Автореферат и диссертация по медицине (14.00.29) на тему:Детекция и мониторинг клональных перестроек генов тяжелых цепей иммуноглобулинов у больных множественной миеломой

ДИССЕРТАЦИЯ
Детекция и мониторинг клональных перестроек генов тяжелых цепей иммуноглобулинов у больных множественной миеломой - диссертация, тема по медицине
АВТОРЕФЕРАТ
Детекция и мониторинг клональных перестроек генов тяжелых цепей иммуноглобулинов у больных множественной миеломой - тема автореферата по медицине
Жеребцова, Вера Анатольевна Москва 2008 г.
Ученая степень
кандидата медицинских наук
ВАК РФ
14.00.29
 
 

Автореферат диссертации по медицине на тему Детекция и мониторинг клональных перестроек генов тяжелых цепей иммуноглобулинов у больных множественной миеломой

На правах рукописи

Жеребцова Вера Анатольевна

«Детекция и мониторинг клональных перестроек генов тяжелых цепей иммуноглобулинов у больных множественной миеломой».

14 00 29 - Гематология и переливание крови

АВТОРЕФЕРАТ диссертации на соискание ученой степени кандидата медицинских наук

ООЗ170820

Москва, 2008

003170820

Работа выполнена в Государственном учреждении Гематологический Научный центр Российской Академии Медицинских Наук

Научный руководитель член-корреспондент РАМН Доктор медицинских наук, профессор В Г Савченко

Официальные оппоненты

Доктор медицинских наук, профессор А К Голенков Доктор биологических наук, профессор Б С Народицкий

Ведущее научное учреждение

Российский онкологический научный центр РАМН

Защита состоится « // » 2008 г в час

на заседании диссертационного Совета Д 001 042 01 при Государственном учреждении Гематологический Научный центр Российской Академии Медицинских Наук по адресу 125167 Москва, Новозыковский проезд, д 4а

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке Государственного учреждения Гематологический Научный центр Российской Академии Медицинских Наук

Автореферет разослан « _2008 года

Ученый секретарь диссертационного Совета Кандидат медицинских наук

Е Е Зыбунова

Актуальность проблемы

В лечении множественной миеломы (ММ) выделяют два основных химиотерапевтических подхода Принципом так называемой стандартной терапии миеломной болезни является длительное, практически непрерывное применение химиопрепаратов в небольших дозах (схемы «МП», «М2») Программы высокодозной химиотерапии (ВХТ) основаны на принципе интенсификации дозы химиотерапеетического воздействия Интенсивное лечение ММ рассчитано на максимальное уменьшение опухолевой массы на первых этапах ВХТ с последующей трансплантацией аутологичных или аллогенных стволовых клеток крови (СКК) или костного мозга (КМ) в качестве консолидации достигнутого эффекта и длительным поддерживающим лечением интерфероном-а (ИНФ-а) Применение интенсивных программ химиотерапии и трансплантации аутологичных или аллогенных стволовых клеток у больных ММ позволило существенно увеличить частоту достижения полных ремиссий (ПР) и продолжительность жизни больных Чувствительность стандартных методов оценки эффективности лечения ММ (морфологическое исследование костного мозга и иммунохимическое исследование сыворотки крови и мочи) оказалась недостаточной в связи с существенной редукцией опухолевой массы Появилась необходимость в дополнительном применении более чувствительных методов детекции минимальной резидуальной болезни (МРБ)

Одним из методов, обладающих достаточно высокой чувствительностью для обнаружения опухолевого клона и отслеживания в динамике остаточных миеломных клеток, является полимеразная цепная реакция (ПЦР) В основе оценки клональности и мониторинга МРБ при ММ лежит биологическая особенность лимфоидной ткани, отличающая ее от любой другой наличием в геноме каждого лимфоцита уникально перестроенного гена тяжелых цепей иммуноглобулинов (1дН) ПЦР-анализ в подавляющем большинстве случаев дает возможность маркировать опухолевый клон по таким уникальным перестройкам Метод ПЦР позволяет определить остаточные опухолевые клетки с высокой чувствительностью Большим преимуществом данного подхода является также возможность не только качественной, но и полуколичественной или количественной оценки опухолевого клона Использование метода ПЦР для определения минимальной резидуальной болезни способствует более полной оценке результативности режимов химиотерапии Клиническая значимость мониторинга МРБ в настоящее время

достоверно показана для острых и хронических лейкозов Так в частности, результаты молекулярных исследований при данных заболеваниях широко используют для прогнозирования клинико-гематологических рецидивов и определения показаний к возобновлению или смене специальной терапии Роль мониторинга МРБ у больных ММ пока остается неопределенной Кроме того, недостаточно изучены биологические особенности опухоли Именно эти нерешенные вопросы послужили поводом для проведения нашего исследования

Цель исследования.

Разработка методов оценки эффективности лечения множественной миеломы с использованием высокочувствительных индивидуальных ПЦР-систем для тестирования опухолевого клона

Задачи исследования

1 Разработать метод детекции клональных перестроек генов тяжелых цепей иммуноглобулинов у больных парапротеинемическими гемобластозами, основанный на обратно-транскриптазной полимеразной цепной реакции

2 Определить нуклеотидную последовательность фрагментов, соответствующих клонально перестроенным вариабельным регионам генов иммуноглобулинов и проанализировать их на наличие мутаций

3 Определить частоту обнаружения клональных перестроек генов тяжелых цепей иммуноглобулинов у больных парапротеинемическими гемобластозами и изучить характер использования семейств УН-генов

4 Создать индивидуальные пациент-специфичные ПЦР-системы для тестирования опухолевого клона и провести с их использованием динамическое исследование резидуальной болезни в ходе лечения множественной миеломы

5 Сравнить информативность исследований перестроек генов тяжелых цепей иммуноглобулинов в образцах костного мозга и периферической крови

6 Оценить прогностическую значимость выявления остаточной популяции опухолевых клеток в образцах лейкоконцентратов

7 Определить этапы селекции больных множественной миеломой в ходе проведения интенсивной химиотерапии и провести анализ эффективности лечения на различных этапах

Научная новизна

1 Установлено соответствие частоты встречаемости различных семейств \/Н-генов у больных множественной миеломой с частотой их использования в нормальном В-клеточном репертуаре

2 Детально охарактеризованы и представлены в СепВапк МСВ1 нуклеотидные последовательности клонально перестроенных \/Н-генов у 38 больных множественной миеломой

3 Отмечено частое использование вариабельного сегмента \/Н 1-69

4 Показана высокая стабильность структуры перестроенных генов тяжелых цепей иммуноглобулинов при развитии рецидива множественной миеломы и на разных стадиях заболевания

5 Установлено, что отсутствие сывороточного парапротеина у больных с миеломой Бенс-Джонса и несекретирующей формой миеломы обусловлено возникновением аномальных стоп-кодонов и ГгатеэГнА-мутаций

Практическая ценность:

1 Доказана целесообразность использования в качестве молекулярного маркера опухоли у больных парапротеинемическими гемобластозами кпональных перестроек генов тяжелых цепей иммуноглобулинов

2 Созданы высокочувствительные, индивидуальные пациент-специфичные ПЦР-системы для мониторинга минимальной резидуальной болезни у пациентов с множественной миеломой

3 Определены этапы селекции больных в ходе проведения интенсивной химиотерапии и показаны основные причины снятия пациентов с высокодозных программ лечения множественной миеломы

4 Продемонстрированы различные методические подходы, использованные для повышения чувствительности детекции минимальной резидуальной болезни

Положения, выносимые на защиту

1 Кпональная реаранжировка генов тяжелых цепей иммуноглобулинов методом обратно-транскриптазной полимеразной цепной реакции выявлена у 90% первичных больных парапротеинемическими гемобластозами

2 Характер использования генов вариабельного региона в исследуемой группе соответствует частоте использования Х/Н-генов в нормальном репертуаре В-клеток

3 Степень гомологии с терминальными \/Н-генами составляет 74,2-96%, что свидетельствует о прохождении соматического гипермутирования

4 Клонально перестроенный ген 1дН в опухолевых клетках у больных ММ отличается высокой стабильностью на разных стадиях болезни и при развитии рецидива

5 Созданы высокочувствительные, индивидуальные пациент-специфичные ПЦР-системы для мониторинга минимальной резидуальной болезни у пациентов с множественной миеломой

6 После курсов «\/АО» и циклофосфана в высоких дозах у 100% больных в костном мозге обнаруживаются остаточные опухолевые клетки После курса «ЕйАР» молекулярный маркер выявляется у 77,8%, после аутотрансплантации СКК у 67% больных

7 В лейкоконцентратах опухолевые клетки с клональными перестройками генов 1дН обнаружены у 64% больных ММ

Публикации

По теме диссертации опубликовано 6 печатных работ

Апробация диссертации

Основные положения работы доложены на Международной Гематологической школе «Лейкозы и лимфомы Терапия и фундаментальные исследования» (Москва, 2004г, 2006г, 2007г), 1-ой Российско-Американской Онкологической конференции (Санкт-Петербург, 2005г), Всероссийском декаднике по гематологии (Москва, 2007г), Европейской трансплантационной конференции (Лион, 2007г)

Объем и структура работы

Диссертация изложена на 161 странице, состоит из введения, обзора литературы, методической главы, главы собственных результатов, заключения, выводов и указателя литературы Работа иллюстрирована 13 таблицами, 27 рисунками, 1 схемой, 3 диаграммами Диссертация выполнена в отделении высокодозной химиотерапии гемобластозов и трансплантации костного мозга ГНЦ РАМН (руководитель член-корреспондент РАМН, проф В Г Савченко), совместно с лабораторией генной инженерии ГНЦ РАМН (заведующий к б н А В Мисюрин, научный консультант с н с В Л Сурин), а также при участии сотрудников других подразделений ГНЦ РАМН (директор академик РАН и РАМН А И Воробьев)

Соавторами работ, опубликованных по теме диссертации являются член-корр РАМН В Г Савченко, дмн Л П Менделеева, В Л Сурин, кбн А В Мисюрин, кмн НГ Тюрина, О С Покровская, к м н ЕЮ Варламова, к м н КС Момотюк, к м н Е Н Устинова, дмн Л С Любимова, кмн Е О Грибанова, Н Е Митиш, кмн И Б Капланская, д б н И А Воробьев, ЕМ Грецов, д м н НН Калинин

Содержание работы

Характеристика больных

В настоящей работе представлены результаты обследования 46 больных парапротеинемическими гемобластозами у 41 установлен диагноз множественной миеломы, у двух пациентов - макроглобулинемия Вальденстрема, в одном случае - острый плазмсбластный лейкоз, у 1 больного - моноклональная гаммапатия, в одном случае установлен диагноз солитарной плазмоцитомы Пациенты наблюдались в отделении высокодозной химиотерапии гемобластозов и трансплантации костного мозга Гематологического Научного центра РАМН в период с февраля 2002 по декабрь 2005 года (директор - академик РАН и РАМН А И Воробьев, руководитель отделения - член-корр РАМН В Г Савченко)

Среди включенных в исследование больных было 26 мужчин и 20 женщин в возрасте от 35 до 72 лет, медиана возраста составила 53 года

При поступлении в ГНЦ РАМН с диагностической целью больным проводили необходимый объем лабораторно-инструментальных исследований У 22 из 41 (53,66%) больных ММ определена НА стадия заболевания, у 18 (43,9%) - III стадия (IIIA - 7, IIIB - 11 больных) У одного пациента диагноз ММ установлен на IA стадии Исходного разделения больных на различные группы не проводили На момент обращения в клинику всем пациентам планировалось интенсивное лечение по протоколу «Тотальная Терапия», предложенному В Bariogie и соавторами Программа состоит из нескольких последовательных индукционных курсов полихимиотерапии и высокодозной консолидации с помощью двойной аутотрансплантации Индукция включает в себя 3 курса «VAD», мобилизацию гемопоэтических клеток крови циклофосфаном в высоких дозах («HDCph») и колониестимулирующим фактором, сбор стволовых клеток крови, курс химиотерапии «EDAP» Консолидация состоит из двух последовательно выполняемых трансплантаций аутологичных стволовых клеток крови В качестве поддерживающей терапии используют интерферон-а 3 млн ЕД подкожно 3 раза в неделю, длительно

Необходимо отметить, что еще до начала терапии 6 больных были исключены из клинического исследования (причины отказ пациентов от терапии в условиях ГНЦ и отсутствие показаний для проведения ПХТ на момент установления диагноза)

Первичное молекулярное исследование костного мозга, направленное на выявление клональных перестроек генов тяжелых цепей иммуноглобулинов выполняли всем больным парапротеинемическими гемобластозами (п=46) ПЦР мониторинг опухолевого клона осуществляли у больных, у которых удалось обнаружить молекулярный маркер опухоли

Методы исследования

Молекулярно-генетическое исследование костного мозга, периферической крови, лейкоконцентратов выполняли в лаборатории генной инженерии ГНЦ РАМН (зав к б н А В Мисюрин)

Выполнение цитогенетических исследований и определение прогностической значимости аномалий кариотипа не входили в задачи исследования

С целью детекции и мониторинга минимальной остаточной болезни в работе использовался метод амплификации клонально перестроенных генов вариабельного региона тяжелых цепей иммуноглобулинов Материалом для молекулярного исследования служили образцы костного мозга и периферической крови больных, взятые до начала лечения и на различных этапах терапии Кроме того, у пациентов, которым выполняли трансплантацию аутологичных стволовых клеток крови, исследовали лейкоконцентраты

