Автореферат и диссертация по медицине (14.03.03) на тему:Обмен глутатиона в патогенезе развития рентгеноконтрастных нефропатий

ДИССЕРТАЦИЯ
Обмен глутатиона в патогенезе развития рентгеноконтрастных нефропатий - диссертация, тема по медицине
АВТОРЕФЕРАТ
Обмен глутатиона в патогенезе развития рентгеноконтрастных нефропатий - тема автореферата по медицине
Жерегеля, Сергей Николаевич Санкт-Петербург 2010 г.
Ученая степень
кандидата медицинских наук
ВАК РФ
14.03.03
 
 

Автореферат диссертации по медицине на тему Обмен глутатиона в патогенезе развития рентгеноконтрастных нефропатий

На права* рукописи

004ЬОООО Г

ЖЕРЕГЕЛЯ Сергей Николаевич

ОБМЕН ГЛУТАТИОНА В ПАТОГЕНЕЗЕ РАЗВИТИЯ РЕНТГЕНОКОНТРАСТНЫХ НЕФРОПАТИЙ

14.03.03 - патологическая физиология 14.03.10 - клиническая лабораторная диагностика

АВТОРЕФЕРАТ диссертации на соискание ученой степени кандидата медицинских наук

2 2 ИЮЛ ?0Ю

Санкт-Петербург 2010

004608837

Работа выполнена в ФГОУ ВПО «Военно-медицинской академии имени С.М. Кирова» МО РФ

Научные руководители:

доктор медицинских наук профессор Карпищенко Анатолий Иванович доктор медицинских наук Глушков Сергей Иванович

Официальные оппоненты:

доктор медицинских наук Войцицкий Анатолий Николаевич, доктор медицинских наук профессор Эмануэль Владимир Леонидович

Ведущая организация:

ГОУ ВПО "Санкт-Петербургская государственная медицинская академия им. И.И. Мечникова Министерства здравоохранения Российской Федерации"

Защита диссертации состоится сентября 2010 года в часов на

заседании совета по защите докторских и кандидатских диссертаций Д 215.002.03 в ФГОУ ВПО «Военно-медицинской академии имени С.М. Кирова» МО РФ (194044, г. Санкт-Петербург, ул. Академика Лебедева, дом 6)

С диссертацией можно ознакомиться в фундаментальной библиотеке Военно-медицинской академии имени С.М. Кирова

Автореферат разослан

Ы^О^ 2010 года

Ученый секретарь

доктор медицинских наук профессор

А.В. Дергунов

Актуальность. Рентгеноконтрастная нефропатия (РКН) стала важной клинической проблемой, растущей параллельно с широким распространением диагностических и лечебных процедур с использованием контрастных средств. По данным Американской ассоциации сердца, только в 2003 г. было проведено примерно 1 млн. 414 тыс. процедур коронарной ангиографии и 664 тыс. процедур коронарной ангиопластики (American Heart Association. Heart Disease and Stroke Statistics, 2006). Необходимость проведения этих процедур у больных сахарным диабетом (СД) обусловлена высоким риском развития ишемической болезни сердца, эталонным методом своевременной диагностики которой является коронарная ангиография. Рентгеноконтрастная нефропатия определяется при фиксировании подъёма уровня креатинина сыворотки на 44 мкмоль/л или на 25% от базового уровня в течение 48 часов после введения РКС при отсутствии альтернативных причин (Barrett B.J., Parfrey P.S., 2006). Показатель креатинина сыворотки сам по себе лишь относительно может отражать почечную функцию, особенно при прогрессировании почечной патологии.

РКН стала третьей по частоте причиной острой почечной недостаточности (ОПН) у госпитализированных пациентов (Nash К. et al., 2002). Она ассоциируется с длительной госпитализацией, необходимостью проведения диализа и высокой смертностью в период пребывания в стационаре и после выписки (Dangas G. et al., 2005). РКН обычно имеет преходящий характер: уровень креатинина повышается в течение трёх дней и возвращается к исходному через 10 дней (Marenzi G. et al., 2004). Распространённость РКН в общей популяции не превышает 2%. В группах высокого риска (пациенты пожилого возраста, с гипертензией, СД, СН и др.) распространённость РКН достигает 20-30% (Goldenberg I., Matetzky S., 2005). Существуют факторы риска, связанные с пациентом (группы высокого риска), а также не связанные с пациентом (применение высокоосмолярных, ионизированных контрастных препаратов, их вязкость и объём) (Pannu N. et al., 2006). Известно, что сочетание почечной недостаточности и СД значительно повышает риск развития ОПН. При одинаковой выраженности предсуществующей почечной патологии риск развития РКН выше у пациентов с СД. В то же время частота развития РКН при исходно нормальной функции почек была одинаковой в обеих группах больных (Rudnick M.R. et al., 1995). У пациентов с диабетической нефропатией (ДН) и уровнем креатинина 0,68 г/л частота развития РКН после проведения коронарографии достигала 92% (Weinrauch L.A. et al., 1977). Особенно высок риск у больных СД при почечной патологии недиабетического генеза. У пациентов без диабета и азотемии риск развития РКН достаточно низок (2%), он достоверно повышается у лиц с диабетом без почечной патологии (16%) и очень высок при сочетании диабета и азотемии (38%). Более того, одно из последних исследований показало достоверно частое развитие РКН при проведении коронарографии у лиц с почечной патологией и с предциабетом (нарушенной гликемией натощак в рамках метаболического синдрома) по сравнению с лицами без такового (Toprak О., Cirit М., 2006). Повышенный риск развития РКН при нарушении углеводного обмена тесно

сопряжён с его основными патогенетическими механизмами - развитием ишемического поражения почечной ткани вследствие снижения почечного кровотока и прямого нефротоксического воздействия при введении контраста (Ве1ге1Ш 8. е1 а1., 2005).

Экспериментальные исследования показали, что определенную роль в развитии РКН играет повышенное образованию свободных радикалов, оказывающих повреждающее действие на эпителиальные клетки канальцев. В связи с этим гипотетически оправдано применение Ы-ацетилцистеина и бикарбоната натрия для профилактики РКН, поскольку они способны смягчить эти негативные воздействия. Клинические и экспериментальные исследования доказывают важную роль в патогенезе РКН вида контрастного препарата (ЯисЫск М.Я. е1 а!., 1995). Важное значение, в индуцировании РКН, имеет доза вводимого контраста, высокое содержание в нём ионов, высокая вязкость, интраартериальное введение и др.

В настоящее время активно продолжается поиск средств профилактики развития РКН. Одним из перспективных препаратов является ацетилцистеин, обладающий антиоксидантными и вазодилатирующими свойствами, предотвращющий гибель эндотелиальных клеток ^¡зИЬапе Б. й а1., 2004). Однако, анализ данных литературы, посвященных этой теме, достаточно противоречивы. На сегодняшний день достаточно ограниченны доказательства того, что наряду с адекватной гидратацией он может использоваться в качестве стандартного профилактического средства у пациентов высокого риска РКН.

Таким образом, исследование механизмов защиты клетки, ведущее место среди которых занимает система глутатиона, при введении РКС позволяет более подробно изучить молекулярные механизмы токсического действия препаратов данного класса, а также биохимические механизмы их детоксикации.

Цель исследования. Определить вклад изменений обмена глутатиона в механизмы формирования рентгеноконтрастных нефропатий для оптимизации мероприятий по их профилактике, диагностике и лечению.

Для достижения поставленной цели предстояло решить следующие задачи:

- определить динамику (в течение 5 суток) и провести сравнительный анализ изменений обмена глутатиона в различных органах белых беспородных крыс после введения рентгеноконтрастных препаратов омнипак-350 и гипак-76 в дозах 0,5 ЬО<о и и}50;

- определить динамику морфологических изменений почечной ткани и лабораторных показателей функции почек в тех же условиях у лабораторных животных;

провести сравнительный анализ морфологических изменений, стандартных лабораторных показателей (концентрация креатинина и мочевины) и изменений обмена глутатиона в условиях формирования экспериментальных рентгеноконтрастных нефропатий у лабораторных животных;

- определить эффект влияния рентгеноконтрастного препарата омнипак-350 в дозе 0,5 1Л35о на обмен глутатиона в различных тканях и лабораторные показатели функции почек у животных с экспериментальным сахарным диабетом;

- определить характер влияния представителей различных групп фармакологических препаратов (предшественника синтеза глутатиона -ацетилцистеина, препарата окисленного глутатиона - глутоксима, антигипоксанта - трисана, антиоксидантов мексидола и цитофлавина, дегидрированного аналога гормона коры надпочечников гидрокортизона -преднизолона) на динамику изменений исследуемых биохимических и морфологических показателей в тканях лабораторных животных при использовании неионного рентгеноконтрастного препарата омнипак-350 в дозе 0,5 ЬО50;

- определить динамику измений обмена глутатиона в эритроцитах пациентов на фоне проведения изолированного рентгеноконтрастного исследования.

Основные положения, выносимые на защиту:

1. Введение рентгеноконтрастных препаратов оказывает выраженное влияние на обмен глутатиона в тканях почек и эритроцитах лабораторных животных в виде сдвигов тиол-дисульфидного равновесия, изменения активности ферментов - глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы, глутатионредуктазы, глутатион-Б-трансферазы, глутатионпероксидазы.

2. Изменения обмена глутатиона носят дозозависимый характер и являются диагностически информативными при оценке тяжести рентгеноконтрастной нефропатии.

3. Введение рентгеноконтрастных препаратов на фоне экспериментального сахарного диабета приводит к потенцированию повреждающего действия на систему глутатиона в тканях почек, проявляющегося снижением активности глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы и глутатионредуктазы.

4. Выраженность изменений обмена глутатиона в почках животных с экспериментальной рентгеноконтрастной нефропатией на фоне проводимой терапии отражает степень нефропротекторной активности ряда фармакологических препаратов.

Научная новизна. Проведена комплексная оценка обмена глутатиона в тканях лабораторных животных и эритроцитах пациентов при введении различных рентгеноконтрастных препаратов. Экспериментально обоснована возможность использования показателей системы обмена глутатиона в клетках крови в качестве лабораторных тестов для оценки тяжести поражения почек и эффективности лечения рентгеноконтрастных нефропатии.

Реализация результатов исследования. Рекомендации, разработанные на основании полученных в ходе диссертационного исследования данных, используются в научной работе и учебном процессе на кафедрах токсикологии и патологической физиологии, а также кафедре клинической биохимии и

лабораторной диагностики Военно-медицинской академии. Диссертационное исследование выполнено по плану НИР, шифр «Цитотоксичность».

Апробация работы. Результаты работы доложены на итоговой конференции военно-научного общества слушателей и ординаторов 1-го факультета Военно-медицинской академии (Санкт-Петербург, 2007), Всероссийской научно-практической конференции, посвященной 115-летию кафедры клинической биохимии и лабораторной диагностики Военно-медицинской академии (Санкт-Петербург, 2008), Российской и всеармейской научно-практической конференции «Вопросы нефрологии в практике терапевта и эндокринолога» (Санкт-Петербург, 2008), IV съезде Российского общества биохимиков и молекулярных биологов (Санкт-Петербург, 2008).

Публикации. По теме диссертационного исследования опубликовано 13 работ, из них 1 - в рецензируемом журнале, входящем в список изданий ВАК.

