Автореферат и диссертация по медицине (14.00.09) на тему:Диагностическое и прогностическое значение лимфопении при неонатальных инфекциях

ДИССЕРТАЦИЯ
Диагностическое и прогностическое значение лимфопении при неонатальных инфекциях - диссертация, тема по медицине
АВТОРЕФЕРАТ
Диагностическое и прогностическое значение лимфопении при неонатальных инфекциях - тема автореферата по медицине
Ашиткова, Наталья Вячеславовна Москва 2009 г.
Ученая степень
кандидата медицинских наук
ВАК РФ
14.00.09
 
 

Автореферат диссертации по медицине на тему Диагностическое и прогностическое значение лимфопении при неонатальных инфекциях

На правах рукописи

□034Б4017

Ашиткова Наталья Вячеславовна

ДИАГНОСТИЧЕСКОЕ И ПРОГНОСТИЧЕСКОЕ ЗНАЧЕНИЕ ЛИМФОПЕНИИ ПРИ НЕОНАТАЛЬНЫХ ИНФЕКЦИЯХ

14.00.09- педиатрия

АВТОРЕФЕРАТ

диссертации на соискание ученой степени кандидата медицинских наук

1 гж да

Москва, 2009

003464017

Работа выполнена на кафедре неонатологии факультета усовершенствования врачей Государственного Образовательного Учреждения Высшего Профессионального Образования «Российский Государственный Медицинский Университет» Росздрава.

Научные руководители:

Академик РАМН, доктор медицинских наук,

профессор Володин Николай Николаевич

Доктор медицинских наук, профессор Дегтярева Марина Васильевна

Официальные оппоненты:

Доктор медицинских наук, профессор Доктор медицинских наук, профессор

Байбарина Елена Николаевна Финогенова Наталия Анатольевна

Ведущее учреждение: ГОУ ДПО «Российская Медицинская Академия Последипломного Образования» Росздрава.

Защита состоится «_» _ 2009 года в _ часов на заседании

диссертационного совета Д 208.050.01. в ФГУ «Федеральный научно-клинический центр детской гематологии, онкологии и иммунологии» Росздрава по адресу: 119571, Москва, Ленинский проспект, 117, корп. 2.

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке ФГУ ФНКЦ гематологии, онкологии и иммунологии Росздрава и на сайте www.niidg.ru

Автореферат разослан «_»_2009 года

Ученый секретарь диссертационного совета

доктор медицинских наук, профессор Чернов Вениамин Михайлович

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ Актуальность работы.

Гнойно-воспалительные заболевания занимают существенное место в структуре заболеваемости и смертности новорожденных и недоношенных детей, как в России, так и за рубежом, поэтому проблема оптимизации лечения тяжёлых инфекций у новорожденных детей не теряет своей актуальности во всех странах мира.

Несмотря на широкое применение антибактериальной терапии, в последние годы отмечается тенденция к росту числа детей, больных сепсисом, в первую очередь, среди недоношенных детей с экстремально низкой массой тела (ЭНМТ) при рождении. Помимо перинатальных факторов риска развития внутриутробной инфекции и раннего неонаталыюго сепсиса важную роль играют длительное пребывание в отделении реанимации и интенсивной терапии, необходимость применения инвазивных методов лечения (ИВЛ, катетеризация кровеносных сосудов и мочевого пузыря, зондирование желудка), что может послужить причиной развития позднего неонаталыюго сепсиса.

В последние годы во всем мире пристальное внимание исследователей и практических врачей уделяется комплексу проблем, связанных с изучением онтогенеза иммунной системы в норме и функционированием её при патологических состояниях, особенно при тяжелых инфекциях в перинатальном периоде и в раннем детском возрасте. Иммунные механизмы участвуют в патогенезе основных заболеваний перинатального периода и во многом обуславливают исход и возможность полноценной реабилитации заболевшего ребенка.

В клинической практике одним из наиболее информативных методов, позволяющим подтвердить наличие бактериальной инфекции, является общий анализ крови. Известно, что маркерами воспалительной реакции являются лейкоцитоз или лейкопения, нейтрофилез или нейтропения, сдвиг лейкоцитарной формулы до юных форм гранулоцитов. В то же время отсутствуют систематизированные факты статистического анализа клинических наблюдений, характеризующие роль лимфоцитов в иммунной защите новорожденных детей различного гестационного возраста (ГВ) при физиологическом и осложненном течении неонатального периода, изменение их количества в динамике генерализованных и локализованных инфекций, диагностическую и прогностическую роль лимфопенических состояний. При этом имеются доказательства неблагоприятной прогностической значимости лимфопении, как правило, сопровождающей гипоэргическое течение сепсиса и тяжелых инфекций (Шабалов Н.П., Иванов Д.0.,2001).

Изучение диагностической и прогностической роли абсолютной лимфопении становится особенно актуальным в связи с появлением в арсенале врачей новых особо чистых и безопасных генно-инженерных препаратов, относящихся к медиаторам иммунной системы. Мы предположили, что некоторые из них могут явиться эффективным средством для коррекции

1

абсолютной лимфопении у новорожденных детей и тем самым улучшить прогноз при тяжелых неонатальных инфекциях. Для решения вышеуказанных проблем и было предпринято настоящее исследование.

Цель исследования: Установить диагностическое и прогностическое значение абсолютной лимфопении в патогенезе неонатальных инфекций и оценить клиническую эффективность иммунотерапии препаратом рекомбинантного интерлейкина-2 человека (Ронколейкин®).

Для достижения этой цели были поставлены следующие задачи:

1. Установить частоту встречаемости и клиническое значение лимфопении у новорожденных детей при различной патологии.

2. Установить прогностическое значение абсолютной лимфопении при неонатальных инфекционных заболеваниях.

3. Оценить взаимосвязь между количеством лимфоцитов и другими лабораторными показателями у новорождённых детей различного ГВ с осложненным течением неонатального периода.

4. Изучить особенности фенотипа лимфоцитов у новорожденных детей различного ГВ при неонатальных инфекциях, сопровождающихся развитием лимфопении.

5. Обосновать клинико-лабораторные показания к проведению иммунокоррекции лимфопенических состояний и оценить клиническую эффективность терапии Ронколейкином при неонатальных инфекциях у детей различного ГВ.

Научная новизна

Было впервые установлено, что развитие абсолютной лимфопении может отмечаться у новорожденных детей любого гестационного и постнатального возраста, чаще регистрируется при инфекционной патологии (неонатальный сепсис) и на первой неделе жизни детей, но не взаимосвязано с результатами посева крови на стерильность и с природой высеваемого возбудителя. Было доказано, что при раннем неонатальном сепсисе у недоношенных детей абсолютная лимфопения развивается значимо чаще, чем нейтропения. Развитие стойкой лимфопении у детей в отделениях реанимации и интенсивной терапии новорожденных является неблагоприятным прогностическим признаком и свидетельствует о высоком риске летального исхода. Проведена разработка направленной иммунокоррекции при неонатальных инфекциях, сопровождающихся лимфопенией, что позволило снизить показатель летальности новорожденных детей с 20% до 8,2% (в 2,4 раза) и повысить эффективность лечения в стационаре.

Научно-практическое значение

В результате исследования было показано, что при интерпретации результатов общего анализа крови у новорожденных детей с осложненным течением неонатального периода наряду с

оценкой процентного содержания лимфоцитов в лейкоцитарной формуле крови необходимо производить расчет абсолютного количества лимфоцитов.

При выявлении абсолютной лимфопении (менее 2х109/л) у детей, страдающих тяжелыми неонатальными инфекциями, показано включение в комплексную терапию Ронколейкина, что является патогенетически обоснованным, безопасным и эффективным. О высокой клинической эффективности Ронколейкина свидетельствуют нормализация клинического состояния детей, показателей гемограммы и иммунного статуса, уменьшение интенсивности системного воспалительного ответа, сокращение длительности санации локализованных очагов инфекции и крови, и снижение летальности у детей с осложненным течением неонаталыюго периода.

Внедрение результатов работы

Выработанные в результате исследования практические рекомендации внедрены в практику отделений реанимации и интенсивной терапии новорожденных Городской Больницы №8 г. Москвы, неонаталыюго центра, отделения общей реанимации, отделения патологии новорожденных, отделения хирургии новорожденных ДГКБ №13 им. Н.Ф.Филатова г. Москвы. Результаты данной научной работы используются в учебном процессе, проводимом для врачей-педиатров, неонатологов из различных регионов России на кафедре неонатологии ФУВ РГМУ.

Апробация работы

Основные положения диссертации доложены и обсуждены на Ежегодном конгрессе Российской ассоциации специалистов перинатальной медицины «Новые технологии в перинатологии» (Москва, 21 ноября 2006 г.), на VIII Конгрессе РААКИ «Современные проблемы аллергологии, иммунологии и иммуннофармакологии», (Москва, 27 июня 2007 г.), на XII Конгрессе педиатров России «Актуальные вопросы педиатрии» (Москва, 21 февраля 2008 г.), на Национальной конференции «Аллергология и клиническая иммунология - междисциплинарные проблемы» (Москва, 26 февраля 2008г.), на круглом столе «Септические состояния в педиатрической практике. Возможности иммунотропных вмешательств» (Екатеринбург, 14 мая 2008 г.), на 1-ом Объединенном научно-практическом форуме детских врачей (Орел, 23 мая 2008 г.), на научно-практической конференции с международным участием «Роль вирусных и бактериальных инфекций в формировании перинатальной соматической патологии у детей» (Хабаровск, 11 июня 2008 г.), на 2-ом Объединенном иммунологическом Форуме (Санкт-Петербург, 4 июля 2008 г.), на V Дальневосточном конгрессе «Человек и лекарство» (Владивосток, 18 сентября 2008 г.), на региональном форуме «Здоровье матери и ребенка» (Пермь, 13 ноября 2008 г).

Работа апробирована 29 апреля 2008 года на объединенной научно-практической конференции сотрудников кафедры неонатологии ФУВ РГМУ, кафедры детских болезней №2 РГМУ, кафедры хирургических болезней детского возраста с курсами эндоскопической хирургии

и детской урологии-андрологии ФУВ РГМУ и сотрудников ДГКБ №13 им. Н.Ф.Филатова Департамента здравоохранения г. Москвы.

Публикации. По теме диссертации опубликовано 13 научных работ.

Структура и объем диссертации

Диссертация изложена на 140 страницах и состоит из 9 глав: введения, обзора литературы, 5 глав, в которых представлены результаты собственных наблюдений, обсуждения результатов, выводов, практических рекомендаций и библиографического указателя. Текст диссертации содержит 34 таблицы и 8 рисунков. Указатель литературы включает в себя 191 источник, из них 43 работы отечественных авторов и 148 работ зарубежных авторов.

СОДЕРЖАНИЕ РАБОТЫ

Работа выполнена на кафедре неонатологии ФУВ РГМУ (заведующий кафедрой -академик РАМН, д.м.н., профессор Володин Н.Н) за период с октября 2005 года по апрель 2008 года.

Наблюдение за новорождёнными детьми проводилось на базе неонатального центра (зав. отд. - к.м.н. Эверстова Т.Н.), отделения общей реанимации (зав. отд. - к.м.н. Беляева И.Д.), отделения хирургии новорожденных (зав. отд. - к.м.н. Голоденко Н.В.) и патологии новорожденных (зав. отд. - Кыштымов М.В.) Детской городской клинической больницы № 13 им. Н.Ф. Филатова (главный врач - д.м.н. Попов В.В.), а также на базе отделений реанимации и интенсивной терапии новорожденных детей № I (зав. отд. - к.м.н. Воронцова Ю.Н.) и № 2 (зав. отд. - к.м.н. Бабак O.A.) Городской Больницы № 8 Департамента здравоохранения г. Москвы (главный врач - Дуленков А.Б.).

Критерием абсолютной лимфопении у новорожденных детей является количество лимфоцитов в периферической крови менее Зх 109/л на первой неделе жизни и менее 2хю'/л после 7-ых суток жизни (Avery G.B., 1999; Behrman R.E., 2004).

Объем и методы исследования. С целью изучения распространенности абсолютной лимфопении при осложненном течении неонатального периода мы провели ретроспективный анализ 279 историй болезни всех подряд новорожденных и детей первых месяцев жизни, находившихся на лечении в ДГКБ №13 им. Н.Ф.Филатова за период с января 2003 по сентябрь 2005 года. Возраст детей в данной группе составил от 1 суток жизни до 224 суток жизни. Мальчиков - 158, девочек - 121. Доношенных детей было 134, со сроком гестации от 32 до 37 недель - 96 детей, 49 детей имели срок гестации менее 31 недели.

Далее нами проводилось собственное проспективное клиническое наблюдение и лабораторное обследование 138 новорожденных детей различного ГВ с осложненным течением неонатального периода, получавших лечение в ДГКБ №13 им. Н.Ф.Филатова за период с октября 2005 по февраль 2008 года. Из них мальчиков было 80, девочек- 58, двоен было 11. Доношенных

4

детей было 48 из 138 (34,8%), детей 32-37 недель гестации - 56 из 138 (40,6%) детей со сроком гестации менее 31 недели - 34 ребенка из 138 (24,6%). Средняя масса по группе (М±ш (тт-тах)) составила 2429 ± 900 граммов (от 750 г до 4330 г), длина тела - 46 ± 6 см (от 31 см до 56 см). Оценка по Апгар на 1 минуте жизни составила 6 ± 1,7 (1 - 8) баллов, оценка по Лпгар на 5 минуте жизни - 7±1,3 (3 - 9) баллов.

Кроме того, были обследованы 79 детей с ранним неонатальным сепсисом, находившихся на лечении в отделениях реанимации №1 и №2 ГБ №8 г. Москвы. В этой группе было 6 доношенных и 73 недоношенных новорожденных. Вес детей при рождении составил от 750 г до 4420 г, длина от 32 до 55 см. По гестационному возрасту дети распределились следующим образом: 25-31 неделя - 46 детей, 32-37 недель - 27 детей, 38-41 неделя - 6 детей. Оценка по шкале Апгар на 1 минуте жизни составляла 5 баллов (от 1 до 8) и на 5 минуте жизни - 6 баллов (от 3 до 8). Мальчиков было 45, девочек - 34. Двоен было 4.

Согласно предложенному рабочей группой Российской ассоциации специалистов перинатальной медицины (РАСПМ) Протоколу диагностики неонатального сепсиса, надёжным критерием сепсиса является сочетание наличия очага бактериальной инфекции (одного или более), полиорганной недостаточности и признаков системного воспалительного ответа (Антонов А.Г. и соавт., 2005). Бактериемия не является обязательным критерием сепсиса, поскольку выявление возбудителей в крови больных новорожденных детей зависит от фоновой антибактериальной терапии, степени микробной обсемененности крови, объема крови, который технически удалось получить для посева (особенно в случаях малой концентрации микроорганизмов в крови). На основании этих критериев и устанавливался диагноз «неонатальный сепсис» у новорожденных детей в рамках данной работы.