Первое исследование выполняли до начала лечения с целью определения молекулярного маркера - клонально перестроенного вариабельного региона генов тяжелых цепей иммуноглобулинов Материалом для первичного анализа, проводимого методом обратно-транскриптазной полимеразной цепной реакции, служила тотальная РНК, выделенная из образцов КМ В реакции использовали праймеры, специфичные для одного из 7 семейств генов вариабельного региона тяжелых цепей иммуноглобулинов (\/Н 1.1-6, УН 01-6) и праймеры, гомологичные либо консервативным участкам .Ж-сегментов, либо области константного региона (СН) Нуклеотидные последовательности праймеров представлены в таблице 1

Таблица 1 Нуклеотидные последовательности праймеров

Праймер

Последовательность (5'-> 3')

Су Са Си ЛНР VHL1/7 УН 12 УН ЬЗ VHL4 УН 1.5 УН 1.6 УН 01 УН Э2 УН 03 УН 04а УН 04 Ь УН 05 УН 06

ССААЗТАСТССТТСАССАС АСААвСССТввАССАваСА ССААЛСТСАСАввАСАССАвй АССТСА(ЮАОАСввТвАССАвОв1 СТСАССАТввАСТСвАССТСвАв АТввАСАСАСТТТССЦА/ОСАО ССАТССАСПТССССТСАСС АСАТСАААСАССТСТССТТСТТ АТСОССТСААСССССАТССТ АТСТСТСТСТССТТССТСАТ ССТСАСТСААССТСТССТССААСС ТССТССССТСОТСАААСССАСАСА ССТСССТСАСАСТСТССТСТССА ТСССАСАСССТйТСССТСАССТССА СССТСТСТСТССГТАСТССАТСАС 6ААААА6СССС6ССАСТСТСТСАА ССТСТОССАТСТССССССАСАСТС

Праймеры системы УН 11-6 гомологичны консервативным участкам лидерной области (Ц вариабельного региона, УН 01-6 - 1-му структурному региону (ПЛ/Я1) Нумерация праймеров от 1 до 6 установлена в соответствии с их специфичностью для того или иного семейства УН-генов Одноименные УН I. и УН О праймеры специфичны для одних и тех же семейств генов вариабельного региона, и при поиске молекулярного маркера опухоли часто используют одну из 2-х праймерных систем В случае ММ, из-за наличия в амплифицируемой структуре большого числа соматических мутаций место посадки того или иного праймера может быть нарушено, поэтому в нашей работе для повышения надежности идентификации гена 1дН, ассоциированного с опухолевым клоном, использовали одновременно обе системы праймеров Схематичное изображение структуры 1дН гена с указанием расположения праймеров приведены на рисунке 1

Рисунок 1 Структура 1дН гена, расположение праймеров

вл/т

плто

пл/яз

УН И-6

г—> С0Я1 УН Р1-6

•Ж Су, а, ц

I. - лидерный регион, ВШ - структурный регион, О - регион, определяющий разнообразие, .)Н - соединительный регион, СН - константная область, СОЩ-З -регионы, определяющие комплементарность

Анализ полученных после проведения ПЦР фрагментов осуществляли при помощи электрофореза в 6% полиакриламидном геле с последующей визуализацией в ультрафиолетовом свете после прокрашивания геля бромистым этидием

Фрагмент, соответствующий по длине клонально перестроенному VH-гену, секвенировали Секвенирование проводили в ЦКП «Геном» ИМБ РАН с помощью набора реактивов ABI PRISM®BigDye™ Terminator v 3 1 с последующим анализом продуктов реакции на автоматическом секвенаторе ДНК ABI PRISM 3100-Avant или вручную по модифицированному методу Сенгера с использованием системы «Macrophore» (Sweden) После определения нуклеотидной последовательности ПЦР-фрагмента проводили его сравнение с терминальными VH-генами с помощью программы IgV BLAST и базы данных IMGT Степень гомологии определяли по отношению к наиболее близкому терминальному VH-гену В тех случаях, когда полученная нуклеотидная последовательность была гомологична терминальному VH-гену менее чем на 98%, констатировали прошедшую соматическую гипермутацию Пограничный показатель гомологии, равный 98%, используется авторами аналогичных исследований с учетом поправки на аллельный полиморфизм С целью оценки реального вклада аллельных вариаций в изменение структуры VH-генов мы исследовали фрагменты неперестроенных терминальных аллелей гена VH1-69 у 5 больных, миеломные клоны которых имели данный вариант IgH Для осуществления этой задачи использовали следующие праймеры 1) VH1-69D - CCCTGAGAGCATCACATAAC, 2) VH1-69R -ACCCCTGTCATCTCCTCAGC

На основании анализа полученных нуклеотидных последовательностей клонально перестроенных VH-D-JH-регионов производили подбор и синтез индивидуальных пациент(аллель)-специфичных праймеров Обратный праймер подбирали к уникальной для выявленного клона области CDR3, прямой праймер -к наиболее мутировавшим участкам VH-области, обычно CDR1 или CDR2 Синтез олигонуклеотидов осуществляли с помощью автоматического синтезатора ДНК на фирме Sintol

Для мониторинга минимальной резидуальной болезни выполняли ПЦР с пациент-специфичными праймерами В качестве матрицы использовали геномную ДНК, выделенную из костного мозга, периферической крови и лейкоконцентратов Предварительно, спектрофотометрически определяли концентрацию нуклеиновых кислот в кахедом исследуемом образце Для этого измеряли его оптическую

плотность (ОД) при 260 нм Одна единица ОД при 260 нм соответствует концентрации двухцепочечной ДНК 50 мкг/мкп Для оценки чистоты водного раствора ДНК, его оптическую плотность измеряли при 260 и 280 нм и вычисляли соотношение полученных величин (для «чистых» препаратов оно должно быть равно 1 8-2) Все анализируемые образцы геномной ДНК разводили деионизированной водой до концентрации 0 1 мкг/мкл Таким образом, все ДНК-пробы имели идентичные количественные характеристики, благодаря чему был возможен их сравнительный анализ

Определение уровня МРБ выполняли с помощью полуколичественной ПЦР (метод предельных разведений) С целью повышения чувствительности ПЦР амплификацию проводили в две стадии с 2 парами праймеров (двухраундовая ПЦР, "nested" PCR)

Матрицей для ПЦР I служила геномная ДНК первичных образцов костного мозга, периферической крови в концентрации 0 1 мкг/мкл и в их последовательных десятикратных разведениях контрольной ДНК 10'1 (1 10), 102(1 100), 10"3(1 1000), 10"4 (1 10000) Также реакцию проводили с пробами костного мозга, крови, и, при наличии, лейкоконцентрата (в концентрации 01 мкг/мкл), полученными на различных этапах лечения

ПЦР II выполняли с аликвотой реакционной смеси после ПЦР I и парой индивидуальных пациент-специфичных праймеров

Молекулярный мониторинг МРБ проводили у всех больных вне зависимости от эффективности терапии при условии, что количество образцов костного мозга и периферической крови в динамике составляло два и более

Статистический анализ полученных данных

Для статистической обработки данных использовали методы описательной статистики, анализа таблиц сопряженности, однофакторного, многофакгорного дисперсионного анализа выживаемости (пошаговые процедуры модели пропорциональных рисков) Для расчетов использовали пакет статистических программ SAS

Основные понятия.

Определения полной ремиссии, частичной ремиссии, частичного ответа, минимального ответа, отсутствия ответа, рецидива и прогрессии заболевания соответствуют критериям оценки эффективности лечения ММ ЕВМТ

Минимальная резидуальная болезнь - постоянно определяемая остаточная популяция опухолевых клеток, выявить которую можно лишь с помощью новых высокочувствительных молекулярно-генетических методов Одновременно при световой микроскопии в костном мозге определяется менее 5% плазматических клеток, по данным иммунохимического исследования не обнаружен парапротеин в сыворотке и белок Бенс-Джонса в моче, а показатели общего и биохимического анализов крови в норме

Молекулярная ремиссия - это полная ремиссия ММ при отсутствии исходно определявшегося методом ПЦР молекулярного маркера

Общая выживаемость - число реально оставшихся больных ММ на фоне проведенной терапии Для построения кривой общей выживаемости анализируют параметры всех больных, включенных в исследование Точкой отсчета считается день начала терапии Событием считается только смерть больного от любой причины и на кривой отображается ступенькой, идущей вниз Больных, живых во время проведения анализа, расценивают как случай и на кривой отмечают черточкой, те цензурируют Больных, судьба которых неизвестна, цензурируют в тот момент, когда было известно, что они живы Больных, отказавшихся от лечения, цензурируют в день"отказа от терапии

Результаты исследования. Клиническое исследование

В анализ эффективности лечения ММ включены 40 больных У 33 больных программу первого этапа индукции применяли в соответствии с протоколом «Тотальная Терапия» (курсы «\/АО») Двое из 40 больных не были приняты на протокол «Тотальная терапия» (причины возраст старше 70 лет, тяжелая сопутствующая патология) Этим пациентам исходно проводили лечение по стандартным схемам «М-2» и/или «МП» В пяти случаях из 40 в рамках исследования ТНА1.-2ММ003 в качестве индукционной терапии использовали талидомид в сочетании с дексаметазоном Необходимо отметить, что все больные, взятые на программу индукции «талидомид + дексаметазон», по результатам первичного обследования не имели противопоказаний к принятию на протокол «Тотальная Терапия»

После одного курса «УАО» с протокола были сняты двое больных, в одном случае по причине профессии заболевания, в другом - в связи с отсутствием эффекта от терапии и развитием тяжелых осложнений После второго курса

«УАО» с протокола были сняты еще 4 пациента также по причине отсутствия или минимального ответа на лечение и в связи с развитием тяжелых осложнений Одна больная погибла от инфекционных и геморрагических осложнений в период проведения 2-го курса «УАй», после первого курса противоопухолевый эффект отсутствовал Ранняя летальность составила 3% Таким образом, первый этап индукции по протоколу «Тотальная терапия» был выполнен в полном объеме у 26 из 33 больных (78,8%) После завершения 3-х курсов «УАЭ» было выполнено полное контрольное обследование больных Эффект лечения считали недостаточным, когда концентрация парапротеина в сравнении с исходной уменьшалась менее чем на 50% (минимальный илл отсутствие ответа, а также прогрессия заболевания) Полная ремиссия после 3-х курсов «УАО» была констатирована у одного больного (3%), частичная ремиссия - у 13 больных (39,4%), частичный ответ - у 8 пациентов (24,2%) Противоопухолевый эффект терапии оказался недостаточным у 11 из 33 больных (33,4%), одна из них погибла в ходе лечения, остальные 10 пациентов были сняты с протокола «Тотальная Терапия» и переведены на программы химиотерапии стандартной интенсивности («МП», «М-2») Кроме того, еще 4 больных были сняты с протокола и переведены на схемы «МП», «М-2» несмотря на хороший (более чем на 50% снижение уровня патологического белка) противоопухолевый эффект курсов «УАй» Причины, по которым пациенты были сняты с протокола на первом этапе индукции, приведены в таблице 2

Таблица 2 Основания для снятия с протокола высокодозной химиотерапии

Сроки снятия' • с протокола Причины снятия с протоколу «Тотальная Терапия» '

После 1-го курса «УАО» (п=2) <„ 1) прогрессирование заболевания 2) отсутствие ответа + тяжелые осложнения

После* 2-го курса * «УАО» (п=4) % 1) отсутствие ответа + тяжелые осложнения 2-4) минимальный ответ + тяжелые осложнения

После З-го курса «УАр» (п=8)' ' 1) отсутствие ответа 2-4) минимальный ответ 5) возраст больного (72 года) 6-8) отказ от ВХТ

Как видно из представленных в таблице 2 данных, основными причинами для снятия с протокола высокодозной химиотерапии послужили недостаточная эффективность и плохая переносимость (крайне тяжелые, угрожающие жизни

осложнения) VAD-терапии

Мы проанализировали частоту и тяжесть инфекционных, геморрагических и токсических осложнений, возникших в ходе проведения курсов «VAD» в зависимости от степени редукции опухоли Оказалось, что частота развития нетяжелых инфекционных осложнений, таких как стоматит, некротическая энтеропатия, псевдомемранозный колит, Herpes simplex и др не отличалась у больных с разной степенью редукции парапротеина В то же время статистически достоверные отличия были получены в отношении частоты развития таких осложнений, как трахеобронхит (р=0,02) и эрозивный гастрит (р=0,039) Достоверно чаще у больных с низкой химиочувствительностью опухоли состояние осложнилось сепсисом и септическим шоком (р=0,039), пневмонией (р=0,016), тяжелым геморрагическим синдромом (желудочно-кишечное кровотечение, кровоизлияние в головной мозг, геморрагический трахеобронхит, гематурия) Токсические осложнения на этапе VAD-терапии наблюдались крайне редко В частности, у 2 пациентов развилась винкристиновая полинейропатия, и в одном случае были зафиксированы тревожные расстройства, обусловленные терапией кортикостероидами Тромботические осложнения на фоне профилактической терапии гепарином наблюдались у 3 (9%) больных

Если говорить о переносимости проведенного лечения в целом, то обращает на себя внимание тот факт, что у 14 из 22 (63,6%) больных с хорошим противопухолевым эффектом VAD-терапии осложнений вообще не было отмечено В то же время среди больных, у которых противоопухолевый эффект от лечения был недостаточный, осложнения отсутствовали лишь у 4 (36 4%) из 11 пациентов

Мы также провели сравнительный анализ основных клинико-лабораторных показателей первичного обследования больных, у которых наблюдался хороший противоопухолевый эффект VAD-терапии (полная ремиссия, частичная ремиссия, частичный ответ, п=22) и пациентов, у которых эффективность лечения оказалась недостаточной (снижение секреции моноклонального парапротеина менее чем на 50%, п=11) Статистически достоверные отличия получены только в отношении показателя бета2-микроглобулина (р=0,0292)

