Автореферат и диссертация по медицине (14.01.02) на тему:ГОРМОНЫ ЖИРОВОЙ ТКАНИ - АДИПОНЕКТИН И ВИСФАТИН И ЭКСПРЕССИЯ КОНТРОЛИРУЮЩИХ ИХ ГЕНОВ ПРИ ОЖИРЕНИИ У ДЕТЕЙ

ДИССЕРТАЦИЯ
ГОРМОНЫ ЖИРОВОЙ ТКАНИ - АДИПОНЕКТИН И ВИСФАТИН И ЭКСПРЕССИЯ КОНТРОЛИРУЮЩИХ ИХ ГЕНОВ ПРИ ОЖИРЕНИИ У ДЕТЕЙ - диссертация, тема по медицине
АВТОРЕФЕРАТ
ГОРМОНЫ ЖИРОВОЙ ТКАНИ - АДИПОНЕКТИН И ВИСФАТИН И ЭКСПРЕССИЯ КОНТРОЛИРУЮЩИХ ИХ ГЕНОВ ПРИ ОЖИРЕНИИ У ДЕТЕЙ - тема автореферата по медицине
Косыгина, Анна Васильевна Москва 2011 г.
Ученая степень
кандидата медицинских наук
ВАК РФ
14.01.02
 
 

Автореферат диссертации по медицине на тему ГОРМОНЫ ЖИРОВОЙ ТКАНИ - АДИПОНЕКТИН И ВИСФАТИН И ЭКСПРЕССИЯ КОНТРОЛИРУЮЩИХ ИХ ГЕНОВ ПРИ ОЖИРЕНИИ У ДЕТЕЙ

Косыгина Анна Васильевна

ГОРМОНЫ ЖИРОВОЙ ТКАНИ - АДИПОНЕКТИН И ВИСФАТИН - ПРИ ОЖИРЕНИИ У ДЕТЕЙ

(14.01.02 —Эндокринология)

АВТОРЕФЕРАТ диссертации на соискание ученой степени кандидата медицинских наук

1 2 МАЙ 2011

Москва-2011

4846216

Работа выполнена в ФГУ «Эндокринологический научный центр» Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации (Директор - академик РАН и РАМН, профессор И И. Дедов)

Защита диссертации состоится « 25 » мая 2011 г. в 14 часов на заседании диссертационного Совета Д 208.126.01 в ФГУ Эндокринологический научный центр Минздравсоцразвития РФ по адресу: Москва, ул. Дм. Ульянова, 11

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке ФГУ ЭНЦ Минздравсоцразвития РФ Автореферат разослан «25» апреля 2011 г.

Научный руководитель:

Дедов Иван Иванович,

академик РАН и РАМН, профессор

Официальные оппоненты:

Щербакова Марина Юрьевна,

доктор медицинских наук, профессор Ремизов Олег Валерьевич, доктор медицинских наук

Ведущая организация:

ГОУ ДПО «Российская медицинская академия последипломного образования»

Ученый секретарь Диссертационного совета Доктор медицинских наук, профессор

Е.А. Трошина

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность темы

В последние десятилетия избыточная масса тела и ожирение стали одной из важнейших проблем для жителей большинства стран мира. По последним оценкам ВОЗ, более миллиарда человек на планете имеют лишний вес, зарегистрировано более 300 млн. больных ожирением. Особенно тревожная тенденция наблюдается среди детей и подростков. Ежегодные темпы роста показателей распространенности ожирения среди детей и подростков непрерывно увеличиваются и, по данным ВОЗ, в настоящее время до десяти раз превышают уровень 1970г [Branca F. и соавт., 2007]. Нарастание числа детей с ожирением и избыточной массой тела происходит также и в России. По данным эпидемиологических исследований, в Российской Федерации распространенность избыточной массы тела у детей в разных регионах России колеблется от 5,5 до 11,8%, а ожирением страдают около 5,5% детей, проживающих в сельской местности, и 8,5% детей — в городской [Петеркова В.А. и соавт., 2004]. Детское ожирение влечет за собой как краткосрочные, так и долгосрочные неблагоприятные последствия для физического и психосоциального здоровья, и во многом является фактором риска для развития сердечнососудистых заболеваний, диабета, ортопедических проблем и психических расстройств.

Изучение этиопатогенеза ожирения является одним из приоритетных направлений в современной эндокринологии. В последние годы активно обсуждается самостоятельная роль жировой ткани в патогенезе ожирения и связанных с ним заболеваний - сахарного диабета (СД), сердечнососудистой и онкологической патологии, нарушениями в репродуктивной сфере, патологией опорно-двигательного аппарата, а также отклонениями в психическом статусе и процессах социальной адаптации.

Известно, что жировая ткань синтезирует и секретирует большое количество биологически активных пептидов, так называемых адипокинов, которые действуют как на локальном (аутокринном/паракринном) уровне, так и системно. В дополнение к этому, жировая ткань экспрессирует ряд рецепторов, которые позволяют отвечать на афферентные сигналы внутренних органов и центральной нервной системы. Таким образом, жировая ткань вовлечена в координацию многих биологических процессов, включая метаболизм энергии, нейроэндокринные и иммунные процессы.

Увеличение массы жировой ткани, особенно ее висцерального компонента, ассоциировано с инсулинорезисгентностью, гипергликемией, дислипидемией, нарушением коагуляции, активацией воспаления, что приводит к развитию сахарного диабета. Вместе с тем, самостоятельная роль висцерального и подкожного депо в развитии тех или иных метаболических нарушений у детей и

подростков на сегодняшний день изучена недостаточно. Предполагается что, изучение физиологических особенностей жировой ткани в детском возрасте позволит выделить диагностические маркеры метаболических нарушений.

Цель исследования

Исследовать молекулярно-генетические и гормональные особенности подкожного и висцерального депо жировой ткани и определить клиническое значение исследований гормонов жировой ткани - адипонектина и висфатина - при ожирении у детей и подростков.

Задачи исследования

1. Исследовать содержание адипокинов - адипонектина, висфатина - в сыворотке крови у детей и их взаимосвязь с возрастом, стадией полового развития и основными антропометрическими характеристиками;

2. Изучить особенности содержания адипокинов в сыворотке крови при ожирении у детей, » зависимости от степени ожирения и наличия метаболических осложнений;

3. Исследовать экспрессию генов адипонектина - ADIPOQ, висфатина - PBEFI, рецепторов активируемых пролифераторами пероксисом у 1 и 2 - PPARG и каннабиноидног рецептора 1 типа - CNRI в висцеральной и подкожной жировой ткани у детей и взаимосвязь с ИМТ;

4. Проанализировать взаимосвязь между уровнем экспрессии генов в жировой ткани возрастом, стадией полового развития, основными антропометрическим характеристиками и содержанием адипокинов в сыворотке крови.

Научная новизна

Впервые в мировой и отечественной практике были исследованы особенности экспрессии гено ADIPOQ, PBEFI, PPARG I, PPARG2 и CNRI в висцеральной и подкожной жировой ткани у детей нормальной массой тела, избытком массы тела и ожирением. Была определена взаимосвязь межд уровнем экспрессии генов в жировой ткани, содержанием адипокинов сыворотки крови, а такж между этими показателями и основными антропометрическими индексами и стадией полово развития. Получены данные об изменении содержания адипокинов в крови при ожирении у детей i подростков. Определена взаимосвязь между содержанием адипокинов сыворотки крови i метаболическими нарушениями, ассоциированными с ожирением.

Практическая значимость

Получены данные о прогрессивном снижении содержания адипонектина сыворотки крови по мере полового созревания и отрицательной взаимосвязи с показателями ИМТ и ОТ у здоровых детей. Выявлено значимое снижение уровня адипонектина у детей с ожирением, особенно выраженное при наличии инсулинорезистентности.

Показана четкая взаимосвязь уровня висфатина сыворотки крови с массой жировой ткани у детей с ожирением, а также взаимосвязь сыворотчной концентрации висфатина с инсулинорезистентностью и дислипидемией.

Разработана методика определения уровня экспрессии генов в висцеральной и подкожной жировой ткани.

Исследована экспрессия генов адипонектина, висфатина, рецепторов, активируемых пролифераторами пероксисом гамма 1 и 2 типов и каннабиноидных рецепторов 1 типа в жировой ткани у здоровых детей и детей с избыточной массой тела и ожирением. Получены данные о депо-специфических различиях экспрессии генов висфатина - РВЕР1 и рецептора РРЛНС2 в подкожной и висцеральной жировой ткани у детей. Показано преобладание экспрессии гена рецептора, активируемого пролифераторами пероксисом гамма 1 типа в жировой ткани. Выявлена .ассоциация экспрессии генов рецепторов РРАЯу и КБ 1 с уровнем экспрессии генов адипокинов. -

Апробация работы

Основные результаты исследования по материалам диссертации были доложены на Съезде Европейского и Американского Обществ Детских Эндокринологов (Нью Йорк, сентябрь 2009г.), Всероссийском конгрессе «Современные технологии в эндокринологии» (Москва, ноябрь 2009г.), межотделенческой научной конференции ФГУ ЭНЦ Росмедтехнологий (Москва, июнь 2010г.), II Международном симпозиуме «Ожирение у подростков» (Сербия, март 2011г.).

Публикации

По материалам диссертации опубликовано 7 научных работ, из них 4 статьи в журналах, рецензируемых ВАК РФ.

Объем и структура работы

Диссертация изложена на 139 страницах машинописного текста, состоит из введения, обзора литературы, описания собственных исследований, заключения, выводов, практических рекомендаций и указателя списка литературы, который содержит 7 отечественных и 232 иностранных источников. Диссертация иллюстрирована 32 таблицами и 20 рисунками.

Содержание работы

Материалы исследования:

Содержание адипокинов в сыворотке крови было исследовано у Ш детей и подростков, в числе которых 56 пациентов с «простым» конституционально-экзогенным ожирением, SDS ИМТ 2,98 [2,7 + 3,4], в возрасте от 3,4 до 17,5 лет, 12 детей с избыточной массой тела, SDS ИМТ 1,65 [1,5 + 1,8], в возрасте от 10,5 до 16,5 лет и группа детей с нормальным весом - 43 ребенка, SDS ИМТ 0,3 [-0,36 -=-0,7] в возрасте от 2,5 до 17,9 лет, табл. I.

Таблица 1.

Характеристика обследованных пациентов.

Нормальный вес п =43 Избыток веса п =12 Ожирение п =56 Р

Возраст, годы 11,7 [6,6+ 15,1] 14,5 [13,6+15,5] 13,6 [12,4+ 14,8] <0,05 *

Пол, м/д 20/23 7/5 27/29 >0,05 #

Половое развитие Таннер 1 Таннер2-3 Таннер4—5 20 (47 %) 15 (35 %) 8 (19 %) 1 (8%) 9 (75%) 2 (17%) 9(18%) 22 (39 %) ' 24 (43 %) <0,05*,** <0,05*,*** <0,05**, ***

SDS роста 0,33 [-0,47 + 0,8] 0,39 [0,1+0,831 1,16 [0,5+ 1,981 <0,01 **

ОТ, см 62 [52 - 70] 82 [79 + 86,5] 102 [97 + 111] <0,01 **, ***; <0,05 *

ИМТ, кг/м2 18,4 [15,4+ 20,9] 24,5 [23,5 + 25,7] 31,1 [28,7 + 35,2] <0,01 **, ***; <0,05 *

SDS имт 0,3 [-0,36 + 0,72] 1,66 [1,5+ 1,8] 2,98 [2,7 + 3,4] <0,01 **, ***; <0,05 *

Примечание: Данные представлены в виде медианы и интерквартильного размаха. Различия достоверны между группами: * - нормальный вес - избыток веса; ** - нормальный вес - ожирение; *** - избыток веса - ожирение; К - между всеми группами.

Экспрессии генов в висцеральной и подкожной жировой ткани была исследована у 62 дете" с различными показателями ИМТ, подвергшихся плановым оперативным лапароскопически вмешательствам (герниотомия, пластика пищеводного отверстия диафрагмы и др.). Критериям исключения являлись сопутствующая хроническая патология, острые воспалительные заболевай (аппендицит, острый холецистит). Все дети, включенные в исследование, не имели патологическ отклонений в общеклиническом и биохимическом анализах крови и анализе мочи. Все включенные исследование дети были разделены на две группы в зависимости от показателя ЗОБ ИМТ: 1 группа -дети с нормальной массой тела (ЗОБ ИМТ < 1,5); 2 группа - дети с избытком массы тела и ожирение (БОБ ИМТ > 1,5). Клиническая характеристика пациентов представлена в таблице 2.

Таблица 2.

Характеристика обследованных пациентов.

Все Нормальный вес Избыток веса Р

п =62 п =43 п =19

Возраст, годы 13,6 [8,5 + 15,1] 11,7 [6,6 + 15,1] 14[13,4 + 15,1] 0,02

Пол, м/д 31/31 20/23 11/8 >0,05

Половое развитие

Таннер 1 (I) 21 (34%) 20 (47%) 1 (5%) <0,05

Таннер 2-3(11) 28 (45%) 15 (35%) 13 (68%) <0,05

Таннер4-5 (III) 13(21%) 8(19%) 5(26%) >0,05

SDS роста 0,34 [-0,36+0,98] 0,33 [-0,47+ 0,8] 0,46 [0,04+ 1,35] >0,05

ОТ, см 70 [56 + 78] 62 [52 + 70] 85 [78 + 95] <0,01

ИМТ, кг/м2 20,8[16,5 -23,6] 18,4[15,4+ 20,9] 26,1[23,7+27,3] <0,01

SDS имт 0,65 [-0,07+1,46] 0,29 [-0,36 + 0,72] 1,92 [1,6+ 2,4] <0,01

Примечание: Данные представлены в виде медианы и интерквартильного размаха. Различия достоверны между группами: нормальный вес и избыток веса.

Методы исследования:

Общеклиническое обследование (сбор анамнеза, осмотр, антропометрия, оценка физического и полового развития) пациентов проводилось в Институте детской эндокринологии ФГУ ЭНЦ (директор — проф. В.А. Петеркова) и на кафедре детской хирургии МГМСУ (зав. кафедрой - проф. И.В. Поддубный).

