Автореферат и диссертация по медицине (14.03.02) на тему:Актуальные аспекты патоморфологической диагностики опухолей семейства саркомы Юинга

ДИССЕРТАЦИЯ
Актуальные аспекты патоморфологической диагностики опухолей семейства саркомы Юинга - диссертация, тема по медицине
АВТОРЕФЕРАТ
Актуальные аспекты патоморфологической диагностики опухолей семейства саркомы Юинга - тема автореферата по медицине
Буланов, Дмитрий Владимирович Волгоград 2011 г.
Ученая степень
кандидата медицинских наук
ВАК РФ
14.03.02
 
 

Автореферат диссертации по медицине на тему Актуальные аспекты патоморфологической диагностики опухолей семейства саркомы Юинга

Буланов Дмитрий Владимирович

АКТУАЛЬНЫЕ АСПЕКТЫ ПАТОМОРФОЛОГИЧЕСКОЙ ДИАГНОСТИКИ ОПУХОЛЕЙ СЕМЕЙСТВА САРКОМЫ ЮИНГА

14.03.02 - Патологическая анатомия

Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата медицинских наук

Волгоград-2011

2 5 АВГ 2011

4852288

Работа выполнена в Государственном образовательном учреждении высшего профессионального образования «Волгоградский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации и Государственном учреждении здравоохранения «Московская городская онкологическая больница» № 62.

Научный руководитель:

доктор медицинских наук, доцент Смирнов Алексей Владимирович Официальные оппоненты:

доктор медицинских наук, профессор Туманова Елена Леонидовна доктор медицинских наук, профессор Даниленко Виталий Иванович

Ведущая организация:

Учреждение Российской академии медицинских наук НИИ морфологии человека РАМН

Защита состоится « 8 » сентября 2011 года в 10 часов на заседании Диссертационного совета (Д 208.008.01) Государственного образовательного учреждения высшего профессионального образования «Волгоградский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации по адресу: 400131, г. Волгоград, пл. Павших Борцов, 1.

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке Государственного образовательного учреждения высшего профессионального образования «Волгоградский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации.

Автореферат разослан «_5 » августа 2011 года Ученый секретарь диссертационного совета

доктор медицинских наук --Н.В.Григорьева

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность проблемы. В последние годы на основании данных классической морфологии и результатов, полученных с помощью новых методов исследования (культура клеток, молекулярная генетика, иммуногистохимия), выделена группа низкодифференцированных мелкокруглоклеточных опухолей нейроэктодермальной природы, развивающихся в мягких тканях и костях у детей и лиц молодого возраста [Hancock J.D. et al., 2008; Kavalar R. et al., 2009]. С конца 1990-х гг. в мировой литературе стал общепринятым термин «опухоли семейства саркомы Юинга» (ОССЮ), объединяющий классическую саркому Юинга кости (КСЮ), её экстраскелетный аналог - периферическую примитивную нейроэктодермальную опухоль мягких тканей (pPNET) и злокачественную мелкокруглоклеточную опухоль торакопульмональной зоны (опухоль Аскина) [Иванова Н.М., 2008]. Прогресс в понимании гистогенеза опухолей семейства саркомы Юинга стал возможным с развитием современных методов иммуногистохимической и молекулярно-биологической диагностики [Folpe A.L. et al., 2005].

На сегодня количество иммуногистохимических биомаркеров, рассматриваемых в качестве прогностически значимых, увеличивается лавинообразно, отражая достижения и находки в области изучения механизмов регуляции пролиферации и апоптоза опухолевых клеток [Кушлинский Н.Е. и др., 2002; Трапезников Н.Н. и др., 2001]. Ввиду обилия сведений об этих факторах и в связи с наличием расхождений мнений авторов об их прогностической ценности, выбор тактики лечения, основанный на биологических характеристиках опухоли, остается затруднительным [Rodriguez-Galindo С. et al., 2007]. Проблема имеет весьма существенное практическое значение для осуществления дифференциальной диагностики в ряду формально похожих злокачественных мелкокруглоклеточных опухолей костей и мягких тканей [Bacci G. et al., 2007]. Опухоли семейства саркомы Юинга имеют нейроэктодермальный гистогенез, носят, как правило, первично-диссеминированный характер поражения и по-разному проявляются клинически [Krasin M.J. et al., 2007]. Серьезные дифференциально диагностические трудности при исследовании группы злокачественных мелкокруглоклеточных опухолей мягких тканей и костей, а также неопределенность в вопросах номенклатуры и классификации данных новообразований явились причиной выделения этих вопросов в современной морфологической литературе в особую самостоятельную проблему [Berghuis D. et al., 2009].

В связи с указанными аспектами проблемы нами сформулированы цель и

задачи исследования.

Цель исследования — определить морфологические, иммуногистохимические и молекулярно-биологические свойства опухолей семейства саркомы Юинга, оптимизировать критерии их дифференциальной диагностики с оценкой прогностической значимости в клинико-морфологическом сопоставлении.

Задачи исследования:

1. Охарактеризовать патоморфологические особенности опухолей семейства саркомы Юинга с использованием иммуногистохимического метода исследования.

2. Определить молекулярно-биологические особенности опухолей семейства саркомы Юинга с использованием полимеразной цепной реакции.

3. Провести сравнительную качественную и количественную оценку иммуноморфологических характеристик опухолей семейства саркомы Юинга с учетом возрастных и тендерных признаков.

4. Оптимизировать алгоритмы дифференциальной морфологической диагностики опухолей семейства саркомы Юинга.

5. Сопоставить результаты экспрессии биомаркеров, контролирующих процессы пролиферации и апоптоза, с вариантами клинического течения опухолей семейства саркомы Юинга для определения индивидуального прогноза.

Научная новизна. Впервые проведено комплексное сравнительное исследование морфологических, иммуногистохимических, молекулярно-биологических характеристик и ряда показателей клинического течения опухолей семейства саркомы Юинга у пациентов в возрасте старше 20 лет.

Проведенная количественная оценка пролиферативной активности и апоптоза в опухолях семейства саркомы Юинга по данным иммуногистохимического исследования продемонстрировала прогностическую значимость ряда признаков при клинико-морфологическом сопоставлении.

Впервые при сравнительном морфометрическом изучении выявлены иммуногистохимические особенности опухолей семейства саркомы Юинга с учетом различия возрастных и тендерных факторов.

Научно-практическая значимость. Полученные в работе результаты существенно расширяют имеющиеся представления об опухолях семейства саркомы Юинга у пациентов в возрасте старше 20 лет. В работе обоснованы иммуногистохимические прогностические критерии клинического течения

злокачественных опухолей семейства саркомы Юинга (ОССЮ). Оптимизирован алгоритм дифференциальной диагностики ОССЮ в ряду злокачественных мелкокруглоклеточных опухолей костей и мягких тканей с использованием высокоинформативных иммуногистохимических и молекулярно-биологических методов, в том числе с количественной оценкой уровней пролиферативной активности и апоптоза.

Положения, выносимые на защиту:

1. Идентичные по патоморфологическим, иммуногистохимическим и молекулярно-биологическим свойствам опухоли семейства саркомы Юинга у пациентов старше 20 лет имеют количественные различия при иммуногистохимическом исследовании экспрессии биомаркеров, характеризующих нейроэктодермальную дифференцировку, контролирующих процессы апоптоза и пролиферации с учетом различий возрастных и тендерных факторов.

2. При сравнительной оценке иммуногистохимических характеристик опухолей семейства саркомы Юинга в различных возрастных и тендерных группах установлено, что наиболее значимыми в прогностическом плане является исследование экспрессии биомаркеров: Б-ЮО, хромогранин А, синаптофизин, Ьах, р53 и Ьс1-2. Частота обнаружения экспрессии и удельное количество иммунопозитивных клеток в опухолях семейства саркомы Юинга для ряда иммуногистохимических биомаркеров являются схожими прогностическими критериями, коррелирующими с рецидивированием опухолей и их метастазированием.

3. Для дифференциальной диагностики опухолей семейства саркомы Юинга внутри гетерогенной группы злокачественных мелкокруглоклеточных опухолей костей и мягких тканей необходимо использование комплекса иммуноморфологических и молекулярно-биологических методов.

Апробация работы и публикации. Основные положения диссертации изложены на научно-практической конференции с международным участием «Актуальные проблемы костной патологии у детей и взрослых» (Москва, 2008), 66-й открытой научно-практической конференции молодых ученых и студентов с международным участием «Актуальные проблемы экспериментальной и клинической медицины» (Волгоград, 2008), Всероссийской научной конференции посвященной 150-летию кафедры патологической анатомии Военно-медицинской академии им. С.М. Кирова «Современные проблемы общей и частной патологической анатомии» (Санкт-Петербург, 2009), 67-й открытой научно-практической конференции молодых ученых и студентов с

международным участием «Актуальные проблемы экспериментальной и клинической медицины» (Волгоград, 2009), 68-й открытой научно-практической конференции молодых ученых и студентов с международным участием «Актуальные проблемы экспериментальной и клинической медицины», посвященной 75-летию ВолГМУ (Волгоград, 2010).

Апробация работы осуществлена на совместном заседании кафедр патологической анатомии, гистологии, цитологии и эмбриологии, анатомии человека, судебной медицины Государственного образовательного учреждения высшего профессионального образования «Волгоградский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации.

По теме диссертации опубликовано 11 работ, в том числе - 4 статьи - в журналах, из перечня рекомендованных Высшей аттестационной комиссией Министерства образования и науки Российской Федерации для публикации результатов кандидатских диссертаций.

Реализация и внедрение результатов исследования.

Работа выполнена на базе патологоанатомического отделения Московской городской онкологической больницы №62 (главный врач, д.м.н., профессор А.Н. Махсон), кафедры патологической анатомии (заведующий кафедрой, д.м.н., доцент A.B. Смирнов) Государственного образовательного учреждения высшего профессионального образования «Волгоградский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации (ректор - академик РАМН В.И. Петров).

Полученные данные о морфологических, иммуногистохимических, молекулярно-биологических характеристиках саркомы Юинга, алгоритмах дифференциальной диагностики используются в работе

патологоанатомического отделения ГУЗ «Московской городской онкологической больницы №62, г. Москва», ГУЗ «Волгоградское областное патологоанатомическое бюро, г. Волгоград», патологоанатомического отделения ГУЗ «Волгоградский областной клинический онкологический диспансер №1». Результаты данного исследования внедрены в учебный процесс на кафедре патологической анатомии Государственного образовательного учереждения высшего профессионального образования «Волгоградский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации, научно-исследовательскую работу лаборатории патоморфологии ФГУ "Главный

военный клинический госпиталь имени академика H.H. Бурденко Министерства обороны Российской Федерации" (начальник госпиталя - д.м.н., проф. И.Б. Максимов).

Структура и объем диссертации. Диссертация изложена на 151 страницах печатного текста, состоит из оглавления, введения, обзора литературы, главы материала и методов исследования, результатов собственных исследований, изложенных в 7-ми подглавах, обсуждения полученных результатов, выводов, практических рекомендаций и указателя литературы. Иллюстрации представлены 9 таблицами, 34 рисунками, включающие 20 микрофотографий. Список литературы включает 303 источника, в том числе - 33 отечественных и 270 зарубежных.

МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

Исследования проводили на биопсийном и операционном материале патологоанатомического отделения Московской городской онкологической больницы № 62, полученном от 84 больных, находившихся на лечении в Московской городской онкологической больнице № 62 с 1998 по 2010 гг. Исследованный материал был разделен на 2 группы:

1 группа (основная) - биопсийный материал, полученный от 35 больных с морфологически верифицированным диагнозом ОССЮ (24 мужчины, 11 женщин, медиана возраста составила 26,8 лет. Больные с ОССЮ (п=35) были разделены на 1-ю возрастную группу, которую составили пациенты от 20 до 30 лет (п=24), и 2-ю возрастную группу - пациенты старше 30 лет (п=11). В зависимости от наличия признаков прогрессирования заболевания (наличие отдаленных метастазов, продолженный рост опухоли, местный рецидив) данная группа больных была разделена на следующие подгруппы: п - число пациентов, при отсутствие метастазов (период наблюдения составил от 2 до 12 лет) п=17 и наличии метастазов п=18, ремиссия заболевания п=18, прогрессирование заболевания п=17. В исследуемую группу вошли: 25 случаев первичной саркомы Юинга кости, 8 случаев периферической примитивной нейроэктодермальной опухоли (pPNET) мягких тканей, включая забрюшинное пространство и внутриорганную локализацию (яичники), 2 случая злокачественной мелкокруглоклеточной опухоли торакопульмональной зоны (опухоль Аскина) - с локализацией опухоли в переднем средостении.

В локализациях представленных забрюшинным пространством, внутриорганной локализацией, мягкими тканями и средостении опухоль имела строение идентичное саркоме Юинга при локализации в костях, поэтому,

учитывая сходство морфоиммуиофенотипа, генетических нарушений в опухолевых клетках, и с позиций современной классификаций ВОЗ, эти случаи были нами учтены в работе и включены в исследуемую группу.

