Автореферат и диссертация по медицине (14.00.46) на тему:Длительное культивирование Trichomonas vaginalis как медико-биологическая основа экспериментального изучения трихомониаза

ДИССЕРТАЦИЯ
Длительное культивирование Trichomonas vaginalis как медико-биологическая основа экспериментального изучения трихомониаза - диссертация, тема по медицине
АВТОРЕФЕРАТ
Длительное культивирование Trichomonas vaginalis как медико-биологическая основа экспериментального изучения трихомониаза - тема автореферата по медицине
Пляченко, Дмитрий Анатольевич Саратов 2007 г.
Ученая степень
кандидата медицинских наук
ВАК РФ
14.00.46
 
 

Автореферат диссертации по медицине на тему Длительное культивирование Trichomonas vaginalis как медико-биологическая основа экспериментального изучения трихомониаза

На правах рукописи

Пляченко Дмитрий Анатольевич

ДЛИТЕЛЬНОЕ КУЛЬТИВИРОВАНИЕ Trichomonas vaginalis КАК МЕДИКО-БИОЛОГИЧЕСКАЯ ОСНОВА ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОГО ИЗУЧЕНИЯ ТРИХОМОНИАЗА

14 00.46 ~ клиническая лабораторная диагностика

Автореферат

диссертации на соискание ученой степени кандидата медицинских наук

Саратов-2007

Работа выполнена в Государственном образовательном учреждении высшего профессионального образования «Саратовский государственный медицинский университет» Федерального агентства по здравоохранению и социальному развитию

Научные руководители:

доктор медицинских наук, член-корр. РАМН, профессор Глыбочко Петр Витальевич;

кандидат медицинских наук, доцент Софьин Василий Станиславович.

Официальные оппоненты:

доктор медицинских наук,

профессор Гладилин Геннадий Павлович;

доктор медицинских наук

профессор Пучиньян Даниил Миронович.

Ведущая организация: ФГУ Пензенский институт усовершенствования врачей.

Защита состоится «elf » Q$ 2007 г на заседании диссертационного совета К 208 094. 01 при ГОУ ВПО «Саратовский ГМУ Росздрава» по адресу: 410012, Саратов, ул Большая Казачья, 112

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке ГОУ ВПО «Саратовский ГМУ Росздрава».

Автореферат разослан _'О__ 2007г

Ученый секретарь диссертационного совета доктор медицинских наук, профессор

Бородулин В.Б.

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

АКТУАЛ ЬНОСТЬ ПРОБЛЕМЫ

Распространенной ошибкой является мнение о простейших как низкоорганизованных животных

Простейшие представляют собой особый уровень в эволюции эукариоти-ческих организмов, сочетающих организменную и клеточную природу Инвазии, вызываемые простейшими и гельминтами, в отличие от инфекций, имеют, несомненно, патогенетические, клинические и микро- экологические особенности. Это обстоятельство нельзя не учитывать при эпидемиологических и клинических наблюдениях за патологиями, обусловленными простейшими паразитами, особенно при диагностике данных заболеваний.

Одной из наиболее распространённых инвазий является мочеполовой три-хомониаз В мире трихомониазом ежегодно заболевает до 170 млн человек ( Межевигонова Е А с соавт, 2005).

Заболеваемость трихомониазом по Саратовской области остается стабильно высокой- от 298-340 на 100 тыс. населенияв 1994-1998 гг до 430-437 на 100 тыс населения в 2000 году

Общероссийский показатель составлял в 2000 г-317,бна100 тыс населения (СофьинВ С, 1999, УщС Р, Пронь Д А, 2001)

Хронический трихомониаз значительно чаще, чем прочие инфекции, передающиеся половым путем, вызывает тяжёлые патологии урогенитального тракта у мужчин - уретриты, простатиты, аденому предстательной железы (Глы-бочио П В. с соавт ,2001,0 Рейт, 1998)

Таким образом, трихомониаз - это серьезная медико-социальная проблема Наряду с вектором постоянного роста заболеваемости трихомониазом четко

прослеживается тенденция изменения клинической картины этого заболевания как у мужчин, так и у женщин, а также многочисленные артефакты лабораторной д иагностики (Михайлов А.В и соавт, 1999)

Преобладание вялотекущих, бессимптомных форм заболевания, сложных для диагностики, большинство авторов связываете нарушением естественного экологического равновесия микроорганизмов, которые поддерживают гомеос-таз внутренних органов и кожи человека, изменением биоценозов, снижением колонизационной резистентности слизистых, формированием сложных микробных ассоциаций, связанных в том числе и с коммерциализацией секса и нетрадиционными формами сексуальной жизни (Сабсай М.И и соавт, 1998; Михайлов А В, ГасановаХА, 1999, КираЕ Ф., 2000).

Морфология и физиология Trichomonas vaginalis, несмотря на небольшие размеры (7-10мк), довольно сложны Достаточно сказать, что геном уроге-нитальной трихомонады насчитывает 160 млн пар оснований ( у человека в 20 раз меньше). Весьма сложен и метаболизм трихомонад, являющихся гетеротрофными организмами с голозойным типом питания (Полянский Ю.И, 1968) Именно с этими таксономическими особенностями, скорее всего, связаны такие свойства трихомонад, как высокая изменчивость, полиморфность, мимикрия, весьма затрудняющие диагностику трихомониаза.

Биологические свойства трихомонады приобретают особое значение, если рассматривать влияние непосредственно на ее организм различных физических факторов, широко используемых ныне в физиотерапевтических методах лечения, и реабилитации больных трихомониазом.

Имеется достаточно большое количество исследований, посвящённых изучению влияния лазерного излучения, СВЧ- и КВЧ- излучений на организм человека н лабораторных животных, прокариотических микроорганизмов, но практически отсутствуют работы, которые преследовали бы цель изучить вли-

яние физических факторов непосредственно на клетки трихомонад в чистой культуре

Физиотерапевтические методы лечения, вероятно, изменяют морфологические и генетические свойства Trichomonas vaginalis, что может затруднить выявление её в организме больного руганными способами и методами ПЦР - диагностики Это, в свою очередь, влечет за собой постановку ложноотрицательных диагнозов при проверке эффективности лечения

Исходя из вышеизложенного, изучение влияния физических факторов (лазерного, СВЧ и КВЧ - излучений) на чистую многодневную культуру Trichomonas vaginalis представляет собой значительный научно-практический интерес

ЦЕЛЬ ИССЛЕДОВАНИЯ

Получение чистой культуры Trichomonas vaginalis на жидких средах различного состава в условиях как стационарного, так и проточного культивирования, и изучение влияния на неё лазерного, КВЧ- и СВЧ- излучений

Исходя из поставленной цели, решали следующие ЗАДАЧИ ИССЛЕДОВАНИЯ:

1 Модифицировать методы непрерывного культивирования Trichomonas vaginalis с целью получения чистой культуры

2 Изучить морфо-физиологические особенности Trichomonas vaginalis

в условиях непрерывного культивирования.

3 Исследовать влияние лазерного, КВЧ- и СВЧ- излучений различной интенсивности непосредственно на культуру Т vaginalis in vitro

НАУЧНАЯНОВШНА Разработаны модифицированные методы непрерывного, длительного культивирования Trichomonas vaginalis in vitro

Впервые изучены особенности морфофизиологии Trichomonas vaginalis в условиях непрерывного культивирования

Впервые проведены эксперименты по изучению воздействия низко- интенсивного лазерного СВЧ и КВЧ - излучений на культуру Trichomonas vaginalis ю vitro

НАУЧНО-ПРАКТИЧЕСКАЯ ЗНАЧИМОСТЬ

Предложенный модифицированный метод непрерывного культивирования Trichomonas vaginalis и изучение на его основе влияния лазерного СВЧ и КВЧ - излучений на организм простейшего является медико-биологической базой для разработки дальнейших методов лечения и диагностики трихомониаза.

На основании результатов изучения влияния широко используемых в лечении трихомониаза низкоинтенсивных лазерных СВЧ и КВЧ - излучений непосредственно на организм простейшего подготовлены научно-практические рекомендации по назначению физиотерапевтических мероприятий для лечения трихомониаза

Разработаны новые схемы алгоритма диагностики трихомониаза с применением как рутинных лабораторных методов, так и методов молекулярных исследований

ОСНОВНЬШ ПОЛОЖЕНИЯ, ВЫНОСИМЫЕ НА ЗАЩИТУ:

1 Технология длительной культивации Trichomonas vaginalis существенно отличается от культивации прокариотических организмов

2, Чистая культура Trichomonas vaginalis может служить биологической моделью для дальнейшего изучения морфофизиологических особенностей этого простейшего и его патогенеза.

3 Воздействие на культуру трихомонады терапевтических доз лазерного, СВЧ- и КВЧ-излучений приводит к изменению фенотипа паразита и стимулирует его размножение, что необходимо учитывать при лечении больных

АПРОБАЦИЯ РАБОТЫ

Результаты исследований были доложены и обсуждены на межрегиональной конференции дерматовенерологов ( Казань, 2005 г.); научно-практической конференции с международным участием «Частные вопросы дерматовенерологии» ( Саратов, 2006 г ); ассоциации врачей- лаборантов г.Саратова ( 2006 г.).

ВНЕДРЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЯ В ПРАКТИКУ Разработанные методы лабораторной диагностики и используемые физиотерапевтические воздействия применяются в клинике кожных и венерических болезней ГОУ ВПО «Саратовский ГМУ Росздрава», Саратовском областном и городском кожно-венерологических диспансерах. Отдельные фрагменты работы внедрены в учебный процесс на кафедрах клинической лабораторной диагностики ФПК и ППС, кожных и венерических болезней ГОУ ВПО «Саратовский ГМУ Росздрава»

ПУБЛИКАЦИИ

По материалам диссертационного исследования опубликовано 6 печатных работ

СТРУКТУРА И ОЕЬЕМДИССЕРТАЦИИ

Диссертация изложена на 121 странице машинописного текста и состоит из введения, обзора литературы, описания материалов и методов исследования, 4 глав, включающих полученные результаты, обсуждение результатов, выводов, списка литературы, содержащего 144 источника, в том числе 110 отечественных и 34 иностранных Иллюстративный материал представлен 13 рисунками и 10 таблицами

МАТЕРИАЛ ЫИМЕТОДЫИСОЕДОВАНИЯ

Материал для исследований брали у пациентов клиники кожных и венерических болезней СГМУ и городского кожно-венерологического диспансера г Саратова с основным диагнозом - урогенитальный трихомониаз

Диагноз данным больным ставился на основании клинических данных и результатов микроскопии окрашенного мазка.

Техника взятия инокулята была стандартна и соответствовала регламентирующим инструкциям и приказам МЗ РФ Забор материала был произведён у 51 больного - 34 мужчин и 17 женщин в возрасте от 17 до 40 лет. Инокулят брали, как правило, до начала лечения или в самом его начале

Методы исследования Для стационарного длительного культивирования мы провели несколько серий опытов, в которых использовали среды различного состава и схемы пассажей.

В первой серии инокулят вводился в жидкую диагностическую среду "Уа^сии", произведенную в Финляндии Среда содержит белковый гидролизат, дрожжевой экстракт, мальтозу, цистеин, аскорбиновую кислоту, сыворотку крови овец, а также антибиотики для подавления сопутствующей патогенной микрофлоры. Культивирование проводилось в термостате при температуре 37оС. В этой серии посев был произведён материалом от 51 больного

Во второй серии опытов посев производился непосредственно в жидкую среду СДС-199. Данная среда очень широко применяется в микробиологических исследованиях. В данном случае использовался инокулят 10 больных, от которых материал уже засевали на среду "Уа§1сик".

В третьей серии инокулят первоначально засевался в среду "У^гаЛ". а на 3 - 7-й день культивирования, в случае положительной динамики роста, делали пересев на жидкую среду СДС -199 Использовали материал, взятый у 8 пациентов

Микроскопический анализ материала проводился ежедневно, начиная с третьего дня после посева, для чего изготавливались нативные препараты и препараты, окрашенные раствором метиленового синего

Анализ проводился на микроскопе Jenaval при увеличении 10x100 Микрофотографии сделаны с помощью цифровой камеры-окуляра для микроскопа Scopetek DCM35.

Подсчет клеток Tr. vaginalis осуществлялся в камере Горяева Чтобы препятствовать активному передвижению трихомонад, мы модифицировали технику подсчёта Затем производили расчет числа клеток на 1мл среды

Помимо стационарного культивирования как с пересевом, так и без пересева, мы провели серию опытов с проточным культивированием.

С этой целью использовалась установка каскадно-проточного культивирования с интерактивным управлением «Каскад» Прибор состоит из комплекса ферментёров, объемом 10 мл каждый, соединённый трубками и управляемый компьютером В связи с тем, что трихомонада является строгим анаэробом, нами внесены конструктивные изменения в установку, исключающие поступление кислорода в проток Кроме того, мы поместили в ферментёры субстраты и носители В качестве субстрата использовались культуры живых клеток, а носителями (покрытиями) - различные материалы - от традиционных - стекловолокна, керамики, желатина, - до современных- «Биокол» и «Фолидерм».

Такая модель ферментёров по типу турбидостата, имитирующего до известной степени мочеполовой тракт, дала возможность использовать её для длительного культивирования трихомонада на стандартных диагностических средах, а также провести ряд экспериментов по изучению воздействия на Trichomonas vaginalis лазерного, СВЧ- и КВЧ-излучений ю situ

Для выявления трихомонад в культивируемом материале, подвергнутом лазерному, КВЧ- и СВЧ- излучениям, использовалась параллельно ПЦР методика определения ДНК Тг Vaginalis.

Проточное культивирование проводилось в российско-японском биотехнологическом центре (г Москва) непосредственно при нашем участии ПЦР-

анализ осуществлялся в диагностическом центре «ДИ-центр» с любезного разрешения заведующего лабораторией Эдуарда Анатольевича Федотова, за что приносим ему глубокую благодарность

При проведении экспериментов по изучению влияния различного рода излучений на культуру Tr. vaginalis использовались широко применяемые физиотерапевтические аппараты: Явь -1, Луч -4, Узор-А-2К, «Атос»

Интенсивность, длина волны, а также экспозиция были те же самые, что и при физиотерапевтических процедурах при лечении больных урогенитальным трихомониазом

Облучение культур проводилось пятикратно на 2-е, 3-й, 4-е и 5-е и 7-е сутки культивации

Статистическая обработка материала Обработка полученных данных проводилась с помощью пакета программы Microsoft Excel ХР По каждой серии опытов указывались объёмы, средние арифметические значения и ошибки среднего, уровни значимости, проводился корреляционный анализ

РЕЗУЛЬТАТЫИССЛЕДОВАНИЯ Инокуляционный материал 51 больного пациента, высеянный на диагностическую среду "Vagxcult", дал рост культуры в 35 случаях Придонный рост начинал наблюдаться через 48 часов, продолжался в среднем до 5-7-х суток, после чего прекращался, и культуры гибли на 12-20-е сутки культивации (рис. 1)

Несовпадение в 16 случаях клинических диагнозов, подтверждённых главным образом микроскопией окрашенного мазка с нашими результатами кулыу-ральных исследований, можно объяснить главным образом несовершенством микроскопического метода или «человеческим фактором»

Анализ как нативных, так и окрашенных препаратов трихомонад из культуры, проводили каждый день, было обнаружено, что большинство кле-

ток имело типичную грушевидную форму В нативном препарате трихомо-нады активно передвигались, у них были видны жгутики и ундулирующая мембрана. На окрашенных препаратах все трихомонады имели классическую грушевидную форму У них были видны четко окрашенные ядра и зернистая цитоплазма

Максимальное число клеток зарегистрировано на 5-е сутки культивирования Их количество увеличилось до 520 ООО в 1 мл. Затем их количество стало уменьшаться и на 7-е сутки достигло 151 ООО кл\мл. В течение всего времени культивирования трихомонады сохраняли типичную грушевидную форму и активную подвижность

Необходимо отметить наличие в культуральной среде значительного количества сопутствующей флоры и эпителиальных клеток, что существенно затрудняло идентификацию трихомонад При проведении пассажей в свежую среду количество этих элементов существенно уменьшалось

Посев инокупяционного материала на жидкую среду СДС -199 от 10 больных, чей материал уже использовался в первой серии, дал рост культуры в 7 случаях. При этом рост культуры не произошёл в том же случае, что и при посеве на среду " Vagicult" Это подтверждает высокие диагностические свойства данной среды, однако в отличие от первой серии рост культуры визуально заметен только через 72 часа, когда титр клеток достиг 750 ООО на 1 мл Рост культуры продолжался до 7 - 12- го дня На пике роста количество клеток составляло в среднем 1590000 на 1 мл среды. Фаза динамического равновесия длилась в среднем 5 дней, после чего титр клеток начинал уменьшаться, и культуры гибли в среднем на 30-35-й день культивации В отличие от посева на "Vagicult" посев на данную среду давал значительно меньше сопутствующей флоры и клеточных элементов, что позволяло лучше идентифицировать как типичные, так и атипичные формы трихомонад

Полученные в этой серии опытов данные послужили контролем к вариантам с облученными трихом он а дам и.

Результаты третьей серии опытов с пересевом материала со среды "на среду СДС-199 по динамике роста существенно не отличались от результатов второй серии, когда материал засевался непосредственно на среду СДС-199. Однако продолжительность фазы роста была несколько короче и составляла 5-7 дней, при этом количество клеток на 7-й день культивации достигало 2400000, что составляло статистически достоверную разницу с предыдущей серией (Р = 0,01). Жизнедеятельность культуры в этой серии поддерживалась без пересева до 30-35-го дня, как и в предыдущей серии. Количество сопутствующей микрофлоры и клеточных элементов было весьма незначительным.

Рис. 1. Данные кулъмуральногороста Tr.vagmalis на различных средах

Серия опытов с проточным культивированием показала, с одной стороны, высокую жизнестойкость трихомонады - культура существовала столько, сколько работал ферментёр По техническим и экономическим причинам сроки ферментации не превышали 3-4 недель Титр клеток при этом, начиная с третьего дня культивирования, составлял в среднем от 1000 ООО клеток до 5000000 в зависимости от вида субстрата и покрытия. Наиболее интенсивный рост типичных клеток происходил на живых клетках (фибробластах), «посаженных» на «Фолидерм». При этом методе культивации посторонняя флора практически отсутствовала.

ВЛИЯНИЕ ФИЗИОТЕРАПЕВТИЧЕСКИХ ДОЗ ЛАЗЕРНОГО, СВЧ- И КВЧ-ИЗЛУЧЕНИЙ НА TRICHOMONAS VAGINALIS

Проведенные нами опыты по длительному культивированию на стандартной диагностической среде показали возможность использования данного метода для проведения экспериментов по изучению воздействия на Тг vaginalis магнитно-лазерного, СВЧ- и КВЧ - излучений in vitro

Были проведены две основных серии опытов - облучение культур, выращенных на среде Vagicult инасредеСДС-199

При импульсном лазерном облучении (аппарат «Узор-А-2К») частота повторения импульсов составила 150 Гц, мощность импульса - 14 Вт, время облучения - 5 мин

Производилось пятикратное облучение со 2-го по 7-й день культивации. Количество трихомонад в 1 мл среды до облучения в среднем равнялось 5890 кл\мл (рис.2).