Антропометрические измерения включали: измерение роста, веса, окружности талии, в соответствии с принятыми правилами, каждое измерение проводилось трижды, после чего вычислялось среднее значение. Обработка антропометрических данных проводилась с учетом пола и возраста пациента и оценивалась в стандартных отклонениях (SDS — standard deviation score) от среднего. Для оценки степени отклонения роста пациентов от среднего роста в популяции рассчитывался коэффициент стандартного отклонения SDS роста по следующей формуле: SDS = X -X7SD, где X - рост пациента, X' - средний рост для данного хронологического возраста и пола, SD -стандартное отклонение для данного хронологического возраста и пола. Индекс массы тела (ИМТ) рассчитывался как отношение массы тела (кг) к длине тела (м), возведенной в квадрат. ИМТ оценивался индивидуально по нормативам для конкретного возраста и пола и был представлен в виде числа стандартных отклонений от среднего (SDS). SDS ИМТ рассчитывался как X - X7SD, где X - lg ИМТ пациента, X' - lg среднего ИМТ для данного хронологического возраста и пола, SD - Ig стандартного отклонения ИМТ для данного хронологического возраста и пола. При расчете SDS весоростовых показателей пациентов использовались популяционные данные, используемые в базе KIGS: SDS роста пациентов - данные Tanner J, Whitehouse Н [1966, 1976], SDS ИМТ-данные Freeman

J, Cole T [1995]. Диагностическим критерием избыточного веса считался SDS ИМТ > 1,5 <2; диагностическим критерием ожирения считался SDS ИМТ > 2.0.

Оценка полового статуса проводилась согласно классификации Tanner [1968]. Объем тестикул измерялся с помощью орхидометра Prader.

Гормональные исследования проводились в лаборатории гормонального анализа ФГУ ЭНЦ (рук. - проф. Н.П. Гончаров) и включали определение адипонектина методом иммуноферментного анализа с помощью набора Human Adiponectin ELISA, фирмы BioVendor, висфатина методом иммуноферментного анализа с помощью набора Visfatin C-terminal (human), фирмы Phoenix Pharmaceuticals inc., иммунореактивного инсулина (ИРИ) иммунохемолюминисцентным методом на аппарате «Elecsys 2010», Roche, Германия.

Биохимические исследования сыворотки крови - липидограмма (общий холестерин, ХС-ЛПНП, ХС-ЛПВП, ТГ), печеночные ферменты (ACT, AJIT) и глюкоза - проводилось в биохимической лаборатории ФГУ ЭНЦ (рук. - A.B. Ильин) ферментативным способом на биохимическом анализаторе «Spectrum II» (Abbott, США).

Показатели липидов и липопротеидов считали нормальными при уровне холестерина < 5,2 ммоль/л; ХС-ЛПВП > 1,1 ммоль/л; ХС-ЛПНП < 3,0 ммоль/л; ТГ < 1,2 ммоль/л.

Состояние углеводного обмена и секреции инсулина оценивали по результатам стандартного перорального глюкозотолерантного теста (ОГТТ) с глюкозой из расчета 1,75 г/кг, но не более 75 г сухого вещества на основании рекомендаций ВОЗ (1998). Нормальной считалась концентрация глюкозы в венозной плазме натощак <6,1 ммоль/л; глюкоза венозной плазмы на 120 мин ОГТТ <7,8 ммоль/л. Для оценки инсулинорезистентности использовались индексы - HOMA-IR и индекс Matsuda: •

HOMA-IR = (ИРИ0хГл0У22,5 ISI Matsuda = ЮООО/^ИРИохГлохИРИсредхГлсрсд),

где ИРИ — иммунореактивный инсулин, Ед/л; Гл — глюкоза, ммоль/л. ИРИо, Гло — инсулин и глюкоза плазмы натощак; HPHcpcj, Глсред — средний уровень инсулина и глюкозы при проведении ОГТТ.

Ультразвуковое исследование органов брюшной полости проводили по общепринятой методике в отделении функциональной диагностики ФГУ ЭНЦ (зав. отделением функциональной диагностики ФГУ ЭНЦ - Т.В. Соддатова) на ультразвуковых аппаратах Hewlett Packard Image Point(CIlIA), Agilent Sonos 4500 (США) с использованием линейного трансабдоминального датчика с частотой 3,5МГц.

Определение композиционного состава тела проводили в отделении функциональной диагностики ФГУ ЭНЦ (зав. отделением функциональной диагностики ФГУ ЭНЦ - Т.В. Соддатова) методом рентгеновской денситометрии по протоколу «Total body» на аппарате Prodigy Oracle.

Определение экспрессии генов в образцах висцеральной н подкожной жировой ткани проводилось в лаборатории ООО «ДНК-синтез» (руководитель — к.б.н. В.А. Сосунов) методом полимеразной цепной реакции в «реальном времени». Выделение РНК из жировой ткани проводилось с помощью набора SV Total RNA Isolation System (Promega). После выделения РНК обрабатывалась ДНКазой (RQ1 RNase-Free DNase, Promega), и еще раз очищалась с помощью набора SV Total RNA Isolation System (Promega). Полученная РНК хранилась при температуре -70°С до проведения анализа. Синтез кДНК проводился из полученной РНК с помощью набора First Strand cDNA Synthesis Kit (Fermentas) (в реакцию брали 2 мкг РНК, полученную кДНК разводили до 200 мкл). Уровень экспрессии генов интереса оценивался относительно экспрессии гена В2М.

Таблица 3.

Последовательности праймеров и зондов.

Ген Праймер Зонд

ADIPOQ (HUMAN) F = GGTTTCACCGATGTCTCCCTT R = CGTGATGGCAGAGATGGCA FAM- CCTGGATCTCCTTTCTCACCCTTCTCA-BHQ1

PBEFI F = TGTTGTAACTAATGGCCTTGGGA R=ATTCCCTGCTGGCGTCCTAT FAM- CTTCAAGGACCCAGTTGCTGATCCC-BHQ1

PPARGI F = GTGGCCGCAGAAATGACC R = CCACGGAGCTGATCCCAA FAM- AGAGATGCCATTCTGGCCCACCAACTT-BHQ1

PPARG2 FK3ATACACTGTCTGCAAACATATCACAA R = CCACGGAGCTGATCCCAA FAM- AGAGATGCCATTCTGGCCCACCAACTT-BHQ1

CNR1 F = AAGACGGTGTTTGCATTCTG R = GTCGCAGGTCCTTACTCCTC Зонда нет, реакцию проводили в присутствии красителя SYBR Green I

Статистическая обработка данных проводилась с использованием пакета прикладных программ Statistica (StatSoft Inc., USA, version 8.0). Так как большинство изучаемых показателей не имело приближенно-нормального распределения, все данные представлены в вцце медианы и интерквартильных размахов - Me [Х1/4 -s- ХЗ/4]. Статистическая обработка полученных результатов проводилась с помощью непараметрических критериев статистического анализа. Для сравнения двух независимых выборок по количественным признакам использовался критерий Манна-Уитни, по качественным признакам - критерий %2 (хи-квадрат). Для сравнения двух зависимых выборок -критерий Вилкоксона, для сравнения более двух независимых выборок - ранговый анализ вариаций по методу Краскела-Уоллеса, с последующим попарным сравнением групп. Для анализа связи двух признаков использовался анализ ранговой корреляции по Спирмену и гамма-корреляции. Критический уровень значимости различий принимали равным 0,05.

РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ

Клиническая значимость определения адипокинов сыворотки крови у детей с ожирением

Адипонектин сыворотки крови Адипонектин - уникальный адипокин, обладающий антидиабетической, противовоспалительной и антиатерогенной активностью. Этот белок с молекулярной массой ЗОкОа, обладает высокой степенью сродства к коллагену VIII и Х-типов и Clq компоненту комплемента. Адипонектин был идентифицирован четырьмя независимыми группами исследователей в 1995 и 1996 годах, использовавших различные методы его выделения, поэтому ему были даны различные названия: apMl (Adipose Most abundant Gene transcript 1), АсгрЗО (Adipocyte complement related protein), adipoQ и GBP28 (gelatine binding protein 28). В крови адипонектин циркулирует в виде нескольких изоформ (тример, гексамер, мультимер); при этом наибольшей биологической активностью обладает высокомолекулярная форма адипонектина. У взрослых людей содержание циркулирующего адипонектина в кровотоке значительно - около 10-16 мкг/мл, что составляет 0,1% от общего количества белка сыворотки крови. Снижение уровня адипонектина сыворотки крови выявляется у людей, страдающих ожирением, СД2, артериальной гипертонией, дислипидемией и ИБС. Более того во взрослой популяции низкий уровень адипонектина (менее 4,0 мкг/мл) является независимым фактором риска развития СД2 и дислипидемий.

Уровень адипонектина сыворотки крови был исследован у 111 детей, из них 56 пациентов с ожирением (27мальчиков/29 девочек), в возрасте от 3,5 до 17,5 лет (13,6 [12,4 + 14,8] лет), SDS ИМТ 2,98 [2,7 3,36], 12 детей с избыточной массой тела, SDS ИМТ 1,65 [1,5 + 1,8], в возрасте от 10,5 до 16,5 лет (14,5 [13,6 * 15,5] лет) и дети с нормальным весом - 43 ребенка SDS ИМТ 0,3 [-0,36 0,7] в возрасте от 2,5 до 17,9 лет (11,7 [6,6 + 15,1] лет).

Сывороточная концентрация адипонектина в группе детей с нормальной массой тела составила 9,6 [7,78 •=- 12,1] мкг/мл, в группе с избыточной массой тела содержание адипонектина было ниже -8,55 [6,06 -=■ 10,2] мкг/мл, но статистически незначимо (р > 0,05). Концентрация адипонектина в сыворотке крови в группе детей с ожирением составила 6,9 [4,9 +10,2] мкг/мл, статистически значимо ниже, чем в группе детей без ожирения (р = 0,009).

Выявлено что наиболее высокий уровень адипонектина отмечается у детей в препубертате и прогрессивно снижается по мере полового созревания (у = -0,34, р = 0,0006, где у - коэффициент корреляции гамма). Дисперсионный анализ показал статистически значимые отличия сывороточной концентрации адипонектина в зависимости от стадии полового развития между группами Таннер 1 и Таннер 4-5 (р =0,04). Было отмечено, что у мальчиков имеется более выраженное снижение уровня адипонектина по мере полового созревания. В работе Bottner А. и соавт. [2004], было показано, что

8

снижение уровня адипонектина в пубертате ассоциировано с повышением концентраций андрогенов сыворотки крови - тестостерона и ДГЭА-С и при проведении регрессионного анализа в группе мальчиков с нормальным весом стадия полового развития была более сильным предиктором снижения сывороточного содержания адипонектина, чем показатель ИМТ. Также были продемонстрированы данные о том, что тестостерон ингибирует секрецию адипонектина адипоцитами, не изменяя уровень мРНК гена Лй1РОО, что предполагает посттранскрипционный характер регуляции продукции адипонектина тестостероном [Г^Ыгаи'а Н., 2002].

По данным исследований на взрослой популяции уровень адипонектина сыворотки крови значительно выше у женщин, что может указывать на участие половых гормонов в регуляции секреции адипонектина. Однако нами не было выявлено различий в содержании адипонектина в зависимости от пола обследованных детей.

Уровень адипонектина сыворотки крови отрицательно коррелировался с показателями ИМТ (Я = - 0,33, р < 0,001), БОБ ИМТ (Я = - 0,27, р = 0,003). и ОТ (Я =- 0,38, р < 0,001), где Я - коэффициент корреляции Спирмена.

В то же время в группе детей с ожирением уровень адипонектина не был ассоциирован с показателем ЗОБ ИМТ (Я = 0,14, р = 0,3, где Я - коэффициент корреляции Спирмена) и при проведении дисперсионного анализа не было выявлено статистически значимых отличий при сравнении групп детей с различными степенями ожирения, рис. 1.

степень ожирения Рисунок 1. Адипонектин сыворотки крови у детей с ожирением.

Согласно данным исследования Yamauchi Т. и соавт. [2003], содержание адипонектина в сыворотке крови в большей степени ассоциировано не с показателем ИМТ, а с объемом висцеральной жировой ткани, оцененной с помощью визуализирующих методов (МРТ или KT). В раде работ были продемонстрированы противоречивые данные о корреляционной взаимосвязи уровня адипонектина и общего количества жировой ткани [Nemet D., 2003, Schoppen S., 2010].

В нашей работе мы не выявили зависимости между содержанием адипонектина в сыворотке крови и процентным содержанием жировой ткани, оцененным методом рентгеновской денситометрии в режиме «Total body» у детей с ожирением: (R = 0,18, р = 0,4), где R - коэффициент корреляции Спирмена).

По данным литературы низкий уровень адипонектина сыворотки крови, так называемая «гипоадипонектинемия», является независимым предиктором развития нарушений углеводного и липидного обмена, СД 2 и сердечно-сосудистой патологии.

По нашим данным уровень адипонектина сыворотки крови был статистически значимо ниже в группе детей с ожирением, осложненном инсулинорезистентностью (табл. 4).

Таблица 4.

Уровень адипонектина сыворотки крови у детей с ожирением в зависимости от наличия инсулинорезистентности.

ИР« + » п = 41 ИР«-» 11 = 15 Р

Возраст, годы 13,6 [12,6+ 14,81 13,6 [10,9+ 14,81 >0,05

Вес, кг 88,7 [78 + 104,6] 84 [71,7 + 92,61 >0,05

ИМТ, кт/.м2 31,1 [28,3 + 35,81 31,2 [30,5- -31,91 >0,05

SDS ИМТ 3,03 [2,7 + 3,4] 2,94 [2,7 -3,3] >0,05

ОТ, см 102 [97+111] 102 [96,5 -106] >0,05

HOMA-IR 4,21 [3,5+6,65] 1,97 [1,6- "2,51 <0,0001

ISI Matsuda 2,2(1,64 + 2,7] 4,25 [3,8+ 4,64] <0,0001

Адипонестин, мкг/мл 6,3 [4,2 + 8,35] 10,44 [6,9 + 12,21 0,01

Корреляционный анализ выявил достоверную взаимосвязь уровня адипонектина сыворотки со следующими показателями:

• ИРИ 0 мин.: Я = - 0,36 (р = 0,01)

• ИРИ 90 мин.: Я = -0,44 (р = 0,003)

• НОМА-Ш: Я = - 0,33 (р = 0,02), где Я - коэффициент корреляции Спирмена.

Уровень адипонектина сыворотки крови положительно коррелировался с показателем индекса 181 Ма1$ис1а: Я = 0,27, однако статистически незначимо (р = 0,07). Корреляционных ассоциаций между уровнем адипонектина и глюкозой сыворотки крови выявлено не было.

По данным исследований во взрослой популяции низкий уровень адипонектина взаимосвязан с развитием дислипидемий [Ма(5иЬага М., 2002]. В работе КеПапеЬ А. и соавт. [2006], была показана прямая корреляционная взаимосвязь адипонектина сыворотки крови с уровнем ЛПВП и негативная с уровнем ТГ у детей.