2 группа (контрольная) - биопсийный материал, полученный от 49 больных с морфологически верифицированными диагнозами злокачественных опухолей костей и мягких тканей, имеющих сходный с ОССЮ морфологическую картину и иммунофенотип (32 мужчин, 17 женщин, медиана возраста составила 32,6 лет). Локализация опухолей пациентов группы 1: длинные трубчатые кости (п=14), кости таза (п=7), крестец (п=20), лопатка (п=1), забрюшинное пространство (п=2), мягкие ткани различной локализации (п=8), средостение (п=1). Распределение контрольной группы по гистологическим вариантам опухоли представлено в табл.1.

Длительность наблюдения за больными составила от 2-х до 12 лет (в среднем — 7 лет).

Таблица 1

Распределение пациентов контрольной группы по видам опухолей

Нозологические формы Абс. %

Синовиальная саркома 7 14,2

Круглоклеточная липосаркома 8 16,3

Мелкоклеточная остеосаркома 5 10,2

Мезенхимальная хондросаркома 6 12,3

Нейробластома 6 12,3

Низкодифференцированный нейроэндокринный рак 5 10,2

Неходжкинская лимфома 5 10,2

Рабдомиосаркома 7 14,2

Методы исследования

Проведено изучение архивных материалов (истории болезни) для проведения анализа связей между иммунофенотипом опухоли и клиническими данными о прогрессировании заболевания (продолженный рост опухоли, рецидив) и наличии отдаленных метастазов.

Гематологические и биохимические исследование количество лимфоцитов в периферической крови и активность лактатдегидрогеназы (ЛДГ) - по данным из клинической истории болезни больных (общий и биохимический анализ крови).

Морфологическое исследование фрагментов ткани опухоли, фиксированных забуференным формалином, включало в себя

микроскопическое исследование серийных срезов окрашенных рутинными методами (гематоксилин-эозин) с применением в части случаев декальцинации.

Для гистологического исследования биопсийного материала использовали традиционный метод парафиновой заливки (не менее 8 образцов опухоли в каждом случае, взятых, в том числе на границе с окружающими тканями, а также из краев резекции). Гистологические срезы толщиной 3-4 мкм окрашивали гематоксилином и эозином с применением дополнительных методик окрашивания опухолевых клеток (окрашивание по Гимза) и гистохимических методов (ШИК или PAS - реакция) [Llombart-Bosch A. et al., 2004].

Иммуногистохимическое исследование осуществляли на срезах с парафиновых блоков толщиной 3-4 мкм авидин-биотин-пероксидазным методом по стандартной методике [Kumar G.L. et al., 2009], с использованием первичных антител («Dako», Novocastra™): bax, bcl-2, PCNA, Ki-67, p53, CD99, CD45, CD20, EMA, pan-CK, Vimentin, Desmin, Myogenin, Osteonectin, MyoDl, Synaptophysin, Neuron Specific Enolase, Chromogranin A, S-100 Protein. В качестве вторичных антител использовали биотинилированные антитела к иммуноглобулинам мыши и кролика (EnVision, «Dako», Novocastra™).

Оценивали частоту обнаружения исследуемых иммуногистохимических маркеров в ткани опухоли, рассчитанную как величину, выраженную в процентах и характеризующую количество случаев больных с ОССЮ, в образцах опухолевой ткани которых обнаружены иммунопозитивные клетки с использованием формулы u=nVn*100 (и - частота обнаружения иммуногистохимического маркера, п1 - количество случаев больных с ОССЮ, в образцах опухолевой ткани которых обнаружены иммунопозитивные клетки для исследуемого иммуногистохимического маркера, п - общее количество больных исследуемой группы).

Оценивали удельное количество позитивно окрашенных опухолевых клеток, экспрессирующих следующие маркеры клеточной пролиферации и апоптоза: bax, bcl-2, PCNA, Ki-67, p53.

Удельное количество позитивно окрашенных клеток оценивали в 10 полях зрения (х400, минимум в 1000 клетках препарата) стандартизированными методами морфометрии в иммуногистохимии [Satoh К. et al., 2003; Sun Y. et al., 2006; Srivastava A. et al., 2009; Hatanaka K. et al., 2010] с помощью системы анализа изображений, программы «Видеотест-Морфо-4» (Россия, ГУ «Волгоградский медицинский научный центр»). Микрофотосъемку гистологических препаратов проводили на микроскопе «Axio Scope AI», Carl Zeiss™ (Германия) с использованием цифровой фотокамеры «Canon PowerShot», программного обеспечения AxioVision LE, Carl Zeiss™ (Германия).

Молекулярно-генетическое исследование. Для выявления трех наиболее характерных для опухолей семейства саркомы Юинга химерных онкогенов (EWS/FLI1 typel, EWS/FLI1 type2, EWS/ERG) использовался метод полимеразной цепной реакции в реальном времени (Real Time PCR). Материалом для молекулярного исследования служила тотальная РНК, выделенная из биопсийного материала больных саркомой Юинга (п=30) после фиксации забуференным формалином и парафиновой заливки.

Выделение тотальной РНК из парафиновых блоков. Выделение тотальной РНК производили из 2-3 микротомных срезов толщиной 10 микрон с парафиновых блоков, в зоне, содержащей опухолевый материал, после предварительного просмотра гистологических препаратов, окрашенных гематоксилин-эозином.

На первом этапе проводили депарафинизацию материала о-ксилолом и поэтапная регидратация этанолом в концентрации от 70 до 95 %. После инкубации регидратированной ткани в буфере ТЕ в присутствии протеиназы К (200 мкг/мкл) в течение 12 часов (ночи) в термостате при 65° С проводили фенол-хлороформную экстракцию РНК по методике Chomchinsky. После осаждения равным объемом изопропилового спирта в присутствии 0,1 объема 2М раствора ацетата Na (pH 2,5) и инкубации при -70°С в течение 2 ч, осадок РНК дважды промывали 80 % этанолом, высушивали и растворяли в буфере ТЕ. Оценку концентрации РНК проводили на спектрофотометре (GenesyslO, USA).

Реакция обратной транскрипции. К раствору РНК (1мкг) добавляли 2мкл гексамеров (концентрация 110 пМ), проводили отжиг в течение 30 с при температуре 95°С. Проводили реакцию обратной транскрипции в растворе, содержащем 5х буфер (75 мМ KCl, 50мМ Трис, ЮмМ DTT, ЗмМ MgCl2; Fermentas, Латвия), 1мМ каждого из четырех дезоксирибонуклеотидов (dNTP), 20 ЕД активности ингибитора РНКаз (Ribolock, Fermentas, Латвия), 100 ЕД активности обратной транскриптазы M-MLV (Fermentas, Латвия) в течение 1 ч при 137°С. Объем реакционной смеси составлял 20 кл.

Полимеразная цепная реакция в реальном времени для выявления химерных онкогенов EWS/FLI typel, EWS/FLll type2, EWS/ERG. Выявление экспрессии химерных онкогенов EWS/FLll typel, EWS/FLI 1 type2, проводили методом Real-time ПЦР по технологии TaqMan, EWS/ERG - Real-time ПЦР в буфере с интеркалирующим красителем SYBR Green на амплификаторе CFX 96 (BioRad). В качестве контрольного гена для подтверждения успешного выделения РНК использовали ген ABL.

Для проведения Real-time ПЦР в лаборатории молекулярной диагностики Московской городской онкологической больницы № 62 использовали

и

амплификатор CFX 96 (BioRad). Для каждого образца ПЦР-реакция проводилась в двух повторах. Объем реакционной смеси составлял 10 мкл. В состав смеси входили 1 мкл кДНК, полученной в реакции обратной транскрипции, а также IX буфер (Синтол), 100 пМ каждого праймера, 50 нМ флюоресцентного гидролизуемого зонда для генов EWS/FLU typel и EWS/FLI1 type2, 2,5 мМ MgCl2, 1 мМ dNTP, 0,2 ед. Taq-ДНК-полимеразы. В реакционную смесь для определения экспрессии гена EWS/ERG входили 1 мкл кДНК, 1х буфер, содержащий интеркапирующий краситель SYBR Green (Синтол), 100 пМ каждого праймера, 2,5 мМ MgCl2, 1 мМ dNTP, 0,2 ед. Taq-ДНК-полимеразы.

Температурные условия амплификации при Real-time ПЦР для химерных онкогенов EWS/FLI1 typel, EWS/FLI1 type2 составляли: 95° - 5 мин, затем 40 циклов: 95° - 20 с, 60° - 20 с, 72° - 20 с; для EWS/ERG - 95° - 5 мин, затем 40 циклов: 95° - 20 с, 56°- 20 с, 72° - 20 с. Фрагменты, полученные в результате успешной амплификации, выборочно проверялись на специфичность в реакции прямого секвенирования.

Статистическая обработка материала. В препаратах опухоли с помощью системы «Видеотест-Морфо-4» (Россия) оценивали выраженность экспрессии различных маркеров, определяли удельное количество позитивно окрашенных клеток. Статистическую обработку проводили на ПК с использованием программ Excel Microsoft Office ХР и STATISTICA 6.0 (Statsoft, USA). Анализ параметров при нормальном распределении значений проводили с помощью критерия Стьюдента, анализ непараметрических количественных признаков - с помощью критерия Манна-Уитни. Для сравнения качественных признаков использовали критерии %2 и Фишера. Значимыми считали различия, если вероятность ошибки р была меньше 0,05.

РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ

Морфологические и иммунофенотипические особенности опухолей семейства саркомы Юннга. Макроскопически это мягкая многоузловая, серовато-белого цвета на разрезе опухоль, часто с очагами некроза и кровоизлияний. Цитологически первичная саркома Юинга кости характеризуется мелкими округлыми клетками. Ядра, преимущественно округлой, иногда овальной формы, занимают почти всю клетку. В ядре точечный, равномерно распределенный хроматин, в отдельных ядрах различимы гиперхромные нуклеолы. Гистологическое исследование показало, что саркома Юинга кости представлена в виде бесструктурных агрегатов мелких опухолевых клеток, разделенных фиброзными прослойками. Клетки имеют правильную форму, содержат округлые или овальные ядра. Заключенная

в клеточных ядрах дисперсия хроматина имеет характерный «зеркальный» вид. В некоторых ядрах видны фигуры митоза. PAS реакция обычно положительна (в 80 % случаев) и указывает на присутствие гликогена [Llombart-Bosch A. et al., 2004]. В исследуемой группе первичной саркомы Юинга кости преобладающим был классический гистологический вариант строения опухоли (20 наблюдений, в 3 - установлен атипичный вариант, в 2 - «эндотелиальный» вариант гистологического строения). Волокнистый каркас в опухолевой ткани развит очень незначительно, аргирофильные волокна часто отсутствуют или выражены только вокруг кровеносных сосудов, иногда соединительнотканные прослойки делят солидную массу опухоли на неравномерные дольки, очень редко ретикулярная ткань окружает каждую клетку, как при лимфоме [Lucas D. et al., 2001].

В нашем исследовании периферическая примитивная нейроэктодермальная опухоль (pPNET) локализовалась преимущественно в мягких тканях и не сопровождалась поражением кости (8-наблюдений, включая забрюшинное пространство и внутриорганную локализацию (яичники)). Макроскопически — это мягкая узлового строения опухоль, серовато-белого цвета на разрезе. Микроскопическая картина, как и при костной локализации саркомы Юинга, характеризуется выраженным дольчатым рисунком, образованным солидным скоплениями округлых или овальных мономорфных клеток. Ядра отчетливы, содержат нежно дисперсный хроматин; цитоплазма скудная, плохо очерченная. Митотические фигуры редки. Коллагеновые и ретикулярные волокна определяются в фиброзных перегородках, разделяющих опухоль на дольки [Robert С. et al., 2010]. В опухолевых клетках содержится гликоген, больше в периферических отделах опухоли, обнаруживаемый при PAS-реакции.

При морфологическом исследовании опухоль Аскина (2 случая в исследуемой группе больных, с локализацией опухоли в переднем средостении) характеризуется преимущественной локализацией в грудной стенке, париетальной или висцеральной плевре, перикарде, диафрагме или периферических отделах легочной паренхимы. Новообразование может сопровождаться болевым синдромом. Поражение ребер, как правило, носит эрозивный характер. Макроскопически опухоль представляет собой узел дольчатого вида, который чаще всего исходит из мягких тканей грудной стенки, как правило, связи опухоли с нервными стволами не определяется. Микроскопически опухоль представлена мономорфными округлыми или овальными клетками, основную массу которых занимают ядра. Митотическая активность умеренная. Клетки PAS- и пирониннегативны [Krassas A. et al.,

2011]. Они располагаются компактными гнездами, полями, разделенными прослойками соединительной ткани с сосудами.

Различные вариации морфологической картины в клетках саркомы Юинга, и внескелетных вариантов данного заболевания, являются связующим звеном в установлении родства между типичным фенотипом саркомы Юинга и рядом нозологических форм: опухолью Аскина, периферической примитивной нейроэктодермальной опухолью. Проведенные ранее в мировой литературе исследования показали, что опухоль Аскина, периферическая примитивная нейроэктодермальная опухоль (pPNET - peripheral primitive neuroectodermal tumor), представляются биологически схожими с первичной саркомой Юинга кости [Bernstein М. et al., 2006]. Так, они схожи по цитогенетическим, биохимическим и онкогенетическим свойствам. Дальнейшие исследования позволили выявить дополнительные особенности опухолей семейства саркомы Юинга, заключающиеся в том, что опухолевые клетки экспрессируют маркеры нейроэктодермальной и мезенхимальной дифференцировки.