Это были грушевидной формы, активно подвижные клетки с хорошо различимыми жгутиками и мембраной

После первого облучения культуры импульсным лазерным излучением произошла интенсификация роста культуры по сравнению с контролем, особен-

но заметная на 3-й и 5-е сутки. После третьего сеанса была достигнута статистически значимая разница между опытной и контрольной сериями Однако в последующие дни количество трихомонад резко снизилось по сравнению с контролем.

Лазерное излучение привело к резкому снижению подвижности трихомонад После третьего облучения они еще сохраняли подвижность и только после четвертого полностью потеряли ее. Движение на одном месте возобновилось после пятого облучения одновременно с изменением формы клеток на округлую

Облученная культура трихомонад погибла на 1—15-й день культивирования после 5- кратного воздействия магнитно-лазерным излучением.

С первого по четвертое облучение форма клеток Tr.vaginalis оставалась типичной грушевидной, а после пятого облучения помимо типичных форм в нативных и окрашенных препаратах встречались крутые

При воздействии на культуру Vagicult КВЧ-облучением (аппарат «Явь-1») длина волны равнялась 7,1мм (частота42194± 10 МГц) Время воздействия-10 и 15 мин Эти параметры также соответствуют используемым при лечении больных урогенитальным трихомониазом

При КВЧ - облучении материала после первого и второго сеансов наблюдалось статистически значимое снижение титра клеток простейшего по сравнению с контрольной средой (рис 2) При этом форма клеток оставалась типичной, грушевидной. Однако после третьего облучения помимо типичных форм появляются округлые клетки А после пятого - большинство клеток Tr.vaginalis приобретают круглую форму Подвижность трихомонад при КВЧ - обработке прекращается после второго облучения

На 7-й день культивации после 4-го сеанса наблюдался интенсивный рост количества трихомонад, но к 15-му дню культивации культура гибнет

При СВЧ-облучении культуры трихом она д Уа§1сиИ (аппарат <Луч-4») использовался излучатель 2 диаметром 35 мм с керамическим диэлектриком. Мощность первого облучения составила 2 Вт, а последующих - 3 Вт. Время первого облучения -10 мин, а последующих -15 мин.

3000000-,

2500000- ' 2000000-К

)

Кп/ми 1500000- '

1 Сутки 2 сутки Зсутки 5сутки 7 сутки 10 сутки 15сутки

а Контроль ЯЛшр»*Эй воздействие РСВЧ. излучение 1К8Ч- излучений |

Рис. 2. Воздействие лазерного, СВЧ и КВЧ -излучений на культуру Tr■vag¡nalis в среде Vagicult

Облученные клетки в течение 7 суток культивирования и 5-кратного облучения сохраняют типичную грушевидную форму Количество клеток на 1мл среды после первого облучения увеличивается практически в два раза по сравнению с контролем (рис.2). Последующие два облучения также сопровождаются кратным увеличением числа клеток. Максимальное их количество наблюдается после третьего облучения 2 783 тыс клеток в 1 мл среды. Однако, несмотря на высокий темп размножения, подвижность клеток исчезает уже после первого облучения (наблюдается лишь движение жгутика) С 4-го облучения темп размножения клеток снижается На 15-20-й день культура погибала.

ПЦР - анализ контрольной культуры трихомонад (без облучения) и культур, обработанных лазерным и КВЧ и СВЧ- излучениями показал присутствие в этих вариантах ДНКТгл^шаЬз.

Результаты биологической эффективности воздействия лазерного, СВЧ и КВЧ - излучений на культуру Тг.у^шаЬэ, выращенную на среде СДС-199, представлены на рис. 3.

Полученные результаты имеют определённое сходство с предыдущей серией опытов на среде Ч^шик, но в тоже время весьма специфичны. Стимулирующее действие лазерного и СВЧ- излучений более выражено и наблюдается уже после 2-го и 3-го сеансов Продолжительность стимулирующего действия также была больше по сравнению с культурой, выращенной на среде Уа§юик Воздействие КВЧ-излучений также ингибировало рост трихомонад после первого сеанса, но уже после второго облучения наблюдался значительный пролифератив-ныйрост.

Изменение формы трихомонад и снижение подвижности также наблюдались в более поздние сроки культивации по сравнению со средой Уа§1сиЙ

■ Контроль ■Лазерное воздействие ПСВЧ- излучение ■ КВЧ- излучение'

Рис.3. Воздействие лазерного, СВЧ и КВЧ-излучений па культуру Тгл^таНз в среде СДС-199

ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ

Все виды излучений, используемые в данной экспериментальной работе в терапевтических дозах, способствовали значительному увеличению числа клеток по сравнению с необлученными вариантами Это указывает на стимуляцию пролиферации Tr .vaginalis низкими дозами лазерного, КВЧ- и СВЧ- излучений.

Возможность стимуляции пролиферации подтверждается в ряде работ, в которых отмечается действие низкоинтенсивных излучений на важнейшие функции эукариотических клеток Установлено, что лазерное излучение на молекулярном уровне увеличивает синтез белков, образование молекул АТФ, усиливает метаболитические процессы, а на клеточном уровне повышает пролифера-тивную активность клеток Возможность стимуляции митотической активности клеток КВЧ - излучением показана на эукариотических клетках животных и клетках дрожжей. Есть указания, что СВЧ-излучение также может приводить к усилению митотической активности

Зарегистрированный нами аналогичный эффект данных излучений на Тг vaginalis ранее не наблюдался Отмеченная в наших опытах стимуляция размножения трихомонад физиотерапевтическими дозами, применяемыми для лечения трихомониаза, может иметь значение д ля разработки рекомендаций по его лечению, поэтому исследования в этом направлении необходимо продолжить Пока неясно, к чему может привести 10- кратное облучение культуры трихомонад (как при лечении), а не 5- кратное (как в наших экспериментах) Но для проведения таких опытов необходимо дальнейшее усовершенствование метода длительного культивирования трихомонад in vitro. Именно культуральный метод позволяет непосредственно воздействовать различными факторами на чистую культуру трихомонад, размножать ее в нужных количествах и проводить многосторонний анализ биологических свойств трихомонад

Проведенная нами оценка среды Уа^стЛ показала возможность многодневного выращивания на ней культуры трихомонад, хотя данная среда является диагностической и, вероятно, на длительное культивирование не рассчитана Срок культивирования на этой среде был ограничен 8-10-ю сутками, но это позволило проследить реакцию трихомонад на воздействие различных излучений непосредственно на организм простейшего.

Все виды излучений приводили к изменению формы клеток Они приобретали округлую, атипичную форму Вероятно, это результат модификационной изменчивости, индуцированной влиянием данных излучений на клетки в чистой культуре.

Ранее нами изучался эпигенетический механизм этой формы изменчивости простейших (Пляченко ДА с соавт., 2005)

Так как полиморфность трихомонад существенно затрудняет диагностику трихомониаза, то полученная информация представляет интерес в связи с пониманием возможности влияния на морфологические характеристики возбудителя физиотерапевтических методов с использованием данных видов излучений

Проведенные исследования показали, что все используемые виды облучений приводят к потере активной подвижности трихомонад Вероятно, это не является свидетельством снижения их жизнеспособности, поскольку клетки интенсивно размножаются Возможно, это связано с их реакцией на какой-то специфический фактор Таковыми могут быть повышение температуры культу-ральной среды вовремя процедуры облучения или изменение её рН,

В литературе, посвященной диагностике трихомониаза, нередко отмечается, что после антибактериальной терапии и физиотерапии при использовании ПЦР можно получить ложноотрицательные результаты Вероятно, это связано с нарушением специфических участков ДНК, к которым присоединяются прай-меры В наших экспериментах это наблюдение не подтвердилось ПЦР - тестиро-

вание культур после обработки всеми видами излучений показало наличие ДНК Tr.vaginalis как при физиотерапевтических дозах, так и при высоких дозах облучения, как в живых культурах, так и погибших Исходя из этого, можно предположить, что различные дозы лазерного, СВЧ и КВЧ-излучений не изменяют определенные специфические районы ДНК. Однако нельзя исключить, что положительный ПЦР анализ в наших опытах обусловлен высокой надежностью использованной тест-системы (АмшгаСенс Trichomonas vaginalis-250)

Зарегистрированная изменчивость показателей жизнеспособности (темпы размножения и подвижности) и формы клеток под влиянием излучений, вероятно, является изменением физиолого-биохимических процессов в клетке, связанных, по всей видимости, с вмешательством в регуляцию экспрессии генов Trichomonas vaginalis

ВЫВОДЫ

1 Предложен метод многодневного культивирования Tr. vaginalis in vitro для экспериментальных исследований изменчивости морфогенетических характеристик простейшего Отмечена перспективность метода для оценки жизнеспособности и морфологии трихомонад, а также для оценки степени и характера влияния внешних факторов на эти признаки

2. Физиотерапевтические (низкие) дозы лазерного, СВЧ-, КВЧ- излучений значительно увеличивают пролиферацию трихомонад, приводят к появлению клеток с атипичной округлой формой. Двигательная активность клеток снижается до полной ее потери.

