 1287-1298.

95. Schmidt S., Burkhardt O., Sahre M. et al. Experimental pitfalls in protein binding measurements. II Clin Microbiol Infect. 2006, 12 (SuppM), pp. 1541.

96. Schriever C.A., Fernandez G., Rodvold K.A., Danziger L.H. Daptomycin: a novel cyclic lipopeptide antimicrobial. // Am J Health-Syst Pharm. 2005, 62 (11), pp. 1145-58.

97. Shah »P.M. An improved method to study antibacterial activity of antibiotics in an in vitro model simulating serum levels. // Methods Find Exp Clin Pharmacol. 1980, 2 (4), pp. 171-176.

98. Shah P.M. Bactericidal activity of ceftazidime against Pseudomonas aeruginosa under conditions simulating serum pharmacokinetics. // J Antimicrob Chemother. 1981, 8 (Suppl B), pp. 135-140.

99. Shah P.Mt Simultaneous simulation of two different concentration time curves in vitro. // J Antimicrob Chemother. 1985, 15 (Suppl A): 261 -264.

100. Shonekan D., Mildvan D., Handwerger S. Comparative in vitro activities of teicoplanin, daptomycin, ramoplanin, vancomycin, and PD 127,391 against blood isolates of gram-positive cocci. // Antimicrob Agents Chemother. 1992, 36 (7), pp. 1570-1572.

101. Silverman J.A., Oliver N., Andrew T., Li T. Resistance studies with daptomycin. // Antimicrob Agents Chemother. 2001, 45 (6), pp. 1799-1802.

102. Smith S.M, Eng R.H. K, Landesman S. Effect of rifampin on ampicillin killing of group B Streptococci. /7 Antimicrob Agents Chemother. 1982, 22 (3), pp. 522-524.

103. Snydman D.R, Jacobus N.V, McDermott L.A, Lonks J.R, Boyce J.M. Comparative in vitro activities of daptomycin and vancomycin against resistant grampositive pathogens. 11 Antimicrob Agents Chemother. 2000, 44 (12), pp. 3447-3450.

104. Sun H, Maderazo E.G., Krussell A.R. Serum protein-binding characteristics of vancomycin. // Antimicrob Agents Chemother. 1993, 37 (5), 1132-1136.

105. Sweeney M:T, Zurenko G.E. In vitro activities of linezolid combined with other antimicrobial agents against Staphylococci, Enterococci, Pneumococci, and selected gram-negative organisms. // Antimicrob Agents Chemother. 2003, 47 (6), pp. 19021906. .

106. Tally F.P, DeBruin M. Development of daptomycin for gram-positive infections. // J Antimicrob Chemother. 2000, 46 (4), pp. 523-526:

107. Tam V.H, Louie A, Deziel M.R, Liu W, Leary R, Drusano G.L. Bacterial-population'responses to drug-selective pressure: examination of garenoxacin's effect on Pseudomonas aeruginosa. IIJ Infect Dis. 2005, 192 (3), pp. 420-428.

108. Thorburn C.E, Edwards D.I. The effect of pharmacokinetics on the bactericidal activity of ciprofloxacin and sparfloxacin against Streptococcus pneumoniae and- the emergence of resistance. 11J Antimicrob Chemother. 2001, 48 (1), pp. 15-22.

109. Toothaker R.D., Welling P.G., Craig W.A. An in vitro model for the study of antibacterial dosage regimen design. II J Pharm Sei. 1982, 71 (8), pp. 861-864.

110. Treharne J.D., Yearsley P.J., Ballard R.C. In vitro studies of Chlamydia trachomatis susceptibility and resistance to rifampin and rifabutin. // Antimicrob Agents Chemother. 1989, 33 (8), pp. 1393-1394.

111. Trenin A.S., Olsufeva E.N. The mechanism of resistance to glycopeptide antibiotics as the basis for the development of novel derivatives capable of overcoming the resistance. // Russian Journal of Bioorganic Chemistry. 1997, 23 (11), pp. 851-867.

112. Tuazon G.U., Miller H. Comparative' in vitro activities, of teichomycin and« vancomycin alone and in combination with rifampin and aminoglycosides against Staphylococci and Enterococci. II Antimicrob Agents Chemother. 1984; 25 (4), pp. 411-412.

