Автореферат и диссертация по медицине (14.00.02) на тему:Морфофункциональная характеристика брыжеечных лимфатических узлов при экспериментальном иммунодефиците и перитоните

ДИССЕРТАЦИЯ
Морфофункциональная характеристика брыжеечных лимфатических узлов при экспериментальном иммунодефиците и перитоните - диссертация, тема по медицине
АВТОРЕФЕРАТ
Морфофункциональная характеристика брыжеечных лимфатических узлов при экспериментальном иммунодефиците и перитоните - тема автореферата по медицине
Подосенкова, Татьяна Валерьевна Москва 2006 г.
Ученая степень
кандидата медицинских наук
ВАК РФ
14.00.02
 
 

Автореферат диссертации по медицине на тему Морфофункциональная характеристика брыжеечных лимфатических узлов при экспериментальном иммунодефиците и перитоните

на правах рукописи

ПОДОСЁНКОВА ТАТЬЯНА ВАЛЕРЬЕВНА

МОРФОФУНКЦИОНАЛЬНАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА БРЫЖЕЕЧНЫХ ЛИМФАТИЧЕСКИХ УЗЛОВ ПРИ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОМ ИММУНОДЕФИЦИТЕ И ПЕРИТОНИТЕ

14.00.02 анатомия человека

АВТОРЕФЕРАТ диссертации на соискание ученой степени кандидата медицинских наук

Москва-2006

Работа выполнена в Государственном образовательном учреждении высшего профессионального образования «Ивановская государственная медицинская академия Федерального агентства по здравоохранению и социальному разв|ггию»

Научный руководитель доктор медицинских наук, профессор Катаев Станислав Иванович

Официальные оппоненты' член-корреспондент Российской Академии медицинских наук, |

доктор медицинских наук, профессор ' Баженов Дмитрий Васильевич

доктор медицинских наук, профессор Шевченко Вадим Павлович

Ведущая организация. Российская медицинская академия последипломного образования

Защита диссертации состоится «_»_2006 г. в _часов на

заседании диссертационного совета Д 212 203 10 при Российском университете дружбы народов по адресу; 117198, г .Москва, ул. Миклухо-Маклая, д.8

С диссертацией можно ознакомиться в Научной библиотеке Российского университета дружбы народов

Автореферат разослан «___»_200_г.

Ученый секретарь диссертационного совета, доктор медицинских наук,

профессор Н.В Ермакова

1 12 55541

Актуальность научного исследования.

По данным отечественных (Семёнова И.Б., Семёнов Б.Ф., 1997) и зарубежных исследований (Nicander L., Nafstad P., Landsverk T., Engebretsen R.H.,1991) в настоящее время до 30% больных, страдающих разными заболеваниями, нуждаются в назначении иммуномодулирующей терапии. Синдром вторичной иммунной недостаточности значительно осложняет течение многих заболеваний. Нарушение нормального функционирования иммунной системы не только определяет более тяжелое, затяжное течение болезней, но и способствует генерализации воспалительных процессов снижению или отсутствию клинического эффекта от базисной терапии, увеличению летальности

Синдром вторичной иммунной недостаточности наблюдается и при перитоните. Летальность при этой патологии, к сожалению, весьма высока и по данным некоторых авторов превышает 60% (Байчоров Э.Х. с соавт., 2001).

Снижение эффективности традиционной терапии выдвинуло на первый план необходимость разработки способов иммунокоррекции, принципов и методов её проведения при иммунной недостаточности (Петров Р.В., Хаитов P.M., 1999). Включение иммуномодулирующих препаратов в комплексную терапию заболеваний, протекающих с признаками вторичной иммунной недостаточности, позволило добиться высокого клинического эффекта (Сепиашвили Р.И., Славянская Т.А.,1999).

Активное влияние на реологические свойства лимфы, создание достаточной терапевтической концентрации лекарственных средств в очаге воспаления и региональных лимфатических узлах (ЛУ) является перспективным направлением современной терапии острых воспалительных заболеваний (Буянов В.М., Алексеев A.A.,1990; Ярема И.В., Ковпаков C.B., Шишло В .К,,1993; Дейл М.М., Формен Дж.К., 1998; Евдокимов В.В., Ярема В.И. с соавт., 2003). Эндолимфатическое введение иммуномодуляторов является мало изученным, особенно, с точки зрения воздействия его на морфологию ткани ЛУ. Следует учесть и тот факт, что современные эндолимфатические методы подразумевают прямое воздействие лекарственных препаратов на ткань ЛУ.

Поэтому в настоящее время актуальной проблемой является поиск комплекса адекватных и в то же время простых методов оценки морфофункционального состояния ЛУ при иммунодефицитных состояниях, перитоните и при эндолимфатическом введении иммуномодуляторов.

Цель и задачи исследования.

Целью данной работы явилось изучение морфологии брыжеечных лимфатических узлов крыс при экспериментальном иммунодефиците и перитоните на фоне эндолимфатического введения полиоксидония и цефпирамида.

РОС. НАЦИОНАЛЬНАЯ j БИБЛИОТЕКА , j

!

' ■" ' «J» M

В соответствии с целью были поставлены следующие задачи исследования:

1. Выявить структурно-функциональные изменения брыжеечных лимфатических узлов при экспериментальном иммунодефицитном состоянии, вызванном введением преднизолона.

2. Исследовать морфофункциональные преобразования брыжеечных лимфатических узлов при эндолимфатической иммуностимуляции полиоксидонием на фоне иммунодефицита.

3. Выявить структурно-функциональные изменения брыжеечных лимфатических узлов при экспериментальном перитоните.

4. Исследовать при экспериментальном перитоните влияние полиоксидония и цефпирамида при их эндолимфатическом введении на морфофункциональное состояние брыжеечных лимфатических узлов.

5. Определить морфологические критерии для оценки действия указанных лекарственных препаратов на брыжеечные лимфатические узлы при эндолимфатическом способе их введении.

Научная новизна исследования.

1. Впервые изучено прямое иммуномодулирующее влияние полиоксидония при его эндолимфатическом введении на ткань брыжеечных лимфатических узлов крыс на фоне иммунодефицита.

2. Впервые с помощью морфологических и морфометрических исследований выявлены структурно-функциональные преобразования брыжеечных лимфатических узлов и элементов микроциркуляторного русла при эндолимфатическом введении полиоксидония и цефпирамида.

3. Впервые выявлено иммуностимулирующее влияние полиоксидония, введённого эндолимфатическим способом при перитоните.

4. Впервые определены морфологические критерии для оценки воздействия полиоксидония и цефпирамида при эндолимфатическом способе их введения.

Практическая ценность работы.

Модель иммунодефицитного состояния в комплексе с эндолимфатическим введением полиоксидония как иммуномодулятора создаёт предпосылки для проведения новых исследований в области изучения морфологии ткани ЛУ при иммунодефицитах иного генеза.

Выявленный комплекс морфологических критериев позволяет достаточно быстро оценить некоторые иммунологические функции лимфатических узлов без применения дорогостоящих методов.

Положительные результаты по применению полиоксидония при его эндолимфатическом введении позволяют утверждать об эффективности этого способа в целях коррекции вторичных иммунодефицитов в условиях клиники.

Метод эндолимфатического введения цефпирамида можно рекомендовать для рассмотрения к применению в клинике для лечения воспалительных заболеваний.

Представленные в работе сведения по структуре и функции брыжеечных ЛУ в условиях иммунодефицита и при перитоните, влияние на течение этих процессов полиоксидония и цефпирамида, вводимых эндолимфатически, могут быть использованы в учебном процессе при преподавании соответствующих разделов анатомии, патофизиологии, иммунологии, фармакологии.

Положения, выносимые на защиту.

1. Экспериментальный иммунодефицит, вызванный введением лреднизолона, приводит к изменению иммунологической функции брыжеечных лимфатических узлов.

2. Эндолимфатическое введение полиоксидония на фоне экспериментального иммунодефицита приводит к изменению

/показателей пролиферативной и миграционной активности брыжеечных лимфатических узлов.

3. Экспериментальный перитонит приводит к морфофункциональным изменениям элементов гемомикроциркуляторного русла и синусов брыжеечных лимфатических узлов.

4. Эндолимфатическое введение полиоксидония и цефпирамида на фоне экспериментального перитонита оказывает влияние на структурные образования брыжеечных лимфатических узлов и их иммунокомпетентность.

5. Между оценочными параметрами функциональной активности брыжеечных лимфатических узлов при иммунодефиците и перитоните имеется определённая взаимосвязь, изменяющаяся на фоне эндолимфатического введения полиоксидония и цефпирамида.

Апробация работы.

Основные положения диссертации доложены на 7 Российском Национальном конгрессе «Человек и лекарство» (Москва, 2000); конгрессе лимфологов России (Москва, 2000); I Съезде Лимфологов России (Москва, 2001); всероссийской научной конференции «Молодые женщины в науке» (Иваново, 2004); международной научной конференции «Проблемы лимфологии и интерстициального массопереноса» (Новосибирск, 2004); межкафедральной конференции ГОУ ВПО ИвГМА Минздрава России (2005). По материалам исследования опубликовано 10 работ.

Объем и структура диссертации.

Диссертация изложена на 140 страницах машинописного текста и состоит из введения, обзора литературы, характеристики экспериментального материала и методов исследования, результатов исследования, их обсуждения и выводов. Список использованной литературы состоит из 178 источников, из

них 110 отечественных и 68 иностранных. Работа иллюстрирована 45 рисунками и 15 таблицами.

Материал и методы исследования.

Материалом для исследования явились 78 половозрелых нелинейных крыс (самцов), массой 180-200 грамм. Животные были разбиты на пять групп. Первая группа (6 интактных крыс) - группа сравнения (ГС). Вторая группа (18 крыс) - животные с воспроизведением модели иммунодефицита посредством введения преднизолона (Машковский М.Д., 2000) в дозе 4мг/кг (I серия). Сроки забора материала через 7, 15, 30 суток после введения преднизолона. Третья группа (18 крыс) - животные, которым эндолимфатически вводили полиоксидоний на фоне иммунодефицита, обусловленного введением преднизолона (II серия). Сроки забора материала через 7, 15, 30 суток после введения преднизолона. Полиоксидоний вводился пятикратно в дозе 0,15 мг/кг в объеме 1 мл через сутки после введения преднизолона (Некрасов A.B., Пучкова Н.Г., 2002). Четвёртая группа (18 крыс) — животные с созданием модели перитонита по методике А.М.Карсекина в модификации Н.А.Петровой (III серия). Сроки забора материала через 1, 2, 3 сутки после операции. Пятая группа (18 крыс) - животные, которым эндолимфатически вводились полиоксидоний и цефпирамид на фоне перитонита (IV серия). Антибиотик вводился в дозе 15 мг/кг в объеме 1 мл, один раз в сутки (Машковский М.Д., 2000). Через 2 часа через тот же катетер вводили полиоксидоний в дозе 0,15 мг/кг в объеме 1 мл. Эндолимфатическую терапию начинали спустя 12 часов после операции. Сроки забора материала через 1,2,3 сутки после операции.

