Автореферат и диссертация по медицине (14.00.24) на тему:Иммунологические методики в комплексном анализе микрообъектов судебно-биологической экспертизы

ДИССЕРТАЦИЯ
Иммунологические методики в комплексном анализе микрообъектов судебно-биологической экспертизы - диссертация, тема по медицине
АВТОРЕФЕРАТ
Иммунологические методики в комплексном анализе микрообъектов судебно-биологической экспертизы - тема автореферата по медицине
Александрова, Вера Юрьевна Москва 2008 г.
Ученая степень
кандидата медицинских наук
ВАК РФ
14.00.24
 
 

Автореферат диссертации по медицине на тему Иммунологические методики в комплексном анализе микрообъектов судебно-биологической экспертизы

003446824

На правах рукописи

Александрова Вера Юрьевна

ИММУНОЛОГИЧЕСКИЕ МЕТОДИКИ В КОМПЛЕКСНОМ АНАЛИЗЕ МИКРООБЪЕКТОВ СУДЕБНО-БИОЛОГИЧЕСКОЙ ЭКСПЕРТИЗЫ

14 00 24 - судебная медицина

Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата медицинских наук

2 2 СЕН 2008

Москва 2008

003446824

Работа выполнена в Институте Криминалистики Центра специальной техники ФСБ России.

Научный руководитель

Доктор медицинских наук Лапенков Михаил Иванович

Официальные оппоненты

Ведущее учреждение.

Доктор медицинских наук, профессор

Жаров Владимир Васильевич

Кандидат медицинских наук, доцент

Колоколова Галина Петровна

ГОУ ВПО «Нижегородская государственная медицинская академия»

Защита состоится года в <</3>> часов на заседании

диссертационного совета Д 208.070 01 при Федеральном государственном учреждении «Российский центр судебно-медицинской экспертизы Федерального агентства по здравоохранению и социальному развитию» (125284, Москва, ул Поликарпова, д 12/13)

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке Федерального государственного учреждения «Российский центр судебно-медицинской экспертизы Федерального агентства по здравоохранению и социальному развитию» (125284, Москва, ул Поликарпова, д 12/13)

Автореферат разослан « 03» 0 9 2008 г.

Ученый секретарь диссертационного совета кандидат медицинских наук

доцент О.А. Панфиленко

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА ДИССЕРТАЦИИ

Актуальность проблемы

Получение криминалистически значимой информации при анализе следов биологического происхождения представляет собой сложную задачу, требующую применения различных методов В настоящее время наиболее доказательными являются мо-лекулярно-генетические исследования (МГИ) Их значение в практике судебно-медицинской экспертизы вещественных доказательств (СМЭВД) трудно переоценить Однако ставшие давно классическими различные иммунологические методы все еще широко применяются. Их использование обусловлено рядом факторов. В частности, определение групповой принадлежности по системе ABO позволяет, во-первых, дифференцировать поступающие на исследование объекты и биологические образцы от конкретных лиц, во-вторых, получать разыскные сведения Кроме того, при исследовании объектов, МГИ которых невозможно или затруднено вследствие отсутствия или недостаточного количества ДНК, только иммунологические методы могут предоставить информацию, которая в случае исключающего вывода носит доказательный характер. Немаловажным фактором является также низкая стоимость иммунохимических исследований.

В настоящее время для выполнения каждого вида анализа в большинстве судебно-медицинских лабораторий используется отдельная часть исследуемого объекта. При этом экспертами, выполняющими какой-либо вид биологических исследований, не учитываются потребности и особенности проведения иных видов анализа. Такой подход может быть допустим при наличии биологического материала в достаточном количесше Однако следы крови, выделений и тканей человека, выявляемые на различных предметах, часто имеют малую величину. В таких случаях, при назначении первичной биологической экспертизы, а уже затем дополнительной - молекулярно-генетической, для более информативных МГИ может просто не хватить биологического материала С другой стороны, проведение только генетических исследований микрообъектов не всегда целесообразно, так как при получении отрицательного результата остается открытым вопрос, чем это вызвано деградацией ДНК, потерей материала во время

пробоподготовки или исследованием объекта, происходящего не от человека.

При исследовании микрообъектов необходим комплексный подход, который предполагает параллельное или последовательное исследование биологического материала различными специалистами по заранее выработанной схеме с последующим анализом полученных данных и формулированием совместных выводов.

Идея использования одного экстракта для разрешения нескольких вопросов, поставленных перед экспертом, появилась в 60-е годы прошлого века (А Рюп, 1963). В 1982 году во Всесоюзном НИИ МВД СССР были разработаны «комплексирован-ные» методики анализа микроследов крови, которые предусматривали раздельное исследование осадка и надосадочной жидкости экстракта из пятна крови, а также фиксированных компонентов следа на предмете-носителе (М А. Бронникова, М.В. Кисин, Т.В. Стегнова, 1982). Что касается комплексных исследований выделений человека, то в доступной нам литературе встретилась только одна статья (Н Nöda et al, 2002), авторы которой предлагают раздельно исследовать клетки цитологическим и иммуноги-стохимическим методами, а жидкую часть слюны иммунофер-ментным методом

Создание такой схемы, которая обеспечивала бы оптимальное распределение анализируемого материала для каждой методики в соответствии с криминалистической значимостью получаемых данных, является важной задачей

В связи с внедрением в экспертную практику генотипирова-ния, следует определить роль и место иммунологических методов в комплексном анализе объектов судебно-медицинской экспертизы вещественных доказательств (СМЭВД) Как справедливо указывают П Л Иванов и В А Клевно (2008), « центр тяжести переместится именно на молекулярно-генетические технологии Все другие востребованные методические составляющие судебно-медицинской биологии при этом также будут применяться, но в качестве вспомогательных и дополняющих» Соответственно, иммунологические методы, кроме выполнения своих традиционных задач, таких как установление наличия биологического материала, видовой и групповой принадлежности, должны приме-

пяться в качестве скрининга для отбора объектов с целью более успешного проведения в последующем МГИ

Для осуществления такого подхода необходимо признать разделение судебно-биологической и молекулярно-генетической экспертизы искусственным явлением. «Судебно-биологические отделения должны стать экспертными подразделениями нового типа, отвечающими за комплексное исследование вещественных доказательств» (П Л Иванов, В А Клевио, 2008). В противном случае при поступлении на исследование микрообъектов теряется часть поисковой информации, а также могут быть зря израсходованы дорогостоящие реактивы и непроизводительно затрачено время эксперта

В связи с изменившейся ролью классических иммунологических исследований изменились и требования к их проведению Поскольку данные методы предлагается использовать на первых стадиях экспертизы, они должны быть применены так, чтобы обеспечить сохранение ДНК-содержащего материала для дальнейших МГИ Например, установление наличия крови и выделений путём выявления гемоглобина, простатоспецифического антигена, амилазы предпочтительно проводить, исследуя надоса-дочную жидкость. Групповую принадлежность также желательно устанавливать по той части биологического материала, которая непригодна для генотипирования Сохранности биологического материала для дальнейших исследований способствует внедрение методик, обладающих высокой чувствительностью или носящих недеструктивный характер.

Кроме того, поскольку основные силы лаборатории должны быть направлены на получение идентификационных данных, а МГИ характеризуются сложностью и трудоемкостью, желательно, чтобы иммунологические методы отличались высокой технологичностью, простотой в исполнении и экспрессностью, что значительно снизит трудозатраты при определении групповой и видовой принадлежности

В судебной серологии в нашей стране основными методами для установления групповой принадлежности являются реакция абсорбции-элюции (РАЭ), количественная реакция абсорбции (КРА), реакция «смешанной агглютинации» (РСА), реакция им-мунофлуоресценции (РИФ). В тоже время, такие методы, как им-

муноферментный анализ (ИФА) и метод иммунохроматографии, еще не нашли широкого распространения в практике СМЭВД.

Представляется крайне актуальным в соответствии с изменившимися требованиями к анализу объектов СМЭВД разработать соответствующую схему пробоподготовки биологических микрообъектов, модифицировать иммунологические методики и определить очерёдность их применения для получения максимально возможной информации

Цель работы

Разработка иммунологических методов исследования, пригодных для использования в системе комплексного анализа микроследов человека, с целью получения максимально возможного объема информации

Для достижения указанной цели были поставлены следующие задачи исследования.

1 Подобрать МКА, пригодные для использования в РАЭ с целью установления групповой принадлежности таких объектов СМЭВД, как следы крови, слюны, микрофрагменты волос, частицы перхоти Приготовить реагенты на основе доступных МКА

2. Определить влияние различных факторов на специфичность и чувствительность иммунологических реакций Разработать как общие, так и характерные для каждого вида биологических объектов способы повышения специфичности и чувствительности иммунологических реакций.

3. Разработать схему пробоподготовки и определить оптимальные условия проведения иммунологических реакций при исследовании каждого типа биологических микрообъектов.

4. Подобрать модификации иммунологических реакций для установления групповой и видовой принадлежности, позволяющие исследовать серийные образцы и проводить экспресс-анализ.

5. Разработать общие принципы комплексного анализа следов человека. Определить место иммунологических методик в системе комплексного анализа

6 Провести экспертную апробацию разработанных методик и тактических подходов

Научная новизна

1. Проведена комплексная оценка факторов, влияющих на специфичность высокочувствительных модификаций РАЭ На основе этого выработаны правила работы с целью соблюдения стандартных условий проведения иммунологических реакций и эмпирически показана эффективность использования в РАЭ неионного детергента твин 20

2. Показана возможность использования гель-фильтрации для оценки результатов РАЭ Разработана комбинированная методика РАЭ - гель-филырация с использованием карточек «Скангель», что предоставляет возможность проведения серийных исследований

3. Разработан вариант РИФ для установления групповой и видовой принадлежности в дот-варианте, предоставляющий возможность экспресс-анализа с целью отбора объектов для дальнейшего исследования

4 Обоснована тактика проведения экспертизы объектов СМЭВД на основе комплексного анализа с учётом экспертной значимости МГИ Определено место иммунологических методов в системе комплексного анализа

Практическая значимость

1 Подбор МКА для каждого вида биологических объектов, приготовление на их основе реагентов с требуемыми свойствами, соблюдение стандартных условий проведения иммунологических реакций, применение разработанных способов повышения чувствительности и специфичности иммунологических реакций обеспечивает получение достоверных результатов при использовании МКА для проведения анализа объектов СМЭВД.

2 Предложенные модификации РАЭ, дот-ИФА, дот-РИФ для микроколичеств выделений обладают высокой степенью чувствительности и позволяют получать информацию при анализе отдельных составных частей объекта, что во многих случаях позволяет сберечь ядерный материал для МГИ

3. Предложенные иммунологические реакции, а именно геле-вый вариант оценки результатов РАЭ, дот-ИФА и дот-РИФ,

способствуют сокращению времени анализа и уменьшению трудозатрат при проведении экспертиз

4 Исследование частиц перхоти в качестве объекта СМЭВД повышает доказательность получаемой информации при исследовании биологических следов с таких предметов как шапки, предметы верхней одежды, шапки-маски и т п

5 Предложенная схема комплексного исследования следов выделений человека позволяет определить место каждой методики в соответствии с важностью получаемых данных, оптимально распределить исследуемый материал и, в результате, получить максимально возможную информацию

Основные положения, выносимые на защиту

1 Подобраны МКА и приготовлены реагенты на их основе для каждого вида биологических объектов и для используемых модификаций иммунологических реакций

2 Предложены способы повышения чувствительности и специфичности иммунологических реакций.

3. Разработаны модификации РАЭ для определения антигенов системы ABO с помощью МКА в следах крови, следах слюна (на поверхности клеток буккального эпителия и в надо-садочной части), микрофрагментах волос и частицах перхоти

4 Показана возможность применения дот-РИФ и дот-ИФА в качестве методик для отбора биологических объектов по видовому и групповому признаку

5. Разработана комбинированная методика РАЭ - гель-фильтрация для выявления АВН антигенов в пятнах крови.