Как уже упоминалось выше, у 5 из 40 включенных в клиническое исследование больных в качестве индукционной терапии использовали сочетание талидомида и дексаметазона (протокол THAL-2MM003) Эффективность этой программы оценивали после 3-5 курсов У двух больных была констатирована частичная

ремиссия ММ Одна из них (М40) погибла через 4 месяца от момента начала лечения от септического шока Второй пациент с ЧР после 5 курсов «талидомид + дексаметазон» был переведен на протокол «Тотальная терапия» В двух случаях эффект от лечения отсутствовал, в связи с чем, больные были сняты с протокола и переведены на стандартную терапию У одного пациента после проведения 5 курсов «талидомид + дексаметазон» была констатирована полная ремиссия ММ, однако уже через 3 месяца развился рецидив заболевания и больной также был переведен на лечение по стандартной программе химиотерапии «М-2» Подводя итог описанию последовательной селекции больных ММ, проведенной в первую очередь на основании эффективности тех или иных курсов терапии, мы суммировали в схеме 1 основные этапы разделения больных на две различные группы Одним больным продолжили интенсивное лечение ММ, другие пациенты были переведены на программы химиотерапии в стандартных дозах

Таким образом, на втором этапе исследования были выделены две группы больных Одну группу составили больные, которым предполагалось продолжить и выполнить в полном объеме программу «Тотальная Терапия» (п=19) Во вторую

группу вошли пациенты, которым исходно проводили стандартную химиотерапию ММ и больные, которые были позже переведены на данные программы (п=19)

В соответствии с протоколом «Тотальная Терапия» следующими после курсов <Л/Ай» этапами индукционной терапии являются 1) мобилизация гемопоэтических стволовых клеток периферической крови циклофосфаном в высоких дозах (6г/м2) и гранулоцитарным колониестимулирующим фактором (Г-КСФ по 5 мг/кг/день) с последующим сбором стволовых гемопоэтических клеток, 2) курс химиотерапии по схеме «ЕйАР»

Мобилизация и сбор стволовых клеток крови были выполнены 19-ти больным Длительность применения Г-КСФ составила 11-20 дней После проведения курса циклофосфана в высоких дозах у большинства больных (63%) инфекционные осложнения либо отсутствовали (п=8), либо были легкой степени тяжести (п=4) Число лейкаферезов варьировало от 2 до 4 Было собрано от 4,2*106/кг до 79,6*106/кг С034-позитивных клеток (медиана - 14,0*106/кг) Только у одной больной не удалось собрать достаточное для трансплантации количество С034-позитивных клеток, она была переведена на стандартные программы лечения ММ После проведения мобилизации ГСКК состояние двух больных осложнилось активным вирусным гепатитом В, что таюке потребовало снятия больных с протокола «Тотальная терапия»

Полная ремиссия после курса циклофосфана в высоких дозах констатирована у 6 пациентов (31 6%) В одном из этих случаев она была достигнута уже после курсов «\/АО», а у пяти пациентов ранее наблюдалась частичная ремиссия В остальных случаях (п=7), когда после 3-х курсов «\/АО» была установлена ЧР, после курса циклофосфана сохранился прежний клинико-лабораторный статус Процент ЧР составил 36 8% Что же касается больных, у которых после \ZAD-терапии был зафиксирован частичный ответ (п=6), во всех этих случаях дальнейшей редукции моноклонального иммуноглобулина не произошло Более того, у одного больного отмечена прогрессия заболевания

Таким образом, основным эффектом курса циклофосфана в высоких дозах стало значительное увеличение частоты ПР (с 3% до 31,6%) за счет пациентов, у которых на предыдущем этапе лечения была достигнута частичная ремиссия Следующий курс химиотерапии по схеме «ЕРАР» был проведен 17 больным В целом переносимость данного курса оказалась удовлетворительной В половине случаев инфекционных осложнений отмечено не было Тяжелых осложнений также не наблюдалось

Оценка противоопухолевого эффекта курса «ЕйАР» показала, что на данном этапе лечения процент полных ремиссий возрос до 47% (8 из 17 больных), то есть ПР была констатирована еще у двух пациентов Во всех остальных случаях клинико-лабораторный статус больных не изменился

В соответствии с программой «Тотальная Терапия» консолидация достигнутого противоопухолевого эффекта осуществляется путем последовательного выполнения двойной трансплантации аутологичных стволовых гемопоэтических клеток Предтрансплантационное кондиционирование состояло из мелфалана в дозе 200 мг/м2 (по 100 мг/м2 в -3 и -2 дни), трансфузию аутологичных гемопоэтических клеток крови осуществляли в 0 день Первая ауто-ТСКК была выполнена 16 больным Вторая трансплантация к сроку окончания исследования была произведена 7 пациентам Интервал между двумя трансплантациями в среднем составил 4,5 месяца У 5 больных ММ от проведения второй ауто-ТСКК пришлось воздержаться по следующим причинам сохраняющаяся более 6 месяцев глубокая аплазия кроветворения (2 случая), вирусный гепатит С (один случай), развитие синдрома слабости синусного узла (один случай), отказ больной (один случай)

Следует отметить, что наиболее частыми инфекционными осложнениями в ходе выполнения первой ауто-ТСКК были стомашт (87 5% случаев), некротическая энтеропатия (56 2%), эзофагит (43 7%), фарингит (43 7%) В одном случае была диагностирована пневмония, у 2 больных (12,5%) наблюдались проявления тяжелой герпетической инфекции (опоясывающий герпес, острый цистит вирусной этиологии) Переносимость 2-ой трансплантации аутологичных СКК оказалась хуже В частности у трех из 7 больных был диагностирован сепсис У одной из 3 указанных больных также наблюдалась двусторонняя пневмония, протекавшая с дыхательной недостаточностью

Оценка противоопухолевого эффекта после выполнения первой ауто-ТСКК показала, что на данном этапе лечения процент полных ремиссий возрос до 56,25% (9 из 16-ти больных), то есть ПР была констатирована еще у 2 пациентов В 3 случаях клинико-лабораторный статус больных изменился с частичного ответа на частичную ремиссию, в двух случаях статус частичной ремиссии сохранился, у одного больного через 2 месяца после выполнения первой трансплантации развился рецидив ММ После второй ауто-ТСКК показатели противоопухолевого ответа оставались практически такими же, как и после первой Только у одной пациентки с частичной ремиссией после 2-ой аутотрансплантации была

констатирована полная ремиссия, но хотелось бы сразу отметить, что в данном случае уже через 13 месяцев был зафиксирован рецидив ММ Не вызывает сомнений явное нарастание числа полных ремиссий от этапа к этапу тотальной терапии Очень высокая эффективность описанного подхода лечения ММ, основанного на интенсификации дозы химиотерапевтического воздействия, объясняется грамотной селекцией больных на всех этапах терапии Как оказалось, самым важным этапом селекции является индукционная \ZAD-терапия Эффективность и переносимость курсов «МАО» послужили главными критериями для отбора больных на программу ВХТ Благодаря этому, нам удалось выделить группу пациентов, у которых был достигнут максимальный эффект от проведенного лечения и которые в большинстве случаев удовлетворительно перенесли интенсивную терапию ММ Мы отдельно оценили эффективность лечения больных, которым исходно проводили химиотерапию в стандартных дозах, а также пациентов, которые были переведены на стандартные программы после 1-3 курсов <Л/АР» или 3-5 курсов «талидомид + дексаметазон» (п=19) В данный анализ не включены больные, которые были переведены на стандартную терапию после проведения курса циклофосфана в высоких дозах или курса «ЕйАР» (п=3) Необходимо сразу отметить, что описываемая группа больных крайне разнородна в отношении начальных этапов терапии Тем не менее мы сочли возможным объединить этих больных для анализа эффективности лечения в группу, пациентам в которой по тем или иным причинам не проводили ВХТ (условно группа не тотальной терапии) Эффективность лечения оценили через 3, 6,12 месяцев от момента его начала Через 3 месяца от начала лечения у 36,8% больных (7 из 19) были установлены частичная ремиссия или частичный ответ Эффективность терапии была расценена как недостаточная (редукция концентрации парапротеина менее чем на 50% от исходной) у 9 из 19 больных, что составило 47,4% В трех случаях на фоне проводимой терапии наблюдалась профессия заболевания Оценка результатов лечения через 6 месяцев показала увеличение числа пациентов, у которых удалось достигнуть ЧР и ЧО, у одного больного была констатирована полная ремиссия ММ Через 12 месяцев наблюдения полная ремиссия была констатирована у 3 больных ММ Хотелось бы отметить, что у всех этих пациентов уже через 3 месяца лечения была достигнута частичная ремиссия Судьба одного из 3-х больных после года наблюдения не известна, а вот у двух других пациентов

через 38 месяцев ПР сохранялась Процент летальности в этой группе больных к моменту окончания исследования составил - 36,8% (7 из 19 больных)

Таким образом, анализ результатов проведенного клинического исследования в первую очередь показал принципиальное значение селекции больных ММ на начальных этапах индукционной терапии по протоколу «Тотальная Терапия» В частности было отмечено, что хорошая эффективность и переносимость курсов «УАР» являются определяющими для выделения группы больных, которым целесообразно продолжать лечение с использованием интенсивной программы химиотерапии, включающей трансплантацию аутологичных гемопоэтических стволовых клеток крови Именно у этих пациентов удается достичь максимального эффекта ВХТ при ее удовлетворительной переносимости

Результаты и обсуждение первичного молекулярного исследования

Первичный молекулярный анализ клональности проведен у 46 больных парапротеинемическими гемобластозами Пять пациентов, страдающих ММ, были включены в молекулярное исследование после проведения 3 курсов химиотерапии по схеме «УАй» Кпинико-гематологический статус этих больных на момент определения клональности в одном случае соответствовал полной ремиссии, в четырех случаях - частичной ремиссии Ни у одного из перечисленных пациентов не удалось выявить молекулярный маркер опухоли -клонально перестроенный вариабельный регион генов тяжелых цепей иммуноглобулинов Это связано с существенной редукцией опухолевой массы и, соответственно, отсутствием явного преобладания клеток миеломы с клональной перестройкой над поликлональной популяцией В-лимфоцитов Таким образом, хотелось бы отметить, что для обнаружения молекулярного маркера при ММ необходимо исследование биологического материала, взятого до начала лечения или на самых ранних этапах терапии, пока сохраняется количественное преимущество опухолевых клеток

Из первичных больных (п=41), включенных в исследование до начала химиотерапии, клональная реаранжировка УН-генов была определена в 37 случаях (90%) Кроме того, у одного пациента с несекретирующей миеломой молекулярный маркер был выявлен после развития рецидива и появления монокпонального иммуноглобулина в сыворотке крови Суммарно клональная реаранжировка УН-генов была определена у 38 больных

В настоящем исследовании молекулярный маркер опухоли не был обнаружен у 4 первичных больных ММ Необходимо отметить, что все 4 случая не выявления клональной перестройки УН-генов касались миеломы Бенс-Джонса и несекретирующей миеломы Отсутствие парапротеина в сыворотке крови при этих вариантах ММ может быть обусловлено соматическим гипермутагенезом перестроенных 1дН генов с возникновением аномальных стоп-кодонов или наличием более крупных дефектов нуклеотидных последовательностей УН-генов (делеций, инсерций, дупликаций), что во многих случаях приводит к невозможности их амплификации Всего в нашем исследовании было 7 первичных больных, у которых отсутствовал сывороточный парапротеин Как мы отметили, у 4 больных перестройки 1дН выявить не удалось, однако у 3 первичных пациентов с миеломой Бенс-Джонса последовательность УН-генов была успешно определена Но оказалось, что в 2 из 3 случаев \Ю.)-последовательности имели нефункциональный вид, в них были многочисленные стоп-кодоны, дупликации и наблюдался сдвиг рамки считывания Этим объясняется отсутствие парапротеина в сыворотке крови данных больных В то же время столь существенные изменения нуклеотидной структуры генов не помешали реакции амплификации

У большинства обследованных больных (п=35) опухолевый маркер был обнаружен как в системе праймеров УН 1_, так и в УН й, в одном случае - только в УН I- системе, в 2-х случаях - только в УН й системе Отсутствие амплификации в одной из систем объясняется, главным образом, существенным искажением места посадки I- или О праймера за счет соматических мутаций

Хотелось бы отметить, что у одной больной, для которой искомые ПЦР-фрагменты были получены с двумя 1_- и двумя й-праймерами, семейств-специфичные варианты соответствовали двум разным кпонально перестроенным генам 1дН Причем, если расшифрованная последовательность одного из фрагментов, отнесенная к соматически мутированному варианту УН4-39, имела функциональный вид, то во втором гене |дН (УНЗ-2Э) наблюдалось серьезное нарушение структуры, обусловленное дупликацией последовательности в 47 п н , захватывающей часть СОР2- и часть Р\Л/1ЧЗ-района и вызывающей не только сдвиг белковой рамки считывания, но и образование раннего стоп-кодона Если принять во внимание, что у указанной больной по данным иммунохимического исследования отсутствовала секреция тяжелых цепей иммуноглобулина (миелома Бенс-Джонса), то представляется вполне обоснованным отнесение к миеломному клону второго из двух описанных выше маркеров, имеющего нефункциональный