Структура и объем работы. Диссертация состоит из введения, 5 глав, включающих обзор литературы, общую характеристику материалов и методов исследования, полученные результаты и их обсуждение, заключение и выводы. Работа изложена на 191 странице машинописного текста, содержит 61 рисунок и 43 таблицы (19 в тексте и 24 в приложении). Список литературы состоит из 134 источников, из них 53 отечественных и 81 иностранных авторов.

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

Общая схема проведения экспериментального исследования представлена в табл. 1.

В ходе экспериментального исследования проводили оценку влияния острого отравления омнипаком-350 и гипаком-76 в дозах LDS0 на состояние системы глутатиона в различных тканях лабораторных животных в различные сроки исследования.

Определение LD50 РКС проводили с использованием «табличного экспресс-метода» по В.Б. Прозоровскому (1994). Численные значения LD50 неионный омнипак-350 (водный раствор) и ионный гипак-76 (водный раствор) при внутрибрюшинном введении составили соответственно 20 и 16 г/кг массы животного.

Забой животных проводился через 1, 3 и 5 сутки после однократного введения препаратов в полулетальной дозе.

Для фармакологической коррекции цитотоксического действия омнипака-350 через 30 мин после его применения в дозе 20 г/кг животным внутрибрюшинно ежедневно в течение 5 суток вводили один из следующих препаратов: ацетилцистеин - 3 % водный раствор в дозе 150 мг/кг массы, трисан - 1 % водный раствор в дозе 15 мг/кг, цитофлавин - 10 % водный раствор в дозе 100 мг/кг, мексидол - 1 % водный раствор в дозе 100 мг/кг, глутоксим - 1% водный раствор в дозе 100 мг/кг, преднизолон - водный раствор в дозе 0,02 мг/кг.

Таблица 1

Схема проведения экспериментального исследования

№ группы Доза гипака Доза омнипака Доза аллоксана Сроки исследо вания Препарат коррекции Количество животных

1 контроль 40

2 16 г/кг 1 сут 10

3 3 сут 10

4 5 сут 10

5 20 г/кг 1 сут 10

6 3 сут 10

7 5 сут 10

8 20 г/кг 5 сут Цитофлавин 10

9 5 сут Трисан 10

10 5 сут Мексидол 10

11 5 сут Ацетилцистеин 10

12 5 сут Глутоксим 10

13 5 сут Преднизолон 10

14 10 г/кг 5 сут 10

15 1,7 г/кг 5 сут 10

16 10 г/кг 5 сут 10

17 10 г/кг 1,7 г/кг 5 сут Преднизолон 10

Для моделирования рентгеноконтрастной нефропатии на фоне сахарного диабета животным вводили омнипак-350 в дозе 10 г/кг на 5-« сутки после введения аллоксана в дозе 1,7 г/кг массы тела животных. При проведении фармакологической коррекции ежедневно внутрибрюшинно вводили преднизолон в дозе 0,02 мг/кг в течение 5 суток:

Для обоснования возможности использования показателей системы глутатиона в эритроцитах пациентов в оценке тяжести и прогноза исхода почечной патологии было проведено исследование биологического материала (гемолизата эритроцитов) 20 мужчин в возрасте 45 - 55 лет, находившихся на стационарном лечении в клинике сердечно-сосудистой хирургии ВМедА им. СМ. Кирова и 442 ОВКГ. Исследование проводилось на 3 сутки после введения неионного РКС в диагностических дозах. В качестве сравнения использовались результаты исследования этих же больных до введения рентгеноконтраста.

При выполнении клинического раздела работы анализировали анамнез заболевания, медицинскую документацию догоспитального этапа, данные объективного исследования при поступлении в лечебное учреждение и в динамике, результаты общеклинического обследования (анализы крови, мочи, биохимическое исследование крови).

У экспериментальных животных в тканях печени, почек и эритроцитах, а также в эритроцитах пациентов определяли содержание восстановленного глутатиона (ВГ), уровень свободных сульфгидрильных групп белков (СГ) и активность ферментов системы глутатиона и сопряженных систем -глутатионредуктазы (ГР), глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы (Г-6-Ф-ДГ), глутатион-Б-трансферазы (ГТ), глутатионпероксидазы (ГП) и каталазы. Для оценки интенсивности процессов перекисного окисления липидов (ПОЛ) определяли концентрацию малонового диальдегида (МДА).

Концентрацию В Г определяли методом G.L. Ellman (1959) в модификации С.И. Глушкова (2006), заключавшейся в осаждении белка 20% раствором сульфосалициловой кислоты. Содержание СГ определяли согласно методике G. Bellomo et al. (1990). Концентрацию МДА определяли по методу М. Uchiyama (1978). Определение активности ферментов системы глутатиона проводили в гемолизате эритроцитов или в цитозольной фракции, полученной после центрифугирования гомогенатов тканей в течение часа при 150000 g на ультрацентрифуге L8-M («Beckman», США). Активность глутатионредуктазы определяли по методу I. Garlberg, В. Mannervik (1985), глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы - по А. Kornberg et al. (1955), глутатионпероксидазы - по методу А.Н. Гавриловой и Н.Ф. Хмары (1986) с использованием в качестве субстрата гидроперекиси трет-бутила, каталазы - по М.А. Королюку (1988), глутатион-8-трансферазы - методом W.H. Habig, W.B. Jakoby (1981). Расчет активности ферментов производили на грамм белка или гемоглобина (в гемолизате эритроцитов). Концентрацию белка определяли методом Лоури в модификации G.L. Peterson (1977), гемоглобина - гемиглобинцианидным методом.

Влияние рентгеноконтрастных препаратов и применявшихся средств фармакологической коррекции на тяжесть токсического поражения ткани почек оценивали по следующим биохимическим показателям, определяемым в сыворотке крови лабораторных животных: концентрация креатинина и мочевины. Биохимические показатели определялись на автоматическом биохимическом анализаторе «Synchron» («Beckman - Coulter», США).

Статистическ.ую обработку полученных результатов проводили на персональном компьютере с помощью пакета прикладных программ «STATISTICA 6,0». В каждой группе рассчитывали средние значения и ошибку среднего. Проводился корреляционный анализ изменений показателей системы глутатиона в эритроцитах и ткани почек исследуемых животных. Достоверность различий с соответствующей контрольной группой оценивали по t-критерию Стьюдента. Приведенные в тексте и таблицах значения представлены в виде Xq, ± тх.

Для оценки значимости различий у людей применялись непараметрические методы статистики. Использовался критерий Вилкоксона (Wilcoxon matched pairs при р<0,05), который является альтернативой t-критерию Стьюдента для парных сравнений количественных данных в зависимых выборках.

РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ

Проведенное экспериментальное исследование, направленное на изучение особенностей обмена глутатиона и интенсивности протекания процессов ПОЛ в тканях печени, почек и эритроцитах лабораторных животных при введении различных групп рентгеноконтрастных препаратов, позволяет говорить о вовлечении изменений данной биохимической системы в механизмы повреждения клеток при развитии рентгеноконтрастных нефропатий.

Анализ полученных результатов указывает на тесную связь изменений изучаемых биохимических показателей в исследуемых органах с величиной используемой дозы РКС, длительностью введения, наличия провоцирующего фактора (СД).

Так, наиболее достоверные и выраженные изменения показателей системы глутатиона при использовании рентгеноконтрастных препаратов были выявлены в ткани почек. В ходе проведенного исследования отмечалось достоверное повышение содержания судьфгидрильных групп в ткани почек с максимальным проявлением при введении неоинного рентгеноконтрастного препарата в дозе 20 г/кг на 5 сутки исследования в 1,5 раза (р<0,05) выше контроля. Напротив, применение ионного рентгеноконтрастного препарата в среднесмертельной дозе приводило к снижению концентрации сульфгидрильных групп в этой ткани с максимальными проявлениями в 1 сутки на 41% ниже значений интактного контроля (рис. ]).

,80------г—-

160----------------------1------

1№Ш:Г1 1

* - достоверность отличия р<0,05 по сравнению с группой контроля.

Рис. 1. Изменения концентрации сульфгидрильных групп белков в тканях почек при введении омнипака-350 в дозе 20 г/кг и гипака-76 в дозе 16 г/кг в течение 5 суток.

I . ' _ .. * I

т

I 6

V ' 1

Зй ЁЙЙа

контроль 1 день 3 день 5 день

Шомнипак ЕЭгипак

Сдвиги тиол-дисульфидного равновесия приводят к нарушению активности тиолзависимых ферментов, таких как Г-6-ФДГ, ГР, ГТ, ГП.

При исследовании активности Г-6-ФДГ в ткани почек при применении ионного РКС в полулетальной дозе отмечался период компенсаторных изменений, проявившийся в виде достоверного увеличения активности данного фермента в 2,55 раза (р<0,05) по сравнению с интактным контролем на 1 сутки. К 3 суткам активность Г-6-ФДГ достоверно превышала показатели здоровых животных в 1,82 раза (р<0,05). При применении неионного РКС периода компенсаторных изменений выявлено не было. Напротив, на протяжении всего эксперимента наблюдалось достоверное выраженное снижение активности фермента. Так, в первые сутки она составила 27% (р<0,05) от уровня нормы и к 5 суткам увеличилась лишь до 43% (рис. 2).

зоо

250

200 % 150 100

50

0

а омнипак 0 гипак

* - достоверность отличия р<0,05 по сравнению с группой контроля.

Рис. 2. Изменения активности глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы в различных тканях при введении омнипака-350 в дозе 20 г/кг и гипака~76 в дозе 16 г/кг в течение 5 суток.

Активность других тиол-зависимых ферментов на протяжении всего эксперимента достоверно (р<0,05) снижалась и к 5 суткам составила для ГР -38,5%, ГТ - 38% и ГП - 51%, соответственно, по сравнению с интактным контролем. В то время как применение ионного рентгеноконтрастного препарата сопровождалось достоверным (р<0,05) снижением активности лишь ГР, которая к 5 суткам составляла 44% по сравнению с активностью данного фермента в контрольной группе. Активность ГТ и ГП увеличилась в 1,92 и 1,63 раза соответственно по сравнению с показателями интактной группы.

Нарушение активности антиоксидантных ферментов в условиях i применения РКС приводит к активации свободно-радикальных процессов. ' Подтверждением чего может служить достоверное повышение концентрации МДА в 1,5 раза на 3 сутки исследования при использовании неионного РКС в среднесмертельной дозе (рис. 3).

При применении РКС в дозах, эквивалентных диагностическим, изменения обмена глутатиона менее выражены при отсутствии функциональных изменений (концентрации мочевины и креатинина).

200

1 60 1 40 1 20 % 10 0 80 60 40 20 О

I___________ __________________________________ ОМ ДА__________________I

* - достоверность отличия р<0,05 по сравнению с группой контроля.

Рис. 3. Изменения концентрации малонового диальдегида в различных тканях при введении омнипака-350 в дозе 20 г/кг в течение 5 суток.

Так, на фоне применения неионного рентгеноконтрастного препарата в дозе 10 г/кг массы тела (0,5 Ы)50) на 5 сутки значительных изменений дисульфидного равновесия и нарушения ферментативных систем в тканях почек выявлено не было. Отмечалось лишь незначительное достоверное снижение активности ГР на 29,2% (р<0,05) и каталазы на 25% по сравнению с интактным контролем (рис. 4).