В то же время нами разрабатывались способы иммунокоррекции лимфопении у 145 новорожденных детей, страдающих неонатальным сепсисом и тяжелыми локализованными инфекциями бактериальной и смешанной этиологии. Для этого мы изучали клиническую эффективность препарата рекомбинантного человеческого интерлейкина-2 (Ронколейкин%, ООО «Биотех», г. Санкт-Петербург). Все 145 детей были разделены на 2 группы по факту получения Ронколейкина. В основную группу включено 85 детей с осложненным течением неонатального периода, развивших абсолютную лимфопению, и получавшие помимо базисной терапии иммуномодулирующую терапию Ронколейкином. Группу сравнения составили 60 новорожденных детей с осложненным течением неонатального периода, сопровождавшимся абсолютной лимфопенией, получавшие только базисную комплексную терапию без дополнительной иммунокоррекции.

Нами был проведен тщательный сбор акушерско-гинекологического и соматического аннамнеза матерей наблюдаемых детей. Осуществлялось динамическое общеклиническое наблюдение за новорожденными детьми, базисное лабораторное обследование, в том числе общий

5

анализ крови и мочи, биохимическое исследование крови, микроскопическое исследование спинномозговой жидкости, микробиологическое исследование посевов крови, ликвора, аспирата из трахеи, мочи. При постановке клинического диагноза учитывали также данные инструментальных методов исследования (рентгенография грудной клетки и брюшной полости, электрокардиография, ультразвуковое исследование органов брюшной полости и головного мозга).

Для решения поставленных задач осуществлялось комплексное лабораторное обследование детей. Забор крови проводился в динамике в трех точках: непосредственно в день обнаружения лимфопении при общем анализе крови (1 точка), через 5-7 суток (2 точка) и через 29 суток после регистрации абсолютной лимфопении (3 точка) для исследования показателей гемограммы, уровней С-реактивного белка методом иммунотурбидиметрии на биохимическом анализаторе Architech-8000 (Abbott, США) по стандартной методике, Сз и С4 - компонентов комплемента в сыворотке крови и иммунного статуса. Определяли абсолютное количество лимфоцитов CD3+, CD4+, CD8+, CD4/CD8, CD16+/CD56+, CD19+ методом проточной цитофлюорометрии на аппарате FACScan (Beckton Dickinson, США), уровни IgG, IgA, IgM в сыворотке крови на биохимическом анализаторе Architect-8000 в иммунологической лаборатории Детской Городской Клинической Больницы №9 им. Г.Н.Сперанского (руководитель - д.м.н., профессор А.П. Продеус; заведующая лабораторией - Е.В. Галеева, к.м.н. Н.В. Давыдова).

Для определения уровней про- и противовоспалительных цитокинов ИЛ-8, ИЛ-lß, ИЛ-1РА, ИНФ-у, ИЛ-2, ИЛ-4 в сыворотке крови использовался твёрдофазный иммуноферментный метод с применением в качестве индикаторного фермента пероксидазы хрена. Для определения концентраций ИЛ-8, ИЛ-lß, ИЛ-1РА, ИНФ-у использовали тест-системы производства ООО "Цитокин" (г. Санкт-Петербург, Россия). Для определения концентраций ИЛ-2 и ИЛ-4 использовали тест-системы производства «Biosource» (Бельгия). Порог чувствительности тест-системы для определения концентрации ИЛ-8 был равен 10 нг/л, для ИЛ-Iß - 5 пг/мл, для ИЛ-1РА - 300 пг/мл., для ИНФ-у - 15 пг/мл, ИЛ-2 -3 пг/мл, ИЛ-4 - 2,5пг/мл. Иммуноферментный анализ проводили в лаборатории иммунофармакологии ФГУП «НИИ особо чистых биопрепаратов» Федерального медико-биологического агентства России (руководитель - д.м.н., проф. A.C. Симбирцев; с.н.с. - к.б.н. А.Ю. Котов). В ходе работы было проведено 686 определений уровней ИЛ-8 в сыворотке крови, 182 определения уровней ИЛ-lß в сыворотке крови, 53 определения уровней ИЛ-1РА в сыворотке крови, 372 определения уровней ИНФ-у в сыворотке крови, 240 определений уровней ИЛ-2 в сыворотке крови, 240 определений уровней ИЛ-4 в сыворотке крови.

Статистическая обработка данных выполнялась с использованием ППП «Statistica 6.0»

(Stat. Soft, Inc., США). Количественные признаки, имевшие нормальное распределение,

описывались средними и среднеквадратическими отклонениями (M±s); не имевшие нормального

распределения, описывались медианами и квартилями (Me [LQ; UQ]). Качественные признаки

6

описывались абсолютными и относительными частотами их значений. Соответствие распределений количественных признаков нормальному закону исследовалось с помощью критерия Шапиро-Уилка. Для количественных признаков сравнение несвязанных групп проводилось с использованием непараметрического теста Манна-Уитни (1Мез1). Для сравнения частот значений признаков в группах применялся двухсторонний точный критерий Фишера (ТКФ). Корреляционный анализ с расчётом коэффициента корреляции (г) проводился с использованием критерия Спирмана. Различия считались статистически значимыми при достигнутом уровне значимости р<0,05.

РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ

При ретроспективном анализе историй болезни детей, находившихся на лечении в ДГКБ №13 им. Н.Ф.Филатова, случаи абсолютной лимфопении по общему анализу крови были зафиксированы у 168 из 279 детей (60,2%). При этом у 90 из 168 (53,6%) детей лимфопения отмечалась лишь один раз за время наблюдения, а у 78 из 168 (46,4%) детей отмечены повторные эпизоды абсолютной лимфопении. Результаты ретроспективного анализа позволили охарактеризовать частоту встречаемости абсолютной лимфопении при различных заболеваниях периода новорожденности, которая представлена на рис. 1.

Частота абсолютной лимфопении при основных патологических состояниях и периода.

100% 90% ЙО% 70% 60% 50% 40% 30% 20% 10% 0%

V

г4-

Щй

м V

у \

I

л, „ > ^

гХ I

■• ^ у ¡¿>

л

А < <>'

Поздний наонагагьный Локализованные сепсис (п«20) вахтариальны*

инфекции (п*108)

Внутриутробные Наифакционны*

вирусные инфекции осле жи а ни я

(п«11) иеонатального периода

(п*136}

□ с лимфопенией

□ без лимфопении

Рисунок 1. Частота абсолютной лимфопении при основных патологических состояниях неонаталыюго периода у детей, находившихся на стационарном лечении в ДКБ№13 имени Н.Ф.Филатова с 2003 по 2005 гг

В табл. 1 отражены результаты статистического сопоставления частот развития абсолютной лимфопении при основных заболеваниях неонатального периода.

Таблица 1. Частота абсолютной лимфопении при различных патологических состояниях периода новорожденное™ (по результатам ретроспективного анализа архивных историй болезни новорожденных детей за 2003 - 2005 гг)__

Частота абсолютной лимфопении р (ТФК)

При неонатальном сепсисе 17 из 20 (85%) При локализованных бактериальных инфекциях - 75 из 108 (69%) 0,27

При неонатальном сепсисе 17 из 20 (85%) При внутриутробных герпесвирусных инфекциях - 6 из 11 (55%) 0,095

При неонатальном сепсисе 17 из 20 (85%) При неинфекционной патологии 70 из 136 (52%) 0,004

При локализованных бактериальных инфекциях - 75 из 108 (69%) При неинфекционной патологии 70 из 136 (52%) 0,003

При инфекционной патологии 98 из 139 (71%) При неинфекционной патологии 70 из 136 (52%) <0,001

Таким образом, как при генерализованных, так и при локализованных бактериальных

инфекционных заболеваниях абсолютная лимфопения встречалась статистически значимо чаще, чем при неинфекционной патологии. При сепсисе абсолютная лимфопения развивалась чаще, чем при локализованных бактериальных инфекциях или врожденных герпесвирусных инфекциях, однако различия не достигали статистической значимости.

Нами был проведен ретроспективный анализ частоты абсолютной лимфопении у новорожденных детей с осложненным течением неонатального периода в зависимости от гестационного возраста (табл. 2).

Таблица 2. Частота абсолютной лимфопении при основных патологических состояниях неонатального периода у детей различного гестационного возраста __

Гестацнон- Неонатальный Локализованные Тяжелые Внутриутробные Без Всего

н ый сепсис формы поражения вирусные инфекции

возраст. бактериальной ЦНС инфекции

инфекции

38-41 9 23 9 3 42 86

недель (10,5%) (26,7%) (10,5%) (3,5%) (48,8%)

32-37 4 21 6 2 22 55

недель (7,3%) (38,2%) (10,9%) (3,6%) (40%)

31 и менее 4 9 7 1 6 27

недель (14,8%) (33,3%) (25,9%) (3,7%) (22,3%)

Всего 17 53 22 6 70 168

детей (10,1%) (31,6%) (13,1%) (3,6%) (41,6%)

Абсолютная лимфопения была зарегистрирована у больных новорожденных детей различного ГВ, включая не только доношенных, но и глубоконедоношенных с ЭНМТ при рождении. Статистически значимых различий (ТКФ) частот лимфопении при основных патологических состояниях у новорожденных детей различного ГВ выявлено не было, что подтвердилось и при обследовании детей, находившихся под нашим собственным наблюдением. При каждом патологическом состоянии у новорожденных детей частота лимфопении не была ассоциирована с гестационным возрастом (ТКФ).

В течение последнего десятилетия в медицинской литературе широко дискутируется вопрос о частоте и неблагоприятной прогностической значимости феномена абсолютной нейтропении при тяжелых неонатальных инфекциях. По данным литературы, за критерий абсолютной нейтропении в периоде новорожденное™ принимают количество нейтрофилов менее 1,5x10%; для недоношенных детей на первой неделе жизни ряд авторов считает применимым порог менее 1,75х10'/л. Многочисленные работы указывают на неблагоприятную прогностическую значимость возникновения абсолютной нейтропении при неонатальном сепсисе, поскольку при нейтропении увеличивается риск летального исхода. Мы провели сравнительный анализ частоты встречаемости нейтропении и лимфопении при раннем неонатальном сепсисе на однородной выборке из 79 детей, находившихся на лечении в отделениях реанимации Городской больнице №8. Ранний неонаталъный сепсис был документирован у всех 79 детей в возрасте 48-72 часов жизни на основании критериев РАСПМ.

В возрасте 48-72 часов жизни в группе из 6 доношенных детей с ранним неонатальным сепсисом ни абсолютной лимфопении, ни абсолютной нейтропении на 3-4 сутки жизни зарегистрировано не было. В группе из 27 детей со сроком гестации 32-37 недель в возрасте 48-72 часов жизни были выявлены 6 детей с абсолютной лимфопенией (22%) и 1 ребенок (4%) с абсолютной нейтропенией. Среди 46 глубоконедоношенных детей со сроком гестации менее 31 недели в возрасте 48-72 были выявлены 9 детей с абсолютной лимфопенией (20%) и 2 ребенка (4%) с абсолютной нейтропенией.

Таким образом, абсолютная лимфопения <2,0х105/л отмечалась у 15 детей с ранним неонатальным сепсисом из 79 (19% (от 12 до 29%)), а абсолютная нейтропения <1,8x109/л - у 3 детей из 79 (3,8% (от 0,8 до 11%)). Частота развития лимфопении и нейтропении не ассоциирована с ГВ, однако лимфопения развивается статистически значимо чаще, чем нейтропения, на 3-4 сутки жизни детей с ранним неонатальным сепсисом (р=0,002, ТКФ).

Таблица 3. Частота абсолютной лимфопении у новорожденных детей различного постнатального возраста при осложненном течении неонаталыюго периода (по результатам ретроспективного анализа архивных историй болезни новорожденных детей за 2003-2005 гг.)

Частота лимфопении р (ТКФ)

На 1-ой неделе жизни И1 из 229 (48,5%) На 2-ой неделе жизни 67 из 185 (36,2%) 0,013

На 1-ой неделе жизни 111 из 229 (48,5%) На 3-ей неделе жизни 31 из 149(20,8%) 0,003

На 2-ой неделе жизни 67 из 185 (36,2%) На 3-ей неделе жизни 31 из 149 (20,8%) <0,001

Чтобы изучить возможную взаимосвязь развития абсолютной лимфопении и постанатального возраста, мы ретроспективно проанализировали все общие анализы крови больных детей в динамике. Были получены статистически значимые различия частот лимфопении

между разными возрастными группами новорожденных детей (табл. 3). Лимфопенические состояния встречались в течение всего неонатального периода; однако на 1-ой неделе жизни абсолютная лимфопения регистрировалась чаще, чем на 2-ой и 3-ей неделях жизни.

Ретроспективный анализ показал, что в большинстве случаев абсолютная лимфопения в неонатальном периоде является однократной, не требует специфической коррекции и самопроизвольно купируется на фоне адекватной комплексной этиотролной и посиндромной терапии. Особую клиническую значимость представляют случаи стойкой и повторяющейся более двух раз лимфопении, которая, по нашим данным, регистрировалась в 12-19% всех случаев абсолютной лимфопении у новорожденных детей. Статистически значимых различий частот стойкой лимфопении на разных неделях периода новорожденности не было выявлено.

Нами был проведен ретроспективный анализ частоты лимфопении у больных новорожденных детей при различных исходах заболевания. Из 279 детей у 268 (96,1%) детей отмечался благоприятный исход болезни, и дети были выписаны домой в удовлетворительном состоянии. Развитие абсолютной лимфопении при благоприятном исходе заболевания регистрировалось в 157 из 268 случаев (58,6%).

Несмотря на проводимую комплексную терапию состояние 11 детей из 279 (3,9%) расценивалось как крайне тяжелое. У всех детей отмечалась тяжелая инфекционная патология (сепсис) как основное заболевание или тяжелые инфекционные осложнения послеоперационного периода (двухсторонняя пневмония, НЭК, генерализованный кандидоз) и был констатирован летальный исход. Среди 11 умерших детей 5 детей (46%) были доношенными, 2 ребенка (18%) -32-37 недель гестации, 4 ребенка (36%) были глубоконедоношенными (менее 31 недели гестации). Абсолютная лимфопения в данной группе детей развивалась в 100% [95% ДИ, 72%-100%] случаев, причем во всех случаях она регистрировалась два и более раз. Различия частот лимфопении в группах детей с выздоровлением и летальным исходом заболевания были статистически значимыми (р=0,004, ТКФ).

Было установлено, что за время наших собственных наблюдений однократные эпизоды лимфопении отмечались у 64 из 105 детей с лимфопеническими состояниями (61%), при этом 6 из них умерли (летальность в группе детей с однократным эпизодом лимфопении - 9,4%). В группе детей со стойкой лимфопенией, зарегистрированной в нескольких анализах крови в динамике, из 41 (39% от всех детей с абсолютной лимфопенией) умерло 12 детей. Таким образом, показатель летальности в группе новорожденных детей с повторяющейся (стойкой) лимфопенией составил 29,3% и был статистически значимо выше, чем у детей с однократным эпизодом лимфопении (9,4%); (р=0,02, ТКФ).

При формировании подгрупп детей в зависимости от минимального количества лимфоцитов, нами было выявлено, что в группе больных новорожденных, имевших хотя бы однократно в периферической крови количество лимфоцитов <3,0хЮ9/л, показатель летальности

10

составил 18,4%. В группе детей с количеством лимфоцитов <2,5 х 10% показатель летальности составил 20,2%. В группе детей с количеством лимфоцитов <2,0x10% показатель летальности составил 20,3%. В группах новорожденных детей с количеством лимфоцитов <1,5x10% и <1,0x10% показатель летальности достигал 23,3% и 25%, соответственно. Следовательно, малое абсолютное количество лимфоцитов ассоциировано с более высоким показателем летальности.