Исследования показали, что патоморфологические особенности ОССЮ, выявляемые при гистологическом исследовании, являются недостаточными для установления окончательного диагноза [Ushigome U. et al., 2002]. Наибольшие сложности возникают при проведении дифференциальной диагностики с другими мелкоклеточными злокачественными опухолями (нейробластомой, рабдомиосаркомой, неходжкинской лимфомой и др.). У подростков и взрослых сходная патоморфологическая картина характерна для некоторых мягкотканных сарком, таких как рабдомиосаркома, синовиальная саркома, неходжкинская лимфома [Wagner L. et al., 2001].

Таким образом, данные классической морфологии свидетельствуют о значительной гетерогенности и фенотипическом сходстве злокачественных мелкокруглоклеточных опухолей костей и мягких тканей, что не позволяет без дополнительных современных методов исследования включающих в себя иммуногистохимический и молекулярно-биологический, достоверно провести дифференциальную диагностику этих опухолей с ОССЮ.

Иммуногистохимическое исследование показало, что маркер CD99 выявлялся у всех больных с ОССЮ в 100 % случаев, превышая средний уровень частоты выявления данного иммуногистохимического признака при всех других видах злокачественных мелкокруглоклетончых опухолей. Также во всех случаях ОССЮ была выявлена экспрессия виментина. Высокой была и частота обнаружения в ОССЮ нейронспецифической енолазы - в 70,4+4,8 % случаев, а также - синаптофизина: частота обнаружения данного маркера составила 65,7+13,8 %. Маркер S-100 был выявлен в 74,9+14,4 % случаев в ОССЮ, хотя несколько реже, чем при нейробластоме и круглоклеточной

липосаркоме, в связи с чем, частота обнаружения данного маркера в опухолях семейства саркомы Юинга не может являться основополагающей в иммунофенотипической дифференциальной диагностике ОССЮ [Меега Н. е1 а1., 2007]. Показано, что Б-100 протеин выявляется в отдельных, часто единичных, клетках, однако может обнаруживаться в группах клеток, формирующих компактные скопления.

Иммуногистохимический маркер СБ99 (клон 12Е7), который также может обозначаться в литературе как НВА71 или 013-антиген, экспрессировался во всех случаях ОССЮ исследуемой группы: соответствующие антитела «окрашивают» структуры клеточных мембран, включая цитоплазматические отростки клеток. Экспрессия нейроэндокринных иммуногистохимических маркеров, таких как синаптофизин, хромогранин А, нейрофиламенты, глиапьный фибриллярный кислый протеин, могут встречаться, по мнению отдельных авторов, лишь в единичных клетках [Си! Б. еС а1., 1999]. Есть мнение, что нейронспецифическая энолаза как диагностический маркер нейроэктодермальной дифференцировки клеточных элементов опухолей утрачивает в настоящее время свое значение (То1ре А. а]., 2005]. В нашем исследовании относительно редко были обнаружены в ОССЮ ПАН-цитокератины и Десмин - лишь в 5,1+2,2 и 10,4+4,8 % случаев. Другие иммуногистохимические маркеры - С045, остеонектин, мио01, миогенин и десмин в ОССЮ обнаружены не были.

По нашим данным, в целом в ОССЮ (первичная саркома Юинга кости, рРКЕТ, опухоль Аскина) наиболее частыми иммуногистохимическими дифференциально-диагностическими признаками являются одновременная коэкспрессия в 100 % случаев маркера С099, виментина, нейроэндокринных маркеров - нейронспецифической енолазы, Б-ЮО и синаптофизина.

Оценка гематологических и биохимических показателей выявила, что уровень активности ЛДГ у больных саркомой Юинга был несколько повышен (табл.2), но не отличался достоверно относительно референсных значений и составил в среднем 852,7+284,6 Ед/л, показатель лимфоцитоза также был в пределах нормативных величин - 39,8+9,3 %.

Таблица 2

Количество лимфоцитов, активность ЛДГ и иммуногистохимические

показатели у больных с ОССЮ (п=35)

Наименование показателей Значения показателей (Х+ш, %)

Лимфоциты, % 39,8+8,3

ЛДГ, Ед/л 852,7+284,6

Оценка удельного количества нммунопозитивных клеток для иммуногистохимических маркеров у всех больных составила для Б-100 — 10,7+2,9 %, хромогранина А - 6,5+1,3 %, синаптофизина - 54,9±5,9 %, нейронспецифической енолазы - 30,0+6,4 %. Оценка удельного количества нммунопозитивных клеток для вышеперечисленных маркеров показала, что наибольшим данный показатель был для маркеров Кл-67 и РСЫА, соответственно - 30,4+3,4 и 43,9+5,7 % (табл.3). Относительно низкий уровень удельного количества нммунопозитивных клеток был у больных с ОССЮ для маркера р53 - 14,7+3,9 %, значение данного показателя для маркера Ьс1-2 составило лишь 12,9+4,1 %. Самым низким в исследуемой группе ОССЮ был уровень экспрессии маркера Ьах - удельное количество позитивно окрашенных клеток составило лишь 6,9+2,5 %.

Таблица 3

Иммунофенотипическая характеристика ОССЮ, % (п=35)_

Биомаркеры Удельное количество нммунопозитивных клеток Частота обнаружения исследуемого биомаркера(% случаев)

Кл-67 30,4+3,4 100

РСЫА 43,9+5,7 100

р-53 14,7+3,9 62,1

Вс1-2 12,9+4,1 37,8

Вах 6,9+2,5 34,5

Б-ЮО 10,7+2,9 74,9

Хромогранин А 6,5+1,3 8,1

Синаптофизин 54,9+5,9 65,7

ШЕ 30,0+6,4 70,4

СБ99 100 100

Иммунофенотипическая характеристика ОССЮ в различных половозрастных группах больных. Сопоставление частоты обнаружения биомаркеров (% случаев) в зависимости от пола показало, что более высокие значения показателей обнаружены были у женщин. Так, если для Б-100 частота обнаружения у мужчин составила 9,6+3,7 % случаев, то у женщин значение данного показателя было более чем в 1,5 раза выше, составляя 15,0+5,1 %. Частота обнаружения хромогранина А была достоверно (р<0,05) выше у женщин, чем у мужчин, значения показателей составили, соответственно 10,8+2,6 и 5,4+1,1 % случаев. Примерно на треть было больше и значение

частоты обнаружения нейронспецифической-енолазы у женщин с ОССЮ -72,5+7,0 % случаев, тогда как у пациентов - мужчин этот показатель был достоверно (р<0,05) ниже - 50,5+5,8 %. Следует отметить, что достаточно полное иммуногистохимическое исследование клеток опухолей нейроэктодермального гистогенеза провел Cavazzana А.О. (1989, 1992), в его работах показано, что нейронспецифическая энолаза (NSE) положительна в 95% случаев, 2-микроглобулин - в 77%, синаптофизин - в 73%, S-100 протеин -в 67%. Эпитоп MIC2 гена (CD99) определяется в подавляющем большинстве случаев. Исследованиями Schmidt D. et al. (1991) показано, что присутствие нейрональных маркеров у больных с ОССЮ является неблагоприятным прогностическим фактором [Bacci G. et al., 2000]. У женщин выявлено достоверно более высокое удельное количество иммунопозитивных клеток, экспрессирующих белок р53 (21,7+1,8 %) в ОССЮ (р<0,05), тогда как у мужчин значение данного показателя составило 14,1+1,9 %. У мужчин удельное количество иммунопозитивных клеток, экспрессирующих белок bcl-2, обеспечивающий блокаду апоптоза, составило 13,7+2,5 %, что более чем в 3 раза превышает уровень соответствующего показателя у женщин 4,2+0,8. Уровень экспрессии фактора Ьах у мужчин (удельное количество позитивно окрашенных клеток) также был достоверно (р<0,05) выше такового у женщин, значения показателей составили, соответственно 8,5+1,0 и 5,0+1,1 %.

Сравнительная характеристика экспрессии иммуногистохимических биомаркеров показала, что у больных от 20 до 30 лет (1-я возрастная группа) частота обнаружения S-100 и хромогранина А составила соответственно 7,1+0,8 и 5,7+1,0 %, а у пациентов 2-ой возрастной группы значения этих показателей были достоверно выше (р<0,05), составляя, соответственно 17,0+3,6 и 7,5+1,8 %. Частота обнаружения синаптофизина у больных 2-ой возрастной группы составила 36,5+4,2 %, что было достоверно (р<0,05) выше соответствующего значения у пациентов до 30 лет - 27,1+3,9 %. Оценка возрастных отличий частоты выявления маркеров показала, что они также в первую очередь характерны для мутантного проапоптозного белка р53 и фактора, блокирующего апоптоз, bcl-2. Так, если фактор клеточной пролиферации Ki-67 и ядерный фактор PCNA обнаруживались у больных обеих возрастных групп, то маркер р53 достоверно (р<0,05) чаще был выявлен в 1-ой возрастной группе больных с ОССЮ (в 68,4 % случаев), в то время как во 2-ой возрастной группе больных (старше 30 лет) маркер р53 обнаруживался реже - у 50 % больных. Наиболее выраженным было отличие по частоте обнаружения маркера bcl-2, данный фактор апоптоза был выявлен у 70,0 % больных 2-ой возрастной группы и лишь у 21,1 % пациентов больных в возрасте до 30 лет. Частота обнаружения другого фактора апоптоза - Ьах была примерно на одном

уровне - его выявили у 36,8 % пациентов 1-ой возрастной группы и у 30 % больных 2-ой возрастной группы.

Резко выраженными были различия удельного количества иммунопозитивных клеток для маркера Ьс1-2 в сравниваемых возрастных группах. Так, если в 1-ой возрастной группе пациентов значение данного показателя составило лишь 2,9+1,8 %, то у больных с ОССЮ 2-ой возрастной группы, значение показателя удельного количества позитивно окрашенных клеток для этого маркера апоптоза было больше на порядок, составив 32,0+5,1 %. В последние годы по данным современной литературы экспрессия белков р53 и Ьс1-2 была исследована в различных злокачественных новообразованиях, установлено, что частота обнаружения маркера р53 в ОССЮ составила 66,6% (44 из 66 случаев) [Ка\-а1аг Я. й а1., 2009], что в целом совпадает с результатами нашего исследования, однако экспрессия белка Ьс1-2 была выявлена у 70,1 % больных (в 47 из 66 случаев), что отличается от полученными нами результатов (37,8%). Скорее всего, данные различия объясняются неодинаковыми выборками больных по количеству, возрастному составу и свидетельствуют о большей воспроизводимости результатов при изучении экспрессии проапоптозного мутантного белка р53 в исследуемой группе опухолей.

Сравнительная характеристика возрастных особенностей показателей периферической крови (уровень лимфоцитоза абс %, уровни лактатдегидрогеназы Ед/л) в исследуемой группе больных с ОССЮ.

Анализ уровня лимфоцитоза периферической крови показал его более высокое значение у пациентов с ОССЮ до 30 лет —42,0+5,1 %. У больных 2- ой возрастной группы значение этого показателя составило 33,0+4,7 %, хотя достоверных отличий при этом выявлено не было. Установлена была также более высокая активность ЛДГ у молодых пациентов (1-ая возрастная группа) -значение данного показателя составило 900,7+108,2 Ед/л, тогда как во 2-ой возрастной группе активность фермента была достоверно (р<0,05) меньше, составив 734,2+65,0 Ед/л.

Оценка исследуемых показателей у больных с прогрессированием (продолженный рост опухоли, местный рецидив) и без прогрессирования заболевания. Сопоставление показателей пациентов с прогрессированием саркомы Юинга (п=18) и у больных, у которых наблюдалась ремиссия (п=17), показало, что несколько чаще прогрессия опухоли наблюдалась у женщин, большей была вероятность неблагоприятного течения заболевания у пациентов 2-ой возрастной группы.

Сравнительная оценка экспрессии иммуногистохимических маркеров при различном течении заболевания показала некоторые отличия, наиболее выраженным из которых был уровень удельного количества иммунопозитивных клеток для маркера 8-100 (табл.4). Так, у пациентов с относительно благоприятным течением заболевания значение этого показателя составило 16,3+4,4 %, тогда как у больных с прогрессированием заболевания уровень этого показателя в 3 раза ниже (р<0,05), составив 5,0+0,8 %.

Таблица 4

Иммунофенотипическая характеристика ОССЮ больных с ремиссией или прогрессированием заболевания, %__

Биомаркеры Удельное количество Частота обнаружения

иммунопозитивных исследуемого биомаркера

клеток

Ремиссия Прогрессирование Ремиссия Прогрессирование

(п=18) (п=17) (п=18) (п=17)

Кд-67 29,0+3,8 31,8+2,5 100 100

РС1ЧА 44,0+4,3 43,7+2,8 100 100

р-53 7,5+4,8 21,3+6,2* 42,9 80,0*

Вс1-2 7,9+5,1 17,7+5,0* 28,6 46,7*

Вах 11,8+3,5 2,7+2,0* 50,0 20,0*

Б-ЮО 16,3+4,4 5,0+0,8* 86,7 40,0*

Хромогранин А 8,7+1,1 4,3+1,1* 86,7 40,0*

ШЕ 56,1+4,9 53,7+5,0 60,2 58,7

Синаптофизин 27,2+3,7 32,7+4,2 38,9 40,1

Достоверно ниже было значение удельного количества иммунопозитивных клеток для маркера хромогранина А (4,3+1,1 %) у больных с прогрессией заболевания по сравнению с пациентами, у которых наблюдалась ремиссия - 8,7+4,3. Уровни данного показателя для нейронспецифической енолазы и синаптофизина в подгруппах больных не различались в зависимости от характера течения заболевания.