В эритроцитах наблюдалось достоверное снижение концентрации сульфгидрильных групп в 2 раза (р<0,05), а также повышение активности ГР в 1,6 раза (р<0,05) и ГП на 18% (р<0,05). Данные изменения могут рассматриваться как функциональный ответ клетки на повреждающее действие неионного РКС (рис. 5).

контроль ВГ___СГ_МДА Г6ФДГ ГР__ГТ___ГП каталаза

Г __В 20 г/кг __Н10 г/кг _I

* - достоверность отличия р<0,05 по сравнению с группой контроля.

Рис. 4. Изменения показателей обмена глутатиона в тканях почек лабораторных животных при введении омнипака-350 в дозах 10 и 20 г/кг на 5 сутки.

контроль ВГ

МДА Г6ФДГ ГР

ГП каталаза

П20 г/кг

010 г/кг

* - достоверность отличия р<0,05 по сравнению с группой контроля.

Рис. 5. Изменения показателей обмена глутатиона в эритроцитах лабораторных животных при введении омнипака-350 в дозах 10 и 20 г/кг на 5 сутки.

По литературным данным, одной из основных причин провокации развития рентгеноконтрастной нефропатии является сахарный диабет. В связи с чем были исследованы показатели обмена глутатиона при введении неионного

рентгеннокотрастного препарата омнипак-350 в дозе 10 г/кг на фоне экспериментального аллоксанового сахарного диабета.

В ходе проведенного исследования было выявлено потенцирование нарушений обмена глутатиона, проявляющееся в виде достоверного снижения активности Г-6-ФДГ и ГР в ткани почек в 2 раза к 3 суткам исследования (рис. 6).

Снижение активности этих ферментов при введении омнипака-350 может быть связано с неконкурентным их ингибированием непосредственно молекулой РКС, а также энергетическим дисбалансом клетки, который присутствует при сахарном диабете.

Морфологическое исследование почечной ткани указывает на наличие определенных особенностей действия изученных средств на фоне введения рентгеноконтрастных препаратов различных групп.

120 100 80 60

20 0

* - достоверность отличия р<0,05 по сравнению с группой контроля.

Рис. 6. Изменения активности глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы и глутатионредуктазы в тканях почек при введении омнипака-350 в дозе 10 г/кг на фоне экспериментального сахарного диабета на 3 сутки.

Полученные экспериментальные данные свидетельствует о том, что морфологические изменения почечной ткани совпадают с нарушением обмена глутатиона.

Уже через 1 сутки после введения РКС на фоне отсутствия достоверных изменений концентрации мочевины и креатинина в сыворотке крови происходят умеренные морфологические изменения в почечной ткани, проявляющиеся дистрофическими изменениями и некрозом нефроцитов канальцев, гибелью эпителия почечных канальцев. На этом фоне отмечаются ранние изменения обмена глутатиона в тканях почек в виде снижения концентрации СГ и активности Г-6-ФДГ, в тоже время в эритроцитах животных отмечается повышение концентрации СГ и снижение активности Г-6-ФДГ.

т

* * р—1— *

т * *

т

контроль

ЭСД

РКС

РКС на фоне ЭСД

СГ-6-ФДГ

К 3 суткам эксперимента на фоне выраженных нарушений обмена глутатиона в почечной ткани (увеличение концентрации МДА, снижение активности ГП) формируются морфологические изменения (полная десквамация почечного эпителия в канальцах), имеющие необратимый характер. В эти сроки становятся информативными принятые лабораторные маркеры развития РКН.

Следует отметить, что вероятные патологические механизмы, приводящие к повреждению нефроцитов и их гибели, у ионных и неионных РКС могут различаться. Так, в первом случае характерны некротические изменения по типу сухого - коагуляционного некроза; во втором случае действие неионных РКС реализуется через развитие гипоксии, следствием которой является баллонная гидропическая дистрофия и некроз. Однако, как в первом, так и во втором случае некробиотические изменения в почках приводят к развитию острой почечной недостаточности, несовместимой с жизнью.

Сравнительный анализ сдвигов обмена глутатиона и данных гистологического исследования в почечной ткани животных при использовании ионных и неионных РКС указывает на то, что наиболее выраженные биохимические и морфологические изменения при введении неионного препарата совпадают по срокам.

Данные изменения позволяют предположить возможность цитотоксического воздействия РКС на ткани почек, а нарушения системы глутатиона рассматривать как один из патогенетических этапов повреждения, что соответствует современной гипотезе развития РКН.

В процессе эксперимента была предпринята попытка уменьшить цитотоксическое действие неионного РКС, одновременно используя фармакологические препараты, индуцирующие эндогенный синтез глутатиона (ацетилцистеин), антиоксиданты (мексидол, цигофлавин) антигипоксанты (трисан), препараты окисленного глутатиона, обладающие детоксимодифицирующей функцией (глутоксим), синтетический аналог глюкокортикоидных гормонов коры надпочечников (преднизолон).

Наиболее существенные положительные результаты были отмечены на фоне терапии с использованием антигипоксанта трисана.

Проведенное исследование системы глутатиона и ПОЛ позволило установить, что применение трисана оказывало существенное положительное влияния на динамику всех показателей исследуемой системы в тканях отравленных животных. Так, в почечной ткани отмечалось достоверное снижение концентрации СГ в 1,70 раза (р<0,05) по сравнению с изменениями у отравленных животных и составило 95,5% от показателей интактной группы животных. Произошло увеличение активности всех ферментов до показателей контрольной группы животных. Достоверное (р<0,05) увеличение активности ферментов обмена глутатиона и ПОЛ по отношению к группе не леченых животных составило 1,85 раза для Г-6-ФДГ, 2,52 раза - для ГР, 2,71 - раза для ГТ, а также 2,57 и 1,48 раза - для ГП и каталазы, соответственно (рис. 7).

180 160 140 120 100

%

80 60 40 20 О

* - достоверность отличия р<0,05 по сравнению с группой контроля.

# - достоверность отличия р<0,05 по сравнению с группой отравленных животных

Рис. 7. Влияние трисана на изменения показателей системы глутатиона в ткани почек при введении омнипака - 350 в суточной дозе 20 г/кг на 5 сутки

В тканях печени, где угнетающее действие РКС на обмен глутатиона было менее существенно, использование препарата фармакологической коррекции приводило к предотвращению падения концентрации ВГ.

Применение трисана достоверно (р<0,05) увеличивало содержание МДА выше значений группы животных, не получавших фармакологическую коррекцию (на 13,6%). При исследовании ферментативного звена отмечалась лишь тенденция к росту активности Г-6-ФДГ и достоверное (р<0,05) снижение активности ГР и ГП (на 29,2 и 42,2%, соответственно), по сравнению с не лечеными животными, в результате чего происходила нормализация показателей ГП и снижение активности ГР по сравнению с контролем.

Наиболее интересным, оказалось то, что в клетках красной крови при применении трисана произошла активизация процессов ПОЛ, что сопровождалось ростом концентрации МДА на 73,2% (р<0,05) и ферментов антиоксидантной защиты. Отмечалось увеличение активности ГП в 2,1 раза (р<0,05) и ГТ в 1,84 раза (р<0,05) по сравнению с интактной группой, а также стойкая тенденция к росту активности каталазы на 34,6%. Наблюдалось увеличение активности Г-6-ФДГ в 1,63 раза (р<0,05) по сравнению с не леченым контролем до значений интактной группы животных (рис. 8).

Таким образом, применение данного фармакологического препарата способствовало в той или иной степени нормализации практически всех показателей наиболее поражаемой почечной ткани до значений контрольной группы животных.

250 200 150

о/

100 50 О

* - достоверность отличия р<0,05 по сравнению с группой контроля.

# - достоверность отличия р<0,05 по сравнению с группой отравленных животных

Рис. 8. Влияние трисана на изменения показателей системы глутатиона в эритроцитах при введении омнипака - 350 в суточной дозе 20 г/кг на 5 сутки

Наличие корреляционных связей между изменениями показателей обмена глутатиона во внутренних органах, в частности, в ткани почек и в эритроцитах может стать предпосылкой их использования для оценки возможности развития РКН.

В ходе проведенного исследования установлена умеренная положительная корреляционная связь (коэффициент корреляции 0,53 и 0,69) между изменениями в эритроцитах и тканях почек активности глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы и глутатионпероксидазы в первые сутки после применения неионного рентгеноконтрастного препарата.

Была проведена сравнительная оценка сроков появления достоверных изменений показателей нарушения функции почек (концентрации креатинина и мочевины) и обмена глутатиона при применении неионного РКС в суточной дозе 20 г/кг в течение 5 суток. Установлено, что изменения таких показателей обмена глутатиона, как активность глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы, глутатионпероксидазы происходили в более ранние сроки (от 1 до 3 суток) и выявлялись при отсутствии достоверных изменений со стороны стандартных биохимических показателей (рис. 9).

Возможность использования показателей обмена глутатиона для оценки цитотоксического поражения почек при применении неионного рентгеноконтрастного препарата подтвердил проведенный дискриминантный анализ. Для его осуществления мы провели разделение экспериментальных животных на три группы: 1-я группа - морфологические признаки поражения почек отсутствуют; 2-я группа - морфологические признаки поражения почек

гЧ

□ не леченные

- ■ * X

# .

* #

А .Л

гХ

«I,

контроль ВГ СГ МДА Г-6-Ф-ДГ ГР ГТ ГП

1 после введения трисана

незначительны или умеренно выражены; 3-я группа - морфологические признаки поражения почек сильно выражены, а затем провели анализ изменений показателей системы глутатиона в эритроцитах этих животных (рис. 10).

Рис. 9. Активность Г-б-ФДГ, ГП и концентрация мочевины и креатинина в эритроцитах животных при введении неионного РКС в дозе 20 г/кг

1-я группа -морфологические признаки поражения почек отсутствуют;

2-я группа -морфологические признаки поражения почек незначительны и слабо выражены;

3-я группа морфологические признаки поражения почек значительны и сильно выражены.

Рис. 10. Канонические дискриминантные функции распределения животных, получавших омнипак-350, на морфологические группы поражения тканей почек на основе анализа показателей обмена глутатиона.

♦ Г" ¿'¿"а О* ■ : : ■ ■ я.'-.. , . . .. •

-5-4-3-2-1012345 Функция 1

При оценке чувствительности решающих правил выявлено, что точность диагностики по решающим правилам в среднем характеризуется достоверностью 92,8%, при этом для первой группы она составила 81,8%, для второй и третьей групп - 100%. Недостаточная точность диагностики для первой группы объясняется двумя причинами, связанными с временным фактором и летальностью. Во-первых, в данную группу морфологических признаков распределялись не только контрольные животные, но и часть переживших токсическое воздействие опытных крыс на поздних сроках наблюдения. В этом случае выраженность морфологических признаков поражения почечной ткани уже снижалась, а изменения со стороны обмена глутатиона еще сохранялись. Во-вторых, в третью группу не были включены погибшие животные с выраженными морфологическими сдвигами в тканях почек, так как биохимические исследования у них не проводились.

С целью определения информативности показателей обмена глутатиона в эритроцитах для оценки морфологических изменений в тканях почек при развитии РКН у лабораторных животных в наиболее ранние сроки нами проведен многомерный регрессионный анализ. Для построения уравнения регрессии были использованы показатели обмена глутатиона в эритроцитах отравленных животных на 1 сутки эксперимента.