При анализе показателей липидного обмена (общий холестерин, триглицериды, холестерин ЛПНП и ЛПВП) среди обследованных пациентов с ожирением у 14 % (В детей) отмечалась гиперхолестеринемия, повышение уровня триглицеридов было выявлено у 44,5 % (25 детей), повышение ХС-ЛПНП - у 37% (21 ребенок) и снижение ХС-ЛПВП у 54% (30 детей). В 50% случаев (2В пациентов) имела место смешанная дислипидемия, с повышением уровней ТГ и ХС-ЛПНП и/или снижением ХС-ЛПВП. У 24% пациентов (12 детей) показатели липндов сыворотки крови были в пределах нормальных значений.

Не было выявлено статистически значимого различия содержания адипонектина сыворотки крови в группах детей в зависимости от наличия дислипидемии. При проведении корреляционного анализа отмечалась тенденция к прямой корреляционной взаимосвязи уровня адипонектина сыворотки крови с показателем ХС-ЛПВП и негативной с ТГ (ХС-ЛПВП: Я= 0,21, р = 0,1; ТГ: Я= - 0,21, р = 0,1).

Таким образом, полученные нами данные свидетельствуют о взаимосвязи адипонектина с ожирением и его метаболическими осложнениями у детей. Более того нами выявлено, что в группе детей с ожирением низкий уровень адипонектина ассоциирован не со степенью ожирения, а с наличием гиперинсулинемии и инсулинорезистентности.

Висфатин сыворотки крови

Висфатин был выделен в 2004 году группой японских исследователей как гормон, который продуцируется преимущественно висцеральной жировой тканью и обладает инсулиномиметическими свойствами [ГикиЬага А., 2005]. Висфатин - 52- кОа белок с кристаллической структурой, циркулирующий в кровотоке в виде мономерных и димерных форм и обладающий свойствами цитокина и фермента, участвующего в биосинтезе никотинамид-аденин-динуклеотида (НАД). Концентрации висфатина в плазме относительно невысоки (нг/мл), и по отношению к циркулирующему инсулину составляют около 3 - 10 %. На сегодняшний день нет единого представления о физиологической и патофизиологической роли висфатина, однако данные последних исследований позволяют предположить вовлеченность этого адипокина в патогенез развития связанных с ожирением метаболических нарушений. Количество работ посвященных исследованию клинической значимости этого адипокина у детей ограничено.

Уровень висфатина сыворотки крови был исследован у 77 детей и подростков: 25 пациентов с ожирением (12мальчиков/13 девочек), 14 [12,8 + 14,5] лет), БИБ ИМТ 2,8 [2,6 3,3], 12 детей с

избыточной массой тела, 14,5 [13,6 15,5] лет, SDS ИМТ 1,6 [1,5 * 1,8], и 40 детей с нормальным весом 12,4 [6,8 + 15,2] лет, SDS ИМТ 0,3 [-0,3 * 0,7].

По результатам нашего исследования не было обнаружено статистически значимого различия содержания висфатина в сыворотке крови у детей с нормальным весом и пациентов с ожирением. Так сывороточная концентрация висфатина в группе детей с нормальной массой тела составила 9,2 [7,4 + 11,6] нг/мл, в группе с избыточной массой тела - 9,2 [7,8 + 10,8] нг/мл, и в группе детей с ожирением -9,73 [8,6 + 10,8] нг/мл (р > 0,05).

Уровень висфатина сыворотки крови у мальчиков и девочек был практически одинаков: 9,4 [8,2 + 10,8] нг/мл против 9,6 [7,7 + 11,0] нг/мл (р > 0,05).

Исследуя особенности содержания висфатина в сыворотке крови у детей, мы выявили, что концентрация этого адипокина нарастает по мере полового развития, однако статистически незначимо.

Согласно данным некоторых исследований уровень висфатина сыворотки крови повышен у лиц с ожирением и прямо коррелируется с показателями ИМТ и ОТ [Berndt J., 2005, Davutoglua М., 2009]. В нашем исследовании не было выявлено статистически значимых взаимосвязей между уровнем висфатина сыворотки крови, возрастом и основными антропометрическими показателями у здоровых детей.

При анализе группы детей с ожирением было выявлено, что у мальчиков уровень висфатина сыворотки крови отрицательно коррелируется с показателями ИМТ (R = - 0,79; р = 0,002) и SDS ИМТ (R = - 0,79; р = 0,002), в то время как в группе обследованных девочек корреляционная связь уровня висфатина с данными показателями была положительной и статистически незначимой: ИМТ (R = 0,15; р = 0,6); SDS ИМТ (R = 0,13; р = 0,6).

По данным ряда исследований у взрослых людей концентрация висфатина в сыворотке крови положительно коррелируется с объемом висцеральной жировой ткани, оцененным визуализирующими методами, и может служить суррогатным маркером аккумуляции висцерального жира, ведущей к развитию метаболического синдрома [Fukuhara А., 2005, Sethi J.К., 2005]. В другом исследовании уровень висфатина плазмы положительно коррелировался с ИМТ и процентным содержанием жировой ткани, но не было выявлено такой зависимости от возраста, соотношения окружности талии и бедер и объема висцеральной жировой ткани [Bemdt J., 2005].

По данным нашего исследования, корреляционный анализ выявил сильную прямую взаимосвязь сывороточной концентрации висфатина с процентным содержанием жировой ткани, оцененным методом рентгеновской денситометрии (п = 17; R = 0,77; р = 0,0003).

Данные литературы о взаимосвязи висфатина сыворотки крови с метаболическими осложнениями ожирения крайне противоречивы. Количество работ посвященных исследованию висфатина при ожирении у детей ограничено. По результатам нашего исследования, не было выявлено

статистически значимой корреляционной взаимосвязи уровня висфатина сыворотки крови с показателями инсулина и гликемии, как базальных, так и при проведении ОПТ. Однако в группе детей с подтвержденной инсулинорезистентностью концентрация висфатина была достоверно выше (табл. 5).

Таблица 5.

Уровень висфатина сыворотки крови детей с ожирением в зависимости от наличия инсулинорезистентности.

ИР « + » ИР«-» Р

п = 14 п = 5

Возраст, годы 13,9 [12,5 + 14,51 14,3 [13,8+ 14,71 >0,05

ИМТ, кг/м2 32,5 [28,8 + 36,8] 31,0 [30,4 + 33,2] >0,05

ЯОв ИМТ 3,2 [2,7 + 3,4] 2,8 [2,7 + 3,1] >0,05

ОТ, см 102,7 [100+ 110] 96 [94,5 + 107,31 >0,05

НОМА-Ш 4,4(3,9 + 6,65] 1,8 [1,3+ 2,2] 0,001

181 \Iatsuda 2,1 [1,64 + 2,7] 3,9 [3,5+4,25] 0,002

Висфатин, нг/мл 9,8 [9,1 + 10,8] 8,5 [8,2 + 8,9] 0,02

При анализе взаимосвязи уровня висфатина сыворотки крови с липидным профилем детей с ожирением была обнаружена положительная корреляция с показателями холестерина, триглицеридов и ХС-ЛПНП и негативная корреляция с ХС-ЛПВП, однако эти коэффициенты были статистически незначимы:

• Холестерин: Я = 0,4, р = 0,06;

• ТГ: Я= 0,16, р = 0,5;

• ХС-ЛПВП: И. = - 0,26, р = 0,2;

• ХС-ЛПНП: Я = 0,42, р = 0,07, где Я - коэффициент корреляции Спирмена.

Экспрессия генов адипонекгина (Ай1РОЦ), висфатина (РВЕП), рецепторов активируемых пролифераторами пероксисом гамма 1 и 2 типа (РРАЯа и 2) и каннабиноидного рецептора 1 типа (С/У/?/) в жировой ткани у детей Экспрессия гена адипонектина - АО!РО() е висцеральной и подкожной жировой ткани

Адипонектин экспрессируется зрелыми адипоцитами. По данным ряда авторов, у взрослых людей ген ADIPOQ экспрессируется преимущественно в подкожной жировой ткани и его экспрессия снижена при ожирении. В исследовании 1.1 X. и соавт. [2008], было выявлено, что в группе детей с избыточной массой тела экспрессия гена адипонектина снижена в висцеральной жировой ткани.

Экспрессия гена АО!РО() в подкожной и висцеральной жировой ткани была проанализирована у 51 пациента (мальчики/девочки - 28/23), медиана возраста составила 13,6 [8,5 + 15,1] лет.

Не было выявлено достоверных различий между уровнями экспрессии гена адипонектина в подкожной и висцеральной жировой ткани. Не отмечалось значимых отличий экспрессии гена АО!РО<2 в жировой ткани в зависимости от пола обследованных детей. Однако у мальчиков отмечалась тенденция к более высокой экспрессии гена А01Р0<2 в висцеральной жировой ткани - 4,05 [3,14 * 4,94] против 3,5 [2,68 ^ 3,9] в подкожной жировой ткани (р = 0,08).

При сравнении групп детей с нормальным весом и детей с избыточной массой тела, обнаружено, что уровень экспрессии гена Ай1РО() в подкожной и висцеральной жировой ткани выше в группе детей с избытком веса и ожирением на 22% и 22,6% соответственно, однако статистически незначимо (р > 0,05).

Корреляционный анализ не выявил значимой взаимосвязи экспрессии гена А01Р0<2 с возрастом обследованных детей. Однако была выявлена статистически значимая корреляционная взаимосвязь между уровнем экспрессии гена АЭ1РО{в подкожной жировой ткани и ростом (Я = 0,31, р = 0,02), весом (Я = 0,33, р = 0,01), ОТ (Я = 0,3, р = 0,027), ИМТ (Я = 0,36, р = 0,007) и БОБ ИМТ (Я = 0,33, р = 0,01). Экспрессия А01Р0() в висцеральной жировой ткани коррелировалась с ростом (Я = 0,39, р = 0,002), весом (Я = 0,34, р = 0,008), ОТ (Я = 0,33, р = 0,009) и ИМТ (Я = 0,3, р = 0,02).

Было обнаружено, что наиболее высокий уровень экспрессии гена как в висцеральной, так и в подкожной жировой ткани отмечается у детей на стадии полового развития Таннер 2-3, рис.2. Статистически значимые отличия были выявлены между группами Таннер 1 и Таннер 2-3: Ай!РО() вжт(р = 0,003), Ай!РОд пжт (р = 0,03).

"2-\ :-¡]--В до/рос вжт

Стадия полового развития по Таннеру Д АО/РОО ПЖТ (группы)

Рисунок 2. Экспрессия гена АО1РО0, в висцеральной и подкожной жировой ткани в зависимости от стадии полового развития.

12

р = 0,003

§■ 10

Известно, что в период пубертата происходит значительное изменение гормонального профиля и композиционного состава тела. В этот период происходит увеличение общего количества жировой ткани и в особенности ее висцерального компонента, развивается так называемая пубертатная инсулинорезистентность. В генезе данного феномена немаловажную роль играют физиологические изменения в оси гормон роста - инсулиноподобный фактор роста 1 (ГР - ИФР-1), а также изменение уровней кортикостероидов и половых стероидов в сыворотке крови. Вполне вероятно, что эти же факторы могут влиять и на уровень экспрессии генов адипокинов. Так в исследовании Lindquist S. с соавт. [2007], было выявлено, что у детей по мере полового созревания в висцеральной жировой ткани происходит увеличение экспрессии llß - гидроксистероиддегидрогеназы типа 1, фермента участвующего в биосинтезе кортизола и вследствие этого повышается локальная концентрация кортизола, что может оказывать влияние на экспрессию и секрецию адипонектина.

Обнаружено, что уровень мРНК ADIPOQ в подкожной жировой ткани отрицательно коррелируется с содержанием адипонектина в сыворотке крови (R = - 0,47, р = 0,0003), в то время как экспрессия гена в висцеральной жировой ткани не ассоциирована с данным показателем (R = - 0,1, р = 0,4), что указывает на сложные механизмы посттранскрипционной регуляции секреции адипонектина жировой тканью и подтверждает данные предыдущих исследований [Behre C.J., 2007,„Savu М.К., 2009].

Экспрессия гена висфатина - PBEF1 - в висцеральной и подкожной жировой ткани у детей

В ряде работ были продемонстрированы противоречивые данные о депо-специфических особенностях экспрессии гена PBEF1 в жировой ткани [Fukuhara А., 2005, Varma, V., 2007]. По данным Fukuhara А. с соавт. [2005], висфатин в основном экспрессируется в висцеральной жировой ткани, тогда как в других исследованиях не было обнаружено достоверных различий в уровне мРНК PBEF1 между висцеральной и подкожной жировой тканью. Работ посвященных исследованию экспрессии данного гена в жировой ткани у детей до настоящего времени не проводилось.

Экспрессия гена PBEFI была исследована в парных образцах подкожной и висцеральной жировой ткани у 60 детей (30/30 - мальчики/девочки), 13,8 лет [8,1 + 15,1 лет].

Нами было выявлено, что уровень экспрессии гена PBEFI статистически значимо выше в висцеральной жировой ткани в группе всех обследованных детей (р = 0,002) и у детей с нормальной массой тела (р = 0,002), тогда как в группе детей с избытком веса уровень мРНК висфатина в висцеральной и подкожной жировой ткани практически не отличался (р = 0,3).

При сравнении групп детей с нормальной массой тела и избытком веса не было выявлено достоверных отличий экспрессии гена PBEFI в висцеральной (р = 0,37) и подкожной (р = 0,85) жировой ткани. Также не было выявлено значимых отличий экспрессии гена PBEFI в висцеральной и подкожной жировой ткани в зависимости от половой принадлежности обследованных детей. Однако

только в группе мальчиков отмечалось преобладание экспрессии гена PBEFI в висцеральной жировой ткани - 5,7 [4,7 + 6,8] против 4,6 [4,2 + 5,7] в подкожной жировой ткани (р = 0,002), тогда как у девочек ген PBEF1 экспрессировался без значимых депо-специфичных отличий - PBEF1 ВЖТ - 5,1 [3,7+ 6,3], PBEF1 ПЖТ - 5,0 [3,9 +6,1], (р = 0,29).

Мы выявили, что наиболее высокий уровень мРНК гена висфатина отмечается у детей в препубертате и отрицательно коррелируете» со стадией полового развития по Таннеру (PBEF1 ВЖТ у = -0,24, р = 0,02; PBEF1 ПЖТ у = -0,25, р = 0,02, где у - коэффициент корреляции гамма).

В ряде исследований была продемонстрирована взаимосвязь между уровнем экспрессии гена PBEF1 в жировой ткани с антропометрическими показателями. Так в работе Berndt J. с соавт. [2005], была выявлена положительная корреляция экспрессии гена висфатина в висцеральной жировой ткани с ИМТ и процентом жировой ткани, оцененной с помощью денситометр™, в то время как уровень экспрессии PBEF1 в подкожной жировой ткани не был ассоциирован с этими показателями. В другом исследовании экспрессия гена висфатина в подкожной жировой ткани отрицательно коррелировалась с ИМТ [Kovacikova М., 2008].