Повторяющаяся (стойкая) лимфопения была зарегистрирована у 14 из 18 умерших детей (77,8%) и у 32 из 120 выживших детей (26,7%); (р<0,001, ТКФ). Это может указывать на непосредственную взаимосвязь между развитием лимфопении как проявлением иммунной недостаточности и смертельным исходом, а также на особо неблагоприятную прогностическую значимость феномена стойкой абсолютной лимфопении.

Чтобы изучить возможную взаимосвязь абсолютной лимфопении с природой возбудителей инфекционных заболеваний в неонатальном периоде, нами было проанализировано 403 посева крови, сделанных наблюдаемым 138 детям за время пребывания их в стационаре. Из 403 посевов крови отрицательный результат дали 276 посевов (68,5%), положительных посевов крови было 127 (31,5%). Было установлено, что частота абсолютной лимфопении не различалась в группах больных с положительными (50/276; 18,1%) или отрицательными (25/127; 19,7%) результатами посевов крови на стерильность (р=0,78, ТКФ). Не удалось выявить взаимосвязь между частотой абсолютной лимфопении и различными видами возбудителей (Грамположительных или Грам-отрицательных бактерий, грибов рода Candida), высеваемых из крови новорожденных при положительных результатах гемокультуры (р=0,12, ТФК). Следовательно, частота абсолютной лимфопении не ассоциирована с результатом посева крови (с фактом бактериемии), а также не зависит от природы возбудителя.

В проспективном лонгитудинальном исследовании мы изучали особенности других показателей гемограммы у новорожденных детей с осложненным течением неонатального периода, развивших абсолютную лимфопению. Нами было отмечено, что абсолютная лимфопения встречается как при лейкопении, так и нормальном количестве лейкоцитов в периферической крови, а также при лейкоцитозе. Из 118 случаев регистрации абсолютной лимфопении только в 17 случаях (14,4%) она имела место на фоне лейкопении ниже 5x10%, при этом относительное количество лимфоцитов колебалось в пределах от 11% до 60%. В 74 случаях (62,7%) абсолютная лимфопения выявлялась при нормальном количестве лейкоцитов по общему анализу крови (от 5 до 10x10%), при этом доля лимфоцитов составляла от 8% до 37%. В 27 случаях (22,9%) абсолютная лимфопения документировалась на фоне лейкоцитоза выше 10x10%; доля лимфоцитов составляла от 4% до 18%. То есть только при лейкоцитозе одновременно регистрировались как абсолютная, так и относительная лимфопения (менее 20%). В то же время при нормальном количестве лейкоцитов или лейкопении возрастало количество проб крови, в которых абсолютная лимфопения была замаскирована нормальным процентным содержанием

И

лимфоцитов в лейкоцитарной формуле. Таким образом, в клинической практике не следует ориентироваться на процентное содержание лимфоцитов в лейкоцитарной формуле крови, а необходимо вычислять их абсолютное значение, исходя из общего количества лейкоцитов.

При разделении всех проб крови новорожденных детей на 2 группы в зависимости от наличия или отсутствия абсолютной лимфопении нами было установлено, что в пробах крови с абсолютной лимфопенией были выше процент нейтрофилов, палочкоядерных и юных форм гранулоцитов, сегментоядерных нейтрофилов; то есть абсолютной лимфопении сопутствовало перераспределение лейкоцитарной формулы по воспалитель-ному типу. В то же время абсолютное число лейкоцитов, нейтрофилов, сегментоядерных гранулоцитов и моноцитов было статистически значимо меньше в пробах крови, характеризующихся абсолютной лимфопенией, по сравнению с пробами крови с нормаль-ным количеством лимфоцитов. Это свидетельствует о возможной взаимосвязи развития абсолютной лимфопении со снижением интенсивности лейкопоэза, в целом (табл. 4).

Таблица 4. Лабораторные показатели у новорожденных детей с осложненным течением неонатального периода при абсолютной лимфопении и без лимфопении _

Параметр Количество лимфоцитов менее 2x10'/л Количество лимфоцитов более 2хЮ'/л Р (и^о

Ме [Ь<2; 1101 п Ме [ЬС>; и<3] п

ИЛ-1РА (нг/мл) 660 [267; 1487] 14 1453 [1027; 7493] 18 0,03

Лейкоциты (х10ч/л) 7,2 [5,7; 9,3] 151 11,2 [8,9; 16,3] 324 <0,001

Нейтрофилы (%) 67 [59; 75] 151 55 [46; 65] 324 <0,001

Нейтрофилы (хЮ'/л) 4,62 [3,3; 6,6] 151 6,37 [4,02; 10,1] 324 <0,001

Палочкоядерные нейтрофилы (%) 4 [2; 91 151 3 П; 61 324 0,002

Все юные нейтрофилы (%) 4 [2; 10] 151 з [1;б] 324 0,003

Сегментоядерные нейтрофилы (%) 60 Г52; 691 151 50 [41; 58,51 324 <0,001

Сегментоядерные нейтрофилы (х10'/л) 4,2 [2,8; 6,11 151 5,8 [3,7; 8,81 324 <0,001

Лимфоциты (%) 20 [14; 26] 151 32 [24; 40] 324 <0,001

Лимфоциты (х10'/л) 1,5 [1,1; 1,8] 151 3,5 [2,8; 4,6] 324 <0,001

Моноциты (х10"/л) 0,86 [0,52; 1,2] 151 1,2 [0,83; 1,8] 324 <0,001

Для выявления возможных механизмов развития лимфопении мы провели корреляционный анализ относительного и абсолютного количества лимфоцитов с другими показателями общего анализа крови и с уровнями цитокинов (ИЛ-2, ИЛ-4, ИЛ-8, ИЛ-1РА, ИФН-у, ИЛ-1(5) в сыворотке крови. Статистически значимые корреляционные связи относительного количества лимфоцитов с показателями гемограммы представлены в табл. 5. Из табл. 5 следует, что наиболее сильные

обратные корреляционные связи имеются между относительным количеством лимфоцитов и такими показателями гемограммы, как абсолютное и относительное количество нейтрофилов, как юных, так и зрелых их форм. Чем выше абсолютное и относительное количество юных и зрелых форм нейтрофилов, тем меньше процент лимфоцитов в гемограмме.

Таблица 5. Корреляция относительного количества лимфоцитов с показателями гемограммы у детей с осложненным течением неонатального периода

Показатели крови. п Коэффициент корреляции Спирмана Р

Нейтрофнлы (%) 475 -0,91 <0,001

Нейтрофилы (хЮ'/л) 475 -0,57 <0,001

Все юные формы нейтрофилов (%) 475 -0,31 <0,001

Все юные формы | ^ нейтрофилов (х109/л) | -0,37 <0,001

Сегментоядерные нейтрофнлы (%) 475 -0,79 <0,001

Сегментоядерные ^^ нейтрофнлы (х109/л) -0,54 <0,001

Данные закономерности свидетельствуют о том, что относительная лимфопения взаимосвязана с развитием воспалительных изменений в общем анализе крови, а именно, с нейтрофилезом и сдвигом лейкоцитарной формулы влево до юных форм гранулоцитов.

Кроме того, нами было установлено наличие обратных корреляционных связей средней силы между абсолютным количеством лимфоцитов и относительным количеством нейтрофилов, в том числе и сегментоядерных гранулоцитов; то есть системный воспалительный ответ играет важную роль в возникновении абсолютной лимфопении (табл. 6).

Таблица 6. Корреляция абсолютного количества лимфоцитов с показателями гемограммы у детей с осложненным течением неонатального периода

Показатели крови. п Коэффициент корреляции Спирмана Р

Лейкоциты (хЮ'/л) 475 0,61 <0,001

Нейтрофилы (%) 475 -0,47 <0,001

Сегментоядерные нейтрофилы (%) 475 -0,44 <0,001

Моноциты (хЮ'/л) 475 0,45 <0,001

Для изучения влияния основных медиаторов иммунной системы на лабораторные симптомы воспаления мы проанализировали корреляционные связи сывороточных уровней цитокинов между собой, а также с показателями гемограммы и биохимическими маркерами. Статистически значимые различия представлены в табл. 7.

Из табл. 7 следует, что уровень ИЛ-8 в сыворотке крови имеет статистически значимые

прямые корреляционные связи средней силы с воспалительными изменениями в гемограмме, а

именно с относительным и абсолютным количеством юных форм гранулоцитов и лейкоцитарным

индексом 1/Т, что объясняется биологической ролью ИЛ-8 как важнейшего хемокина,

вызывающего выброс юных форм нейтрофилов из костного мозга, а также направленное

перемещение гранулоцитов к очагу инфекции в случае возникновения воспаления. Уровень ИЛ-8

в сыворотке крови имеет сильную прямую корреляционную связь с уровнем СРБ в сыворотке

крови и может являться информативным маркером системного воспалительного ответа.

Таблица 7. Корреляция уровня ИЛ-8 в сыворотке крови с показателями гемограммы, уровнем СРБ и уровнями цитокинов у детей с осложненным течением неонаталыгого периода

Показатели крови. п Коэффициент корреляции Спирмана Р

Все юные формы нейтрофилов (%) 445 0,3 <0,001

Все юные формы нейтрофилов (х109/л) 445 0,3 <0,001

1/Т 445 0,3 <0,001

СРБ (мг/л) 51 0,51 <0,001

ИЛ-1РА (нг/мл) 52 0,46 <0,001

Повышение концентрации ИЛ-1РА, однонаправленное с увеличением уровня ИЛ-8, можно объяснить компенсаторным действием ИЛ-1РА как противовоспалительного медиатора иммунной системы, призванного нейтрализовать повреждающее действие избыточных количеств ИЛ-1 и тем самым ограничивать воспаление.

На выборке из 40 детей, находившихся на лечении в отделениях реанимации Городской больницы №8 с диагнозом «Ранний неонатальный сепсис», мы проанализировали различия лабораторных показателей и результатов исследования иммунного статуса в зависимости от наличия у детей данной группы абсолютной лимфопении (менее Зх109/л) в возрасте 48-72 часов жизни (табл. 8).

Из табл. 8 следует, что в группе детей с абсолютной лимфопенией одновременно отмечается статистически значимое снижение не только общего количества лейкоцитов, абсолютного количества нейтрофилов, сегментоядерных нейтрофилов и моноцитов, но так же абсолютного значения всех основных субпопуляций лимфоцитов (СОЗ+, С04+, С08+, СЭ16+С05б+).

Таблица 8. Различия лабораторных показателей у детей с ранним нсонатальным сепсисом при абсолютной лимфопенин и без таковой___

Параметр Количество лимфоцитов менее ЗхЮ'/л(п=18) Количество лимфоцитов более ЗхЮ'/л(п=22) Р (U-test)

Ме |LQ; UQ| Ме [ЬО; и<3[

Лейкоциты (х Ю'/л) 8,6 [6,3; 13,5] 24 [16,9; 32,4[ <0,001

Палочкоядсрныс нентрофилы (х109/л) 0,36 [0,19; 0,79) 1,37 [0,75; 2,26] <0,001

Сегментоядерные нентрофилы (х 109/л) 5,1 |3; 8,8 ] 12,2 [7,1; 21] 0,001

Нентрофилы (х10ч/л) 5,7 [3,6; 9,4) 13,4 [8,4; 23,7] <0,001

Моноциты (х 109/л) 0,97 [0,61; 1,25[ 2,2 [0,9; 3,4] 0,002

СОЗ* (хЮ'/л) 0,81 [0,59; 1,2J 1,3 [1,1; 2,6] 0,004

СЮ4+ (х10"/л) 0,67 [0,44; 0,81) 0,99 [0,68; 1,66] 0,013

СИ8+ (хЮ'/л) 0,22 [0,18; 0,31] 0,4 [0,3; 0,6] 0,007

С016+С056+ (х109/л) 0,08 [0,05; 0,18) 0,2 [0,15; 0,25] 0,002

Выявленные закономерности изменения количества лимфоцитов основных субпопуляций при развитии абсолютной лимфопении подтвердились при дальнейшем проведении корреляционного анализа. Было выявлено, что при абсолютной лимфопении одновременно страдает количество всех наиболее важных с функциональной точки зрения субпопуляций лимфоцитов. Была выявлена прямая корреляционная связь средней силы между абсолютным количеством лимфоцитов и числом антителобразующих В-лимфоцитов (С019+) (г=0,35; р=0,028). При абсолютной лимфопении происходит снижение числа зрелых Т-лимфоцитов (СЭЗ+) (г=0,5; р=0,02), количества цитотоксических лимфоцитов (СБ8+) (г=0,52; р<0,001), и естественных киллерных клеток (С016+СВ56+) (г=0,46; р=0,03), которые могут эффективно бороться с вирусами и возбудителями, размножающимися внутриклеточно. Абсолютная лимфопения сопровождается уменьшением числа Т-хелперов (С04+) (г=0,42; р=0,008), производящих медиаторы иммунной системы, в частности, важнейший фактор роста лимфоцитов ИЛ-2.

Следовательно, абсолютная лимфопения сопровождается изменениями иммунного статуса, является проявлением недостаточности клеточных механизмов врожденного и адаптивного иммунного ответа новорожденных детей, что подчеркивает необходимость разработки патогенетически обоснованных способов иммунокоррекции.

С целью изучения клинической эффективности препарата рекомбинантного интерлейкина-2 человека (Ронколейкин®) при тяжелых инфекционных заболеваниях в неонатальном периоде под нашим наблюдением находилось 145 детей, которые были разделены на 2 группы по факту получения Ронколейкина.

Ронколейкин, являясь полным структурным и функциональным аналогом эндогенного ИЛ-2, обладает тем же спектром функциональной активности. Препарат получают методами генной инженерии из клеток-продуцентов рекомбинантного штамма непатогенных пекарских дрожжей вида ЗассЬаготусез сегеу151ае, в генетический аппарат которого встроен ген человеческого ИЛ-2. Активная субстанция Ронколейкина - рекомбинантный дрожжевой ИЛ-2 человека - является полипептидом, состоящим из 133 аминокислот с молекулярной массой около 15,4 кДа. Он способен восполнять дефицит ИЛ-2 и воспроизводит его эффекты как одного из ключевых компонентов цитокиновой сети. Препарат прошел все необходимые стадии доклинических и клинических испытаний, был зарегистрирован и разрешён для медицинского применения и промышленного выпуска Приказом Министерства здравоохранения и медицинской промышленности РФ № 249 от 31 августа 1995 года. С 6 февраля 2008 года препарат разрешен к применению в педиатрической практике, в том числе и в неонатологии.

Согласно разработанному протоколу, клиническим показанием к применению Ронколейкина являлся неонатапьный сепсис и тяжелые неонатальные инфекции бактериальной и смешанной этиологии. Лабораторным показанием к включению Ронколейкина в комплексную терапию являлось наличие у ребёнка с сепсисом или другими тяжелыми неонатальными инфекциями абсолютной лимфопении менее 2x10%.

Ронколейкин вводили внутривенно капельно с использованием инфузомата в течение 2-3 часов со скоростью не более 6 мл/час 1 раз в сутки двукратно с интервалом 48-72 часа. Доза Ронколейкина для внутривенного введения вычислялась из расчета 50000-100000 МЕ/кг массы тела в сутки. Ронколейкин разводили изотоническим раствором натрия хлорида 0,9%-ным из расчета 5-10 мл/кг в сутки в зависимости от особенностей водно-электролитного обмена ребенка.