Построенная корреляционная матрица позволила выявить, что существует прямая корреляционная связь морфологических изменений с такими факторами, как концентрация сульфгидрильных групп и обратная - с активностью Г-6-ФДГ и ГП. Данная корреляционная связь имеет умеренную выраженность.

Дисперсионный анализ определил значение коэффициента детерминации построенной модели более 0,5 (112:=0,6), что позволяет рассматривать её как информативную. Уровень значимости модели составил р=0,02б, таким образом данную модель, построенную на 3-х факторах можно считать значимой и достоверной.

Регрессионная модель прогноза развития морфологических изменений в тканях почек белых беспородных крыс, получающих омнипак-350 в дозе 20 г/кг, имеет вид:

У=2,252+0,025 *СГ-0,031 *Г-6-ФДГ-1,487*ГП

На рис. 11 видно, что группы животных с морфологическими признаками поражения почечной ткани (У>0,2) и без таковых (У< -0,2) отчетливо дифференцируются, при этом практически все случаи наблюдений попали в 95% доверительный интервал.

-1,0 -0,

0,0 0,2

у I 95% доверительтный интервал

Рис. 11. График линии регрессии прогнозируемых и наблюдавшихся случаев развития морфологических признаков поражения тканей почек у животных, получавших омнипак-350 в средне смертельной дозе.

В результате проведенного исследования экспериментально установлено, что определение концентрации СГ и активности Г-6-ФДГ и ГП в эритроцитах белых беспородных крыс, получающих омнипак-350 в дозе 20 г/кг, с высоким уровнем достоверности и значимости может быть использовано для прогноза развития морфологических изменений в тканях почек животных. Данное положение экспериментально обосновывает возможность использования показателей обмена глутатиона в эритроцитах в качестве лабораторных тестов для оценки тяжести поражения тканей почек на фоне применения РКС.

Основной целью проведения клинической части исследования явилось подтверждение экспериментально обоснованной гипотезы о возможности использования определения показателей системы глутатиона в эритроцитах пациентов при применении неионного РКС, а также для оценки эффективности новых средств цитопротекции в клинике. При исследовании показателей обмена глутатиона в эритроцитах человека на 3-е сутки после введения РКС выявлены тенденции подобные с изменениями в эритроцитах животных. Так, в эритроцитах пациентов отмечается снижение активности Г-6-ФДГ на 46,5% и ГП на 35,7% (рис. 12). Умеренная корреляция этих показателей в эритроцитах пациентов и лабораторных животных составляет 0,63 и 0,59 для Г-6-ФДГ и Г'П, соответственно (в эритроцитах животных на 3-е сутки отмечается уменьшение активности Г-6-ФДГ на 33,5% и ГП на 7,6%).

При сравнении этих показателей выявлено значение, близкое к статистически достоверному, до и после введения РКС (р=0,080 для обоих показателей).

% 60 —

* - достоверность отличия р<0,05 по сравнению с группой контроля.

Рис. 12. Изменения активности ферментов в эритроцитах белых беспородных крыс и человека на 3-е сутки при введении РКС.

Данные изменения наблюдались при отсутствии достоверных изменений со стороны общепризнанных показателей нарушения функции почек (содержание мочевины, креатинина). Таким образом, определение активности этих ферментов в эритроцитах у человека можно использовать для оценки степени нарушения функционального состояния нефроцитов, а также прогноза вероятности развития РКН.

ВЫВОДЫ

1. Основными изменениями обмена глутатиона в тканях животных при введении рентгеноконтрастных препаратов в дозе 0,5 ЬЭ50 являются достоверное снижение ГР и каталазной активности на 25 - 30% в почках, а также увеличение ГР (на 65%) и ГП (на 18%) активности, снижение каталазной активности (на 40%) и концентрации СГ (в 2,0 раза) в эритроцитах на фоне отсутствия достоверных сдвигов со стороны лабораторных маркеров нарушения функции почек (концентрация креатинина и мочевины).

2. После введенния рентгеноконтрастных препаратов в среднесмертельных дозах на фоне необратимых морфологических изменений в тканях почек (некроз почечной паренхимы) и существенных нарушений их функции (увеличение концентрации мочевины в 1,81 раза и креатинина в 1,5 раза) отмечается достоверное снижение активности Г-6-ФДГ, ГР, каталазы, ГП и ГТ (в 1,8 - 2,6 раза) в тканях почек, а также повышение (р<0,05) концентрации СГ на 23,4% и снижение активности Г-6-ФДГ на 18% в эритроцитах.

3. Введение омнипака-350 животным с экспериментальным сахарным диабетом приводило к возникновению выраженных нарушений обмена

глутатиона в тканях почек в виде снижения (р<0,05) активности ГР и Г-б-ФДГ в 1,8 раза по сравнению с показателями контрольной группы.

4. Эффективность фармакологической коррекции проявилась в частичном восстановлении обмена глутатиона в тканях животных, наиболее ярко при использовании препарата антигипоксантного действия - трисана. Его применение приводило к снижению концентрации СГ до уровня физиологической нормы, достоверному увеличению активности ферментов обмена глутатиона в тканях почек: Г-б-ФДГ, ГР, Г'Т, ГП (в 1,9 - 2,7) раза, а также к увеличению активности ГП, ГТ, Г-б-ФДГ (в 1,63 - 2,1 раза) в эритроцитах.

5. Между изменениями обмена глутатиона в эритроцитах и тканях почек экспериментальных животных на фоне введения рснтгеноконтрастных препаратов существует положительная корреляция: для омнипака-350 в дозе LD50 г = 0,53 (Г-б-ФДГ) и г = 0,69 (ГП), и для гипака-7о в эквивалентной дозе

г = 0,52 (Г-б-ФДГ) и г = 0,49 (ГП). Получена математическая модель (уровень значимости р=0,026) позволяющая прогнозировать риск развития РКН у лабораторных животных основанная на определении концентрации СГ и активности Г-б-ФДГ и ГП в эритроцитах.

6. После проведения изолированного рентгеноконтрастного исследования пациентов, не имеющих признаков формирования рентгеноконтрастной нефропатии, основными биохимическими изменениями со стороны обмена глутатиона в эритроцитах явилось уменьшение активности Г-б-ФДГ и ГП (на 46,5% и 35,7%) по сравнению с показателями до введения РКС.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

1. В качестве лабораторных тестов оценки риска развития и степени тяжести рентгеноконтрастных нефропагий у пациентов, подвергающихся диагностическим и лечебным процедурам с использованием контрастных средств, рекомендуется определение в эритроцитах активности Г-б-ФДГ и ГП.

2. Дополнительным методом оценки нефропротекторных свойств фармакологических препаратов для профилактики и лечения РКН является определение показателей обмена глутатиона в тканях экспериментальных животных и в эритроцитах пациентов.

СПИСОК РАБОТ, ОПУБЛИКОВАННЫХ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ

1. Жерегеля С.Н. Динамика изменений концентрации восстановленного глутатиона в тканях печени на фоне развития острой почечной недостаточности вызванной введением ренгеноконтрастных препаратов / С.Н. Жерегеля, Л.В. Минаева, О.О. Ивойлов // Материалы итоговой конференции военно-научного общества слушателей и ординаторов 1 факультета,- СПб: ВМедА, 2007. - С. 42-43.

2. Жерегеля, С.Н. Глутатионредуктазная активность тканей почек в

2.0

условиях развития рентгеноконтрастных нефропатий на фоне экспериментального сахарного диабета / С.Н. Жерегеля, А.И. Карпищенко, О.О. Ивойлов и др. И Сборник тезисов Российской и всеармейской научно-практической конференции «Вопросы нефрологии в практике терапевта и эндокринолога». - СПб: ВМедА, 2008. - С. 47 - 48.

3. Жерегеля, С.Н. Изменения активное™ глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы в почечной ткани животных при различной концентрации рентге] неконтрастного препарата / С.Н. Жерегеля, С.И. Глушков, О.О. Ивойлов и др. // Сборник тезисов Российской и всеармейской научно-практической конференции «Вопросы нефрологии в практике терапевта и эндокринолога». - СПб; ВМедА, 2008.-С. 49.

4. Жерегеля, С.Н. Изменения глюкозо-б-фосфатдегидрогеназной активности при формировании рентгеноконтрастных нефропатий на фоне экспериментального сахарного диабета / С.Н. Жерегеля, С.И. Глушков, О.О. Ивойлоз и др. // Сборник тезисов Российской и всеармейской научно-практической конференции «Вопросы нефрологии в практике терапевта и эндокринолога». - СПб: ВМедА, 2008. - С. 50 - 51.

5. Жерегеля, С.Н. Активность глутатионредуктазы в тканях экспериментальных животных при введении различных доз рентгеноконграстных препаратов / С.Н. Жерегеля, А.И. Карпищенко, С.И. Глушков, О.О. Ивойлов // Актуальные проблемы лабораторной диагностики / Материалы Всероссийской научно-практической конференции, посвященной 115-летию кафедры клинической биохимии и лабораторной диагностики Военно-медицинской академии им. С.М. Кирова. - СПб: ВМедА, 2008.-С. 21.

6. Жерегеля, С.Н, Изменения глюкозо-б-фосфатдегидрогеназной активности при введении различных фармакологических групп рентгеноконтрастных препаратов / С.Н. Жерегеля, А.И. Карпищенко, С.И. Глушков, О.О. Ивойлов II Актуальные проблемы лабораторной диагностики / Материалы Всероссийской научно-практической конференции, посвященной 115-летию кафедры клинической биохимии и лабораторной диагностики Военно-медицинской академии им. С.М. Кирова. - СПб: ВМедА, 2008. - С. 20 - 21.

7. Жерегеля, С.Н. Изменения активности глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы в почечной ткани животных при различной концентрации рентгеноконтрастного препарата / С.Н. Жерпгеля, А.И. Карпищенко, С.И. Глушков и др. // Вестник Российской Военно-медицинской академии.- СПб: 2008 - Приложение 1, № 3 (23).-С. 127.

8. Жерегеля, С.Н. Изменения активности глюкозо-6-фосфат-дегидрогеназы в ткани почек лабораторных животных при индуцированной рентгеноконтрастной нефропатии / С.Н. Жерегеля, А.И. Карпищенко, С.И. Глушков, О.О. Ивойлов и др. // Сборник материалов IV съезда Российского общества биохимиков и молекулярных биологов. - Новосибирск, 2008. С. 505.

9. Жерегеля, 'C.IL Изменения обмена глутатиона в патогенезе рентгеноко1>:грастной нефропатии / С.Н. Жерегеля, С.И. Глушков,

А.И. Карпищенко, В.Я. Апчел // Вестник Российской Военно-медицинской академии.- СПб, 2010. - № 2 (30). — С. 163-166.

10. Карпищенко А.И. Изменения глюкозо-6-фосфатдегидрогеназной активности при формировании ренгенсконтрастных нефропатий / А.И. Карпищенко, С.И. Глушков, С.Н. Жерегеля, и др. // Вестник Российской Военно-медицинской академии.- 2007-Приложение 1 (17), ч. 1.-С. 370.

11. Карпищенко А.И. Динамика глутатионредуктазной активности тканей почек в условиях развития ренгеноконтрастных нефропатий / А.И. Карпищенко, С.И. Глушков, С.Н. Жерегеля, Л.В. Минаева и др. // Вестник Российской Военно-медицинскон академии.- 2007 - Приложение 1 (17), ч. 1С. 370.