Оценка удельного количества иммунопозитивных клеток изучаемых маркеров в ОССЮ показала, что для маркера пролиферации Кл-67 при прогрессировании значение данного показателя составило 31,8+6,5 %, у больных с ремиссией значение данного показателя было практически на том же уровне - 29,8+4,4 %, хотя достоверных отличий межгрупповых значений установлено не было. В то же время значения показателя удельного количества иммунопозитивных клеток для маркеров р53 и Ьс1-2 составили у пациентов с

прогрессией заболевания соответственно 21,3+6,3 и 17,7+5,0 %, что достоверно (р<0,05) превышало соответствующие значения у пациентов с ремиссией -7,5±4,8 % для белка р53 и 7,9+5,1 % маркера апоптоза Ьс1-2. Уровень иммунопозитивных клеток для маркера Ьах в клетках опухолей пациентов с относительно благоприятным течением заболевания был более выраженным, составив 11,8+3,5 %, что достоверно (р<0,05) превышало соответствующее значение удельного количества иммунопозитивных клеток в подгруппе пациентов с прогрессированием заболевания - 2,7+2,0 %. Согласно полученным нами данным выявлены прямые корреляционные связи между ростом удельного количества р53 и Ьс1-2-иммунопозитивных клеток и частоты их обнаружения в ОССЮ в группе больных с прогрессированием заболевания, по сравнению с пациентами в состоянии ремиссии. Несмотря на установление связей между степенью выраженности экспрессии ряда белков и клиническим течением ОССЮ, согласно данным современной литературы, показано, что исследование, одного какого-либо иммуногистохимического маркера не обеспечивает необходимой базы для прогнозирования течения заболевания [БсогктсН К. е1а1., 2009].

Сравнительная иммунофенотнпическая характеристика ОССЮ больных при наличин или отсутствии метастазов, показало незначительные отличия между подгруппами больных с ОССЮ (табл.5). Значение показателя удельного количества иммунопозитивных клеток различалось достоверно лишь для маркера 8-100, составляя 8,8+1,2 % у больных с обнаруженными метастазами, что было достоверно (р<0,05) меньше соответствующего уровня удельного количества положительно окрашенных клеток у тех больных с ОССЮ, у которых не было выявлено метастазов — 12,9+1,8 %. Уровни удельного количества иммунопозитивных клеток для маркеров: хромогранина А, нейронспецифической енолазы и синаптофизина не различались достоверно у пациентов в зависимости от выявления метастазов.

Сравнение уровня лимфоцитов также не выявило отличий по данному показателю у пациентов с ОССЮ с метастазами и без таковых. Что же касается уровня активности ЛДГ, то его значение было существенно (примерно в 1,5 раза) больше у пациентов с метастазами, составив 1015,8+172,9 Ед/л относительно соответствующего показателя у больных без метастазов -693,0+69,6 Ед/л.

Таблица 5

Иммунофенотипическая характеристика ОССЮ больных при наличии или отсутствии метастазов, %__

Биомаркеры Удельное количество Частота обнаружения

иммунопозитивных исследуемого биомаркера

клеток

Отсутствие Выявление Mts Отсутствие Выявление Mts

Mts(n=17) (п=18) Mts (п=17) (п=18)

Ki-67 28,0+2,9 32,5+4,1 100 100

PCNA 42,5+3,2 45,0+6,9 100 100

р-53 8,7+3,0 21,1+5,7* 46,7 78,6*

Вс1-2 16,0+3,5 15,0+5,6 46,7 35,7

Вах 10,7+1,8 3,2+1,3* 53,3 14,3*

S-100 12,9+1,8 8,8+1,2* 71,4 56,3

Хромогранин А 7,9+1,1 5,3+0,9 78,6 50,0*

NSE 54,4+4,6 55,3+5,2 60,2 58,7

Синаптофизин 28,6+3,1 31,3±3,0 38,9 40,1

Результаты молекулярно-биологического исследования. Достаточное количество биопсийного материала для выделения тотальной РНК было получено от 30 больных, вошедших в исследование. 3 образца из 30 были исключены в связи с низким качеством выделенной РНК. В 5 случаях из 27 (18,7%) не удалось выявить транскриптов ни одного из исследуемых генов, что, в целом, соответствует мировым данным: устойчивые транслокации выявляются в среднем у 85% пациентов с доказанным диагнозом саркомы Юинга/ ПНЭО [Yoshino N. et al. 2003].

В 21 из 22 (95,4%) позитивных случаев определялась транслокация EWS/FLI1 typel, в одном случае - транслокация EWS/FLI1 type2. Транслокация типа EWS/ERG в данной группе больных выявлена не была.

Полученные данные отличаются от литературных: химерный онкоген EWS/FLU type2, как правило, обнаруживается у 15%-30% пациентов, EWS/ERG - у 5-10% [Parija Т. et al., 2005]. Возможно, указанные различия объясняются малой выборкой больных, либо генетическими особенностями данных опухолей у пациентов старше 20 лет. В связи с этим, влияние типа транслокации на течение заболевания не исследовалось. Тем не менее, согласно полученным данным, выявление специфических транслокаций при саркоме Юинга/ПНЭО с помощью Real-time ПЦР является надежным диагностическим методом, позволяющим подтвердить или установить диагноз, как минимум, в 80% случаев.

Проведенные исследования подтвердили, что современные молекулярно-биологические и иммуногистохимические методы исследования помогают провести дифференциальную диагностику опухолей семейства саркомы Юинга с другими злокачественными мелкокруглоклеточными опухолями костей и мягких тканей, имеющих сходное строения, при светооптической микроскопии которых могут возникнуть диагностические трудности. Установлено, что характер экспрессии ряда маркеров, участвующих в регуляции процессов пролиферации и апоптоза, обнаруживаемых в опухолевых клетках является прогностическим критерием в оценке клинического течения опухолей семейства саркомы Юинга.

ВЫВОДЫ

1. При патоморфологическом исследовании определены характерные структурные особенности опухолей семейства саркомы Юинга: рост опухоли в виде солидных полей из мелких округлых мономорфных клеток с тонкодисперсным хроматином, придающим ядрам опухолевых клеток «матовый» вид, интрацитоплазматический гликоген, обнаруживаемый при проведении РАБ-реакции.

2. При иммуногистохимическом исследовании биомаркеры пролиферации Кь67 и РСЫА обнаружены во всех образцах опухолей семейства саркомы Юинга. Экспрессия проапотозного мутантного белка р53 и антиапоптозного митохондриального белка Вс1-2 характеризовалась меньшей частотой обнаружения и низким удельным количеством иммунопозитивных опухолевых клеток при достоверных различиях значений данных параметров, что свидетельствует о гетерогенности исследуемых опухолей по механизмам повреждения апоптоза.

3. У 85% пациентов с морфологически доказанным диагнозом саркомы Юинга характерным является обнаружение устойчивой транслокации Е\УБ/РЫ1 1уре1 [1 (11; 22) (ц24-,ц12)] между Е\\^-геном на хромосоме 22 и РЫ1-геном на хромосоме 11, что приводит к синтезу химерной РНК и нарушению регулирования роста и дифференцировки клеток.

4. У пациентов с относительно благоприятным течением заболевания удельное количество позитивно окрашенных клеток и частота их обнаружения для биомаркера Ьах были достоверно выше, чем у пациентов с прогрессированием заболевания. Напротив, достоверно высокие значения удельного количества иммунопозитивных клеток и частоты их обнаружения в опухолях семейства саркомы Юинга для биомаркеров р53 и Ьс1-2

продемонстрировали прямые корреляционные связи с прогрессированием заболевания. Для прогнозирования течения опухолей семейства саркомы Юинга необходимо использовать иммуногистохимическое исследование экспрессии биомаркеров Ьах, р53 и bcl-2, дополненное определением удельного количества иммунопозитивных клеток.

5. Удельное количество иммунопозитивных клеток при проведении реакции с антителами к белкам S-100, синаптофизину и хромогранину А достоверно выше на 9,1%, 9,4% и 1,8% в группе больных старше 30 лет по сравнению с пациентами первой возрастной группы (от 20 до 30 лет). Экспрессия белка р53 в опухолях семейства саркомы Юинга у больных 1-ой возрастной группы обнаружена в 1,4 раза чаще, у мужчин - реже, чем у женщин. Белок bcl-2, выявлялся в 3,1 раза чаще у больных 2-ой возрастной группы и более чем в 3 раза чаще у мужчин.

6. При проведении дифференциального диагноза опухолей семейства саркомы Юинга с другими злокачественными мелкокруглоклеточными опухолями костей и мягких тканей (нейробластомой, рабдомиосаркомой, неходжкинской лимфомой) дифференциально-диагностическими критериями являются одновременное выявление иммуногистохимических биомаркеров CD99 и виментина (в 100% случаев), нейронспецифической енолазы (в 70,4+4,8% случаев), S-100 (74,9+14,4%) и синаптофизина (65,7+13,8%), а также обнаружение устойчивой транслокации EWS/FLI1 typel, или EWS/FLI1 type2 при проведении полимеразной цепной реакции.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

1. Патоморфологическое исследование при злокачественных мелкокруглоклеточных опухолях костей и мягких тканей следует дополнять современными диагностическими методами — молекулярно-биологическим и иммуногистохимическим с количественной обработкой полученных результатов, что позволит существенно улучшить дифференциальную диагностику опухолей семейства саркомы Юинга с другими мелкокруглоклеточными саркомами (рабдомиосаркомой, нейробластомой, круглоклеточной липосаркомой, мезенхимальной хондросаркомой и др.).

2. При оценке прогнозировании течения опухолей семейства саркомы Юинга следует учитывать возраст, пол, удельное количество иммунопозитивных опухолевых клеток при исследовании ряда иммуногистохимических биомаркеров (Вах, S-100, Хромогранин А, р53 и Bel-2).

3. Выявление специфических транслокаций Е\¥8/РЫ1 1уре1, или Е\¥8/РЫ1 1уре2 с помощью полимеразной цепной реакции в режиме реального времени является надежным диагностическим методом, позволяющим подтвердить или установить диагноз опухолей семейства саркомы Юинга.

Список работ, опубликованных по теме диссертации

1. Буланов Д.В. Мелкокруглоклеточные опухоли костей и мягких тканей (Саркома Юинга/Р1МЕТ), основные критерии морфологической и дифференциальной диагностики. / Буланов Д.В., Булычева И.В., Махсон А.Н.// Актуальные проблемы костной патологии у детей и взрослых: Материалы научно-практической конференции с международным участием ФГУ «Центральный научно-исследовательский институт травматологии и ортопедии им. Приорова Росмедтехнологий». - Москва. - 2008. - С.48-50.

2. Буланов Д.В. Мелкокруглоклеточные опухоли костей и мягких тканей. /Буланов Д.В., Булычева И.В., Махсон А.Н.//Актуальные проблемы экспериментальной и клинической медицины: Материалы 66-й открытой научно-практической конференции молодых учёных и студентов с международным участием. - Волгоград. -2008. -С.198-199.

3. Буланов Д.В. Опухоли костей и мягких тканей группы РЫЕТ/Саркомы Юинга, основные критерии морфологической и дифференциальной диагностики. / Буланов Д.В. // Журнал научных публикаций аспирантов и докторантов. - Курск. - 2009. -№1. - С. 107-109.

4. Буланов Д.В. Изучение прогностической значимости маркеров клеточной пролиферации и апоптоза в опухолях группы саркомы ЮингаЛЧЧЕТ. / Буланов Д.В. // Аспирантский вестник Поволжья. — Самара. - №3-4 - 2009. - С.83-87.

5. Буланов Д.В. Злокачественные мелкокруглоклеточные опухоли костей и мягких тканей группы РЫЕТ/саркомы Юинга, основные критерии морфологической и дифференциальной диагностики. / Буланов Д.В. // Медицинские науки - Москва - 2009. - №2. - С.27-29.

6. Буланов Д.В. Примитивная нейроэктодермальная опухоль (РЫЕТ/саркома Юинга), основные критерии морфологической и дифференциальной диагностики. / Буланов Д.В. // Современные проблемы общей и частной патологической анатомии: Материалы Всероссийской научной конференции посвященной 150-летию кафедры патологической анатомии Военно-медицинской академии им. С.М. Кирова. - Санкт-Петербург - 2009. - С.21-23.

7. Буланов Д.В. Прогностическая значимость иммуногистохимических маркеров саркомы Юинга. / Буланов Д.В., Махсон А.Н. // Актуальные проблемы экспериментальной и клинической медицины: Материалы 67-й открытой научно-практической конференции молодых учёных и студентов с международным участием. — Волгоград. — 2009. — С.218.

8. Буланов Д.В. Иммуногистохнмическая характеристика и критерии прогноза саркомы Юинга/PNET. / Буланов Д.В., Махсон А.Н. // Российский онкологический журнал. - Москва. — №1 — 2010. - С.17-19.