В основную группу вошли 85 детей с осложненным течением неонатального периода, развивших абсолютную лимфопению по общему анализу крови, и получавшие помимо базисной терапии иммуномодулирующую терапию Ронколейкином. Группу сравнения составили 60 новорожденных детей с осложненным течением неонатального периода, сопровождавшимся абсолютной лимфопенией, получавшие только базисную комплексную терапию без дополнительной иммунокоррекции.

На момент включения детей в исследование статистически значимых различий по массе и длине тела, ГВ, оценке по шкале Апгар на 1 и 5 минуте жизни (табл. 9), а также по основным клиническим параметрам (количеству очагов инфекции, количеству детей находившихся на полном парентеральном питании и на вспомогательной вентиляционной терапии и т.д.) между основной группой и группой сравнения не выявлялось (ТКФ). При анализе комплексной терапии у детей двух групп было установлено, что в обеих группах не различалась базисная этиотропная и посиндромная терапия, а также другие виды иммунотерапии, разрешенные к применению в

неонатологии (иммуноглобулины для внутривенного введения, в том числе Пентаглобин, и/или Виферон).

Таблица 9. Характеристика групп детей с осложненным течением неонаталыюго периода и

С Ронколейкином Без Ронколейкина р

(п = 85) (п = 60) (ТКФ)

Ме ]Ь<2; и<51 Ме [Ь<3; и<31

(пнп-тах) (ппп-тах)

Гестационнын возраст 33 [30; 39 | 33 [30; 37] 0,94

(недели) (25-41) (26-40)

Масса тела (граммы) 1940 |1360; 2830) 2000 [1370; 2745] 0,93

(750-4200) (745-4100)

Длина тела (см) 44 [38; 50] 43 [38,5; 48] 0,74

(31-56) (31-55)

Оценка по Апгар на 1 6 [4; 7] 6 [5; 7] 0,93

минуте жизни (баллы) (1-8) (1-8)

Оценка по Апгар на 5 7 [6; 8] 7 [6; 7] 0,13

минуте жизни (баллы). (3-9) (3-9)

В основной группе было 23 доношенных и 62 недоношенных новорожденных ребенка. Мальчиков было 51 , девочек - 34. Двоен было 4. Данные о массе и длине тела, оценке по шкале Апгар на 1-ой и 5-й минутах жизни детей представлены в табл. 9.

Неонатапьный сепсис был основным диагнозом у 35 детей (41,2%), генерализованные вирусные инфекции - у 8 детей (9,4%), локализованные бактериальные инфекции были документированы у 42 новорожденных (49,4%). По клинико-лабораторным признакам пневмония была диагностирована у 64 новорожденных детей (75,3%), НЭК - у 36 детей (42,4%), менингоэнцефалит был документирован у 4 детей (4,7%), инфекция мочевыводящих путей отмечалась у 7 детей (8,2%), гнойный конъюнктивит - у 4 детей (4,7%), омфалит и флебит пупочной вены - у 8 детей (9,4%). Кандидоз кожи и слизистых оболочек был выявлен у 13 детей (15,3%). 25 детей (29,4%) из 85 имели абсолютные показания к хирургическому вмешательству и были прооперированы.

Несмотря на проводимую комплексную терапию, состояние детей оставалась тяжелым, и у всех них была отмечена абсолютная лимфопения по общему анализу крови. При этом у 32 детей (37,6%) она отмечалась в одном анализе, а у 53 детей (62,4%) была документирована в нескольких анализах крови в динамике. Всем детям данной группы был назначен Ронколейкин по вышеизложенной схеме. Средний возраст детей данной группы на момент получения первой дозы Ронколейкина составил 21 ± 2 суток жизни.

Группу сравнения составили 14 доношенных и 46 недоношенных детей. Мальчиков было 37, девочек - 23. Данные о массе и длине тела, оценке по шкале Апгар на 1-ой и 5-й минутах жизни детей представлены в табл. 9.

Основным клиническим диагнозом у 25 детей из 60 (41,7%) был неонатальный сепсис, у 8 детей (13,3%) - генерализованные вирусно-бактериальные инфекции, у 27 новорожденных детей (45%) - локализованные бактериальные инфекции. Пневмония была диагностирована у 51 новорожденного ребенка (85%), НЭК - у 27 детей (45%), менингоэнцефалит - у 1 ребенка (1,7%), инфекция мочевыводящих путей - у 5 детей (8,33%), гнойный конъюнктивит - у 6 детей (10%), омфалит и/или флебит пупочной вены - у 6 новорожденных (10%). Кандидоз кожи и слизистых оболочек был документирован у 7 детей данной группы (11,7%). 10 детей из 60 (16,7%), находившихся под нашим наблюдением перенесли оперативные вмешательства.

На фоне проводимой комплексной этиотропной и патогенетической терапии в состоянии детей не было отмечено положительной динамики, и у всех из них была зарегистрирована абсолютная лимфопения по общему анализу крови. Дети включались в группу сравнения сразу же после выявления абсолютной лимфопении. Средний возраст детей 2-ой группы на момент обнаружения абсолютной лимфопении составил 8 ± 1 суток жизни. По нашим данным, основная группа и группа сравнения были сопоставимы по количеству детей, имевших однократную или стойкую абсолютную лимфопению.

В соответствии с международными критериями оценки выживаемости при исследовании эффективности препаратов в клинической практике учитывали летальность в течение 28 суток, следующих за введением Ронколейкина. Показатель летальности в основной группе составил 8% (7/85), а в группе сравнения - 20% (12/60) (р=0,047, ТКФ). Среди детей, не имевших показаний к хирургическому лечению, умерли 1 ребенок из 60 получавших Ронколейкин, и 7 из 50 детей группы сравнения (1,7% против 14%, соответственно; р=0,02, ТКФ; отношение шансов (Odds Ratio) = 9,6 (1,1 - 218,9); относительный риск (Relative Risk) = 8,4 (1,1 - 184,3).

Было установлено, что все 19 умерших детей (7 умерших детей основной группы и 12 умерших детей группы сравнения) имели стойкую абсолютную лимфопению. Среди детей обеих групп, имевших однократный эпизод абсолютной лимфопении, летальных исходов не отмечалось.

Сразу после завершения курса Ронколейкина (во второй точке) в клиническом состоянии детей основной и контрольной групп были зарегистрированы статистически значимые различия (табл. 10). Из табл. 10 следует, что в основной группе после окончания курса Ронколейкина количество детей, имевших пневмонию, нуждавшихся в проведении ИВЛ и полного парентерального питания, было меньше по сравнению с группой сравнения. Это может свидетельствовать о клинической эффективности адъювантной иммунотерапии Ронколейкином при тяжелых инфекционных заболеваниях у детей, развивших абсолютную лимфопению.

Таблица 10. Сравнение клинических показателей у детей, получивших и не получивших

Ронколейкин, во второй точке исследования

Показатель клинического состояния Дети, получавшие Ронколейкин (п = 83) Дети без иммунокоррекции (п = 59) р (ТКФ)

п % п %

Пневмония 31 37,3 47 79,7 <0,001

ИВЛ 29 34,9 38 64,4 <0,001

Полное парентеральное питание 12 14,4 18 30,5 0,03

Полное энтералыюе питание 12 14,4 2 3,4 0,04

Важно отметить, что до 29-ых суток от момента включения в исследование состояние 41 ребенка (49,4%) из 85 детей, получивших Роиколейкин, стало удовлетворительным, были купированы очаги инфекции, нормализовались лабораторные показатели, и эти дети были выписаны из стационара под наблюдение участкового педиатра. В контрольной группе детей, не получивших терапию Ронколейкином, до 3-ей точки удовлетворительным стало состояние только у 10 детей из 60 (16,7%), у них было констатировано выздоровление, и они были выписаны домой. Различия количества детей основной и контрольной группы, выписанных домой до 29-ых суток от момента включения в исследование, были статистически значимыми (р=0,024, ТКФ). К 29-м сутками от момента включения в исследование в стационаре остались только дети, страдающие тяжелой патологией, требующей длительного лечения. Тем не менее в группе детей, получивших терапию Ронколейкином, по сравнению с детьми контрольной группы отмечаются различия по количеству пневмоний (р=0,009, ТКФ).

Таблица 11. Динамика выявления очагов бактериальной инфекции у детей различного гестационного возраста с осложненным течением неонаталыюго периода в группах детей,

Параметр С Ронколейкином Без Ронколейкина Р (1МеЛ)

п Ме [Ь<2; и<3] п Ме [Ь<2; и<2]

Количество очагов инфекции в первой точке 85 1 [1; 2] (тт.- 1; тах- 5) 60 1[1;2] (тт.- 1; тах- 3) 0,085

Количество очагов инфекции во второй точке 83 1 [0; 1] (тт.- 0; тах- 3) 59 1 [1;2] (тт.- 0; тах- 3) <0,001

Количество очагов инфекции в третьей точке 37 0 [0; 1] (тт.- 0; тах- 2) 42 0 [0; 2] (тт.- 0; тах- 2) 0,04

Из табл. 11 очевидно, что в течение месяца от включения в исследование локализованные очаги инфекции были купированы эффективнее в группе детей, получивших Ронколейкин, по сравнению с контрольной группой.

Длительность ИВЛ и количество койко-дней в стационаре не различались у детей основной и контрольной групп, поскольку на эти показатели влияют ГВ, масса тела при рождении, наличие бронхолегочной дисплазии, проведение хирургических операций.

Таблица 12. Количество детей, имевших положительный посев крови, в группах

Количество Р

положительных посевов С Ронколейкином Без Ронколейкина (ТКФ)

крови

В первой точке 33/73 14/56

(45,2%) (25%) 0,026

Во второй точке 10/60 19/49

(16,7%) (38,8%) 0,016

В третьей точке 2/21 4/20

(9,5%) (20%) 0,4

Из табл. 12 видно, что санация крови быстрее возникала у детей, получивших Ронколейкин, по сравнению с детьми, получавшими только базисную терапию. Более того, в группе сравнения через неделю от включения в исследование отмечалось увеличение количества детей с документированной бактериемией по сравнению с количеством детей контрольной группы, имевших позитивную гемокультуру в первой точке.

При анализе показателей гемограммы во второй точке от момента включения в исследование было выявлено, что у детей, получавших Ронколейкин, количество лимфоцитов становилось более высоким по сравнению с детьми, получавшими базисную терапию. В то же время у детей основной группы отмечалось уменьшение нейтрофилеза и доли сегментоядерных гранулоцитов по сравнению с контрольной группой, что свидетельствует об уменьшении интенсивности воспаления (табл. 13).

Таблица 13. Показатели гемограммы у детей с гнойно-септической патологией, получавших

Параметр С Ронколейкином п=83 Без Ронколейкина п=59 Р (ШевО

Ме [ЬО; 1К2] Ме [ЬО; и<2|

Нейтрофилы (%) 50 [41; 671 59 (50; 70] 0,004

Сегментоядерные гранулоциты (%) 46 [39; 59] 55 [45; 64] 0,007

Лимфоциты (%) 37 [25; 44] 25 [16; 32] <0,001

Лимфоциты (х109/л) 3,69 [2,62; 5,49] 3,12 [1,77; 4,6] 0,011

Об уменьшении интенсивности системного воспалительного ответа после лечения

Ронколейкином говорят и различия уровней провоспалительного цитокина ИЛ-8 у детей основной

и контрольной групп сразу после окончания курса Ронколейкина. При этом уровень ИЛ-8

оставался статистически значимо более высоким детей в группе сравнения (114 [42; 300] пг/мл),

чем у детей основной группы (34,8 [18,9; 94,8] пг/мл) (р=0,002, и^О, что может свидетельствовать о поддержании у первых системной воспалительной реакции на фоне сохраняющихся очагов локализованной инфекции и бактериемии.

Таблица 14. Показатели иммунограммы у детей с гнойно-септической патологией,

Параметр С Ронколейкином п=18 Без Ронколейкина п=29 Р (U-test)

Me [LQ; UQ] Me [LQ; UQ)

CD3 % 63 [61; 70] 54 [46; 61] 0,006

CD8 % 22 [16; 28] 15 [10; 18] 0,002

CD16+CD56+% 12 [5; 17] 4 [3; 6] <0,001

CD16+CD56+ (х10'/л) 0,31 [0,18; 0,81] 0,16 [0,08; 0,32] <0,001

При анализе показателей иммунограммы во второй точке исследования было установлено, что после лечения Ронколейкином статистически значимо были выше относительные количества зрелых Т-лимфоцитов (CD3+), цитотоксических Т-лимфоцитов (CD8+), относительные и абсолютные количества естественных киллерных клеток (CD16+ CD56+) у детей основной группы по сравнению с таковыми в контрольной группе (табл. 14). Все эти субпопуляции лимфоцитов играют важную роль в развитии врожденных и адаптивных механизмов иммунного ответа и элиминации возбудителей инфекций.

Ни в одном случае не было зарегистрировано побочных эффектов от введения Ронколейкина ни в виде гемодинамических нарушений, ни в виде аллергических или пирогенных реакций.

На основании полученных результатов мы сделали следующие выводы.

ВЫВОДЫ:

1. Абсолютная лимфопения, выявленная у пациентов в неонатальном периоде, свидетельствует о тяжести инфекционного заболевания независимо от гестационного и постнатального возраста детей, результатов посева крови и природы выявленного возбудителя.

2. При раннем неонатальном сепсисе абсолютная лимфопения развивается статистически значимо чаще, чем абсолютная нейтропения (19% против 3,8% соответственно; р=0,002, ТКФ).

3. Показатель летальности в группе больных новорожденных с повторяющимися эпизодами лимфопении был статистически значимо выше, чем у детей с однократным эпизодом лимфопении (29,3% против 9,4%, соответственно; р=0,02, ТКФ), что может указывать на непосредственную взаимосвязь между развитием лимфопении как проявлением иммунной

недостаточности и смертельным исходом, а также на неблагоприятную прогностическую значимость феномена стойкой абсолютной лимфопении.

В возникновении лимфопенических состояний важную патогенетическую роль играет системный воспалительный ответ, обусловленный усилением синтеза провоспалительных цитокинов и сопровождающийся преобладанием в лейкоцитарной формуле нейтрофилов со сдвигом до юных форм.

Неблагоприятная прогностическая значимость абсолютной лимфопении объясняется количественным дефицитом всех важнейших функциональных субпопуляций лимфоцитов: зрелых Т-лимфоцитов (CD3+), цитотоксических лимфоцитов (CD8+), естественных киллерных клеток (CD16+CD56+), Т-лимфоцитов-хелперов (CD4+), производящих интерлейкин-2 как фактор роста лимфоцитов. Это приводит к недостаточности клеточных механизмов врожденного и адаптивного иммунного ответа у новорожденных детей и подчеркивает необходимость применения при регистрации абсолютной лимфопении патогенетически обоснованных способов иммунокоррекции.

Включение Ронколейкина в комплексную терапию тяжелых неонатальных инфекций, осложнившихся развитием абсолютной лимфопении, является патогенетически обоснованным, безопасным и эффективным. О высокой клинической эффективности Ронколейкина свидетельствуют снижение показателя летальности, сокращение длительности санации локализованных очагов инфекции и крови, нормализация показателей гемограммы и иммунного статуса, уменьшение интенсивности системного воспалительного ответа у детей, получавших иммунотерапию Ронколейкином, по сравнению с детьми группы сравнения.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ. При интерпретации результатов общего анализа крови у новорожденных детей с осложненным течением неонатального периода необходимо производить расчет абсолютного количества лимфоцитов.