12. Минаева JI.B. Динамика изменений концентрации восстановленного глутатиона в тканях почек на фоне развития острой почечной недостаточности вызванной введением ренгеноконтрастных препаратов / Л.В. Минаева, С.Н. Жерегеля, О.О. Ивойлов // Материалы итоговой конференции военно-научного общества слушателей и ординаторов I факультета - СПб: ВМедА, 2007 - С. 9596.

13. Минаева Л.В. Органоспецифические изменения глюкозо-6-фосфатдегидрогеназной активности при формировании ренгеноконтрастных нефропатий / Л.В. Минаева, С.Н. Жерегеля, О.О. Ивойлов // Там же.- С. 94-95.

Формат 60x84/16 Заказ №596

Подписано в печать 24.06,10

Обьем 1 п.л. Тираж 100 экз.

Типография ВМА, 194044, СПб., ул. Академика Лебедева, 6.

 
 

Оглавление диссертации Жерегеля, Сергей Николаевич :: 2010 :: Санкт-Петербург

СПИСОК ИСПОЛЬЗУЕМЫХ СОКРАЩЕНИЙ.

ВВЕДЕНИЕ.

Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1. Особенности фармакокинетики и фармакодинамики РКС.

1.2. Система глутатиона и ее биологическое значение.

Глава 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ.

2.1. Выбор и содержание животных.

2.2. Моделирование интоксикации РКС и её экспериментальная терапия.

2.3. Характеристика использованных фармакологических препаратов.

2.4. Получение образцов тканей для исследований.

2.5. Определение показателей системы глутатиона и продуктов перекисного окисления липидов в эритроцитах и в тканях лабораторных животных и в эритроцитах пациентов.

2.6. Определение биохимических показателей нефротоксичности в сыворотке крови экспериментальных животных.

2.7. Гистологическое исследование ткани почек экспериментальных животных.

2.8. Статистическая обработка результатов.

Глава 3. ОБМЕН ГЛУТАТИОНА И ПРОЦЕССЫ ПЕРЕКИСНОГО ОКИСЛЕНИЯ ЛИПИДОВ В ТКАНЯХ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫХ ЖИВОТНЫХ ПРИ ВВЕДЕНИИ ВЫСОКИХ ДОЗ РЕНТГЕНОКОНТРАСТНЫХ СРЕДСТВ.

3.1. Динамика изменений обмена глутатиона и процессов перекисного окисления липидов в тканях экспериментальных животных при введении высоких доз различных групп рентгеноконтрастных средств.

3.2. Активность ферментов системы глутатиона в тканях печени, почек и эритроцитах лабораторных животных при введении различных групп РКС.

3.3. Концентрация продуктов перекисного окисления липидов в тканях печени, почек и эритроцитах лабораторных животных при введении различных групп РКС.

3.4. Клинические проявления нарушения функции почек у лабораторных животных после введения различных групп РКС.

3.5. Изменения лабораторных показателей у экспериментальных животных при введении различных групп РКС.

3.6. Морфологическая картина тканей почек экспериментальных животных при введении РКС.

Глава 4. СОСТОЯНИЕ СИСТЕМЫ ГЛУТАТИОНА В ТКАНЯХ ЛАБОРАТОРНЫХ ЖИВОТНЫХ И В ЭРИТРОЦИТАХ ПАЦИЕНТОВ ПРИ ВВЕДЕНИИ НЕИОННОГО РКС.

4.1. Общие закономерности обмена глутатиона и процессов перекисного окисления липидов в тканях экспериментальных животных при введении различных доз неионного рентгеноконтрастного препарата.

4.2. Состояние системы глутатиона в тканях лабораторных животных при введении неионного РКС на фоне экспериментального сахарного диабета и коррекции изменений преднизолоном.

4.3. Влияние средств фармакологической коррекции на состояние системы глутатиона в тканях лабораторных животных при введении неионного РКС.

4.4. Математическая модель использования показателей обмена глутатиона для оценки риска развития РКН у экспериментальных животных.

4.5. Динамика изменений системы глутатиона в эритроцитах пациентов при введении неионного РКС в диагностических дозах.

 
 

Введение диссертации по теме "Патологическая физиология", Жерегеля, Сергей Николаевич, автореферат

Актуальность. Рентгеноконтрастная нефропатия (РКН) стала важной клинической проблемой, растущей параллельно с широким распространением диагностических и лечебных процедур с использованием контрастных средств. По данным Американской ассоциации сердца, только в 2003 г. было проведено примерно 1 млн. 414 тыс. коронарных ангиографий и 664 тыс. операций коронарной ангиопластики [54]. Необходимость проведения этих процедур у больных сахарным диабетом (СД) обусловлена высоким риском развития ишемической болезни сердца, эталонным методом своевременной диагностики которой является коронарная ангиография. Рентгеноконтрастная нефропатия (РКН) определяется при фиксировании подъёма уровня креатинина сыворотки крови на 44 мкмоль/л или на 25% от базового уровня в течение 48 часов после проведения процедуры с контрастом при отсутствии альтернативных причин [58]. Уровень креатинина сыворотки сам по себе лишь относительно может отражать почечную функцию, особенно при прогрессировании почечной патологии.

РКН стала третьей по частоте причиной острой почечной недостаточности (ОПН) у госпитализированных пациентов [116]. Она ассоциируется с длительной госпитализацией, необходимостью проведения диализа и высокой смертностью в период пребывания в стационаре и после выписки [69, 111]. РКН обычно имеет преходящий характер: уровень креатинина повышается в течение трёх дней и возвращается к исходному уровню через 10 дней [110]. Распространённость РКН в общей популяции не превышает 2% [81]. В группах высокого риска (пациенты пожилого возраста, с предшествующей почечной патологией, СД, сердечной недостаточностью, гипотензией, анемией, дегидратацией, миеломной болезнью, при применении нестероидных противовоспалительных препаратов) распространённость РКН достигает 20-30% [82, 105]. Систематический анализ публикаций по данной проблеме за период с 1966 г. по январь 2006 г. определил факторы риска, связанные с пациентом (хронические почечные заболевания, СД, сердечная недостаточность, пожилой возраст, анемия, дисфункция левого желудочка), а также не связанные с пациентом (применение высокоосмолярных, ионизированных контрастных препаратов, их вязкость и объём) [118]. В большом рандомизированном исследовании (The Iohexol Cooperative Study) показано, что сочетание почечной недостаточности и СД значительно повышало риск развития ОПН. При одинаковой выраженности предсуществующей почечной патологии риск развития РКН выше у пациентов с СД. В то же время частота развития РКН при исходно нормальной функции почек была одинаковой в обеих группах больных [122]. У пациентов с диабетической нефропатией (ДН) и уровнем креатинина 0,68 г/л частота развития РКН после проведения коронарографии достигала 92% [130]. Особенно высок g риск у больных СД при почечной патологии недиабетического генеза [128]. У пациентов без диабета и азотемии риск развития РКН достаточно низок (2%), он достоверно повышается у лиц с диабетом без почечной патологии (16%) и очень высок при сочетании диабета и азотемии (38%) [102]. Более того, одно из последних исследований показало достоверно частое развитие РКН при проведении коронарографии у лиц с почечной патологией и с преддиабетом (нарушенной гликемией натощак в рамках метаболического синдрома) по сравнению с лицами без такового [127]. Повышенный риск развития РКН при нарушении углеводного обмена тесно сопряжён с его основными патогенетическими механизмами - развитием ишемического поражения почечной ткани (вследствие снижения почечного кровотока) и прямого нефротоксического воздействия при введении контраста [74,89].

Экспериментальные исследования показали, что определенную роль в развитии РКН играет повышенное образование свободных радикалов, оказывающих повреждающее действие на эпителиальные клетки канальцев. В связи с этим гипотетически оправдано применение N-ацетилцистеина и бикарбоната натрия для профилактики РКН, поскольку они способны смягчить эти негативные воздействия. Клинические и экспериментальные исследования доказывают важную роль в патогенезе РКН вида контрастного препарата [74, 122]. При этом чётко продемонстрировано достоверное снижение риска развития РКН при применении низкоосмолярных контрастных препаратов по сравнению с высокоосмолярными у лиц с изолированной почечной патологией или в сочетании с СД [125].

Помимо осмолярности, важное значение в индуцировании РКН имеют гиперхолестеринемия и гиперурикемия, часто выявляемые у больных СД 2 типа. В экспериментальных исследованиях показано, что гиперхолестеринемия способствует РКН за счет снижения продукции вазодилатирующего фактора - оксида азота [56]. Гиперурикемия сопровождается повышенным синтезом свободных радикалов, повышением уровня эндотелина-1, подавлением активности оксида азота [120].

Интерес как к средству профилактики РКН по-прежнему проявляется к ацетилцистеину, поскольку он обладает антиоксидантными свойствами (прямое удаление свободных радикалов и опосредованное через продукцию глутатиона), вазодилатирующими свойствами, предотвращает гибель эндотелиальных клеток [79, 88]. Несмотря на безопасность, простоту применения, дешевизну ацетилцистеина, на сегодняшний день достаточно ограниченны доказательства того, что наряду с адекватной гидратацией организма он может использоваться в качестве стандартного профилактического средства у пациентов с высоким риском развития РКН.

Таким образом, исследование системы глутатиона при введении РКС позволяет более подробно изучить молекулярные механизмы его токсического действия, кумулятивный эффект, а так же биохимические механизмы детоксикации этих соединений.

Цель исследования. Определить вклад изменений обмена глутатиона в механизмы формирования рентгеноконтрастных нефропатий для оптимизации мероприятий по их профилактике, диагностике и лечению.

Для достижения поставленной цели предстояло решить следующие задачи:

- определить динамику (в течение 5 суток) и провести сравнительный анализ изменений обмена глутатиона в различных органах белых беспородных крыс после введения рентгеноконтрастных препаратов омнипак-350 и гипак-76 в дозах 0,5 LD50 и LD50;

- определить динамику морфологических изменений почечной ткани и лабораторных показателей функции почек в тех же условиях у лабораторных животных;

- провести сравнительный анализ морфологических изменений, стандартных лабораторных показателей (концентрация креатинина и мочевины) и изменений обмена глутатиона в условиях формирования экспериментальных рентгеноконтрастных нефропатий у лабораторных животных;

- определить эффект влияния рентгеноконтрастного препарата омнипак-350 в дозе 0,5 LD50 на обмен глутатиона в различных тканях и лабораторные показатели функции почек у животных с экспериментальным сахарным диабетом;

- определить характер влияния представителей различных групп фармакологических препаратов (предшественника синтеза глутатиона -ацетилцистеина, препарата окисленного глутатиона — глутоксима, антигипоксанта - трисана, антиоксидантов мексидола и цитофлавина, дегидрированного аналога гормона коры надпочечников гидрокортизона -преднизолона) на динамику изменений исследуемых биохимических и морфологических показателей в тканях лабораторных животных при использовании неионного рентгеноконтрастного препарата омнипак-350 в дозе 0,5 LD50;

- определить динамику измений обмена глутатиона в эритроцитах пациентов на фоне проведения изолированного рентгеноконтрастного исследования.

Основные положения, выносимые на защиту:

1. Введение рентгеноконтрастных препаратов оказывает выраженное влияние на обмен глутатиона в тканях почек и эритроцитах лабораторных животных в виде сдвигов тиол-дисульфидного равновесия, изменения активности ферментов - глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы, глутатионредуктазы, глутатион-8-трансферазы, глутатионпероксидазы.