9. Буланов Д.В. Патологическая анатомия и молекулярно-генетическая характеристика саркомы Юинга. / Буланов Д.В., Романов И.Ю., Антошкин О.Н. // Актуальные проблемы экспериментальной и клинической медицины. Материалы 68-й открытой научно-практической конференции молодых ученых и студентов с международным участием, посвященной 75-летию ВолгГМУ. — Волгоград. - 2010. - С.213-215.

10. Буланов Д.В. Прогностическая и дифференциально-диагностическая значимость иммуногистохимических и молекулярно-биологических свойств опухолей семейства саркомы Юинга. / Буланов Д.В., Смирнов A.B. // Врач-аспирант. - Воронеж. - №1.3 (44) - 2011. - С.349-355.

11. Буланов Д.В. Иммуногистохимические и молекулярно-биологические характеристики опухолей семейства саркомы Юинга. / Буланов Д.В., Смирнов A.B., Загребин B.JI. // Вестник Волгоградского государственного медицинского университета. - Волгоград. — Выпуск 1 (37) - 2011. - С.76-80.

Заказ № 256-1/08/2011 Подписано в печать 03.08.2011 Тираж 100 экз. Усл. п.л. 1,2

д ООО "Цифровичок", тел. (495) 649-83-30

\ ^ )) \vw\v. с/г. ги ; е-таИ: т/о@с/г. ги

 
 

Оглавление диссертации Буланов, Дмитрий Владимирович :: 2011 :: Волгоград

ВВЕДЕНИЕ.

ГЛАВА 1. ЗЛОКАЧЕСТВЕННЫЕ МЕЛКОКРУГЛОКЛЕТОЧНЫЕ ОПУХОЛИ СЕМЕЙСТВА САРКОМЫ ЮИНГА: СОВРЕМЕННЫЕ ПРЕДСТАВЛЕНИЯ О ГИСТОГЕНЕЗЕ, ИММУНОГИСТОХИМИЧЕСКИХ МАРКЕРАХ И ПРОГНОСТИЧЕСКИХ критериях (обзор литературы).

1.1 Эпидемиология и клиника опухолей семейства саркомы Юинга.

1.2 Современные представления о гистогенезе опухолей семейства саркомы Юинга.

1.3 Иммуногистохимическая и молекулярно-биологическая характеристика опухолей семейства саркомы Юинга.

1.4 Факторы прогноза и лечение опухолей семейства саркомы Юинга.

ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ.

2.1 Общая организация работы.

2.2. Характеристика клинических случаев.

2.3 Методы исследования.

2.4 Статистическая обработка материала.

ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ.

3.1 Морфологическая характеристика саркомы Юинга.

3.2 Сравнительная цитохимическая характеристика мелкокруглоклеточпых опухолей.

3.3 Оценка иммуногистохимических и биохимических маркеров.

3.4 Зависимость экспрессии маркеров от возраста и пола.

3.5 Экспрессия маркеров у пациентов с различным течением заболевания.

3.5.1 Сравнительная оценка исследуемых показателей у больных с прогрессированием (продолженный рост опухоли, местный рецидив) и без прогрессирования заболевания.

3.5.2 Сравнительная оценка экспрессии маркеров у пациентов с отдаленными метастазами и без метастазов.

3.6 Результаты корреляционного анализа.

3.7 Результаты молекулярно-биологического исследования.

 
 

Введение диссертации по теме "Патологическая анатомия", Буланов, Дмитрий Владимирович, автореферат

Актуальность проблемы. В последние годы на основании данных классической морфологии и результатов, полученных с помощью новых методов исследования (культура клеток, молекулярная генетика, иммуногистохимия), выделена группа низкодифференцированных мелкокруглоклеточных опухолей нейроэктодермальной природы, развивающихся в мягких тканях и костях у детей и взрослых лиц молодого возраста. С конца 1990-х гг. в мировой литературе стал общепринятым термин «опухоли семейства саркомы Юинга» (ОССЮ), объединяющий классическую саркому Юннга кости (КСЮ), её экстраскелетный аналог - периферическую примитивную нейроэктодермальную опухоль кости (pPNET) и злокачественную мелкоклеточную опухоль торакопульмональной зоны (опухоль Аскина) [Иванова Н.М., 2008]. Злокачественные опухоли семейства саркомы Юинга (ОССЮ) являются одним из труднейших разделов патологии как с точки зрения своевременной и правильной диагностики, так и в свете поиска эффективных методов рационального лечения. Несмотря на значительный прогресс знаний в области костной патологии до настоящего времени остается много неясного в вопросах диагностики мелкокруглоклеточных опухолей. В исследованиях последних лет всё чаще предпринимаются попытки установить связь между так называемыми «мелкокруглоклеточными опухолями скелета» и их аналогами, возникающими в мягких тканях [Hancock J.D. et al., 2008; Kavalar R. et al., 2009]. 4

К настоящему времени удалось достичь прогресса в понимании молекулярно-биологических особенностей гистогенеза данной группы опухолей, что стало возможным с развитием современных методов морфологической, иммуногистохимической, цитогенетической и молекулярно-биологической диагностики. В частности, было показано, что для семейства так называемых периферических примитивных нейроэктодермальных опухолей (РЫЕТ) характерно наличие ряда тканеспецифических маркеров [Киселев Л.П., 2007].

На сегодня количество показателей, рассматриваемых в качестве потенциальных молекулярных маркеров, увеличивается лавинообразно, отражая достижения и находки в области изучения механизмов регуляции, пролиферации и дифференцировки опухолевых клеток. Ввиду обилия сведений об этих факторах и в связи с наличием существенных расхождений мнений авторов об их прогностической ценности, выбор тактики лечения, основанный на биологических характеристиках опухоли, остается затруднительным. Все вышеизложенное определяет высокую актуальность данной работы.

Цель исследования — определить морфологические, иммуногистохимические и молекулярно-биологические свойства опухолей семейства саркомы Юинга, оптимизировать критерии их дифференциальной диагностики с оценкой прогностической значимости в клинико-морфологическом сопоставлении.

Задачи исследования:

1. Охарактеризовать патоморфологические особенности опухолей семейства саркомы Юинга с учетом процессов пролиферативной активности и апоптоза, оцениваемым с использованием иммуногистохимического исследования.

2. Охарактеризовать молекулярно-биологические особенности опухолей семейства саркомы Юинга (ОССЮ) с использованием полимеразной цепной реакции.

3. Провести оценку прогностической значимости экспрессии ряда белков, контролирующих процессы пролиферации и апоптоза в опухолях семейства саркомы Юинга (ОССЮ).

4. Провести сравнительную оценку иммуноморфологических характеристик опухолей семейства саркомы Юинга с учетом возрастных и тендерных признаков.

5. Оптимизировать алгоритмы дифференциальной морфологической диагностики опухолей семейства саркомы Юинга.

Научная новизна.

Впервые проведено комплексное сравнительное исследование морфологических, иммуногистохимических, молекулярно-биологических характеристик и ряда показателей клинического течения опухолей семейства саркомы Юинга.

Проведенная количественная оценка пролиферативной активности и апоптоза в опухолях семейства саркомы Юинга по данным иммуногистохимического исследования продемонстрировало прогностическую значимость ряда признаков при клинико-морфологическом сопоставлении.

Впервые при сравнительном морфометрическом изучении выявлены иммуногистохимические особенности опухолей семейства саркомы Юинга по возрастным и тендерным признакам.

Научно-практическая значимость.

Полученные в работе результаты существенно расширяют имеющиеся представления об опухолях семейства саркомы Юинга у пациентов в возрасте старше 20 лет. В работе обоснованы иммуногистохимические прогностические критерии клинического течения злокачественных опухолей семейства саркомы Юинга (ОССЮ). Оптимизирован алгоритм дифференциальной диагностики ОССЮ в ряду злокачественных мелкокруглоклеточных опухолей костей и мягких тканей с использованием высокоинформативных иммуногистохимических и молекулярнобиологических методов, в том числе с количественной; оценкой уровней пролиферативной активности и апоптоза.

Положения, выносимые на защиту.

1. Идентичные по патоморфологическим, иммуношстохимическим и молекулярно-биологическим свойствам опухоли семейства саркомы Юинга у пациентов старше 201 лет имеют количественные различия при иммуногистохимическом исследовании экспрессии . биомаркеров, характеризующих нейроэктодермальную дифференцировку, контролирующих процессы апоптоза и пролиферации с учетом различий возрастных и тендерных факторов.

2. При сравнительной оценке иммуногистохимических характеристик опухолей семейства саркомы Юинга в различных возрастных и тендерных группах установлено, что наиболее значимыми в прогностическом плане является исследование, экспрессии биомаркеров: 8-100; хромогранина А, синаптофизина, Ьах, р53 и Ьс1-2. Частота обнаружения экспрессии и,удельное количество иммунопозитивных клеток в опухолях семейства саркомы Юинга для ряда иммуногистохимических биомаркеров являются схожими прогностическими критериями, коррелирующими с рецидивированием опухолей и их метастазированием.

3. Для дифференциальной диагностики опухолей семейства саркомы Юинга внутри гетерогенной группы злокачественных мелкокруглоклеточных опухолей костей и мягких тканей необходимо использование комплекса иммуноморфологических и молекулярно-биологических методов;

Апробация работы и публикации.

Основные положения диссертации изложены на научно-практической конференции с международным участием «Актуальные проблемы костной патологии у детей и взрослых» (Москва, 2008), 66-й открытой научнопрактической конференции молодых ученых и студентов с международным участием «Актуальные проблемы экспериментальной и клинической медицины» (Волгоград, 2008), Всероссийской научной конференции посвященной 150-летию кафедры патологической анатомии Военно-медицинской- академии им. С.М. Кирова «Современные проблемы общей и частной патологической анатомии» (Санкт-Петербург, 2009), 67-й открытой научно-практической конференции молодых ученых и студентов с международным участием «Актуальные проблемы экспериментальной и клинической медицины» (Волгоград, 2009), 68-й открытой- научно-практической конференции молодых ученых и студентов с международным участием «Актуальные проблемы экспериментальной и клинической медицины», посвященной 75-летию ВолГМУ (Волгоград, 2010).

Апробация работы осуществлена на совместном заседании кафедр патологической анатомии, гистологии, цитологии и эмбриологии, анатомии человека, судебной медицины Государственного образовательного учереждения высшего профессионального образования «Волгоградский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации.

По теме диссертации опубликовано 11 работ, в том числе - 4 статьи - в журналах, из перечня рекомендованных Высшей аттестационной комиссией Министерства образования и науки Российской Федерации для публикации результатов кандидатских диссертаций.

Реализация и внедрение результатов исследования.

Работа выполнена на базе патологоанатомического отделения Московской городской онкологической больницы №62 (главный врач, д.м.н., профессор А.Н. Махсон), кафедры патологической анатомии (заведующий кафедрой, д.м.н., доцент A.B. Смирнов) Государственного образовательного учереждения высшего профессионального образования «Волгоградский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации (ректор - академик РАМН В.И. Петров).

Полученные данные о морфологических, иммуногистохимических, молекулярно-биологических характеристиках саркомы Юинга, алгоритмах дифференциальной диагностики используются в работе патологоанатомического отделения ГУЗ «Московской городской онкологической больницы №62, г. Москва», ГУЗ «Волгоградское областное патологоанатомическое бюро, г. Волгоград», патологоанатомического отделения ГУЗ «Волгоградский областной клинический онкологический диспансер №1». Результаты данного исследования внедрены в учебный процесс на кафедре патологической анатомии Государственного образовательного учереждения высшего профессионального образования «Волгоградский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации, научно-исследовательскую работу лаборатории патоморфологии ФГУ "Главный военный клинический госпиталь имени академика H.H. Бурденко Министерства обороны Российской Федерации" (начальник госпиталя -д.м.н., проф. И.Б. Максимов).

Структура и объем диссертации. Диссертация изложена на 151 страницах печатного текста, состоит из оглавления, введения, обзора литературы, главы материала и методов исследования, результатов собственных исследований, изложенных в 7-ми подглавах, обсуждения полученных результатов, выводов, практических рекомендаций и указателя литературы. Иллюстрации представлены 9 таблицами, 34 рисунками, включающие 20 микрофотографий. Указатель литературы включает 303 источника (33 отечественных и 270 иностранных авторов).

 
 

Заключение диссертационного исследования на тему "Актуальные аспекты патоморфологической диагностики опухолей семейства саркомы Юинга"

ВЫВОДЫ

1. При патоморфологическом исследовании определены характерные структурные особенности опухолей семейства саркомы Юинга: рост опухоли в виде солидных полей из мелких, мономорфных округлых клеток, содержащих гликоген, обнаруживаемый при проведении РАБ-реакции, с матово-базофильными ядрами, тонкодисперсным хроматином.

2. При иммуногистохимическом исследовании биомаркеры пролиферации Кт-67 и РСЫА обнаружены во всех образцах опухолей семейства саркомы Юинга. Экспрессия проапотозного мутантного белка р53 и антиапоптозного митохондриального белка Вс1-2 характеризовалась меньшей частотой обнаружения и низким удельным количеством иммунопозитивных опухолевых клеток при достоверных различиях значений данных параметров по сравнению с группой злокачественных мелкокруглоклеточных опухолей костей и мягких тканей, что свидетельствует о гетерогенности исследуемых опухолей по механизмам повреждения апоптоза.