Повторяющаяся в динамике абсолютная лимфопения является прогностическим фактором риска летального исхода, особенно у детей с тяжелой гнойно-септической патологией, перенесших хирургические вмешательства.

При выявлении абсолютной лимфопении (менее 2х109/л) у детей с осложненным течением неонатального периода показано внутривенное капельное введение Ронколейкина в дозе 50000-100000 МЕ/кг массы тела в сутки. Перед введением Ронколейкин необходимо развести 0,9%-ным раствором натрия хлорида из расчета 5-10 мл/кг в сутки в зависимости от особенностей водно-электролитного обмена ребенка. Препарат вводится с использованием инфузомата в течение 2-3 часов со скоростью не более 6 мл/час 1 раз в сутки двукратно с интервалом 48-72 часа.

Список работ, опубликованных по теме диссертации

1. Володин H.H., Дегтярева М.В., Солдатова И.Г., Ашиткова Н.В. «Иммунокоррекция в комплексной терапии неонатальных бактериальных инфекций» // Сборник тезисов симпозиума «Инфекционные осложнения в реаниматологии (этиология, патогенез, патологическая анатомия)», ГУ НИИ общей реаниматологии РАМН, Москва, 18 октября 2004 года, с.8-12.

2. Ашиткова Н.В., Бирюкова Т.В., Гордеева Е.В., Кыштымов М.В., Эверстова Т.Н., Худолеева Е.Б., Синева С.А., Котов А.Ю., Симбирцев A.C., Дегтярева М.В. «Влияние системного воспаления на функции печени у новорожденных детей» // Сборник тезисов 5 съезда РАСПМ. Г.Москва. 14-15 ноября 2005 год, стр.28-29.

3. Дегтярева М.В., Ашиткова Н.В., Бирюкова Т.В., Кыштымов М.В., Эверстова Т.Н., Синева С.А., Котов А.Ю., Симбирцев A.C. «Роль провоспалительных цитокинов в диагностике ранних неонатальных инфекций» // Сборник тезисов 11 Всероссийского съезда сердечно-сосудистых хирургов. Москва. 2326 октября 2005 года, стр. 12.

4. Солдатова И.Г., Дегтярева М.В., Ашиткова Н.В., Булгакова Н.Т., Попова И.Д., Худолеева Е.Б., Кыштымов М.В. «Применение интерферона-альфа 2Ь в комплексной терапии неонатальных бактериальных инфекций» // «Вопросы практической педиатрии», 2006. - Том 1, № 1. - Стр.39.

5. Ашиткова Н.В., Солдатова И.Г., Панкова А.Г., Дегтярева М.В. «Распространенность лимфопении у новорожденных детей с осложненным течением неонатального периода» // Материалы Ежегодного конгресса специалистов перинатальной медицины «Новые технологии в перинатологии», Москва, 2122 ноября 2006 г., стр.9.

6. Бирюкова Т.В., Ашиткова Н.В., Солдатова И.Г., Бабак O.A., Воронцова Ю.Н., Продеус А.П., Котов А.Ю., Симбирцев A.C., Дегтярева М.В. «Особенности диагностики системной воспалительной реакции при бактериальных инфекциях у новорожденных различного гестационного возраста» // Материалы Ежегодного конгресса специалистов перинатальной медицины «Новые технологии в перинатологии», Москва, 21-22 ноября 2006 года, стр.14.

7. Солдатова И.Г., Ашиткова Н.В., Бирюкова Т.В., Котов А.Ю., Симбирцев A.C., Дегтярева М.В. «Роль показателей цитокинового профиля в ранней диагностике неонатальных инфекций» // Материалы Ежегодного конгресса специалистов перинатальной медицины «Новые технологии в перинатологии», Москва, 21-22 ноября 2006 года, стр.58.

8. Солдатова И.Г., Ашиткова Н.В., Булгакова Н.Т., Попова И.Д., Худолеева Е.Б., Кыштымов М.В., Эверстова Т.Н., Дегтярева М.В. «Эффективность препарата «Виферон-1» в комплексной терапии неонатальных бактериальных инфекций» // Материалы Ежегодного конгресса специалистов перинатальной медицины «Новые технологии в перинатологии», Москва, 21-22 ноября 2006 года, стр.59.

9. Володин H.H., Дегтярева М.В., Гордеев В.И., Тузанкина И.А., Смирнов М.Н., Бабаченко И.В., Аболина Т.Б., Погорельчук В.В., Авдеева Ж.И., Ашиткова Н.В., Золотарева С.А. «Ронколейкин в терапии гнойно-септических заболеваний у детей» // «Биопрепараты». - Март, 2008, стр.20-26.

10. Володин H.H., Дегтярева М.В., Солдатова И.Г., Ашиткова Н.В. «Интерлейкин-2: опыт клинического применения в неонатологии» // Пособие для врачей. «Новая альтернативная полиграфия», Санкт-Петербург, 2008, 18 страниц.

11. Ашиткова Н.В., Солдатова И.Г., Дегтярева М.В., Володин H.H. «Оценка клинической эффективности Ронколейкина у новорожденных детей с осложненным течением неонатального периода и абсолютной лимфопенией» // Материалы III Ежегодного конгресса и VI Съезда Российской ассоциации специалистов перинатальной медицины «Современная перинатология: организация, технология и качество», Москва, 29-30 октября 2008 г., стр.9.

12. Ашиткова Н.В., Дегтярева М.В., Володин H.H., Солдатова И.Г., Бирюкова Т.В., Беляева И.Д., Эверстова Т.Н., Кыштымов М.В., Милева О.И., Мумрикова М.А. «Диагностическое и прогностическое значение лимфопеиических состояний у новорожденных детей с осложненным течением неонатального периода» // «Педиатрия». Журнал имени Г.Н.Сперанского, 2009, № 1, стр.

13. Ашиткова Н.В., Володин H.H., Дегтярева М.В., Солдатова И.Г., Беляева И.Д., Эверстова Т.Н., Кыштымов М.В., Давыдова Н.В., Продеус А.П., Котов А.Ю., Симбирцев A.C. «Оценка клинической эффективности препарата рекомбинантного интерлейкина-2 человека - Ронколейкина в комплексной терапии неонатального сепсиса и тяжелых неонатальных инфекций, сопровождающихся абсолютной лимфопенией» // «Педиатрия». Журнал имени Г.Н.Сперанского, 2009, № 3

49-54.

ДИ ИВЛ

ТКФ

CD

ИЛ

I/T

ИФН-у

НЭК

СРВ

энмт

ИФА

ГВ

ИЛ-1РА

Список нспользованных сокращений.

- гестационный возраст

- доверительный интервал

- искусственная вентиляция лёгких -интерлейкин

- рецепторный антагонист ИЛ-1В

- иммуноферментный анализ

- интерферон - у

- некротизирующий энтероколит -С - реактивный белок

- точный критерий Фишера

- экстремально низкая масса тела

- Immature/Total (отношение числа юных форм нейтрофилов к общему числу гранулоцитов периферической крови)

- кластеры дифференцировки

 
 

Оглавление диссертации Ашиткова, Наталья Вячеславовна :: 2009 :: Москва

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ

ВВЕДЕНИЕ

ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ. Современные представления о роли лимфоцитов при тяжелых неонатальных инфекциях

1.1. Особенности количества и функционального состояния лимфоцитов у новорожденных детей различного гестационного возраста при физиологическом и осложненном течении неонатального периода

1.2. Изменения количества и функционального состояния лимфоцитов новорожденных детей различного гестационного возраста при инфекционных заболеваниях

1.3. Взаимосвязь уровней про- и противовоспалительных цитокинов и ростовых факторов в сыворотке крови со свойствами лимфоцитов у новорождённых детей в норме и при патологии

1.4. Влияние иммунокоррекции на количество и функциональные свойства лимфоцитов у новорожденных детей. Использование препарата рекомбинантного ИЛ-2 человека (Ронколейкин) при тяжелых инфекциях, сопровождающихся абсолютной лимфопенией, у взрослых

ГЛАВА 2. ОБЪЁМ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.1. Объём клинических наблюдений и характеристика групп новорождённых детей

2.2. Методы обследования

2.2.1. Клинические, лабораторные и инструментальные методы исследования

2.2.2. Иммунологические методы исследования

2.3. Статистическая обработка результатов

ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ РЕТРОСПЕКТИВНОГО АНАЛИЗА ЧАСТОТЫ ЛИМФОПЕНИИ ПРИ РАЗЛИЧНЫХ ПАТОЛОГИЧЕСКИХ

СОСТОЯНИЯХ У НОВОРОЖДЕННЫХ ДЕТЕЙ

3.1. Ретроспективный анализ частоты лимфопении при различных патологических состояниях периода новорожденности

3.2. Ретроспективный анализ частоты лимфопении у новорожденных детей различного гестационного возраста

3.3. Ретроспективный анализ частоты лимфопении у больных новорожденных детей различного постнатального возраста

3.4. Ретроспективный анализ частоты лимфопении у больных новорожденных детей при неблагоприятном исходе заболевания

ГЛАВА 4. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ ЧАСТОТЫ АБСОЛЮТНОЙ ЛИМФОПЕНИИ И ВЗАИМОСВЯЗИ ЕЕ С ВИДОМ И ИСХОДОМ ЗАБОЛЕВАНИЯ, ГЕСТАЦИОННЫМ И ПОСТНАТАЛЬНЫМ ВОЗРАСТОМ НОВОРОЖДЕННЫХ ДЕТЕЙ, ИХ КЛИНИКО-ЛАБОРАТОРНЫМИ ПОКАЗАТЕЛЯМИ

4.1. Анализ частоты абсолютной лимфопении при различных патологических состояниях периода новорожденности

4.2. Анализ частоты встречаемости абсолютной лимфопении у больных новорожденных детей при неблагоприятном исходе заболевания

4.3. Анализ частоты встречаемости абсолютной лимфопении у новорожденных детей, перенесших хирургические операции, и у детей, не имевших показаний к оперативному вмешательству

4.4. Анализ частоты абсолютной лимфопении у детей различного гестационного возраста

4.5. Сравнительный анализ частоты встречаемости абсолютной нейтропении и абсолютной лимфопении при раннем неонатальном сепсисе

4.6. Изучение взаимосвязи абсолютной лимфопении у новорожденных детей с результатами посевов крови на стерильность

4.7. Частота абсолютной лимфопении у больных новорожденных детей различного постнатального возраста

ГЛАВА 5: РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ КЛНИНИКО-ЛАБОРАТОРНЫХ ОСОБЕННОСТЕЙ У НОВОРОЖДЕННЫХ ДЕТЕЙ С ОСЛОЖНЕННЫМ ТЕЧЕНИЕМ НОНАТАЛЬНОГО ПЕРИОДА, РАЗВИВШИХ АБСОЛЮТНУЮ ЛИМФОПЕНИЮ

ГЛАВА 6. ОЦЕНКА КЛИНИЧЕСКОЙ ЭФФЕКТИВНОСТИ ПРЕПАРАТА РЕКОМБИНАНТНОГО ИНТЕРЛЕЙКИНА-2 ЧЕЛОВЕКА - РОНКОЛЕЙКИНА® В КОМПЛЕКСНОЙ ТЕРАПИИ НЕОНАТАЛЬНОГО СЕПСИСА И ТЯЖЕЛЫХ НЕОНАТАЛЬНЫХ

ИНФЕКЦИЙ, СОПРОВОЖДАЮЩИХСЯ АБСОЛЮТНОЙ ЛИМФОПЕНИЕЙ

6.1. Изучение показателя летальности в группах больных детей, получавших и не получавших Ронколейкин

6.2. Сравнение клинико-лабораторных показателей в динамике у детей с тяжелыми неонатальными инфекциями, получавших и не получавших Ронколейкин

 
 

Введение диссертации по теме "Педиатрия", Ашиткова, Наталья Вячеславовна, автореферат

Актуальность работы

Сепсис и гнойно-воспалительные заболевания занимают существенное место в структуре заболеваемости и смертности детей, в том числе, новорожденных и недоношенных, как в России, так и за рубежом, поэтому проблема оптимизации лечения тяжёлых инфекций у новорожденных детей не теряет своей актуальности во всех странах мира. Показатели летальности от сепсиса остаются стабильно высокими в различных странах и составляют 30-40%. Самые высокие показатели летальности (до 68%) отмечаются среди глубоконедоношенных детей с экстремально низкой массой тела при рождении (менее 1000 г) [26, 34, 36, 51, 57, 60, 182, 183].

Несмотря на широкое применение антибактериальной терапии, в последние годы отмечается тенденция к росту числа детей, больных сепсисом. Это связано с рядом неблагоприятно воздействующих на иммунную систему факторов: экологических, психоэмоциональных, а также с широким внедрением инвазивных методов диагностики и лечения, с усовершенствованием медицинских технологий и появлением возможности выхаживания детей с малым гестационным возрастом и низкой массой тела при рождении.

Кроме того, к факторам риска развития раннего неонатального сепсиса новорожденных относятся гестационный возраст менее 32 недель, масса тела менее 1500 граммов, внутриутробное инфицирование, травматизация в родах, преждевременный разрыв околоплодных оболочек, безводный период более 12 часов, лихорадка у матери в родах, развитие хорионамнионита или эндометрита у матери в раннем послеродовом периоде, тяжелая перинатальная гипоксия (лактат-ацидоз и снижение оценки по шкале Апгар менее 5 баллов). В то же время длительное пребывание в отделении реанимации и интенсивной терапии, необходимость применения инвазивных методов лечения (ИВЛ, катетеризация кровеносных сосудов и мочевого пузыря, зондирование желудка) могут послужить причинами для развития позднего неонатального сепсиса [12, 26, 35, 37, 38, 51, 143].

В последние годы во всем мире пристальное внимание исследователей и практических врачей (акушеров-гинекологов, неонатологов, педиатров) уделяется комплексу проблем, связанных с изучением онтогенеза иммунной системы в норме и функционированием её при патологических состояниях, особенно при тяжелых бактериальных инфекциях в перинатальном периоде и в раннем детском возрасте [8, 9, 43, 59, 75, 94, 98, 107, 116, 138, 153, 154, 157]. По значимости для становления иммунной системы перинатальный период уникален и не сопоставим ни с одним другим возрастным периодом [9, 10, 79, 80, 129, 140]. Созревание, дифференцировка лимфоцитов и приобретение ими антигенраспозншощего репертуара, формирование иммунного ответа, иммунной памяти, цитотоксичности, феномен иммунной толерантности, имеющий место у новорожденных детей, — вот далеко не полный перечень основных событий, происходящих в перинатальном периоде и раннем детском возрасте [26, 32, 43, 44, 51, 54].

Характер течения периода внутриутробного развития плода и периода новорожденности в значительной степени определяет будущее состояние здоровья и качество жизни человека. Иммунная система является интегрирующей и, наряду с центральной нервной системой и эндокринной системой, участвует в поддержании гомеостаза организма ребенка и установлении оптимального баланса во взаимоотношениях с окружающей средой. Иммунные механизмы участвуют в патогенезе основных заболеваний перинатального периода и во многом обуславливают возможность полноценной реабилитации заболевшего ребенка [4, 8, 9].