6 Обоснована тактика комплексного исследования объектов СМВД Разработана подробная схема комплексного анализа следов выделений человека Определено место иммунологических методик в соответствии с важностью получаемых данных

Апробация и внедрение результатов работы

Материалы диссертационной работы были доложены на следующих научных форумах: на Всероссийских научно-практических семинарах экспертов-биологов МВД России в Нижнем Новгороде, 2001 г, в Великом Новгороде, 2002 г., в Вол-

гограде, 2007 г, на Второй Всероссийской научно-практической конференции по криминалистике и судебной экспертизе ЭКЦ МВД РФ в Москве, 2004 г; на рабочих совещаниях экспертов-биологов МЗ РФ в Анапе, 2006 г, в Новосибирске, 2006 г, на Всероссийской научно-практической конференции «Актуальные вопросы судебно-медицинской экспертизы вещественных доказательств» в Воронеже, 2007 г., на заседании биологической секции Московского научного общества судебных медиков, 2007 г

Результаты исследования внедрены в работу Института Криминалистики Центра специальной техники ФСБ РФ. Методика дот-ИФА для выявления антигенов в следах выделений и методика РАЭ для выявления антигенов в частицах перхоти используются в практике ряда криминалистических подразделений МВД РФ и судебно-медицинских бюро МЗ РФ

На методики «Определение антигенов АВН и Lewis в следах выделений человека с помощью иммуноферментного анализа в дот-варианте», «Определения антигенов системы ABO в следах крови с помощью реакции абсорбции-элюции с использованием карточек «Скангель», «Определение групповой принадлежности микрофрагментов волос с помощью реакции абсорбции-элюции с использованием моноклональных антител», «Определение антигенов системы ABO в реакции абсорбции-элюции с помощью моноклональных антител в системе комплексного анализа микроследов слюны» получены положительные отзывы и материалы переданы в Федеральную службу по надзору в сфере здравоохранения и социального развития для оформления новых и усовершенствованных методик.

Публикации

По теме диссертационного исследования опубликовано две печатные работы

Изданы два информационных письма Российского центра судебно-медицинской экспертизы (№ 570/01-05 от 24 05.2001 «О судебно-медицинском исследовании частиц перхоти» и № 408/01-07 от 12 04 2002 «Определение групповой принадлежности микрофрагментов волос»)

Структура и объем диссертации

Диссертационная работа состоит из введения, обзора литературы, экспериментальной части, заключения, выводов и списка литературы.

Работа изложена на 148 страницах Приложение - на 44 страницах. Список литературы включает 112 источников 47 отечественных авторов и авторов стран СНГ и 65 зарубежных авторов. Диссертация иллюстрирована 8 рисунками и 14 таблицами.

Работа выполнена в Институте криминалистики Центра специальной техники ФСБ России

В работе частично использованы данные, полученные совместно с д м н Лапенковым М И., Богатыревой Е.А., к х.н. Гу-гунавой М А, Законовой А.Ф, Капинос Т.А., к.т.н Носыре-вым А Е , Печеновской МП, к б н. Смирновой В К, заслуженным врачом РФ Гуртовой С.В , д м.н , проф Сахаровым Р С, к б н. Николаевой Т Л.

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

Для выявления АВН антигенов использовали МКА трех производителей ООО «Гематолог» (Россия) - анти-А А90/16, A3F9, А27, анти-В В86/8, анти-Н МКА Н89/8, Н86/44, Н86/50; Biotest (Германия) - анти-А, анти-В Seroclone; Ortho-Clinical Diagnostics (США) - анти-А, анти-В Bioclone.

Для приготовления реагентов на основе МКА ООО «Гематолог» из асцитной или культуральной жидкости выделяли гло-булиновую фракцию с помощью высаливания сульфатом аммония при концентрации соли 40 и 50 % от насыщения. Для проведения ИФА конъюгаты МКА с пероксидазой хрена (ПХ) готовили по методу Накане. Для РИФ готовили конъюгаты антител с флуоресцеин изотиоцианатом (ФИТЦ).

Для исследования использовали образцы биологических объектов от лиц с известными группами крови А(П), В(Ш), 0(1), AB(IV) и известной категорией выделительства (при разработке методики иммуноферментного анализа - биологический материал от 155 лиц, при разработке модификации реакции абсорбции-элюции - образцы слюны от 106 лиц, частицы перхоти от 37 лиц, фрагменты волос от 126 лиц, крови от 93 лиц), а также практический судебно-медицинский материал из экспертной практики

(следы крови - 512 объектов, следы слюны - 189 объектов, фрагменты волос - 211объектов, частицы перхоти - 15 объектов).

Применяли следующие иммунологические методы: реакция абсорбции-элюции (РАЭ), ИФА и РИФ в дот-варианте.

СОДЕРЖАНИЕ ДИССЕРТАЦИИ

Исследование групповых свойств пятен крови с использованием моноклональных антител

Для выявления АВН антигенов в следах крови были выбраны модификации РАЭ, которые позволяли получать стабильные результаты при использовании МКА: выявление антигенов в следах крови на предмете-носителе с последующим проведением элюции в пробирке и выявление антигенов в частицах крови, закреплённых на липком слое ленты. Была показана необходимость подбора МКА для каждого варианта РАЭ. Для данных модификаций оптимально использовать МКА анти-А, анти-В 8егос1опе и анти-Н Н86/44 и Н89/8. В первой модификации РАЭ можно также использовать МКА анти-А, анти-В Вюс1опе, а во второй -МКА анти-А АЗБ9, А90/16, анти-В В86/8. Такой подход позволил получать при исследовании следов крови стабильные, выраженные и специфичные результаты.

В случае, если на экспертизу поступает большое количество пятен крови, возникает необходимость в сжатые сроки провести групповую дифференциацию и выявить разногруппные пятна. Для решения данной задачи разработана комбинированная методика РАЭ - гель-фильтрация с использованием карточек «Скан-гель». Предложенная технология требует на конечных стадиях исследования минимального участия эксперта и приводит к заметному сокращению времени анализа, поскольку позволяет судить о произошедшей агглютинации и её выраженности по степени прохождения агглютинатов через слой геля. Причём полученные данные можно документировать с использованием фотоаппарата или сканера (рис. 1).

Рисунок 1 - Карточка «Скан-гель» с результатом выявления АВН антигенов в пятнах крови от лиц с группами крови А(И) и В(Ш) с помощью комбинированной методики РАЭ - гель-фильтрация

Данная технология позволяет типировать пятна крови давностью до 4 лет и пятна разведённой в 100 раз крови.

Исследование микроследов слюны в системе комплексного анализа

На современном этапе развития СМЭВД важно сохранить ядерный материал для МГИ. Поэтому выявление АВН антигенов в следах от лиц выделителей групповых факторов необходимо проводить в надосадочной части выделений. Это возможно сделать с использованием РАЭ и ИФА.

Для этого экстрагировали биологический след в дистиллированную воду и разделяли полученный экстракт путём центрифугирования на осадок, содержащий клеточные элементы, и на-досадочную жидкость, содержащую белки и низкомолекулярные соединения органической и неорганической природы. Для дот-ИФА использовали надосадочную жидкость. РАЭ проводили отдельно для клеточного материала и надосадочной жидкости.

Одностадийный вариант дот-ИФА является модификацией разработанного в нашем Институте двустадийного варианта ИФА (Е.И Дерюгина и др., 1992). Для приготовления конъюгатов антител с ПХ были выбраны следующие MICA: анти-А А 27, анти-В В86/8, анти-Н Н 89/8, анти-Ьеа 3D3-E7 и анти-Ьеь С5С10. По сравнению с разработанной ранее двустадийной методикой значительно сократилось общее время проведения реакции за счёт уменьшения времени взаимодействия со специфическими антителами с 60 до 30 минут, исключения этапов инкубации с антивидовыми антителами (120 минут) и последующих отмывок (30 минут). Был подобран буфер для нанесения экспертных образцов (боратный, рН 9,0), что привело к получению более ста-

1 Neutr. [ Neutr. [ Neutr. [ Neutr. | Neutr. [ Neutr.

A(ll) B(lll) А (II) B(lll) A(ll) B(lll)

Анти-А | Анти-А | Анти-В | Анти-В | Анти-Н | Анти-Н

«Ю RAO 470413

бильных результатов. Разработанная методика давала четкие воспроизводимые результаты при анализе 2,5 мкл слюны, разведенной 1; 103 -1:10 .

Методика дот-ИФА пригодна для работы с другими выделениями человека: спермой и влагалищным секретом. Особенностью их типирования является необходимость проведения пробо-подготовки в виде прогревания в дистиллированной воде фрагмента нитроцеллюлозной мембраны (НЦМ) с нанесенной на неё надосадочной жидкостью.

В образцах от лиц с категорией выделитель выявляются соответствующие групповые антигены АВН и антиген Leb. У лиц, относящихся к категории невыделитель выявляется только Lea антиген.

По сравнению с двустадийным вариантом разработанная методика более экспрессна, надёжна, методически проста, менее трудоемка. Она позволяет одновременно исследовать большое количество образцов выделений, предоставляя информацию не только о групповой характеристике, но и одновременно о статусе выделительства Кроме того, полученные результаты могут быть документированы (см. рис. 2), что повышает объективность полученных данных.

МКА

Анти-А Анти-В Анти-Н Анти-Le Анти-Le

ASe

Рисунок 2 - Результаты выявления ABH-Lewis антигенов в слюне лиц "выделителей" А, В, О и AB групп крови (ASe, ose BSe, OSe, ABSe) и лица "не-

BSe

Ase

выделителя" А группы крови ABsel j о i i и (Ase) методом дот-ИФА в од-

ностадийном варианте

Методика дот-ИФА показала полное соответствие выявленных антигенов при анализе заведомо известных образцов пятен слюны от 117 человек, пятен спермы от 23 мужчин и влагалищных выделений от 15 женщин. Отмечали совпадение результатов при типировании экспертных образцов методами дот-ИФА и РАЭ (82 объекта).

Модификации РАЭ для раздельного выявления групповых антигенов на клетках буккального эпителия и в надосадочной части слюны были разработаны и проверены в экспертной деятельности.

Среди доступных антител лучшие результаты были получены при использовании MICA в виде культуральных жидкостей: анти-А МКА A3F9, А90/16 с титром 1:256; анти-В МКАВ86/8 с титром 1:1024; анти-Н Н86/44, Н89/8 с тиром 1: 512, или реагентов на их основе, приготовленных в нашей лаборатории (см. материалы и методы).

В ходе исследований была разработана пробоподготовка биологического материала и оптимизированы условия реакции. Было предложено клеточный материал отмывать деионизирован-ной водой с последующим центрифугированием и прогреванием на кипящей водяной бане в течение 20 минут, а надосадочную жидкость прогревать на кипящей водяной бане в течение 20 минут. Последующее центрифугирование в течение 10 минут при 12000 об/мин с отбрасыванием осадка позволяло провести дополнительную очистку от микроорганизмов и образовавшихся в ходе прогревания нерастворимых частиц

Оптимальное время для взаимодействия антител с антигенами слюны составило 30 минут при типировании надосадочной жидкости и 60 минут при исследовании клеточного материала. Оптимальное время отмывки несвязавшихся антител составило 60 минут.

Для предотвращения возникающих неспецифических взаимодействий был предложен следующий способ: добавление неионного детергента твин 20 в рабочие растворы антител до конечной концентрации 0,6 % по объёму и в фосфатно-солевой буфер (ФСБ) для проведения первой отмывки несвязавшихся антител до конечной концентрации 0,3 % по объёму.