3 Механизмы воздействия излучений могут быть связаны как непосредственно с самими излучениями, так и изменением свойств кулыуральной среды 4. ПЦР-анализ во всех облученных вариантах показал присутствие ДНКТг vaginalis Это свидетельствует об отсутствии мутагенного действия изученных

факторов Зависимости результатов ПЦР диагностики от вида и дозы облучения не обнаружено

5 Полученные данные требуют пересмотра регламента применения физиотерапевтических методов лечения трихомониаза, основанных на использовании низкоинтенсивных излучений различной природы.

СПИСОК РАБОТ, ОПУБЛИКОВАННЫХ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ

1. Пляченко, ДА О возможных причинах артефактов при генодиагностике урогенитального трихомоноза/ ДА.Пляченко, В.С Софьин, В.Е Плыкин // Актуальные вопросы дерматовенерологии Материалы межрегиональной конференции дерматовенерологов, посвященной 1000-летию г, Казани. -Казань, 2005 - С. 143-144.

2 Пляченко, Д А. Непрерывное культивирование ТгусЬотопав уаргаКв на диагностических средах / Д. А Пляченко, Е К Серенко, В.В Калинин // Молодежь и наука, итоги и перспективы Материалы ассоциации студентов и молодых специалистов. - Саратов, 2005. - С.46-47.

3. Пляченко, Д. А Роль мочеполового трихомониаза в возникновении хронических воспалительных изменений предстательной железы / Д. А Пляченко, ЕАЛиниченко// Молодежь и наука- итоги и перспективы Материалы ассоциации студентов и молодых специалистов -Саратов, 2005 -С.113-114

4 Пляченко, ДА Эпигенетические модификации как возможная причина артефактов в ПЦР-диагностике трихомониаза /ДА Пляченко, В И.Калинин // Молодые ученые - здравоохранению региона Материалы 66-й науч -практ конф студентов и молодых специалистов Саратовского государственного медицинского университета,-Саратов, 2005-С 97-98.

5. Пляченко, Д А Изучение влияния СВЧ-, ЬСВЧ- и магнитно-лазерного излучения на Тг.уа§ша118 в условиях длительного культивирования / П В Глыбочко, Д А Пляченко, В.С Софьин И Частные вопросы дерматовенерологии Материа-

лы межрегиональной науч -практ конф смеждунар участием -Саратов, 2006 -С123-124

6 Пляченко, Д А Биологическое действие лазерного, СВЧ КВЧ- излучений на Trychomonas vaginalis в условиях длительного культивирования / Е.В.Капустина, Д А Пляченко, А В Лобанова // Материалы 71-й международной итоговой студенческой научно-практической конференции, посвященной 130-летию со дня рождения профессора В.Ф Войно-Ясенецкого и 65-летию КрасГМА. -Красноярск, 2007.- С 272-273.

7 Влияние лазерного, СВЧ- и КВЧ-излучений на Trychomonas vaginalis в условиях непрерывного культивирования/П.В.Глыбочко, Д.А Пляченко, В.С.Со-фьин, А.В Лобанова // Вестник Волгоградского медицинского университета — 2007 -№2 -С.24-27.

 
 

Оглавление диссертации Пляченко, Дмитрий Анатольевич :: 2007 :: Саратов

СОДЕРЖАНИЕ.

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ.

ВВЕДЕНИЕ.

ГЛАВА 1. Морфофизиологические, генетические, культуральные свойства Tr.vaginalis и особенности биологического воздействия на одноклеточных про- и эукариот лазерного, СВЧ- и КВЧ- излучений (обзор литературы).

1.1 Общебиологическая характеристика Подцарства Простейшие Типа Саркомастигофоры и эндэкологические взаимодействия Tr.vaginalis с организмом человека.

1.2 Морфологические, физиологические и генетические признаки Tr.vaginalis.

1.3 Культивирование Tr.vaginalis in vivo и in vitro.

1.4 Современные лабораторные методы выявления Tr.vaginalis в организме человека.

1.5 Биологическое воздействие на одноклеточных про- и эукариот лазерного, СВЧ- и КВЧ- излучений.

ГЛАВА 2. Материалы и методы исследования.

2.1 Подбор больных трихомониазом и методы забора посевного материала.

2.2 Характеристика питательных сред, используемых для длительного и непрерывного культивирования.

2.3 Оборудование, применяемое для длительного непрерывного культивирования Tr. vaginalis.

2.4 Приборы генераторы лазерного, СВЧ- и КВЧ- излучений.

2.5 Алгоритмы экспериментов, методы количественного учёта клеток и методы статистической обработки материала.

ГЛАВА 3. Длительное культивирование Trichomonas vaginalis на различных средах.

ГЛАВА 4. Влияние лазерного, СВЧ- и КВЧ- излучений на культуру Trichomonas vaginalis.

ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ

 
 

Введение диссертации по теме "Клиническая лабораторная диагностика", Пляченко, Дмитрий Анатольевич, автореферат

Многочисленные эпидемиологические исследования свидетельствуют, что урогенитальный трихомониаз, возбудителем1 которого является простейший одноклеточный паразит Trichomonas vaginalis - одно из самых распространенных заболеваний, передающихся половым путём.

Урогенитальный трихомониаз лидирует по частоте выявления среди ИППП у лиц, обратившихся за специализированной дерматовенерологической, акушерско-гинекологической и урологической помощью.

По данным» Всемирной организации здравоохранения в мире трихомониазом страдает примерно 170 млн. человек ( Donovan В, 2004 ).

Частота заражённых урогенитальной трихомонадой клинически здоровых женщин в развитых странах составляет 2-10% и в развивающихся 15-40%.

В США до последнего времени ежегодно выявлялось около 3 тыс. новых случаев заболеваний ( Копылов В.М. с соавт., 2006; Wolner-Hansen P.J at al., 1989).

В Российской Федерации заболеваемость трихомониазом также остаётся стабильно высокой.

В 1996 году на 100- тыс. населения зарегистрировано 339 случаев трихомониаза ( Адаскевич В.П., 1999; Копылов В.М. с соавт., 2006 ).

В 1999 году - 327, 3 на 100 тыс. населения ( Кубанова А.А., Тихонова Л.И., 2001 ).

В. 2005 -2006 году было выявлено 343 случая мочеполового трихомониаза, тогда как за этот же период было диагностировано 111 случаев сифилиса, 82 - гонореи, 95 - хламидиоза ( Ермоленко Д.К. с соавт., 2007).

Заболеваемость трихомониазом по Саратовской области колебалась от 298-340 на 100 тыс. населения в 1994-98 г.г. до 430-437 на 100 тыс. населения в 2000 году ( Утц С.Р., Пронь Д.А. 2001; Софьин B.C. с соавт. 2003; Калинин В.И., 2005 ).

Хронический трихомониаз, значительно чаще, чем прочие инфекции передающиеся половым путем, вызывает тяжёлые патологии урогенитального тракта у мужчин - уретриты, простатиты, аденому предстательной железы ( Глыбочко П.В., с соавт., 2001 г./ Скрипкин Ю.К. с соавт., 2001; D.Petrin, 1998г. Cindi van der Schee 1999 ).

Таким образом, трихомониаз - это серьезная медико-социальная проблема, так как представляет собой реальную угрозу репродуктивному здоровью населения вследствии развития различных осложнений. Наряду с вектором постоянного роста заболеваемости трихомониазом четко прослеживается тенденция изменения клинической картины этого заболевания, как у мужчин, так и у женщин, а так же многочисленные артефакты лабораторной диагностики ( Дмитриев Г.А., 2005; Кисина В.И. 2007; Fukuda М., Fukuda К., Ranoux С. 1996 ).

Морфология и физиология Trichomonas vaginalis, несмотря на небольшие размеры (7-10мк), довольно сложны ( Козлюк А.С. 2006; D.Petrin, 1998 ). Геном урогенитальной трихомонады насчитывает 160 млн. пар оснований, в то время как у человека он в 20 раз меньше ( Jane М. Carlton et al. 2007 ).

Весьма сложен и метаболизм трихомонад, являющихся гетеротрофными организмами с голозойным типом питания ( Полянский Ю.И., 1968; D.Petrin, 1998; Alvarez-Sanchez ME et al. 2000 ). Именно с этими таксономическими особенностями, скорее всего, связаны такие свойства трихомонад как высокая изменчивость, полиморфность, мимикрия, весьма затрудняющие диагностику трихомониаза, а также значительная цитотоксичность.

Биологические свойства трихомонады приобретают особое значение, если рассматривать влияние непосредственно на её организм различных физических факторов, широко используемых ныне в физиотерапевтических методах лечения, и реабилитации больных трихомониазом.

Имеется достаточно большое количество исследований, посвященных изучению влияния лазерного излучения, СВЧ- и КВЧ- излучений на организм человека и лабораторных животных, прокариотических микроорганизмов, но практически отсутствуют работы, которые преследовали бы цель изучить влияние физических факторов непосредственно на клетки трихомонад в чистой культуре ( Белишева Н.К., с соавт., 1984; Горбатова М.Э., с соавт., 1987; Шестерина М.А., соавт., 1987; Гапеев А.Б., Чемерис Н.К., 1999; Глыбочко П.В., 2007 ).

Физиотерапевтические методы лечения, вероятно, изменяют морфологические и генетические свойства Trichomonas vaginalis, что может затруднить выявление её в организме больного рутинными способами и методами. ПЦР - диагностики. Это, в свою очередь, влечет за собой постановку ложноотрицательных диагнозов при проверке эффективности лечения.

Исходя из вышеизложенного, изучение влияния физических факторов (лазерного, СВЧ- и КВЧ - излучений) на чистую многодневную культуру Trichomonas vaginalis представляет собой значительный научно-практический интерес.