В нашей работе корреляционный анализ по Спирмену не выявил статистически значимой взаимосвязи между уровнем экспрессии гена PBEF1 в висцеральной и подкожной жировой ткани, возрастом обследованных детей и основными антропометрическими показателями, за исключением положительной корреляции с показателем SDS роста (PBEFI пжт: R = 0,32, р = 0,02; PBEF1 вжт: R = 0,28, р = 0,02). В группе обследованных девочек выявлена статистически значимая отрицательная корреляционная связь уровня мРНК висфатина в висцеральной жировой ткани и величиной окружности талии (R = - 0,36, р = 0,04).

При анализе взаимосвязи экспрессии гена PBEFI в жировой ткани с сывороточным содержанием висфатина было выявлено, что сывороточная концентрация висфатина не ассоциирована с экспрессией гена PBEF1 в жировой ткани (PBEFIпжт: R = - 0,06, р = 0,6; PBEFI^m'- R = - 0,06, р = 0,6), что подтверждает данные о том, что жировая ткань не является главным ресурсом циркулирующего висфатина.

Экспрессия гена каннабиноидного рецептора тип 1 - CNRI - в висцеральной и подкожной жировой ткани у детей

Каннабиноидный рецептор тип 1, кодируемый геном CNRI (6ql4 - ql5) высоко экспрессируется в центральной нервной системе, а также в ряде периферических тканей, включая печень, мышцы и жировую ткань. Активация каннабиноидных рецепторов в ЦНС приводит к повышению потребления пищи. По данным исследований in vitro и in vivo в адипоцитах активация этих рецепторов стимулирует липогенез, способствует утилизации глюкозы, модулирует экспрессию и секрецию адипокинов. По данным ряда авторов при ожирении наблюдается так называемая неадекватная активация

эндоканнабиноидной системы, выражающаяся в повышении экспрессии всех ее составляющих [Engeli S., 2005]. В нескольких исследованиях были продемонстрированы противоречивые данные о депо-специфических особенностях экспрессии гена CNRI в жировой ткани. По данным Bluher М. с соавт. [2006], экспрессия каннабиноидного рецептора 1 типа преобладает в висцеральной жировой ткани, тогда как другие исследования не обнаружили такой особенности [Lofgren Р., 2007].

Исследование экспрессии гена каннабиноидного рецептора 1 типа было проведено в парных образцах подкожной и висцеральной жировой ткани у 60 детей (30/30 - мальчики/девочки), 13,8 [8,1 -=-15,1] лет.

Нами выявлено, что ген CNRI экспрессируется в подкожной и висцеральной жировой ткани без значимых депо-специфических отличий. Также не было найдено разницы в уровнях мРНК гена CNRI между группами обследованных детей с нормальной и избыточной массой тела.

При изучении особенностей экспрессии гена каннабиноидного рецептора тип 1 в зависимости от половой принадлежности было выявлено, что у мальчиков отмечается более высокий уровень экспрессии гена CNR1 как в висцеральной, так и в подкожной жировой ткани по сравнению с группой обследованных девочек, однако статистически значимые различия были найдены только для висцерального депо жировой ткани (р = 0,045). .

При анализе особенностей экспрессии гена CNRI в жировой ткани, было отмечено, что наиболее высокий уровень мРНК гена каннабиноидного рецептора 1 отмечается у детей в стадии пубертата Таннер 2-3, статистически значимые отличия были выявлены для экспрессии гена CNRI в висцеральной жировой ткани (р = 0,04). Дисперсионный анализ выявил статистически значимые отличия уровня экспрессии гена CNRI в висцеральной жировой ткани в зависимости от пубертата только в группе обследованных девочек (р =0,016; Таннер2-3/Таннер4-5, р = 0,02).

В исследованиях посвященных экспрессии гена каннабиноидного рецептора 1 типа в жировой ткани получены достаточно расходящиеся данные о взаимосвязи экспрессии гена CNRI с антропометрическими показателями. В частности, в работе Bluher М. и соавт. [2006], была продемонстрирована взаимосвязь между уровнем экспрессии гена CNRI в жировой ткани с величиной ИМТ, объемом висцеральной жировой ткани, однако в ряде других исследований, значимых корреляций экспрессии гена CNRI с данными клиническими показателями выявлено не было.

В нашей работе корреляционный анализ по Спирмену не выявил статистически значимых взаимосвязей между уровнем экспрессии гена CNRI в висцеральной и подкожной жировой ткани возрастом обследованных детей и основными антропометрическими показателями, за исключением слабой положительной корреляции экспрессии гена в подкожной жировой ткани с показателями роста (R = 0,33, р = 0,014) и SDS роста (R = 0,27, р =0,03).

Экспрессия гена рецептора, активируемого пролифераторами пероксисом у 1 и у 2- PPARG1

и PPARG2 - в висцеральной и подкожной жировой ткани у детей Рецепторы, активируемые пролифераторами пероксисом гамма - PPARy -принадлежат к суперсемейству ядерных рецепторов, входящих в группу факторов транскрипции, которые контролируют экспрессию ряда генов, связанных с передачей эффектов инсулина на клетки и участвующих в контроле уровня глюкозы и метаболизме липидов. В настоящее время рецепторы PPARy считаются одними из центральных регуляторов энергетического гомеостаза организма животных и человека. Хотя PPARy найдены во многих тканях, в основном они экспрессируются в жировой ткани. Существует три изоформы PPARy, которые кодируются одним геном - PPARG, локализованном на коротком плече 3 хромосомы (Зр25), но имеют разные промотеры и подвергаются альтернативному сплайсингу. В исследовании Zhang J. и соавт. [2004], при анализе уровня экспрессии разных изоформ гена PPARG было показано, что у лиц с избыточной массой тела значительно увеличена экспрессия в жировой ткани изоформы PPARy2 по сравнению с худыми людьми. Работ посвященных изучению особенностей экспрессии гена рецептора PPARy в педиатрической популяции крайне мало. По данным исследования Li X. с соавт. [2008], у детей с избыточной массой тела снижена экспрессия гена PPARG в висцеральной жировой ткани.

Экспрессия гена PPARG исследована в парных образцах висцеральной и подкожной жировой ткани у 57 пациентов (29/28 - мальчики/девочки), медиана возраста которых составила 13,9 лет [7,6 15,1].

Особенности экспрессии гена PPARGI По результатам нашего исследования было выявлено, что ген PPARG1 экспрессируется в подкожной и висцеральной жировой ткани без значимых депо-специфических отличий. Также не было найдено разницы в уровнях мРНК гена PPARGI между группами обследованных детей с нормальной и избыточной массой тела. Не было выявлено различий экспрессии гена PPARGI в зависимости от пола обследованных детей.

При анализе особенностей экспрессии гена PPARGI в жировой ткани, было отмечено, что наиболее высокий уровень мРНК гена рецептора, активируемого пролифераторами пероксисом у 1 отмечается у детей в стадии пубертата Таннер 2-3, однако статистически незначимо (р > 0,05 ).

При проведении дисперсионного анализа статистически значимые отличия уровня экспрессии гена PPARGI в зависимости от стадии полового развития были отмечены в висцеральной жировой ткани только в группе обследованных мальчиков (р =0,04; Таннер1/Таннер4-5, р = 0,04).

Особенности экспрессии гена PPARG2 Было обнаружено, что ген рецептора PPARy2 более высоко экспрессируется в подкожной жировой ткани, в группе детей с нормальным весом выявлены статистически значимые различия (р =

0,02), в то время как у детей с избытком массы тела ген РРАЯй2 экспрессировался без значимых депо-специфичных отличий.

По данным нашего исследования не выявлено достоверных отличий уровня экспрессии гена РРА1№2 в зависимости от пола обследованных детей и от стадии полового развития.

Корреляционный анализ по Спирмену не выявил значимых корреляционных взаимосвязей экспрессии гена РРАЯй2 в жировой ткани с возрастом и антропометрическими показателями обследованных детей, в то же время уровень мРНК РРАЧа положительно коррелировался с показателями роста и веса. Несмотря на отсутствие статистически значимых отличий между показателями экспрессии гена РРАЯС1 в зависимости от половой принадлежности детей, статистически достоверные корреляционные взаимосвязи были найдены только в группе обследованных мальчиков, (табл. 6).

Таблица 6.

Корреляционная взаимосвязь экспрессии гена РРАЯС! в жировой ткани с возрастом и

R Все обследованные п = 57 Мальчики п = 29

вжт пжт вжт ПЖТ

Возраст 0,16 0,24 0,48* 0,28

Рост 0,3* 0,33* 0,48* 0,41'

SDSpocra 0,17 0,22 -0,009 0,28

Вес 0,2 0,28* 0,47* 0,39*

ОТ 0,2 0,19 0,52* 0,4*

ИМТ 0,15 0,2 0,37* 0,3

SDSI1MT 0,03 0,09 0,14 0,19

' р<0,01; р< 0,05;

Анализируя особенности экспрессии гена рецептора активируемого пролифераторами пероксисом 1 и 2 типа, мы выявили, что в жировой ткани преобладает экспрессия рецептора 1- го типа, как при анализе результатов всей группы обследованных детей в целом (экспрессия PPARGI/PPARG2 в подкожной жировой ткани р = 0,019; экспрессия PPARGI/PPARG2 в висцеральной жировой ткани р = 0,0002), так и при разделении обследованных пациентов в зависимости от показателя SDS ИМТ, рис 3.

Корреляционный анализ взаимосвязи экспрессии генов рецепторов, активируемых пролифераторами пероксисом гамма I и 2 и каннабиноидного рецептора 1 типа и генов

адипокинов

Экспрессия и секреция адипокинов жировой тканью сложный процесс, регулируемый множеством факторов. Одной из задач нашей работы было исследование возможной взаимосвязи экспрессии генов рецепторов PPARy и каннабиноидных рецепторов I типа и генов адипокинов.

БОБ ныт. 1

БОБ нмт: 2

А Б

Рисунок 3. Экспрессия гена РРАЯа и РРА/?С2 в подкожной и висцеральной жировой клетчатке в группах детей с нормальным весом (А) и избытком массы тела (Б).

Известно, что рецепторы РРАЯу являются ключевыми регуляторами адипогенеза и по данным ряда исследований их активация может модулировать уровень экспрессии генов, вовлеченных в липидный и углеводный обмен. Специфические активаторы данных рецепторов, включая тиазолидиндионы (ТЗД), улучшают толерантность к глюкозе и чувствительность к инсулину у пациентов с СД2, и одним из вероятных механизмов этого феномена является РРАЯу -опосредованная активация транскрипции и секреции адипонектина. Активация РРАЛу и связывание со вторым белком, ретиноидным рецептором X (ЯХЯ) формирует гетеродимер, распознающий и связывающийся со специфическими последовательностями ДНК - элементами РРАЯ ответа (PPR.Es), обнаруживаемыми в регуляторных регионах генов, кодирующих белки, участвующих в метаболизме липидов и глюкозы. Показано, что активация экспрессии гена АО!РО<2 может происходить при непосредственном связывании активного комплекса РРАЯу/ЮЖ с промотерным участком гена адипонектина [1\уак1 М., 2003]. В то же время данные о регуляции экспрессии и секреции висфатина посредством активации рецепторов РРАЯу противоречивы. В исследовании НатташесЦ А. и соавт.

[2005], было показано, что уровень экспрессии гена висфатина и его сывороточная концентрация не изменяется при назначении ТЗД. Однако в другой работе применение розиглитазона приводило к значимому повышению уровня висфагина сыворотки крови у обследованных пациентов и усилению секреции висфатина жировой тканью in vitro [Haider D.G., 2007].

По данным нашего исследования была найдена сильная позитивная корреляционная взаимосвязь экспрессии обеих изоформ гена рецептора PPARy с экспрессией генов адипокинов как в подкожной, так и в висцеральной жировой ткани, за исключением положительной, но статистически незначимой связи экспрессии генов висфатина и PPARG2 в ВЖТ, (табл. 7).

Необходимо отметить, что корреляционная взаимосвязь между исследуемыми генами оставалась статистически значимой с поправкой на возраст, стадию полового развития и ИМТ обследованных пациентов (р < 0,01).

Таблица 7.

Корреляционная взаимосвязь экспрессии генов адипокинов и рецепторов PPARyl и 2 в жировой ткани у детей.

ADIPOQ PBEF1

Висцеральная жировая ткань

PPARG1 R = 0,82 (р < 0,0001) R = 0,54 (р < 0,0001)

PPARG2 R = 0,66 Ср < 0,0001) R = 0,24 (р> 0,05)

Подкожная жировая ткань

PPARG1 R = 0,7 (р< 0,0001) R = 0,42 (р = 0,002)

PPARG2 R = 0,61 (р< 0,0001) R = 0,42 (р = 0,002)

R- коэффициент корреляции Спирмена.

В настоящее время известно, что экдоканнабиноидная система играет важную роль в регуляции эндокринной функции жировой ткани. Так, по данным нескольких исследований, активация КБ1 рецепторов снижает экспрессию адипонектина [Beltocchio L., 2008], и повышает экспрессию висфатина [Perwitz N., 2006], что вносит вклад в усиление инсулинорезистентности и снижает утилизацию глюкозы на уровне мышечной ткани и печени.

По результатам нашего исследования было выявлено, что экспрессия гена CNRI ассоциирована с экспрессией генов адипокинов как в висцеральной, так и в подкожной жировой ткани, (табл. 8). И так же как в случае с рецепторами PPARy корреляционная взаимосвязь не нивелируется при введении в анализ поправок на возраст, стадию полового развития и показатели антропометрии (ИМТ, SDS ИМТ) (р<0,01).

Таблица 8.

Корреляционная взаимосвязь экспрессии генов адипокинов и каннабиноидного рецептора 1 типа в жировой ткани у детей.

АР1РО() РВЕП

Висцеральная жировая ткань

€N1(1 Я = 0,5 (р< 0,0001) Я = 0,48 Ср < 0,0001)

Подкожная жировая ткань

С№1 Я = 0,63 (р< 0,0001) Я = 0,36 (р = 0,006)

Я- коэффициент корреляции Спирмена.

Таким образом, учитывая полученные результаты, можно предположить, что рецепторы, активируемые пролифераторами пероксисом гамма и каннабиноидный рецептор I типа принимают участие в регуляции экспрессии генов адипокинов уже в детском возрасте и это может служить основанием для дальнейших исследований и поиску новых патогенетических подходов к терапии ожирения и ассоциированных с ним метаболических нарушений.