3. У 85% пациентов с морфологически доказанным диагнозом саркомы Юинга характерным является обнаружение устойчивой транслокации EWS/FLI1 typel [t (11; 22) (q24;ql2)] между EWS-геном на хромосоме 22 и FLI1-геном, на хромосоме 11, что приводит к синтезу химерной РНК и нарушению регулирования роста и дифференцировки клеток.

4. У пациентов с относительно благоприятным течением заболевания удельное количество позитивно окрашенных клеток и частота их обнаружения для'биомаркера,Ьах были достоверно выше; чем у пациентов с прогрессированием заболевания. Напротив, достоверно высокие значения удельного количества иммунопозитивных клеток и частоты их обнаружения в опухолях семейства саркомы Юинга для биомаркеров р53 и bcl-2 продемонстрировали прямые корреляционные связи с прогрессированием заболевания. Для прогнозирования течения неоплазии необходимо использовать иммупогистохимическое исследование экспрессии биомаркеров Ьах, р53 и bcl-2, дополненное определением удельного количества иммунопозитивных клеток.

5. Удельное количество иммунопозитивных клеток при проведении реакции с антителами к белкам S-100, синаптофизину и хромогранину А достоверно выше на 9,1%, 9,4% и 1,8% в группе больных старше 30 лет по сравнению с пациентами первой возрастной группы (от 20 .до 30 лет). Экспрессия белка р53 в опухолях семейства саркомы Юинга у больных 1-ой возрастной группы обнаружена в 1,4 раза чаще, у мужчин - реже, чем у женщин. Белок bcl-2, выявлялся в 3,1 раза чаще у больных 2-ой возрастной группы и более чем в 3 раза чаще у мужчин.

6. При проведении дифференциального диагноза опухолей семейства саркомы Юинга с другими злокачественными мелкокруглоклеточными опухолями костей и мягких тканей (нейробластомой, рабдомиосаркомой, неходжкинской лимфомой) дифференциально-диагностическими критериями являются одновременное выявление иммуногистохимических биомаркеров CD99 и виментина (в 100% случаев), нейронспецифической енолазы (в

70,4+4,8% случаев), S-100 (74,9+14,4%) и синаптофизина (65,7+13,8%), а также обнаружение устойчивой транслокации EWS/FLI1 typel, или EWS/FLI1 type2 при проведении полимеразной цепной реакции.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

1. Патоморфологическое исследование при злокачественных мелкокруглоклеточных опухолях костей и мягких тканей следует дополнять современными диагностическими методами — молекулярно-биологическим и иммуногистохимическим с количественной обработкой полученных результатов, что позволит существенно улучшить дифференциальную диагностику опухолей семейства саркомы Юинга с другими мелкокруглоклеточными саркомами (рабдомиосаркомой, нейробластомой, круглоклеточной липосаркомой, мезенхималыюй хондросаркомой и др.).

2. При оценке прогнозировании течения опухолей семейства саркомы Юинга следует учитывать возраст, пол, удельное количество иммунопозитивных опухолевых клеток при исследовании ряда иммуногистохимических биомаркеров (Вах, S-100, Хромогранин А, р53 и Вс1-2).

3. Выявление специфических транслокаций EWS/FLI1 typel, или EWS/FLI1 type2 с помощью полимеразной цепной реакции в режиме реального времени является надежным диагностическим методом, позволяющим подтвердить или установить диагноз опухолей семейства саркомы Юинга.

 
 

Список использованной литературы по медицине, диссертация 2011 года, Буланов, Дмитрий Владимирович

1. Автандилов Г.Г. Медицинская морфометрия. Руководство. М.: Медицина, 1990.-384 с.

2. Автандилов Г. Г. Основы количественной патологической анатомии. М.: Медицина, 2002.

3. Бухаркин Б.В., Давыдов М.И., Карякин О.Б. и др. Клиническая онкоурология. М., 2003.

4. Веснин А.Г., Семенов И.И. Атлас лучевой диагностики опухолей опорно-двигательного аппарата: Часть 1: Опухоли скелета. — СПб.: Невский диалект, 2003.

5. Галахін К., Лломбарт-Бош А., Мельник М. и др. Диференційна імуногістохімічна діагностика злоякісних пухлин сімейства Юїнга // Онкология. 2001. - Т. З, № 2-3. - С.146-150.

6. Гальперин Э.Е., Констайн Л.Д., Тарабел Н.Д Лучевая терапия в детской онкологии. М., 1999. -539 с.

7. Герштейн Е.С., Кушлинский Н.Е. Тканевые маркеры как факторы прогноза при раке молочной железы // Практическая онкология. 2002. - № 1.-С 38-44.

8. Головин Д-И. Ошибки и трудности гистологической диагностики опухолей: Руководство для врачей. Л.: Медицина, 1982. — 304 с.

9. Дурнов Л.А., Голдлбенко Г.В., Курмашов В.И. Детская онкология. М.,1997. - 305 с.

10. Кешта Расми Ахмад Молекулярно-биологические маркеры как факторы прогноза при саркоме мягких тканей: Автореф. дисс. . канд. мед. наук. М.,2002. - 29 с.

11. Киселев Л.П. Молекулярная диагностика и интенсификация химиотерапии прогностически неблагоприятных форм саркомы Юинга у детей: Автореф. дисс. . канд. мед. наук. Минск, 2007. - 21 с.

12. Ковалев Д.В. Сравнительная эффективность радикальных операций в комбинированном лечении остеогенной саркомы костей конечностей у детей: Автореф. дисс. . канд. мед. наук. М., 2000. - 31 с.

13. Краевский H.A., Смольянниникова А.Г., Сапкисова Д.С. Патологоанатомическая диагностика опухолей человека. М., 1993. - Т. 1,2.

14. Кутателадзе Т.О. Факторы прогноза при остеогенной саркоме: Автореф. дисс. . канд. мед. наук. М., 1983. - 17 с.

15. Кушлинский Н.Е., Трапезников H.H., Соловьев Ю.Н. и др. Биохимические и эндокринологические исследования при остеосаркоме — основа патогенетических методов лечения опухоли // Вестник РАМН. — 2002. -№ 1. С.71-74.

16. Леенман Е.Е., Кочурова Н.В., Белогурова М.Б., Пожариский K.M. Иммуногистохимическое исследование мелкоклеточных сарком и факторов (NM23, 044), прогнозирующих метастазирование у детей // Вопр. онкол. 2003. - Т.49, № 2. - С.21-25.

17. Матвеев Б.П., Фигурин K.M., Карякин О.Б. Рак мочевого пузыря.- М., 2001.

18. Матвеева И.И. Цитологическая диагностика опухолей костей у детей // Клин. Лаб. Диагностика. 2003. - № 8. - С. 25-33.

19. Мельник М.М. Морфологічні аспекта діагностики і оцінки хіміотерапії саркоми Юїнга // Український хіміотерапевтичний журнал. -2001.-№ 2.-С. 43 -46.

20. Новик В.И., Красильникова Л.А., Кочнев В.А. и др. Результаты цитологической диагностики опухолей костей // Вопросы онкологии. 1999.- Т.45, № 6. С.685-689.

21. Птушкина Е.А. Лечение прогностически неблагоприятных форм саркомы Юинга у детей: Автореф. дисс. . канд. мед. наук. М., 2002. - 22 с.

22. Радченко А. А. Рецепторы эпидермального фактора роста, ЭФР-подобные пептиды и рецепторы глюкокортикоидов в остеогенной саркоме: Автореф. дисс. . канд. мед. наук. М., 1997. - 27 с.

23. Рейнберг С. А. Рентгенодиагностика заболеваний костей и суставов. М., 1955. - Т.1.

24. Рыжков А.Д. Комплексная радионуклидная диагностика остеогенной саркомы: Автореф. дисс. . канд. мед. наук. М., 1997. - 31 с.

25. Смирнов A.B. Руководство по иммуногистохимической диагностике опухолей человека / Под ред. Петрова C.B. и Райхлина Н.Т. -Казань: Титул, 2004.

26. Соловьев Ю.Н. Саркома Юинга // Вопр. Онкологии. 2002. -Т.48, № 1. - С.7-16.

27. Трапезников H.H., Соловьев Ю.Н., Кушлинский Н.Е. и др. Прогресс и перспективы развития методов лечения сарком костей // Рос. онкол. жури. 1998. - Т. 10, № 3. - Р.21-25.

28. Трапезников H.H., Мачак Г.Н., Соловьев Ю.Н. и др. Лечение остеосаркомы конечностей на рубеже столетий (полувековой опыт исследований) // Вестник РАМН. 2001. - № 9. - С.46-48.

29. Трапезников H.H., Кушлинский Н.Е., Соловьев Ю.Н., Алиев М.Д. Остеогенная саркома и андрогены // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 1996. - № 9. - С.305-331.

30. Трапезников H.H., Еремина JI.A., Алиев М.Д. Ошибки в диагностике и лечении злокачественных , опухолей костей // Ошибки в клинической онкологии: руководство для врачей. Под ред. В.И. Чиссова, А.Х. Трахтенберга: М.: Медицина, 2001. - С. 494-502.

31. Трапезников H.H., Соловьев Ю.Н., Еремина JI.A. и др. Прогресс в лечении остеогенной саркомы // Вестник ОНЦ АМН России. -1993. № 1. -С.3-10.

32. Arvand A., Denny C.T. Biology of EWS. ETS fusions in Ewing's family tumors // Oncogene. 2001. - Vol. 20. - P.5747-5754.

33. Arvand A., Welford S.M., Teitell M.A., Denny C.T. The COOH-terminal domain of FLI-1 is necessary for full tumorigenesis and transcriptional modulation by EWS // Cancer Res. 2001. - Vol. 61.- P.5311-5317.

34. Askin F.B., Rosai J., Sibley R.K. et al. Malignant small cell tumor of the thoracopulmonary region in childhood: a distinctive clinicopathology entity of uncertain histogenesis // Cancer. 1979. - Vol.43. - P.2438-2451.

35. Axe S., Kuhajda F.P. Esthesioneuroblastoma: intermediate filaments, neuroendocrine, and tissue-specific antigens // Am. J. Clin Pathol. 1992. -Vol.88.-P.139-145.

36. Bacci G., Toni A., Avella M. et al. Long-term results in 144 localized Ewing sarcoma patients treated with combined therapy // Cancer. 1989. - Vol.63.- P.1477-1486.

37. Bacci G., Ferrari S., Bertoni F. et al. Prognostic factors in non-metastatic Ewing sarcoma of bone treated with adjuvant chemotherapy: analysis of 359 patients at the Instituto Ostopedico Rizoli // J. Clin. Oncol. 2000. - Vol.18.- P.4-11.

38. Bacci G., Balladelli A., Forni C. et al. Ewing's sarcoma family tumours: Differences in clinicopathological characteristics at presentation between localised and metastatic tumours // J. Bone Joint. Surg. Br. 2007. - Vol.89, № 9.- P.1229-1233.

39. Banerjee A.K., Sharma B.S., Vashista R.K. Intracranial olfactory neuroblastoma: evidence for olfactory epithelial origin // J. Clin. Patol. 1992. -Vol.45.-P.299-302.

40. Barker L.M., Pendergrass T. W., Sanders J.E. et al. Survival after recurrence of Ewing's sarcoma family of tumors // J. Clin. Oncol. 2005. - Vol. 23.-P. 4354.

41. Dellattre O., Zucman J., Plougastel B. et al. The Ewing family of tumors A subgroup of small-round-cell tumors defined by specific chimeric transcripts // Nature. - 1992. - Vol.359. - P. 162-165.

42. Delattre O., Zucman J., Melot T. et al. The Ewing family of tumors. A subgroup of small-round-cell tumors defined by specific chimeric transcripts // N. Engl. J. Med. 1994. - Vol.331. - P.294-299.

43. De Long E.R., Delong D.M., Clarke-Pearson D.L. Comparing the areas under two or more correlated receiver operating curves: a non parametric approach // Biometrics. 1988. - Vol.44. - P. 837-845.

44. Desmaze C., Brizard F., Ture-Carel C. et al. Multiple chromosomal mechanisms generate an EWS/FLI1 or an EWS/ERG fusion gene in Ewing tumors // Cancer Genet. Cytogenet. 1997. - Vol. 97. - P. 12-19.

45. De Vita V., Hellmann S., Rosenberg S. Cancer: Principles and Practice of Oncology, 6 th Edition. Published by Lippincott Williams & Wilkins, 2001.

46. Dias P., Parham D.M., Shapiro D.N. ct al. Myogenic regulatory protein (MyoDl) expression in childhood solid tumors: diagnostic utility in rhabdomyosarcoma//Am. J. Pathol. 1990.-Vol. 137. - P. 1283-1291.

47. Dierick A.M., Langlois M., Van Oostveldt P. et al. The prognostic significance of the DNA content in Ewing's sarcoma: a retrespective cytophotometric and flow cytometric study // Histopathology. 1993. - Vol.23. -P.333-339.

48. Dockhorn-Dworniczak B., Schaefer K.L., Dantcheva R. et al. Diagnostic value of the molecular genetic detection of the t(l 1;22) translocation in Ewing's tumours // Virchows Arch. 1994. - Vol.425. - P. 107-112.

49. Donaldson S.S. A story of continuing succes- radiotherapy for Ewing's sarcoma // Int. J. Radiat. Oncol. Biol. Phys. 1981. -Vol.7. - P.279-281.

50. Dos Santos Silva I., Swerdlow A.J. Sex differences in the risks of hormone-dependent cancers // Am. J. Epidemiol. 1993. - Vol. 138. - P.10-28.