вид Можно предположить, что наличие второго опухолеспецифичного маркера в данном случае связано с нарушением механизма (отсутствием) аллельного исключения Однако, использованная система идентификации (ОТ-ПЦР) свидетельствует, по крайней мере, о наличии его экспрессии на уровне мРНК Нельзя полностью исключить и существования двух, независимо возникших миеломных клонов Но в таком случае при установленных нами характеристиках одного из выявленных УН-генов (высокий уровень экспрессии относительно мРНК и отсутствие принципиальных дефектов в структуре) должна наблюдаться секреция сывороточного парапротеина И, наконец, второй клон может свидетельствовать о наличии какого-то другого лимфопролиферативного заболевания (например, хронического лимфолейкоза), не имевшего на период диагностики ММ клинико-гематологических проявлений К сожалению, нам не удалось развить данную часть исследования в связи с ранней смертью пациентки, наступившей от инфекционных осложнений через 5 недель после взятия первичного материала и начала лечения Однако в литературе мы встретили описание ряда клинических случаев одновременной диагностики ММ и других гемобластозов Большая часть сообщений касалась сочетания миеломной болезни и ХЛЛ Диагностика двух данных заболеваний у одного пациента является редкой клинической ситуацией Практически во всех описанных случаях сначала устанавливали диагноз хронического лимфолейкоза, а уже затем ММ До диагностики миеломы химиотерапию больным не проводили, таким образом, речь шла не о вторичном опухолевом процессе Интересно отметить, что у большинства описанных больных отсутствовала секреция тяжелых цепей иммуноглобулинов (миелома Бенс-Джонса или несекретирующая форма заболевания) Биологические причины сочетанного развития ММ и ХЛЛ остаются неясными Часть исследователей утверждает, что оба заболевания имеют общего предшественника, другие считают, что два гемобластоза возникают независимо друг от друга

Анализ частоты встречаемости различных семейств \Ж-генов у больных с парапротеинемическими гемобластозами показал, что более чем в 50% случаев (21 из 39) выявлены Х/Н-гены, относящиеся к 3-му семейству и почти в 25% (9 из 39) - к первому семейству Преобладание УНЗ-сегментов в клонально перестроенных 1дН обусловлено наибольшей представленностью этого семейства среди функциональных реаранжирующихся \/Н-генов из 65 \/НЗ-сегментов - 22 функциональных Характер использования генов вариабельного региона в

исследуемой группе в целом соответствует частоте использования УН-генов в нормальном репертуаре В-клеток, где явно преобладают гены 3-го семейства, что согласуется с литературными данными Сходная ситуация в распределении УН-генов по семействам наблюдается при фолликулярной лимфоме и хроническом лимфолейкозе В то время как при ОЛЛ наблюдается некоторая избирательность реаранжировок генных сегментов, отличная от случайного выбора, характерного для нормальной дифференцировки В-лимфоцитов Так, в частности, у больных ОЛЛ в отличие от больных ММ довольно часто используется сегмент УН6-1, что связывают с премиальным расположением этого сегмента (по отношению к точке соединения) и участием в реаранжировке в первую очередь

Таблица 3 Частота встречаемости различных семейств \/Н-генов

» Семейство - ,УН-генов 'л' > 4 Г. Распределение по семействам 1 изеестныхфункцибнальных -терминальных УН-генов 1 Встречаемость семейств УН- геноа в исследовании > ^ « 'У" ' '

, > 1> . - 11 (21,6%) 9(23,1%)

2 3 (5,9%) 2(5,1%)

' 3 22 (43,1%) 21 (53,8%)

, "" 4 11 (21,6%) 6(15,4%)

^ - ,5, л V 2 (3,9%) - 1 (2,6%)

6 1 (2,0%) 0 (0%)

7 . 1 (2,0%) 0 (0%)

^Вбего 51 (100%) 39 (100%) 38 больных

Секвенирование клонально перестроенных последовательностей проведено во всех случаях успешной амплификации - 39 ПЦР-продуктов Моноклональная реаранжировка \/Н-генов была подтверждена секвенированием у 38 больных с парапротеинемическими гемобластозами Все последовательности \/Н-генов, определенные в нашем исследовании, представлены в базе данных СепВапк ЫСВ1 (Асс N0 АУ999993-97, АУ994078-83, АУ996325-42, 00001065-68, 0048722021, 00459436-37)

Первичную структуру клонально перестроенных генов вариабельного региона сравнили с терминальными \/Н-генами и установили степень гомологии к наиболее близкому У-сегменту У обследованных больных уровень гомологии варьировал от 74,2 до 96% Ни в одном случае степень гомологии не превышала 98%, что говорит о наличии соматических гипермутаций у всех больных Пограничный показатель гомологии, равный 98%, используется авторами аналогичных исследований с учетом поправки на аллельный полиморфизм В

22

настоящем исследовании мы оценили реальный вклад аллельных вариаций для одного наименее консервативного сегмента VH1-69, для которого известно около 50 различных SNP (single nucleotide polymorphism) С этой целью мы амплифицировали и секвенировали фрагменты неперестроенных терминальных аллелей VH1-69 у 5 пациентов, миеломные клоны которых имели данный вариант IgH Полученные результаты свидетельствовали о том, что и в случае максимальной вариабельности VH-сегмента вкладом аллельного полиморфизма можно с полным основанием пренебречь, поскольку для 4 из 5 пациентов только одна нуклеотидная замена была обусловлена SNP, у пятого больного наблюдались две замены, все остальные являлись соматическими мутациями Терминальные VH, D, JH сегменты, участвовавшие в перестройках генов IgH, были идентифицированы при помощи двух баз данных IgBLAST и IMGT В данной выборке больных наиболее часто использовались аллельные варианты генов VH1-69 (5 из 39=12,8%), VH3-23 (5 из 39=12,8%) Преобладание из всех генов 1-го семейства именно VH1-69 (5 / 9, 55,6%) пока является необъясненным событием В опубликованных ранее работах, включавших большее число больных, такой феномен также был отмечен Хотелось бы обратить внимание, что аналогичная особенность наблюдается при хроническом лимфолейкозе

Идентификация D сегмента генов IgH при использовании базы данных IMGT оказалась возможной в 33 из 39 последовательностей (84,6%) Нами было отмечено явное преобладание D сегментов, относящихся к третьему и пятому семействам, частота их использования составила 54,5% (п=18 из 33) и 21 2% (п=7 из 33) соответственно JH сегменты, задействованные в перестройках генов IgH, были определены в 35-ти секвенированных последовательностях Наиболее представленными оказались генные сегменты JH4 и JH6, они составили 57% (п=20 из 35) и 20% (п=7 из 35) соответственно Для сравнения, генные сегменты JH1, JH2 встретились всего по одному разу

В соответствии с литературными данными нуклеотидная последовательность генов IgH при ММ является абсолютно постоянной В ходе развития заболевания структура VH-генов не претерпевает каких-либо изменений, в том числе в ней не происходит накопления дополнительных соматических мутаций У 2 больных ММ мы провели сравнительный анализ VDJ-последовательностей, которые были определены в дебюте ММ со структурой VH-генов у тех же больных в одном случае после развития рецидива, в другом - на фоне прогрессии заболевания Секвенирование нуклеотидных последовательностей, которые были определены

у одного и того же больного в дебюте заболевания и после развития рецидива (через 27 месяцев) показало их полную идентичность Аналогичный результат секвенирования, а именно идентичность структуры \/Н-гена был получен у больного, у которого сравнивали \Д)и-последовательность до лечения и на фоне прогрессии ММ

Таким образом, перестроенный ген 1дН в опухолевых клетках у больных ММ отличается высокой стабильностью на разных стадиях болезни и при развитии рецидива, в нем не накапливаются дополнительные изменения структуры, в том числе соматические мутации Перестроенный УН-ген является характеристикой всего опухолевого клона, а не отдельных субклонов

Результаты мониторинга МРБ

Мониторинг МРБ выполняли методом двухэтапной ПЦР Чувствительность метода при динамическом исследовании перестроек генов 1дН составила 1СГ4 Материалом для мониторинга минимальной резидуальной болезни служили ДНК-образцы костного мозга и периферической крови Как уже говорилось выше, молекулярный маркер опухоли был обнаружен у 38 больных, из них в исследование по мониторингу МРБ были включены 24 пациента Мы оценили результаты молекулярного мониторинга отдельно у пациентов, которым проводили ВХТ с последующей трансплантацией аутологичных стволовых клеток крови, и отдельно у больных, которые не были приняты или на ранних этапах лечения были переведены с протокола «Тотальная Терапия» на стандартные программы В каждую группу вошло по 12 больных Необходимо отметить, что молекулярный мониторинг проводили у всех больных вне зависимости от клинико-лабораторного статуса В первичных образцах костного мозга миеломные клетки, содержащие кпонально перестроенные УН-гены, были обнаружены у всех пациентов В то время как в периферической крови опухолевые клетки были определены только у 20 из 24 (88%) первичных больных

В ходе динамического исследования реаранжировок УН-генов было отмечено, что в 100% случаев после 3-х курсов «УАР» и курса циклофосфана в высоких дозах в костном мозге сохраняются остаточные опухолевые клетки, даже если по данным цитологического исследования в пунктате КМ плазматические клетки не выявляются У 2 из 9 пациентов, которым проводился курс ПХТ по схеме «ЕОАР», на данном этапе лечения молекулярный маркер опухоли обнаружен не был При

дальнейших исследованиях у этих больных клональные перестройки генов 1дН не определялись, что позволило нам констатировать молекулярную ремиссию ММ У 7 из 9 (77,8%) больных после курса «ЕРАР» мы выявляли клональные перестройки генов 1дН После выполнения второй трансплантации аутологичных стволовых клеток еще у одного больного была констатирована молекулярная ремиссия В двух случаях наблюдается персистенция МРБ У остальных больных опухолевые клетки к моменту завершения исследования продолжали выявляться Хотелось бы отметить, что у большинства больных молекулярный маркер переставал выявляться в периферической крови уже с момента достижения частичной ремиссии Эти данные подтверждают нецелесообразность использования образцов периферической крови для мониторинга МРБ ввиду низкой чувствительности метода К такому заключению пришли большинство исследователей, занимающихся проблемой мониторинга резидуальной болезни при ММ

Наибольший интерес представляют собой данные молекулярного мониторинга у больных, у которых была достигнута полная ремиссия (5 из 11) Так, в частности отмечено, что во всех случаях на момент констатации ПР в образцах КМ методом двухраундовой ПЦР остаточные опухолевые клетки обнаруживаются Молекулярная ремиссия у 3-х больных была установлена через 2, 2 и 10 месяцев после достижения клинико-гематологической ремиссии В двух случаях после достижения полной ремиссии наблюдалась персистенция МРБ

У больных, которым выполняли сбор гемопоэтических стволовых клеток крови, помимо исследования образцов костного мозга и периферической крови проводили ПЦР-анализ лейкоконцентратов У 7 из 11 (64%) больных в лейкоконцентратах были обнаружены опухолевые клетки с клональными перестройками генов 1дН Было отмечено, что у 3 из 4 больных, у которых молекулярный маркер опухоли в лейкоконцентратах не был обнаружен, после курса циклофосфана в высоких дозах уже была констатирована ПР заболевания Это позволяет говорить о том, что вероятность обнаружения миеломных клеток в лейкоконцентратах напрямую зависит от степени редукции опухолевого клона Молекулярное исследование также было выполнено у 12 больных, которым проводили стандартную химиотерапию Полная ремиссия была констатирована у 4 из 12 больных В 2-х случаях через 13 и 14 месяцев после констатации полной ремиссии ММ отмечено исчезновение из КМ резидуальных опухолевых клеток У остальных больных на протяжении всего периода наблюдения в образцах

костного мозга выявлялся молекулярный маркер заболевания В периферической крови, также как и при проведении ВХТ, опухолевые клетки переставали обнаруживаться с момента достижения ЧР Результаты проведенного нами исследования показывают, что достижение молекулярной ремиссии возможно не только при использовании программ высокодозной химиотерапии, но и на фоне химиотерапии в стандартных дозах

Определение чувствительности метода молекулярного мониторинга МРБ, способы повышения чувствительности ПЦР

Чувствительность ПЦР, проводимой с пациент-специфичными праймерами, зависит от количества опухолевых клеток в исследуемом образце и от специфичности подобранной для конкретного больного системы праймеров У всех больных, которым проводили молекулярный мониторинг эффективности лечения, была проанализирована зависимость чувствительности двухраундовой ПЦР, оцененная методом «предельных разведений», от процентного содержания плазматических клеток в первичных образцах костного мозга Молекулярный маркер опухоли был обнаружен в образцах ДНК костного мозга при содержании плазматических клеток от 0 5 до 4%, однако, по данным исследования «методом предельных разведений» чувствительность оказалась достаточно низкой (в 2 образцах - 10'1 , еще в 2 - 1СГ2, в одном - КГ3) В тех случаях, когда процент плазматических клеток в костном мозге был £ 6 4%, чувствительность составила 10"3 - Ю-4 В отношении образцов периферической крови можно с уверенностью говорить о существенно более низкой чувствительности исследования и отсутствии значимой зависимости от процента миеломных клеток в костном мозге

Как и предполагалось, чувствительность ПЦР, оцененная методом «предельных разведений», в значительной степени зависит от процента плазматических клеток в первичных образцах костного мозга Анализ результатов мониторинга реаранжировок генов 1дН показал, что чувствительность метода двухраундовой ПЦР с пациент-специфичными праймерами в большинстве случаев достаточно высока и достигает 10"4 При недостаточной чувствительности подобранных тест-систем возможно повышение результативности реакции амплификации В нашем исследовании наглядно продемонстрировано три методических подхода, позволяющих обнаруживать меньшее количество остаточных опухолевых клеток, а именно 1) многократный повтор амплификации с одним и тем же образцом ДНК, 2) повышение концентрации исследуемой ДНК, 3) использование в качестве

матрицы проб РНК Кроме того, повышения чувствительности ПЦР можно добиться путем подбора оптимальной концентрации хлорида магния, цикловых режимов, температуры отжига, а также путем изменения системы праймеров Таким образом, метод двухраундовой полимеразной цепной реакции с пациент-специфичными праймерами хотя и является трудоемким, позволяет надежно и с высокой чувствительностью определять МРБ у больных ММ К бесспорным положительным характеристикам метода можно отнести существование множества подходов для повышения чувствительности реакции амплификации