Выводы:

1. Уровень адипонектина сыворотки крови прогрессивно снижается по мере полового созревания у детей и отрицательно коррелируется с показателями ИМТ и ОТ. При ожирении у детей отмечается снижение уровня адипонектина сыворотки крови, особенно выраженное при наличии инсулинорезистентности. Уровень адипонектина коррелируется с показателями инсулина сыворотки крови и индексами инсулинорезистентности.

2. Уровень висфатина сыворотки крови не ассоциирован с показателем ИМТ у детей, но взаимосвязан с процентным содержанием жировой ткани. При ожирении, осложненном инсулинорезистентностъю, уровень висфатина сыворотки статистически значимо выше, чем при неосложненном ожирении. Уровень висфатина сыворотки крови коррелируется с показателями холестерина и ХС-ЛПНП.

3. Экспрессия гена АО!РО() в жировой ткани зависит от стадии полового развития, достигая пика на стадии пубертата Таннер 2 - 3 и снижаясь к стадии Таннер 4-5. Уровень экспрессии гена адипонектина положительно коррелируется с показателями ИМТ и ОТ. Экспрессия гена АВ!РО(2 в подкожной жировой ткани отрицательно коррелируется с уровнем адипонектина сыворотки крови.

4. Экспрессия гена висфатина - PRF.Fi - преобладает в висцеральной жировой ткани и отрицательно коррелируется со стадией пубертата. Уровень висфатина сыворотки крови не взаимосвязан с экспрессией гена РВЕР1 в жировой ткани.

5. Ген каннабиноидного рецептора - СЛ7?/ - экспрессируется в жировой ткани без депо-специфических отличий. Экспрессия гена СЫШ в подкожной жировой ткани прямо коррелируется с экспрессией генов А01Р0<2 и РВЕР1.

6. Экспрессия гена РРАЯа в жировой ткани преобладает над экспрессией гена РРАКС2. Не обнаружено депо-специфических отличий экспрессии гена РРАЯО!. В группе детей с нормальным весом экспрессия гена РРА1Ю2 выше в подкожной жировой ткани. Экспрессия гена РРАЯй в жировой ткани взаимосвязана с экспрессией генов адипокинов - Ай!РО() и РВЕП.

Практические рекомендации:

1. Разработанная методика исследования экспрессии генов в жировой ткани может использоваться в экспериментальных и клинических исследованиях.

2. Уровень адипонектина сыворотки крови может быть использован как маркер метаболических нарушений при ожирении у детей.

Список публикаций:

1. Косыгина A.B., Васюкова О.В. Новое в патогенезе ожирения: адипокины -гормоны жировой ткани // Проблемы эндокринологии - 2009 -Т.55(1)-С.44-51.

2. Косыгина A.B., Сосунов В.В., Петеркова В.А., Дедов И.И. Экспрессия гена адипонектина (ADIPOQ) в подкожной и висцеральной жировой ткани и уровень адипонектина сыворотки крови у детей. // Проблемы эндокринологии - 2010 -Т.56(6)-С.З-8.

3. Косыгина A.B., Сосунов В.В., Петеркова В.А., Дедов И.И. Уровень висфатина сыворотки крови и экспрессия гена висфатина (PBEFI) в подкожной и висцеральной жировой ткани у детей.!/ Ожирение и метаболизм - 2010 - №.4(25) -С.20-23.

4. Косыгина A.B., Петеркова В.А. Уровень адипонектина в сыворотке крови и экспрессия гена адипонектина в подкожной и висцеральной жировой ткани у детей. // Сборник тезисов. Всероссийский конгресс «Современные технологии в эндокринологии» - 2009 - С.280.

5. Косыгина A.B., Васюкова О.В. Эндоканнабиноиды: новая история древней биологической системы. // Эндокринологический вестник - 2008 - №5 - С. 10.

6. Косыгина A.B. Адипоцитокины в научной и клинической практике. // Ожирение и метаболизм - 2011 - № 1(26) - С. 32-39.

7. Kosygina A.V., Vasyukova O.V., Tolstov K.N., Poddubny I.V., Peterkova V.A. Expression of genes PPARG, CNR1, ADIPOQ and PBEFI in subcutaneous and visceral adipose tissue and serum level of Adiponectin in children. // Hormone research - 2009 -Vol.72 (suppl.3)-P. 287.

Список сокращений:

AJ1T - аланинаминотрансфераза

ACT - аспартатаминотрансфераза

ВЖТ - висцеральная жировая ткань

ДГЭА-С - дегидроэпиандростендион-сульфат

ИМТ - индекс массы тела

ИРИ - иммунореактивный инсулин

КБ1 - каннабиноидный рецептор 1 типа

ОГТТ - оральный глюкозотолерантный тест

ОТ - окружность талии

ПЖТ - подкожная жировая ткань

ТГ - триглицериды

ТЗД - тиазолидиндионы

ХС-ЛПВП - липопротеиды высокой плотности

ХС-ЛПНП - липопротеиды низкой плотности

RXR - ретиноидный рецептор X

PPREs - элементы PPAR ответа (PPAR-responsive element)

Подписано в печать: 20.04.11

Объем: 1,5 усл.п.л. Тираж: 100 экз. Заказ № 2365 Отпечатано в типографии «Реглет» 119526, г. Москва, пр-т Вернадского,39 (495) 363-78-90; www.reglet.ru

 
 

Оглавление диссертации Косыгина, Анна Васильевна :: 2011 :: Москва

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ.

ВВЕДЕНИЕ.

1.1. Определение и классификация ожирения.

1.2. Этиопатогенетические аспекты ожирения.

1.2.1. Адипокины - адипонектин и висфатин - в патогенезе ожирения и ассоциированных с ним метаболических нарушений.

1.2.2. РРАЯ-у рецепторы - центральная роль в функции жировой ткани.

1.2.3. Эндоканнабиноидная система в патогенезе ожирения.

ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ.

2.1. Клиническая характеристика обследованных пациентов.

2.2. Методы исследования.

ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ.

3.1. Клиническая значимость определения адипонектина сыворотки крови детей с ожирением.

3.1.1. Взаимосвязь адипонектина сыворотки крови с возрастом, стадией полового развития и антропометрическими показателями у детей.

3.1.2. Взаимосвязь уровня адипонектина сыворотки с метаболическими нарушениями, ассоциированными с ожирением.

3.2. Клиническая значимость определения висфатина сыворотки крови детей с ожирением.

3.2.1 Взаимосвязь висфатина сыворотки крови с возрастом, стадией полового развития и антропометрическими показателями у детей.

3.2.2 Взаимосвязь уровня висфатина сыворотки с метаболическими нарушениями, ассоциированными с ожирением.

3.3 Экспрессия генов Ай1РОО (адипонектин), РВЕр! (висфатин), СЫЯ1 (каннабиноидный рецептор 1), РРАЯС! (рецептор, активируемый пролифераторами пероксисом у 1), РРАЯ02 (рецептор, активируемый пролифераторами пероксисом у 2) в висцеральной и подкожной жировой ткани у детей.

3.3.1 Экспрессия гена ADIPOQ (адипонектина) в висцеральной и подкожной жировой ткани у детей.

3.3.2 Экспрессия гена - PBEF1 (висфатина) в висцеральной и подкожной жировой ткани у детей.

3.3.3 Экспрессия гена каннабиноидного рецептора тип 1 - CNR1 - в висцеральной и подкожной жировой ткани у детей.

3.3.4 Экспрессия гена рецептора, активируемого пролифераторами пероксисом у 1 и у 2 - PPARG1 и PPARG2 - в висцеральной и подкожной жировой ткани у детей.

3.3.5. Корреляционный анализ взаимосвязи экспрессии генов рецепторов, активируемых пролифераторами пероксисом гамма 1 и 2 и каннабиноидного рецептора 1 типа и генов адипокинов.

 
 

Введение диссертации по теме "Эндокринология", Косыгина, Анна Васильевна, автореферат

В последние десятилетия избыточная масса тела и ожирение стали одной из важнейших проблем для жителей большинства стран мира. По последним оценкам Всемирной организации здравоохранения, более полутора миллиардов человек на планете имеют лишний вес, зарегистрировано более 500 млн. больных ожирением.

Особенно тревожная тенденция наблюдается среди детей и подростков. Ежегодные темпы роста показателей распространенности ожирения среди детей и подростков непрерывно увеличиваются и по данным ВОЗ, в настоящее время до десяти раз превышают уровень 1970г [29]. Согласно данным совместного доклада Росстата и ЮНИСЕФ, уровень заболеваемости ожирением среди подростков в Российской Федерации за последние 15 лет возрос более чем в 2 раза [5]. По данным эпидемиологических исследований, в Российской Федерации распространенность избыточной массы тела у детей в разных регионах России колеблется от 5,5 до 11,8%, а ожирением страдают около 5,5% детей, проживающих в сельской местности, и 8,5% детей — в городской [6]. Детское ожирение влечет за собой как краткосрочные, так и долгосрочные неблагоприятные последствия для физического и психосоциального здоровья, и во многом является фактором риска для развития сердечно-сосудистых заболеваний, диабета, ортопедических проблем и психических расстройств.

Изучение этиопатогенеза ожирения является одним из приоритетных направлений в современной эндокринологии. В последние годы активно обсуждается самостоятельная роль жировой ткани в патогенезе ожирения и связанных с ним заболеваний - сахарного диабета (СД), сердечнососудистой и онкологической патологии, нарушениями в репродуктивной сфере, патологией опорно-двигательного аппарата, а также отклонениями в психическом статусе и процессах социальной адаптации.

Известно, что жировая ткань синтезирует и секретирует большое количество биологически активных пептидов, так называемых адипокинов, которые действуют как на локальном (аутокринном/паракринном) уровне, так и системно. Среди адипокинов, секретируемых жировой тканью и влияющих на развитие инсулинорезистентности (ИР) и метаболических нарушений, наиболее изучены лептин, адипонектин, висфатин. В дополнение к этому, жировая ткань экспрессирует ряд рецепторов, которые позволяют отвечать на афферентные сигналы внутренних органов и центральной нервной системы. Таким образом, жировая ткань вовлечена в координацию многих биологических процессов, включая метаболизм энергии, нейроэндокринные и иммунные процессы.

Увеличение массы жировой ткани, особенно ее висцерального компонента, ассоциировано с ИР, гипергликемией, дислипидемией, нарушением коагуляции, активацией воспаления, что приводит к развитию сахарного диабета и сердечнососудистых осложнений.

Вместе с тем, самостоятельная роль висцерального и подкожного депо в развитии тех или иных метаболических нарушений у детей и подростков на сегодняшний день изучена недостаточно.

ЦЕЛЬ ИССЛЕДОВАНИЯ:

Исследовать молекулярно-генетические и гормональные особенности подкожного и висцерального депо жировой ткани и определить клиническое значение исследований гормонов жировой ткани - адипонектина и висфатина -при ожирении у детей и подростков.

ЗАДАЧИ:

1. Исследовать содержание адипокинов - адипонектина, висфатина - в сыворотке крови у детей и их взаимосвязь с возрастом, стадией полового развития и основными антропометрическими характеристиками;

2. Изучить особенности содержания адипокинов в сыворотке крови при ожирении у детей в зависимости от степени ожирения и наличия метаболических осложнений;

3. Исследовать экспрессию генов адипонектина - АВ1РО<2, висфатина -РВЕР1, рецепторов, активируемых пролиферацией пероксисом у 1 и 2 -РРАКО и каннабиноидного рецептора 1 типа - СИШ в висцеральной и подкожной жировой ткани у детей и их взаимосвязь с ИМТ;

4. Проанализировать взаимосвязь между уровнем экспрессии генов в. жировой ткани, возрастом, стадией полового развития, основными антропометрическими характеристиками и содержанием адипокинов в сыворотке крови.

НАУЧНАЯ НОВИЗНА

Впервые в отечественной практике исследованы особенности экспрессии генов АШРОО, РВЕР1, РРАЯСт!, РРАЯ02 иСЖ1 в адипоцитах висцеральной и подкожной жировой клетчатки у детей с нормальной массой тела, избытком массы тела и ожирением. Определена взаимосвязь между уровнем экспрессии генов в жировой ткани, содержанием адипокинов сыворотки крови, а также между этими показателями, возрастом и основными антропометрическими характеристиками. Получены данные об изменении содержания адипокинов в крови при ожирении у детей и степени его выраженности. Определена взаимосвязь между содержанием адипокинов сыворотки крови и наличием метаболических нарушений ассоциированных с ожирением.

НАУЧНО-ПРАКТИЧЕСКОЕ ЗНАЧЕНИЕ:

Получены данные о прогрессивном снижении содержания адипонектина сыворотки крови по мере полового созревания и отрицательной взаимосвязи с показателями ИМТ и ОТ у здоровых детей. Выявлено значимое снижение уровня адипонектина у детей с ожирением, особенно выраженное при наличии инсулинорезистентности.

Показана четкая взаимосвязь уровня висфатина сыворотки крови с массой жировой ткани у детей с ожирением, а также взаимосвязь сыворотчной концентрации висфатина с инсулинорезистентностью и дислипидемией.

Разработана методика определения уровня экспрессии генов в висцеральной и подкожной жировой ткани.

Исследована экспрессия генов адипонектина, висфатина, рецепторов, активируемых пролифераторами пероксисом гамма 1 и 2 типов и каннабиноидных рецепторов 1 типа в жировой ткани у здоровых детей и детей с избыточной массой тела и ожирением. Получены данные о депо-специфических различиях экспрессии генов висфатина - РВЕП и рецептора РРАК02 в подкожной и висцеральной жировой ткани у детей. Показано преобладание экспрессии гена рецептора, активируемого пролифераторами пероксисом гамма 1 типа в жировой ткани. Выявлена ассоциация экспрессии генов рецепторов РРАНу и КБ 1 с уровнем экспрессии генов адипокинов.

 
 

Заключение диссертационного исследования на тему "ГОРМОНЫ ЖИРОВОЙ ТКАНИ - АДИПОНЕКТИН И ВИСФАТИН И ЭКСПРЕССИЯ КОНТРОЛИРУЮЩИХ ИХ ГЕНОВ ПРИ ОЖИРЕНИИ У ДЕТЕЙ"

ВЫВОДЫ

1. Уровень адипонектина сыворотки крови прогрессивно снижается, по мере полового созревания у детей и отрицательно коррелирует с показателями ИМТ и ОТ. При ожирении-у детей отмечается снижение уровня адипонектина сыворотки крови, особенно выраженное при наличии • инсулинорезистентности. Уровень адипонектина коррелируется с показателями инсулина сыворотки крови и индексами инсулинорезистентности.

2. Уровень висфатина сыворотки крови не ассоциирован с показателем ИМТ у детей, но взаимосвязан с процентным содержанием жировой ткани. При ожирении, осложненном инсулинорезистентностью уровень висфатина сыворотки статистически значимо выше, чем при неосложненном ожирении. Уровень висфатина сыворотки крови коррелируется с показателями холестерина и ХС-ЛПНП.