В работе был использован комплекс адекватных морфофункциональных методов исследования.

1. Световая микроскопия. Для исследования забирали брыжеечные ЛУ. Биологический материал фиксировали в 10% растворе формалина (для приготовления парафиновых срезов толщиной 5-7 мкм), которые окрашивались гематоксилин-эозином и азур-эозином.

2. Электронная микроскопия. Для морфологических исследований использовали 3 метода сканирующей электронной микроскопии: коррозионных, нативных и импрегнированных препаратов.

Для получения коррозионных препаратов гемомикроциркуляторного русла ЛУ, после перфузии сосудистого русла гепаринизированной средой 199, инъецировали предполимеризованный метилметакрилат с добавлением 2% перекиси бензоила и 2% диметиланилина. После затвердения смолы, ЛУ иссекали и подвергали мацерации в 30% растворе NaOH при температуре 60°С. Затем препарат отмывали, высушивали на воздухе и напыляли серебром

Для приготовления нативных препаратов биологический материал фиксировался при перфузии 2,5% раствором глютаральдегида на среде 199, обрабатывался 1% раствором осмиевой кислоты и обезвоживался в батарее спиртов. Затем образцы замораживали в жидком азоте и раскалывали. После оттаивания в 96% этаноле процесс обезвоживания продолжался, препараты

высушивали путем перехода через критическую точку в С02 и напыляли золотом.

Для приготовления импрегнированных препаратов ЛУ фиксировались по предыдущей методике, отмывались в течение 1 мин 5% раствором глюкозы. Затем они последовательно перфузировались 0,15% раствором AgN03, 5% раствором глюкозы, 3% СоВг и 1% NHBr, после чего высушивались и напылялись золотом по описанной выше методике. Изучение коррозионных, нативных и импрегнированных препаратов проводили с использованием сканирующих электронных микроскопов Phillips PSEM-500x, Hitachi S-405A со съемкой на коммерческую широко- и узкоформатную пленку.

3. Метод криофрактографии. В качестве консерванта был использован 2,5% раствор глютарового альдегида, из которого препарат помещали в криопротектант (25% раствор глицерина). После этого образец погружался во фреон-22, охлаждаемый жидким азотом и находившийся при нормальном атмосферном давлении на грани плавления-замерзания (температура - 160°С). Затем проводилось скалывание. Сколотые поверхности напыляли последовательно платиной и углем. Отделение реплики от тканевого материала производилось путем растворения последнего в растворителе (25%-й раствор хромпика). После этого осуществлялось изучение полученных реплик с использованием сканирующего электронного микроскопа.

4. Метод морфометрии. Вычисление объемной плотности лимфоидных элементов ЛУ и объемной плотности кавеол эндотелия лимфатических синусов проводили по методу Г.Г. Автандилова (1972,1973).

Вычисление индекса митотической активности (И мит.). На одном срезе учитывали от 3 до 6 герминтативных центров, в которых подсчитывали количество лимфоидных клеток с фигурами митозов. Отношение количества митозов к количеству исследованных вторичных фолликулов представляет собой индекс митотической активности данного узла (Антропова Ю.Г., 1991). Формула для вычисления И мит.:

И мит.= N митозов : N вторичных фолликулов

Вычисление индекса миграционной активности (И митр.) заключается в вычислении отношения суммарного количества лимфоцитов, находящихся в просвете посткапиллярных венул (ПКВ) и лимфоцитов, адгезированных к стенке ПКВ к количеству исследованных ПКВ на данном срезе. Формула для вычисления Имигр.:

И мигр.= (N своблимф. + N адгсзирлимф.): N ПКВ

Плотность ГМЦР и лимфатических синусов ЛУ определяли проецируя негативы на стандартную квадратно-узловую сетку и обводя контуры кровеносных микрососудов и лимфатических синусов разных зон ЛУ.

5. Лабораторные исследования крови. Общее количество лейкоцитов в периферической крови определялось по стандартной методике с использованием камеры Горяева. Для вычисления относительного количества лимфоцитов готовился мазок крови с докраской по

Романовскому-Гимза. В мазке вычислялось процентное содержание лимфоцитов (Ылф%) по отношению к количеству лейкоцитов, далее вычислялось абсолютное количество лимфоцитов.

Экспресс метод для определения степени активации иммунной системы является модификацией метода Хаммера (Hammer Z., 1981 Индекс активации высчитывался по формуле:

И.акт.= (Лб + JIa : 5) ; Лм Лб - количество лимфобластов, Ла - количество активированных к бласттрансформации лимфоцитов, Лм - количество малых лимфоцитов.

При активации иммунной системы в крови появляются бластные и активированные формы лимфоцитов, которые влияют на показатели индекса активации иммунной системы. Следовательно, по изменению индекса активации в эксперименте, по сравнению с контролем, констатируется факт стимуляции или депрессии иммунной системы.

6. Статистическая обработка результатов. Обработка полученных цифровых данных выполнена по программе на микро-ЭВМ «Электроника МК-61» и при помощи пакетов прикладных программ «Microsoft Excel 7.0». Для каждого показателя вычисляли среднюю арифметическую и ее ошибку; достоверность отличий оценивали по t-критерию Стьюдента. При помощи корреляционного анализа определяли характер и степень связи между показателями, отражающими морфофункциональное состояние ЛУ. В работе использован коэффициент корреляции рангов Спирмена (Лакин Г.Ф.,1990).

Результаты исследования.

Воздействие преднизолоном на организм животных вызывает значительное уменьшение количества лейкоцитов в целом, и в большей степени это касается иммунокомпетентных клеток-лимфоцитов. Их количество на третьи сутки эксперимента достигает 35% от общего количества лейкоцитов, а в группе сравнения-73%. Общее количество лейкоцитов к 30-ым суткам возрастает, хотя еще достоверно ниже результатов группы сравнения на 12%.

Абсолютное количество лимфоцитов крови на седьмые сутки эксперимента на 66% ниже результатов контрольной группы. На 15-е сутки происходит ещё большее уменьшение абсолютного количества лимфоцитов. К концу эксперимента этот показатель возрастает, но остаётся ниже результатов группы сравнения на 54%.

Применение эндолимфатической иммуностимуляции полиоксидонием на фоне воздействия преднизолоном дает эффект увеличения темпа восстановительных процессов, причем в данном случае это касается не столько общего количества лейкоцитов, сколько относительного и абсолютного количества лимфоцитов, которое уже к 30 суткам отличается от результатов группы сравнения не более чем на 14 % . Общее количество лейкоцитов в этот срок несколько выше контрольных величин.

При воздействии предиизолоном наблюдается кратковременное снижение значений индекса активации, но к 30-ым суткам его показатели превышают контрольные на 86%.

Воздействие полиоксидонием приводит на седьмые сутки к повышению индекса активации на 108%. На 15-е и 30-е сутки происходит снижение И.акт до контрольных величин (табл.1).

Таблица 1.

Показатели лейкоцитарного и лимфоцитарного состава периферической крови крыс при создании модели иммунодефицита.

Экспериментальные серии Время забора материала Лейкоциты общ Ьх109/л Лимфоциты (относ)% Лимфоциты абс. пхЮ'/л И.акт

ГС 6,54 ± 0,32 73,75 ± 3,61 4,82 ± 0,26 0,123±0,005

I 7 сутки 15 сутки 30 сутки 4,74 ±0,19* 4,64 ±0,18* 5,76 ±0,21* 35,44 ± 1,52* 32,75 ± 1,63* 38,36 ± 1,07* 1,68 ±0,08* 1,52 ±0,07* 2,21 ±0,11* 0,112 ± 0,004* 0,135 ± 0,004* 0,230 ± 0,008*

II 7 сутки 15 сутки 30 сутки 5,13 ±0,15* 5,76 ± 0,26* 6,59 ±0,12 34,89 ± 1,21* 60,06 ± 3,07* 56,14 ±2,38* 2,79 ±0,58* 3,46 ± 0,38* 3,70 ±0,16* 0,256 ± 0,009* 0,175 ±0,006* 0,133 ±0,005

Примечание- ГС - группа сравнения, I серия - животные с моделью иммунодефицита, II серия - животные с моделью иммунодефицита и последующим введением полиоксидония, * - различия с 1руппой сравнения статистически достоверны (р<0,005).

Морфометрический анализ выявил обеднение лимфоидными элементами брыжеечных ЛУ. Результаты исследования показали, что на 7-е сутки после моделирования иммунодепрессии отмечалось снижение показателей в отношении всех лимфоидных элементов ЛУ почти в два раза по сравнению с контрольными величинами. Но наибольшим изменениям подвергаются плазматические клетки в мозговых тяжах. Их количество на 7-е сутки уменьшается на 80% по сравнению с числом в группе сравнения, что свидетельствует о снижении гуморальной формы иммунного ответа. К концу эксперимента объёмная плотность плазмоцигов становится на 48% ниже контрольных величин (табл.2).

Объёмная плотность лимфобластов В-зависимой зоны к 30-суткам возрастает на 35% по сравнению с данными группы сравнения.

Динамика восстановления количественных показателей, характеризующих лимфоидные элементы ЛУ, во времени положительная, но полного восстановления их, за исключением лимфобластов Т-зависимой зоны к 30-ым суткам нет.

Эндолимфатическое введение полиоксидония показало повышение количества лимфоцитов и лимфобластов кортекса и в конце эксперимента эти показатели на 5% и 17% соответственно больше результатов в группе

сравнения Объёмная плотность плазмоцитов в мозговых тяжах на 7-е сутки была на 60% больше по сравнению с данными животных I серии и на 4% ниже по отношению животных ГС (табл.3).

Таблица 2.

Объёмная плотность лимфоидных элементов

различных зон брыжеечных лимфатических узлов при иммунодефиците.