Было установлено, что при исследовании надосадочной жидкости нельзя выявить антигены невыделителей и слабые формы антигенов. При исследовании клеточного материала выявлялись все антигены, свойственные данному лицу. С уверенностью можно устанавливать групповое происхождение исследуемого биологического материала при совпадении результатов ти-пирования по клетками надосадочной части слюны. Работа с осадком позволяет контролировать количество клеточного мате-

риала, взятого в реакцию, использовать для иммунологического и цитологического исследования один и тот же препарат, а также проводить отмывание клеток от посторонних растворимых примесей. Выявление антигенов в надосадочной жидкости предоставляет возможность избавиться от микробных загрязнений, а также сохранить ДНК-содержащий материал.

Данные модификации РАЭ также успешно используются для установления групповой принадлежности спермы и влагалищных выделений.

Для получения стабильных результатов немаловажным фактором является стандартизация условий проведения иммунологической реакции Особенно существенным оказывается данное требование при исследовании микрообъектов, когда используемые реакции обладают высокой чувствительностью.

В ходе разработки методик были выявлены факторы, способные изменить специфичность реакции. Это, в первую очередь, микробное загрязнение, наличие в растворе, где проходит иммунное взаимодействие каких-либо компонентов (например, пептидов), способных неспецифически связываться сантителами или вызывать сдвиг кислотно-щелочного равновесия.

Разработан комплекс мер, которые способствуют снижению нежелательных реакций антител с посторонними агентами и в результате приводят к повышению специфичности реакции. Первый способ состоит в прогревании биологического материала на кипящей водяной бане. Второй способ состоит в использовании неионного детергента твин 20, который, в силу своих свойств, препятствует неспецифическому связыванию антител.

В ряде случаев неспецифические реакции могут быть вызваны факторами, не связанными со свойствами антител или анализируемого объекта. Оказалось, что микробное загрязнение используемой воды, приготовленных реактивов и предметных стекол, а также сдвиг кислотно-щелочного равновесия реагентов могут привести к ложноположительным результатам. С целью предотвращения этих явлений были разработаны требования для соблюдения стандартных условий проведения иммунологической реакции и хранения реагентов, в частности, использование ФСБ вместо физиологического раствора, подготовка дистиллированной воды для проведения экстракции путём её фильтрации через мембраны с размером пор 0,45 мкм для удаления микроорганиз-

мов; хранение всех реагентов, разлитых на аликвоты, при температуре минус 20°С; использование реагентов после размораживания в течение одного рабочего дня.

Выполнение данных требований актуально при типирова-нии всех биологических объектов.

Возможности исследования частиц перхоти иммунологическими методами

Одним из объектов, судебно-медицинскому исследованию которого уделялось до последнего времени недостаточно внимания, является перхоть. Частицы перхоти в качестве объекта судебно-медицинских исследований обладают существенным преимуществом. По сравнению с такими биологическими следами, как потожировые выделения, выпавшие волосы, которые можно обнаружить на шапках или других подобных предметах экспертизы, они могут содержать определенное количество ядерной ДНК, что допускает проведение молекулярно-генетических исследований и сразу повышает доказательность получаемой информации. А в отличие от следов слюны, которые могут быть на шапках-масках, но точное их месторасположение сложно обнаружить, частицы перхоти хорошо различимы и часто встречаются в большом количестве. Таким образом, разработка методов анализа данного объекта имеет большое значение.

В результате проведённых исследований разработаны две модификации РАЭ для выявления групповых антигенов в частицах перхоти: на липких лентах и на стёклах. Использование всех тестированных антител приводило к получению специфичных результатов. Была показана возможность последовательного установления групповой принадлежности и генотипа при анализе одной крупной частице.

Разработка методики определения антигенов системы ABO в микрофрагментах волос

При комплексном анализе любого объекта необходимо ДНК-содержащую часть сохранить для МГИ. Поэтому групповые антигены целесообразно выявлять только в стержне волоса. Если установление групповой принадлежности по корню волоса, клетки которого еще не подверглись кератинизации, не представляет проблем, то, напротив, анализ микрофрагментов стержня волоса

до настоящего времени крайне сложен. Для разработки модификации РАЭ проводили подбор пригодных МКА, выбор адекватной методики пробоподготовки и внесение изменений в основные этапы РАЭ.

В результате проведённых исследований была выработана схема приготовления реагентов, пригодных для выявления АВН антигенов в волосах методом РАЭ. В качестве источников MICA, использовали асцитные жидкости, содержащие МКА анти-А A3F9, анти-В В86/8, анти-Н Н89/8, анти-Н Н86/44. Реагенты ан-ти-В и анти-Н были приготовлены путем осаждения глобулинов при 50%-ном насыщении раствора сульфатом аммония с последующей гельфильтрацией на колонке, заполненной сефадексом G-25. Реагенты анти-А были приготовлены из асцитной жидкости аналогичным образом, но осаждение глобулинов проводили при 40%-ном насыщении сульфатом аммония. В результате титр полученных антител составил 1 : 3200 - 1 : 25600. После добавления антимикробного агента азида натрия в концентрации 0,1%, реагенты разливали на минимальные аликвоты для однократного использования и хранили в замороженном виде при минус 20°С. При приготовлении рабочих растворов антител их разводили ФСБ до титров 1:3200 - 1:6400 и добавляли твин 20 до конечной концентрации 0, 6 % по объёму.

Учитывая особенности расположения АВН антигенов в стержне волос, существенным моментом являлась пробоподго-товка исследуемого материала. В качестве оптимального метода было выбрано прогревание волоса на водяной бане с последующим его раздавливанием до состояния «белой пластинки».

Было определено оптимальное время абсорбции - 24 часа Полученные данные свидетельствуют, что необходимость такого длительного периода абсорбции объясняется скоростью проникновения жидкости в толщу волоса При определении количества и продолжительности необходимых отмываний установлено, что выявление различных антигенов требует неодинакового подхода. Связь анти-В и анти-Н антител с соответствующими антигенами оказалась довольно прочной и отмывание в течение 60 минут (при шестикратной смене отмывающего раствора) не влияло на выраженность специфической реакции, но приводило к практически полному отсутствию неспецифических реакций. В тоже время анти-А МКА достаточно плохо удерживаются на антиген-

ных структурах и оптимальное время отмывания для них составило 5-20 минут при смене отмывающего раствора до 3-х раз, если отмывка производилась в лунках объемом 2 мл, или в течение того же времени, но один раз в объеме 10 мл.

Чувствительность реакции с В - и Н- антигенами при таким образом подобранных условиях основных этапов была достаточна для устойчивого обнаружения данной структуры в исследуемом объекте. Реакция же с А антигеном была выражена менее интенсивно, что согласуется с особенностями биотрансформации этого антигена в волосах. В связи с этим для повышения чувствительности реакции были выбраны два способа её усиления, которые не вызывали появления неспецифических процессов - использование папаинизированных тест-эритроцитов и приготовление взвеси тест-эритроцитов в растворе БСА (0,5 и 1 %)

С помощью разработанной модификации РАЭ возможно выявить антиген А во фрагменте волоса длиной 4 мм и антигены В и Н во фрагментах волоса длиной 2 мм.

При возникновении спорных ситуаций в ходе установления групповой принадлежности биологических объектов, особенно таких сложных, как волосы, возникает необходимость в повторном подтверждении результата. В таком случае необходимо использовать МКА к интересующему антигену, обладающие несколько иной эпитопной специфичностью и, следовательно, другими свойствами. Совпадение результатов сводит вероятность ошибки к минимуму. Было предложено использовать для этой цели реагенты анти-А и анти-В МКА Вюс1опе.

Благодаря высокой чувствительности реакции, эксперт, имея в наличии фрагмент волоса длиной 1,5 - 2,0 см, имеет возможность проведения двукратного исследования с целью подтверждения результата.

Разработка методики дот-РИФ для экспресс-анализа микрообъектов

Одним из достоинств иммунофлуоресцентного метода является его экспрессность. В связи с этим мы предприняли попытку разработать методики экспресс-анализа на основе РИФ для установления видовой принадлежности и для выявления АВН-антигенов в надосадочной жидкости. Такие методики позволят отбирать среди множества неизвестных объектов те, которые со-

держат биологический материал от человека, и дифференцировать объекты по групповой принадлежности, сохраняя ядерный материал для МГИ

Поскольку нашей целыо являлось создание экспресс-методики, необходимо было разработать прямой вариант РИФ. Для этого были получены конъюгаты поликлональных видовых антител и анти-АВН МКА с ФИТЦ Для упрощения оценки результатов реакции и сокращения времени исследования образцов, использовали, по аналогии с дот-ИФА, дот-вариант РИФ.

Были протестированы два типа мембран НЦМ черного цвета (Зайогшз) и мембрана из поливинилиденфторида (ПВДФ) ¡гптоЬйоп-РЬ (МШфоге). Лучшие результаты были получены при использовании ПВДФ мембраны Оптимальное соотношение специфических и неспецифических процессов наблюдали при рабочем разведении конъюгированных антител 1 5000, 1:10000, продолжительности этапа инкубации - 15 минут, отмывки - дважды по 5 минут При таким образом подобранных условиях видовые антигены выявлялись при разведении сыворотки и крови человека 1-100000 В то время неспецифические реакции с сыворотками животных наблюдались при их разведении 1 100, а при разведении 1: 1000 полностью отсутствовали

В неразведенных экстрактах говядины и свинины отмечалось наличие собственной флуоресценции, которая не дает возможности оценить результаты реакции В связи с этим в методику необходимо ввести этап предварительного контроля собственной флуоресценции образца. С учетом того, что видимое окрашивание крови исчезает при ее разведении в 1000 раз и неспецифические реакции с сыворотками животных стабильно не возникают именно при таком разведении, было предложено перед нанесением разводить образцы до исчезновения видимого коричневого окрашивания. Если и в этом случае наблюдается собственная флуоресценция, значит, данный материал необходимо исследовать другими методами

Была показана возможность применения разработанной методики для экспресс-анализа при установлении видовой принадлежности следов выделений человека (слюна, сперма, влагалищные выделения) Вышеуказанная схема анализа была использована при установлении групповой принадлежности надосадочной части слюны

Таким образом, на основе прямой РИФ были предложены экспресс-методики в дот-варианте с целью отбора объектов для дальнейшего исследования по видовому и групповому признаку Их преимуществами являются быстрота проведения (менее одного часа), возможность одновременно исследовать большое число образцов крови и выделений, использование минимального количества материала (2,5 мкл) Выбор специально разработанной для проведения флуоресцентного анализа ПВДФ мембрана ¡ттоМоп-ГЪ (МлШроге) способствовал повышению чувствительности и специфичности реакции

Определение места иммунологических методов в комплексном анализе объектов СМЭВД

В настоящее время экспертиза объектов биологического происхождения, является сложной комплексной экспертизой с участием специалистов различного профиля, что требует выработки общих принципов проведения таких экспертиз, тактики проведения конкретной экспертизы, выбора способов пробопод-готовки, методов исследования и порядка их использования.

На основании многолетнего опыта проведения экспертиз нами был разработан и применяется на практике комплексный подход к исследованию объектов СМЭВД Он предполагает использование различных схем в зависимости от характера исследуемого объекта

Если структура объекта позволяет, следует с помощью соответствующей пробоподготовки разделить выделенный из него биологический материал на составные части и исследовать их параллельно различными методами, иммунологическими, цитологическими и молекулярно-генетическими На завершающих этапах экспертизы полученные результаты объединяются, анализируются и делаются совместные выводы. Разработанная нами схема исследования выделений человека на примере анализа следов слюны представлена на рисунке 3 Подобная схема может быть применена и при исследовании следов спермы и влагалищных выделений В связи с необходимостью сохранять ДНК-содержащий материал для дальнейших МГИ, на первых этапах экспертизы максимально возможную информацию получают при исследовании надосадочной жидкости Основную часть осадка (при ограниченном количестве биологического материала - весь

осадок) необходимо исследовать методами молекулярно-генетического анализа

Морфологическое исследование осадка позволит оценить наличие клеточного материала, его состояние, установить тканевую принадлежность клеток, степень загрязнения препарата, наличие микрофлоры, а также определить перспективы анализа ядерной ДНК В ряде случаев это предоставит возможность более правильно выбрать тактику и более правильно толковать результаты молекулярно-генетических и иммунохимических исследований

I елгды слюны [

Рисунок 1 - Схема комплексного анализа следов слюны

Однако в некоторых случаях целесообразно делить сам предмет-носитель вместе с анализируемым следом, содержащим слюну Например, фильтр окурков содержит смолистые вещества и непригоден для генетических исследований. В связи с этим мы предлагаем бумажную обертку фильтра использовать, в первую очередь, для генетических исследований, а фильтр исследовать иммунологическими методами

Если исследуемый объект не позволяет провести вышеописанную процедуру, то оптимальной представляется «последовательная» схема анализа неразрушающие методы, затем методы,

частично изменяющие структуру объекта и, наконец, разрушающие методы Таким образом, последовательно анализируя объект, можно добиться максимально возможных результатов

Схема комплексного анализа позволяет добиться наилучших результатов при исследовании в первую очередь микрообъектов. С нашей точки зрения, в настоящее время следует к любому объекту относиться как к микрообъекту. Такой комплексный подход к проведению экспертизы позволит.