2. Изменения обмена глутатиона носят дозозависимый характер и являются диагностически информативными при оценке тяжести рентгеноконтрастной нефропатии.

3. Введение рентгеноконтрастных препаратов на фоне экспериментального сахарного диабета приводит к потенцированию повреждающего действия на систему глутатиона в тканях почек проявляющееся снижением активности глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы и глутатионредуктазы.

4. Выраженность изменений обмена глутатиона в почках животных с экспериментальной рентгеноконтрастной нефропатией на фоне проводимой терапии отражает степень нефропротекторной активности ряда фармакологических препаратов.

Научная новизна. Проведена комплексная оценка обмена глутатиона в тканях лабораторных животных и эритроцитах пациентов при введении различных рентгеноконтрастных препаратов. Экспериментально обоснована возможность использования показателей системы обмена глутатиона в клетках крови в качестве лабораторных тестов для оценки тяжести поражения почек и эффективности лечения рентгеноконтрастных нефропатий.

Реализация результатов исследования. Рекомендации, разработанные на основании полученных в ходе диссертационного исследования данных, используются в научной работе и учебном процессе на кафедре клинической биохимии и лабораторной диагностики Военно-медицинской академии.

Диссертационное исследование выполнено по плану НИР, шифр «Цитотоксичность».

Апробация работы. Результаты работы доложены на итоговой конференции военно-научного общества слушателей и ординаторов 1-го факультета Военно-медицинской академии (Санкт-Петербург, 2007), Всероссийской научно-практической конференции, посвященной 115-летию кафедры клинической биохимии и лабораторной диагностики Военно-медицинской академии им. С.М. Кирова (Санкт-Петербург, 2008), Российской и всеармейской научно-практической конференции «Вопросы нефрологии в практике терапевта и эндокринолога» (Санкт-Петербург, 2008), IV съезд Российского общества биохимиков и молекулярных биологов (Санкт-Петербург, 2008).

Публикации. По теме диссертационного исследования опубликовано 26 печатных работ.

 
 

Заключение диссертационного исследования на тему "Обмен глутатиона в патогенезе развития рентгеноконтрастных нефропатий"

выводы

1. Основными изменениями обмена глутатиона в тканях животных при введении рентгеноконтрастных препаратов в дозе 0,5 LD50 являются достоверное снижение ГР и каталазной активности на 25 — 30% в почках, а также увеличение ГР (на 65%) и ГП (на 18%) активности, снижение каталазной активности (на 40%) и концентрации СГ (в 2,0 раза) в эритроцитах на фоне отсутствия достоверных сдвигов со стороны лабораторных маркеров нарушения функции почек (концентрация креатинина и мочевины).

2. После введенния рентгеноконтрастных препаратов в среднесмертельных дозах на фоне необратимых морфологических изменений в тканях почек (некроз почечной паренхимы) и существенных нарушений их функции (увеличение концентрации мочевины в 1,81 раза и креатинина в 1,5 раза) отмечается достоверное снижение активности Г-6-ФДГ, ГР, каталазы, ГП и ГТ (в 1,8 - 2,6 раза) в тканях почек, а также повышение (р<0,05) концентрации СГ на 23,4% и снижение активности Г-6-ФДГ на 18% в эритроцитах.

3. Введение омнипака-350 животным с экспериментальным сахарным диабетом приводило к возникновению выраженных нарушений обмена глутатиона в тканях почек в виде снижения (р<0,05) активности ГР и Г-6-ФДГ в 1,8 раза по сравнению с показателями контрольной группы.

4. Эффективность фармакологической коррекции проявилась в частичном восстановлении обмена глутатиона в тканях животных, наиболее ярко при использовании препарата антигипоксантного действия — трисана. Его применение приводило к снижению концентрации СГ до уровня физиологической нормы, достоверному увеличению активности ферментов обмена глутатиона в тканях почек: Г-6-ФДГ, ГР, ГТ, ГП (в 1,9 — 2,7) раза, а также к увеличению активности ГП, ГТ, Г-6-ФДГ (в 1,63 - 2,1 раза) в эритроцитах.

5. Между изменениями обмена глутатиона в эритроцитах и тканях почек экспериментальных животных на фоне введения рентгеноконтрастных препаратов существует положительная корреляция: для омнипака-350 в дозе LD50 г = 0,53 (Г-6-ФДГ) и г = 0,69 (ГП), и для гипака-76 в эквивалентной дозе г = 0,52 (Г-6-ФДГ) и г = 0,49 (ГП). Получена математическая модель (уровень значимости р=0,026) позволяющая прогнозировать риск развития РКН у лабораторных животных основанная на определении концентрации СГ и активности Г-6-ФДГ и ГП в эритроцитах.

6. После проведения изолированного рентгеноконтрастного исследования пациентов, не имеющих признаков формирования рентгеноконтрастной нефропатии, основными биохимическими изменениями со стороны обмена глутатиона в эритроцитах явилось уменьшение активности Г-6-ФДГ и ГП (на 46,5% и 35,7%) по сравнению с показателями до введения РКС.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

1. В качестве лабораторных тестов оценки риска развития и степени тяжести рентгеноконтрастных нефропатий у пациентов, подвергающихся диагностическим и лечебным процедурам с использованием контрастных средств, рекомендуется определение в эритроцитах активности Г-6-ФДГ и ГП.

2. Дополнительным методом оценки нефропротекторных свойств фармакологических препаратов для профилактики и лечения РКН является определение показателей обмена глутатиона в тканях экспериментальных животных и в эритроцитах пациентов.

162

 
 

Список использованной литературы по медицине, диссертация 2010 года, Жерегеля, Сергей Николаевич

1. Арчаков А.И. Микросомальное окисление / А.И. Арчаков. — М.: Наука, 1975.-С. 327.

2. Арчаков А.И. Окисление чужеродных соединений и проблемы токсикологии / А.И. Арчаков, И.И. Карузина // Вестн. АМН СССР. -1988. -№ 1.-С. 14-23.

3. Барабой В.А. Перекисное окисление и стресс / В.А. Барабой, И.И. Брехман, В.Г. Голотйн СПб: Наука, 1992. - С. 148.

4. Белоусова А.К. Молекулярные механизмы действия алкилирующих агентов и антибиотиков / А.К. Белоусова // Химиотерапия злокачественных опухолей. М: Медицина, 1977. - С. 61 - 117.

5. Блохин Н.Н. Химиотерапия опухолевых заболеваний / Н.Н. Блохин, Н.И. Переводчикова. М.: Медицина, 1984. - С. 304.

6. Воронина Т.А. Механизм действия и обоснование применения препарата мексидол в неврологии / Т.А. Воронина, Л.Д. Смирнов, И.И. Горяйнова. М.: Институт биохим. физики. - 2002. - С. 15.

7. Гаврилов В.Б. Измерение диеновых конъюгатов в плазме крови по УФ -поглощению гептановых и изопропанольных экстрактов / В.Б. Гаврилов, А.Р. Гаврилова, Н.Ф. Хмара. // Лаб. дело. 1988. - № 2. - С. 60 - 64.

8. Гаджиева С.Ш. Цитодифференцирующие агенты в онкологии / С.Ш. Гаджиева, Е.Р. Полосухина, Т.Г. Николаева и др. // Вопросы онкологии. -2006. Т. 52, № 3. - С. 264-274.

9. Гипоксия: адаптация, патогенез, клиника: рук. для врачей / Под. ред. Ю.Л. Шевченко. СПб: ЭЛБИ, - 2000. - С. 384.

10. Глушков С.И. Нарушения системы глутатиона и их роль, в патогеназе острых интоксикаций ксенобиотиками с различными механизмами токсического действия: Дис. . д-ра. мед. наук: 14.00.20; 03.00.04 / С.И. Глушков; Воен. мед. акад. - СПб, - 2006. - С. 451.

11. Голиков С.Н. Общие механизмы токсического действия / С.Н. Голиков, И.В. Саноцкий, Л.А. Тиунов. Л.: Медицина. - 1986. - С. 279.

12. Еропкин М. Культуры клеток как модельная система' исследования токсичности и скрининга цитопротекторных препаратов / М.Ю.Еропкин, Е.М.Еропкина. СПб: МОРСАР АВ, - 2003. - С. 239.

13. Зозуля Ю.А. Свободнорадикальное окисление и антиоксидантная защита при патологии головного, мозга / Ю.А. Зозуля, В.А. Барабой, Д.А. Сутковой. -М.: Знание,-2000. -С. 344.

14. Ивницкий Ю.Ю. Янтарная кислота в системе средств метаболической коррекции функционального состояния и резистентности организма / Ю.Ю. Ивницкий, А.И. Головко, Г.А. Софронов. СПб: Воен.- мед. акад., 1998.-С. 82.

15. Карпищенко А.И. Методика определения показателей системы глутатиона в лимфоцитах человека / А.И. Карпищенко, В.В. Смирнов, С.И. Глушков и др. // Клиническая лабораторная диагностика. 1997. -№ 12.-С. 41-42.

16. Карпищенко А.И. Система белков теплового шока БТШ 70 у крыс при отравлении дихлорэтаном / А.И. Карпищенко, С.А. Куценко, С.И. Глушков. // Токсикологический вестник. 1999. - № 6. - С. 8 - 12.

17. Кашуро В.А. Изучение влияния антигипоксантов на систему глутатиона при остром отравлении циклофосфаном / В.А. Кашуро, С.И. Глушков,

18. Т.М. Новикова. // Медико-биологические проблемы противолучевой и противохимической защиты. СПб: Фолиант, - 2004. - С. 349-350.

19. Кашуро В.А. Система глутатиона и перекисное окисление липидов в патогенезе острых тяжелых интоксикаций циклофосфаном: Дис. . канд. мед. наук: 14.00.20, 03.00.04 / В.А. Кашуро; Воен.- мед. акад. СПб, 2003.-С. 209.

20. Колесниченко Л.С. Глутатионтрасферазы / Л.С. Колесниченко, В.И. Кулинский. // Успехи соврем, биологии. 1989. - Т. 107, Вып. 2. - С. 179-194.

21. Корнеев А.А. Роль глутатиона в формировании метаболического ответа клетки на гипоксию / А.А. Корнеев, И.А. Комиссарова. // Известия РАН. 1993.-№4.-С. 542-549.

22. Королюк М.А. Метод определения активности каталазы / М.А. Королюк. //Лаб. дело. 1988.-М? 1.-С. 16-19.

23. Кулинский В.И. Биологическая роль глутатиона / В.И. Кулинский, Л.С. Колесниченко // Успехи соврем, биологии. 1990. — Т. 110, Вып. 1 (4). -С. 20-37.

24. Кулинский В.И. Обмен глутатиона / В.И. Кулинский, Л.С. Колесниченко. // Успехи биол. химии. 1990. - Т. 31. - С. 157 - 179.

25. Кулинский В.И. Структура, свойства, биологическая роль и регуляция глутатионпероксидазы / В.И.Кулинский, Л.С.Колесниченко. // Успехи совр. биол.- 1993.- Т.113, Вып.1. С.107- 122.

26. Кулинский В.И. Ферменты метаболизма глутатиона и их регуляция в норме и при усиленной пролиферации / В.И. Кулинский, Л.С. Колесниченко. // Всесоюзный симпозиум по медицинской энзимологии: тез. докл. М.: б.и., 1986. - С. 197 - 198.