Зоны ЛУ Клеточные элементы ГС Уу

I

7суг. 15 сут. 30 сут

Кортекс с лимфатическими фолликулами Лф 63,66±3,31 32,42 ±1,21* 33,13±1,34* 42,35±2,35*

Лб 20,21 ±1,02 13,09 ±0,59* 14,27±0,56* 27,45±1,12*

Т-зависимая зона Лф 71,62*2,83 41,11 ±2,18* 46,25±2,59* 55,33±2,74*

Пл 15,76±0,76 7ДЗ ± 0,34* 11,00±0,53* 13,77±0,52*

Лб 12,44±0,51 9,10 ±0,57* 13,12±0,42 12.13±0,63

Мозговые тяжи Лф 31,07±1,03 15,21 ±0,78* 18,19±0,86* 22,72±1,19*

Пл 30,19±1,23 6,18 ±0,39* 8,72 ±0,47* 15,83±0,71*

Примечание Уу - объемная плотность лимфоидных элементов, ГС - группа сравнения, 1 серия - животные с моделью иммунодепрессии, * - статистически значимые различия (р<0,005) с группой сравнения. Лф-лимфоциты, Лб-лимфобласты, Пл-плазмоциты

Таблица 3.

Объёмная плотность лимфоидных элементов различных зон брыжеечных лимфатических узлов при иммунодефиците с _эндолимфатическим введением полиоксидония._

Зоны ЛУ Клеточные элементы ГС Уу

II

7 сут. | 15 сут. | 30 сут.

Кортекс с лимфатическими фолликулами Лф 63,66 ±3,31 32,50±1,42* 41,82*2,21* 67,32±3,43

Лб 20,21 ± 1,02 17,01 ±0,83* 25,31±1,21* 32,69±1,37*

Т- зависимой зоны Лф 71,62 ±2,83 36,05±1,28* 45,24±2,41* 69,25±3,25

Пл 15,76 ±0,76 6,46 ± 0,35* 11,23±0,54* 15,43 ±0,77

Лб 12,44 ±0,51 7,33 ± 0,46* 16,98±0,86* 14,92 ±0,62

Мозговые тяжи Лф 31,07 ±1,03 21,13±1,11* 26,43±1,17* 36,43±1,67*

Пл 30,19 ±1,23 15,25±0,76* 27,67±1,18 31,53±1,38

Примечание Уу - объёмная плотность лимфоидных элементов; ГС - группа сравнения; II серия - животные с моделью иммунодепрессии и последующим введением полиоксидония, * - статистически значимые различия (р<0,005) с группой сравнения Лф-лимфоциты, Лб-лимфобласты, Пл-плазмоциты

Объёмная плотность лимфоцитов и плазмоцитов Т-зависимой зоны возвращается к контрольным величинам. Это соответствует литературным данным, т.к. полиоксидоний в условиях ¡п ум) обладает выраженной способностью стимулировать гуморальный иммунный ответ, в эксперименте он

усиливает антителообразование в 5-10 раз (Р.В.Петров, Р.М.Хаитов, A.B. Некрасов, 2000).

Количество пролиферативно-активных клеток брыжеечных лимфатических узлов на 7-е сутки после введения преднизолона было снижено почти в 2 раза. К 30-ым суткам этот показатель повышается, но не достигает результатов ГС, оставаясь на 37% ниже. После эндолимфатического введения полиоксидония индекс митоза возрастал и на 30-е сутки был на 25% больше, чем у животных I серии.

На 7-е сутки индекс миграции у животных I серии был на 69% ниже показателей группы сравнения. При эндолимфатической иммуностимуляции полиоксидонием этот показатель был на 12 % ниже результатов группы сравнения (табл.4).

Таблица 4.

Миграционная и митотическая активность клеток брыжеечных ЛУ при

иммунодефиците.

Эксперименталь- Время забора И. мит. И. мигр

ные серии материала

ГС 14Д6± 0,71 2,46 ±0,11

7 сутки 7,41±0,36* 0,76 ±0,03*

I 15 сутки 8,12±0,41* 0,99 ±0,04*

30 сутки 8,99±0,48* 1,25 ±0,06*

7 сутки 10,33±0,53* 1,42 ± 0,07*

II 15 сутки 11,23±0,61* 2,09 ± 0,09*

30 сутки 12,13±0,68* 2,23 ± 0,12

Примечание. ГС - группа сравнения, I серия - животные с моделью иммунодефицита, II серия - животные с моделью иммунодефицита и последующим введением полиоксидония; * - различия с группой сравнения статистически достоверны (р<0,005).

У животных I серии экспериментов выявлено шесть статистически достоверных корреляций между исследуемыми параметрами (рис.1). При иммунодефиците наблюдалось угнетение иммунологических функций ЛУ, сопровождающееся снижением интенсивности иммуноцитопоэтической функции, в крови это проявлялось в уменьшении количества активированных и бластных форм. Индекс активации характеризует иммунную систему как самокоррегирующуюся, самонастраивающуюся. Его повышение в крови совпадает с увеличением объемной плотности лимфоцитов в ЛУ. И, наоборот, снижение указанных показателей в Л У и в крови, особенно снижение индекса активации, позволяет судить об угнетении иммунной системы

У животных II серии сохраняется положительная корреляционная связь между И. акт. и Лф ЛУ. И более того возникают ряды взаимосвязанных параметров. Так появилась группа "Лф кр,- И. мит. - Ь", в которой показатели изменяются параллельно (положительная корреляционная связь).

Рис. 1. Схема корреляционных связей между параметрами,

характеризующими морфофункциональное состояние брыжеечных ЛУ у крыс с моделью иммунодефицита (А) и эндолимфатическим введением полиоксидония на фоне иммунодефицита (В). Примечание: — ■ — ■ отрицательная корреляционная связь, ——— положительная корреляционная связь И акт - индекс активации, И. мит - индекс митоза, И. мигр - индекс миграции Лф. ЛУ -лимфоциты лимфатического узла,, Ь - общее количество лейкоцитов крови, Лф кр -лимфоциты крови, Пл - плазмоциты.

Это говорит о том, что при повышении митотической активности увеличивается количество лейкоциюв и абсолютное число лимфоцитов крови. Кроме этого отмечена положительная корреляционная связь между И. мит. и Пл, И.акт. и Лф ЛУ имеют отрицательные корреляционные связи со всеми показателями предыдущей группы.

На 1-е сутки существенных изменений относительной плотности синусов не происходило. На 2-е сутки развития перитонита происходит статистически достоверное повышение относительной плотности синусов брыжеечных ЛУ (табл.5). Это обусловлено главным образом расширением маргинального синуса, тогда как внутриорганные синусы сдавлены отечной жидкостью. На 3-й сутки эксперимента относительная плотность маргинального синуса в 2,7 раза превышала контрольные величины, в отношении промежуточных и воротного синусов была соответственно в 1,3 и 1,1 раза меньше по сравнению с ГС что, по-видимому, обусловлено отеком паренхимы ЛУ и сдавливанием путей внутриорганной циркуляции лимфы.

К концу первых суток после эндолимфатической терапии относительная плотность маргинального и воротного синусов превышает контрольные величины, в то же время относительная плотность промежуточного синуса была несколько ниже результатов группы сравнения. В последующие дни проведения эксперимента относительная плотность синусов у IV группы животных приближалась к результатам группы сравнения.

Таблица 5.

Относительная плотность синусов брыжеечных ЛУ при перитоните и _последующем введением полиоксидония и цефпирамида._

Экспериментальные серии Время забора материала Относительная плотность лимфомикроциркуляторного русла разных зон ЛУ, в %%

Маргинальный синус Промежуточный синус Воротный синус

ГС 3,3±0,11 5,1 ±0,25 4,0±0Д2

III 1 сутки 3,8±0,27* 33 ±0,23* 3,9±0,35*

2 сутки 19,4±1,41* 4,6±0,57* 3,7±0,48*

3 сутки 9,2±0,79* 3,8±0,44* 3,6 ±0,44»

1У 1 сутки 4,3±0,22* 4,8±0,21* 4,5±0,19*

2 сутки 3,8±0,18* 4,9±0,17* 4,3*0,22*

3 сутки 3,4±0,14* 5,2±0ДЗ* 4,2±0,18*

Примечание ГС - группа сравнения, III серия - животные с моделью перитонита, IV серия -животные с моделью перитонита и последующим введением полиоксидония и цефпирамида; * - статистически значимые различия (р<0,005) с группой сравнения

Таблица б.

Относительная плотность ГМЦР брыжеечных ЛУ при перитоните.

Экспериментальные серии Время забора материала Относительная плотность ГМЦР разных зон лимфоузла, в %%

Корковое вещество Мозговое вещество

ГС 8,4±1,15 5,8±0,54

III 1 сутки 23,7+2,65* 18,5±1,23*

2 сутки 19,5±2,36* 17,3±0,87*

3 сутки 9,7±0,63* 7,6±0,38*

IV 1 сутки 17,6±2,45* 12.5il.34*

2 сутки 14,7±1,63* 9,8±0,98*

3 сутки 9,1±1,13* 6,1 ±0,67*

Примечание: ГС - группа сравнения, III серия - животные с моделью воспалительной реакции в брюшной полости, IV серия - животные с моделью воспалительной реакции в брюшной полости и последующим введением полиоксидония и цефпирамида; * -статистически значимые различия (р<0,005) с группой сравнения.

Через 24 часа от начала перитонита в брыжеечных ЛУ отмечалась гипергидратация паренхимы органа, дилятация кровеносных сосудов. Относительная плотность ГМЦР коры превышала в 4 раза контрольные величины, а ГМЦР мозгового вещества в 3 раза (табл.6).

В последующие 2-е и 3-й сутки эксперимента показатель относительной плотности ГМЦР коры и мозгового вещества несколько снижался, но все еще статистически достоверно превышал показатель ГС.

Эндолимфатическое введение полиоксидония и цефпирамида приводило к постепенному снижению относительной плотности ГМЦР коры и мозгового вещества и по истечению 3-их суток эти показатели лишь на 8% и 5% соответственно превышали результаты в ГС (табл.6).

И мигр.

____1_2 3

|тс И III серия ИIV серия ] сутки

Рис.2. Индекс миграции брыжеечных ЛУ при перитоните.

Примечание По оси абсцисс - время забора материала; по оси ординат - количество пролиферативно-активных клеток (И мит), ГС-группа сравнения, III серия - животные с моделью перитонита, IV серия - животные с моделью перитонита и последующим введением полиоксидония; * - различия с группой сравнения статистически достоверны (р<0,005).

На 1-ые сутки после эндолимфатического введения полиоксидония миграционная активность была на 25% больше, чем у животных III серии (рис.2). На 2-ые и 3-й сутки индекс митоза у животных III серии резко снижался и был на 71% и 85% соответственно ниже результатов группы сравнения.