113. Watanakunakorn G., Guerriero J.C. Interaction between vancomycin and rifampin against Staphylococcus aureus. II Antimicrob Agents Chemotherapy. 1981', 19 (6), pp. 1089-1091.

114. White C.A., Toothaker R.D. Influence of ampicillin elimination half-life on in-vitro bactericidal effect. II J Antimicrob Chemother. 1985, 15 (Suppl Ä), pp. 257-260:

115. White R.L. What in vitro models of infection- can and cannot do. // Pharmacotherapy. 2001, 21 (11, Pt2), pp. 292S-301S.

116. Weidemann B. Comparative study of the activity of grepafloxacin and ciprofloxacin in* an in vitro model with S. pneumoniae, H. Influenzae and M. Catarrhalis. II Antiinfect Drug Chemother. 1998, 16 (Suppl 71), T142.

117. Wiedemann B., Fuhst G. Revising the effect of protein* binding on the pharmacodynamics of antibiotics. 44th Interscience Conference on Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 2004, (abstr) A-1466.

118. Wiedemann B, Jansen A. Antibacterial activity of cefpodoxime proxetil in a pharmacokinetic in-vitro model. /'/ JAntimicrob Chemother. 1990, 26 (1), pp. 71-79.

119. Wiedemann B, Seeberg A.H. The activity of cefotiam on |3-lactamase-producing bacteria in an in-vitro model. // J Antimicrob Chemother. 1984, 13 (2), pp. 111-119.

120. Winter M.E. Vancomycin. In: Ma Koda-Kimble, Ly Young (eds), Basic clinical pharmacokinetics. Applied Therapeutics, Inc. (Vancouver, Wash). 1988, pp. 357-371.

121. Wise R, Andrews J.M, Ashby J.P. Activity of daptomycin against gram-positive pathogens: a comparison with other agents and the determination of a tentative breakpoint. // J Antimicrob Chemother. 2001, 48 (4), pp. 563-7.

122. Woodnutt G, Berry V. Efficacy of high-dose amoxicillin-clavulanate against experimental respiratory tract infections caused by strains of Streptococcus pneumoniae. II Antimicrob Agents Chemother. 1999, 43 (1), pp. 35-44. (a)

123. Woodworth J.R, Nyhart Jr. E.H, Brier G.L, Wolny J.D, Black H.R. Single-dose pharmacokinetics and antibacterial activity of daptomycin, a new lipopeptide antibiotic, in healthy volunteers. // Antimicrob Agents Chemother. 1992, 36 (2), pp. 318-25.

124. Xerri L, Broggio R. Study of the antibacterial activity of ceftazidime in an in vitro pharmacokinetic model. // Drugs Exp Clin Res. 1985, 11 (1), pp. 49-54.

125. Xerri L., Orsolini P., Broggio R. Antibacterial activity of cefuroxime in an in vitro pharmacokinetic model. // Drugs Exp Clin Res. 1981, 7 (7), pp. 459-464.

126. Yogev R., Melick C., Glogowski W. In vitro development of rifampin resistance in clinical isolates of Haemophilus influenzae type b. // Antimicrob Agents Chemother. 1982,21 (3), pp. 387-389.

127. Zhanel G.G., Walters M., Laing N., Hoban D.J. In vitro pharmacodynamic modelling simulating free serum concentrations of fluoroquinolones against multidrug-resistant Streptococcus pneumoniae. // J Antimicrob Chemother. 2001, 47 (4), pp. 435-440.

128. Zhang X., Overholser B.R., Kays M.B., Sowinski K.M. Gatifloxacin pharmacokinetics in healthy men and women. // J Clin Pharmacol. 2006, 46 (10), pp. 1154-1.162.

129. Zhao X., Drlica K. Restricting the selection of antibiotic-resistant mutants: a general strategy derived from fluoroquinolone studies. // Clin Infect Dis. 2001, 33 (Suppl. 3), pp. S147-S156.

130. Zimmerli W., Widmer A.F., Blatter M., Frei R., Ochsner P.E. Role of rifampin for treatment of orthopedic implant-related staphylococcal infections. // J Am Med Association. 1998; 279 (19), pp. 1537-1541.