27. Лабори А. Регуляция обменных процессов (теоретический, экспериментальный, фармакологический и терапевтический аспекты) / А. Лабори. М.: Медицина, 1970. - С. 384.

28. Ленинджер А. Основы биохимии / А. Ленинджер; Под ред. В.А. Энгельгардта. М.: Мир, 1985.- Т. 1. - С. 367.

29. Новиков B.C. Физиология экстремальных состояний / B.C. Новиков, В.В. Горанчук, Е.Б. Шустов. СПб: Наука, - 1998. - С. 247.

30. Пальчикова Н.А. Влияние перфторана на чувствительность животных к диабетогенному действию аллоксана и течение экспериментального диабета / Н.А. Пальчикова, О.И. Кузьминова, В.Г. Селятицкая. // Бюллетень СО РАМН. 2006. - № 3. - С. 113 - 116.

31. Пальчикова Н.А. Количественная оценка чувствительности экспериментальных животных к диабетогенному действию аллоксана / Н.А. Пальчикова, В.Г. Селятицкая, Ю.П. Шорин. // Пробл. Эндокринол. -1987.-№4.-С. 65-68.

32. Пастушенков Л.В. Растения антигипоксанты (фитотерапия) / В.Л. Пастушенков, Е.Е. Лесиовская. - СПб: Хим.-фарм. ин-т, — 1991. — С. 96.

33. Петрович Ю.А. Глутатионпероксидазы в системе антиоксидантной зашиты мембран / Ю.А. Петрович, Д.В. Гуткин. // Патол. физиология и эксперим. терапия. 1981. - № 5. - С. 76 - 78.

34. Саркисов Д.С. Микроскопическая техника: Руководство / Под ред. Д.С. Саркисова и Ю.Л. Перова. М.: Медицина, - 1996. - С. 544.

35. Северин Е.С. Биохимия / Е.С. Северин. М.: ГЭОТАР - Медиа, - 2005. -С. 622- 623.

36. Сергеев П.В. Исследования действия рентгеноконтрастных веществ на дыхательную цепь митохондрий печени крыс / Н.В. Образцов, А.Б. Тимофеев, Э.М. Халилов. // Фармакол. и токсикол. 1977. - № 5. - С. 591 -595.

37. Сергеев П.В. Исследования действия рентгеноконтрастных веществ на скорость окисления НАДФН и НАДН микросомами печени крыс / В.Н. Болыиев, Э.М. Халилов. // Фармакол. и токсикол. 1977. — № 4. — С. 445 -446.

38. Сергеев П.В. Контрастные средства / К.Н. Свиридов, Н.Л. Шиманский. -М.: Медицина, 1993. С. 184 - 190.

39. Соколовский В.В. Тиолдисульфидное соотношение крови как показатель состояния неспецифической резистентности организма: Учебное пособие / В.В. Соколовский. СПб: б.и., 1996. - С. 30

40. Тиунов Л.А. Механизмы естественной детоксикации и антиоксидантной защиты / Л.А. Тиунов // Вестник РАМН. 1995. - № 3. - С. 9-13.

41. Тиунов Л.А. Роль глутатиона в процессах детоксикации / Л.А. Тиунов, В.А. Иванова // Вест. АМН СССР. 1988. - № 1. - С. 62-69.

42. Турпаев К.Т. Роль фактора транскрипции АР-1 в интеграции внутриклеточных сигнальных систем / К.Т. Турпаев // Молекулярная биология. 2006.- Т. 40, № 6. - С. 945-961.

43. Узбеков М.Г. Действие глутатиона на энергетический обмен мозга при антенатальной гипоксии / М.Г. Узбеков, И.К. Карпачевская // Патол. физиол. и эксперим. терапия. 1991. - № 5. - С. 11-13.

44. Циклофофан. Сборник статей / Под ред. С. А. Гиллера. Рига: Зинатне, 1965.-С. 270.

45. Шанин В.Ю. Клиническая патофизиология / В.Ю. Шанин. — СПб: Специальная Литература, 1998. — С. 569.

46. Шиманский Н.Л. Исследования взаимодействия рентгеноконтрастных веществ с эритроцитами / И.В. Злоказова, А.У. Степанятц. // Хим. -фарм. журн. 1978. - № 6. - С. 38 - 42.

47. Юнкеров В.И. Математико-статистическая обработка данных медицинских исследований / В.И. Юнкеров, С.Г. Григорьев. — СПб: ВМедА, — 2005. С. 82.

48. American Heart Association. Heart Disease and Stroke Statistics. 2006. Update.-P. 35.

49. Anderson B.B. Glutathione reductase activity and its relationship to pyri-doxinephosphate activity in G-6-PD deficiency / B.B. Anderson, J.E. Clements, G.M. Perry. // Eur. J. Haematol. 1987. - Vol. 38, № 1. - P. 12 -20.

50. Andrade L. Hypercholesterolemia aggravates radiocontrast nephrotoxicity: protective role of arginine / L. Andrade, S.B. Campos, A.C. Seguro. // Kidney Int.-1998.-Vol.53.-P. 1736-1742.

51. Arai M. Mitochondrial phospholipid hydroperoxide glutathione peroxidase plays a major role in preventing oxidative injury to cells / M. Arai, H. Imai, T. Koumura // J. Biol. Chem. 1999. - Vol. 274, № 8. - P. 4924 - 4933.

52. Barrett B.J. Preventing nephropathy induced by contrast medium / В J. Barrett, P.S. Parfrey. // N. Engl. J. Med. 2006. - Vol. 354. - P. 379 - 386.

53. Bellomo G. Modulation of cellular glutathione and protein thiol status during quinone metabolism / G. Bellomo, H. Thor, S. Orrenius // Meth. Enzymol. -1990. Vol. 186. - P. 627 - 635.

54. Bettmann M.A. Adverse events with radiographic contrast agents: results of the SCVIR contrast agents registry / M.A. Bettmann, T. Heeren, A. Greenfield et al. // Radiology. 1997. - Vol. 203. - P. 611 - 620.

55. Boveris A. Superoxyde dismutase / A. Boveris, E. Cadenas ed by L. Oberly. — CRS Press, Boca Rraton, Fl., 1983. P. 15 - 30.

56. Burgman P.W. Possible role of localized protein denaturation in the mechanism of induction of thermotolerance by heat, sodium-arsenite and ethanol / P.W. Burgman, H.H. Kampinga, A.W.T. Konings. // Int. J. Hypertherm. 1993. - Vol. 9. - P. 151 - 162.

57. Carlberg I. Glutathione reductase / I. Carlberg, B. Mannervik. // Meth. Enzymol. 1985. - Vol. 113. - P. 484 - 490.

58. Chang S.W. Hypoxia increases plasma glutathione disulfide in rats / S.W. Chang, T.J. Stelzner, J.V. Weil. // Lung. 1989. - Vol. 167, № 5. - P. 269 -276.

59. Chen Q. Activation of the growth arrest and DNA damage-inducible gene gadd 153 by nephrotoxic cysteine conjugates and dithiothreitol / Q. Chen, K.Yu, J. Stevens. // J. Biol. Chem. 1992. - Vol. 267, № 12. - P. 8207 -8212.

60. Clauss W. Renal tolerance of iotrolan 280. A meta-analysis of 14 double-blind studies / W. Clauss, J. Dinger, C. Meissner. // Eur. Radiol. 1995. - № 5. -Suppl. 2.-P. 79-84.

61. Dangas G. Contrast-induced nephropathy after percutaneous coronary interventions in relation to chronic kidney disease and hemodynamic variables / Dangas G., Iakovou I., Nikolsky E., et al. // Am. J. Cardiol. 2005. - Vol. 95.-P. 13 - 19.

62. Davies K.J. Protein damage and degradation by oxygen radicals. 1. General aspects / K.J. Davies. // J. Biol. Chem. 1987. - Vol. 262, № 17. - P. 9865 -9901.

63. Davies K.J. Protein damage and degradation by oxygen radicals. Modification of secondary and tertiary structure / K.J. Davies, M.E. Delsignore. // J. Biol. Chem. 1987. - Vol. 262, № 17. - P. 9908 - 9913.

64. Davies K.J. Protein damage and degradation by oxygen radicals. Modification of aminoacids / K.J. Davies, M.E. Delsignore, W. Lin. // J. Biol. Chem. -1987. Vol. 262, № 17. - P. 9902 - 9907.

65. Dean R.T. Hypothesis: a damaging role in aging for reactive protein oxidative products / R.T.Dean, J.Gebiki, S.Gieseg. // Mutat. Res. 1992. - Vol. 275. -P. 387- 393.

66. Detrenis S. Lights and shadows on the pathogenesis of contrast-induced nephropathy: state of the art / S. Detrenis, M. Meschi, S. Musini et al. // Nephrol Dial Transplant 2005. - Vol. 20. - P. 1542 - 1550.

67. Diaz-Sandoval L.I. Acetylcysteine to prevent angiography-related renal tissue injury / L.I. Diaz-Sandoval, B.D. Kosowsky, D.W. Losordo. // Am. J. Cardiol. -2002.-Vol. 89.-P. 536.

68. Droge W. Function of glutathione and glutathione disulfide in immunology and immunopathology / W. Droge, K. Schulze-Osthoff, S. Mihm. // FASEB J.- 1994.-Vol. 8.-P. 1131 1138.

69. Ellman G.L. Tissue sulfhydryl groups / G.L. Ellman. // Arch. Biochem. Biophys. 1959. - Vol. 82, № 1. - P. 70 - 77.

70. Ficol A. Glucose-6-phosphate dehydrogenase plays a crucial role in protection from redox-stress-induced apoptosis / A. Ficol, F. Paglialungal, L. Cigliano et al. // Cell Deat and Diff. 2004. - Vol. 11, № 8 - P. 823 - 831.

71. Fishbane S. N-acetylcysteine in the prevention of radiocontrast-induced nephropathy / S. Fishbane, J.H. Durham, K. Marzo et al. // J. Am. Soc. Nephrol. 2004. - Vol. 15. - P. 251 - 260.

72. Fleetwood G. The effects of radiographic contrast media on myocardial contractility and coronary resistance / G. Fleetwood, M.A. Beetmann, J.C. Gordon. // Invest. Radiol. 1990. - Vol. 25. - P. 254 - 260.

73. Gleeson T.G. Contrast-induced nephropathy / T.G. Gleeson, S. Bulugahapitiya. // Am. J. Roentgenol. 2004. - Vol. 183. - P. 1673 - 1689.

74. Goldenberg I. Nephropathy induced by contrast media: pathogenesis, risk factors and preventive strategies / I. Goldenberg, S. Matetzky. // CMAJ — 2005.-Vol. 172.-P. 1461 1471.

75. Goldstein E. Interaction of Ligandin with Radiographic contrast media / E. Goldstein, I. Arias. // Invest. Radiol. 1976. - Vol. 11. - P. 594 - 597.

76. Grant R.L. Experimental models and general mechanisms of toxicity / R.L. Grant, J.D. Acosta, M.A. Mith. // Comprehensive Toxicology on CD-ROM. Elsevier Sci. 1997. - Vol. 1 - P. 567 - 568.

77. Habig W.H. Assay for differentiation of glutathione S-transferases / W.H. Habig, W.B. Jakoby. // Meth. Enzymol. 1981. - Vol. 77. - P. 398 - 405.

78. Harman D. Free-radical theory of aging: inversing the functional life span / D. Harman // Ann. NY Acad. Sci. 1994. - Vol. 717. -P. 1 - 15.