ЦЕЛЬ ИССЛЕДОВАНИЯ

Получение чистой культуры Trichomonas vaginalis на жидких средах различного состава в условиях как стационарного, так и проточного культивирования, и изучение влияния на неё лазерного, КВЧ- и СВЧ-излучений.

Исходя из поставленной цели, решали следующие

ЗАДАЧИ ИССЛЕДОВАНИЯ:

1. Модифицировать методы непрерывного культивирования Trichomonas vaginalis с целью получения чистой культуры.

2. Изучить морфо-физиологические особенности Trichomonas vaginalis в условиях непрерывного культивирования.

3. Исследовать влияние лазерного, КВЧ- и СВЧ- излучений различной интенсивности непосредственно на культуру Tr.vaginalis in vitro.

НАУЧНАЯ НОВИЗНА

Разработаны модифицированные методы непрерывного, длительного культивирования Trichomonas vaginalis in vitro.

Впервые изучены особенности морфофизиологии Trichomonas vaginalis в условиях непрерывного культивирования.

Впервые проведены эксперименты по изучению воздействия низкоинтенсивного лазерного СВЧ - и КВЧ - излучений на культуру Trichomonas vaginalis in vitro.

НАУЧНО-ПРАКТИЧЕСКАЯ ЗНАЧИМОСТЬ

Предложенный модифицированный метод непрерывного культивирования Trichomonas vaginalis и изучение на его основе влияния лазерного СВЧ -и КВЧ - излучений на организм простейшего является медико-биологической базой для разработки дальнейших методов лечения и диагностики трихомониаза.

На основании результатов изучения влияния широко используемых в лечении трихомониаза низкоинтенсивных лазерных СВЧ - и КВЧ излучений непосредственно на организм простейшего подготовлены научно-практические рекомендации по назначению физиотерапевтических мероприятий в комплексном лечении трихомониаза.

Разработаны новые схемы алгоритма диагностики трихомониаза^ с применением как рутинных лабораторных методов, так и методов молекулярных исследований.

ОСНОВНЫЕ ПОЛОЖЕНИЯ, ВЫНОСИМЫЕ НА ЗАЩИТУ

1. Технология длительной культивации Trichomonas vaginalis существенно отличается от культивации прокариотических организмов.'

2. Чистая культура Trichomonas vaginalis может служить биологической моделью для дальнейшего изучения морфофизиологических особенностей этого простейшего и его патогенеза.

3.Воздействие на культуру трихомонады терапевтических доз лазерного, СВЧ- и КВЧ-излучений приводит к изменению фенотипа паразита и стимулирует его размножение, что необходимо учитывать при лечении больных.

АПРОБАЦИЯ РАБОТЫ

Результаты исследований были доложены и обсуждены на межрегиональной конференции дерматовенерологов ( Казань, 2005 г. ); научно-практической конференции с международным участием «Частные вопросы дерматовенерологии» (Саратов, 2006 г. ); ассоциации врачей-лаборантов г. Саратова ( 2006 г.).

ВНЕДРЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЯ В ПРАКТИКУ

Разработанные методы лабораторной диагностики и используемые физиотерапевтические воздействия применяются в клинике кожных и венерических болезней ГОУ ВПО «Саратовский ГМУ Росздрава», Саратовском областном и городском кожно-венерологических диспансерах. Отдельные фрагменты работы внедрены в учебный процесс на кафедрах клинической лабораторной диагностики ФПК и ППС, кожных и венерических болезней ГОУ ВПО «Саратовский ГМУ Росздрава».

ПУБЛИКАЦИИ

По материалам диссертационного исследования опубликовано 7 печатных работ.

СТРУКТУРА И ОБЪЕМ ДИССЕРТАЦИИ

Диссертация изложена на 105 странице машинописного текста и состоит из введения, обзора литературы, описания материалов и методов исследования, 4 глав, включающих полученные результаты, обсуждение результатов, выводов, списка литературы, содержащего 164 источника (в том числе 110 отечественных и 54 иностранных). Иллюстративный материал представлен 13 рисунками и 10 таблицами.

 
 

Заключение диссертационного исследования на тему "Длительное культивирование Trichomonas vaginalis как медико-биологическая основа экспериментального изучения трихомониаза"

ВЫВОДЫ

1. Предложен метод многодневного культивирования Tr.vaginalis in vitro для экспериментальных исследований изменчивости морфогенетических характеристик простейшего паразита человека. Несомненна перспективность метода для оценки жизнеспособности и морфологии урогенитальной трихомонады, а также оценки степени и характера влияния внешних факторов на эти признаки.

2. Физиотерапевтические дозы лазерного, СВЧ-, КВЧ- излучений значительно увеличивают пролифирацию Tr.vaginalis , приводят к появлению клеток атипичной, круглой формой. Двигательная активность паразита при этом снижается до полной её потери.

3. Механизмы биологического эффекта воздействия излучений могут быть связаны как непосредственно с воздействием на клетку простейшего, так и изменением параметров культуральной среды.

4. Молекулярно-генетические исследования во всех сериях опытов по облучению ЭМИ показал присутствие ДНК Tr.vaginalis. Это свидетельствует об отсутствии мутагенного действия физиотерапевтических факторов. При этом зависимости результатов ПЦР диагностики от вида и дозы облучения не обнаружено.

5. Полученные результаты наших исследований требуют пересмотра регламента применения физиотерапевтических методов лечения трихомониаза, связанных с использованием низкоинтенсивных излучений различной природы.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

1. Проведённая экспериментальная работа, что культуральный метод диагностики на жидких средах, по-прежнему является незаменимым для диагностики трихомониаза, в связи со значительным полиморфизмом Tr.vaginalis.

2. ПЦР анализ рекомендуется использовать в качестве вспомогательного экспресс метода диагностики трихомониаза.

3. Диагностическая среда "Vagicult" может использоваться в экспериментальных работах по изучению Tr.vaginalis.

4. Непрерывное культивирование урогенитальной трихомонады в модифицированных ферментёрах может служить моделью для изучения патогенеза трихомониаза.

5. Нецелесообразно применение ЭМИ как терапевтического мероприятия в острый период трихомониаза.

 
 

Список использованной литературы по медицине, диссертация 2007 года, Пляченко, Дмитрий Анатольевич

1. Адаскевич В.П. Инфекции, передаваемые половым путем /В.П. Адаскевич,- Н. Новгород: НГМА, Москва: Медицинская книга, 1999,- 416 с.

2. Андреева А.П., Дмитриева М.Г., Ильина С.А. Влияние СВЧ-излучений малой мощности на гемоглобин /А.П. Андреева, М.Г. Дмитриева, С.А. Ильина //Электронная техника. Серия Электроника СВЧ,- 1971.- Вып. 11,- С.121-123.

3. Артемьев В.Е, Ецко Л.А. Проблемы лазерной медицины: матер. IV междунар. конгресса /В.Е. Артемьев, Л.А. Ецко М.: Видное, 1997.-С.112-113.

4. Баранов В.Н., Калинина Л.Н. Клиническое и экспериментальное применение новых лазерных технологий: матер, междунар. конф. /В.Н. Баранов, Л.Н. Калинина.- Казань, 1995.- С. 167.

5. Бейер Т.В., Свежова Н.В. Как протозойный патоген проникает в живую клеку// Природа.-2004.-№5.-С. 13-17.

6. Басканакьян И. А. Культивирование микроорганизмов с заданными свойствами /И.А. Басканакьян.- М.: Медицина, 1992,- 192 с.

7. Баткаев Э.А., Рюмин Д.В. Эффективность использования вакцины «СолкоТриховак» Посольство медицины /Э.А. Баткаев, Д.В. Рюмин //Венерология,- 2005 http:/ www.medicus.rul

8. Беднова В.Н, Васильев М.М. Методы получения чистой культуры влагалищных трихомонад /В.Н. Беднова, М.М. Васильев //Вестн. дерматол. и венерол.- 1985,- № 12.- С. 22-25.

9. Беднова В.Н., Васильев М.М. Определение чувствительности влагалищных трихомонад к препаратам группы нитромидазола с использованием плотных питательных сред /В.Н. Беднова, М.М. Васильев //Вестн. дерматол и венерол.- 1982.- № 11.- С. 19-21.

10. Беднова В.Н., Погорельский JI.B., Васильев М.М. Тактика обследования и терапии больных инфекционными урогенитальными заболеваниями, осложненными дисбактериозом: пособие для врачей /В.Н. Беднова, JI.B. Погорельский, М.М. Васильев.- М.,1996,- 14 с.

11. Беднова В.Н., Яцуха М.В., Данилова Т.Н. Питательные среды для выделения гонококков и влагалищных трихомонад /В.Н. Беднова, М.В. Яцуха, Т.Н. Данилова //Вестн. дерматол. и венерол.- 1981,- № 12,- С. 34-36.

12. Бейер Т.В., Снежова Н.В. Как протозойный патоген проникает в живую клетку /Т.В. Бейер, Н.В. Снежова //Природа.- 2004.- № 56,- С.13-17.

13. Белишева Н.К., Мавринская Л.Ф, Свечникова JI.H. Цитогенетический эффект лазерного облучения личинок Dr. Melanogaster /Н.К. Белишева, Л.Ф. Мавринская, Л.Н. Свечникова //Биологическое действие лазерного излучения.- Куйбышев, 1984.- С. 31- 14.

14. Богунов И.М. Магнито-лазеротерапия в комплексном лечении хронического уретропростатита /И.М. Богунов //Вестник дерматологии и венерологии,- 1996.- № 3,- С. 63-64.