1) использовать в исследовании большее количество методов для получения максимального объема информации;

2) устанавливать один параметр различными методами и, при необходимости, повторить анализ для получения более объективных и достоверных результатов,

3) выбрать тот фрагмент следа, который с точки зрения эксперта имеет наиболее подходящие характеристики,

4) сохранить биологический материал для проведения повторных и дополнительных экспертиз.

Комплексный подход применим в практике СМЭВД только при тесном взаимодействии экспертов, выполняющих иммуно-химические, цитоморфологические и генетические исследования Любое экспертное исследование должно начинаться с коллегиальной выработки определенной схемы проведения анализа При этом уточняется характер пробоподготовки материала, совокупность методик и последовательность их применения с учетом задач данной экспертизы, характера и количества биологического материала, его качественного состояния и характера предмета-носителя

Таким образом, комплексный подход к изучению микрообъектов биологического происхождения дает возможность уже на начальной стадии спланировать тактику исследования и либо получить максимально возможную информацию, либо, в случае отрицательного результата на первых этапах исследования, значительно сократить объём работ и тем самым уменьшить трудозатраты и сохранить дорогостоящие реагенты

ВЫВОДЫ

1. Разработанные высокочувствительные и специфичные модификации РАЭ позволяют выявлять антигены системы ABO в

следах крови, в следах слюны (на поверхности клеток буккально-го эпителия и в надосадочной части), в микрофрагментах волос и в частицах перхоти Условия проведения пробоподготовки и этапов реакции оптимизированы в соответствии с учетом морфологических и биохимических свойств различных микрообъектов и свойств МКА

2 Подбор для каждого исследуемого объекта подходящих по свойствам МКА из линейки антител с различной эпитопной специфичностью, и, при необходимости, приготовление реагентов из асцитной жидкости путем проведения соответствующей очистки и концентрирования иммуноглобулинов, позволяет с успехом использовать МКА для выявлений антигенов с помощью РАЭ.

3 Предложенные способы предотвращения неспецифических взаимодействий, общие (использование неионного детергента твин 20, предварительное прогревание биологического материала на водяной бане) и специфичные для каждого вида биологических объектов, позволяют повысить чувствительность методик при исследовании микрообъектов

4. Строгое соблюдение разработанных правил проведения иммунологических реакций и хранения реагентов позволяет стандартизировать условия проведения реакций и получать стабильные результаты

5. Разработанные методики РАЭ - гель-фильтрация, одностадийный вариант дот-ИФА пригодны для исследования серийных образцов

6 Предложенное использование ПВДФ мембраны и разработка методики РИФ в дот-варианте позволяет проводить экспресс-анализ групповой и видовой принадлежности

7 Внедрение в экспертную практику разработанных принципов комплексного подхода, выбор соответствующих методик и использование их по определенной схеме в соответствии с важностью получаемых данных, с учетом характера и состояния объектов, подлежащих исследованию, позволяет получить максимально возможную информацию при исследовании микроследов Раздельное исследование составных элементов биологического материала следа (клеточного осадок и надосадочной жидкости) иммунологическими методами позволяет сэкономить биологический материал для МГИ, получать более достоверные данные при

исследовании загрязненных объектов, а также предоставляет возможность более корректной оценки результатов реакции

СПИСОК РАБОТ, ОПУБЛИКОВАННЫХ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ

1. О судебно-медицинском исследовании частиц перхоти . информационное письмо / соавт МИ. Лапенков, А.Ф Законова ; РЦ СМЭ МЗ РФ - М, 2001 с

2. Определение групповой принадлежности микрофрагментов волос • информационное письмо / соавт МИ Лапенков ; РЦ СМЭ МЗ РФ-М, 2002 -5 с

3. Разработка новых и модифицирование классических имму-нохимических методик при исследовании микрообъектов биологического происхождения / соавт М И. Лапенков // Материалы 2-ой Всероссийской научно-практической конференции по криминалистике и судебной экспертизе ЭКЦ МВД РФ «Криминалистические средства и методы в раскрытии и расследовании преступлений» - Москва, 2004 - С. 56

4. Установление групповой принадлежности микрофрагментов волос с использованием моноклональных антител / соавт. М.И Лапенков, Т.А. Капинос, В.К Смирнова, М.Н Печеновская // Судебно-медицинская экспертиза - 2008 - №5. - С 21-25

Подписано в печать 5 09 2008 г Печать на ризографе Тираж 100 экз Заказ № 1235. Объем 1,3 п л Отпечатано в типографии ООО "Алфавит 2000", ИНН 7718532212, г Москва, ул Маросейка, д 6/8, стр 1,т 623-08-10, www alfavit2000 ru

 
 

Оглавление диссертации Александрова, Вера Юрьевна :: 2008 :: Москва

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ.

ВВЕДЕНИЕ.

1 ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1 Основные иммунологические методы для установления групповой принадлежности по системе АВО.

1.2Использование моноклональных антител в традиционных и новых методах СМЭВД.

1.3Выявление антигенов системы АВО в различных объектах СМЭВД.

2 МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ.

2.1 Моноклональные антитела.

2.2Получение глобулиновой фракции с помощью высаливания сульфатом аммония.

2.3 Получение глобулиновой фракции гель-фильтрацией.

2.4Получение антител, меченных флуоресцеином.

2.5Получение конъюгата МКА с пероксидазой хрена.

2.60бъекты исследования.

2.7Иммунологические методики.

2.7.1 Методика дот-ИФА.

2.7.2 Основная схема РАЭ.

3 УСТАНОВЛЕНИЕ ГРУППОВЫХ СВОЙСТВ ПЯТЕН КРОВИ С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ МОНОКЛОНАЛЬНЫХ АНТИТЕЛ.

3.1 Выбор модификации РАЭ для выявления АВН антигенов в следах крови с использованием МКА.

3.2Изучение возможности использования гель-фильтрации для исследования серийных образцов крови.

4 ИССЛЕДОВАНИЕ МИКРОСЛЕДОВ СЛЮНЫ В СИСТЕМЕ КОМПЛЕКСНОГО АНАЛИЗА.

4.1 Одностадийный дот-ИФА для выявления ABH-Lewis антигенов.

4.2Раздельное выявление АВН антигенов в клеточном осадке и жидкой части слюны методом РАЭ.

4.3 Стандартизация условий проведения иммунологических реакций.

5 ВОЗМОЖНОСТИ ИССЛЕДОВАНИЯ ЧАСТИЦ ПЕРХОТИ ИММУНОЛОГИЧЕСКИМИ МЕТОДАМИ.

6 МЕТОДИКА ОПРЕДЕЛЕНИЯ АНТИГЕНОВ СИСТЕМЫ АВО В МИКРОФРАГМЕНТАХ ВОЛОС.

6.1 Подбор МКА, методов их очистки, условий хранения и необходимых титров для исследования волос.

6.2Особенности пробоподготовки и проведения РАЭ при выявлении антигенов системы АВО в микрофрагментах волос.

7 МЕТОДИКА ДОТ-РИФ ДЛЯ ЭКСПРЕСС-АНАЛИЗА МИКРООБЪЕКТОВ.

8 ОПРЕДЕЛЕНИЕ МЕСТА ИММУНОЛОГИЧЕСКИХ МЕТОДОВ В КОМПЛЕКСНОМ АНАЛИЗЕ ОБЪЕКТОВ СМЭВД.

 
 

Введение диссертации по теме "Судебная медицина", Александрова, Вера Юрьевна, автореферат

Актуальность проблемы

Получение криминалистически значимой информации при анализе следов биологического происхождения представляет собой сложную задачу, требующую применения различных методов. В настоящее время наиболее доказательными являются молекулярно-генетические исследования (МГИ). Их значение в практике судебно-медицинской экспертизы вещественных доказательств (СМЭВД) трудно переоценить. Однако ставшие давно классическими различные иммунологические методы все еще широко применяются. Их использование обусловлено рядом факторов. В частности, определение групповой принадлежности по системе АВО позволяет, во-первых, дифференцировать поступающие на исследование объекты и биологические образцы от конкретных лиц; во-вторых, получать разыскные сведения. Кроме того, при исследовании объектов, МГИ которых невозможно или затруднено вследствие отсутствия или недостаточного количества ДНК, только иммунологические методы могут предоставить информацию, которая в случае исключающего вывода носит доказательный характер. Немаловажным фактором является также низкая стоимость иммунохимических исследований.

В настоящее время для выполнения каждого вида анализа в большинстве судебно-медицинских лабораторий используется отдельная часть исследуемого объекта. При этом экспертами, выполняющими какой-либо вид биологических исследований, не учитываются потребности и особенности проведения иных видов анализа. Такой подход может быть допустим при наличии биологического материала в достаточном количестве. Однако следы крови, выделений и тканей человека, выявляемые на различных предметах, часто имеют малую величину. В таких случаях при назначении первичной биологической экспертизы, а уже затем дополнительной - молекулярно-генетической, для более информативных МГИ может просто не хватить биологического материала. С другой стороны, проведение только генетических исследований микрообъектов не всегда целесообразно, так как при получении отрицательного результата остается открытым вопрос, чем это вызвано: деградацией ДНК, потерей материала во время пробоподготовки или исследованием объекта, происходящего не от человека.

При исследовании микрообъектов необходим комплексный подход, который предполагает параллельное или последовательное исследование биологического материала различными специалистами по заранее выработанной схеме с последующим анализом полученных данных и формулированием совместных выводов.

Идея использования одного экстракта для разрешения нескольких вопросов, поставленных перед экспертом, появилась в 60-е годы прошлого века (A. Fiori, 1963). В 1982 году во Всесоюзном НИИ МВД СССР были разработаны «комплексированные» методики анализа микроследов крови, которые предусматривали раздельное исследование осадка и надосадочной" жидкости экстракта из пятна крови, а также фиксированных компонентов следа на предмете-носителе (М.А. Бронникова, М.В. Кисин, Т.В. Стегнова, 1982). Что касается комплексных исследований выделений человека, то в доступной нам литературе встретилась только одна статья (Н. Noda et al., 2002), авторы которой предлагают раздельно исследовать клетки цитологическим и имму-ногистохимическим методами, а жидкую часть слюны иммуноферментным методом.

Создание такой схемы, которая обеспечивала бы оптимальное распределение анализируемого материала для каждой методики в соответствии с криминалистической значимостью получаемых данных, является важной задачей.

В связи с внедрением в экспертную практику генотипирования, следует определить роль и место иммунологических методов в комплексном анализе объектов судебно-медицинской экспертизы вещественных доказательств (СМЭВД). Как справедливо указывают П.Л. Иванов и В.А Клевно (2008), «.центр тяжести переместится именно на молекулярно-генетические технологии. Все другие востребованные методические составляющие судебно-медицинской биологии при этом также будут применяться, но в качестве вспомогательных и дополняющих». Соответственно, иммунологические методы, кроме выполнения своих традиционных задач, таких как установление наличия биологического материала, видовой и групповой принадлежности, должны применяться в качестве скрининга для отбора объектов с целью более успешного проведения в последующем МГИ.