Кроме того, особый интерес представляет собой перспектива возможного изучения фенотипа лимфоцитов, маркеров их активации и применение полученных данных в диагностике различных патологических состояний и прогнозировании исхода заболевания [55, 59, 62, 70, 73, 76, 77, 88, 94, 98, 101, 116, 134, 138].

В клинической практике одним из наиболее информативных методов, позволяющим подтвердить наличие бактериальной инфекции, является общий анализ крови. Известно, что маркерами воспалительной реакции являются лейкоцитоз или лейкопения, нейтрофилез или нейтропения, сдвиг лейкоцитарной формулы до юных форм гранулоцитов. В то же время отсутствуют систематизированные факты статистического анализа клинических наблюдений, характеризующие роль лимфоцитов в иммунной защите новорожденных детей различного гестационного возраста при физиологическом и осложненном течении неонатального периода, изменение их количества в динамике при генерализованных и локализованных инфекциях, диагностическую и прогностическую роль лимфопенических состояний. При этом имеются доказательства неблагоприятной прогностической значимости лимфопении, как правило, сопровождающей гипоэргическое течение сепсиса и тяжелых инфекций [13, 50]

Изучение диагностической и прогностической роли абсолютной лимфопении становится особенно актуальным в связи с появлением в арсенале практических врачей новых препаратов, относящихся к медиаторам иммунной системы, являющихся факторами роста лимфоцитов и позволяющих корригировать абсолютную лимфопению. Так, в последние годы был разработан и внедрен в клиническую практику препарат рекомбинантного интерлейкина-2 человека (Ронколейкин®), который показал высокую клиническую эффективность при лечении хирургического сепсиса и тяжелых инфекционных заболеваний, сопровождающихся развитием «иммунопаралича» [27, 28]. Логично предположить, что Ронколейкин может явиться эффективным средством для коррекции абсолютной лимфопении и у новорожденных детей и тем самым улучшить прогноз при тяжелых неонатальных инфекциях. Показания к назначению Ронколейкина новорожденным детям, а также схема его введения нуждаются в тщательной отработке.

Для решения вышеуказанных проблем и было предпринято настоящее исследование.

Цель исследования:

Установить диагностическое и прогностическое значение абсолютной лимфопении в патогенезе неонатальных инфекций и оценить клиническую эффективность иммунотерапии препаратом рекомбинантного интерлейкина-2 человека (Ронколейкин®).

Задачи исследования:

1. Установить частоту встречаемости и клиническое значение лимфопении у новорожденных детей при различной патологии.

2. Установить прогностическое значение абсолютной лимфопении при неонатальных инфекционных заболеваниях.,

3. Оценить взаимосвязь между количеством лимфоцитов и другими лабораторными показателями у новорождённых детей различного гестационного возраста с осложненным течением неонатального периода.

4. Изучить особенности фенотипа лимфоцитов у новорожденных детей различного гестационного возраста при неонатальных инфекциях, сопровождающихся развитием лимфопении.

5. Обосновать клинико-лабораторные показания к проведению иммунокоррекции лимфопенических состояний и оценить клиническую эффективность терапии Ронколейкином при неонатальных инфекциях у детей различного гестационного возраста.

 
 

Заключение диссертационного исследования на тему "Диагностическое и прогностическое значение лимфопении при неонатальных инфекциях"

ВЫВОДЫ:

1. Абсолютная лимфопения, выявленная у пациентов в неонатальном периоде, свидетельствует о тяжести инфекционного заболевания независимо от гестационного и постнатального возраста детей, результатов посева крови и природы выявленного возбудителя

2. При раннем неонатальном сепсисе абсолютная лимфопения развивается статистически значимо чаще, чем абсолютная нейтропения (19% против 3,8% соответственно; р=0,002, ТКФ).

3. Показатель летальности в группе больных новорожденных с повторяющимися эпизодами лимфопении был статистически значимо выше, чем у детей с однократным эпизодом лимфопении (29,3% против 9,4%, соответственно; р=0,02, ТКФ), что может указывать на непосредственную взаимосвязь между развитием лимфопении как проявлением иммунной недостаточности и смертельным исходом, а также на неблагоприятную прогностическую значимость феномена стойкой абсолютной лимфопении.

4. В возникновении лимфопенических состояний важную патогенетическую роль играет системный воспалительный ответ, обусловленный усилением синтеза провоспалительных цитокинов и сопровождающийся преобладанием в лейкоцитарной формуле нейтрофилов со сдвигом до юных форм.

5. Неблагоприятная прогностическая значимость абсолютной лимфопении объясняется количественным дефицитом всех важнейших функциональных субпопуляций лимфоцитов: зрелых Т-лимфоцитов (CD3+), цитотоксических лимфоцитов (CD8+), естественных киллерных клеток (CD16+CD56+), Т-лимфоцитов-хелперов (CD4+), производящих интерлейкин-2 как фактор роста лимфоцитов. Это приводит к недостаточности клеточных механизмов врожденного и адаптивного иммунного ответа у новорожденных детей и подчеркивает необходимость применения при регистрации абсолютной лимфопении патогенетически обоснованных способов иммунокоррекции.

6. Включение Ронколейкина в комплексную терапию тяжелых неонатальных инфекций, осложнившихся развитием абсолютной лимфопении, является патогенетически обоснованным, безопасным и эффективным. О высокой клинической эффективности Ронколейкина свидетельствуют снижение показателя летальности, сокращение длительности санации локализованных очагов инфекции и крови, нормализация показателей гемограммы и иммунного статуса, уменьшение интенсивности системного воспалительного ответа у детей, получавших иммунотерапию Ронколейкином, по сравнению с детьми группы сравнения.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ.

1. При интерпретации результатов общего анализа крови у новорожденных детей с осложненным течением неонатального периода необходимо производить расчет абсолютного количества лимфоцитов.

2. Повторяющаяся в динамике абсолютная лимфопения является прогностическим фактором риска летального исхода, особенно у детей с тяжелой гнойно-септической патологией, перенесших хирургические вмешательства.

3. При выявлении абсолютной лимфопении (менее 2* 109/л) у детей с осложненным течением неонатального периода показано внутривенное капельное введение Ронколейкина в дозе 50000-100000 МЕ/кг массы тела в сутки. Перед введением Ронколейкин необходимо развести 0,9%-ным раствором натрия хлорида из расчета 5-10 мл/кг в сутки в зависимости от особенностей водно-электролитного обмена ребенка. Препарат вводится с использованием инфузомата в течение 2-3 часов со скоростью не более б мл/час 1 раз в сутки двукратно с интервалом 48-72 часа.

 
 

Список использованной литературы по медицине, диссертация 2009 года, Ашиткова, Наталья Вячеславовна

1. Авдеева Ж.И., Алпатова И.А., Медуницын Н.В. Препараты системы цитокинов. // Цитокины и воспаление. 2002. - том 1. - №2. - с.ЗЗ.

2. Антонов А.Г., Байбарина E.H., Соколовская Ю.В., Евтеева Н.В. Объективные диагностические критерии сепсиса у новорожденных. // Вопросы гинекологии, акушерства и перинатологии. 2005. - том 4, № 5-6. -сЛ 13-115.

3. Анциферова М.А., Казаков A.A., Александров Г.А. Местные и системные эффекты интерлейкина-8 // Цитокины и воспаление.- 2002.- том. 1, с. 65.

4. Володин H.H., Дегтярева М.В. Иммунология перинатального периода: проблемы и перспективы //Педиатрия. Журнал им. Г.Н.Сперанского.- 2001.-том. 4, с. 4-8.

5. Володин H.H., Дегтярёва М.В., Солдатова И.Г., Симбирцев A.C., Котов

6. Ронколейкина (интерлейкина-2) при лечении иммунодефицитов различнойэтиологии". СПб.- 2003.- с. 48-50.

7. Гаврилин C.B., Козлов В.К., Лебедев В.Ф., Толстой А.Д. Рекомбинантпый IL-2 в профилактике и лечении сепсиса //Тезисы докл. VIII Всероссийского съезда анестезиологов и реаниматологов. Омск.- 2002.- с. 193.

8. Дегтярева М.В. Комплексное исследование провоспалительных иммуноцитокинов и функционального состояния лимфоцитов у новорожденных детей в норме и при патологии //Автореф. дисс. . канд. мед. паук, М.- 1995.24 с.

9. Дегтярева М.В. Функциональное состояние иммунной системы новорожденных детей при физиологическом и осложненном течении неонатального периода: природа иммунной адаптации. // Автореф. дисс. . доктора мед. наук. М., 2000. 40 с.

10. Егорова В.Н., Попович A.M. Ронколейкин®. Опыт применения в хирургии и реаниматологии //СПб.: Альтернативная полиграфия.- 2004,- с. 48.

11. Егорова В.Н, Бабаченко И.В., Дегтярёва М.В., Попович A.M. Интерлейкин-2: опыт клинического применения в педиатрической практике. СПб., 2008.

12. Иванов Д.О. Клинико-лабораторные варианты течения сепсиса новорожденных // Автореф. дис. докт. мед. наук. 2002.

13. Интерлейкины: клинико-экспериментальное обоснование применения в комплексном лечении туберкулеза. Пособие для врачей. // СПб, 2005, 31 с.

14. Кетлинский С.А. Перспективы клинического применения рекомбинантных цитокинов // Вестн. РАМН.- 1993.- том. 2, с. 11-18.

15. Козлов В.К., Лебедев М.Ф., Егорова В.Н. Новые возможности иммунотерапии с использованием Ронколейкина© рекомбинантного ИЛ-2 человека //Terra Medica.- 2001,- том. 2, с. 12-14.

16. Козлов В.К. Сепсис. Этиология, иммунопатогенез, концепция современной иммунотерапии // СПб., «Диалект» 2008. — 294 с.

17. Козлов B.K. Цитокинотерапия в комплексном лечении тяжелой хирургической и инфекционной патологии // Успехи клинической иммунологии и аллергологии. Под ред. A.B. Караулова. М.: изд. регионального отделения РАЕН.- 2002.- том 3, с. 242-262.

18. Козлов В.К., Калинина Н.М., Егорова В.Н. Патогенез ВИЧ-инфекции. Возможности иммунотерапии цитокинами // СПб: изд. СПбГУ.- 2001.- 27 с.

19. Козлов В.К., Смирнов М.Н., Егорова В.Н., Лебедев М.Ф. Коррекция иммунореактивности рекомбинантным интерлейкином-2 // Пособие для врачей. // СПб: изд. СПбГУ,- 2001.- 24 с.

20. Костюченко А.Л., Вельских А.Н., Тулупов А.Н. Интенсивная терапия послеоперационной раневой инфекции и сепсиса // СПб.: Фолиант,- 2000.204 с.

21. Лебедев В.Ф., Козлов В.К., Гаврилин C.B., Степанов A.B., Добрынин В.М. Иммунотерапия рекомбинантным интерлейкином-2 тяжелых ранений и травм //СПб: изд. СПбГУ.- 2001.- 72 с.

22. Лебедев В.Ф., Гаврилин C.B., Козлов В.К. Иммунопрофилактика и опережающая терапия посттравматического сепсиса дрожжевым рекомбинантным интерлейкином-2 //Цитокины и воспалеиие.- 2002.- том. 1, с. 46-47.

23. Масычева В.И., Пустошилова Н.М., Даниленко Е.Д. Разработка препаратов на основе генно-инженерных цитокинов //Мед. Иммунол.- 2001.-том 3, с. 369-378.

24. Мусалимова Г.Г., Саперов В.И., Карзакова Л.М., Кичигин В.А. Клинико-иммунологическая оценка эффективности Ронколейкина при микоплазменной и хламидийной пневмониях. // Пульмонология, 2004, том 14, №3,с. 25.

25. Неонатология: национальное руководство / под редакцией Н.Н.Володина. М.: ГЭ ОТАР-Медиа, 2007. - 848 с.

26. Останин A.A., Пальцев A.B., Леплина О.Ю., Шевела Е.Я., Черных Е.Р. Опыт использования экстракорпоральной иммунотерапии в лечении хирургических больных с гнойно-септическими заболеваниями //Медицинская иммунология.- 2002.-том. 2, с. 43-51.

27. Позняк A.JI., Лобзин Ю.В., Симбирцев A.C., и соавт. Особенности интерлейкинового статуса больных при генерализованных формах хламидийной инфекции с преимущественным поражением нервной системы //Цитокины и воспаление.- 2002.- том. 1, с. 125.

28. Попович A.M. Интерлейкин-2: опыт клинического применения в России 2005.- 56 с.

29. Ройт А., Бростофф Дж., Мейл Д. Иммунология. М., «Мир». 2000. Пер.с англ. 582 стр.

30. Руководство по медицине. Диагностика и терапия. // Под ред. Р. Беркоу, Э. Флетчера. М.: Мир.- 1997.- 1045 с.

31. Самсыгина Г.А., Шабалов Н.П., Талалаев А.Г. и соавт. Сепсис новорожденных. Приложение к журналу "Архив патологии" М.: Медицина., 2004. 48 с.

32. Самсыгина ГА. Гнойно-воспалительные заболевания новорожденных (этиология, факторы риска, клинико-иммунологические критерии диагноза и тактика лечения). Дисс. . д-ра мед. наук М., 1986.

33. Самсыгина Г.А. Сепсис новорожденных. Рациональная фармакотерапия детских заболеваний. Руководство для врачей. Книга 1. Под редакцией A.A. Баранова, H.H. Володина, Г.А. Самсыгиной. М.: «Литтера», 2007, с. 218-237.

34. Самсыгина Г.А., Шабалов Н.П., Дегтярева М.В. «Сепсис». // В: «Неонатология: национальное руководство». Под редакцией Н.Н.Володипа. -М.: ГЭОТАР-Медиа, 2007. 848 с. - Глава 39. с.673-687.

35. Самсыгина Г.А. Сепсис и септический шок у детей. // «Педиатрия». Журнал имени Г.Н. Сперанского, 2009, том 87, № 1, с. 120-127.

36. Симбирцев A.C. Интерлейкин-1: от эксперимента в клинику //Мед. иммунол.- 2001.- том 3, с. 431-438.

37. Смирнов B.C., Малинин В.В., Кетлинский С.А. Терапия вторичных иммунодефицитных состояний пептидными биорегуляторами. // Иммуподефицитные состояния. Под ред. Смирнова B.C., Фрейдлин И.С. -СПб.: Фолиант.- 2000.- с. 477-533.

38. Солдатова И.Г. Роль провоспалительных цитокинов, рецепторного антагониста интерлейкина-1 в диагностике и лечениибактериальных инфекций у новорожденных детей. //Автореф. дисс. . канд. мед. наук, 2003.

39. Степанов A.B., Хлопунова О.В., Лебедев В.Ф., Козлов В.К. Применение дрожжевого рекомбинантного IL-2 человека для профилактики и лечения гнойно-септической патологии в эксперименте //Цитокины и воспаление.-2002.-том 1, с. 51.

40. Таболин В.А., Володин H.H., Дегтярева М.В., Дегтярев Д.Н., Бахтикян К.К. Актуальные вопросы перинатальной иммунологии //Int. J. оп Immunorehabilitation.- 1997.- vol. 6, p. 112-122.

41. Тотолян A.A., Фрейдлин И.С. Клетки иммунной системы //Санкт-Петербург «Наука».- 2000.- том. 1-2, 231 с.