51. Douglass E.S., Rowe S.T., Valentine M. et al. A second nonrandom translocation, der(16)t(l;16)(q21;ql3), in Evving sarcoma and peripheral neuroectoderal tumor // Cytogenet. Cell. Genet. 1990. - Vol.53. - P.87-90.

52. Douglass E.C., Valentine M., Green A.A. et al. t(ll;22) and other chromosomal rearrangements in Ewing's sarcoma // JNCI. 1986. — Vol. 77. — P.1211-1215.

53. Dunst J., Jürgens H., Sauer R. et al. Radiation therapy in Ewing sarcoma: an update of the CESS 86 trial // Int. J. Radiat. Oncol. Biol. Phys. 1995. - Vol.32.-P.919-930.

54. Dunst J., Sauer R., Burgers J.M.V. et al. Radiation therapy in Ewing's sarcoma: an update of the CESS 86 trial // Cancer. 1991. - Vol.67. - P.2818-2825.

55. Durbin M., Randall R.L., James M. et al. Ewing's sarcoma masquerading as osteomyelitis // Clin. Orthop. 1998. - Vol. 357. - P. 176-185.

56. Dworzak M., Stock C., Stiehl S. et al. Ewing's tumor X mouse hybrids expressing the MIC2 antigen: analyses using fluorescence CDD-banding and non-isotopic ISH // Hum.Genet. 1992. - Vol.88. - P.273-278.

57. Evans R.G., Burgert E.O., Gilchrist G.S. et al. Sequential half-body irradiation (SHBI) and combination chemotherapy as salvage treatment for failed Ewing sarcoma: a pilot study // Int. J. Radiat. Oncol. Biol. Phys. 1984. - Vol.10. - P.2363-2368.

58. Evans A.E., Cavazzana A.O., Navarro S., Noguera R. Advances in Neuroblostoma Research. Vol. 2. Philadelphia: Alan R, Liss, 1988. - P.463-473.

59. Evans R.G., Nesbit M.E., Gehan E.A. et al. Multimodal therapy for the management of localized Ewing's sarcoma of pelvic and sacral bones: a report from the second intergroup study // Journal of Clinical Oncology. 1991. -Vol.9(7).-P.l 173-1180.

60. Ewing J. Diffuse endotelioma of bone // Proc. NY Pathol. Soc. -1921.- Vol.21. -P. 17-24.

61. Fellinger E.J., Garin-Chesa P., Su S.L. et al. Biochemical and genetic characterization of the HBA71 Ewing's sarcoma cell surface antigen // Cancer. Res. 1991. - Vol.51. - P.336-340.

62. Fellinger E.J., Garin-Chesa P., Triche T.J. et al. Immunohistochemical analysis of Ewing's sarcoma cell surface antigen p30/32MIC2 // Am. J. Pathol. -1991.-Vol.139.-P.317-325.

63. Ferrari S., Palmerini E. Adjuvant and neoadjuvant combination chemoterapy for osteogenic sarcoma // Curr. Opin. Oncol. — 2007. Vol.19. — P.341-346.

64. Fletcher C.D., Unni K.K., Mertens F. Pathology and genetics of tumors of soft tissue and bone. Lyon: IARC Press, 2002.

65. Flugstad D.L., Wilke C.P., McNutt M.A. et al. Importance of surgical resection in the successful management of soft tissue sarcoma // Arch. Surg. — 1999. Vol.134. - P.856-861.

66. Folpe A.L., Chand E.M., Goldblum J.R., Weiss S.W. Expression of FLI-1, a nuclear transcription factor, distinguishes vascular neoplasms from potential mimics // Am. J. Surg. Pathol. 2001. - Vol.25. - P. 1061-1066.

67. Folpe A.L., Goldblum J.R., Rubin B.P. et al. Morphologic and immunophenotyping diversity in Ewing family tumors. A study of 66 genetically confirmed cases // Am. J. Surg. Pathol. 2005. - Vol.29. - P.1025-1033.

68. Frassica F.J., Frassica D.A., Pritchard D.J. et al. Ewing sarcoma of the pelvis. Glinicopathological features and treatment // J. Bone and Joint Surg. -1993. Vol. 75-A. - P.1457-1465.

69. Frierson H.F., Ross G.W. Mills S.E. et al. Olfactory neuroblastoma: Additional immunohistochemical characterization // Am. J. Clin. Pathol. 1990. -Vol.94.-P.547-553

70. Frustaci S., Gherlinzoni F., De Paoli A. et al. Adjuvant chemotherapy for adult soft tissue sarcomas of the extremities and girdles: results of the Italian Randomized Cooperative Trial // J. Clin. Oncol. 2001. - Vol.19. - P. 1238-1247.

71. Fuchs B., Valenzuela R.G., Inwards C. et al. Complications in long-term survivors of Ewing sarcoma // Cancer. 2003. - Vol.15. - P.2687-2692.

72. Gammeltoft S. Peptidehormone receptors // Siddle K., Hutton J.C. eds. Peptide hormone action. A practical approach. Oxford: Oxford University Press, 1990.-P. 1-41.

73. Gobel V., Jürgens H., Etspuler G. et al. Prognostic significance of tumor volume in localized Ewing's sarcoma of bone in children and adolescents // J. Cancer. Res. Clin. Oncol. 1987. - Vol. 113. - P. 187.

74. Gortzak E., Azarelli A., Buesa J. et al. A randomized study II on neoadjuvant chemotherapy for «high-risk» soft-tissue sarcoma // Eur. J. Cancer. -2001. Vol.37. -P.l 096-1103.

75. Gown A.M. Пособие по диагностической иммуногистохимии. -Сиэтл: PhenoPath, 1999.

76. Grier H.E. The Ewing family of tumors. Ewing's sarcoma and primitive neuroectodermal tumors // Pediatr. Clin. North. Am. 1997. - Vol.44. -P.991-1004.

77. Gu M, Antonescu C., Guiter G., Huvos A.G. et al. Cytokeratin immunoreactivity in Ewing's sarcoma: prevalencein 50 cases conrmed by molecular diagnostic studies // Am. J. Surg. Pathol. 2000. - Vol.24. - P.410-416.

78. Guarino M., Tricomi P., Giordano F., Cristofori E. Sarcomatoid carcinomas: pathological and histopathogenetic considerations // Pathology. -1996.- Vol.28. -P.298-305.

79. Hamilton G., Fellinger E.J., Schratter I. et al Characterization of a human endocrine tissue and tumor-associated Ewing's sarcoma antigen // Cancer Res. 1988.- Vol.48. -P.6127-6134.

80. Hartman K.R., Triche T.J., Kinsella T.J. et al. Prognostic value of histopathology in Ewing's sarcoma: long-term follow-up of distal extremity primary tumors//Cancer. 1991.-Vol.67, № 1. - P. 163-171.

81. Hashimoto H., Enjoji M., Nakajima T. et al. Malignant neuroepithelioma (peripheral neuroblastoma): a clinicopathologic study of 15 cases // Am. J. Surg. Pathol. 1983. - Vol.7. - P.309-318.

82. Hayashida Y., Yakushiji T., Awai K. et al. Monitoring therapeutic responses of primary bone tumors by diffusion-weighted image: initial results // Eur. Radiol. -2006. Vol.16. - P.2637-2643.

83. Horowitz M.E., Malawer M.M., Woo S.Y. et al. Ewing's sarcoma family of tumors: Ewing's sarcoma of bone // Principles and practice of pediatric oncology, 3rd ed. Philadelphia: Lippincott-Raven, 1997. - P. 815-831.

84. Horowitz M.E., Delaney T.F., Malawer M.M. et al. Ewing's sarcoma of bone and soft tissue and peripheral primitive neuroectodermal tumor // Principles and practice of pediatric oncology. Philadelphia: Lippincott 1997. -P.831-863.

85. Horowitz M.E., Kinsella T.J., Wexler L.H. et al. Total-body irradiation and autologous bone marrow transplant in the treatment of high-risk

86. Ewing's sarcoma and rhabdomyosarcoma // Journal of Clinical Oncology. 1993. -Vol.11(10). - P.1911-1918.

87. Hromas R., May W., Denny C. et al. Human FLI-1 localizes to chromosome 11Q24 and has an aberrant transcript in neuroepithelioma // Biochem. Biophys. Acta. 1993.-Vol.1172.-P.155-158.

88. Huvos A.G. Bone tumor. Diagnosis, treatment and prognosis. -Saudenders. Philadelphia, 1991.

89. Iwamoto Y. Diagnosis and treatment of Ewing's sarcoma // Jpn. J. Clin. Oncol. 2007. - Vol.37, № 2. - P.79-89.

90. Jeon I.S., David J.N., Braun B.S. et al. A variant Ewing's sarcoma translocation t(7;22) fuses the Ewing gene to the ETS gene ETV1 // Oncogene. -1995.-Vol. 10.-P. 1229-1234.

91. Jereb B., Ong R.L., Mohan M. et al. Redefined role of radiation in combined treatment of Ewing sarcoma // Pediatr. Oncol. Hematol. 1986. -Vol.3.-P.lll-118.

92. Jürgens H., Bier V., Dunst J. et al. Die GPO cooperativen Ewing-Sarcom Studien CESS 81/86: Bericht nach 61/2 Jäheren // Klin. Padiatr. 1988. -Vol.200.-P.243-252.

93. Jürgens H., Bier V., Harms D. et al. Malignant peripheral neuroectodermal tumors. A retrospective analisis of 42 patients // Cancer. 1988. - Vol.61.-P.349-357.

94. Jürgens H., Exner U., Gadner H. et al. Multidisciplinary treatment of primary Ewing's sarcoma of bone. A 6-year experience of a European cooperative trial // Cancer. 1988. - Vol.61. - P.349-357.

95. Kasper B., Lehnert T., Bernard L. et al. High-dose chemotherapy with autologous peripheral blood stem cell transplantation for bone and soft-tissue sarcomas // Bone Marrow Transplant. 2004. - Vol.34. - P.37-41.

96. Kawaguchi K., Koike M. Neuron-specific enolase and Leu-7 immunoreactive small round-cell neoplasm: the relationship to Ewing's sarcoma in bone and soft tissue // Am. J. Clin. Patol. 1986. - Vol.86. - P.79-83.

97. Kinsella T.J., Glaubiger D., Diesseroth A. et al. Intensive combined modality therapy including low-dose TBI in high-risk Ewing" s sarcoma patients // Int. J. Radiat. Oncol. Biol. Phys. 1983. - Vol.9. - P. 1955-1960.

98. Kinsella T.J., Miser J.S., Waller B. et al. Long-term follow-up of Ewing sarcoma of bone treated with combined modality therapy // Int. J. Radiat. Oncol. Biol. Phys. 1991. - Vol.20. - P.389-395.

99. Kinsella T.J., Lichter A.S., Miser J. et al. Local treatment of Ewing"s sarcoms: radiaton, therapy versus surgery // Cancer Treat. Rep. — 1984. Vol.68. — P.695-701.

100. Kirkwood J.M., Strawderman M.H., Ernstoff M.S. et al. Interferon alfa-2b adjuvant therapy of high-risk resected cutaneous melanoma: the Eastern Cooperative Oncology Group Trial EST 1684 // J. Clin. Oncol. 1996. - Vol.14. -P.7-17.

101. Kirkwood J., Manola J., Ibrahim J. et al. A pooled analysis of Eastern Cooperative Oncology Group and Intergroup trials of adjuvant high-dose interferon for melanoma // Clin. Cancer. Res. 2004. - Vol.10. - P. 1670-1677.

102. Kirkwood J.M., Ibrahim J.G., Sondak V.K. et al. High- and low-dose interferon alfa-2b in high-risk melanoma: first analysis of Intergroup Trial E1690/S9111/C9190 // J Clin Oncol. 2000. - Vol.18. - P.2444-2458.

103. Kovar H. Progress in the molecular biology of Ewing tumors // Sarcoma. 1998.-Vol.23.-P.17.

104. Kovar H., Dworzak M., Strehl S. et al. Overexpression of the pseudoautosomal gene MIC2 in Ewing" s sarcoma and peripheral primitive neuroectodermal tumor // Oncogene. 1990. - Vol.5. - P. 1067-1070.

105. Kowal-Vern A., Walloch J., Chou P. et al. Flow and image cytometric DNA analisis in Ewing's sarcoma // Mod. Pathol. 1992. - Vol.5. - P.56-60.

106. Kumar S., Perlman E., Hams C.A. et al. Myogenin is a specific marker for rhabdomyosarcoma: an immunohistochemical study in paraffin-embedded tissues // Mod. Pathol. 2000. - Vol. 13. - P. 988-993.

107. Kutluk M.T., Yalcin B., Akyuz C. et al. Treatment results and prognostic factors in Ewing sarcoma // Pediatr. Hematol. Oncol. 2004. - Vol.21. - P.597-610.

108. Kuttesch J.F., Wexler L.H., Marcus R.B. et al. Second malignancies after Ewing's sarcoma: radiation dose-depcndency of secondary sarcomas // J. Clin. Oncol. 1996. - Vol. 14. - P. 2818.

109. Ladanyi M., Bridge J.A. Contribution of molecular genetic data to the classification of sarcomas // Hum. Pathol. 2000. - Vol. 31.- P.532-538.