Для осуществления такого подхода необходимо признать разделение судебно-биологической и молекулярно-генетической экспертизы искусственным явлением. «Судебно-биологические отделения должны стать экспертными подразделениями нового типа, отвечающими за комплексное исследование вещественных доказательств» (П.Л. Иванов, В.А Клевно, 2008). В противном случае при поступлении на исследование микрообъектов теряется часть поисковой информации, а также могут быть зря израсходованы дорогостоящие реактивы и непроизводительно затрачено время эксперта.

В связи с изменившейся ролью классических иммунологических исследований изменились и требования к их проведению. Поскольку данные методы предлагается использовать на первых стадиях экспертизы, они должны быть применены так, чтобы обеспечить сохранение ДНК-содержащего материала для дальнейших МГИ. Например, установление наличия крови и выделений путём выявления гемоглобина, простатоспецифического антигена, амилазы предпочтительно проводить, исследуя надосадочную жидкость. Групповую принадлежность также желательно устанавливать по той части биологического материала, которая непригодна для генотипирования. Сохранности биологического материала для дальнейших исследований способствует внедрение методик, обладающих высокой чувствительностью или носящих недеструктивный характер.

Кроме того, поскольку основные силы лаборатории должны быть направлены на получение идентификационных данных, а МГИ характеризуются сложностью и трудоемкостью, желательно, чтобы иммунологические методы отличались высокой технологичностью, простотой в исполнении и экс-прессностыо, что значительно снизит трудозатраты при определении групповой и видовой принадлежности.

В судебной серологии в нашей стране основными методами для установления групповой принадлежности являются реакция абсорбции-элюции (РАЭ), количественная реакция абсорбции (КРА), реакция «смешанной агглютинации» (РСА), реакция иммунофлюоресценции (РИФ). В тоже время, такие методы, как иммуноферментный анализ (ИФА) и метод иммунохрома-тографии, ещё не нашли широкого распространения в практике СМЭВД.

Представляется крайне актуальным в соответствии с изменившимися требованиями к анализу объектов СМЭВД разработать соответствующую схему, пробоподготовки биологических микрообъектов, модифицировать иммунологические методики и определить очерёдность их применения для получения максимально возможной информации. Цель работы

Разработка иммунологических методов исследования, пригодных для использования в системе комплексного анализа микроследов человека, с целью получения максимально возможного объема информации.

Для достижения указанной цели были поставлены следующие задачи исследования:

1. Подобрать МКА, пригодные для использования в РАЭ с целью установления групповой принадлежности таких объектов СМЭВД, как следы крови, слюны, микрофрагменты волос, частицы перхоти. Приготовить реагенты на основе доступных МКА.

2. Определить влияние различных факторов на специфичность и чувствительность иммунологических реакций. Разработать как общие, так и характерные для каждого вида биологических объектов способы повышения специфичности и чувствительности иммунологических реакций.

3. Разработать схему пробоподготовки и определить оптимальные условия проведения иммунологических реакций при исследовании каждого типа биологических микрообъектов.

4. Подобрать модификации иммунологических реакций для установления групповой и видовой принадлежности, позволяющие исследовать серийные образцы и проводить экспресс-анализ.

5. Разработать общие принципы комплексного анализа следов человека. Определить место иммунологических методик в системе комплексного анализа.

6. Провести экспертную апробацию разработанных методик и тактических подходов.

Научная новизна

1. Проведена комплексная оценка факторов, влияющих на специфичность высокочувствительных модификаций РАЭ. На основе этого выработаны правила работы с целью соблюдения стандартных условий проведения иммунологических реакций и эмпирически показана эффективность использования в РАЭ неионного детергента твин 20.

2. Показана возможность использования гель-фильтрации для оценки результатов РАЭ. Разработана комбинированная методика РАЭ — гель-фильтрация с использованием карточек «Скангель», что предоставляет возможность проведения серийных исследований.

3. Разработан вариант РИФ для установления групповой и видовой принадлежности в дот-варианте, предоставляющий возможность экспресс-анализа с целью отбора объектов для дальнейшего исследования.

4. Обоснована тактика проведения экспертизы объектов СМЭВД на основе комплексного анализа с учётом экспертной значимости МГИ. Определено место иммунологических методов в системе комплексного анализа.

Практическая значимость

1. Подбор МКА для каждого вида биологических объектов, приготовление на их основе реагентов с требуемыми свойствами, соблюдение стандартных условий проведения иммунологических реакций, применение разработанных способов повышения чувствительности и специфичности иммунологических реакций обеспечивает получение достоверных результатов при использовании МКА для проведения анализа объектов СМЭВД.

2. Предложенные модификации РАЭ, дот-ИФА, дот-РИФ для микроколичеств выделений обладают высокой степенью чувствительности и позволяют получать информацию при анализе отдельных составных частей объекта, что во многих случаях позволяет сберечь ядерный материал для МГИ.

3. Предложенные иммунологические реакции, а именно гелевый вариант оценки результатов РАЭ, дот-ИФА и дот-РИФ, способствуют сокращению времени анализа и уменьшению трудозатрат при проведении экспертиз.

4. Исследование частиц перхоти в качестве объекта СМЭВД повышает доказательность получаемой информации при исследовании биологических следов с таких предметов как шапки, предметы верхней одежды, шапки-маски и т.п.

5. Предложенная схема комплексного исследования следов выделений человека позволяет определить место каждой методики в соответствии с важностью получаемых данных, оптимально распределить исследуемый материал и, в результате, получить максимально возможную информацию.

Основные положения, выносимые на защиту

1. Подобраны МКА и приготовлены реагенты на их основе для каждого вида биологических объектов и для используемых модификаций иммунологических реакций.

2. Предложены способы повышения чувствительности и специфичности иммунологических реакций.

3. Разработаны модификации РАЭ для определения антигенов системы АВО с помощью МКА в следах крови, следах слюна (на поверхности клеток буккального эпителия и в надосадочной части), микрофрагментах волос и частицах перхоти.

4. Показана возможность применения дот-РИФ и дот-ИФА в качестве методик для отбора биологических объектов по видовому и групповому признаку.

5. Разработана комбинированная методика РАЭ - гель-фильтрация для выявления АВН антигенов в пятнах крови.

6. Обоснована тактика комплексного исследования объектов СМВД. Разработана подробная схема комплексного анализа следов выделений человека. Определено место иммунологических методик в соответствии с важностью получаемых данных

Апробация результатов работы

Материалы диссертационной работы были доложены на следующих научных форумах: на Всероссийских научно-практических семинарах экспертов-биологов МВД России в Нижнем Новгороде, 2001 г., в Великом Новгороде, 2002 г., в Волгограде, 2007 г; на Второй Всероссийской научно-практической конференции по криминалистике и судебной экспертизе ЭКЦ МВД РФ в Москве, 2004 г.; на рабочих совещаниях экспертов-биологов МЗ РФ в Анапе, 2006 г., в Новосибирске, 2006 г; на Всероссийской научно-практической конференции «Актуальные вопросы судебно-медицинской экспертизы вещественных доказательств» в Воронеже, 2007 г., на заседании биологической секции Московского научного общества судебных медиков, 2007 г.

Внедрение результатов работы

Результаты исследования внедрены в работу Института Криминалистики Центра специальной техники ФСБ РФ (Приложение А). Методика дот-ИФА для выявления антигенов в следах выделений и методика РАЭ для выявления антигенов в частицах перхоти используются в практике ряда криминалистических подразделений МВД РФ и судебно-медицинских бюро МЗ РФ.

На методики «Определение антигенов АВН и Lewis в следах выделений человека с помощью иммуноферментного анализа в дот-варианте», «Определения антигенов системы АВО в следах крови с помощью реакции аб-сорбции-элюции с использованием карточек «Скангель», «Определение групповой принадлежности микрофрагментов волос с помощью реакции аб-сорбции-элюции с использованием моноклональных антител», «Определение антигенов системы АВО в реакции абсорбции-элюции с помощью моноклональных антител в системе комплексного анализа микроследов слюны» получены положительные отзывы и материалы переданы в Федеральную службу по надзору в сфере здравоохранения и социального развития для оформления новых и усовершенствованных технологий.

Публикации

По теме диссертационного исследования опубликовано две печатные работы: одна статья в журнале «Судебно-медицинская экспертиза» и одни тезисы. На три статьи получены положительные отзывы и они приняты к печати в журнале «Судебно-медицинская экспертиза».

Изданы два информационных письма Российского центра судебно-медицинской экспертизы (№ 570/01-05 от 24.05.2001 «О судебномедицинском исследовании частиц перхоти» и № 408/01-07 от 12.04.2002 «Определение групповой принадлежности микрофрагментов волос»).

Структура и объем диссертации

Диссертационная работа состоит из введения, обзора литературы, экспериментальной части, заключения, выводов и списка литературы.

 
 

Заключение диссертационного исследования на тему "Иммунологические методики в комплексном анализе микрообъектов судебно-биологической экспертизы"

ВЫВОДЫ

1. Разработанные высокочувствительные и специфичные модификации РАЭ позволяют выявлять антигены системы АВО в следах крови, в следах слюны (на поверхности клеток буккального эпителия и в жидкой части), в микрофрагментах волос и в частицах перхоти. Условия проведения пробоподготовки и этапов реакции оптимизированы в соответствии с учётом морфологических и биохимических свойств различных мирообъектов и свойств МКА.

2. Подбор для каждого исследуемого объекта подходящих по свойствам МКА из линейки антител с различной эпитопной специфичностью, и, при необходимости, приготовление реагентов из асцитной жидкости путем проведения соответствующей очистки и концентрирования иммуноглобулинов, позволяет успешно использовать МКА для выявления антигенов с помощью РАЭ.

3. Предложенные способы предотвращения неспецифических взаимодействий, общие (использование неионного детергента твин 20, предварительное прогревание биологического материала на водяной бане) и характерные для каждого вида биологических объектов, позволяют повысить чувствительность методик при исследовании микрообъектов.

4. Строгое соблюдение разработанной системы правил проведения иммунологических реакций и хранения реагентов позволяет стандартизировать условия проведения реакций и получать стабильные результаты.

5. Разработанные методики РАЭ — гель-фильтрация, одностадийный вариант дот-ИФА метода ИФА позволяют успешно исследовать серийные образцы.

6. Предложенное использование ПВДФ мембраны и разработка методики РИФ в дот-варианте позволяет проводить экспресс-анализ групповой и видовой принадлежности биологических микрообъектов.

7. Внедрение в экспертную практику разработанных принципов комплексного подхода, выбор соответствующих методик и использование их по определённой схеме в соответствии с важностью получаемых данных, с учетом характера и состояния объектов, подлежащих исследованию, позволяет получить максимально возможную информацию при исследовании микроследов. Раздельное исследование составных элементов биологического материала следа (клеточного осадок и надосадочной жидкости) иммунологическими методами позволяет сэкономить биологический материал для МГИ, получать более достоверные данные при исследовании загрязненных объектов, а также предоставляет возможность более корректной оценки результатов реакции.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

В СМЭВД с начала прошлого столетия до появления молекулярно-генетических методов центральное место занимали иммунологические методы, РАЭ, КРА, РСА, РИФ, ИФА, которые позволяли дифференцировать выделения и ткани организма человека по групповым характеристикам. Многие авторы разрабатывали модификации данных методов, пригодные для исследования различных биологических объектов: крови, выделений, фрагментов тканей, волос. Наиболее чувствительные из них предназначались для типи-рования микроследов, анализ которых является одним из сложных разделов данного вида экспертизы. При работе с объектами, которые содержат незначительное количество детектируемых структур, должное внимание следует уделять не только выбору чувствительных методов анализа и подбору качественных реагентов, но и разработке новых методических приёмов. В доступной литературе нам встретилась только одна работа, посвящённая данной проблеме. М.А. Бронникова, М.В. Кисин и Т.В. Стегнова [6] предложили «комплексированные» методики для экспертизы следов крови малой величины, предусматривающие раздельное исследование осадка и надосадочной жидкости экстракта из пятна крови, а также фиксированных компонентов следа на предмете-носителе. К сожалению, в настоящее время в большинстве судебно-медицинских лабораторий для выполнения каждого вида анализа (установление наличия биологического материала, его видовой и групповой принадлежности, определение генотипа) используется отдельная часть биологического объекта. Такая ситуация резко ограничивает возможности экспертизы, особенно экспертизы микрообъектов.