42. Хаитов P.M. Иммунология // Учебник для ВУЗов. «ГОЭТАР-Медиа», Москва, 2006.

43. Хаитов P.M., Пинегин Б.В. Иммуномодуляторы и некоторые аспекты их клинического применения //Клиническая медицина.- 1996.- том. 8, с. 7-12.

44. Чалый Ю.В., Нашкевич H.H., Войтенок H.H. IL-8 как сигнальная молекула повреждения клетки // Цитокины и воспаление.- 2002.- том. 1, с. 71.

45. Черешнев В.А., Гусев ЕЛО. Иммунология воспаления. Роль цитокинов // Мед. Иммунол.- 2001.- том. 3, с. 361-368.

46. Чернышов В.П., Слуквин И.И. Анализ субпопуляций Т-лимфоцитов и естественных киллеров методом проточной цитофлуориметрии у новорожденных детей //Педиатрия.- 1993.- том. 5, с. 15-17.

47. Шабалов Н.П., Иванов Д.О. Неонатальный сепсис: клиника, диагностика и лечение // Академический медицинский журнал,.- 2001.- том. 1, с. 81-88.

48. Шабалов Н.П. Неонатология: В 2 т. — М.: МЕДпресс-информ. 2006.

49. Шевченко С.М., Нестеренко С.Н., Бурда Ю.Е. и соавт. Ронколейкин (рекомбинантный интерлейкин-2 человека) против сепсиса. Клиническая и экономическая эффективность применения малых доз //Мир Медицины.-2000.-том. 5, с. 21-23.

50. Ширинский B.C., Старостина Н.М., Сенникова Ю.А., Ширинский И.В., Соловьёва Н.Ю., Малышева O.A., Круглеева О.Л., Непомнящих В.М. Проблемы иммуностимулирующей терапии с позиций доказательной медицины //Медицинская иммунология.- 2000.- том. 2, с. 17-24.

51. Ярилин A.A. Основы иммунологии. Москва, «Медицина», 1999. 608 с.

52. Adamski J. K., Arkwright P. D., Will A. M., et al. Transient lymphopenia in acutely unwell young infants //Arch Dis Child.- 2002.- vol. 86, p. 200-201.

53. Austgulen R., Arntzen K. J., Haereid P. E., et al. Infections in neonates delivered at term are associated with increased serum levels of ICAM-1 and E-selectin //Acta Paediatr.- 1997.- vol. 86, p. 274-280.

54. Avery G.B., Fletcher M.A., MacDonald M.G. "Neonatology. Pathophysiology and Management of the Newborn". 5th Edition. 1999, Lippincott Williams and Wilkins, USA, Philadelphia, PA.

55. Bauer T.T., Monton C., Torres A., et al. Comparison of systemic cytokine levels in patients with acute respiratory distress syndrome, severe pneumonia, and controls //Thorax.- 2000.- vol. 55, p. 46-52.

56. Behrendt J., Karpe J., Mazur B., et al. Quantitative changes of CD3+, CD4+, CD8+, HLA-DR+, T lymphocytes and CD25+ cells in eutrophic full-term neonates with staphylococcal septicemia. //Przegl Lek.- 2002.- vol. 59 Suppl 1, p. 50-53.

57. Behrman R.E., Kliegman R.M., Jenson H.B. "Nelson Textbook of Pediatrics." 17lh Edition. International Edition. 2004, Saunders (An Imprint of Elsevier), USA, Philadelphia, PA.

58. Berger M., O'Shea J., Cross A.S., et al. Human neutrophils increase expression of C3bi as well as C3b receptors upon activation //J Clin Invest.- 1984.- vol. 74, p. 1566-1571.

59. Berner R., Csorba J., Brandis M. Different cytokine expression in cord blood mononuclear cells after stimulation with neonatal sepsis or colonizing strains of Streptococcus agalactiae //Pediatr Res.- 2001.- vol. 49, p. 691-697.

60. Berner R., Tuxen B., Clad A., et al. Elevated gene expression of inteiieukin-8 in cord blood is a sensitive marker for neonatal infection //Eur J Pediatr.- 2000.- vol. 159, p. 205-210.

61. Bertotto A., De Felicis Arcangeli C., Gerli R., et al. Phenotypic heterogeneity within the circulating human neonatal T4-positive T cell subset //Biol Neonate.-1986.- vol. 50, p. 318-322.

62. Bertotto A., Gerli R., Lanfrancone L., et al. Activation of cord T lymphocytes. II. Cellular and molecular analysis of the defective response induced by anti-CD3 monoclonal antibody//Cell Immunol.- 1990.- vol. 127, p. 247-259.

63. Bessler H., Sirota L., Dulitzky F., et al. Production of interleukin-1 by mononuclear cells of newborns and their mothers //Clin Exp Immunol.- 1987.- vol. 68, p. 655-661.

64. Bessler H., Sirota L., Notti I., et al. IL-1 beta and IL-3-like activity in preterm infants //Clin Exp Immunol.- 1993.- vol. 91, p. 320-324.

65. Bessler H., Sirota L., Notti I., et al. IL-2 receptor gene expression and IL-2 production by human preterm newborns' cells //Clin Exp Immunol.- 1993.- vol. 93, p. 479-483.

66. Bone R.C. Toward a theory regarding the pathogenesis of the systemic inflammatory response syndrome: what we do and do not know about cytokine regulation HCnt Care Med.- 1996,- vol. 24, p. 163-172.

67. Borregaard N., Miller L. J., Springer T. A. Chemoattractant-regulated mobilization of a novel intracellular compartment in human neutrophils //Science.-1987.- vol.237, p. 1204-1206.

68. Bruning T., Daiminger A., Enders G. Diagnostic value of CD45RO expression on circulating T lymphocytes of fetuses and newborn infants with pre-, peri- or early post-natal infections //Clin Exp Immunol.- 1997.- vol. 107, p. 306-311.

69. Buck C., Bundschu J., Gallati H., et al. Interleukin-6: a sensitive parameter for the early diagnosis of neonatal bacterial infection //Pediatrics.- 1994.- vol. 93, p. 54-58.

70. Bunders M., Thorne C., Newell M. L. Maternal and infant factors and lymphocyte, CD4 and CD8 cell counts in uninfected children of HIV-1-infected mothers//Aids.- 2005.-vol. 19, p. 1071-1079.

71. Chorinchath B.B., Kong L.Y., Mao L., et al. Age-associated differences in TNF-alpha and nitric oxide production in endotoxic mice //J Immunol.- 1996.- vol. 156, p. 1525-1530.

72. Comans-Bitter W.M., de Groot R., van den Beemd R., et al. Immunophenotyping of blood lymphocytes in childhood. Reference values forlymphocyte subpopulations //J Pediatr.- 1997.- vol. 130, p. 388-393.

73. Cornette L. Perinatal inflammation and infection //Minerva Ginecol.- 2005.-vol. 57, p. 411-421.

74. Deenick E.K., Gett A.V., Hodgkin P.D. Stochastic model of T cell proliferation: a calculus revealing IL-2 regulation of precursor frequencies, cell cycle time, and survival. // J. Immunol. 2003; vol. 170(10), p. 4963-72.

75. Dinarello C.A. Interleukin-lbeta //Crit Care Med.- 2005,- vol. 33, p. S460-462.

76. Dinarello C.A., Cannon J. G., Wolff S. M., et al. Tumor necrosis factor (cachectin) is an endogenous pyrogen and induces production of interleukin 1 //J Exp Med.- 1986.-vol. 163, p. 1433-1450.

77. Dinarello C. A., Bagwell C. E., Rozycki H. J. Circulating pro- and counterinflammatory cytokine levels and severity in necrotizing enterocolitis //Pediatrics.- 1999.- vol. 103, p. 766-771.

78. Ditschkowski M., Kreuzfelder E., Rebmann V., et al. HLA-DR expression and soluble HLA-DR levels in septic patients after trauma //Ann Surg.- 1999.- vol. 229, p. 246-254.

79. Dollner H., Amtzen K. J., Haereid P. E., et al. Interleukin-6 concentrations in neonates evaluated for sepsis //J Pediatr.- 1998.- vol. 132, p. 295-299.

80. Dollner H., Vatten L., Austgulen R. Early diagnostic markers for neonatal sepsis: comparing C-reactive protein, interleukin-6, soluble tumour necrosis factor receptors and soluble adhesion molecules //J Clin Epidemiol.- 2001.- vol. 54, p. 1251-1257.

81. Dollner H., Vatten L., Linnebo I., et al. Inflammatory mediators in umbilical plasma from neonates who develop early-onset sepsis //Biol Neonate.- 2001.- vol. 80, p. 41-47.

82. Dowling M.R., Hodgkin P.D. Modelling naive T-cell homeostasis: consequences of heritable cellular lifespan during ageing.// Immunol Cell Biol., 2009.

83. Durandy A., De Saint Basile G., Lisowska-Grospierre B., et al. Undetectable CD40 ligand expression on T cells and low B cell responses to CD40 binding agonists in human newborns //J Immunol.- 1995.- vol. 154, p. 1560-1568.

84. Economides A., Schmid I., Anisman-Posner D. J., et al. Apoptosis in cord blood T lymphocytes from infants of human immunodeficiency virus-infected mothers //Clin Diagn Lab Immunol.- 1998.- vol. 5, p. 230-234.

85. Elenkov I. J., lezzoni D. G., Daly A., et al. Cytokine dysregulation, inflammation and well-being //Neuroimmunomodulation.- 2005.- vol. 12, p. 255269.

86. Esmon C. T. Inflammation and the activated protein C anticoagulant pathway //Semin Thromb Hemost.- 2006.- vol. 32 Suppl 1, p. 49-60.

87. Fairfax C. A., Borzy M. S. Interleukin 2 production, proliferative response, and receptor expression by cord blood mononuclear cells //J Clin Lab Immunol.-1988.- vol. 27, p. 63-67.

88. Felmet K. A., Hall M. W., Clark R. S., et al. Prolonged lymphopenia, lymphoid depletion, and hypoprolactinemia in children with nosocomial sepsis and multiple organ failure //J Immunol.- 2005.- vol. 174, p. 3765-3772.

89. Fjaertoft G., Hakansson L., Ewald U., et al. Neutrophils from term and preterm newborn infants express the high affinity Fcgamma-receptor I (CD64) during bacterial infections//Pediatr Res.- 1999.- vol. 45, p. 871-876.

90. Franz A. R., Steinbach G., Kron M., et al. Interleukin-8: a valuable tool to restrict antibiotic therapy in newborn infants //Acta Paediatr.- 2001.- vol. 90, p. 1025-1032.

91. Gabay C. Interleukin-6 and chronic inflammation //Arthritis Res Ther.- 2006.-vol. 8 Suppl 2, p. S3.

92. Girardin E. P., Berner M. E., Grau G. E., et al. Serum tumour necrosis factor in newborns at risk for infections //Eur J Pediatr.- 1990.- vol. 149, p. 645-647.

93. Godula-Stuglik U., Mazur B., Behrendt J., et al. Peripheral blood cells with expression of the interleukin-2 receptor (CD25+) in severely infected full-term neonates //Acta Paediatr.- 2001.- vol. 90, p. 819-820.

94. Godula-Stuglik U., Mazur B., Mikusz G., et al. Lymphocyte subpopulations in full-term septic neonates //Pediatr Int.- 1999.- vol. 41, p. 500-505.

95. Gonzalez B. E., Mercado C. K., Johnson L., et al. Early markers of late-onset sepsis in premature neonates: clinical, hematological and cytokine profile //J Perinat Med.- 2003.- vol. 31, p. 60-68.

96. Greene W. C., Leonard W. J. The human interleukin-2 receptor //Annu Rev Immunol.- 1986.- vol. 4, p. 69-95.

97. Greene W. C., Leonard W. J., Depper J. M. Growth of human T lymphocytes: an analysis of inteiieukin 2 and its cellular receptor //Prog Hematol.- 1986.- vol. 14, p. 283-301.

98. Harris M. C., Costarino A. T., Jr., Sullivan J. S., et al. Cytokine elevations in critically ill infants with sepsis and necrotizing enterocolitis //J Pediatr.- 1994.- vol. 124, p. 105-111.

99. Hayashi H., Onozaki K. Interleukin-1 (IL-1) alpha, beta, IL-1 receptor, IL-1 receptor antagonist (IL-lra). //Nippon Rinsho.- 2005.- vol. 63 Suppl 8, p. 60-64.

100. Hayward A., Cosyns M. Proliferative and cytokine responses by human newborn T cells stimulated with staphylococcal enterotoxin B //Pediatr Res.-1994,- vol. 35, p. 293-298.

101. Hazelzet J. A., van der Voort E., Lindemans J., et al. Relation between cytokines and routine laboratory data in children with septic shock and purpura // Intensive Care Med.- 1994.- vol. 20, p. 371-374.

102. U4.Heyborne K. D., McGregor J. A., Henry G., et al. Interleukin-10 in amniotic fluid at midtrimester: immune activation and suppression in relation to fetal growth // Am J Obstet Gynecol.- 1994.- vol. 171, p. 55-59.

103. Hitti J., Krohn M. A., Patton D. L., et al. Amniotic fluid tumor necrosis factor-alpha and the risk of respiratory distress syndrome among preterm infants //Am J Obstet Gynecol.- 1997.- vol. 177, p. 50-56.

104. Hodge G., Hodge S., Han P., et al. Multiple leucocyte activation markers to detect neonatal infection //Clin Exp Immunol.- 2004.- vol. 135, p. 125-129.

105. Hodge S., Hodge G., Flower R., et al. Surface activation markers of Tlymphocytes: role in the detection of infection in neonates //Clin Exp Immunol.-1998.- vol. 113, p. 33-38.

106. Hodgkin P.D. Concepts for the development of a quantitative theory of clonal selection and class regulation using lessons from the original.// Immunol Cell Biol. 2008 ; vol. 86(2): p.161-165.

107. Hotchkiss R.S., Tinsley K.W., Swanson P.E., et al. Sepsis-induced apoptosis causes progressive profound depletion of B and CD4+ T lymphocytes in humans// J Immunol.- 2001.- vol. 166, p. 6952-6963.

108. Jokic M., Guillois B., Cauquelin B., et al. Fetal distress increases interleukin-6 and interleukin-8 and decreases tumour necrosis factor-alpha cord blood levels in noninfected full-term neonates //Bjog.- 2000.- vol. 107, p. 420-425.

109. Juretic E., Juretic A., Uzarevic B., et al. Alterations in lymphocyte phenotype of infected preterm newborns //Biol Neonate.- 2001,- vol. 80, p. 223-227.

110. Juretic E., Uzarevic B., Petrovecki M., et al. Two-color flow cytometric analysis of preterm and term newborn lymphocytes //Immunobiology.- 2000.- vol. 202, p. 421-428.

111. Juretic E., Uzarevic B., Petrovecki M., et al. Analysis of lymphocyte immunophenotypes in neonates. //Lijec Vjesn.- 1999.- vol. 121, p. 338-341.

112. Jurges E. S., Henderson D. C. Inflammatory and immunological markers in preterm infants: correlation with disease //Clin Exp Immunol.- 1996.- vol. 105, p. 551-555.

113. Kallman J., Ekholm L., Eriksson M., et al. Contribution of interleukin-6 in distinguishing between mild respiratory disease and neonatal sepsis in the newborn infant //Acta Paediatr.- 1999,- vol. 88, p. 880-884.