Результаты статистического анализа

Анализ долгосрочных результатов терапии проведен у всех больных множественной миеломой (п=33) вне зависимости от интенсивности проводимой химиотерапии В анализ не включены двое пациентов, у которых были диагностированы болезнь Вальденстрема и острый плазмобластный лейкоз Оценка общей выживаемости представлена на рисунке 2 Рисунок 2 Общая выживаемость больных ММ

6 -4 2 -

О -

месяцы

20

30

40

50

Как видно на представленной кривой 4-летняя общая выживаемость больных ММ составила около 73% При сроке наблюдения 52 месяца медиана общей выживаемости не достигнута На момент завершения исследования среди больных, которым в полном объеме была реализована стратегия высокодозной химиотерапии, живы без прогрессии 13 из 16 В то же время среди пациентов, которые были исходно приняты или переведены на стандартные программы лечения ММ, живы без прогрессии 9 из 19 больных (различия статистически достоверны, р=0,03)

Для отбора совокупности признаков, наиболее точно предсказывающих продолжительность жизни больных, был проведен многомерный пошаговый анализ выживаемости (модель пропорциональных рисков Кокса) В качестве

исходного набора параметров для данного анализа были взяты следующие признаки стадия заболевания, иммунохимический вариант множественной миеломы, показатели альбумина сыворотки, скорости оседания эритроцитов, креатинина, С-реактивного белка, бета2-микроглобулина, кальция, лактат дегидрогеназы, а также процент гомологии по нуклеотидной последовательности клональных \/Н-генов с терминальными вариабельными генами и семейство вариабельных генов В результате работы пошаговой процедуры была выбрана группа наиболее значимых прогностических факторов, а именно, сывороточный альбумин, бета2-микроглобулин и процент гомологии вариабельных генов В сочетании эти три параметра показали наиболее значительную взаимосвязь с продолжительностью жизни Мы также проанализировали время до достижения клинико-гематологической и молекулярной ремиссии в зависимости от исходных показателей альбумина (более или менее 35 г/л), бета2-микроглобулина (более или менее 4 мг/л) и процента гомологии вариабельных генов (более или менее 90%) Оказалось, что скорость развития и вероятность достижения эффекта ниже у пациентов, у которых в дебюте заболевания сывороточный альбумин был ниже 35 г/л, а [32-микроглобулин выше 4 мг/л, причем полученные отличия статистически достоверны В то же время никакой зависимости скорости развития ПР от мутационного статуса вариабельных генов нет (р=0,9319) Сходные данные получены при оценке скорости достижения молекулярной ремиссии В частности у больных с исходным уровнем альбумина более 35 г/л медиана времени до констатации МР составила 1,5 года, в то время как у больных, у которых альбумин в дебюте заболевания составил менее 35 г/л, медиана данного показателя не достигнута (различия статистически достоверны, р=0,0457) Отличия, выявленные при определении зависимости скорости достижения МР от показателя Р2-микроглобулина, оказались статистически недостоверными (р=0,0975) Зависимости скорости развития молекулярной ремиссии от мутационного статуса УН-генов не выявлено Анализ зависимости временных интервалов от момента установления диагноза ММ до достижения ПР и МР от таких факторов, как сывороточный альбумин и бета2-микроглобулин позволил отметить роль этих показателей в качестве маркеров реактивности процесса Низкий уровень альбумина и повышенная концентрация (32-микроглобулина в дебюте заболевания не свидетельствуют о невозможности получения ремиссии, просто в этих случаях ремиссия достигается

позже, а процент ее достижения ниже Однако если ремиссия ММ достигается, этот факт значительно превалирует над прогностическими факторами, которые определяются в дебюте заболевания Выводы

1 Клональная реаранжировка генов тяжелых цепей иммуноглобулинов выявлена у 90% больных парапротеинемическими гемобластозами Перестройки УН-генов в опухолевых клетках не обнаружены только у больных миеломой Бенс-Джонса и несекретирующей миеломой

2 Вероятность участия различных генных сегментов в формировании полноценного вариабельного гена иммуноглобулинов в опухолевых клетках у больных множественной миеломой соответствует таковой в нормальном репертуаре В-клеток, однако среди УН-генов первого семейства обращает на себя внимание аномально высокая частота использования сегмента УН1-69 (55,6%)

3 Установлено, что в опухолевых клетках всех больных парапротеинемическими гемобластозами в нуклеотидных последовательностях вариабельных генов 1дН прошел процесс соматического гипермутирования Степень гомологии с терминальными УН-генами составила 74,2-96%

4 Нукпеотидная последовательность перестроенных генов 1дН в опухолевых клетках у больных множественной миеломой отличается высокой стабильностью на разных этапах эволюции опухолевого клона, в нем не накапливаются дополнительные изменения структуры, в том числе соматические мутации

5 В ходе терапии множественной миеломы молекулярный маркер опухоли в образцах периферической крови перестает обнаруживаться значительно раньше, чем в костном мозге, поэтому для мониторинга минимальной резидуальной болезни целесообразно использовать образцы костного мозга

6 Программная химиотерапия (УАР, НйСрИ) ни у одного из больных ММ не привела к эрадикации опухолевого клона Дальнейшая интенсификация лечения (ЕОАР) привела к уменьшению вероятности обнаружения молекулярного маркера опухоли до 77,8% Молекулярная ремиссия констатирована у 5 больных, в том числе у 2-х пациентов на фоне «стандартного» воздействия

7 В лейкоконцентратах, полученных методом лейкафереза после предшествующей стимуляции гранулоцитарным колониестимулирующим фактором, опухолевые клетки могут быть обнаружены более чем у половины от общего числа больных (64%) Вероятность их обнаружения напрямую зависит от степени редукции опухолевого клона до проведения сбора СКК

Список опубликованных работ по теме диссертации'

1 В А Жеребцова, В Г Савченко, В Л Сурин, Л П Менделеева, Н Г Тюрина, А В Мисюрин Молекулярный мониторинг минимальной резидуальной болезни у пациентов с множественной миеломой Материалы конференции «Новое в гематологии и клинической трансфузиологии», Проблемы гематологии и переливания крови, 2003,2, стр 40-41

2 Жеребцова В А, Савченко В Г, Сурин ВЛ, Менделеева ЛП, Тюрина НГ, Мисюрин А В Оценка эффективности различных методов лечения миеломной болезни с использованием высокочувствительных пациент-специфичных ПЦР-систем для тестирования опухолевого клона Материалы конференции «Новое в гематологии и клинической трансфузиологии» Москва, 13-15 апреля 2004г Проблемы гематологии и переливания крови 2004, 2, стр 36

3 В А Жеребцова, В Л Сурин, А В Мисюрин, НГ Тюрина, ЛП Менделеева, В Г Савченко Индивидуальный молекулярный мониторинг минимальной остаточной болезни при множественной миеломе Материалы I Российско-Американской конференции «Биотехнология и онкология», 2005, 2, стр 103-104

4 ЛП Менделеева, В Г Савченко, НГ Тюрина, ЕЮ Варламова, КС Момотюк, Л С Любимова, Е О Грибанова, Е Н Устинова, О С Покровская, Н Е Митиш, В А Жеребцова, И Б Капланская, И А Воробьев, Е М Грецов, Н Н Калинин Высокодозная химиотерапия и аутотрансплантация при множественной миеломе Онкогематология, 2006,1, стр 55-57

5 В А Жеребцова, В Г Савченко, В Л Сурин, Л П Менделеева, А В Мисюрин Молекулярный мониторинг минимальной резидуальной болезни при множественной миеломе Проблемы гематологии и переливания крови, 2006, 2, стр 25-31

6 V Zherebtsova, V Surin, V Savchenko, L Mendeleeva, O Pokrovskaya, N Turina, A Misurin Individual molecular monitoring of minimal residual disease after autotranslantation in patients with multiple myeloma Материалы международного симпозиума Европейской группы трансплантации костного мозга, 2007, стр 143

Подписано в печать 13 05 2008 г Печать трафаретная

Заказ №400 Тираж 100 экз

Типография «11-й ФОРМАТ» ИНН 7726330900 115230, Москва, Варшавское ш , 36 (495) 975-78-56, (499) 788-78-56 www autoreferat ru

 
 

Оглавление диссертации Жеребцова, Вера Анатольевна :: 2008 :: Москва

Список используемых сокращений.

Введение.

Глава 1. Обзор литературы.

Глава 2. Материалы и методы исследования.

2.1. Характеристика больных.

2.2. Программы химиотерапии, используемые у больных ММ.

2.3. Методы исследования.

2.4. Статистический анализ полученных данных.

2.5. Основные понятия.

Глава 3. Результаты и их обсуждение.

3.1. Результаты клинического исследования.

3.2. Результаты детекции реаранжировок генов IgH.

3.3. Мониторинг минимальной резидуальной болезни.

3.4. Результаты и обсуждение статистического анализа.

 
 

Введение диссертации по теме "Гематология и переливание крови", Жеребцова, Вера Анатольевна, автореферат

Актуальность проблемы.

В лечении множественной миеломы (ММ) выделяют два основных химиотерапевтических подхода. Принципом так называемой стандартной терапии миеломной болезни является длительное, практически непрерывное применение химиопрепаратов в небольших дозах (схемы «МП», «М2»). Программы высокодозной химиотерапии (ВХТ) основаны на принципе интенсификации дозы химиотерапевтического воздействия. Интенсивное лечение ММ рассчитано на максимальное уменьшение опухолевой массы на первых этапах ВХТ с последующей трансплантацией аутологичных или аллогенных стволовых клеток крови (СКК) или костного мозга (КМ) в качестве консолидации достигнутого эффекта и длительным поддерживающим лечением интерфероном-а (ИНФ-а). Применение интенсивных программ химиотерапии и трансплантации аутологичных или аллогенных стволовых клеток у больных ММ позволило существенно увеличить частоту достижения полных ремиссий (ПР) и продолжительность жизни больных. Чувствительность стандартных методов оценки эффективности лечения ММ (морфологическое исследование костного мозга и иммунохимическое исследование сыворотки крови и мочи) оказалась недостаточной в связи с существенной редукцией опухолевой массы. Появилась необходимость в дополнительном применении более чувствительных методов детекции минимальной резидуальной болезни (МРБ).

Одним из методов, обладающих достаточно высокой чувствительностью для обнаружения опухолевого клона и отслеживания в динамике остаточных миеломных клеток, является полимеразная цепная реакция (ПЦР). В основе оценки кпональности и мониторинга МРБ при ММ лежит биологическая особенность лимфоидной ткани, отличающая ее от любой другой наличием в геноме каждого лимфоцита уникально перестроенного гена тяжелых цепей иммуноглобулинов (IgH). ПЦР-анализ в подавляющем большинстве случаев дает возможность маркировать опухолевый клон по таким уникальным перестройкам. Метод ПЦР позволяет определить остаточные опухолевые клетки с высокой чувствительностью. Большим преимуществом данного подхода является также возможность не только качественной, но и полуколичественной или количественной оценки опухолевого клона.

Использование метода ПЦР для определения минимальной резидуальной болезни способствует более полной оценке результативности режимов химиотерапии. Клиническая значимость мониторинга МРБ в настоящее время достоверно показана для острых и хронических лейкозов. Так в частности, результаты молекулярных исследований при данных заболеваниях широко используют для прогнозирования клинико-гематологических рецидивов и определения показаний к возобновлению или смене специальной терапии. Роль мониторинга МРБ у больных ММ пока остается неопределенной. Кроме того, недостаточно изучены биологические особенности опухоли. Именно эти нерешенные вопросы послужили поводом для проведения нашего исследования.

Цель исследования:

Разработка методов оценки эффективности лечения множественной миеломы с использованием высокочувствительных индивидуальных ПЦР-систем для тестирования опухолевого клона.

Задачи исследования:

1. Разработать метод детекции клональных перестроек генов тяжелых цепей иммуноглобулинов у больных парапротеинемическими гемобластозами, основанный на обратно-транскриптазной полимеразной цепной реакции.

2. Определить нуклеотидную последовательность фрагментов, соответствующих клонально перестроенным вариабельным регионам генов иммуноглобулинов и проанализировать их на наличие мутаций.

3. Определить частоту обнаружения клональных перестроек генов тяжелых цепей иммуноглобулинов у больных парапротеинемическими гемобластозами и изучить характер использования семейств VH-генов.

4. Создать индивидуальные пациент-специфичные ПЦР-системы для тестирования опухолевого клона и провести с их использованием динамическое исследование резидуальной болезни в ходе лечения множественной миеломы.

5. Сравнить информативность исследований перестроек генов иммуноглобулинов в образцах костного мозга и периферической крови.

6. Оценить прогностическую значимость выявления остаточной популяции опухолевых клеток в образцах лейкоконцентратов.

7. Определить этапы селекции больных множественной миеломой в ходе проведения интенсивной химиотерапии и провести анализ эффективности лечения на различных этапах.

Научная новизна:

1. Установлено соответствие частоты встречаемости различных семейств VH-генов у больных множественной миеломой с частотой их использования в нормальном В-клеточном репертуаре.

2. Детально охарактеризованы и представлены в GenBank NCBI нуклеотидные последовательности клонально перестроенных VH-генов у 38 больных множественной миеломой.

3. Отмечено частое использование вариабельного сегмента VH1-69.

4. Показана высокая стабильность структуры перестроенных генов тяжелых цепей иммуноглобулинов при развитии рецидива множественной миеломы и на разных стадиях заболевания.

5. Установлено, что отсутствие сывороточного парапротеина у больных с миеломой Бенс-Джонса и несекретирующей формой миеломы обусловлено возникновением аномальных стоп-кодонов и frameshift-мутаций.