3. Экспрессия гена ADIPOQ в жировой ткани зависит от стадии полового развития, достигая пика на стадии пубертата Таннер 2 - 3 и снижаясь к стадии Таннер 4 - 5. Уровень экспрессии гена адипонектина положительно коррелирует с показателями ИМТ и ОТ. Экспрессия гена ADIPOQ в подкожной жировой ткани отрицательно коррелируется с уровнем адипонектина сыворотки крови.

4. Экспрессия гена висфатина - PBEF1 - преобладает в висцеральной жировой ткани и отрицательно коррелируется со стадией пубертата. Уровень висфатина сыворотки крови не взаимосвязан с экспрессией гена PBEF1 в жировой ткани.

5. Ген каннабиноидного рецептора - CNR1 - экспрессируется в жировой ткани без депо-специфических отличий. Экспрессия гена CNR1 в подкожной жировой ткани прямо коррелируется с экспрессией генов ADIPOQ и PBEF1.

6. Экспрессия гена РРАЯа в жировой ткани преобладает над экспрессией гена РРАЯС2. Не обнаружено депо-специфических отличий экспрессии гена РРА1Ю1. В группе детей с нормальным весом экспрессия гена РРАЯа выше в подкожной жировой ткани. Экспрессия гена РРА1Ю в жировой ткани взаимосвязана с экспрессией генов адипокинов - ADIPOQ и РВЕП.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

1. Разработанная методика исследования экспрессии генов в жировой ткани может использоваться в экспериментальных и клинических исследованиях.

2. Уровень адипонектина сыворотки крови может быть использован как маркер метаболических нарушений при ожирении у детей.

 
 

Список использованной литературы по медицине, диссертация 2011 года, Косыгина, Анна Васильевна

1. Бутрова С.А., Ершова Е.В., Ильин А.В., Мельниченко Г.А. Адипонектин у мужчин с абдоминальным ожирением. // Ожирение и метаболизм. 2006 - Т.2 - С. 32 - 36.

2. Дедов И.И. Ожирение: от синдрома к заболеванию. // Ожирение и метаболизм. — 2006 Т.1-С.2-4.

3. Майоров А.Ю. Состояние инсулинорезистентности в эволюции сахарного диабета 2 типа. // Автореф. докт. дисс. Москва. С. 25 27.

4. Петеркова В.А., Ремизов О.В. Ожирение в детском возрасте. // В сборнике: Ожирение // Под ред. И.И. Дедова, Г.А. Мельниченко. М. -2004-С. 312-328.

5. Романцова Т.И. , Дедов И.И. Кузнецова И.С. Эндоканнабиноидная система: структура и потенциальные возможности в регуляции массы тела // Ожирение и метаболизм 2006 - Т. 4 - С. 2 - 10.

6. Addy C, Wright H, Van Laere K, et al. The acyclic CB1R inverse agonist taranabant mediates weight loss by increasing energy expenditure and decreasing caloric intake. // Cell. Metab. 2008 - Vol. 7 - P. 68 - 78.

7. Ahima R.S. Adipose Tissue as an Endocrine Organ. // Obesity. 2006 - Vol. 14 - P. 242 - 249.

8. Allison D.B., Kaprio J., Korkeila M. et al. The heritability of body mass index among an international sample of monozygotic twins reared apart. // Int. J. Obes. Relat. Metab. Disord. 1996 - Vol.20 - P. 501 - 506.

9. Arita Y. et al. Paradoxisal decrease of an adipose-specific protein, adiponectin, in obesity. // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1999 - Vol. 257-P. 79-83.

10. Arslanian S.A. Clamp techniques in paediatrics: what have we learned? // Horm. Res. 2005 - Vol. 64(3) - P. 16 - 24.

11. Asayama K., Hayashibe H. et al. Decrease in serum adiponectin level due to obesity and visceral fat accumulation in children. // Obes. Res. 2003 - Vol. 11 - P.1072- 1079.

12. Bacha F., Saad R., Gungor N., Arslanian S.A. Adiponectin in youth: relationshipto visceral adiposity, insulin sensitivity, and cell function. //

13. Diabetes Care 2004 - Vol. 27 - P. 547 - 552.

14. Baratta R., Amato S., Degano C., et al. Adiponectin relationship with lipid metabolism is independent of body fat mass: evidence from both cross-sectional and intervention studies. J. Clin. Endocrinol. Metab. 2004. -Vol.89.-P. 2665 -2671.

15. Bellocchio L., Cervino C., Vicennati V., et al. Cannabinoid type 1 receptor: another arrow in the adipocytes' bow. // J. Neuroendocrinol. 2008 - Vol. 20(1)-P. 130-8.

16. Berndt J., Kloting N., Kralisch S. et al. Plasma visfatin concentrations and fat depot-specific mRNA expression in humans. // Diabetes. 2005 -Vol. 54 -P. 2911-2916.

17. Bluher M., Engeli S., Kloting N., Bemdt J, Stumvoll M. Dysregulation of the Peripheral and Adipose Tissue Endocannabinoid System in Human Abdominal Obesity. // Diabetes. 2006 - Vol. 55 - P. 3053 - 3060.

18. Bogacka I., Xie H., Bray G.A., Smith S.R. The effect of pioglitazone on peroxisome proliferator-activated receptor-target genes related to lipid storage in vivo. // Diabetes Care. 2004 - Vol. 27 - P. 1660 - 1667.

19. Bottner A., Rratzsch J., Muller G. // Gender differences of adiponectin levels develop during the progression of puberty and are related to serumandrogen levels. I I J. Clin. Endocrinol. Metab. 2004 - Vol. 89 - P. 4053 -4061.

20. Bouaboula M., Hilairet S., Marchand J., et al. Anandamide induced PPARgamma transcriptional activation and 3T3-L1 preadipocyte differentiation. // Eur. J. Pharmacol. 2005 - Vol. 517 - P.l 74 - 81.

21. Bouskila M., Pajvani U.B., Scherer P.E. Adiponectin: a relevant player in PPAR -agonist-mediated improvements in hepatic insulin sensitivity? // Int. J. Obes. Relat. Metab. Disord. 2005 - Vol. 29(1) - S. 17 - 23

22. Branca F., Nikogosian H., Lobstein Т. Доклад «Проблема ожирения в Европейском регионе ВОЗ и стратегии решения», 2007.

23. Britt G. Gabrielsson et al. Evaluation of Reference Genes for Studies of Gene Expression in HumanAdipose Tissue. // Obesity research. 2005 -Vol. 13(4)-P. 649-652.

24. Bruckert E. Abdominal obesity: a health threat. // Presse. Med. 2008 -Vol. 37(10)-P. 1407- 1414.

25. Buettner C., Muse E.D., Cheng A., et al. Leptin controls adipose tissue lipogenesis via central, STAT3-independent mechanisms. // Nat. Med. -2008-Vol. 14-P. 667-675.

26. Buse J.B., Tan M.H., Prince M.J., Erickson P.P. The effects of oral antihyperglycaemic medications on serum lipid profiles in patients with type 2 diabetes. // Diabetes. Obes. Metab. 2004 - Vol. 6 - P. 133 - 156.

27. Bush N.C., Darnell B.E., Oster R.A., Goran M.I., Gower B.A. Adiponectin is lower among African Americans and is independently related to insulin sensitivity in children and adolescents. // Diabetes 2005 - Vol. 54 - P. 2772-2778.

28. Cameron N., Jones L., Griffiths P.L., Norris S., Pettifor J.M. How well do waist circumference and body mass index reflect body composition in prepubertal children? // Eur. J. Clin. Nutr. 2009 - Vol. 63(9) - P. 1065 -1070.

29. Catalano P.M., Thomas A.J., Avallone D.A. et al. Anthropometric estimation of neonatal body composition. // Am. J. Obstet. Gynecol. 1995 -Vol. 173-P.1176-1181.

30. Chan5 T.F., Tsai E.M. et al. Increased plasma visfatin concentrations in women with polycystic ovary syndrome. // Fertil. Steril. 2007 - Vol. 88 -P. 401-405.

31. Chandran M., Henry R.R. et al. Adiponectin: more than just another fat cell hormone? // Diabetes Care. 2003 - Vol. 26 - P. 2442 - 2450.

32. Chawla A., Schwarz E.J., Dimaculangan D.D., Lazar M.A. Peroxisome proliferator-activated receptor (PPAR) : adipose-predominant expression and induction early in adipocyte differentiation. // Endocrinology. 1994 -Vol. 135-P. 798-800.

33. Chen H., Montagnani M., Funahashi T., Shimomura I., Quon M.J. Adiponectin stimulates production of nitric oxide in vascular endothelial cells. // J. Biol. Chem. 2003 - Vol. 278 - P. 45021 - 45026.

34. Chen M., Lee Y. et al. Elevated Plasma Level of Visfatin/Pre-B Cell Colony-Enhancing Factor in Patients with Type 2 Diabetes Mellitus // J. Clin. Endocrinol. Metab. 2006 - Vol. 91 - P. 295 - 299.

35. Chinetti G., Zawadski C., Fruchart J.C., Staels B. Expression of adiponectin receptors in human macrophages and regulation by agonists of the nuclear receptors PPARa , PPARy, and LXR. // Biochem. Biophys. Res. Commun. -2004-Vol. 314-P. 151 158.

36. Cnop M., Havel P.J., Utzschneider K.M., et al. Relationship of adiponectin to body fat distribution, insulin sensitivity and plasma lipoproteins: evidence for independent roles of age and sex. Diabetologia. 2003. Vol.46. - P.459 -469.

37. Cole T.J., Bellizzi M.C., Flegal K.M., Dietz W.H. Establishing a standard definition for child overweight and obesity worldwide: international survey. // BMJ 2000 - Vol. 320 - P. 1240 - 1243.

38. Cook S., Weitzman M., Auinger P. et al. Prevalence of a metabolic syndrome phenotype in adolescents: findings from the third National Health and Nutrition Examination Survey, 1988-1994. // Arch. Pediatr. Adolesc. Med. 2003 - Vol. 157 - P. 821 - 827.

39. Cote' M., Matias I., Lemieux I., Petrosino S., Almeras N., Despres J.P., Di Marzo V. Circulating endocannabinoid levels, abdominal adiposity and related cardiometabolic risk factors in obese men. // Int. J. Obes. 2007 -Vol. 31-P. 692-699.

40. Cravatt B.F., Demarest K., Patricelli M.P., et al. Supersensitivity to anandamide and enhanced endogenous cannabinoid, signaling in mice lacking fatty acid amide hydrolase // Proc. Natl. Acad. Sci. 2001 - Vol. 98 -P. 9371 - 9376.

41. Cruz M., Garcia-Macedo R. et al. Low adiponectin levels predict type 2 diabetes in Mexican children. // Diabetes Care 2004 - Vol. 27 - P. 1451 -1453.

42. Dedoussis G.V., Kapiri A., Samara A., Dimitriadis D., Lambert D., Pfister M., Siest G., Visvilds-Siest S. Visfatin: the link between inflammation and childhood obesity. // Diabetes Care. 2009 - Vol. 32(6) - e. 71.

43. Degawa-Yamauchi M., Dilts J.R. et-al. Lower serum adiponectin levels in African-American boys. // Obes. Res. 2003 -Vol. 11 - P. 1384-1390.

44. Dekker J.M., Funahashi T., Nijpels G., et al. Prognostic value of adiponectin for cardiovascular disease and mortality. J. Clin. Endocrinol. Metab. 2008. -Vol.93.-P. 1489- 1496.

45. Diamond F.B., Jr., Cuthbertson D., Hanna S., Eichler D. Correlates of adiponectin and the leptin/adiponectin ratio in obese and non-obese children. // J. Pediatr. Endocrinol. Metab. 2004 - Vol. 17 - P. 1069 - 1075.

46. Diez J.J., Iglesias P. The role of the novel adipocyte-derived hormone adiponectin in human disease. // Eur. J. Endocrinol. 2003 - Vol. 148 - P. 293-300.

47. Di Marzo V., Fontana A., Cadas H. et al. Formation and inactivation of endogenous cannabinoid anandamide in central neurons // Nature. 19941. Vol. 372-P. 686-691.

48. Di Marzo V., Goparaju S.K., Wang L., Liu J., Ba' tkai S., Ja' rai Z., Fezza F., Miura G.I., Palmiter R.D., Sugiura T., Kunos G. Leptin-regulated endocannabinoids are involved in maintaining food intake. // Nature. -2001- Vol. 410 P.822 - 825.

49. Di Marzo V., Matias I. Endocannabinoid control of food intake and energy balance. // Nat. Neurosci. 2005 - Vol. 8 - P. 585 - 589.

50. Di Marzo V., Petrosino S. Endocannabinoids and the regulation of their levels in health and disease. // Curr. Opin. Lipidol. 2007 - Vol. 18 - P. 129 -140.

51. Di Marzo V. Endocannabinoids: synthesis and degradation. // Rev. Physiol. Biochem. Pharmacol. 2008 - Vol. 160 - P. 1 - 24.

52. Di Patrizio N.V., Simansky K.J. Activating parabrachial cannabinoid CB1 receptors selectively stimulates feeding of palatable foods in rats. // J. Neurosci. 2008 - Vol. 28 - P. 9702 - 9709.

53. Dogru T., Sonmez A., Tasci I. et al. Plasma visfatin levels in patients with newly diagnosed and untreated type 2 diabetes mellitus and impaired glucose tolerance. // Diabetes. Res. Clin. Pract. 2007 - Vol. 76 - P. 24 -29.

54. Dreyer C., Krey G., Keller H., Givel F., Helftenbein G., Wahli W. Controlof the peroxisomal h-oxidation pathway by a novel family of nuclear hormone receptors. // Cell. 1992 - Vol. 68 - P. 879 - 887.

55. Ellis K.J., Shypailo R.J., Abrams S.A., Wong W.W. The reference child and adolescent models of body composition. A contemporaiy comparison. // Ann. NY. Acad. Sci. 2000 - Vol. 904 - P. 374 - 382.

56. Engeland A., Bjorge T., Tverdal A. et al. Obesity in adolescence and adulthood and the risk of adult mortality. // Epidemiology. 2004 - Vol . 15(1) - P.79 - 85.

57. Engeli S., Bohnke J., Feldpausch M., Gorzelniak K., Janke J., Batkai S., Pacher P., Harvey-White J., Luft F.C., Sharma A.M., Jordan J. Activation of the peripheral endocannabinoid system in human obesity // Diabetes. 2005 -Vol. 54-P. 2838-2843.

58. Engeli S. Peripheral Metabolic Effects of Endocannabinoids and Cannabinoid Receptor Blockade // Obesity. Facts. 2008 - Vol. 1 - P. 8-15.