114. Kasai T., Inada K., Takakuwa T., et al. Anti-inflammatory cytokine levels in patients with septic shock //Res Commun Mol Pathol Pharmacol.- 1997.- vol. 98, p. 34-42.

115. Kenzel S., Henneke P. The innate immune system and its relevance to neonatal sepsis //Curr Opin Infect Dis.- 2006.- vol. 19, p. 264-270.

116. Keski-Nisula L., Hirvonen M. R., Roponen M., et al. Maternal and neonatal IL-4 and IFN-gamma production at delivery and 3 months after birth //J Reprod Immunol.- 2003.- vol. 60, p. 25-33.

117. Kettritz R., Gaido M. L., Haller H., et al. Interleukin-8 delays spontaneous and tumor necrosis factor-alpha-mediated apoptosis of human neutrophils //Kidney Int.- 1998.- vol. 53, p. 84-91.

118. Kobayashi M., Tsuda Y., Yoshida T., et al. Bacterial sepsis and chemokines // Curr Drug Targets.- 2006.- vol. 7, p. 119-134.

119. Krolak-Olejnik B., Mazur B. Evaluation of CD3+/TCR-alpha-beta and CD3+/TCR-gamma-delta lymphocytes in umbilical cord blood. //Med Wieku Rozwoj.- 2003.- vol. 7, p. 351-358.

120. Krolak-Olejnik B., Mazur B. Influence of perinatal risk factors on CD3+/TCR alphabeta and CD3+/TCR gammadelta lymphocytes in cord blood of preterm neonates //Pediatr Int.- 2004.- vol. 46, p. 403-408.

121. Kuster H., Weiss M., Willeitner A. E., et al. Interleukin-1 receptor antagonist and interleukin-6 for early diagnosis of neonatal sepsis 2 days before clinical manifestation//Lancet.- 1998.- vol. 352, p. 1271-1277.

122. Laborada G., Rego M., Jain A., et al. Diagnostic value of cytokines and C-reactive protein in the first 24 hours of neonatal sepsis //Am J Perinatol.- 2003.-vol. 20, p. 491-501.

123. Liu L., Kita T., Tanaka N., et al. The expression of tumour necrosis factor in the hypothalamus after treatment with lipopolysaccharide //Int J Exp Pathol.- 1996.-vol. 77, p. 37-44.

124. Maccario R, Chirico G, Mingrat G, Arico M, Lanfranchi A, Montagna D, Moretta A, Rondini G. Expression of CD45R0 antigen on the surface of resting and activated neonatal T lymphocyte subsets //Biol Neonate.- 1993.- vol. 64, p.346.353.

125. Marchant A., Deviere J., Byl B., et al. Interleukin-10 production during septicaemia//Lancet.- 1994.- vol. 343, p. 707-708.

126. Mariscalco M. M. Innate immunity in critical care //Semin Pediatr Infect Dis.-2006.- vol. 17, p. 25-35.

127. Martinot A., Leclerc F., Cremer R., et al. Sepsis in neonates and children: definitions, epidemiology, and outcome //Pediatr Emerg Care.- 1997.- vol. 13, p. 277-281.

128. Marty C., Misset B., Tamion F., et al. Circulating interleukin-8 concentrations in patients with multiple organ failure of septic and nonseptic origin //Crit Care Med.- 1994.- vol. 22, p. 673-679.

129. Meisner M. Biomarkers of sepsis: clinically useful.//Curr Opin Crit Care.2005.- vol. 11, p. 473-480.

130. Messer J., Eyer D., Donato L., et al. Evaluation of interleukin-6 and soluble receptors of tumor necrosis factor for early diagnosis of neonatal infection //J Pediatr.- 1996.- vol. 129, p. 574-580.

131. Min B., McHugh R., Sempowski G. D., et al. Neonates support lymphopenia-induced proliferation//Immunity.- 2003,- vol. 18, p. 131-140.

132. Mishra U. K., Jacobs S. E., Doyle L. W., et al. Newer approaches to the diagnosis of early onset neonatal sepsis //Arch Dis Child Fetal Neonatal Ed.2006.- vol. 91, p. F208-212.

133. Montagna D., Maccario R., Ugazio A. G., et al. Natural cytotoxicity in the neonate: high levels of lymphokine activated killer (LAK) activity //Clin Exp Immunol.- 1988.-vol. 71, p. 177-181.

134. Mrozek J. D., Georgieff M. K., Blazar B. R., et al. Effect of sepsis syndrome on neonatal protein and energy metabolism //J Perinatol.- 2000.- vol. 20, p. 96-100.

135. Murch S. H., MacDonald T. T., Wood C. B., et al. Tumour necrosis factor in the bronchoalveolar secretions of infants with the respiratory distress syndrome and the effect of dexamethasone treatment //Thorax.- 1992.- vol. 47, p. 44-47.

136. Neckers L. M., Cossman J. Transferrin receptor induction in mitogen-stimulated human T lymphocytes is required for DNA synthesis and cell division and is regulated by interleukin 2 //Proc Natl Acad Sci U S A.- 1983.- vol. 80, p. 3494-3498.

137. Ng P. C. Diagnostic markers of infection in neonates //Arch Dis Child Fetal Neonatal Ed.- 2004,- vol. 89, p. F229-235.

138. Ng P. C., Cheng S. H., Chui K. M., et al. Diagnosis of late onset neonatal sepsis with cytokines, adhesion molecule, and C-reactive protein in preterm very low birthweight infants //Arch Dis Child Fetal Neonatal Ed.- 1997,- vol. 77, p. F221-227.

139. Ng P. C., Li G., Chui K. M., et al. Neutrophil CD64 is a sensitive diagnostic marker for early-onset neonatal infection //Pediatr Res.- 2004.- vol. 56, p. 796-803.

140. Ng P. C., Li K., Wong R. P., et al. Neutrophil CD64 expression: a sensitive diagnostic marker for late-onset nosocomial infection in very low birthweight infants //Pediatr Res.- 2002.- vol. 51, p. 296-303.

141. Ng P. C., Li K., Wong R. P., et al. Proinflammatory and anti-inflammatory cytokine responses in preterm infants with systemic infections //Arch Dis Child Fetal Neonatal Ed.- 2003.- vol. 88, p. F209-213.

142. Nupponen I., Andersson S., Jarvenpaa A. L., et al. Neutrophil CDllb expression and circulating interleukin-8 as diagnostic markers for early-onset neonatal sepsis //Pediatrics.- 2001.- vol. 108, p. E12.

143. O'Brien L. A., Gupta A., Grinnell B. W. Activated protein C and sepsis //Front Biosci.- 2006.- vol. 11, p. 676-698.

144. Ortaldo J. R., Mason A., Rehberg E., et al. Effects of recombinant and hybrid recombinant human leukocyte interferons on cytotoxic activity of natural killer cells //J Biol Chem.- 1983.- vol. 258, p. 15011-15015.

145. Pinsky M.R., Vincent JL, Deviere J, et al. Serum cytokine levels in human septic shock: relation to multiple-system organ failure and mortality //Chest.-1993.-vol. 103, p. 565-575.

146. Plebani A., Proserpio A. R., Guarneri D., et al. B and T lymphocyte subsets in fetal and cord blood: age-related modulation of CDlc expression //Biol Neonate.-1993.-vol. 63, p. 1-7.

147. Raes M., Alliet P., Gillis P., et al. Lymphocyte subpopulations in healthy newborn infants: comparison of cord blood values with values five days after birth// J Pediatr.- 1993.- vol. 123, p. 465-467.

148. Riabichenko E.V., Bondarenko V.M., Vetkova L.G. Cytokine-stimulating activity of lipopolysaccharide of gram-negative bacteria and its role in antitumor immunity. // Zh Mikrobiol Epidemiol Immunobiol.- 2005.- vol. p. 76-81.

149. Ridge J. P., Fuchs E. J., Matzinger P. Neonatal tolerance revisited: turning on newborn T cells with dendritic cells //Science.- 1996.- vol. 271, p. 1723-1726.

150. Rizos D., Protonotariou E., Malamitsi-Puchner A., et al. Cytokine concentrations during the first days of life //Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol.-2007.- vol. 131, p. 32-35.

151. Roman G.J., Femandes F., Velasco F., Rojas R., Roldan M.R., Torres A. Serum TNF levels in neonatal sepsis and septic shock // Acta Paediatr.- 1993.- vol. 82, p. 352-354.

152. Sanchez-Mejorada G., Rosales C. Signal transduction by immunoglobulin Fc receptors //J Leukoc Biol.- 1998.- vol. 63, p. 521-533.

153. Santana C., Guindeo M. C., Gonzalez G., et al. Cord blood levels of cytokines as predictors of early neonatal sepsis //Acta Paediatr.- 2001.- vol. 90, p. 11761181.

154. Schelonka R. L., Infante A. J. Neonatal immunology //Semin Perinatol.- 1998.-vol. 22, p. 2-14.

155. Schultz C., Rott C., Temming P., et al. Enhanced interleukin-6 and interleukin-8 synthesis in term and preterm infants //Pediatr Res.- 2002.- vol. 51, p. 317-322.

156. Scumpia P. O., Moldawer L. L. Biology of interleukin-10 and its regulatory roles in sepsis syndromes //Crit Care Med.- 2005.- vol. 33, p. S468-471.

157. Series I. M., Pichette J., Carrier C., et al. Quantitative analysis of T and B cell subsets in healthy and sick premature infants //Early Hum Dev.- 1991.- vol. 26, p. 143-154.

158. Shanks N., Windle R. J., Perks P. A., et al. Early-life exposure to endotoxin alters hypothalamic-pituitary-adrenal function and predisposition to inflammation// Proc Natl Acad Sci U S A.- 2000.- vol. 97, p. 5645-5650.

159. Simms H. H., DAmico R. Lipopolysaccharide induces intracytoplasmic migration of the polymorphonuclear leukocyte CD lib/CD 18 receptor //Shock.-1995.- vol. 3,p. 196-203.

160. Smith K. A. Interleukin 2 //Annu Rev Immunol.- 1984,- vol. 2, p. 319-333.

161. Smith K. A., Cantrell D. A. Interleukin 2 regulates its own receptors //Proc Natl Acad Sci U S A.- 1985.- vol. 82, p. 864-868.

162. Smulian J. C., Vintzileos A. M., Lai Y. L., et al. Maternal chorioamnionitis and umbilical vein interleukin-6 levels for identifying early neonatal sepsis //J Matern Fetal Med.- 1999.- vol. 8, p. 88-94.

163. Song M., Kellum J. A. Interleukin-6 //Crit Care Med.- 2005,- vol. 33, p. 463465.

164. Somasse T., Larenas P. V., Davis K. A., et al. Differentiation and stability of T helper 1 and 2 cells derived from naive human neonatal CD4+ T cells, analyzed at the single-cell level //J Exp Med.- 1996.- vol. 184, p. 473-483.

165. Stoll B.J. The global impact of neonatal infection. // Clinics in Perinatol-ogy. Ed. by Weisman L.E. 1997. - V.24 (1). - P.l-21. //Clinics in Perinatology. Ed. by Weisman L.E.- 1997.- vol. 24, p. 1-21.

166. Stoll B.J. Holman R.C., Schuchat A. Decline in Sepsis-associated Neonatal and Infant Deaths in the United States, 1979 Through 1994 //Pediatrics.- 1998.- vol. 102, p. 18.

167. Sun Q., Burton R. L., Pollok K. E., et al. CD4(+) Epstein-Barr virus-specific cytotoxic T-lymphocytes from human umbilical cord blood //Cell Immunol.-1999.-vol. 195, p. 81-88.

168. Taetle R. The role of transferrin receptors in hemopoietic cell growth //Exp Hematol.- 1990.- vol. 18, p. 360-365.

169. Tangye S.G., Ferguson A., Avery D.T., Ma C.S., Hodgkin P.D. Isotype switching by human B cells is division-associated and regulated by cytokines.// J Immunol. 2002; vol. 69(8): p.4298-306.

170. Taniguchi T., Koido Y., Aiboshi J., et al. Change in the ratio of interleukin-6 to interleukin-10 predicts a poor outcome in patients with systemic inflammatory response syndrome //Crit Care Med.- 1999.- vol. 27, p. 1262-1264.

171. Tempero R. M., Hannibal M., Finn L. S., et al. Lymphocytopenia in children with lymphatic malformation //Arch Otolaryngol Head Neck Surg.- 2006.- vol. 132, p. 93-97.

172. Tomsic Matic M., Derganc M., Wraber B., et al. Interleukin-6 (IL-6) and soluble receptors for interleukin-2 (sIL-2R) in the diagnosis of early severe infection in the critically ill newborns //Pflugers Arch.- 2000.- vol. 440, p. R75-77.

173. Van Parijs L., Ibraghimov A., Abbas A. K. The roles of costimulation and Fas in T cell apoptosis and peripheral tolerance //Immunity.- 1996.- vol. 4, p. 321-328.

174. Venet F., Bohe J., Debard A. L., et al. Both percentage of gammadelta T lymphocytes and CD3 expression are reduced during septic shock //Crit Care Med.- 2005.- vol. 33, p. 2836-2840.

175. Verboon-Maciolek M. A., Thijsen S. F., Hemels M. A., et al. Inflammatory mediators for the diagnosis and treatment of sepsis in early infancy //Pediatr Res.-2006.- vol. 59, p. 457-461.

176. Vincent J. L., Opal S., Torres A., et al. The PIRO concept: I is for infection// Crit Care.- 2003.- vol. 7, p. 252-255.

177. Vincent J. L., Wendon J., Groeneveld J., et al. The PIRO concept: O is for organ dysfunction //Crit Care.- 2003.- vol. 7, p. 260-264.

178. Wakefield C. II., Carey P. D., Foulds S., et al. Changes in major histocompatibility complex class II expression in monocytes and T cells of patients developing infection after surgery //Br J Surg.- 1993.- vol. 80, p. 205-209.

179. Watanabe N. Tumor necrosis factor alpha (TNFalpha) //Nippon Rinsho.- 2005.-vol. 63 Suppl 8, p. 83-85.

180. Weinschenk N. P., Farina A., Bianchi D. W. Premature infants respond to early-onset and late-onset sepsis with leukocyte activation //J Pediatr.- 2000.- vol. 137, p. 345-350.

181. Weirich E., Rabin R. L., Maldonado Y., et al. Neutrophil CD1 lb expression as a diagnostic marker for early-onset neonatal infection //J Pediatr.- 1998.- vol. 132, p. 445-451.

182. Woith W., Nusslein I., Antoni C., et al. A soluble form of the human transferrin receptor is released by activated lymphocytes in vitro //Clin Exp Immunol.- 1993.-vol. 92, p. 537-542.

183. Yang Y., Wilson J. M. CD40 ligand-dependent T cell activation: requirement of B7-CD28 signaling through CD40 //Science.- 1996.- vol. 273, p. 1862-1864.

184. Yoon B. H., Romero R., Kim K. S., et al. A systemic fetal inflammatory response and the development of bronchopulmonary dysplasia //Am J Obstet Gynecol.- 1999.-vol. 181, p. 773-779.

185. Zeher M., Paloczi K., Szegedi G. Activation antigens in patients with Sjogren's syndrome //Haematologia (Budap)- 1990.- vol. 23, p. 193-197.0