Практическая ценность:

1. Доказана целесообразность использования в качестве молекулярного маркера опухоли у больных парапротеинемическими гемобластозами клональных перестроек генов тяжелых цепей иммуноглобулинов.

2. Созданы высокочувствительные, индивидуальные пациент-специфичные ПЦР-системы для мониторинга минимальной резидуальной болезни у пациентов с множественной миеломой.

3. Определены этапы селекции больных в ходе проведения интенсивной химиотерапии и показаны основные причины снятия пациентов с высокодозных программ лечения множественной миеломы.

4. Продемонстрированы различные методические подходы, использованные для повышения чувствительности детекции минимальной резидуальной болезни.

Положения, выносимые на защиту:

1. Клональная реаранжировка генов тяжелых цепей иммуноглобулинов методом обратно-транскриптазной полимеразной цепной реакции выявлена у 90% первичных больных парапротеинемическими гемобластозами.

2. Характер использования генов вариабельного региона в исследуемой группе соответствует частоте использования VH-генов в нормальном репертуаре В-клеток.

3. Степень гомологии с терминальными VH-генами составляет 74,2%-96%, что свидетельствует о прохождении соматического гипермутирования.

4. Клонально перестроенный ген IgH в опухолевых клетках у больных ММ отличается высокой стабильностью на разных стадиях болезни и при развитии рецидива.

5. Созданы высокочувствительные, индивидуальные пациент-специфичные ПЦР-системы для мониторинга минимальной резидуальной болезни у пациентов с множественной миеломой

6. После курсов «VAD» и циклофосфана в высоких дозах у 100% больных в костном мозге обнаруживаются остаточные опухолевые клетки. После курса «EDAP» молекулярный маркер выявляется у 77,8%, после аутотрансплантации стволовых клеток крови - у 67% больных.

7. В лейкоконцентратах опухолевые клетки с клональными перестройками генов тяжелых цепей иммуноглобулинов обнаружены у 64% больных ММ.

 
 

Заключение диссертационного исследования на тему "Детекция и мониторинг клональных перестроек генов тяжелых цепей иммуноглобулинов у больных множественной миеломой"

Выводы:

1. Кпональная реаранжировка генов тяжелых цепей иммуноглобулинов выявлена у 90% больных парапротеинемическими гемобластозами. Перестройки VH-генов в опухолевых клетках не обнаружены только у больных миеломой Бенс-Джонса и несекретирующей миеломой.

2. Вероятность участия различных генных сегментов в формировании полноценного вариабельного гена иммуноглобулинов в опухолевых клетках у больных множественной миеломой соответствует таковой в нормальном репертуаре В-клеток, однако среди VH-генов первого семейства обращает на себя внимание аномально высокая частота использования сегмента VH1-69 (55,6%).

3. Установлено, что опухолевые клетки всех больных множественной миеломой прошли этап соматического гипермутирования. Степень гомологии с терминальными VH-генами составила 74,2-96%.

4. Нуклеотидная последовательность перестроенных генов IgH в опухолевых клетках у больных множественной миеломой отличается высокой стабильностью на разных этапах эволюции опухолевого клона, в нем не накапливаются дополнительные изменения структуры, в том числе соматические мутации.

5. Показано, что в опухолевых клетках всех больных парапротеинемическими гемобластозами в нуклеотидных последовательностях вариабельных генов IgH прошел процесс соматического гипермутирования.

6. В ходе терапии множественной миеломы молекулярный маркер опухоли в образцах периферической крови перестает обнаруживаться значительно раньше, чем в костном мозге, поэтому для мониторинга минимальной резидуальной болезни целесообразно использовать образцы костного мозга.

7. Программная химиотерапии (VAD, HDCph) ни у одного из больных не привели к эрадикации опухолевого клона. Дальнейшая интенсификация лечения (EDAP) привела к уменьшению вероятности обнаружения молекулярного маркера опухоли до 77,8%. Молекулярная ремиссия констатирована у 5 больных, в том числе у 2-х на фоне «стандартного» воздействия.

8. В лейкоконцентратах, полученных методом лейкафереза после предшествующей стимуляции гранулоцитарным колониестимулирующим фактором, опухолевые клетки могут быть обнаружены более чем у половины от общего числа больных (64%). Вероятность их обнаружения напрямую зависит от степени редукции опухолевого клона до проведения сбора СКК.

 
 

Список использованной литературы по медицине, диссертация 2008 года, Жеребцова, Вера Анатольевна

1. Абелев Г.И. Механизмы дифференцировки и опухолевый рост. Биохимия 2000, 65, 127-13.

2. Айала Ф.Дж., Кигер Дж.А. Современная генетика. 1988; т. 1. Изд. Мир, Москва.

3. Андреева Н.Е. Вялотекущая множественная миелома. Проблемы гематологии 1983; 4: 55-58.

4. Андреева Н.Е., Чернохвостова Е.В. Иммуноглобулинопатии. М.: Медицина 1985

5. Андреева Н.Е. Диагностика и лечение множественной миеломы. М. Ньюамед-АО 1998.

6. Андреева Н.Е. Парапротеинемические гемобластозы. Руководство по гематологии под редакцией А.И. Воробьева. М.: Медицина, 1985; 290-313.

7. Албертс Б., Брей Д., Льюис Дж. и др. Молекулярная биология клетки. Изд. Мир, 1994, том 3, 465-481.

8. Барышников А.Ю. Программированная клеточная смерть (апоптоз). Клиническая онкогематология под редакцией М.А. Волковой. Изд. Медицина 2001, глава 4, 36-41.

9. Воробьев А.И. Общий патогенез гемобластозов. Руководство по гематологии, том 1, с. 147-150.

10. Кондратенко И.В. Клеточные основы иммунного ответа. Вопросы гематологии, онкологии и иммунопатологии в педиатрии. 2003; 3: 71-78.

11. Кузнецов С.В. Апоптоз и некоторые механизмы его регуляции. Проблемы гематологии, 1998; 2: 22-27.

12. Мелешко А.Н., Потапнев М.П. Оценка реаранжировки генов иммуноглобулинов и Т-клеточного рецептора при лимфопролиферативных заболеваниях: методология и клиническое значение. Гематология и трансфузиология 2006; 2: 34-41.

13. Никитин Е.А., Ленива Е.А., Судариков А.Б. Роль молекулярных методов в диагностике и мониторинге лимфопролиферативных заболеваний. Гематология и трансфузиология 2001; 3: 19-26.

14. Никитин Е.А., Пивник А.В., Судариков А.Б. Сравнение форм хронического лимфолейкоза в зависимости от мутационного статуса генов вариабельного региона иммуноглобулинов. Тер. архив 2000; 7: 52-56.

15. Татосян А.Г., Зуева Э.Ш. Механизмы активации онкогенов. Клиническая онкогематология под редакцией М.А. Волковой. Изд. Медицина 2001, глава 2, 22-28.

16. Цикалов В.А., Журавлев С.В., Мокеева Р.А., Козинец Г.И. Клиническое значение иследования пролиферативной активности плазматических клеток при множественной миеломе. Проблемы гематологии 1983; 4: 36-40.

17. Aktan М., Akkaya A., Dogan О. Chronic lymphocytic leukemia and multiple myeloma in the same patient: case report. Leuk. Lymphoma 2003; 44: 1421-1424.

18. Alexanian R., Bonnet J., Gehan E., et al. Combination chemotherapy for multiple myeloma. Cancer 1972; 30: 382-389.

19. Alexanian R., Haut A., Khan A. Treatment of multiple myeloma: Combination therapy with different melphalan dose regiments. J. Am. Med. Assoc. 1969; 208:1680-1685

20. Alexanian R, Dimopoulos M. The treatment of multiple myeloma. N. Engl. J. Med. 1994; 330:484-489.

21. Alexanian R., Barlogie В., Tucker S., et al. VAD-based regimens as primary treatment for multiple mueloma. 1990; 33: 86-89.

22. Alexanian R., Dimopoulos M., Smith T. Limited value of myeloblative therapy for late myeloma. Blood, 1994; 83: 512-516.

23. Alexanian R., Barlogie В., Tucker S., et al. VAD-based regimens as primary treatment for multiple mueloma. 1990; 33: 86-89.

24. Alt F.W., Oltz E.M., Young F., et al. VDJ recombination. Immunol. Today 1992; 13: 306-313.

25. Anderson K.C., Lust J.A. Role of cytokines in multiple myeloma. Semin. Hematolog. 1999; 36: 14-20.

26. Ashcroft J., Rawstron A.C., Owen R.G., et al. Penotyping in myeloma: identification of a rare CD19+56 -subgroup. Blood 2000; 96: 156a.

27. Attal M., Harousseau J.L., Facon Т., et al. Single versus double transplantation in myeloma: a prospective randomized trial of Intergroupe Francophone du Myeloma. Blood 2000; 96: 557a.

28. Attal M., Harousseau J-L., Stoppa A-M. A prospective, randomized trial of autologous bone marrow transplantation and chemotherapy in multiple myeloma. N. Engl. J. Med. 1996; 335: 91-97.

29. Attal M., Harousseau J.L. Autologous transplantation in multiple myeloma. Gahrton G., Durie B.G.M., Arnold, London, 1996, 182.

30. Avet-Loiseau H., Gerson F., Magrangeas F., et al. Rearrangements of the c-myc oncogene are present in 15% of primary human multiple myeloma tumors. Blood 2001; 98: 3082-3086.

31. Avet-Loiseau H., Daviet A., Sauner S., et al. Chromosome 13 abnormalities in multiple myeloma are mostly monosomy 13. Br. Journal of Haematol. 2000; 111: 1116-1117.

32. Avet-Loiseau H. Genetics of multiple myeloma. Haematology 2005; 1: 206-210.

33. Bahler D.W., Campbell M.J., Hart S. lg VH gene expression among human follicular lymphoma. Blood 1991; 78: 1561-1668.

34. Bakkus M.H.C., Van-Rirt I., et al. Evidence that the clonogenic cell in multiple myeloma originates from pre-switched but somatically mutated B-cell. Br.J.Haematol. 1994; 87: 68-74.

35. Bakkus M.H., Heirman C., Van-Rirt I., et al. Evidence that multiple myeloma lg heavy chain VDJ genes contain somatic mutations but show no intraclonal variation. Blood 1992; 80: 2326-2335.

36. Bakkus M.H.C., Bouko J., Samson D., et al. Post-transplantation tumor load in bone marrow, as assessed by quatitative ASO-PCR, is a prognostic parameter in multiple myeloma abstract. Br. J. Haematol. 2004; 126: 665.

37. Barlogie В., Alexanian R., Dicke K.A. et al. High-dose chemoradiotherapy and autologous bone marrow transplantation for resistans multiple myeloma. Blood 1987; 70: 869-872.

38. Barlogie В., Jagannath S., Desican K.R.: Total Therapy with Tandem Transplants for Newly Diagnosed Multiple Myeloma. Blood 1999; 93: 55-65.

39. Barlogie В., Spencer Т., Tricot G., et al. Long term follow-up of 169 patients receiving a phase II trial of singl agent thalidomide for advanced and refractory multiple myeloma. Blood 2000; 96: 514a.

40. Barlogie В., Shaughnessy J., Tricot G., et al. Treatment of multiple myeloma. Blood 2004; 103: 20-32.

41. Barton J.C. Thalidomide and dexamethasone therapy of myeloma in a patient with previously untreated B-chronic lymphocytic leukemia. Am. J. Hematol. 2003; 74: 205207.

42. Bataille R., Durie B.G.M., Grenier J., et al. Serum p2 microglobulin and survival duration in multiple myeloma: a simple reliable marker for staging. Br. J Hematol. 1983; 55:439-447.

43. Bataille R., Grenier J., Sany J. Beta-2-microglobulin in myeloma: Optimal using in staging, prognosis and threatment. Blood 1984; 63: 472-476.

44. Bataille R., Boccadoro M., Klein B. C-reactive protein and beta-2-microglobulin produce a simple and powerful myeloma staging system. Blood 1992; 80: 733-737.

45. Billadeau D., Quam L., Thomas W., et al. Detection and quantitation of malignant cells in peripheral blood of multiple myeloma patients. 1992; 7: 1818-1824.

46. Billadeau D., Blackstadt M., Greipp P. Analysis of B-lymphoid malignancies using allele-specific polymerase chain reaction: a technique for sequential quantitation of residual didease. Blood 1991; 78: 3021-3029.

47. Bensinger W.I., Buckner C.D., Anasetti C., et al. Allogeneic marrow transplantation for multiple myeloma: an analysis of risk factors on outcome. Blood 1996; 88: 27872793.

48. Bensinger W.I., Buckner D., Gahrton G. Allogeneic stem cell transplantation for multiple myeloma. Hematol. Oncol. Clin. Norf. Am. 1997; 11: 147-157.

49. Bergel F., Stock J.A. Ann. Rep. Brit. Emp. Cancer. Comparign. 1953; 31: 607.

50. Bergsagel D.E., Wong O., Bergsagel P.L.: Benzene and multiple myeloma: appraisal of scientific evidence. Blood 1999; 94: 1174-1182.

51. Bergsagel P.L., Kuehi W.M. Chromosome translocations in multiple myeloma. Oncogene 2001; 20: 5611-5622.

52. Bergsagel P.L., Kuehl W.M. Crinical roles for immunoglobulin translocations and cyclin D dysregulation in multiple myeloma. Immunol. Rev. 2003; 194: 96-104.

53. Bergsagel D.E., Sprague C.C., Austin C., et al. Evaluation of new chemotherapeutic agents in the treatment of multiple myeloma: IV. L-Phenylalanin mustard (NC-8806) Cancer Chemoter. Rep. 1962; 21: 87-99.

54. Bezieau S., Aver-Loiseau H., Moisan J.P., et al. Activating Ras mutations in patients with plasma-cell disorders: a reappraisal. Blood 2003; 100: 1101-1102.