На 3-й сутки после эндолимфатической иммунотерапии число пролиферативно-активных клеток брыжеечных лимфатических узлов на 4% превосходило показатели в группе сравнения, и на 87% было больше по сравнению с животными III серии (рис.3).

И. миг

1 2 3

¡■ГС ВШсерия И1УсерйГ| суши

Рис.3. Индекс митоза брыжеечных ЛУ при перитоните

Примечание: По оси абсцисс - время забора материала; по оси ординат - количество пролифераггивно-активных клеток (И. мит), ГС-группа сравнения, III серия - животные с моделью перитонита, IV серия - животные с моделью перитонита и последующим введением полиоксидония; * - различия с группой сравнения статистически достоверны (р<0,0»5)

Рис.4. Схема корреляционных связей между параметрами, характеризующими морфофункциональное состояние брыжеечных ЛУ у крыс с моделью перитонита (А) и эндолимфэтическим введением полиоксидония и цефпирамида на фоне перитонита (В). Примечание' — • — • отрицательная корреляционная связь, ——— положительная корреляционная связь

Иакт - индекс активации, И мит - индекс митоза, И мигр - индекс миграции , I, - общее количество лейкоцитов крови, Лф кр - лимфоциты крови, Уук- объемная плотность кавеол эндотелия лимфатических синусов.

У животных III серии экспериментов возникают положительные корреляционные связи между И мит. и И. акт., а также между И мигр. и И. акт., т.е. снижение этих показателей идвт параллельно, что свидетельствует об угнетении иммунологической функции брыжеечных ЛУ. У животных с эндолимфатическим введением полиоксидония и цефпирамида на фоне перитонита параллельно изменяются И мит., И митр, и Vvk. Положительная корреляция установлена между показателями И. акт, L и Лф кр. ,отрицательная корреляция между показателями И. мит., L и Лф кр., а также И. мигр.Д, и Лф кр., свидетельствующая о снижении воспалительного процесса и восстановлении функций брыжеечных ЛУ (рис. 4).

Выводы.

1. Иммунодефицитное состояние, вызванное введением преднизолона, приводит к угнетению иммунологической функции брыжеечных лимфатических узлов, проявляющееся в снижении количественного соотношения лимфоидных элементов, их пролиферативной и миграционной активности.

2. Эндолимфатическое введение полиоксидония на фоне иммунодефицитного состояния способствует повышению показателей объемной плотности лимфоидных элементов брыжеечных лимфатических узлов, митотической и миграционной активности иммунокомпетентных клеток.

3. Перитонит приводит к угнетению иммунологической активности брыжеечных лимфатических узлов, к увеличению объемной плотности гемомикроциркуляторного русла и лимфатических синусов, к снижению интенсивности трансэндотелиального массопереноса в эндотелиоцитах лимфатических синусов.

4. Эндолимфатическое введение полиоксидония и цефпирамида на фоне перитонита приводит к повышению показателей пролиферативной и миграционной активности иммунокомпетентных клеток, увеличению интенсивности трансэндотелиального массопереноса в эндотелиоцитах лимфатических синусов.

5. Корреляционные взаимосвязи изменений оценочных параметров функциональной активности брыжеечных лимфатических узлов при перитоните и иммунодефиците динамичны. Их выраженность и количество выше на фоне эндолимфатической коррекции полиоксидонием и цефпирамидом.

Практические рекомендации.

Полученные данные по применению полиоксидония при его эндолимфатическом введении позволяют предполагать эффективность этого способа в целях коррекции вторичных иммунодефицитов в условиях клиники.

Применение эндолимфатического введения цефпирамида может быть использовано в клинике для лечения воспалительных заболеваний.

Список работ, опубликованных по теме диссертации.

1. Подосёнкова Т.В. Сравнительный анализ функциональной активности лимфоузла при лимфотропном и эндолимфатическом введении полиоксидония //Конгресс лимфологов России: Тез.докл.-М., 2000. -С.140.

2. Катаев С.И., Подосёнкова Т.В., Кодина Т.В. Пролиферативная и рециркуляционная активность клеток лимфоидной ткани при эндолимфатическом введении полиоксидония// Конгресс лимфологов России: Тез.докл.-М., 2000. - С.213.

3. Подосёнкова Т.В., АндрееваС.А., Т.Л.КолобоваТ.Л. Эндолимфатический метод введения иммуномодуляторов// Человек и лекарство. VIII Российский Национальный конгресс: Тездокл. - М., 2001. - С. 272.

4. Подосёнкова Т.В., ЧерненкоН.В.. Пролиферативная и рециркуляционная активность брыжеечных лимфатических узлов при эндолимфатическом введении полиоксидония при воспалении в брюшной полости// Международный Конгресс Хирургов: Тез. докл. -Петрозаводск, 2002. - С. 148.

5. Подосёнкова Т.В., Сесорова И.С. Функциональная морфология лимфатических узлов при эндолимфатическом введении лекарственных препаратов// Человек и вселенная,2002.- С.-Пб.,-№5.-С.77-79.

6. Подосёнкова Т.В. Влияние эндолимфатического введения полиоксидония на объёмную плотность лимфоидных элементов брыжеечных лимфатических узлов при иммунодепрессии// I Съезд Лимфологов России: Тез. докл. - М., 2003.- С. 40.

7. Подосёнкова Т.В. Экспериментально-морфологическое обоснование эндолимфатической антибиотикотерапии цефпирамидом// Молодые женщины в науке: Тез. докл.-Иваново, 2004,- С.260-261.

8. Кодина Т.В., Подосёнкова Т.В., Катаев С.И. Морфология лимфатических узлов брюшной полости в условиях эксперимента// Проблемы лимфологии и интерстициального массопереноса: Труды ГУ НИИКиЭЛ СО РАМН.- Новосибирск - Т.10.-4.1.- 2004.-С.192-195.

9. Подосёнкова Т.В. Эндолимфатическая коррекция функциональной активности брыжеечных лимфатических узлов полиоксидонием //Молодая наука в классическом Университете: Тез. докл. науч. конф.-Иваново, 2005. - С. 36-37. Ю.Подосёнкова Т.В Сравнительный анализ функциональной активности брыжеечных лимфатических узлов при иммунодефиците и последующем введении полиоксидония// Сборник научных трудов конференции "Актуальные вопросы хирургии и клинической анатомии". Пермь: -2004.-С. 117-119.

Список сокращений.

ГМЦР - Гемомикроциркуляторное русло

ГС - Группа сравнения

И.акт. - Индекс активации иммунной системы

И мит. - Индекс митотической активности

Имигр. - Индекс миграционной активности

Лб - Лимфобласт

ЛУ - Лимфатический узел

Лф - Лимфоциты

ПКВ - Посткапиллярная венула

Пл - Плазмоцит

СЭМ - Сканирующая электронная микроскопия

Уук - Объемная плотность кавеол эндотелия лимфатических синусов

ПОДОСЁНКОВА ТАТЬЯНА ВАЛЕРЬЕВНА

«Морфофункциональная характеристика брыжеечных лимфатических узлов при экспериментальном иммунодефиците и перитоните»

В работе приведены результаты морфофункциональных исследований брыжеечных лимфатических узлов крыс при экспериментальном иммунодефиците и перитоните на фоне эпдолимфптического введения полиоксидония и цефпирамида. Установлено, что эндолимфатическое введение полиоксидония на фоне иммунодефицитного состояния способствует повышению показателей объемной плотности лимфоидных элементов брыжеечных лимфатических узлов, митотической и миграционной активности иммунокомпетентных клеток Так же показано, что эндолимфатическое введение полиоксидония и цефпирамида на фоне перитонота приводит к изменению морфофункционального состояния брыжеечных лимфатических узлов, повышая их иммунологическую функцию. Определены морфологические критерии для оценки результатов действия указанных лекарственных препаратов при их эндолимфатическом введении.

PODOSYONKOVA TATYANA VALERYEVNA

"Morphofunctional characteristic of mesenteric lymphatic nodes in experimental immunodeficiency and peritonitis"

The research represents results of a morphofunctional investigation of rats' mesenteric lymphatic nodes m experimental immunodeficiency and peritonitis on the background of an endolymphatic administration of polioxidonium and cephpiramid In has been astablished that an endolymphatic administration of polioxidonium on the background of the immunodeficiency state contributes to an increase in the number of lymphoid cells of mesenteric lymphatic nodes, in immunocompetent cells' mitotic and migration activity An endolymphatic administration of polioxidonium and cephpiramid on the background of peritonitis has been shown to lead to changes in the morphofunctional condition of mesenteric lymphatic nodes en chancing their immunologic function. The morphofunctional criteria for assessing the effect of the above mentioned medications in their endolymphatic administration have been determined

Подписано в печать 20 11 05

Формат 60x90 1/16 Печать RISO

Усл. печ. л. 1,5 Тираж 100 экз.

Напечатано с готовых оригиналов в ООО Типография «Х- Press» г. Иваново, пр. Ленина, 19.

126338

РНБ Русский фонд

2006-4 28610

 
 

Оглавление диссертации Подосенкова, Татьяна Валерьевна :: 2006 :: Москва

ВВЕДЕНИЕ

ГЛАВА 1. Морфологическое обоснование эндолимфатической иммунотерапии перитонита (обзор литературы).

1.1. Иммунодефицит.

1.2. Роль лимфатической системы в развитие перитонита

1.3. Лекарственное насыщение лимфатической системы.

ГЛАВА 2. Материал и методы исследования

2.1. Световая микроскопия

2.2. Электронная микроскопия

2.3. Метод криофрактографии

2.4. Лабораторные исследования крови.

2.5. Метод морфометрии

2.6. Статистическая обработка результатов

ГЛАВА 3. Результаты собственных исследований.

3.1. Морфофункциональная характеристика брыжеечных лимфатических узлов контрольных крыс.

3.2. Общая реакция животных на экспериментальный иммунодефицит

3.3. Морфология и морфометрия брыжеечных ЛУ при экспериментальном иммунодефиците.

3.4. Общая реакция животных на экспериментальный перитонит.

3.5. Морфология и морфометрия брыжеечных лимфатических узлов при экспериментальном перитоните.

3.6. Корреляционный анализ морфофункциональных изменений брыжеечных лимфатических узлов в зависимости от эндолимфатической иммуностимуляции.

ГЛАВА 4. Обсуждение результатов исследования

ВЫВОДЫ

 
 

Введение диссертации по теме "Анатомия человека", Подосенкова, Татьяна Валерьевна, автореферат

Актуальность научного исследования.