Напротив, использование комплексного подхода позволяет получить максимально возможный объём информации, поскольку экономия материала и его рациональное использование предоставляют возможность применить большее числа методов для анализа одного объекта.

В диссертации предложены две схемы комплексного анализа, выбор которых зависит от структуры объекта. При параллельном исследовании выделенный из объекта биологический материал делится на составные части, которые исследуются различными методами. Если исследуемый объект не позволяет провести вышеописанную процедуру, то оптимальной представляется «последовательная» схема анализа: неразрушающие методы, затем методы, частично изменяющие структуру объекта и, наконец, разрушающие методы. На завершающих этапах экспертизы полученные результаты объединяют, анализируют и делают совместные выводы.

Схема комплексного анализа позволяет добиться наилучших результатов при исследовании в первую очередь микрообъектов. Хотя, с нашей точки зрения, в настоящее время следует к любому объекту относиться как к микрообъекту. При таком подходе, в результате экономии биологического материала возникает возможность использовать в исследовании большее количество методов, получать более объективные и достоверные результаты, сохранить биологический материал для проведения повторных и дополнительных экспертиз.

На современном этапе развития СМЭВД проведение любой экспертизы должно начинаться с иммунологических исследований, основная роль которых — проведение скрининга для отбора объектов с целью более успешного проведения в последующем МГИ. Для осуществления такого подхода необходимо признать разделение судебно-биологической и молекулярно-генетической экспертизы искусственным явлением. В противном случае теряется часть поисковой информации, и также могут быть зря израсходованы дорогостоящие реактивы и непроизводительно затрачено время эксперта.

В связи с изменившимися местом и ролью иммунологических методов исследования, необходимо определить первоочередные требования к их выполнению. Поскольку иммунологические методы используются на первых стадиях экспертизы, они должны быть применены так, чтобы обеспечить сохранение ДНК-содержащего материала для дальнейших МГИ. Установление групповой принадлежности желательно проводить по части материала, полученного из объекта и непригодного для генотипирования. Экономии биологического материала также способствует внедрение методик, обладающих высокой чувствительностью или носящих недеструктивный характер. Поскольку основные усилия экспертов должны быть направлены на получение идентификационных данных, а МГИ характеризуются сложностью и трудоемкостью, желательно, чтобы новые иммунологические методы отличались высокой технологичностью, простотой в исполнении и экспрессностью, что значительно снизит трудозатраты при определении групповой и видовой принадлежности и позволит проводить серийные исследования при поступлении на экспертизу большого количества однотипных образцов. Кроме того, желательно, повысить объективность оценки результатов, получаемых с помощью иммунологических методов.

В результате проведенных исследований разработан ряд иммунологических методик, пригодных для использования в системе комплексного анализа. В частности разработаны модификации РАЭ, которые позволяют использовать коммерчески доступные МКА для выявления антигенов АВН в микроследах крови (в том числе и с применением гелевой технологии), микроследах слюны (в надосадочной жидкости и в осадке), частицах перхоти и микрофрагментах волос. Разработан одностадийный вариант методики дот-ИФА для определения антигенов системы А, В, Н и Lea, Leb в микроследах слюны. Предложена методика дот-РИФ для экспресс-анализа с целью отбора объектов для дальнейшего исследования по видовому и групповому признаку.

Уменьшить трудозатраты и сократить продолжительность выполнения экспертиз, особенно в случаях поступления на экспертизу большого количества образцов, позволяет замена традиционного микроскопического метода оценки результатов РАЭ на гелевые технологии при исследовании следов крови. Такие же преимущества предоставляет дот-ИФА при исследовании выделений человека и дот-РИФ для предварительного отбора образцов.

Важно также отметить, что при использовании данных методик уменьшается или полностью исключается вероятность контакта рук эксперта с тест-эритроцитами крови, что особенно актуально в наше время в связи с распространением СПИДа и гепатитов.

Кроме того, имеется возможность подтвердить экспертные выводы документально, что повышает объективность полученных данных.

Методика одностадийного варианта дот-ИФА по сравнению с разработанным ранее двустадийным вариантом более экспрессна, надежна, методически проста, менее трудоемка. Также она предоставляет информацию не только о групповой характеристике, но одновременно и о статусе выделительства. Значит, отпадает необходимость постановки КРА, которая требует много материала и непригодна для микрообъектов.

Поскольку методика дот-ИФА выявляет антигены в жидкой части выделений, она позволяет сохранить клеточный материал для проведения моле-кулярно-генетического анализа. Такие же преимущества предоставляет модификация РАЭ, разработанная для выявления АВН антигенов слюны в на-досадочной жидкости. Данные два метода пригодны для установления групповой принадлежности следов только от лиц — выделителей групповых факторов. В слюне невыделителей антигены выявляют с помощью модификации РАЭ на поверхности клеток.

В результате разделения биологического материала и раздельного исследования фиксированных на клеточной поверхности и свободных антигенов слюны достигается экономия материала, возможность оптимального его распределения для каждой методики в соответствии с важностью получаемых данных. При таком подходе также создаются более благоприятные условия для получения корректных результатов в случае загрязнённых препаратов, в том числе при их обсеменении микроорганизмами. Кроме того, учитывая, что специфичность реакции зависит от соотношения антигенов и антител, типирование клеточного материала предоставляет еще одно преимущество, позволяя контролировать количество материала, взятого в реакцию.

Всё это способствует более правильной оценки экспертом результатов реакции.

При исследовании волос целесообразно групповые антигены выявлять в стержне, оставляя луковицу для МГИ. В данном случае возникают проблемы, связанные с биохимическими и структурными особенностями данного объекта. Для их разрешения в разработанной методике предложены ряд манипуляций как в пробоподготовке, так и в ходе самой реакции. Так, впервые предлагается прогревание стержня волоса на кипящей водяной бане. Данная процедура предотвращает появление неспецифических результатов. Кроме того, разрыхление кератиновой структуры стержня вследствие прогревания облегчает доступ антител к антигенным структурам волоса и тем самым приводит к усилению выраженности специфической реакции. В результате повышается надежность типирования микрофрагментов волос и волос от лиц со слабыми вариантами антигенов системы АВО.

Частицы перхоти являются информативным судебно-медицинским объектом. Многие из частиц могут содержать ядерную ДНК. Разработанная методика РАЭ по выявлению антигенов АВН в данном объекте позволяет исследовать данный объект как иммунологическими, так и молекулярно-генетическими методами. Таким образом можно предоставить идентифицирующую и разыскную информацию, необходимую для суда и следствия, при судебно-медицинском исследовании таких предметов, как шапки, воротники верхней одежды, шапки-маски и т. п.

Особый интерес представляет тот факт, что все методики разработаны с учетом особенностей МКА и позволяют с достаточной степенью надежности использовать их в практике судебно-медицинской экспертизы. В связи с тем, что в настоящее время судебно-медицинские лаборатории столкнулись с трудностями в получении активных изогемагглютинирующих сывороток, данное обстоятельство является особенно актуальным. Ряд исследователей, в том числе в нашей стране, исследовал возможность использования МКА в судебной серологии. В частности И. О. Перепечиной [16, 32] была отработана методика использования МКА в РАЭ. Не смотря на это, до сих пор отношение экспертов к данным реагентам неоднозначно. Связано это с несколькими факторами.

Во-первых, трудности возникают в связи с изменением первоначальных свойств МКА при хранении. Нам не удалось подобрать каких-либо компонентов для стабилизации. Добавление БСА, желатина, стабилизирующего раствора для антител, среды для роста клеток ДМЕМ не приводило к желаемому результату. В связи с этим мы предлагаем разливать МКА на аликвоты для проведения ежедневных исследований и хранить в замороженном виде. По нашему опыту МКА при таком способе сохраняют свои свойства в течение нескольких лет.

Во-вторых, производители МКА не всегда учитывают специфические потребности судебной серологии, в частности титр антител бывает недостаточно высокий, что приводит к невозможности использования данных реагентов для типирования, например, таких сложных объектов как волосы. В связи с этим была отработана методика приготовления очищенных реагентов с желаемым титром из культуральных и асцитных жидкостей путем осаждения глобулинов сульфатом аммония с последующей гельфильтрацией на колонке, заполненной сефадексом G-25. Оказалось, что для выявления А антигена в волосах целесообразно использовать иммуноглобулины, полученные осаждением сульфатом аммония при 40%-ом насыщении раствора солью, в то время как для выявления В и Н антигенов - при 50%-ом насыщении.

Результаты, полученные в ходе разработки методик, подтвердили литературные данные о необходимости, с одной стороны, подбирать МКА для каждого вида исследуемых объектов, для каждого варианта иммунологических реакций, а, с другой стороны, модифицировать сами реакции с учётом свойств новых реагентов.

В ходе выполнения исследований был разработан комплекс мер, которые способствуют снижению нежелательных реакций антител с посторонними агентами и в результате приводят к повышению специфичности реакции.

Первый способ состоит в прогревании биологического материала на кипящей водяной бане. Это, вероятно, приводит к инактивации пептидов, содержащихся в исследуемом образце и взаимодействующих неспецифически с антителами. Проведение такой пробоподготовки при исследовании волос усиливает специфическую реакцию, что связано, по-видимому, с повреждениями кератиновой структуры и обеспечением доступа антител к антигенным структурам волоса. Более выраженная реакция может быть также объяснена демаскировкой антигенных детерминант кипячением. В то же время при нагревании надосадочных жидкостей, полученных в результате центрифугирования экстрактов следов выделений, в ряде случаев наблюдается выпадение осадка, что приводит к уменьшению содержания групповых антигенов в растворе. С другой стороны, только так можно избавиться от неспецифических взаимодействий. Поэтому при постановке дот-ИФА со спермой и влагалищными выделениями, было предложено кипятить фрагменты НЦМ с нанесённой надосадочной жидкостью.

Второй способ состоит в использовании неионного детергента твин 20, который, в силу своих свойств, препятствует неспецифическому связыванию антител. Такой подход широко применяется в реакциях ИФА. Эффективным он оказался и для РАЭ. Данный реагент добавляют в раствор антител и фосфатно-солевой буфер для отмывания несвязавшихся антител. Впоследствии он легко удаляется и не препятствует реакции гемагглютина-ции.

В ряде случаев неспецифические реакции могут быть не связаны со свойствами антител или анализируемого объекта. Оказалось, что микробное загрязнение используемой воды, приготовленных реактивов и предметных стекол, а также сдвиг кислотно-щелочного равновесия реагентов могут привести к ложноположительным результатам. С целью предотвращения этих явлений были разработаны меры для соблюдения стандартных условий проведения иммунологической реакции и хранения реагентов, в частности, использование ФСБ вместо физиологического раствора; подготовка дистиллированной воды для проведения экстракции путём её фильтрации через мембраны с размером пор 0,45 мкм; хранение реагентов, разлитых на аликвоты, при температуре минус 20°С; использование реагентов после размораживания в течение одного рабочего дня.

Использование данных способов для блокировки неспецифических процессов, а также изменение параметров реакции позволяет применять МКА в классической реакции судебной серологии РАЭ.

Таким образом, в результате проведенных исследований были отработаны и проверены в экспертной деятельности методики РАЭ для выявления групповых антигенов системы АВО с использованием МКА. А также выработаны правила работы с МКА для получения специфических результатов.