55. Blade J., Samson D., Reece D., et al. Criteria for evaluating disease response and progression in patients with multiple myeloma treated by high-dose therapy and haematopoietic stem cell transplantation. Br. J. Haematol. 1998; 102: 1115-1123.

56. Blokhin N.N., et al. Clinical experiences with sarcolysin in neoplastic diseases. Ann. NY Acad. Sci. 1958; 68: 1128-1132.

57. Brisco M.J., Tan L.W., Orsborn A.M. Development of a highly sensitive assay, based on the polymerase chain reaction, for rare B-Iimphocyte clones in a polyclonal population. Br. J. Haematol. 1990; 75: 163-167.

58. Browman G.P., Bergsagel D., Sicheri D., et al. Randomized trial of interferon maintenance in multiple myeloma. A study of the National Cancer Institute of Canada, Clinical Trials Group. J. Clin. Oncol. 1995; 13: 2354.

59. Carlo-Stella C., Mangon L., Potti G.P. Techniques for detection minimal residual disease. Leukemia and Lymph. 1995; 18: 75-80.

60. Castryck H., Van Den Driessche M., Hagemeijer A. Coexistence of light chain disease and lymphocytic leukemia, a complex karyotype with a rapid fatal outcome. Clin. Lab. Haematol. 2006; 28: 138-140.

61. Cavo M., Galieni P., Zuffa E., et al. Prognostic variables and clinical staging in multiple myeloma. Blood 1989; 74: 1774-1780.

62. Cavo M., Terragna C., Martinelli G., et al. Molecular monitoring of minimal residual disease in patients in long-term complete remission after allogeneic stem cell transplantation for multiple myeloma. Blood 2000; 96: 355-357.

63. Cavo M., Cellini C., Zamagni E., et al. Superiority of double over single autologous stem cell transplantation as first-line therapy for multiple myeloma. Blood 2004; 103: 155a (abstr.)

64. Cavo M., Zamagni E., Tosi P., et al. First-line therapy with thalidomide and dexamethasone in preparation for autologous stem cell transplantation for multiple myeloma. Haematologica 2004; 89: 826-831.

65. Chiecchio L., Protheroe R.C., Ibrahim A.H., et al. Deletion of chromosome 13 detected by conventional cytogenetics is a critical prognostic factor in myeloma. Leukemia 2006; 20: 1610-1617.

66. Child J., Morgan G., Davies f., et al. High-dose therapy with hematopoietic stem cell transplantation for multiple myeloma. N. Engl. J. Med. 2003; 348: 1875-1883.

67. Child J.A., Morgan G.J., Davies F.E., et al. High-dose chemotherapy with haematopoietic stem cell rescue for multiple myeloma. N. Engl. J. Med. 1996; 384: 1875-1883.

68. Chronic Leukemia-Myeloma Task Force National Cancer Institute. Proposed guidelines for protocol studies. II Plasma cell myeloma. Cancer Chemother. Rep. 1973; 4: 145-157.

69. Cigudosa J.C., Rao P.H., Calasanz M.J., et al. Characterization of nonrandom chromosomal gains and losses in multiple myeloma by comparative genomic hybridization. Blood 1998; 91: 3007-3010.

70. Ciudad J., San Miguel J.F., Lopez-Berges M.C. et al. Prognostic value of immunophenotypic detection of minimal residual disease in acute lymphoblastic leukemia. J. Clin. Oncol. 1998; 16: 3774-3781.

71. Cook G.P., Tomlinson I.M. The human immunoglobulin VH repertore. Immunol. Today 1995; 16: 237-242.

72. Cook G.P., Tomlinson I.M., Walter G., et al. A map of the human immunoglobulin VH locus completed by analysis of the telomeric region of chromosome 14q. Nature Genet. 1994; 7: 162-170.

73. Corradini P., Cavo M., Lokhorst H., et al. Molecular remission after myeloablative allogeneic stem cell transplantation predicts a better relapse-free survival in patients with multiple myeloma. Blood 2003; 102: 1927-1929.

74. Corradini P., Voena C., Tarella C., et al. Molecular and clinical remissions in multiple myeloma: Role of autologous and allogeneic transplantation of hematopoietic cells. J. of Clinic. Oncology 1999; 17: 208-215.

75. Corradini P., Voena C., Astolfi M., et al. High-dose Sequential Chemoradiotherapy in Multiple Myeloma: Residual Tumor Cells are Detectable in Bone Marrow and Peripheral Blood Cell Harvests and After Autografting. Blood 1995; 85: 1596-1602.

76. D'Amato R.J., Loughnan M.S., Flynn E. & Folkman J. Thalidomide is an inhibitor of angiogenesis. Proceedings of the National Academy of the USA. 1994; 91: 40824085.

77. Davies F.E., Raje N., Hideshima Т., et al. Thalidomide and immunomodulatory derivatives augment natural killer cell cytotoxicity in multiple myeloma. Blood 2001; 98: 210-216.

78. Dewald G., Therneau Т., Larson D., et al. Relationship of patient survival and chromosome anomalies detected in metaphase and/or interphase cells at diagnosis myeloma. Blood 2005; 106: 3553-3558.

79. Dewald G., Kyle R., Hicks G., et al. The clinical significance of cytogenetic studies in 100 patients with multiple myeloma, plasma cell leukaemia or amyloidosis. Blood 1985; 66: 380-390.

80. Dewald G., Therneau Т., Larson D., et al. Relationship of patient survival and chromosome anomalies detected in metaphase and/or interphase cells at diagnosis myeloma. Blood 2005; 106: 3553-3558

81. Deanne M.D., Norton J.D. Immunoglobulin heavy chain variable region family usage is independent of tumor cell phenotype in human В lineage leukemias. Eur. J. Immunol. 1990; 20: 2209-2217/

82. Dimopoulos M.A., Anagnostopoulos A., Terpos E. Novel drugs in the treatment of multiple myeloma. Hematology 2005; 1: 211-215. :

83. Dolken G. Detection of minimal residual disease. Adv. Cancer Res. 2001; 82: 133185.

84. Drach J., Angerler J., Schuster J., et al. Interphase fluorescence in situ hybridization identifies chromosomal abnormalities in plasma cells from patients with monoclonal gammopathy of undetermined significance. Blood 1995; 86: 3915-3921.

85. Drach J., Ackermann J., Fritz E., et al. Presence of a p53 gene deletion in patients with multiple myeloma predicts for short survival after the conventional-dose chemotherapy. Blood 1998; 92: 802-809.

86. Drach J., Sagaster V., Ackerman J., et al. Prognostic factors for multiple myeloma. Haematol. 2006; 2: 196-200.

87. Duke V.M, Gandini D., Sherrington P.D. VH gene usage differs in gemline and mutated B-cell chronic lymphocytic leukemia. Haematologica 2003; 88: 1259-71/

88. Durie B.G.M., Salmon S.E. Clinical staging system for multiple myeloma: Correlation of measured myeloma cell mass with presenting clinical features, response to treatment, and survival. Cancer 1975; 36: 842.

89. Dune B.G.M., Salmon S.E., Moon Т.Е.: Blood 1980; 55: 364-372.

90. Durie B.G.M., Stock-Novack D., Salmon S.E. Prognostic value of pretreatment serum 32-microglobulin in myeloma: Southwest Oncology Group Study. Blood 1990; 75:823-830.

91. Durie B.G., Harousseau J.-L., Miguel J.S., et al. International uniform response criteria for multiple myeloma. Leukemia 2006; 20:1467-1473.

92. Fassas A.B.-T., Spencer Т., Sawyer J., et al. Both hypodiploidy and deletion of chromosome 13 independently confer poor prognosis in multiple myeloma. Br. J. Haematol. 2002; 118: 1041-1047.

93. Fenk R., Ak M., Kobbe G., et al. Levels of minimal residual disease detected by quantitative molecular monitoring herald relapse in patients with multiple myeloma. Hematologica 2004; 89: 557-565.

94. Fonseca R., Harrington D., Oken M. Prognostic significance of 13q deletions and t(11;14)(q13;q32) in myeloma: an interphase FISH study of 351 patients entered into the Eastern Oncology Group E9487 clinical trial. Blood 2000; 96: 547a.

95. Fonseca R., Blood E., Greipp P. Myeloma and the t(11;14)(q13;q32); evidence for biologically defined unique subset of patients. Blood 2002; 99: 3735-3746.

96. Fonseca R., Biley R.J., Ahmann G.J. et al. Genomic abnormalities in monoclonal gammopathy of undetermined significance. Blood 2002; 100: 1417-1424.

97. Fonseca R., Blood E., Rue M., et al. Clinican and biologic implications of recurrent genomic aberration in myeloma. Blood 2003; 101: 4569-4575.

98. Fonseca R., Debes-Marun C.S., Picken E.B., et al. The recurrent IgH translocations are highly associated with nonhyperdiploid varian multiple myeloma. Blood 2003; 102: 2562-2567.

99. Gahrton G. Allogeneic stem cell transplantation in multiple myeloma-an update of EBMT regisry. VI International Workshop on Multiple Myeloma. Boston; USA 1997.

100. Gahrton G. Allogeneic bone marrow transplantation in multiple myeloma. Pathol. Biol. 1999; 47: 188-191.

101. Galimberti S., Morabito F., Guerrini F., et al. Peripheral blood stem cell contamination evaluated by a highly sensitive molecular method fails to predict outcome of autotransplanted multiple myeloma patients. Br. J. Haematol. 2003; 120: 405-412.

102. Galimberti S., Benedetti E., Morabito F., et al. Prognostic role of minimal residual disease in multiple myeloma patients after non-myeloablative allogeneic stem cell transplantation in multiple myeloma. Leuk. Res. 2005; 29: 961-966.

103. Gonzalez D., Gonzales M., Balanzategui A. Molecular characteristics and gene segment usage in IGH gene rearrangements in multiple myeloma. The Hematology J. 2005; 90: 906-913.

104. Gore M.E., Selby P.J., Viner C., et al. Intensive treatment of multiple myeloma and criteria for complete remission. Lanset 1989; II: 879-881.

105. Gould J., Alexanian R., Goodacre A., et al. Plasma cell karyotype in multiple myeloma. Blood 1988; 7: 453-456.

106. Greipp P.R., Lust J.A., O'Fallon M. Plasma cell labeling index and p2-microglobulin predict survival independent of thymidine kinase and C-reactive protein in multiple myeloma. Blood 1993; 81: 3382.

107. Greipp R.R., San Miguel J.F., Fonseca R., et al. Development of an International Prognostic Index (IPI) for myeloma: report of the International Myeloma Working Group. Haematol. J. 2003; 4: p 7.1, 43-44.

108. Greipp R.R., San Miguel J.F., Durie B.G.M., et al. International Staging System for multiple myeloma. J. Clin. Oncolog. 2005; 23: 3412-3420.

109. Gregory W.M., Richards M.A., Malpas J.S., et al. Combination chemotherapy versus melphalan and prednisolon in the treatment of multiple myeloma. An overview of published trials. J. Clin. Oncol. 1992; 10: 334-342.

110. Hadzidimitriou A., Stamatopoulos K., Belessi C. Immunoglobulin genes in multiple myeloma: expressed and non-expressed repertoires, heavy and light chain pairings and somatic mutation patterns in a series of 101 cases. Haematologica 2006; 91: 781-787.

111. Hayashi Т., Hideshima Т., Anderson K.C. Novel therapies for multiple myeloma. Review. Br. J. Haematolog. 2003; 120: 10-17.

112. Hellek M., Bersagel P.L., Anderson K. Multiple myeloma: increasing evidence for a multistep transformation process. Blood 1998; 91: 3-21.

113. Hideshima Т., Bergsagel P.L., Kuehl W.M., Anderson K.C. Advances in biology of multiple myeloma: clinical applications. Blood 2004; 104: 607-618.

114. Hideshima Т., Chauhan D., Shima Y., et al. Thalidomide and its analogs overcome drug resistance of human multiple myeloma cells to conventional therapy. Blood 2000; 96: 2943-2950.

115. Hsu F.J., levy R. Preferential use of VH4 lg gene family by diffuse large-cell lymphoma. Blood 1995; 86: 3072-3082.

116. Jacobson J., Hussein M., Barlogie B. A new staging system for multiple myeloma patients based on the southwest Oncology Group (SWOG) experience. Br. J. Haematol. 2003; 122: 441-450.

117. Jagannath S., Vesole D.H., Glenn L., Crowley J., et al. Low risk intensive therapy for multiple myeloma with combined autologous bone marrow and blood stem cell support. Blood 1992; 80: 1666-1672.

118. Janssen J.W., Vaandrager J.W., Heuser Т., et al. Concurreent activation of a novel putative transforming gene, myeov, and cyclin D1 in a subset of multiple myeloma cell lines with t(11;14)(q13;q32). Blood 2000; 95: 2691-2698.

119. Joy P.H. Chromosomal and genetic abnormalities in myeloma. Clin. Lab. Haem. 2002; 24: 259-269.

120. Juge-Morineau N., Harousseau J.L., Amoit M., et al. The retinoblastoma susceptibility gene RB1 in multiple myeloma. Leuk.&Lymph. 1997; 24: 229-237.

121. Kaufmann H., Urbauer E., Ackermann J., et al. Advances in biology and therapeutic management of multiple myeloma. Ann. Hematol. 2001; 80: 445-451.

122. Kaufmann H., Ackermann J., Nosslinger T. Absence of clonal chromosomal relationship between concomitant B-CLL and multiple myeloma a report on two cases. Ann Hematol. 2001; 80: 474-478.

123. Kaufman J., Lonial S. Multiple myeloma: the role of transplant and novel treatment strategies. Seminars in Oncology 2004; 31: 99-105.