Если при использовании субпатогенных доз возбудителя гнойной инфекции в лимфатические узлы (ЛУ) активизируются процессы иммунной защиты, то введение патогенных доз приводит к ослаблению реакции лимфоузлов на антигенный раздражитель (Ярема И.В., Евдокимов В.В., 2003).

Традиционные методы антибиотикотерапии перитонита становятся малоэффективными из-за низкой концентрации лекарственных препаратов в ЛУ (Ярема И.В., Коробков Е.Е., Уртаев Б.М., 1989; Ярема И.В. с соавт., 1993).

В связи с этим активное влияние на реологические свойства лимфы, создание достаточной терапевтической концентрации антибактериальных средств в очаге воспаления и региональных ЛУ является перспективным направлением современной терапии острых воспалительных заболеваний (Буянов В.М., Алексеев А.А.,1990; Ярема И.В., Ковпаков С.В., Шишло В.К.,1993; Дейл М.М., Формен Дж.К., 1998; Евдокимов В.В., Ярема В.И. с соавт., 2003).

При тяжелых воспалительных процессах микроорганизмы могут даже размножаться в ЛУ, что является одной из причин генерализации инфекционного процесса (Выренков Ю.Е., 1990; Буянов В.М. с соавт., 1991; Выренков Ю.Е., 1993). Лимфатические сосуды не резорбируют содержимое интерстициальных пространств, которые значительно расширяются и сдавливают окружающие ткани. Всё это вызывает ухудшение тканевого газообмена, создаёт питательную среду для микроорганизмов (Полуэктор Л.В., с соавт., 2003).

По данным отечественных и зарубежных исследований, в настоящее время до 30% больных, страдающих разными заболеваниями, нуждаются в назначение иммуномодулирующей терапии. Синдром вторичной иммунной недостаточности, сопровождающийся, как правило, обратимыми нарушениями функционирования иммунной системы, её адаптационных механизмов и других функций, значительно осложняет течение любых заболеваний. Нарушение нормального функционирования иммунной системы не только определяет более тяжелое, затяжное течение любых болезней, но и способствует генерализации воспалительных процессов, развитию осложнений, снижению или отсутствию клинического эффекта от базисной терапии, увеличению летальности (Семёнова И.Б., Семёнов Б.Ф., 1997).

Это выдвинуло на первый план необходимость разработки способов иммунокоррекцци, принципов и методов её проведения при иммунной недостаточности ( Петров Р.В., Хаитов Р.М., 1999).

Включение иммуномодулирующих препаратов в комплексную терапию заболеваний, протекающих с признаками вторичной иммунной недостаточности, позволило добиться высокого клинического эффекта (Сепиашвили Р.И., Славянская Т.А.,1999).

В 1996 году был разработан и внедрён в практику новый синтетический иммунномодулятор полиоксидоний, высокая клиническая эффективность которого показана в комплексной терапии больных с хирургическими и другими заболеваниями (Некрасов А.В., 2002).

Известно, что одно из центральных мест в лимфоидной ткани занимает лимфатический узел, где сосредоточены все основные структурно-функциональные единицы необходимые для осуществления иммунологических реакций. Среди морфологов, иммунологов и практических лимфологов прочно утвердился взгляд, что для поддержания иммунного гомеостаза важнейшими функциями лимфатического узла являются гемопоэтическая (пролиферация и накопление лимфоцитов), иммунопоэтическая (антителообразование), и функция обеспечения рециркулирующего пула лимфоцитов путем миграции через стенки посткапиллярных венул и синусов. Изменение параметров этих функций может явиться адекватным тестом в определении действия лекарственных веществ, непосредственно вводимых в лимфатическое русло.

Возросшее количество иммунодефицитных состояний с одной стороны, и применение методов коррекции этих состояний с другой, ставит перед исследователями очень актуальный на сегодняшний день вопрос о реактивности лимфатической системы в целом и ее важнейшего звена - лимфатического узла, в частности. Следует учесть и тот факт, что современные лимфогенные методы подразумевают прямое воздействие лекарственных препаратов на лимфоидную ткань лимфатического узла. Эндолимфатическое введение антибиотиков и других лекарственных препаратов является перспективным направлением в лимфологии. Эндолимфатическое введение иммуностимуляторов является мало изученным, особенно, с точки зрения воздействия его на морфологию лимфоидной ткани. Поэтому необходимой на сегодняшний день является оценка морфологических изменений лимфатических узлов при эндолимфатическом введении иммуностимуляторов.

Цель и задачи исследования

Цель данной работы - изучение морфологии брыжеечных лимфатических узлов при экспериментальном иммунодефиците и перитоните на фоне эндолимфатического введения полиоксидония и цефпирамида

В соответствии с целью были поставлены следующие основные задачи исследования:

1. Выявить структурно-функциональные изменения брыжеечных лимфатических узлов при экспериментальном иммунодефицитном состоянии, вызванном введением преднизолона.

2. Исследовать морфофункциональные преобразования брыжеечных лимфатических узлов при эндолимфатической иммуностимуляции полиоксидонием на фоне иммунодефицита.

3. Выявить структурно-функциональные изменения брыжеечных лимфатических узлов при экспериментальном перитоните.

4. Исследовать влияние эндолимфатического введения полиоксидония и цефпирамида при экспериментальном перитоните на морфофункциональное состояние брыжеечных лимфатических узлов.

5. Определить морфологические критерии для оценки результатов действия указанных лекарственных препаратов при их эндолимфатическом введении.

Научную новизну исследования можно сформулировать следующим образом:

1. Впервые изучено прямое иммуномодулирующее влияние полиоксидония при его эндолимфатическом введении на ткань брыжеечных лимфатических узлов крыс на фоне иммунодефицита

2. Впервые с помощью морфологических и морфометрических исследований выявлены структурно-функциональные преобразования брыжеечных лимфатических узлов и элементов микроциркуляторного русла при эндолимфатическом введении полиоксидония и цефпирамида.

3. Впервые выявлено иммуностимулирующее влияние полиоксидония, введённого эндолимфатическим способом при перитоните.

4. Впервые определены морфологические критерии для оценки воздействия полиоксидония и цефпирамида при эндолим-фатическом способе их введения.

Практическая ценность работы заключается в следующем:

1. Модель иммунодефицитного состояния в комплексе с эндолимфатическим введением полиоксидония как иммуномодулятора даёт возможность для проведения дальнейших исследований в области изучения морфологии лимфоидной ткани при иммунодефицитах различного генеза.

2. Выявленный комплекс морфологических критериев позволяет достаточно быстро оценить некоторые иммунологические функции лимфатических узлов без применения дорогостоящих методов.

3. Данные по применению полиоксидония при его эндолимфатическом введении позволяют предполагать эффективность этого способа в целях коррекции вторичных иммунодефицитов в условиях клиники.

4. Метод эндолимфатического введения цефпирамида можно рекомендовать для рассмотрения к применению в клинике для лечения воспалительных заболеваний.

Основные положения, выносимые на защиту

1. Экспериментальный иммунодефицит, вызванный введением преднизолона, приводит к изменению морфофункциональных показателей в брыжеечных лимфатических узлах.

2. Эндолимфатическое введение полиоксидония на фоне экспериментального иммунодефицита приводит к изменению показателей пролиферативной и миграционной активности в брыжеечных лимфатических узлах.

3. Экспериментальный перитонит приводит к морфофункциональным изменениям элементов гемомикроциркуляторного русла и синусов брыжеечных лимфатических узлов.

4. Эндолимфатическое введение полиоксидония и цефпирамида на фоне экспериментального перитонита оказывает влияние на структурные образования брыжеечных лимфатических узлов, обеспечивая их иммунокомпетентность.

5. Между оценочными параметрами функциональной активности брыжеечных лимфатических узлов имеется определённая взаимосвязь, изменяющаяся на фоне эндолимфатического введения полиоксидония и цефпирамида.

Апробация работы

Основные положения диссертации доложены на 7 Российском Национальном конгрессе «Человек и лекарство» (Москва, 2000); конгрессе лимфологов России (Москва, 2000); I Съезде Лимфологов России (Москва, 2001); всероссийской научной конференции «Молодые женщины в науке» (Иваново, 2004); международной научной конференции «Проблемы лимфологии и интерстициального массопереноса» (Новосибирск, 2004); межкафедральной конференции ГОУ ВПО ИвГМА Минздрава России (2005).

По материалам исследования опубликовано 10 работ.

 
 

Заключение диссертационного исследования на тему "Морфофункциональная характеристика брыжеечных лимфатических узлов при экспериментальном иммунодефиците и перитоните"

ВЫВОДЫ

1. Иммунодефицитное состояние, вызванное введением преднизолона, приводит к угнетению иммунологической функции брыжеечных лимфатических узлов, проявляющееся в снижении количественного соотношения лимфоидных элементов, их пролиферативной и миграционной активности.

2. Эндолимфатическое введение полиоксидония на фоне иммунодефицитного состояния способствует повышению показателей объемной плотности лимфоидных элементов брыжеечных лимфатических узлов, митотической и миграционной активности иммунокомпетентных клеток.

3. Перитонит приводит к угнетению иммунологической активности брыжеечных лимфатических узлов, к увеличению объемной плотности гемомикроциркуляторного русла и лимфатических синусов, к снижению интенсивности трансэндотелиального массопереноса в эндотелиоцитах лимфатических синусов.

4. Эндолимфатическое введение полиоксидония и цефпирамида на фоне перитонита приводит к повышению показателей пролиферативной и миграционной активности иммунокомпетентных клеток, увеличению интенсивности трансэндотелиального массопереноса в эндотелиоцитах лимфатических синусов.

5. Корреляционные взаимосвязи изменений оценочных параметров функциональной активности брыжеечных лимфатических узлов при перитоните и иммунодефиците динамичны. Их выраженность и количество выше на фоне эндолимфатической коррекции полиоксидонием и цефпирамидом.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

Полученные данные по применению полиоксидония при его эндолимфатическом введении позволяют предполагать эффективность этого способа в целях коррекции вторичных иммунодефицитов в условиях клиники.

Применение эндолимфатического введения цефпирамида может быть использовано в клинике для лечения воспалительных заболеваний.

 
 

Список использованной литературы по медицине, диссертация 2006 года, Подосенкова, Татьяна Валерьевна

1. Абрикосов А.И. Некоторые вопросы патологии раннего процесса// Хирургия.- 1942.-№ 11.-С. 12-14.

2. Абшиева А.Б., Цаглина Н.Е. Эндолимфатическая антибиотикотерапия и иммунокоррекция при острых абсцессах легких // Активные методы лечения хирургической инфекции. -Караганда, 1986.- С.62-65.