Использование высокочувствительных и недеструктивных методов, разработка тактики экспертиз на основе комплексного анализа приведёт к экономии биологического материала. В результате возникает возможность для разработки и использования новых методик анализа биологических следов. Например, применяя методы ИФА в пятнах крови, следах выделений можно определить остаточные количества наркотиков, котинин. Введение объектсберегающих методик ИК-спектроскопии и микроспектрофлуоромет-рии позволит получить дополнительную информацию о цвете и искусственной обработке волос, а определение групповой принадлежности вышеопи1 санным методом сохранит материал стержня волоса для его использования в анализе митохондриальной ДНК. Внедрение новых методов в схему комплексного анализа значительно обогатит экспертизы и повысит достоверность получаемых результатов.

134

 
 

Список использованной литературы по медицине, диссертация 2008 года, Александрова, Вера Юрьевна

1. Антитела. Методы : кн. 2 / пер. с англ. ; под ред. Д. Кетти. М. : Мир, 1991.-287 с. - ISBN 5-03-002364-Х.

2. Барсегянц, JI. О. Судебно-медицинское исследование вещественных доказательств (кровь, выделения, волосы) : рук. для судеб, медиков / Л. О. Барсегянц. М.: Медицина, 1999. - 271 с. - ISBN 5-225-04441-7.

3. Богуславский, В. Л. К вопросу о возможности определения групповой принадлежности ткани в гистологических препаратах / В. Л. Богуславский, М. С. Свирский // Судеб.-мед. экспертиза. 1975. - №2. - С. 45-46.

4. Бромилов, И. М. Гелевая технология в серологии групп крови / И. М. Бромилов // Вестник службы крови России. — 1998. — №1. — С. 14-17.

5. Бронникова, М. А. Диагностика групповой принадлежности выделений человека при "парадоксальном" выделительстве / М. А. Бронникова, М. С. Свирский, Т. В. Стегнова // Судеб.-мед. экспертиза. 1984. - №3. -С. 40-43.

6. Бронникова, М. А. Особенности судебно-биологической экспертизы следов крови малой величины : метод, рек. / М. А. Бронникова, М. В. Кисин, Т. В. Стегнова; ВНИИ МВД СССР Л., 1982. - 78 с.

7. Верещака, М.Ф. Исследование антигенов А, В, Н, Р и S в одной вырезке из пятна крови / М. Ф. Верещака // Судеб.-мед. экспертиза. 1975. - №2. -С. 47-48.

8. Выявление антигенов системы АВО в фрагментах костей, ногтей и зубов / С. В. Гуртовая и др. // Судеб.-мед. экспертиза. 1996. - №4. - С. 23-25.

9. Гуртовая, С. В. Определение антигенов с помощью карточек «скангель» / С. В. Гуртовая, М. В. Маяцкая // Судеб.-мед. экспертиза. 2001. - №4. -С. 39-40.

10. Гуртовая, С. В. Применение обти-теста для определения наличия и вида крови в пятнах / С. В. Гуртовая, Л. Н. Тучик, О. Б. Курджиева // Судеб.-мед. экспертиза. — 1999. №5. - С. 23-25.

11. Дианова, Т. Н. Выявление группового антигена А в пятнах выделений методами иммуноэлектрофореза / Т. Н. Дианова, О. В. Николенко // Судеб.-мед. экспертиза. 1987. — № 2. - С. 32-33.

12. Дианова, Т. Н. О выявлении групповых антигенов системы АВО в стержнях волос методом абсорбции-элюции / Т. Н. Дианова // Судеб.-мед. экспертиза. 1974. - №1. - С.67-70.

13. Друзь, А. Ф. Использование моноклональных антител при анализе следов крови и слюны реакцией смешанной агглютинации / А. Ф. Друзь, Н. А. Мазная, Т. О. Хоменок // Судеб.-мед. экспертиза. — 1990. №4. - С. 15-16.

14. Друзь, А. Ф. О применении моноклональных антител анти-А и анти-В в судебной медицине / А. Ф. Друзь, Т. О. Хоменок // Судеб.-мед. экспертиза. -1989.-№2.-С. 22-23.

15. Друзь, А. Ф. Об установлении групповой принадлежности изолированных клеток с использованием моноклональных антител анти-А и анти-В / А. Ф. Друзь, Т. О. Хоменок // Судеб.-мед. экспертиза. 1989. -№3. - С. 42— 43.

16. Иванов, П. JI. Судебно-биологическая экспертиза реалии и перспективы / П.Л. Иванов, В.А Клевно // Судеб.-мед. экспертиза. — 2008. - №1. — С. 19— 24.

17. Использование моноклональных антител при экспертизе следов крови и выделений человека : методические рекомендации / И.О. Перепечина и др.. М. : ВНКЦ МВД СССР, 1991.-21 с.

18. Кисин, М. В. Определение групп системы АВО в потожировых отпечатках пальцев рук / М. В. Кисин, Т. В. Стегнова // Судеб.-мед. экспертиза. -1973.-№1.-С. 22-26.

19. Колоколова, Г. П. Диагностика группы ABSe системы АВО(Н) в следах слюны, спермы и секрета вдагалища с помощью реакции смешанной агглютинации / Г. П. Колоколова // Судеб.-мед. экспертиза. 2006. - №4. — С. 32-34.

20. Колыш, М. Ш. Выявление группоспецифических антигенов в волосах после контакта их с кровью и выделениями / М. Ш. Колыш, Т. И. Уточкина // Судеб.-мед. экспертиза. 1992. — №2. - С. 27-28.

21. Лапенков, М. И. Анти-АВН-LEWIS моноклональные антитела. Получение, определение эпитопной специфичности и применение в судебной медицине : дисс. . д-ра. мед наук / Лапенков Михаил Иванович. -М., 2002. -273 с.

22. Лапенков, М. И. Использование моноклональных антител для анализа следов биологического происхождения / М. И. Лапенков. Судеб.-мед. экспертиза. - 1995. -№1. - С. 29-33.

23. Лапенков, М. И. Получение, определение специфичности и применение анти-Le моноклональных антител / М. И. Лапенков, Т. Л. Николаева, Е. А. Аборина // Судеб.-мед. экспертиза. 2000. - № 4. - С. 25-29.

24. Моноклональные антитела к группоспецифическому антигену человека / Е. И. Дерюгина и др. // Судеб.-мед. экспертиза 1989. - № 4. - С. 35-39.

25. Моноклональные антитела к Н-антигену человека / Е. В. Дерюгина и др. // Судеб.-мед. экспертиза. 1992. - №4. - С. 18-20.

26. Об использовании метода иммунофлюоресценции для установления групповой принадлежности (по системе АВО) крови и изолированных клеток в следах на вещественных доказательствах : метод, рек. / В. П. Ольхо-вик и др.-М., 1988,- 14 с.

27. Об определении групп изосерологической системы АВО в волосах : метод. письмо / МЗ СССР. М., 1968. - 7 с.

28. Об определении групповой принадлежности волос по клеткам сохранных луковиц / В. В. Малоярославцева и др. // Судеб .-мед. экспертиза. — 2003. — №1.- С. 30-32.

29. Перепечина, И. О. Исследование пятен крови и выделений реакцией аб-сорбции-элюции с помощью моноклональных антител анти-Н / И. О. Перепечина, Р. С. Сахаров / Судеб.-мед. экспертиза. 1990. - №4 — С. 16-19.

30. Применение иммуноферментного анализа для определения АВН-антигенов в следах слюны и спермы / Е. И Дерюгина и др. // Судеб.-мед. экспертиза. 1992. - №2. - С. 23-26.

31. Свирский, М. С. Изучение методов абсорбции-элюции и смешанной агглютинации в судебно-медицинских целях : автореф. дисс. канд. мед. наук / М. С. Свирский. М., 1969. - 24 с.

32. Сигал, Е. Р. Определение групповой принадлежности слюны по системе АВО методом ракетного иммуноэлектрофореза / Е. Р. Сигал, Г. Е. Рукавишников, М. И. Потапов // Судеб.-мед. экспертиза. 1986. - №4. - С. 4042. ,

33. Сидоров, В. JL Физико-химические и иммунологические аспекты исследования пятен крови и спермы на объектах носителях : автореф. дисс. . канд. биол. наук / Сидоров Владимир Леонидович — СПб., 2000. — 22 с.

34. Сметанина, Н. И. Об исследовании групповой специфичности потожиро-вых выделений кожи рук / Н. И. Сметанина, И. В. Исакова, Е. Е. Гальцева // Судеб.-мед. экспертиза. 1996. - №3. - С. 35-36.

35. Стегнова, Т. В. Определение групп АВО в волосах методом абсорбции-элюции / Эксперт, практика. — 1977. №9. -С. 34-35.

36. Стегнова, Т. В. Волосы головы человека как объект судебно-биологической экспертизы : учеб. пособие / Т. В. Стегнова, В. JT. Печер-ский, С. Н. Князенков. М.: ВНИИ МВД СССР, 1990. - 40 с.

37. Стегнова, Т. В. Об исследовании гнилостно изменённых следов крови и выделений человека : информ. письмо / Т. В. Стегнова, И. О. Перепечина, Л. П. Уалерианова. М. : ЭКЦ МВД России, 1992. - 8 с.

38. Стегнова, Т. В. Основы формирования заключения эксперта при производстве судебно-биологической экспертизы : метод, рек. — М.: ЭКЦ МВД России, 1993.-24 с.

39. Томилин, В. В. Судебно-медицинское исследование вещественных доказательств / В. В Томилин, JI. О. Барсегянц, А. С. Гладких — М. : Медицина, 1989.-303 с.

40. Экспертные методики исследования тканей и выделений человека : учеб. пособие. М.: ЭКЦ МВД России, 2006. - 72 с.

41. Эпитопная характеристика анти-АВН моноклональных антител / М. И. Лапенков и др. // Проблемы гематологии. 1999. - № 2. — С. 39-44.

42. Юдина, Г. С. Новые подходы к исследованию костной ткани по изосеро-логической системе АВО / Г. С. Юдина, Е. Ф. Зарецкая, И. О. Перепечина // Судеб.-мед. экспертиза — 2005. — № 6. — С. 34-37.

43. A new membrane permeabilization method for the detection of intracellular antigens by flow cytometry / G. Hallden et al. // J. Immunol. Methods. 1989. -Vol. 124, N 1. - P. 103-109.

44. A sandwich enzyme-linked immunosorbent assay for ABO blood typing of semen by using anti-p 84 monoclonal antibody as a marker of blood group substance in semen / I. Sato et.al. // J. Forensic Sci. 2000. - Vol. 45, N 4. - P. 795-800.

45. A simple dot enzyme-linked immunosorbent assay for ABO blood typing of biological fluid and stains : effects of heating samples / K. Hamada et al. // Leg. Med. 2002. - Vol. 4, N 4. - P. 217-222.

46. ABH Antigen Typing in Bone Tissue 1 / H. C. Lee et al. // J. Forensic Sci. -1989.-Vol. 34, N 1. — P. 7-14.

47. ABO blood grouping of fingerprint by means of immunohistochemical procedure / Z. Lin et al. // Nippon Hoigaku Zasshi. 1993. - Vol. 47, N 2. - P. 98107.

48. ABO blood grouping of hairs using an avidin-biotin peroxidase complex technique / K. Nishi et al. // Z. Rechtsmedizin. 1989. - Vol. 102, N 4. - P. 247254.

49. ABO Blood Grouping of Human Hair by Universal Immuno-Peroxidase Polymer (UIP) Technique / Y. Hisashi et al. // Jap. J. Sci. and Technol. for Identification. 2003. - Vol. 7, N 2 - P. 145-153.

50. ABO blood grouping of saliva from mixed body fluids by sandwich methods using monoclonal antibodies to tissue specific epitopes on blood group substance in saliva / A. Kimura et al. // Int. J. Legal. Med. 1991. - Vol. 104, N 4. - P. 189-192.