15. Боуден Ф.Дж., Гарнет Дж. Почему игнорируется Trichomonas vaginalis? /Ф.Дж. Боуден, Дж. Гарнет //ИППП.- 2001.- № 6,- С. 18-19.

16. Бродский А.Л. История протозоологии (история развития наших знаний о простейших животных) /А.Л. Бродский/В.Н. Беднова, М.М. Васильев /В.Н. Беднова, М.М. Васильев /В.Н. Беднова, М.М. Васильев.-Ташкент: Гос. изд-во УзССР, 1937.- 68 с.

17. Васильев М.М. Особенности клиники мочеполового трихомониаза, совершенствование диагностики и лечения: Автореф. дисс. докт. мед наук /М.М. Васильев,- 1990,- 28 с.

18. Васильев М.М. Современные проблемы диагностики и лечения гонорейной и трихомонадной инфекции /М.М. Васильев //Вестник дерматологии и венерологии,- 1998.- Т. 4.- С.39.

19. Васильев М.М., Беднова В.Н. Влияние оротовой кислоты, гипоксантина и солянокислого аргинина на развитие культуры влагалищных трихомонад /М.М. Васильев, В.Н. Беднова //Вестник дерматологии и венерологии.- 1980.- №7.- С. 32-34.

20. Васильев М.М. Современные проблемы диагностики и лечения гонорейной и трихомонадной инфекции /М.М. Васильев //Вестн. дермантол. и венерол,- 1998,- Т. 4.- С. 39.

21. Гамалея Н.Ф. Лазеры в эксперименте и клинике /Н.Ф. Гамалея,- М.: Медицина, 1972,- 178 с.

22. Гапеев А.Б., Чемерис Н.К. Действие непрерывного и модулированного ЭМИ КВЧ на клетки животных. Обзор /А.Б. Гапеев, Н.К. Чемерис //Вестник новых медицинских технологий.- 1999.- Т. 4, № 1.- С.15-22.

23. Генкин А. А. Новая информационная технология анализа медицинских данных /А.А. Генкин.- СПб.: ПолитехникаД999.- 191 с.

24. Горохов М.Э., Зильберман Ю.М. Трансуретральная лазеротерапия хронического цистита и уретрита у женщин /М.Э. Горохов, Ю.М. Зильберман//Советская медицина.-1991.-№ 1.- С. 78-79.

25. Делекторский В.В., Яшкова Г.Н., Джалилов Д.Х. Смешанные трихомонадно-микоплазменные инфекции у женщин /В.В. Делекторский, Г.Н. Яшкова, Д.Х. Джалилов //Вестн. дерматол. и венерол.- 1985.- № 8.- С. 28-32.

26. Дмитриев Г. А. Инфекции, передаваемые половым путем. Качество лабораторной диагностики инфекций, передаваемых половым путем /Г.А. Дмитриев //Consilium Medicum.- 2005,- Т. 7, №3,- С. 18-23.

27. Дмитриев Г. А., Сюч Н.И., Латыпова М.Ф. Лабораторная диагностика урогенитального трихомониаза /Г.А. Дмитриев, Н.И. Сюч, М.Ф. Латыпова //ИППП.- 2001.- № 6.- С. 22-25.

28. Догель В.А. Зоология беспозвоночных /В.А. Догель,- М.: Высшая школа, 1981,- 606 с.

29. Догель В.А., Полянский Ю.И., Хейсин Е.М. Общая протозоология /В.А. Догель, Ю.И. Полянский, Е.М. Хейсин.- М., 1962,- 592 с.

30. Дубинина И.Г., Щербо С.Н. Роль метода полимеразной цепной реакции в генодиагностике /И.Г. Дубинина, С.Н. Щербо //Новые генетические технологии.- Москва, 1998.- С. 20-39.

31. Дубойская Г.П. Серологическая и молекулярно-биологическая диагностика заболеваний, передаваемых половым путем /В.Ф. Еремин, Л.Г.

32. Баранов, E.JI. Гасич, И.Г. Шиманская //Вестник дерматол. и венерол.- 2000.-№ 2,- С. 22-27.

33. Илларионов В.Е. Техника и методика процедур лазерной терапии /В.Е. Илларионов,-М.: Центр, 2001.- 176 с.

34. Ильин И.И. Негонококковые инфекции у мужчин /И.И. Ильин,-М.,1991.- С. 177-199.

35. Калюк А.Н. Действие углекислотного лазера на микобактерии туберкулёза и микрофлору /А.Н. Калюк //Проблемы туберкулёза,-1991.- № 7.- С. 68-70.

36. Какорина Е.П. Ресурсы и деятельность кожно-венерологических учреждений. Заболеваемость за 2005-2006годы (статистические материалы ) / Какорина Е.П., Авдеева Л.Н., Иванова М.А. с соав.// М.-2006.- С. 120.

37. Калинин В.И. Эпигенетические модификации как возможная причина артефактов в ПЦР диагностике трихомониаза: материалы 66-й научной конференции студентов и молодых специалистов / В.И. Калинин.-Саратов, 2005.- С. 97-98.

38. Курлаев .1111., Чернова О.Л., Киргизова С.Б. Взаимодействие окситоцина, лазерного имагнитного излучения на персистетентные свойства Staphylococcus aureus/ :ehy. Vbrhj,bjk/.2000. №4 С. 62-64.

39. Кира Е.Ф. Бактериальный вагиноз /Е.Ф. Кира.- Санкт-Петербург, 2001.-363 с.

40. Кисина В.И. Ведение больных урогенитальным трихомониазом с позиций доказательной медицины /В.И. Кисина http://medicalexpress.freenet.uz/index., 2007.

41. Кисина В.И. Урогенитальный трихомониаз: терминология, классификация, лечение /В.И. Кисина //Consilium medicum.- 2002,- Том 4, № 5.-С. 15-18.I

42. Клебанов Г.И., Владимиров Ю.А. Клеточные механизмы прайминга и активации фагоцитов /Г.И. Клебанов, Ю.А. Владимиров //Успехи соврем. биологии.-1999.- Т. 119, № 5,- С. 462-475.

43. Клименко Б.В. Трихомониаз /Б.В. Клименко,- Д.: Медицина, 1987.- 159 с.

44. Клименко Б.В., Авазов Э.Р., Барановская В.Б., Степанова М.С. Трихомониаз мужчин, женщин и детей /Б.В. Клименко, Э.Р. Авазов, В.Б. Барановская, М.С. Степанова.- СПб., 2001.- 185 с.

45. Ковалёв Е.В. Влияние НИЛИ на сперматогенез у мужчин /Е.В. Ковалев //Вопросы курортологии, физиотерапии и лечебной физкультуры.-1990,-№5,- С. 33-35.

46. Ковалев М.И. Лазеры в медицинской практике /М.И. Ковалев.-М., 1992.-258 с.

47. Копылов В.М., Бочкарев Е.Г., Говорун В.М., Рюмин Д.В., Липова Е.В., Баткаев Э.А. Урогенитальный трихомониаз (Актуальные вопросы диагностики и лечения): пособие для врачей НИИ физико-химической медицины МЗ РФ,- Москва, 2000.- С. 19 -24

48. Король А.Б., Прейгель С.И. Взаимодействие хозяин-паразит как фактор эволюции генетической рекомбинации /А.Б. Король, С.И. Прейгель //Генетика.- 1988.- Т. 24, № 6.- С.1113-1118.

49. Крепак О.М., Языкова М.Ю. Влияние лазерного излучения на рост культуры //Биологическое действие лазерного излучения /О.М. Крепак, М.Ю. Языкова,- Куйбышев, 1984,- С. 39-45.

50. Кубанова А.А., Тихонова Л.И. Заболеваемость ИППП в России в 1989-99 гг. и меры по предупреждению их распространения /А.А. Кубанова, Л.И. Тихонова //Главный врач.- 200Г- № 1.- С. 31.

51. Кульчавеня Е.В. Низкоинтенсивная лазеротерапия в урологии /Е.В. Кульчавеня //Урология и нефрология,- 1996.- № 1.- С. 41-42.

52. Курлаев П.П., Чернова О.Л., Киргизова С.Б. Взаимодействие окситоцина, лазерного и магнитного излучения на персистетные свойства Staphylococcus aureus /П.П. Курлаев, О.Л. Чернова, С.Б. Киргизова //Журн. микробиол.- 2000.- № 4.- С. 62-64.

53. Куру Т.И. Клеточные механизмы лазерной физиотерапии: материалы научно-практической конференции с международным участием «Современные достижения лазерной медицины и их применение в практическом здравоохранении /Т.И. Куру.- Москва, 2006,- С. 174.

54. Маханьков О.В. Комбинированное воздействие НИЛИ и биоактивных пептидов на репаративный процесс при повреждениях кожи (экспериментальное исследование): Автореф. дисс. канд. мед. наук /О.В. Маханьков.- Саратов, 2007,- С.14-19.

55. Межеветинова Е.А. Трихомонадный вульвовагинит: клиника, диагностика и лечение /Е.А. Межеветинова //Гинекология.- 1999.- № 1,-С.17-22.

56. Межевитинова Е.А., Михайлова О.И. Трихомонадная инфекция: клиническое течение, диагностика и лечение /Е.А. Межевитинова, О.И. Михайлова http://speclit.med-lib.ru/vener/9.shtml. 2005

57. Мейнел Дж., Мейнел Э. Экспериментальная микробиология /Дж. Мейнел, Э. Мейнел.- М.: Мир, 1967.- 332 е.

58. Мол очков В.А. Урогенитальный трихомониаз и ассоциированные уретргенные инфекции (эпидемиология, клиника, диагностика, лечение, профилактика) /В.А. Молочков //Журн. кожн. и вен. болезней:- 2000.- № 3.-С. 48-56.