3. Автандилов Г.Г. Введение в количественную патологическую морфологию.- М.: «Медицина», 1980.- 213 с.

4. Адо А.А. Проблемы реактивности в патологии.- М.: «Медицина», 1968.- 158 с.

5. Акатов А.К., Зуева B.C. Стафилококки. М.: «Медицина», 1983.256 с.

6. Александер Дж., Гуд Р. А. Иммунология для хирургов. — М.: «Медицина», 1974.- 191 с.

7. Антропова Ю.Г. Функциональная морфология лимфатических узлов при эндолимфатическом введении тактивина. (Экспериментальное исследование). Дисс. к.м.н.- М., 1992.- 137 с. Библиогр. 347 наим.

8. Арутчева А. А., Петраков А. А. Роль адгезивной активности стафилококков в развитии гнойно-септических заболеваний у травматолого-ортопедических больных. // Хирургия. 1991.- № 12.-С.9-12.

9. Ахундов И.Т. Эндолимфатическая терапия и ее влияние на клинику и динамику показателей иммунологической реактивности больных разлитым перитонитом.// Тез.докл. 2-го съезда хирургов Азербайджана. Баку, 1986.- С.181-183.

10. Банин В.В., Караганов Я.Л. Конвекционный механизм периферического лимфообразования. Интерстициальные градиенты и лимфатическая резорбция. // Тез.докл. Всесоюзной конференции «Проблемы функциональной лимфологии». -Новосибирск, 1982.- С.16-18.

11. Белокуров Ю.Н., Гременицкий А.Б., Молодкин В.М. Сепсис. М.: Медицина, 1983.- 128 с.

12. Белоцкий С.М., Карлов В.А. Иммунологические дистрессы в патогенезе сепсиса. / В кн.: II Всесоюзная конференция «Хирургический сепсис». Тула, 1989.- С.14-15.

13. Березов Т.Т., Коровкон Б.Ф. Биологическая химимя. М., «Медицина», 1990,- 528 с.

14. Богодаров М.Ю. Эндолимфатическая антибиотикотерапия и эндолимфатическая иммунокоррекция в комплексном лечении септических состояний. Дисс. к.м.н., М., 1995, 161 с. Библ. 321 наим.

15. Бородин Ю.И., Григорьев В.Н. Лимфатический узел при циркуляторных нарушениях. Новосибирск, «Наука», 1986.- 267 с.

16. Бородин Ю.И. Григорьев В.Н., Летягин А.Ю. и соавт. Функциональная морфология иммунной системы. Новосибирск, Наука, 1987.- 120 с.

17. Бородин Ю.И., Сапин М.Р., Этинген Л.Е., Григорьев В.Н., Труфакин В.А., Шмерлинг М.Д. Общая анатомия лимфатической системы. Новосибирск, «Наука», СО, 1990.- 137 с.

18. Бородин Ю.И., Труфакин В.А., Трясучев П.М. «Региональные особенности клеточного состава различных зон лимфатического узла взрослого человека». Архив анатомии, гистологии, эмбриологии, 1985, № 3.- С.76-78.

19. Бочоришвили В.Г. К дискуссии о сепсисе: по поводу статьи П.Н.Напалкова «Хирургическое понимание сепсиса» в журнале «Хирургия», 1985, № 5. //Хирургия. 1987, № 3.- С.80-82.

20. Буянов В.М., Алексеев А.А. Лимфология эндотоксикоза. М.: Медицина, 1990.- 272с.

21. Буянов В.М., Данилов К.Ю., Радзиховский А.П. Лекарственное насыщение лимфатической системы. Киев, Наукова думка, 1991.134 с.

22. Вылков И.Н. Патология лимфатических узлов. Медицина и физкультура, София, 1980.- 246 с.

23. Выренков Е.Я. Лимфатическая система человека в норме и патологии.// В сб.: Лимфатическая система в норме и патологии. -М., 1967.- С.18-54.

24. Выренков Е.Я. Связи лимфатических сосудов органов.// В сб.: Лимфатическая система в норме и патологии. М., 1967.-С.65-105.

25. Выренков Е.Я. Связи лимфатической системы внутренних органов.// В сб.: Лимфатическая система внутренних органов и ее связи. Иваново, 1955.-С.6-8.

26. Выренков Ю.Е. Актуальные проблемы лимфологии.// Клиническая лимфология./Под ред. Выренкова Ю.Е. -М., 1986.-С.10-17.

27. Выренков Ю.Е. Клиническая лимфология. М., 1986.-170 с.

28. Выренков Ю.Е. Лимфокоррекция в клинике.// Тез. доклада региональной научно-практической конференции по проблемам клинической лимфологии. Андижан, 1990.- 170 с.

29. Выренков Ю.Е. Прямая эндолимфатическая терапия острых воспалительных заболеваний органов брюшной полости. Всероссийская конференция. Новое в лимфологии: Клиника, теория, эксперимент. Москва, 1993.-С.35-36.

30. Выренков Ю.Е., Панченков Р.Т., Щербакова Э.Г., Ярема И.В. и др. Эндолимфатическая терапия острых воспалительных заболеваний органов брюшной полости. В кн.: Актуальные проблемы лимфологии и ангиологии. -М.: Медицина, 1981.-С.27-31.

31. Выренков Ю.Е., Полинов А.В., Вторенко В.И. Прямая управляемая эндолимфатическая антибиотикотерапия в комплексном лечении сепсиса.// Клиническая хирургия, 1988, № З.-С.27-30.

32. Выренков Ю.Е., Шевхужев З.А. Лимфогенная терапия воспалительных заболеваний органов брюшной полости. /Тез. доклада I съезда лимфологов России. Москва, 2003.-С.80.

33. Гублер Е.В. Моделирование заболеваний. М., «Медицина», 1973.-Сс.251.

34. Гуляев А.Е., Кивман Г .Я. Параметры клеточной фармакокинетики цефалоспоринов: взаимодействие и внутриклеточное распределение.// Фармакокинетические исследования при создании и применении лекарственных средств. Каунас, 1987.-С.226-329.

35. Давыдовский И.В. Патологическая анатомия и патогенез болезней человека. М.: Медгиз, 1938, 2-е издание.

36. Давыдовский И.В. Патологическая анатомия и патогенез болезней человека. М.: Медгиз, 1956, т.1, с.549.

37. Дейл М.М., Формен Дж.К. Руководство по иммунофармакологии, Москва, «Медицина», 1998.- 332 с.

38. Джумабаев С.У., Буянов В.М., Данилов К.Ю., Джумабаев Д.У. и др. Экспериментальное и клиническое обоснование лимфотропнойантибиотикотерапии в хирургии.// Клин, хирургия, 1987, № 1, с.14-17.

39. Джумабаев С.У., Файзиев И.Р., Камалов Т.А. Региональная лимфостимуляция и ее клинические возможности. Тез.доклада 1-й Всесоюзной конференции «Клиническая лимфология». М., 1985.-С.142-144.

40. Евдокимов В.В., Уколова Н.Ю., Марченко А.И., Сильманович Н.Н. Новый лимфологический способ иммунокоррекции в абдоминальной хирургии. /Тез. доклада I съезда лимфологов России. Москва, 2003. с.84.

41. Жданов Д.А. Общая анатомия и физиология лимфатической системы. JL: Медгиз, 1952.-С.336.

42. Зербино Д.Д. Функции лимфатической системы в норме и патологии: поиски, решения и проблемы. В кн.: Клиническая лимфология. М., 1986.-С.18-21.

43. Зубков М.Н. Тактика микробиологического обследования больного с подозрением на сепсис.// Методические рекомендации МЗ СССР Главное Управление. -М., 1989.-С. 16.

44. Зуфаров К.А., Тухтаев К.Р. Органы иммунной системы. — Ташкент, 1987.-217 с.

45. Иванова Г.А. Сравнительное изучение активных концентраций некоторых антибиотиков в лимфе периферических сосудов и лимфе грудного протока.// Бюл. экспер. биол. и мед., 1958, т.45, № 6.-С.57-66.

46. Исмаилова Л.И., Керхер Н.О., Ли Ю.С. Современные данные о структуре и функции лимфатических узлов человека и животных.// В сб.: Здравоохранение Таджикистана. 1991, № 6.-С.7-11.

47. Каплин Н.Н., Бертань В.И., Серков В.Ф. Фагоцитарная активность лейкоцитов при сепсисе.// В сб.: иммунологические исследования в клинике и эксперименте. JL, 1981.-С.82-86.

48. Каплин Н.Н., Яковлева A.M., Лысов А.Г. иммунологические и микробиологические критерии экспериментального сепсиса.// В сб.: Иммунологические исследования в клинике и эксперименте. -Л., 1984.-С.85-90.

49. Караганов Я.Л., Миронов А.А., Миронов В.А. Лимфатический узел.// В сб.: Атлас сканирующей электронной микроскопии клеток, тканей и органов. -М., «Медицина», 1987.-С.181-183.

50. Карлов В.А. Направленная иммунокоррекция в комплексном лечении хирургического сепсиса. Дис. д.м.н. М., 1986.- 366 с. Библиогр. 433 наим.

51. Катаев С.И., Подосёнкова Т.В., Кодина Т.В. Пролиферативная и рециркуляционная активность клеток лимфоидной ткани при эндолимфатическом введении полиоксидония./ Сборник материалов конгресса лимфологов России. Москва, 2000.-С. 140.

52. Кивман Г.Я. Вопросы химиотерапии бактериальной инфекции, связанные с внутриклеточной локализацией возбудителя. Обзорная ВНИИМИ.-М., 1983.-C.3-47.

53. Кивман Г.Я., Руден Э.А., Яковлев В.П. Фармакокинетика химиотерапевтических препаратов. М., Медицина, 1982.-С.255.

54. Козаченко Н.В., Оптунов Ю.М., Кожанова Р.Т., Бисмильдин Х.Б. Влияние прямой эндолимфатической терапии на показатели иммунного статуса.// Клин.лимфология: Тез. докл. М.: Подольск, 1985.-С.226.

55. Коротаев Г.М., Шепринский П.Е., Осмопеску К.И. Роль лимфатического коллектора в распространении инфекции при перитоните. Хирургия, 1991, № 5.-С. 19-23.

56. Кулипанов А.Г., Музыченко А.В. и соавт. «Реактивности региональных лимфатических узлов при воспалении в регионе легких». В кн. «Проблемы лимфологии и эндоэкологии», Новосибирск, 1998.-С.162-163.