51. ABO blood grouping of semen from mixed body fluids with monoclonal antibody to tissue-specific epitopes on seminal ABO blood group substance / A. Kimura et al. //Int. J. Legal. Med. 1991. - Vol. 104, N 5 - P. 255-258.

52. Absorbtion-elution grouping of single pieces of human hair measuring only 0.5 cm in length / S. Yada et al. // Acta Crim. Japon. 1974. - Vol. 40. - P. 187189.

53. Akaishi, S. Studies on the group-specific double combination method / Akaishi S. // Jpn. J. Legal Medicine. 1965. - Vol. 19, N3.-P. 177-187.

54. Analysis of blood group active glycolipids in hairs and nails, and development of a novel blood grouping method / Y. Saito et. al. // J. Wakayama Med. Soc. — 2003.-Vol. 54,N 1.-P. 21-29.

55. Application of ABO Blood Grouping Monoclonal Antibodies to Forensic Samples / T. Ohmori et al. // Jpn. J. Forensic Sci. Tech. 1996. - N. 1 - P. 43 -48.

56. Biwasaka, H. Detection of ABH blood group antigens from minute human hairs using polyvinylidene difluoride membrane with elution — ELISA method /

57. H. Biwasaka, N. Nakayashiki, Y. Aoki // Jpn. J. Legal. Med. 1998. - Vol. 52, N 1. - P. 37—41.

58. Blood group A glycosphingolipid accumulation in the hair of patients with al-pha-N-acetylgalactosaminidase deficiency / A. Kimura et al. // Life Sci. — 2005.-Vol. 76, N 16.-P. 1817-1824.

59. Blood grouping of mixed bloodstains using immunocytochemical methods / Y. Bunai et al. // J. Forensic. Sci. 1999. - Vol. 44, N 1. - P.l00-104.

60. Bolton, S. Enzyme Linked Immunosorbent Assay for A and В Water Soluble Blood Group Substances / S. Bolton., J. W. Thorpe // J. Forensic. Sci. 1986. -Vol. 31, N 1.- P. 27-35.

61. Comparison of presumptive blood test kits including Hexagon OBTI / E. Johnston et al. // J. Forensic. Sci. 2008. - Vol. 53, N 3. - P. 687-689.

62. Comparison of tube and gel techniques for antibody identification / M. C. Z. Novaretti et al. // Immunohematology. 2000. - Vol. 16, N 4. - P. 138-141.

63. Coombs, R. R. A. A and В blood-group antigens of human epidermal cells demonstrated by mixed agglutination / R.R.A. Coombs, D. Bedford, L.M. Rouil-lard // Lancet. 1956. -N 1. - P. 461-^63.

64. Demonstration of pneumoccocal antigen in tissues by use of fluorescent antibody / A.H. Coons et al. // J. Immunol. 1942. - Vol. 4, N 3. - P. 159-170.

65. Determination of ABO blood grouping from human oral squamous epithelium by the highly sensitive immunohisto chemical staining method EnVision+ / H. Noda et al. // J. Forensic. Sci. 2002. - Vol. 47, N 2. - P. 341-344.

66. Difference in the ability of blood group-specific lectins and monoclonal antibodies to recognize the ABH antigens in human tissues / N. Ito et al. // Histochem. J. 1990. - Vol. 22, N 11. - P. 604-614.

67. Farr, A. G. Immunohistochemistry with enzyme labeled antibodies: a brief review / A.G. Farr, P.K. Nakane // J. Immunol. Meth. 1981. - Vol. 47, N 2. - P. 129-144.

68. Fiori, A. Modifed Absorption-Elution Method of Siracusa for ABO and MN Grouping of Bloodstains / A. Fiori, M. Marigo, P. Benciolini // J. Forensic. Sci. -1963. Vol. 8, N 3. - P. 419-445.

69. Forensic Examination of Hair / edited by James Robertson. London: Taylor and Francis, 1999. - 280 p.

70. Gaensslen, R. E. Evaluation of monoclonal anti-A and anti-B and affinity-purified Ulex europaeus lectin I for forensic blood grouping / R. E. Gaensslen, H. C. Lee, J. E. Carroll // Z. Rechtsmed. 1984. - Vol. 93, N 4. - P. 259-268.

71. Herber, B. DNA typing of human dandruff / B. Herber, K. Herold // J. Forensic Sci. 1998. - Vol. 43, N 3. - P. 648-656.

72. Histochemical localization and analysis of blood group-related antigens in human pancreas using immunostaining with monoclonal antibodies and exoglyco-sidase digestion / N. Ito et al. // J. Histochem. Cytochem. 1990. - Vol. 38, ,N 9.-P. 1331-1340.

73. Kind, S. S. Absorbtion-Elution Grouping of Dried Blood Smears / S. S. Kind // Nature. 1960. - Vol. 185, N 4710. - P. 397-398.

74. Kirov, K. Immunofluorescent study of the blood-group antigens A and В in the buccal cells of human secretors and non-secretors / K. Kirov, I. Boulanov // Dokl. Bulg. Acad. Nauk. 1969. - Vol. 22, N 8. - P. 959-962.

75. Kiyoyuki, W. Highly Sensitive Method for Determination of ABO Blood Groups Using Absorption-Elution Test Combined with ELISA and Its Automation / W. Kiyoyuki // Jpn. J. Forensic Sci. Tech. 2002. - Vol. 7, N 1. - P. 6169.

76. Kobayashi, T. Effects of solvent displacementon sensitivity and specificity of monoclonal antibodies for ABO blood grouping of forensic specimens with ab-sorbtion-elution test / T. Kobayashi II Legal Med. 1999. -N 1. - P. 68-75.

77. Kronick, M. N. The use of phycobiliproteins as fluorescent labels in immunoassay / M. N. Kronick // J. Immunol. Meth. 1986. - Vol. 92. - P. 1-13.

78. Lincoln, P. J. The use of monoclonal antibodies for the detection of red cell antigens in stain material / P. J. Lincoln, P. H. Watts // Adv. Forensic Haemogenet. 1988.-N2.-P. 284-289.

79. Lindqvist, L. Determination of salivary ABH-blood group antigens by rocket affinoelectrophoresis / L. Lindqvist // Vox. Sang. 1982. -N 3. - P. 124-130.

80. Maeda, H. Application of commercially available monoclonal blood grouping reagents to detection of antigens in forensic materials / H. Maeda , M. Imura // Nihon Hoigaku Zasshi. 1992. - Vol. 46, N 6. - P. 428-430.

81. Mudd, J.L. The detection of soluble ABH blood group substances in semen and saliva using monoclonal blood grouping reagents / J.L. Mudd, D.E. Adams // J. Forensic Sci. 1989. - Vol. 34, N 5. - P. 1082-1089.

82. Nakane, P.K. Enzyme-labeled antibodies for the light and electron microscopic localization of tissue antigens / P.K. Nakane, G.B. Pierce, Jr. // J. Cell. Biol. — 1967.-Vol. 33, N2.-P. 307-318.

83. Noguchi, K. Modification of Acid Elution Method Using Commercial Monoclonal Antibodies for ABO Blood-Typing / Noguchi Kasumi, Nara Manpei, Ohmori Takeshi // Jpn. J. Forensic Sci. Tech. 2004. - Vol. 9, N 1. - P. 79-88.

84. Ohmori, T. Improvement of absorbtion-elution test using commercially available anti-A, anti-B monoclonal antibodies — ABO blood typing from hair samples / T. Ohmori, H. Sato // Jpn. J. Legal. Med. 1999. - Vol. 53, N 3. - P. 338 -344.

85. Origin of an 84-kDa protein with ABH blood-typing antigen activity in human seminal plasma /1. Sato et.al. // J. Androl. 1999. - Vol. 20, N 4. - P. 481-486.

86. Parigian, M. J. An ELISA procedure for the detection of soluble ABH blood group substance in semen, saliva, and vaginal samples / M. J. Parigian // J. Forensic Sci. 1995. - Vol. 40, N 1. - P. 122-1255.

87. Pfeiffer, H. Immunohistochemical detection of an ABO-incompatible blood transfusion in formalin-fixed tissue / H. Pfeiffer, C. Ortmann, B. Brinkmann // Int. J. Legal Med. 2002. - Vol. 116, N 1. - P. 33-35.

88. Pflug, W. ABO and Lewis typing of secretion stains on nitrocellulose membranes using a new dot-blot-ELISA technique / W. Pflug, G. Bassler, B. Eberspacher // Forensic Sci. Int. 1989. - Vol. 43, N 2. - P. 171-182.

89. Preparation of latex reagents combined with IgM and its F(ab')2 fragment from commercial ABO blood grouping reagent / H. Nakanishi et al. // Colloids Surf. B. Biointerfaces. 2007. - Vol. 54, N 1.-P. 114-117.

90. Rao, D. V. A simple dipstick immunoassay for detection of A and В antigens / D. V. Rao , V. K. Kashyap // J. Immunoassay. 1992. - Vol. 13, N 1. - P. 1530.

91. Reliability of blood grouping of aged blood by two direct hemagglutination methods and absorption elution method / K. Nishi et al. // Nippon Hoigaku Zasshi. 1985. - Vol. 39, N 2. - P. 131-137.

92. Semen specific gamma-glutamyltransferase carries ABH antigens: a sandwich ELISA for simultaneous semen detection and its ABO blood typing / S. Abe et al. // Clin. Chim. Acta. 1999. - Vol. 283, N 1/2. - P. 183-194.

93. Szulman, A. E. The histological distribution of blood group substances A and В in man / A. E. Szulman // J Exp Med. 1960. - Vol. 111, N 6. - P. 785800.

94. Takatori, T. Lewis Typing of Human Bloodstains by Enzyme Linked Immunosorbent Assay (ELISA) Using Monoclonal Anti-Lea and Anti-Leb / T. Takatori, Y. Tustsubushi, K. Terasawa // J. Forensic Sci. — 1987. Vol. 32, N 4. — P. 900-905.

95. Takatori, T. An ELISA Avidin-Biotin Complex for the Determination of ABH Group from Saliva / T. Takatori, Y. Tustsubushi // Forensic Sci. Int. — 1986. Vol. 31, N 1. - P. 61-68.

96. The ABO blood grouping of a minute hair sample by the immunohisto-chemical technique / S. Miyasaka et al. // Forensic Sci. Int. — 1987. Vol. 34, N 1/2. - P. 85-98.

97. The gel test : a new way to detect red cell antigen-antibody reactions / Y. Lapierre et al. // Transfusion. 1990. - Vol. 30. - P. 109-113.

98. The rapid measurement of ABO blood type by using surface-plasmon resonance sensor / K. Nanameki et al. // Jpn. J. Forensic Sci. Tech. — 1999. Vol. 48, N 7. - P. 669-672.

99. Two-dimensional absorbtion-ingibition / C. Henry et al. // J. Forensic. Sci. 1988. - Vol. 33, N 5. - P. 1127-1138.

100. Unique and sensitive ELISA technique for typing ABH antigens in bloodstains using UEA-I lectin — the removal of detergent with a Sephadex G-25 mini-column improves sensitivity / K. Matsubara et al. // J. Forensic Sci. 1996. — Vol. 4, N 1.-P. 35-39.

101. Yodoya, J. The Modified Mixed Cell Agglutination Reaction on Method with Monoclonal Antibodies to Determine ABO Blood Groups from Forensic Samples / J. Yodoya, K. Igarashi // Jpn. J. Forensic Sci. Tech. — 2002. — Vol. 6, N 2. P. 85-97.

102. Yodoya, J. Application of the Mixed Cell Agglutination Reaction Technique with Mouse Monoclonal Antibodies to Determination of ABO Blood

103. Groups from Forensic Biological Specimens / J. Yodoya, K. Ameno, K. Igara-shi// Acta Criminol. Medicin. Legal. Japon. 2004. - Vol. 70, N 5 - P. 153-158.