59. Мочеполовой трихомониаз. Лабораторная диагностика: метод, рук-во //Вестник инфектологии и паразитологии fwww.infectology.spb.rul. 2006.

60. Неймарк А.И., Карабасова Е.Б., Куклина Н.В. Влияние плазмофереза и лазерного воздействия на состояние микрофлоры мочи при хроническом пиелонефрите /А.И. Неймарк, Е.Б. Карабасова, Н.В. Куклина //Урология и нефрология.-1998.- № 4,- С. 21-24.

61. Низкоинтенсивные лазеры в эксперименте и клинике /Под ред. М.Г.Масловой, В.М. Черток.- Владивосток: изд-во Дальневосточного ун-та, 1991.- С.11-22.

62. Овчинников Н.М., Делекторский В.В. Ультраструктура возбудителей венерических заболеваний и ее клиническое значение /Н.М. Овчинников, В.В. Делекторский,- М.: Медицина, 1986.- 224 с.

63. Павловский Е.Н. Общие проблемы паразитологии и зоологии /Е.Н. Павловский,- М.: Из-во АН СССР, 1961.- 442 с.

64. Павловский Е.Н. Организм как среда обитания /Е.Н. Павловский //Природа.-1934.- № 1,- С. 80-91.

65. Павловский Е.Н. Паразитология человека /Е.Н. Павловский,- М. Медицина, 1974.- С. 185.

66. Падченко И. К. Материалы к характеристике трихомоноза и лямблиоза и профилактике этих инвазий: Автореф. дисс. д-ра мед. наук /И.К. Падченко,- Киев, 1972,- С.36-48.

67. Петри А„ Сэбин К. Наглядная статистика в медицине /А. Петри, К. Сэбин,- М.: ГЭОТАР-МЕД, 2003,- 141 с.

68. Платонов А.Е. Статистический анализ в медицине и биологии: задачи, терминология, логика, компьютерные методы /А.Е. Платонов.- М.: Изд. РАМН, 2000.- 52 с.

69. Полещук Н.Н., Капитулец Н.Н., Рубаник JI.B. Выявление и морфологическая характеристика урогенитальных трихомонад, циркулирующих в Республике Беларусь // Медицинские новости.-2003.-№3. -С. 65-70.

70. Полянский Ю.И. Полимеризация и олигомеризация в эволюции простейших /Ю.И. Полянский //Журнал общ. биологии.- 1977,- Т. 38, № 3,- С. 325-335.

71. Полянский Ю.И. О специфике эволюционного процесса в крупных таксонах (на примере эволюции простейших) /Ю.И. Полянский //Проблемы новейшей истории эволюционного учения,- Д.: Наука, 1981.- С. 156-169.

72. Самохин B.JI. Морфология Trichomonas vaginalis и современные противотрихомонадные средства /В.Л. Самохин //ШИШ.- 2002.- № 5,- С. 15-17.

73. Свищева Т.Я. Раку можно противостоять /Т.Я. Свищева.- М.: «Дион», 1998,- 190 с.

74. Селюкайте 3., Семенов В.М. Некоторые особенности тонкого строения трофонтов Trichmonas muris /3. Селюкайте, В.М. Семенов //Цитология,- 1976.- Т. 18., № 1.- с. 91-96.

75. Серавин Л.Н. Макросистема жгутиконосцев //Принципы построения макросистемы одноклеточных животных /Л.Н. Серавин,- Л., 1980.- С. 4-22.

76. Серенко Е.К., Калинин В.И. Непрерывное культивирование Trichomonas vaginalis на диагностических средах: материалы ассоциации студентов и молодых специалистов / Е.К. Серенко, В.И. Калинин.- Саратов, 2005.-С. 46-47.

77. Серавин Л.Н. Простейшие. Что это такое? /Л.Н. Серавин.- Л.: Наука, 1984.- 112 с.

78. Ситников Н.В. Проблемы лазерной медицины: матер. IV междунар. конгресса /Н.В. Ситников.- М.: Видное, 1997,- С. 207-208.

79. Скрипкин Ю.К., Шарапов Г.Я., Селисский Г.Д. Инфекции, передаваемые половым путем: практическое руководство /Ю.К. Скрипкин, Г.Я. Шарапов, Г.Д. Селисский,- М.: МЕДпресс-имформ, 2001.- 368 с.

80. Сосновцева О.П., Софьин B.C. Медико-экономическая эффективность ПЦР-диагностики заболеваний, передающихся половым путем /О.П. Сосновцева, B.C. Софьин //ИППП.- 1999.- № 5.- С. 77.

81. Суворов С.А. К патогенетической терапии больных хроническим простатитом: материалы VIII всерос. съезда дерматовенерологов /С.А. Суворов.- М., 2001,- С. 4-5.

82. Суворов С.А. Коррекция нарушений антиоксидантной защиты при хроническом простатите электромагнитным излучением миллиметрового диапазона: материалы У111 всерос. Съезда дерматовенерологов. /С.А. Суворов,-М. 2001.-С. 12-13.

83. Сюч Н.И. Актуальные вопросы лабораторной диагностики мочеполового трихомониаза /Н.И. Сюч //Вестн. дерматол. и венерол.-2000.- № 3,- С. 4-6.

84. Сюч Н.И. Серологическая диагностика: место в комплексе исследований при мочеполовом трихомониазе /Н.И. Сюч //Вестник дерматол. и венерол.- 2001,- №4.- С. 6-8.

85. Тиктинский О.Л., Михайлиниченко В.В. Андрология /О.Л. Тиктинский, В.В. Михайлиниченко.- Медиа Пресс, 1999,- С. 1-431.

86. Тиктинский О.Л., Новиков И.Ф., Михайличенко В.В. Заболевания половых органов у мужчин /О.Л. Тиктинский, И.Ф. Новиков, В.В. Михайличенко.- Л.: Медицина, 1985,- 261 с.

87. Тихонов И.В., Сидорова Т.И. Лечение больных хроническим бактериальным простатитом с использованием аппаратов Интрамаг и Ласт-02 /И.В. Тихонов, Т.И. Сидорова //Вестник дерматологии и венерологии. 2006,-№3,- С. 49-51.

88. Утц С.Р., Пронь Д.А. К особенностям эпидемиологии инфекций, передаваемых половым путем в Саратовской области: матер, съезда дерматол. и венерол /С.Р. Утц, Д.А. Пронь.- Саратов, 2002.- С. 156-157.

89. Фадеев А.А., Ломоносов К.М. Выбор оптимального препарата для терапии трихомониаза / А.А. Фадеев, К.М.Ломоносов //Русский мед. журнал.2006-№7- С. 15.

90. Цитоморфологиченская диагностика урогенитального трихомониаза: Литературно-методический обзор //Медицинский центр молекулярной диагностики.- Киев, Украина, 2006.- 5-8 с.

91. Шестерина М.А., Каток А.Н., Малиев Б.М. Влияние НИЛИ на условно патогенные микроорганизмы /М.А. Шестерина, А.Н. Калюк, Б.М. Малиев / //Врачебное дело.- 1987.- № 8.- С. 53-56.

92. Щербакова' Н.И., Брагина Е.Е. Моделирование смешанной хламидийно-трихомонадной инфекции "in vitro" /Н.И. Щербакова, Е.Е. Брагина //Хламидии (гальпровии) и хламидиозы .- М., 1982.- С. 19-22.

93. Юдин А.Л. О возможности генетического исследования агамно размножающихся простейших /А.Л. Юдин //Протозоология,- Л.: Наука, 1976.-Вып. 1-С. 19-29.

94. Юнда И.Ф. Болезни мужских половых органов /И.Ф. Юнда,-Киев: Здоровье, 1981.- 175 с.

95. Яцуха М.В., Шкляр Р.П., Засыпкина Г.Н., Файнштейн С.Ф. Лабораторная диагностика мочеполового трихомониаза /М.В. Яцуха, Р.П. Шкляр, Г.Н. Засыпкина, С.Ф. Файнштейн //Вестн. дерматол. и венерол.-1982,-№8.-С. 19-21.

96. Abonnyi A. Examination of nonflagellate and flagellate round forms of Trichomonas vaginalis by transmission elector microscopy /А. Abonnyi //Appl. Parasitol.-1995.- Vol.36.- P. 214-216.

97. Alderet J.F., Provenzano D. The vagina has reducing environment sufficient for activation of Trichomonas vaginalis /J.F. Alderet, D. Provenzano //Genitour Med.- 1997,- Vol. 73(4).-P. 291-296.

98. Alderete J.F. Trichomonas vaginalis adhesin display molecular mimicry to metabolic enzymes /J.F. Alderete //Adv. Exp. Med. Biol.- 1996.- Vol. 408,-P. 207-223.

99. Alvarez-Sanchez M.E., Avila-Gonzalez L., Becerril-Garcia C. Departamento de Patologia Experimental, Mexico, 07360, DF /М.Е. Alvarez-Sanchez, L. Avila-Gonzalez, C. Becerril-Garcia //Microb. Pathog.- 2000.- Vol. 4.-P. 193-202.

100. Arroyo R., Alderette J.F. Two Trichomonas vaginalis surfas proteinases bind to host epithelial cells and are related to levels of cytoadrence and cytotoxicity /R. Arroyo, J.F. Alderette //Arch. Med. Res.- 1995.- Vol. 26,- P. 279.

101. Bodgar C., Rollinghoff M. How do Protozoan Parasites Survive inside Macrophges /С. Bodgar, M. Rollinghoff // Sex. Transm. Infekt.- 2002.-Vol. 78(5).-P. 250-252.