57. Куприянов В.В., Бородин Ю.И., Караганов Я.А., Выренков Ю.Е. Микролимфология.// Медицина, 1983.-С.288.

58. Ларин Б.А. Пути повышения эффективности ампициллина при гнойно-воспалительных заболеваниях. (Экспериментально-клиническое исследование). Дис. к.м.н., М., 1988, 189 с. Библиогр. 344 наим.

59. Лужников Е.А. Экстренная детоксикация организма при острых экзо- и эндотоксикозах./ Актовая речь./ Москва, 1992.-С.24.

60. Лукина Е.А. Система мононуклеарных фагоцитов и биологические эффекты противовоспалительных цитокинов.// Рос.жур.гастроэнтерологии, гепатологии и колопроктологии. М., 1998, № 5.-С.7-12.

61. Лукьянченко Б.Е. Лимфография. М.: Медицина, 1966.-С.220.

62. Лупа X. Основы гистохимии. М.: Мир, 1980.- 343 с.

63. Малиновский Н.Н., Решетников Е.А., Шипилов Г.Ф., Цибин В.И. Диагностика и лечение сепсиса.// Хирургия. 1992, № 7-8.-С.З-8.

64. Меньшиков В.В. Лабораторные методы исследования в клинике (справочник). М., «Медицина», 1987.- 365 с.

65. Минасян Л.А. Лимфогенные методы в комплексном лечении перитонита. Дис. д.м.н., 1991, 279 с. Библиогр. 319 наим.

66. Монастырская Б.И. О значении лимфоцитов в патологии.// Труды Ленинградского научного общества патологоанатомов. Л., 1975.-С.44-47.

67. Навашин С.М., Фомина И.П., Сазыкин Ю.О. Антибиотики группы аминогликозидов. -М., Медицина, 1977.- 561 с.

68. Овсянко Я.У. Структурные изменения лимфатических узлов при лечении хронического генерализованного туберкулеза лизосомотропной формой изониазида. Автореф. дисс. к.м.н., Новосибирск, 1999.-22 с.

69. Панченков Р.Т., Выренков Ю.Е., Ярема И.В., Щербаков Э.Г. Эндолимфатическая антибиотикотерапия. М., «Медицина», 1984.240 с.

70. Панченков Р.Т., Ярема И.В. Роль лимфатической системы в патогенезе острой почечной недостаточности. Вест. АН СССР, 1979, № 9.-С.69-75.

71. Перельмутер В.М., Гуревич М.Е., Ржевская З.И. Изменение количества посткапиллярных венул в паракортикальной зоне лимфатических узлов при неспецифических воздействиях.// В сб.:

72. Морфология сосудистой системы в норме и патологии. Томск, 1989.-С.18-19.

73. Пермяков Н.К. И.В.Давыдовский и его учение о сепсисе при гнойно-резорбитной лихорадке. Арх. патологии, 1988, т.50, вып. 3.-С.20-24.

74. Петров Р.В. Иммунология. — М., «Медицина», 1982.- 368 с.

75. Петров Р.В., Хаитов P.M., Атауллаханов Р.И. Иммуногенетика и искусственные антигены. М., «Медицина», 1983.- 256 с.

76. Петров Р.В., Хаитов P.M., Некрасов А.В.//Аллергия, астма и клиническая иммунология, 1999, №3.-C.3-6.

77. Петров Р.В., Хаитов P.M., Некрасов А.В.//Иммунология, 2000, №5.-С.24-28.

78. Покровский В.И., Гордиенко С.П., Литвинова В.И. (Под ред.). Иммунология инфекционного процесса. (Руководство для врачей). -М., 1994,- 305 с.

79. Пристайко Я.И. Эндолимфатическое применение антибиотиков при острой абсцедирующей и затяжной пневмониях.// Врач, дело, 1982, № 12.-С.17-19.

80. Романов Ю.А. Биология. Проблемы хронобиологии. М., «Знание», 1989.-217 с.

81. Руфанов И.Г. Общая хирургия. М., 1957.-123с.

82. Савельев B.C., Гологорский В.А., Гельфанд В.Р. Инфекционно-токсический шок при перитоните.// Вест, хирургии, 1987, т. 139, № 8.-С.8-10.

83. Сапин М.Р. Брыжеечные лимфатические узлы как вторая линия иммунной защиты организма. В кн.: «Клиническая лимфология». М., 1986.-С.28-30.

84. Сапин М.Р. О взаимоотношениях иммунной системы с лимфопроводящими путями.// В сб.: Проблемы клинической и экспериментальной лимфологии. Новосибирск, 1992.-С.143-144.

85. Сапин М.Р., Борзюк Э.И. Внеорганные пути транспорта лимфы. М., Медицина, 1982.- 264 с.

86. Сапин М.Р., Юрина Н.А., Этинген JI.E. Лимфатический узел. М., «Медицина», 1978.- 273 с.

87. Саркисов Д.С. Соотношение структурных и функциональных изменений в динамике патологического процесса. — Совр. медицина, 1982.-С.57-62.

88. Светухин A.M. Клиника, диагностика и лечение хирургического сепсиса.// Дисс. д.м.н. М., 1990.- 367 с.

89. Светухин A.M., Карлов В.А., Жуков А.О., Гуцу Т.В., Диковская Е.С. Ключевые вопросы патогенеза сепсиса.// Хирургия. — 1992,- № 5-6.-С.23-29.

90. Семёнова И.Б., Семёнов Б.Ф.//Сборник трудов 1-й Национальной конференции Российской ассоциации аллергологов и иммунологов-М., 1997.-С. 125-136.

91. Симонян К.С. Перитонит. М., «медицина», 1971.- 296 с.

92. Смольянников А.В., Саркисов Д.С. Современное состояние проблемы патогенеза сепсиса.// Арх. патологии, 1982.- № 3.-С.3-13.

93. Соркина А.И. К вопросу об экспериментальном стафилококковом сепсисе.// Хирургия. 1944.- № 8,.-С.29-32.

94. Стручков В.И., Гостищев В.К. Трансфузионная терапия у больных с гнойной хирургической инфекцией.// Хирургия.- 1978.- № 7.-С.118-123.

95. Теодореску Эксарку И. Общая хирургическая агрессология. Пер. с румынского. Бухарест, 1972.-574 с.

96. Хаблин А., О'Гарра А. Анализ интерлейкинов и других подобных им факторов. // В кн.: Лимфоциты./ Под ред. Дж. Клоус. М., «Мир», 1990.-С.310-338.

97. Холодов Л.Е., Яковлев В.П. Клиническая фармакокинетика. М., Медицина, 1985.-С.464.

98. Хотиняи В.Ф., Борщ Ю.Д., Андреев Ю.Л., Каланина Л.А., Громова И.И. Дианмика иммунного статуса больных с полоеоперационным перитонитом при лечении открытым способом.// Хирургия, 1991.-№ 4.-С.111-116.

99. Хрячков В.В., Максимов А.П., Панов А.В. Эндолимфатическая антибиотикотерапия в неотложной хирургии.// Актуальные вопросы реконструктивной и восстановительной хирургии. Тез.докладов 4-й итоговой научной сессии. Иркутск, 1986.-С.303-304.

100. Шапошников Ю.Г., Решетников Е.А., Ионесян-Зверькова Б.И. Развитие и течение раневой инфекции и общая иммунологическая реактивность организма.//Воен-мед. журнал, 1974.- № 7.-С.23-25.

101. Шапашников Ю.Г., Табатадзе К.Г., Жукова О.В., Кондратьева И.Е., Филянин A.M., Рачков Ю.Г. Заживление ран в зависимости от конституционного иммунитета. Хирургия, 1992,- № 7.- С.23-27.

102. Шишло В.К., Миронов А.А. Лимфо- и гемомикроциркуляторное русло лимфатического узла по данным сканирующей электронной микроскопии.// Арх. анатомии, гистологии и эмбриологии, 1990.- № 11.-С.35-43.

103. Ярема И.В., Евдокимов В.В. Экспериментальное обоснование эффективности лимфологических методов в лечении распространённого перитонита./Тез. доклада I съезда лимфологов России, М,- 2003. -С.26.

104. Ярема И.В., Евдокимов В.В., и др. Эндолимфатическая антиоксидантная терапия в лечении паралитической кишечной непроходимости при перитоните. /Тез. доклада I съезда лимфологов России. М.- 2003.-С.48.

105. Ярема И.В., Фильчев М.И., Депутович С.А. и др. Эндолимфатическая антикоагулянтная терапия в комплексном лечении перитонита. В кн.: Современные методы детоксикации. Аниджан, 1988.-С. 130-131.

106. Atkins E. Pathogenesis of fever. Phisiol. Rev., 40, 1960, p.520-646.

107. Baker H.J. The laboratory rat. Biology a deseases. Vol.1. — New-York, Acad.Pres., 1979, 340p.

108. Belisle C., Sainte-Marie G. A modified silver impregnation technique for the observation of thick sections of lymph node perfused with colloidal carbon.// Biotech.Histochem. 1991, v.66, № 3, p. 145-153.

109. Belisle C., Sainte-Marie G. Blood vascular network of the rat lymph node: tridimensional studies by light and scanning electron microscopy.// Am.J.Anat. 1990, v.189, #2, p.ll 1-126.

110. Belisle С., Sainte-Marie G. Topography of the deep cortex of the lymph node of various mammalian species.// Anatomy Research. 1981, v.201, #3, p.553-561.

111. Belisle C., Sainte-Marie G., Peng F.S. Tridimentional study of the deep units of the germ-free rat.// Amer.Jorn. of Pathology. 1982, #107, p.70-78.

112. Bleich H.L., Boro E.S., Dinarello C.A., Wolf S.M. Pathogenesis of fever in man. New Eng. J. Med., 198, 1978, p.607-612.

113. Bodewadt-Radzun S., Wacker H.H., Radzun H.J., Parwaresch M.R. Phenotypic characterization of macrophages in non-neoplastic lymph nodes.// In "Reaction Patterns of the lymph node. 1."/ Springer-Verlag Berlin, Heidelberg, New-York. 1990, p.247-265.

114. Bonta I.L., Bray M.A., & Parnham M.J. (eds). The Pharmacology of Inflammation. Handbook of Inflammation No. 5, 1985, Excerpta Medica.

115. Borel J.F. (ed). Ciclosporin; Progress in Allergy, vol.38, 1986, Karger, Basel.

116. Bowie E.I.W., Thompson I.H., Didisheim P., Owen C.A. Mayo clinic laboratory manual of hemostasis. W.B.Saunders company, 1971, p. 123125.