124. Keats J.J., Reiman Т., Maxwell C.A., et al. In multiple myeloma t(4;14)(p16;q32) is an adverse prognostic factor irrespective of FGFR3 expression. Blood 2003; 101: 1520-1529.

125. Klein В., Zhang X.G., Lu Z.I., et al. lnterleukin-6 in human multiple myeloma. Blood 1995; 85: 863-872.

126. Konigsberg R., Zojer N., Ackermann J. Predictive role of interphase cytogenetics for survival of patients with multiple myeloma. J. Clin. Oncol. 2000; 18: 804-812.

127. Korst D.R., Clifford G.O., Fowler W.M. J. Am. Med. Assoc. 1964; 83: 535-538.

128. Kuehl W.M., Bergsagel P.L. Multiple myeloma: evolving genetic events and horst interactions. Rev. Cancer. 2002; 2: 175-187.

129. Kyle R.A.: Multiple Myeloma: An Overview in 1996. The Oncologist 1996; 1: 315323.

130. Kyle R.A. Update on Treatment of Multiple Myeloma. The Oncologist 2001; 6: 119124.

131. Kyle R.A., Child J.A., Durie B.G.M. Criteria for the classification of monoclonal gammapathies, multiple myeloma, and related disorders: a report of the International Myeloma Working Group. Br. J. Haematol. 2003; 121: 749-757.

132. Lai J.L., Zandeski M., Mary G., et al. Improved cytogenetics in multiple myeloma: a study of 151 patients including 117 patients at diagnosis. Blood 1995; 85: 24902497.

133. Larionov L.F., Shkodinskaja E.N., Troosheikina V.I. Lancet. 1955; 2: 169-171.

134. Lee G.C., Hong J.S., Lee K.H. A case of coincident multiple myeloma and non-Hodgkin"s lymphoma. Korean J. Intern. Med. 1994; 9: 113-115 (abstr.).

135. Lida S., Rao P.H., Butler M., et al. Deregulation of MUM1/IFR4 by chromosomal translocation in multiple myeloma. Nat. Genet. 1997; 17: 226-230.

136. Lipinski E., Cremer F.W., Ho A.D.: Molecular monitoring of the tumor load predicts progressive disease with multiple myeloma after high-dose therapy with autologous peripheral blood stem cell transplantation. Bone Marrow Transplant. 2001; 28, 957962.

137. Macaluso M., Montanari M., Cinti С., et al. Modulation of cell cycle components by epigenetic and genetic events. Semin. Oncolog. 2005; 32: 452-457.

138. Malpas J.S., Bergsagel P.L., Kyle R., et al. Myeloma. Biology and management. 3rd Ed. Newcastle 2004; 163-194.

139. Mandelli F., Awisati G., Amadori S. et al. Maintenance treatment with recombinant interferon alfa-2b in patients with multiple myeloma responding to conventional induction chemotherapy. N. Engl. J. Med. 322: 1430.

140. Martinelli G., Terragna C., Zamagni E. Polymerase chain reaction-based detection of minimal residual disease in multiple myeloma patients receiving allogeneic stem cell transplantation. Haematologica 2000; 85: 930-934.

141. McElwain T.J., Powles R.L. High-dose intravenous melphalan for plasma-cell leukemia and myeloma. Lancet 1983; 1: 822-824.

142. Myeloma Trialists Collaborative Group. Combination chemotherapy versus melphalan plus prednisone as treatment for multiple myeloma: an overview of 6633 patients from 27 randomized trials. J. Clin. Oncol. 1998; 16: 3832-3842.

143. Myeloma Trialists Collaborative Group. Interferon as therapy for multiple myeloma: an individual patients data overview of 24 randomized trials and 4012 patients. Br. J. Haematol. 2001; 113: 1020-1034.

144. Mughal T.I., Yong A., Szydlo R.M. et al. Molecular studies in patients with chronic myeloid leukemia in remission 5 years after allogeneic stem cell transplant define the risk of subsequent relapse. Br. J. Haematol. 2001; 115: 569-574.

145. Nevins J.R., Leone G., DeGregori J., et al. Role of the Rb/E2F pathway in cell growth control. J. Cell Physiol. 1997; 173: 233-236.

146. Pelliniemi T.T., Irjala K., Mattila K. Immunoreactive interleukin-6 and acude phase proteins as prognostic factors in multiple myeloma. Blood 1995; 85: 765-771.

147. Perez-Simon J.A., Garcia-Sanz R., Tabernere M.D., et al. Prognostic value of numerical chromosomal aberrations in multiple myeloma: a FISH analysis of 15 different chromosoms. Blood 1998; 91: 3366-3371.

148. Preudhomme C., Facon Т., Zandeski M., et al. Rare occurrence of p53 gene mutations in multiple myeloma. Br. J. Haematol. 1992; 81: 440-443.

149. Raab M.S., Cremer F.W., Breitkreutz I.N., et al. Molecular monitoring of tumour load kinetics predicts disease progression after non-myeloablative allogeneic stem cell transplantation in multiple myeloma. Ann. Oncol. 2005; 16: 611-617.

150. Ralph Q.M., Brisco M.J., Joshua D.E. Advancement of multiple myeloma lg heavy chain gene from diagnosis through plateau phase to progression does not involve a new B-cell clone: evidence from the lg heavy chain gene. Blood 1993; 82: 202-206.

151. Rao S.P., Riggs J.M., Biased VH gene usage in early lineage human В cells: avidence for preferential lg gene rearrangement in the absence of selection. J. Immunol. 1999; 163: 2732-2740.

152. Reiman Т., Seeberger K., Taylor B.J., et al. Persistent preswitch clonotypic myeloma cells correlate with decreased survival: evidence for isotype switching within the myeloma clone. Blood 2001; 98: 2791-2799.

153. Rettig M.B., Vescio R.A., Cao G. VH gene usage in multiple myeloma: complete absence of the VH4.21 (VH4-34) gene. Blood 1996; 87: 2846-2852.

154. Richelda R., Ronchetti D., Baldini L., et al. A novel chromosomal translocation t(4;14)(p16;q32) in multiple myeloma involves fibroblast growth-factor receptor 3 gene. Blood 1997; 90: 4062-4070.

155. Richardson P.G., Barlogie В., Berenson J., et al. A phase 2 study of bortezomib in relapsed, refractory myeloma. N. Engl. J. Med. 2003; 348: 2609-2617.

156. Sahota S., Leo R., Hamblin T.J. Myeloma V L and VH Gene Sequences Reveal a Complementary Imprint of Antigen Selection in Tumor Cells. Blood 1997; 89: 219226.

157. Saltman D.L., Ross J.A., Banks R.E. Molecular evidence for single clonal origin in biphenotypic concomitant chronic lymphocytic leukemia and multiple myeloma. Blood 1989;74:2062-2065.

158. Samson D., Gaminara E., Newland A., et al. Infusion of vincristine and doxorubicin with oral dexametasone as first-line therapy multiple mueloma. Lancet 1989; 2: 882885.

159. Sanz I., Kelly P., Williams C., et al. The smaller human Vh gene families display remarkably little polymorphism. EMBO J. 1989; 8: 3741-3747.

160. San Miguel J.F., Almeida J., Mateo G., et al. Immunophenotypic evaluation of the plasma cell compartment in multiple myeloma: a tool for comparing the efficacy of different treatment strategies and predicting outcome. Blood 2002; 99: 1853-1855.

161. San-Miguel J.F., Gutierrez N., Garcia-Sanz R., et al. Thalidomide and new drugs for treatment of multiple myeloma. Hematol. J. 2003; 4 (suppl.3): 201-207.

162. Schatz D.G., Oettinger M.A., Schlissel M.S. V(D)J recombination: molecular biology and regulation. Ann. Rev. Immunol. 1992; 10; 359-383.

163. Shaughnessy J., Gabrea A., Qi Y., et al. Cyclin D3 at 6p21 is dysregulated by recurrent chromosomal translocations in immunoglobulin loci in multiple myeloma. Blood 2001; 98: 217-223.

164. Shaughnessy J., Tian E., Sawyer J., et al. High incidence of chromosome 13 deletion in multiple myeloma detected by multiprobe interphase FISH. Blood 2000; 96: 1505-1511.

165. Shou Y., Martelli M.L., Gabrea A., et al. Diverse karyotypic abnormalities of the c-myc locus associated with c-myc dysregulation and tumor progression in multiple myeloma. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 2000; 97: 228-233.

166. Singhal S., Mehta J., Desikan R. Et al. Antitumor activity of thalidomide in refractory multiple myeloma. N. Engl. J. Med. 1999; 341: 1565-1571.

167. Smadja N.V., Bastard C., Brigaudeau C., et al. Hypodiploidy is a major prognostic factor in multiple myeloma. Blood 2001; 98: 2229-2238.

168. Spom JR, Mclntyre OR. Chemotherapy of previously untreated multiple myeloma patients: an analysis of recent treatment results. Semin. Oncol. 1986; 13: 318-325.

169. Steensma D.P., Gertz M.A., Greipp P.R. et al. A high bone marrow plasma cell labeling index in stable plateau-phase multiple myeloma is marker for early disease progression and death. Blood 2001; 97: 2522-2523.

170. Stewart A.K., Schwartz R.S. Immunoglobulin V region and В cell. Blood 1994; 83: 1717-1730.

171. Sucker C., Kramer A., Moos M. Concomitant chronic lymphocytic leukemia and multiple myeloma: proof of common clonal origin. The Chinese-German J. of Clinical Oncol. 2004; 3: 81-84.

172. Suzuki I., Pfister L., Annuska G., et al. Representation of rearranged VH gene segments in the human adult antibody repertoire. J. Immunol. 1995; 154: 3902.

173. Swedin A., Lenhoff S.( Olofsson Т., et al. Clinical utility of immunoglobulin heavy chain gene rearrangement identification for tumour cell detection in multiple myeloma. Blood 2000; 96: 355-357.

174. Terpos E., Eleutherakis-Papaiakovos V., Dimopoulos M.A. Clinical implications of chromosomal abnormalities in multiple myeloma. Leuk. & Lymph. 2006; 47: 803814.

175. The Nordic Myeloma Study Group. Interferon alpha 2b added to melphalan prednisone for initial and maintenance treatment in multiple myeloma. Ann. Inter. Med. 1996; 124: 212-222.

176. Tienhaara A., Pulkki K., Mattila K. Serum immunoreactive interleukin-6 and C-reactive protein levels in patients with multiple myeloma at diagnosis. Br. J. of Haematolog. 1994; 86: 391-393.

177. Togel F., Kroger N., Korioth F. Molecular methods for detection and quantification of myeloma cells after bone marrow transplantation: comparison between real-time quantitative and nested PCR. J. Hematol. Stem Cell Res. 2002; 11: 971-976.

178. Tonegava S. Somatic generation of antibody diversity. Nature 1983; 302: 505-581.

179. Tricot G. New insights into role of microenvironment in multiple myeloma. Lancet 2000; 355: 248-248.

180. Tricot G., Sawyer J.R., Jahannath S. et al. Unique role of cytogenetics in the prognosis of patients with myeloma receiving high-dose therapy and autotransplants. J. Clin. Oncol. 1997; 15: 2659-2666.

181. Tricot G., Barlogie В., Jagannath S. Poor prognosis in Multiple Myeloma is associated only with partial or complete deletions of chromosome 13 or abnormalities Involving 11 q and not with other karyotype abnormalities. Blood 1995; 86: 4250-4256.

182. Vacca A., Ribatti D., Roncali L., et al. Bone marrow angiogenesis and progression in multiple myeloma. Br. J. Of Haematolog. 1994; 87: 503-508.

183. Van Dongen J.J., Seriu Т., Panzer-Grumayer E.R., et al. Prognostic value of minimal residual disease in acute lymphoblastic leukaemia in childhood. Lancet. 1998; 28: 1731-1738.

184. Vincent Т., Jourdan M., Sy M.S., et al. Hyaluronic acid induces survival and proliferration of human myeloma cells through an interleukin-6 mediated pathway the phosphotylation of retinoblastoma protein. J.Biol. Chem. 2001; 276: 1472814736.

185. Voena C., Ladetto M., Astolfi M. A novel nested-PCR strategy for the detection of rearranged immunoglobulin heavy-chain genes in B-cell tumors. Leukemia 1997; 11: 1793-1798.

186. Westin K., Rodger S., Turesson I., et al. Interferon alpha-2b versus no maintenance therapy during the plateu phase in multiple myeloma. A randomized study. Br. J. Haematol. 1995; 89: 561.

187. Wilson P.S., de Bouteiller O., Liu Y.J., et al. Somatic hypermutation introduces insertions and deletions into immunoglobulin V genes. J. Exp. Med. 1998; 187: 5970.

188. Willems P., Verhagen O., Segeren C., et al. Consensus strategy to quantitative malignant cells in myeloma patients is validated in multicenter study. Blood 2000; 96: 63-70.

189. Zandecki M. Multiple myeloma: Almost all patients are cytogenetically abnormal. Br. J. Haematol. 1996; 94: 217-227.

190. Zhu P., Ma M., Yu J. Analysis of clonal origin of concomitant chronic lymphocytic leukemia and multiple myeloma in a patient with advanced age. Zhonghua Nei Ke Za Zhi. 1996; 35: 326-328 (abstr.).

191. Zojer N., Konigsberg R., Ackermann J. Deletion of 13q14 remains an independent adverse prognostic variable in multiple myeloma despite its frequent detection by interphase fluorescence in situ hybridization. Blood 2000; 95: 1925-1930.

192. Yamada M., Hudson S., Tournay O. Detection of minimal disease in hematopoietic malignancies of B-cell lineage by using third-complementarity-determining region (CDR-lll-specific probes. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1989; 86: 5123-5127.f