102. Bowden F.J., Garnett G.P. Trichomonas vaginalis epidemiology and analyzing a model of treatment intervention /F.J. Bowden, G.P. Garnett //Sex. Transm. Infekt.- 2000,- Vol. 76(4).- P. 248-256.

103. Catlin B.W. Gardnerella vaginalis: characteristics, clinical considerations, and controversies /B.W. Catlin //Clin. Microbiol. Rev.-1992,-Vol. 5, №3.- P. 213-237.

104. Chipperfield E., Evans B. Effect of local infection and oral contraception on immunoglobulin levels in cervical mucus /Е. Chipperfield, B. Evans //Infect. Immun.-1975.-Vol. 11, № 2.- P. 215-221.

105. Chipperfield E., Evans B. The influence of local infection on immunoglobulin formation in human endocervix /Е. Chipperfield, B. Evans //Clin. A. Exp. Immunol.- 1972,- Vol. 11, № 2,- P. 219-223.

106. Constancis P. Laser /Р. Constancis.- Barcelona.- ILTA Puplishers,1994.-P. 68.

107. Corbeil L.B. Use of animal model of trichomoniasis as a basis for understanding this disease in women /L.B. Corbeil //Clin. Infect. Dis.- 1995.-Vol.21, Suppl 2:S.- P. 158-161.

108. Drand G.M., Galask R.P. Trimethylamin: the substance mainly responsible for the fishy odor often associated with bacterial vaginosis /G.M. Drand, R.P. Galask //Obstet. Gynecol.- 1986,- Vol. 68, № 5,- P. 682-685.

109. Engbring J.A., O'Brien J.L., Alderete J.F. Trichomonas vaginalis adhesin display molecular mimicry to metabolic enzymes /J.A. Engbring, J.L. O'Brien, J.F. Alderete //Adv. Exp. Med. Biol.- 1996,- Vol. 408.- P. 207-223.

110. Evaldson G.R., Malmborg A.S, Nord C.E. Premature rupture of the membranes and ascending infection /G.R. Evaldson, A.S. Malmborg, C.E. Nord //Brit. J. Obstet. Ginecol.- 1982.- Vol. 89, № 10,- P. 793-802.

111. Fiori P.L., Rapelli P., Addis M.F. The flagellated parasite Trichomonas vaginalis: new insights into cytop atho genicity mechanisms //Microbes Infect.- 1999,- Vol. 2.- P. 149-156.

112. Fukuda M., Fukuda K., Ranoux C. Unexpected low oxygen tension of intravaginal culture /М. Fukuda, K. Fukuda, C. Ranoux //Hum. Reprod.-1996.-Vol.ll, № 6,- P. 1293-1295.

113. Ganju D. Leucorrhoea due to Trichomonas vaginalis clinical trial with hamycin /D. Ganju //Hindustan Antibiot. Bull.- 1966.- Vol. 9 (2).- P. 6975.

114. Gulmezoglu A.M., Forna F. Interventinse for treating trichomoniasis in women /A.M. Gulmezoglu, F. Forna //Cochrane Database Syst. Rev.- 2000. -CD000218.

115. Hammil H.A. Trichomonas vaginalis /Н.А. Hammil //Obstet . Gynicol. Clin. North Am.- 1989,- Vol. 16.- P. 84-92.

116. Harris J.R. Double-blind comparative study of Trichomonas vaginalis infection: Solco Trichovac versus placebo /J.R. Harris //Gynakol. Rundsch.-1984,- Vol. 24, Suppl 3.- P. 44-49.

117. Heiss H. Clinical evaluation of medicines effective against trichomoniasis vaginalis in a double-blind study /Н. Heiss //Wien Med. Wochenschr.- 1971,-Vol. 121 (46).-P. 832-834.

118. Iannino A., Testa P. Local treatment of vaginitis due to T. vaginalis. Comparative studies on methyl-partricin and metronidazole /А. Iannino, P. Testa //Minerva Ginecol.- 1975.- Vol. 27 (11).-P. 929-932.

119. Kingston M.A., Bansal D., Carlin E.M. "Shelf life" of Trichomonas vaginalis /М.А. Kingston, D. Bansal, E.M. Carlin //Inter. J. STD and ATOS.-2003,- Vol. 14(1).- Vol. 28-29.

120. Klebanoff S.J., Coombs R.W. Viricidal effect of Lactobacillus acidophilus on human immunodeficiency virus type 1: possible role in heterosexual transmission /S.J. Klebanoff, R.W. Coombs //J. Exp. Med.-1991.- Vol 174, № 1.- P. 289-292.

121. Kostara I., Carageorgiou H., Varonos D., Tzannetis S. Dept of Experimental Pharmacology. Urinary tract in primary care Я. Kostara, H. Carageorgiou, D. Varonos, S. Tzannetis //J. Med. Microbiol.- 1998,- Vol. 6,- P. 555-560.

122. Krieger J.N. Trichomoniasis in men: old issues and new data /J.N. Krieger //Sex. Transm. Dis.- 1995.- Vol. 22 (2).- P. 83-96.

123. Kulda J. Trichomonas, hydrogenosomes and drug resistance /J. Kulda //Inf. J. Parasitol.-1999.- Vol. 29(2).- P.199-212.

124. Litschgi M. The problem of relapsing infections after treatment of trichomoniasis vaginalis with solcotrichovac a randomized double-blind study /М. Litschgi //Geburtshilfe Frauenheilcd.- 1982.- Vol. 42 (3).- P. 231-233.

125. Loevshall H., Scharff O., Foder B. Effect of Low Level Laser Irridiation on Cytosolic Ca in Human Neutrophyls in Vitro /Н. Loevshall, O. Scharff, B. Foder //Lasers in Life Sci.- 1998,-Vol. 8, № 1,- P.127-136.

126. Madico G., Quinn T.C., Rompalo A., McKee K.T., Gaidos C.A. Diagnosis of Trichomonas vaginalis infection by PCR using vaginal swab samples /G. Madico, T.C. Quinn, A. Rompalo, K.T. McKee, C.A. Gaidos //J. Clin. Microbiol.- 1998,-Vol. 36.-P. 3205-3210.

127. Martinez-Garcia F., Regardera J., Mayer R. Protozoan infections in the male genital tract /F. Martinez-Garcia, J. Regardera, R. Mayer //J. Urol.-1996,- Vol. 156,-P. 340-349.

128. McCann J.S. Comparison of direct microscopy and culture in diagnosis of trichomoniasis /J.S. McCann //Br. J. Vener. Dis.- 1974,- Vol. 50.-P. 450-452.

129. Moldwin R.M. Sexually transmitted protozoal infections Trichomonas vaginalis? Entamoeba histolytica, and Girdian Lamblia /R.M. Moldwin //Urol. Clin. North Am.- 1992.- Vol. 19(1).- P. 93-101.

130. Petrin D., Delgati K., Bhat R. Clinical and Microbiological Aspects of Trichomonas vaginalis /D. Petrin, K. Delgati, R. Bhat //Clin. Microbiol. Reviews.- 1998,- Vol. 4.- P. 300-317.

131. Pitelka D.R. Fibrillar systems in flagellates and ciliates //Research in Protozoology /D.R. Pitelka .- Oxford: Pergamon press, 1968.- Vol. 3,- P. 282338.

132. Riley D.E., Roberts М.С., Tacayama Т., Krieger J.N. Development of a Polimerase Chain Reaction Based Diagnosis of Trichomonas vaginalis /D.E. Riley, M.C. Roberts, T. Tacayama, J.N. Krieger //J. Clin. Microbiol.- 1992.- Vol. 2,- P. 464-472.

133. Samuelson J. Why Metronidasol Is effective against both Bacteria and Parasites /J. Samuelson //Antimicrobial Agents and Chemotherapy.- 1999.- Vol. 7,-P. 1533-1541.

134. Sandvaei R., Johannessen K.H. Treatment of Trichomonas vaginalis. A double-blind trial with 3 different drugs /R. Sandvaei, K.H. Johannessen //Tidsskr. Nor. Laegeforen.- 1979,- Vol. 99 (6).- P. 316-317.

135. Shuter J., Bell D. Rates of and risk factor for trichomoniasis among pregnant inmates in New York City /J. Shuter, D. Bell //Sex. Transm. Dis.-1998,- Vol. 25,-P. 303-307.

136. Singh B. Molecular methods for diagnosis and epidemiological studies of parasitic infections /В. Singh /Ant. J. Parasitol.- 1997.- Vol. 27 (10).-P. 1135-45.

137. Sleigh М.А. The biorog^of Protozoa /М.А. Sleigh.- London: William Clowes and Sons Limit., 1973.-315 p.

138. Taylor F.J.R. Problems in the development of explict hypothetical phylogeny of the lower eukaryotes /F.J.R. Taylor //Biosystems.- 1978,- Vol. 10, № 11,-P. 67-89.

139. Thomason J.L., Gelbart S.M. Trichomonas vaginalis /J.L. Thomason, S.M. Gelbart //Obstet. Gynecol.- 1989,- Vol. 2.-P. 536-41.

140. Yuh Y.S., Liu J.Y., Shaio M.F. Chromosome number of Trichomonas vaginalis /Y.S. Yuh, J.Y. Liu, M.F. Shaio //J. parasitol.- 1998,- Vol. 84(1).- P. 28.

141. Zhang Z.F., Begg C.B. Is Trichomonas vaginalis a cause of cervical neoplasia. Results from a combined analysis of 24 studies /Z.F. Zhang, C.B. Begg /flnt. J. Epidemiol.- 1994,- Vol. 23 (4).- P. 682-690.