59. Engeli S. Dysregulation of the Endocannabinoid System in Obesity // J. Of Neuroendocrinol. 2008 - Vol. 20(1) - P. 110 - 115.

60. Evans R.M., Barish G.D., Wang Y.X. PPARs and the complex journey to obesity. // Nat. Med. 2004 - Vol. 10 - P. 355 - 361.

61. Fajas L., Fruchart J.C., Auwerx J. 1998 PPAR 3 mRNA: a distinct PPAR mRNA subtype transcribed from an independent promoter. // FEBS Lett.1. Vol. 438-P. 55-60.

62. Franks P.W., Hanson R.L., Knowler W.C., Sievers M.L., Bennett P.H., Looker H.C. Childhood obesity, other cardiovascular risk factors, and premature death. // N. Engl. J. Med. 2010 - Vol. 362(6) - P. 485 - 93.

63. Freedman D.S., Khan L.K., Serdula M.K. et al. Inter-relationships among childhood BMI, childhood height, and adult obesity: the Bogalusa Heart Study. // Int. J. Obes. Relat. Metab. Disord. 2004 - Vol. 28 - P. 10 - 16.

64. Fukuhara A., Matsuda M., Nishizawa M. et al. Visfatin: a protein secreted by visceral fat that mimics the effects of insulin. // Science. 2005 - Vol. 307-P. 426-30.

65. Funahashi T., Hanson R.L. et al. Adiponectin protects against development of type 2 diabetes in the Pima Indian population. // Lancet. 2002 - Vol. 360-P. 57 -58.

66. Gasperi V., Fezza F., Pasquariello N., et al. Endocannabinoids in adipocytes during differentiation and their role in glucose uptake. // Cell. Mol. Life. Sci. 2007 - Vol. 64 - P. 219 - 229.

67. Gesta S, Bluher M, Yamamoto Y, Norris AW, Berndt J, Kralisch S, et al. Evidence for a role of developmental genes in the origin of obesity and body fat distribution. // Proc. Natl. Acad. Sci. 2006 - Vol. 103 - P. 6676 -6681.

68. Giuffrida A., Beltramo M., Piomelli D. Mechanism of endocannabinoidinactivation: Biochemisry and pharmacology // J. Pharmacol. Exp. Therapy. -2001 -Vol. 298-P. 7- 14.

69. Gonthier M.P., Hoareau L., Festy F., et al. Identification of endocannabinoids and related compounds in human fat cells. // Obesity. -2007-Vol. 15-P. 837-45.

70. Greeman Y., Must A. Morbidity and mortality associated with elevated body weight in children and adolescents. // Am. J. Clin. Nutr. 1996. - Vol. 63(3) P.445—447.

71. Hamdy O., Porramatikul S., Al-Ozairi E. Metabolic obesity: the paradox between visceral and subcutaneous fat. // Curr. Diabetes. Rev. 2006 - Vol. 2(4)-P. 367-73.

72. Hammarstedt A., Andersson C.X., Rotter Sopasalcis V., Smith U. The effect of PPARy ligands on the adipose tissue in insulin resistance. // Prostaglandins. Leukot. Essent. Fatty. Acids. 2005 - Vol. 73 - P. 65 - 75.

73. Hammarstedt A., Pihlajamaki J., Rotter Sopasakis V., Gogg S et al. Visfatin Is an Adipokine, But It Is Not Regulated by Thiazolidinediones. // J. Clin. Endocrinol. Metab.- 2006 -Vol. 91(3) P. 1181 - 1184.

74. Hara K., Kadowaki T. et al. Genetic variation in the gene encoding adiponectin is associated with an increased risk of type 2 diabetes in the Japanese population. // Diabetes. 2002 - Vol. 51 - P. 536 - 540.

75. Harte A.L., McTernan P.G., McTernan C.L., Smith S.A., Barnett A.H., Kumar S. Rosiglitazone inhibits the insulin-mediated increase in PAI-1 secretion in human abdominal subcutaneous adipocytes. // Diabetes. Obes. Metab. 2003 - Vol. 5 - P. 302 - 310.'

76. Herling A.W., Kilp S., Elvert R., et al. Increased energy expenditurecontributes more to the body weight-reducing effect of rimonabant than reduced food intake in candy-fed wistar rats. // Endocrinology. 2008 - Vol. 149-P. 2557-2566.

77. Hilairet S., Bouaboula M., Carriere D. et al. Hypersensitization of the orexin 1 receptor by the CB1 receptor: evidence for cross-talk blocked by the specific CB1 antagonist, SR141716. // J. Biol. Chem. 2003 - Vol. 278 - P. 23731-23737.

78. Hollenberg N.K. Considerations for management of fluid dynamic issues associated with thiazolidinediones. // Am. J. Med. 2003 - Vol. 115(8A) -P. 111S-115S

79. Hotamisligil G.S., Shargill N.S., Spiegelman B.M. Adipose expression of tumor necrosis factor-alpha: direct role in obesity-linked insulin resistance. // Science. 1993 - Vol. 259-P. 87-91.

80. Hotta K. et al. Plasma concentrations of a novel, adiposespecific protein, adiponectin, in type 2 diabetic patients. //Arterioscle. Thromb. Vas. Biol.-2000-Vol. 20-P. 1595- 1599.

81. Huang C.C., Lo S.W., Hsu K.S. Presynaptic mechanisms underlying cannabinoid inhibition of excitatory synaptic transmission in rat striatal neurons. // J. Physiol. 2001 - Vol. 532 - P. 731 - 748.

82. Huang KC, Lue BH, Yen RF, et al. Plasma adiponectin levels andmetabolic factors in nondiabetic adolescents. // Obes. Res. 2004 - Vol. 12 -P. 119-124.

83. Huang T., Johnson M., Gower B. et al. Effect of changes in fat distribution on the rates of change of insulin response in children. // Obes. Research. 2002 - Vol. 10(10) - P. 982 - 984.

84. Hu E., Liang P., Spiegelman B.M. AdipoQ is a novel adipose-specific gene dysregulated in obesity. // J. Biol. Chem. 1996 - Vol. 271 - P. 10697- 10703.

85. Isobe T., Saitoh S., Takagi S., et al. Influence of gender, age and renal function on plasma adiponectin level: the Tanno and Sobetsu study. Eur. J.Endocrinol. 2005. -Vol.153. P.91 - 98.

86. Iwaki M., Matsuda M., Maeda N., Funahashi T., Matsuzawa J.,

87. Makishima M., Shimomura I. Induction of Adiponectin, a Fat-Derived Antidiabetic and Antiatherogenic Factor, by Nuclear Receptors. // Diabetes.- 2003 Vol. 52 - P. 1655 - 1663.

88. Iwashima Y. et al. Hypoadiponectinemia is an independent risk factor for hypertension. // Hypertension. 2004 - Vol. 43 - P. 1318-1323.

89. Jamshidi N., Taylor D.A. Anandamide administration into the ventromedial hypothalamus stimulates appetite in rats. // Br. J. Pharmacol. -2001-Vol. 134-P. 1151-1154.

90. Jbilo O., Ravinet-Trillou C., Arnone M. et al. The CB1 receptor antagonist rimonabant reverses the diet-induced obesity phenotype through the regulation of lipolysis and energy balance. // Faseb. J. 2005 - Vol. 19 -P. 1567- 1569.

91. Juan-Pico P., Fuentes E., Bermudez-Silva F.J., Javier Diaz-Molina F.,

92. Ripoll C., Rodriguez de Fonseca F., Nadal A. Cannabinoid receptorsIregulate Ca (2) signals and insulin secretion in pancreatic (3 -cell. // Cell.i

93. Calcium. 2006 - Vol. 39 - P. 155 - 162.

94. Kadowaki T., Yamauchi T. Adiponectin and Adiponectin Receptors. //

95. Endocrine. Reviews. 2005 - Vol. 26(3) - P. 439 - 451.

96. Kadowaki T., Yamauchi T., Kubota N., Hara K., Ueki K., Tobe K. Adiponectin and adiponectin receptors in insulin resistance, diabetes, and the metabolic syndrome. // J. Clin. Invest. 2006 - Vol. 116 - P. 1784 -1792.

97. Kettaneh A. et al. Serum Adiponectin is Related to Plasma HDL-Cholesterol but not to Plasma Insulin- Concentration in Healthy Children. The FLVS II Study. // Metabolism. 2006 - Vol. 55 - P. 1171 - 1176.

98. Kim M.K., Lee J.H., Kim H. et al. Crystal structure of visfatin/pre-B cell colony-enhancing factor 1/nicotinamide phosphoribosyltransferase, free and in complex with the anti-cancer agent FK-866. // J. Mol. Biol. 2006 -Vol. 362-P. 66-77.

99. Kintscher U., Law R.E. PPAR-mediated insulin sensitization: the importance of fat versus muscle. // Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. -2005 Vol. 288 - P. E287 - E291

100. Kliewer S. et al. Peroxisome Proliferator-Activated Receptors: From Genes to Physiology. // Rec. Prog. In. Horm. Res. 2001 - Vol. 56 - P.239 265.

101. Kloet A.D., Woods S.C. Minireview: Endocannabinoids and Their Receptors as Targets for Obesity Therapy. // Endocrinology. 2009 - Vol. 150(6)-P. 2531 -2536.

102. Korner A., Kiess W. et al. Molecular characteristics of serum visfatin and differential detection by immunoassays. // J. Clin. Endocrinol. Metab. -2007 Vol. 92 - P. 4783 - 4791.

103. Krzyzanowska K., Krugluger W., Mittermayer F. et al. Increased visfatin concentrations in women with gestational diabetes mellitus. // Clin. Sei. 2006 - Vol. 110 - P. 605 - 609.

104. Kubota N., Kadowaki T., Nöda T. et al. Disruption of adiponectin causes insulin resistance and neointimal formation. // J. Biol. Chem. 2002 - Vol. 277 - P. 25863 - 25866.

105. Kumada M. et al. Association of hypoadiponectinemia with coronary artery disease in men. // Arterioscler. Thromb. Vase. Biol. 2003 - Vol. 23 -P. 85-89.i

106. Kwiterovich P.O. Recognition and Management of Dyslipidemia in Children and Adolescents. // J. Clin. Endocrinol. Metab. 2008 - Vol. 93(11)-P. 4200-4209.

107. Lefebvre A.M., Laville M., Vega N., Riou J.P., Van Gaal L., Auwerx J., Vidal H. Depot-specific differences adipose tissue gene expression in lean and obese subjects. // Diabetes. 1998 - Vol. 47 - P. 98 - 103.

108. Lewis G.F., Carpentier A., Adeli K., Giacca A. Disordered fat storage and mobilization in the pathogenesis of insulin resistance and type 2 diabetes. // Endocr. Rev. 2002 - Vol. 23 - P. 201 - 229.

109. Li A.C., Palinski W. Peroxisome proliferator-activated receptors: how their effects on macrophages can lead to the development of a new drug therapy against atherosclerosis. // Annu. Rev. Pharmacol. Toxicol. 2006 -Vol. 46-P. 1-39.

110. Li X., Lindquist S., Ängsten G., Yi J., Olsson T., Hernell O. Adiponectin and peroxisome proliferator-activated receptor y expression in subcutaneous and omental adipose tissue in children. //Acta. Paediatrica. -2008 Vol. 97 - P. 630 - 635.

111. Lindsay R.S., Funahashi T. et al. Genome-Wide Linkage Analysis of

112. Serum Adiponectin in the Pima Indian Population. // Diabetes. 2003 - Vol. 52-P. 2419-2425.

113. Lobstein T., Baur L., Uauy R. Obesity in children and young people: a crisis in public health. // Obes. Rev. 2004 - Vol. 5 - P. 4-85.

114. Lofgren P., Sjolin E., Wahlen K., Hoffstedt J. Human Adipose Tissue Cannabinoid Receptor 1 Gene Expression Is Not Related to Fat Cell Function or Adiponectin Level. // J. Clin. Endocrinol. Metab. 2007 - Vol. 92(4)-P. 1555- 1559.

115. Loomba-Albrecht L.A., Styne D.M. Effect of puberty on body composition. // Curr. Opin. Endocrinol. Diabetes. Obes. 2009 - Vol. 16(1) -P. 10-5.

116. McCarthy H.D., Jarrett K.V., Crawley H.F. The development of waist circumference percentiles in British children aged 5.0 -16.9 y. // Eur. J. Clin. Nutr. 2001 - Vol. 55 - P. 902 - 907.

117. Maeda K., Okubo K., Shimomura I. cDNA cloning and expression of a novel adipose specific collagen-like factor, apMl (AdiPose Most abundant Gene transcript 1). // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1996 - Vol. 221 -P. 286-289.

118. Maeda N., Matsuzawa Y. et al. Diet induced insulin resistance in mice lacking adiponectin/ACRP30. // Nat. Med. 2002 - Vol. 8 - P. 731-737.

119. Maffeis C., Pietrobelli A., Grezzani A. et al. Waist circumference and cardiovascular risk factors in prepubertal children. // Obes. Res. 2001 -Vol. 9-P. 179- 187.

120. Mandarino L.J., DeFronzo R.A. Effect of pioglitazone on abdominalfat distribution and insulin sensitivity in type 2 diabetic patients. // J. Clin. Endocrinol. Metab. 2002 - Vol. 87 - P. 2784 - 2791.

121. Mangelsdorf D.J., Thummel C., Beato M., et al. The nuclear receptor superfamily: the second decade. // Cell. 1995 - Vol. 83 - P. 835 - 839.

122. Martin P.R., Shea R.J., Mulks M.H. Identification of a plasmid-encoded gene from Haemophilus ducreyi which confers NAD independence. // J. Bacteriol. 2001 - Vol. 183 - P. 1168 - 1174.

123. Matsubara M., Maruoka S., Katayose S. Decreased plasma adiponectin concentrations in women with dyslipidemia. // J. Clin. Endocrinol. Metab. 2002 - Vol. 87 - P. 2764 - 2769.

124. Matsuda M., Shimomura I., Matsuzawa Y. et al. Role of adiponectin in preventing vascular stenosis. The missing link of adipo-vascular axis. // J. Biol. Chem. 2002 - Vol. 277 - P. 37487 - 37491.

125. Matsuzava Y., Funahashi T., Nacamura T. Molecular mechanism ofmetabolic syndrom X: contribution of adipocyte-derived bioactive substances. // Ann. NY. Acad. Sci. 1999 - Vol. 892 - P. 146 - 154.

126. Michalik L. et al. International Union of Pharmacology. LXI.

127. Peroxisome proliferator-activated receptors. // Pharmacol. Rev. 2006 -Vol. 58(4)-P. 726-741.

128. Miller J., Rosenbloom A., Silverstein J. Childhood Obesity. // J. Clin. Endocrin. Metab. 2004 - Vol! 89(9) - P. 4211 - 4218.