79. Heyman S.N. N-acetylcysteine ameliorates renal microcirculation: studies in rats / S.N. Heyman, M. Goldfarb, A. Shina et al. // Kidney Int. 2003. - Vol. 63.-P. 634-641.

80. Heyman S.N. Regional alterations in renal haemodynamics and oxygenation: a role in contrast medium-induced nephropathy / S.N. Heyman, C. Rosenberger, S. Rosen. // Nephrol. Dial. Transplant. Suppl. 2005. - Vol. 20. -P.6-11.

81. Huthwohl B. The effect of triiodinate radiographic contrast media on microsomal drug metabolism / B. Huthwohl, H. Hohage, E. Truber. // Schmiedeberges Arch. Pharmacol. 1975. - Vol. 285. - Supp. 1. 1. - P. 79.

82. Isaacs J.T. Cyclic AMP-dependent control of rat hepatic glutathione disulfi-de-sulfhydryl ratio / J.T. Isaacs, F. Binkley. // Biochem. Biophys. Acta. -1977.-Vol. 498, № l.-P. 29-38.

83. Juma F. D.First pass hepatic metabolism of cyclophosphamide / F.D.Juma, H J.Rogers, et al. // Brit. J. Clin. Pharmacol. 1979. -Vol. 7. - P. 422.

84. Kanekal S. Metabolism of cyclophosphamide by lipoxygenases / S. Kanekal, J.P. Kehrer. // Drug Metab. Dispos. 1994. - №1. - P.74 - 78.

85. Katzberg R.W. Renal rennin and haemodynamic responses to selective renal artery catheterization and angiography / R.W. Katzberg, T.W. Morris, F.A. Burgener et al. // Invest. Radiol. 1977. - Vol. 12. - P. 381 - 388.

86. Kehrer J. R Cellular reducing equivalents and oxidative stress / J.R. Kehrer, L.G. Lund. // Free Radical. Biol. Med. 1994. - Vol.17, № 1. - P. 65 - 75.

87. Kendal B.E. Iodixanol in intra-arterial cerebral digital subtraction angiography: comparison with iohexol / B.E. Kendal, A. Sheppich, J.O. Nossen et al. // Neuroradiology. 1995. - Vol. 35. - P. 512.

88. Ketterer B. The structure and maltiple function of glutathione transferases / B. Ketterer, P. Beale, D.J. Meyer. // Biochem. Soc. Transact. 1982. - Vol. 10, №2.-P. 82-83.

89. Kinscherf R. Effect of glutathione depletion and oral N-acetyl-cysteine treatment on CD4+ and CD8+ cells / R. Kinscherf, T. Fischbach, S. Mihm. // FASEB J. 1994.-Vol. 8.-P. 448-451.

90. Kornberg A. Glucose-6-phosphate dehydrogenase 6-phosphogluconic dehydrogenase / A. Kornberg, B.L. Horecker, P.Z. Smyrniot. // Meth.

91. Enzymol. 1955. - Vol. 1. - P. 323 - 327.

92. Lash L.H. Transport of glutathione by renal basal-lateral membrane vesicles / L.H. Lash, D.P. Jones. // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1983. - Vol. 112. — № l.-P. 55-60.

93. Lasser E. Letter to the Editor / Invest. Radiol. 1975. - Vol. 10. - P. 79 - 80.

94. Lautin E.M. Radiocontrast-associated renal dysfunction: incidence and risk factors / E.M. Lautin, N.J. Freeman, A.H. Schoenfeld et al. // Am. J. Roentgenol. 1991.-Vol. 157.-P. 49-58.

95. Lawrence R.A. Species, tissue and subcellular distribution of non Se-dependent glutathione peroxidase activity / R.A. Lawrence, R.F. Burk. // J. Nutr. 1978. - Vol.108. - №2. -P. 211- 215.

96. Lichtman M. Acidification of plasma by the red cell due to radiographic contrast / M. Lichtman, M. Murphy, A. Whitbecr et al. // Circulation 1975. -Vol. 52.-P. 943-950.

97. Maeder M. Contrast nephropathy; review focusing on prevention / M. Maeder, M. Klein, T. Fehr et al. // J. Am. Coll. Cardiol. 2004. - Vol. 44. - P. 1763 -1771.

98. Maiorino M. Phospholipid hydroperoxide glutathione peroxidase / M. Maiorino, C. Gregolin, F. Ursini. // Meth. Enzymol. 1990. - Vol. 186. - P. 448-457.

99. Mannervick B. Role of cytoplasmic thioltransferase in cellular regulation bytthyol-disulfide interchange / B. Mannervick, K. Axelsson. // Biochem. J. -1980.-Vol. 190, № l.-P. 125- 130.

100. Mannervik B. Glutathione: chemical, biochemical and medical aspects / B. Mannervik, J. Carlberg, K. Larson. // Pt. A: Coenzymes and cofactors. N.Y.: Wiley, 1989. - Vol. 3 - P. 693

101. Mannervik B. Thioltransferases / B. Mannervik // Enzymatic basis of detoxicatio. Orlanto: Acad. Press, 1980. - Vol. 2. - P. 229 - 244.

102. Marenzi G. Contrast-induced nephropathy in patients undergoing primary angioplasty for acute myocardial infarction / G. Marenzi, G. Lauri, E. Assanelli et al. // J. Am. Coll. Cardiol. 2004. - Vol. 44. - P. 1780 - 1785.

103. McCullough P.A. Acute renal failure after coronary intervention: incidence, risk factors, and relationship to mortality / P.A. McCullough, R. Wolyn, L.L. Rocher et al. // Am. J. Med. 1997. - Vol. 103. - P: 368 - 375.

104. Meister A. Glutathione / A. Meister, M.E. Anderson. // Ann. Rev. Biochem. -1983.-Vol. 52.-P. 711 -760.

105. Meister A. Glutathione and related glutamyl compounds: biosynthesis and utilization / A. Meister, S.S. Tate. // Ann. Rev. Biochem. 1976. - Vol. 45, № 3.-P. 559-564.

106. Meister A. Methods for the selective modification of glutathione metabolism and study of glutathione transport / A. Meister. // Meth. Enzymol. 1985. -Vol. 113.-P. 571 -589.

107. Morin J.E. Thiol: protein disulfide exchange enzymes / J.E. Morin, J.E. Dixon. // Meth. Enzymol. 1985. - Vol. 113. - P. 541 - 547.

108. Nash K. Hospital-acquired renal insufficiency / K. Nash, A. Hafeez, S. Hou. // Am. J. Kidney Dis. 2002. - Vol. 39. - P. 930 - 936.

109. Pacifici R.E. Protein, lipid and DNA repair system in oxidative stress: free radical theory of aging revisited / R.E. Pacifici, KJ.A. Davies. // Gerontology. 1991.-Vol. 37.-P. 166- 180.

110. Pannu N. Prophylaxis strategies for contrast-induced nephropathy / N. Pannu, N. Wiebe, M. Tonelli. // JAMA 2006. - Vol. 295. - P. 2765 - 2779.

111. Papa S. Reactive oxygen species, mitochondria, apoptosis and aging / S. Papa, V.P. Skulachev. // Mol. Cell. Biochem. 1997. - Vol. 174. - P. 305 - 319.

112. Perl stein T.S. Uric acid and the state of the intrarenal renin-angiotensin system in humans / T.S. Perlstein, O. Gumieniak, P.N. Hopkins et al. // Kidney Int. -2004. Vol. 66. - P. 1465 - 1470.

113. Peterson G.L. Simplification of protein assay method of Lowry et al which is more generally applicable / G.L. Peterson // Anal. Biochem. - 1977. - Vol. 83,2.-P. 346-356.

114. Rudnick M.R. Nephrotoxicity of ionic and nonionic contrast media in 1196 patients: a randomized trail / M.R. Rudnick, S. Goldfarb, L. Wexler et al. // The Iohexol Cooperative Study. 1995. - Vol. 47. - P. 254 - 261.

115. Schrader R. Trombogenic potential of non-ionic contrast media — fact or fiction? / Schrader R. // Eur. J. Radiol. 1996. - Vol. 23. - Supp. 1. - P. 10 -13.

116. Singh S.N. Effect of high altitude (7,620 m) exposure on glutathione and related metabolism in rats / S.N. Singh, P. Vats, M.M. Kumria. // Eur. J. Appl. Physiol. 2001. - Vol. 84. - № 3. - P. 233 - 237.

117. Smith D.C. Three new low osmolality contrast agents: a comparative study of patient discomfort / D.C. Smith, P.Y. Yahiku, M.D. Maloney et al. // A. J. N. R. 1988. - № 8. - P. 137 - 139.

118. The cytotoxics handbook / Ed. by: M.C.Allwood, P.Wright. Oxford: Red-cliffe med. Press. - 1990. - P. 239.

119. Toprak O. Metabolic syndrome as a risk factor for contrast-induced nephropathy in non-diabetic elderly patients with renal impairment / O. Toprak, M. Cirit, M. Yesil et al.// Kidney Blood Press Res. 2006. - Vol. 29. -P.2-9.

120. Toprak O. Risk factors contrast-induced nephropathy / O. Toprak, M. Cirit. // Kidney Blood Press Res. 2006. - Vol. 29. - P. 84 - 93.

121. Uchiyama M. Determination of malonaldehyde precursor in tissues by thiobarbituric acid test / M. Uchiyama, M. Michara. // Anal. Biochem. 1978. -Vol. 86.-№.1.-P. 271 -278.

122. Weinrauch L.A. Coronary angiography and acute renal failure in diabetic azotemic nephropathy / L.A. Weinrauch, R.W. Healy, O.S. Leland et al. // Ann. Intern. Med. 1977. - Vol. 86. - P. 56 - 59.

123. WHO Handbook for reporting results of cancer treatment // WHO Offset Publication NO. Geneva. - 1985. P. 48.

124. Wilson A.J. Effects of non-ionic contrast media on the blood-brain barrier.

125. Osmolality vs.chemo-toxicity / AJ. Wilson, C.A. Evill, M.R. Sage. // Invest. Radiol. 1991. - Vol. 26. - P. 1091 - 1094.

126. Yuan Z.M. Glutathione conjugation with phosphoramide mustard and cyclophosphamide. A mechanistic study using tandem mass spectrometry / Z.M. Yuan, P.B. Smith, R.B. Brundrett et al. // Drug Metab. Dispos. 1991. -№ 3. - P. 625-629.

127. Ziegler D.M. Role of reversible oxidation-reduction of enzyme thiols-disulfides in metabolic regulation / D.M. Ziegler. // Annual. Rev. Biochem. -1985. Vol. 54. - P. 305 - 329.

128. Изменения концентрации восстановленного глутатиона в тканях различных органов белых беспородных крыс при введении ионного РКС в суточной дозе 16 г/кг (ммоль/г ткани или мкмоль/г гемоглобина)

129. Группа исследования Сроки исследования, сутки Исследуемый орган1. Эритроциты Почки Печень

130. Контроль 6,37 ±0,31 7,31 ±0,78 12,46 ±1,42

131. Гипак LD50 1 7,58 ±0,76 6,56 ± 0,77 8,59 ± 0,243 6,85 ± 0,88 6,62 ± 0,24 9,88 ± 1,045 7,58 ± 0,47 5,50 ±0,58 14,21 ±0,73достоверность отличия р<0,05 по сравнению с группой контроля