117. Casley-Smith J.R., Clark J. The dimention and number of small vesicles in blood capilary endothelium in the kind of dogs, and their relation to vascular permeability. J.Mocrosc (Gz. Brit.), 1972, v.96, p.263-267.

118. Castenholz A. Architecture of the lymph node with regard to its function.// In "Reaction Patterns of the lymph node. 1."// Springer-Verlag Berlin, Heidelberg, New-York. 1990, p.1-32.

119. Cho J., De Bruyn P.P.H. Internal structure of the postcapillary high-endothelial venules of rodent lymph nodes and Peyer's patches and the transendothelial lymphocytes passage.// Am.J.Anat. 1986, #177, p.481-490.

120. Culican S., Baglan J. "Immunohistochemistry made incredibly aimple". "Yale Un.Sch. of Med.Bull.", 1997, p.7-22.

121. De Bruyn P.P.H., Cho J. Structure and function of high endothelial postcapillary venules in lymphocytes recirculation.// In "Reaction Patterns of the lymph node. 1."/ Springer-Verlag Berlin, Heidelberg, New-York. 1990, p.85-103.

122. Dexter T.M. The message in the medium. Nature, 309, 1984, p.746.

123. Duijvestijn A.M., Rep M., Butcher E.G., Hendriks H.P., Kraal G. Regulation of functional and morfological aspects of high endothelial venules in mouse.// J.Immunology 1987, 138, p.713-726.

124. Forsgren A., Bellahsene A. Antibiotic Accumulation in Human Polymprphonuclear Leucocytes and Lymphocytes, Seand, J. Infect. D.S., 1985, v.17, Suppl. №44, p.16-23.

125. Fossum S. Differences between lymph node structure and function in normal and athymic rats.// In "Reaction Patterns of the lymph node. 1."/ Springer-Verlag Berlin, Heidelberg, New-York. 1990, p.65-85.

126. Fossum S. The architecture of rat lymph nodes. Limph node compartmens.// Scand.J.Immunology 1980, #12, 411-421.

127. Fugita Т., Ushiki T. Scanning electron microscopic observations of immunodefensive system with special reference to the surface morphology of the non-lymphoid cells.// J.Arch.Histol.Cytol. 1992, #55 Suppl., p.105-113.

128. Han Т. Antibiotics in surgery. Curr.Surg., 1980, v.37, № 5, p.297-300.

129. Hansmann M.L., Wacker H.-H. Immunoelectron-microscopic investigations of lymph node.// In "Reaction Patterns of the lymph node. 1."/ Springer-Verlag Berlin, Heidelberg, New-York. 1990, p.265-281.

130. He Y.C., Yang C.L., Shin L.S., Li H. Passageway for recirculating lymphocytes in lymph node of the rat.// Lymphology 1988, v.21, #4, p.239-241.

131. Hoshi H., Takemoto R., Nagatav H., Horie K., Murakami G., Suzuki S. Further histological observations on popliteal pymph nodes after interruption of the afferent lymphatic vessels.// J.Histol.-Histopathol. — 1993, v.8, #3, p.491-499.

132. Jalkaknen S., Reichert R.A., Gallatin W.M., Weisman J.L., Butcher E.C. Homing receptors and the control of lymphocyte migration. Immunology Rev., 1986, #91, p.31-61.

133. Kahan B.D. (ed). Cyclosporin. Biological Activity and Clinical Applications. Grune & Stratton, Orlando, 1984.

134. Kroese F.G.M., Timens W., Nieuwehius P. Germinal center reaction and B-lymphocytes: morphology and function.// In "Reaction pattern of lymph node. Part 1."/ Springer-Verlag, Berlin, Heidelberg, New-York -1990, p.103-149.

135. Lewis A. J., Carlson R.P., Chang J. Experimental models of inflammation.// In: "The Pharmacology of Inflammation"/ By Bonta I.L., Bray M.A., Parnham M.J. (eds) 1985, Elsevier Excerpta Medica.

136. Lipton J.E. Fever. Raven Press, 1980, NY.

137. Liu N.F., Maldik J., Olszewski W. Mesenteric lymph node transplantation in syngenetic rat: changes in cellularity and architecture.// Lymphology 1992, v.25, #3, p. 139-144.

138. Malek P. Вопросы патофизиологии лимфатической системы. — Прага. Медицина, 196, 330 с.

139. McKeever D.J., Awino Е., Morrison W.I. Afferent lymph weiled cells prime CD4+ T-cell responses in vivo.// Eur.J.Immunol. 1992, v.22, #12, p.3057-3061.

140. Metcalf D. The molecular control of normal and leukaemic granulocytes and macrophages. Proc. Roy. Soc. (bond.), 230, 1987, p.389-423.

141. Morris P.J. Cyclosporin A. Overview. Transplantation, 32, 1981, p.349-354.

142. Nicander L., Nafstad P., Landsverk Т., Engebretsen R.H. A study of modified lymphatics in the deep cortex of ruminant lymph nodes.// J.Anat. 1991, #178, p.203-212.

143. Reinlein I.M.A. Most fregnent microorganisms as a cause of surgical sepsis.//Antibiotics Chemother. 1976, v.21, #1, p.21-27.

144. Ritshel W.A. Handbook of basic pharmacokinetics. Hamilton, 1977, 2141. P

145. Sainte-Marie G., Belisle C., Peng F.S. The deep cortex of lymph node: morphological variations and functional aspects.// In "Reaction pattern of lymph node. Part 1."/ Springer-Verlag, Berlin, Heidelberg, New-York 1990, p.33-64.

146. Sainte-Marie G., Peng F.S. Atrophy of compartments of rat lymph nodes related to an entry of lethally altered lymphocytes.// Cell.Tissue.Res. -1990, v.262, #2, p.263-271.

147. Sainte-Marie G., Heng F.S. Atrophy of lymph node compartments lacking lymphcarried lymphocytes in athymic rats.// Arch.Histol.Cytol. -1990, v.53, #5, p.543-552.

148. Sainte-Marie G., Peng F.S. Dilatation of high endothelial venules in compartments of rat lymph nodes with abundant cortical mast cells.// J.Anat. 1991, #174, p.163-170.

149. Sainte-Marie G., Peng F.S. Formation of morphologically unusual features, associated with immunodeficiencies, in lymph nodes of gnotobiotic rats exposed to a conventional milieu.// Arch.Histol.Cytol. — 1990, v.53, #1, p.55-61.

150. Sainte-Marie G., Peng F.S. Mast cells and fibrosis in compartments of lymph nodes of normal, gnotobiotic and athymic rats.// Cell.Tissue.Res. 1990, v.261, #1, p.1-15.

151. Sainte-Marie G, Peng F.S. Retention of lymphocytes in the subcapsular sinus of lymph nodes: a physiological event?// Arch.Histol.Cytol. -1990, v.53, #5, p.531-541.

152. Sainte-Marie G., Peng F.S. The formation of "compartment replicas" in the lymph nodes at athymic animals:// Cell and tissue research 1987, #248, 2, 323-333.

153. Salvador A.C., Pereira A.S., de Sa C.M., Grande N.R. Blood vasculature of the lymph node in dog: anatomical evidence for participation of extrahilar arterial vessels in the blood supply of the cortex.// J.Acta.Anat.Basel. 1992, v. 143, #1, p.41-47.

154. Salvador A.C., Pereira A.S., de Sa C.M., Grande N.R. Blood vessel architecture in lymph nodes of the dog viewed by scanning electron microscopy.// J.Submicrosc.Cytol.Pathol. 1992, v.24, #1, p.97-102.

155. Scheckler W.E. Septicemia and nosocomial infections in a commity hospital. Ann. int. med., 1978, v.89, № 11, p.754-756.

156. Schindler R. (ed). Ciclosporin in Autoimmune Disease. Springer-Verlag, 1985, Heidelberg.

157. Scott David W., Barth Richard K. Lymphocyte development, differentiation and function.// In "Haemotology. Basic Principles and Practice. Part IV/White Blood Cells". New-York, 1996, 543-552.

158. Sedgwick A.D., Willoughby D.A. Initiation of the inflammatory response and its prevention. In: The "Pharmacology of Inflammation" by Bonta I.L., Bray M.A., Parnham MJ. (eds), 1985, Elsevier Excerpta Medica.

159. Sieff C.A. Haemopoetic growth factors. J. Clin. Invest., 79, 1987, p.1549.

160. Szakal A.K., Kosco M.H., Tew J.C. Anovel in vivo follicular dendritic cell dependent iccosomemediated mechanism for delivery of antigen to antigen-processing cells.// J.Immunology. 1988, #140, p.341-353.

161. Takeshita K., Muller H., Mix D., Stutte H.J., Schmidts H.L. Immuno-and enzymehistochemical characterization of "plasmacytoid T-cells" in formalin-fixed paraffin-embedded tissue of reactive lymph nodes. Pathol .Res .Pract., 1991, v.187, #7, p.848-855.

162. Terashima K., Dobashi M., Maeda K., Imai Y. Follicular dendritic cell and iccosomes in germinal center reactions.// J.Semin-Immunol. 1992, v.4, #4, p.267-274.

163. Tomas P.Duffy. Systemic mastocytosis.// Hematology. 1990, part V, p.1058-1062.

164. Van den Oort J.J., Faccheti F., Delabie J., de Wolf-Petters С. T-lymphocytes in non-neoplastic lymph nodes.// In "Reaction pattern of lymph node. Part 1."/ Springer-Verlag, Berlin, Heidelberg, New-York -1990, p.149-179.

165. Vicent P.C. Granulocyte kinetics in health and disease. Clinics Haemotol., 6, 1977, p.695.

166. Vilson Ch. Bo., Yacobs R.F. Cellular antibiotic pharmacology Semin Perinatol. 1982, v.6, № 2, p.205-213.lining cells: morphology, function and neoplasia.// Verh.Dtsch.Ges.Pathol. 1992, #76, p.219-225.

167. Wedmore C.V., Williams T.J. Control of vascular permeability by polymorphonuclear leukocytes in inflammation. Nature, 289, 1981, p,646-650.

168. Whalton A. Antibiotic pharmocinetics and clinical application in renal insuficiency. Med. Clin. N. Amer., 1982, v. 66, p.267-281.

169. Yoshida Т., Takaya K. Appearance of the reticular cells which trap antigens in the rat lymph node in postnatal development.// J.Electron Microsc. Tokyo, 1991, v.40, #6, p.378-384.

170. Zeisberger E. Role of vasopressing in fever regulation and suppression. Trends Pharmacol. Sci., 6, 1985, p.428-429.