129. Moller D.E., Berger J.P. Role of PPARs in the regulation of obesity-related insulin sensitivity and inflammation. // Int. J. Obes. Relat. Metab. Disord. 2003 - Vol. 27(3) - P. S17 - S21.

130. Moschen A.R., Kaser A., Enrich B. et al. Visfatin, and adipocytokine with proinflammatory animmunomodulating properties. // J. Immunol. -2007-Vol. 178-P. 1748- 1758.

131. Motaghedi R., McGraw T.E. The CB1 endocannabinoid system modulates adipocyte insulin sensitivity. // Obesity. 2008 - Vol. 16 - P. 1727 - 1734.

132. Motoshima H., Wu X., Sinha M.K., et al. Differential regulation of adiponectin secretion from cultured human omental and subcutaneous adipocytes: effects of insulin and rosiglitazone. // J. Clin. Endocrinol. Metab. 2002 - Vol. 87 - P. 5662-5667.

133. Nakano Y., Tomita M. et al. Isolation and characterization of GBP28, a novel gelatin-binding protein purified from human plasma. // J. Biochem. -1996-Vol. 120- P. 803-812.

134. Nemet D., Wang P., Funahashi T., Matsuzawa Y., Tanaka S., Engelman L., Cooper D.M. Adipocytokines, body composition, and fitness in children. // Pediatr. Res. 2003 - Vol. 53(1) - P. 148 - 152.

135. Nishizawa H., Shimomura I., Kishida K. // Androgens Decrease Plasma Adiponectin, an Insulin-Sensitizing Adipocyte-Derived Protein. // Diabetes. 2002. - Vol. 51(9). - P. 2734 - 2741.

136. Nusken K.D., Dotsch" J. et al. Preanalytical influences on the measurement of visfatin by enzyme immunoassay. // Clin. Chim. Acta. -2007-Vol. 382-P. 154- 156.

137. Okamoto Y., Kihara S., Ouchi N. et al. Adiponectin reduces atherosclerosis in apolipoprotein E-deflcient mice. // Circulation. 2002 -Vol. 106-P. 2767-2770.

138. Old K., Kohno N. et al. Circulating visfatin level is correlated with inflammation, but not with insulin resistance. // Clin. Endocrinol. 2007 -Vol. 67-P. 796-800.

139. Ouchi N., Matsuzawa Y. et al. Novel modulator for endothelial adhesion molecules: adipocyte-derived plasma protein adiponectin. // Circulation. 1999 - Vol. 100 - P. 2473 - 2476.

140. Ouchi N., Matsuzawa Y. et al. Association of hypoadiponectinemiawith impaired vasoreactivity. // Hypertension. 2003 - Vol. 42 - P. 231 -234.

141. Pacher P., Batkai S., Kunos G. The endocannabinoid system as an emerging target of pharmacotherapy. // Pharmacol. Rev. 2006 - Vol. 58 -P. 389-462.

142. Pagotto U., Vicennati V., Pasquali R. The endocannabinoid system and the treatment of obesity. // Ann. Med. 2005 - Vol. 37 - P. 270 - 275.

143. Pajvani U.B., Scherer P.E. Adiponectin: systemic contributor to insulin sensitivity. // Curr. Diab. Rep. 2003 - Vol. 3 - P. 207 - 213.

144. Perwitz N., Fasshauer M. and Klein J. Cannabinoid receptor signaling directly inhibits thermogenesis and alters expression of adiponectin and visfatin. // Horrn. Metab. Res. 2006 - Vol. 38 - P. 356 - 358.

145. Phillips S.A., Ciaraldi T.P., Oh D.K., Savu M.K., Henry R.R. Adiponectin secretion and response to pioglitazone is depot dependent in cultured human adipose tissue. // Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. 2008 -Vol. 295 -P. E842-E850.

146. Pischon T., Girman C.J., Hotamisligil G.S., Rifai N., Hu F.B., Rimm E.B. Plasma adiponectin levels and risk of myocardial infarction in men. // JAMA. 2004 - Vol. 291 - P. 1730 - 1737.

147. Quinkler M, Bujalska IJ, Tomlinson JW, Smith DM, Stewart PM. Depot-specific prostaglandin synthesis in human adipose tissue: a novel possible mechanism of adipogenesis. // Gene. 2006 - Vol. 380 - P. 137 -143.

148. Rasouli N., Raue U., Miles L.M., Lu T., Di Gregorio G.B, Elbein

149. S.C., Kern P.A. Pioglitazone improves insulin sensitivity through reduction in muscle lipid and redistribution of lipid into adipose tissue. // Am. J. Physiol .Endocrinol. Metab. 2005 - Vol. 288 - P. E930 - E934.

150. RasouliN., Yao-Borengasser A., Miles L.M., Elbein S.C., Kern P.A. Increased plasma adiponectin in response to pioglitazone does not result from increased gene expression. // Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. -2006 Vol. 290 - P. E42 - E46.

151. Revollo J.R., Grimm A.A. and Imai S. The NAD biosynthesis pathway mediated by nicotinamide phosphoribosyltransferase regulates Sir2 activity in mammalian cells. // J. Biol. Chem. 2004 - Vol. 279 - P. 50754 -50763.

152. Roche A.F., Heysfiled S.B., Lohman T.G. Total body composition: Birth to old age. // Champaign, IL: Human Kinetics Publishers. 2001 - P. 230 - 245.

153. Roche R., Hoareau L., Bes-Houtmann S., et al. Presence of the cannabinoid receptors, CB1 and CB2, in human omental and subcutaneous adipocytes. // Histochem. Cell. Biol. 2006 - Vol. 126 - P. 177 - 187.

154. Samal B. et al., Cloning and characterization of the cDNA encoding anovel human pre-B-cell colony-enhancing factor. // Mol. Cell. Biol. 1994 1. Vol. 14-P. 1431 1439.

155. Scherer P.E., Williams S. et al. A novel serum protein similar to Clq, produced exclusively in adipocytes. // J. Biol. Chem. 1995 - Vol. 270 - P. 26746-26749.

156. Senolt L., Housa D:, Vernerova Z., et al. Resistin in rheumatoid arthritis synovial tissue, synovial fluid and serum. // Ann. Rheum. Dis. -2007-Vol.66-P.458-463.

157. Sethi J.K., Vidal-Puig A. Visfatin: the missing link between intraabdominal obesity and diabetes? // Trends. Mol. Med. 2005 - Vol. 11 - P. 344 - 347.

158. Shoji T., Shinohara K., Hatsuda S., et al. Altered relationship between body fat and plasma adiponectin in end-stage renal disease. // Metabolism. -2005 -Vol.54-P.330 334.

159. Smith S.R., De Jonge .L, Volaufova J., Li Y., Xie H., Bray G.A. Effect of pioglitazone on body composition and energy expenditure: a randomized controlled trial. // Metabolism. 2005 - Vol. 54 - P. 24 - 32.

160. Sommer G. et al. Visfatin/PBEF/Nampt: structure, regulation and potential function of a novel adipokine. // Clin. Sci. 2008 - Vol. 115 - P. 13 -23.

161. Soria-Gomez E., Matias I., Rueda-Orozco P.E., Cisneros M.,

162. Speiser Ph.W., Rudolf M.C., Anhalt H. et al. Consensus statement: Childhood Obesity. // J. Clin. Endocrinol. Me tab. 2005 - Vol. 90(3) -P.1871 - 1887.

163. Spoto B., Fezza F., Parlongo G. et al. Human adipose tissue binds and metabolizes the endocannabinoids anandamide and 2-arachidonoylglycerol. // Biochimie. 2006 - Vol. 88 - P. 1889- 1897.

164. Staiger H., Tschritter O., Machann J.5 et al. Relationship of serum adiponectin and leptin concentrations with body fat distribution in humans. Obes. Res. 2003. Vol.11. - P.368 - 372.

165. Statnick M.A., Beavers L.S., et al. Decreased expression of apMl in omental and subcutaneous adipose tissue of humans with type 2 diabetes. // Int. J. Exp. Diabetes. Res. 2000 - Vol.l - P. 81 - 88.

166. Stefan N., Funahashi T., Matsuzawa Y., Tataranni P.A. Plasma adiponectin concentrations in children: relationships with obesity and insulinemia. // J. Clin. Endocrinol. Metab. 2002 - Vol. 87 - P. 4652 -4656.

167. Sun G., Bishop J. et al. Serum visfatin concentrations are positively correlated with serum triacylglycerols and down-regulated by overfeeding in healthy young men. // Am. J. Clin. Nutr. 2007 - Vol. 85 - P. 399 - 404.

168. Sundvold H., Lien S. Identification of a novel peroxisome proliferator-activated receptor gamma (PPARy) promoter in man andtransactivation by the nuclear receptor ROR 1. // Biochem. Biophys. Res. Commun. 2001 - Vol. 287 - P. 383 - 390.

169. Swallen K.C. et al. Overweight, obesity, and health-related quality of life among adolescents: the National Longitudinal Study of Adolescent Health. // Pediatrics. 2005 - Vol. 115(2) - P. 340 - 347.

170. Takahashi M., Arita Y., Kihara S., Matsuzawa Y. Role of adipocytokines on the pathogenesis of atherosclerosis in visceral obesity. // Intern. Med. 1999 - Vol. 38 - P. 202 - 206.

171. Tontonoz P., Hu E., Graves R.A., Budavari A.I.,Spiegelman B.M. mPPAR 2: tissue-specific regulator of an adipocyte enhancer. // Genes. Dev. 1994-Vol. 8-P. 1224- 1234.

172. Trujillo M.E., Scherer P.E. Adipose tissue-derived factors: impact on health and disease. // Endocr. Rev. 2006. - Vol.27. - P.762 - 778.

173. Tsou P.L., Jiang Y.D. et al. Sex-related differences between adiponectin and insulin resistance in schoolchildren. // Diabetes Care 2004-Vol. 27 P. 308-313.

174. Tucci S.A., Rogers E.K., Korbonits M., Kirkham T.C. The cannabinoid CB1 receptor antagonist SR141716 blocks the orexigenic effects of intrahypothalamic ghrelin. // Br. J. Pharmacol. 2004 - Vol. 143 — P. 520-523.

175. Varma, V., Yao-Borengasser, A., Rasouli, N. et al. Human visfatin expression: relationship to insulin sensitivity, intramyocellular lipids, and inflammation. // J. Clin. Endocrinol. Metab. 2007 - Vol. 92 - P. 666 - 672.

176. Veldhuis J.D., Roemmich J.N, Richmond E.J. et al. Endocrine Control of Body Composition in Infancy, Childhood, and Puberty. // Endocrine. Reviews. 2005 - Vol. 26 - P. 114 - 146.

177. Verty A.N., McFarlane J.R., McGregor I.S. et al. Evidence for an interaction between CB1 cannabinoid and melanocortin MCR-4 receptors inregulating food intake. // Endocrinology. 2004 - Vol. 145 - P. 3224-3231.

178. Verty A.N., McGregor I.S., Mallet P.E. Paraventricular hypothalamic CB(1) cannabinoid receptors are involved in the feeding stimulatory effects of (9)- tetrahydrocannabinol. // Neuropharmacology. 2005 - Vol: 49 - P. 1101-1109.

179. Vidal-Puig A., Jimenez-Linan M., Lowell B.B., Hamann A.,Hu E., Spiegelman B., Flier J.S., Moller D.E. Regulation of PPARg gene expression by nutrition and obesity in rodents. // J. Clin. Invest. 1996 -Vol. 97-P. 2553-2561.

180. Waki H., Yamauchi T., KadowakiT. et al. Impaired multimerization of human adiponectin mutants associated with diabetes: Molecular structure and multimer formation of adiponectin. // J. Biol. Chem. 2003 - Vol. 278 -P. 40352-40363.

181. Wang T., Zhang X., Bheda P., Revollo J.R., Imai S. and Wolberger C. Structure of Nampt/PBEF/visfatin, a mammalian NAD+ biosynthetic enzyme. // Nat. Struct. Mol. Biol. 2006 - Vol. 13 - P. 661 - 662.

182. Wang Y.X. PPARs: diverse regulators in energy metabolism and metabolic diseases. // Cell. Research. 2010 - Vol. 20 - P. 124 - 137.

183. Weisberg S.P., McCann D., Desai M., Rosenbaum M., Leibel R.L., Ferrante Jr A.W. Obesity is associated with macrophage accumulation inadipose tissue. // J. Clin. Invest. 2003 - Vol. 112 - P. 1796 - 1808.

184. Weiss R., Dufour S., Caprio S. et al. Low adiponectin levels in adolescent obesity: a marker of increased intramyocellular lipid accumulation. // J. Clin. Endocrinol. Metab. 2003 - Vol. 88 - P. 2014 -2018.

185. Weyer C., Funahashi T., Tanaka S. et al. Hypoadiponectinemia in obesity and type 2 diabetes: close association with insulin resistance and hyperinsulinemia. // J. Clin. Endocrinol. Metab. 2001 - Vol. 86 - P. 1930 -1935.

186. Williams C.M., Kirkham T.C. Anandamide induces overeating: mediation by central cannabinoid (CB1) receptors. // Psychopharmacology.- 1999 Vol. 143 - P. 315-317.

187. Winer J.C., Zern T.L., Taksali S.E., et al. Adiponectin in childhood ; and adolescent obesity and its association with inflammatory markers andcomponents of the metabolic syndrome. // J. Clin. Endocrinol. Metab. 2006- Vol.91-P.4415 -4423.

188. Xu H., Barnes G.T., Yang Q., Tan G., Yang D., Chou C.J., Sole J., Nichols A., Ross J.S., Tartaglia L.A., Chen H. Chronic inflammation in fatplays a crucial role in the development of obesity-related insulin resistance.

189. J. Clin. Invest. 2003 - Vol. 112 - P. 1821 - 1830.

190. Yamauchi T., Shudo K. et al. The fat-derived hormone adiponectin reverses insulin resistance associated with both lipoatrophy and obesity. // Nat. Med. 2001 - Vol. 7 - P. 941 - 946.

191. Yamauchi, T., Kamon, J., Ito, Y., Tsuchida, A., Yokomizo, T., Kita, S. et al. Cloning of adiponectin receptors that mediate antidiabetic metabolic effects. //Nature. 2003 - Vol. 423 - P. 762 - 769.1

192. Yeckel C.W., Weiss R., Dziura J. et al. Validation of insulinsensitivity indices from oral glucose tolerance test parameters in obese children and adolescents. // J. Clin. Endocrinol. Metab. 2004 - Vol. 89(3) 1. P. 1096- 1101.

193. Yki-Jarvinen H. Fat in the liver and insulin resistance. // Ann. Med. -2005 Vol. 37 - P. 347 - 356.