110. Ladanyi M., Gerald W. Fusion of the EWS and WT1 genes in the desmoplastic small round cell tumor // Cancer Res. 1994. - Vol. 54. - P.2837-2840.

111. Laemmli U.K. Cleavage of structuial proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4 //.Nature. 1970. - Vol.227. - P.680-685.

112. Le Duran N.M., Ziller C. Plasticity in neural crest cell differentiation // Curr. Opin. Cell. Biol. 1993. - Vol.5. -P.1036-1043.

113. Le VayJ., O'Sullivan B., Cotton C. et al. Outcome and prognostic factors in soft tissue sarcoma // Int. J. Radiol. Oncol. Biol. Phys. 1992. - Vol. 24, (Suppl 1). -P.182-183.

114. Lewis J.J., Leung D., Espat J. et al. Effect of reresection in extremity soft tissue sarcoma // Ann. Surg. 2000. - Vol.231.- P.655-663.

115. Lin P.P., Brody R.I., Hamelin A.C. et al. Differential transactivation by alternative EWS-FLI-1 fusion proteins correlates with clinical heterogeneity in Ewing's sarcoma // Cancer Res. 1999. - Vol. 59. -P.1428-1432.

116. Llombart-Bosch A., Monteagudo C., Lopez-Guerrero J.A. et al. Clinicopathological and immunohistochemical analysis of 20 cases of merkel cell carcinoma in search of prognostic markers // Histopathology. 2005. - Vol. 46. -P.622-634.

117. Llombart-Bosch A., Contesso G., Peydro-Olaya A. et al. Histology, immunohistochemistry, and election microscopy of small round cell tumors of bone// Semin. Diagn. Pathol. 1996. - Vol.13, № 3.-P. 153-170.

118. Lochrin C. Esthesioneuroblastoma // Med. Pediatr. Oncol. 1989. -Vol.17.-P.433-438.

119. Lopes S.L., Almeida S.M., Costa A.L. et al. Imaging findings of E wing's sarcoma in the mandible //J. Oral. Sci. 2007. - Vol.49, № 2. - P. 167171.

120. Luksch R., Sampietro G., Collini P. et al. Prognostic value of clinicopathologic characteristics including neuroectodermal differentiation inosseous Ewing's sarcoma family of tumors in children // Tumori. 1999. - Vol.85, № 2. - P. 101-107.

121. Lumadue J.A., Askin F.B., Perlman E.J. MIC2 analysis of small cell carcinoma // Am. J. Clin. Pathol. 1994. - Vol. 102. - P. 692-694.

122. Maletz N., McMorrow L.E., Greco M.A. et al. Ewing's sarcoma: pathology, tissue culture and cytogenetics // Cancer. 1986. - Vol. 58. - P.252-257.

123. Marcus P.B., Million R.R. The effect of primary tumor size on the prognosis of Ewing's sarcoma // Int. J. Radiat. Oncol. Biol. Phys. 1984. -Vol.10.-P.88.

124. Marec-Berard P., Philip T. Ewing sarcoma: the pediatrician point of view // Pediatr. Blood Cancer. 2004. - Vol.42. - P.477-480.

125. Marina N.M., Etcubanas E., Parham D.M. et al. Peripheral neuroectodermal tumor (peripheral neuroepithelioma) in children: a review of the St. Jude experience and controversies and management // Cancer. 1989. -Vol.64.-P. 1952-1960.

126. Martin R.C., Brennan M.F. Adult soft tissue Ewing sarcoma or primitive neuroectoderm tumors: predictors of survival? // Arch. Surg. 2003. -Vol.138. -P.281-285.

127. May W.A., Lessnick S.L., Braun B.S. et al. The Ewing's sarcoma EWS/FLI-1 fusion gene encodes a more potent transcriptional activator and is a more powerful transforming gene than FLI-1 // Mol. Cell Biol. 1993. - Vol.13. -P.7393-7398.

128. Melot T., Gruel N., Doubeikovski A. et al. Production and characterization of mouse monoclonal antibodies to wild-type and oncogenic FLI-1 proteins // Hybridoma. 1997. - Vol.16. - P.457-464.

129. Miettinen M., Lehto V.P., Virtanen I. Histogenesis of Ewing's sarcoma. An evaluation of intermediate filaments and endothelial cell markers // Virchows Arch. B. Cell. Patol. 1982. - Vol.41. - P.277-284.

130. Mierau G.W., Berry P.J., Malott R.L., Weeks D.A. Appraisal of the comparative utility of immunohistochemistry and electron microscopy in the diagnosis of childhood round cell tumors // Ultrastruct. Pathol. 1996. - Vol. 20. -P.507-517.

131. Miettinen M., Limon J., Niezabitowski A., Lasota J. Patterns of keratin polypeptides in 110 biphasic, monophasic, and poorly differentiated synovial sarcomas // Virchows Arch. 2000. - Vol. 437. - P.275-283.

132. Miller R.W. Contrasting epidemiology of childhood osteosarcoma, Ewing's tumor, and rhabdomyosarcoma // Natl. Cancer Inst. Monogr. 1981. -Vol.56.-P.9-14.

133. Millon R.R., Cassini N.J. Managment of head and neck cancer: a multidisciplinary approach. Philadelphia: J.B.Lippincott, 1984.

134. Miser J.S., Kinsella T.J. Ifosfamide with mesna uroprotection and etoposide: an effective regimen in the treatment of recurrent sarcomas and other tumors of children and young adults // J. Clin. Oncol.- 1987. Vol.5. - P.l 1911198.

135. Moll R., Lee I., Gould V.E. Immunocytochemical analysis of Ewing's tumors: patterns of expression of filaments and desmosomal proteins indicate cell type heterogeneity and pluripotential differentiation // Am. J. Patol. 1987. — Vol.127.- P.288-304.

136. Mugneret F., Lizard S., Aurias A. et al. Chromsomes in Ewing's sarcoma. II. Nonrandom additional changes, trisomy 8 and der(16)t(l;16) // Cancer Genet. Cytogenet. 1988. - Vol.32. - P.239-245.

137. Nascimento A.G., Unni K.K., Pritchard D.J. et al. A clinicopathologic study of 20 cases of large-cell (atypical) Ewing's sarcoma of bone // Am. J. Surg. Pathol. 1980. - Vol.4. - P.29-36.

138. Nesbit M.E., Gehan E.A., Burgert O.B.Jr. et al. Multimodal therapy for the management of primary, nonmetastatic Ewing sarcoma of bone: a long-term follow-up of the first intergroup study // J. Clin. Oncol. — 1990. Vol.8. -P.1664-1674.

139. Nesbitt KA., Vidone RA. Primitive neuroectodermal tumor (neuroblastoma) arising in sciatic nerve of a child // Cancer. 1976. - Vol.37. -P.1562-1570.

140. O'Byrne K., Steward W.P. The role of chemotherapy in the treatment of adult soft tissue sarcomas // Oncology. 1999. - Vol.56. - P. 13-23.

141. Okamoto S., Hisaoka M., Ishida T. et al. Extraskeletal myxoid chondrosarcoma: a clinicopathologic, immunohistochemical, and molecular analysis of 18 cases // Hum. Pathol. 2001. - Vol. 32. - P. 1116-1124.

142. Ong F., Moonen L.M., Gallee M.P. et al. Prognostic factor in transitional cell cancer of the bladder: an emerging role for bcl-2 and p53 // Radioter. Oncol. 2001.- Vol.61 (2).-P.169-175.

143. Ordonez N.G. Application of immunocytochemistry in the diagnosis of soft tissue sarcomas: a review and update // Adv. Anat. Pathol. 1998. - Vol. 5. - P.67-85.

144. O'Sullivan P., O'Dwyer H., Flint J. et al. Malignant chest wall neoplasms of bone and cartilage: a pictorial review of CT and MR findings // Br. J. Radiol. 2007. - Vol.80, № 956. - P.678-684.

145. Ozaki T., Hillmann A., Hoffmann C. et al. Significance of surgical margin on the prognosis of patients with Ewing sarcoma // Cancer. 1996. -Vol.78.-P.892-900.

146. Panagopoulos I., Mertens F., Isaksson M. et al. Molecular genetic characterization of the EWS. CHN and RBP56. CHN fusion genes in extraskeletal myxoid chondrosarcoma // Genes Chromosomes Cancer. 2002. - Vol.35. -P.340-352.

147. Parham D.M., Hijazi Y., Steinberg S.M. et al. Neuroectodermal differentiation in Ewing's sarcoma family of tumors does not predict tumor behavior// Hum. Pathol. 1999. - Vol.30. - P.911-918.

148. Parija T., Shirley S., Uma S. et al. Type 1 (11; 22) (q24:ql2) translocation is common in Ewing's sarcoma/peripheral neuroectodermal tumour in South Indian patients // J. Biosci. 2005. - Vol.30.- P.371-376.

149. Patel R.M., Downs-Kelly E., Weiss S.W. et al. Dual-color, break-apart fluorescence in situ hybridization for EWS gene rearrangement distinguishes clear cell sarcoma of soft tissue from malignant melanoma // Mod. Pathol. 2005. -Vol.18.-P.1585-1590.

150. Paulsen M., Ahrens S., Burdach S. et al. Primary metastatic (stage IV) Ewing tumor: survival analysis of 171 patients from the EICESS studies // Ann. Oncol. 1998. - Vol. 9. - P. 275.

151. Paulussen M., Ahrens S., Dunst J. et al. Localised Ewing tumor of bone: final results of the cooperative Ewing sarcoma study CESS 86 // J. Clin. Oncol. 2001. - Vol. 19. - P. 1818-1829.

152. Paulussen M., Ahrens S., Lehnert M. et al. Second malignancies after Ewing tumor treatment in 690 patients from a cooperative German/Austrian/Dutch study//Ann. Oncol. -2001.-Vol.12.-P. 1619-1630.

153. Pehamberger H., Soyer H.P., Steiner A. et al. Adjuvant interferon alfa-2a treatment in resected primary Stage II cutaneous melanoma. Austrian Malignant Melanoma Cooperative Group // J. Clin. Oncol. 1998. - Vol.16. - P. 1425-1429.

154. Pellin A., Boix J., Blesa J.R. et al. EWS/FLI-1 rearrangement in small round cell sarcomas of bone and soft tissue detected by reverse transcriptase polymerase chain reaction amplification // Eur. J. Cancer. — 1994. Vol.30A. — P.827-831.

155. Perentes E., Rubinstein L.J. Immunohistochemical recognition of human neuroepithelial tumors by anti-Leu 7 (HNK-1) monoclonal antibody // Acta. Neropathol. (Berl). 1986. - Vol.69. - P.227-233.

156. Perentesis J., Katsanis E., De For T. et al. Autologous stem cell transplantation for high-risk pediatric solid tumors // Bone Marrow Transplant. -1999.-Vol. 24.-P. 609.

157. Perlman E.J., Dickman P.S., Askin F.B. et al. Ewing's sarcoma-routine diagnostic utilization of MIC2 analysis: a Pediatric Oncology Group. Children's Cancer Group Intergroup Study // Hum. Pathol. 1994. - Vol.25. -P.304-307.

158. Perlman E.J., Lumadue J.A., Hawkins A.L. et al. Primary cutanous neuroendocrine tumors. Diagnostic use of cytogenetic and MIC2 analysis // Cancer Genet. Cytogenet. 1995. - Vol.82. - P.30-34.

159. Peter M., Couturier J., Pacquement H. et al. A new member of the ETS family fused to EWS in Ewing tumors // Oncogene. 1997. — Vol.14. -P.l 159-1164.

160. Petrioli R., Coratti A., Correale R. et al. Adjuvant epirubicin with or without ifosfamide for adult soft-tissue sarcoma // Am. J. Clin. Oncol. 2002. -Vol.25. -P.468-473.

161. Picci P., Sangiorgi L., Rougraff B.T. et al. Relationship of chemotherapy-induced necrosis and surgical margins to local recurrence in osteosarcoma // J. Clin. Oncol. 1994. - Vol.12. - P.2699-2705.

162. Picci P., Bohling T., Bacci G. et al. Chemotherapy-induced tumor necrosis as a prognostic factor in localized Ewing's sarcoma of the extremities // J. Clin. Oncol. 2001. - Vol. 15. - P. 1553.

163. Pinkerton C.R. Rhabdomyosarcoma // Clinical challenges in paediatric oncology. Ed by C.R. Pinkertoln et al. Oxford: Isis Medieal Media Ltd, 1999. - 143 p.

164. Pinto A., Grant L.H., Hayes F.A. et al. Immunohistochemical expression of neuron-specific enolase and leucin Ewing's sarcoma of bone // Cancer. 1989. - Vol.64. - P. 1266-1273.

165. Pisters P.W.T., CTSallivan B., Maki R.G. Evidence-Based Recommendations for Local Therapy for Soft Tissue Sarcomas // J. Clin. Oncol. -2007. Vol.25. - P. 1003-1008.

166. Polonowski J.M., Brasnu D., Roux F.X. et al. Esthesioneuroblastoma: complete tumorresponse after induction chemotherapy // Ent. J. 1992. - Vol.69. — P.743-745.

167. Pratt C.B., Meyer W.H., Marina N. et al. Ewing sarcoma under the age of 12 years // Proc. Annu. Meet. Am. Soc. Clin. Oncol. 1994. - Vol.12. -A1431.

168. Prindull G., Jurgens H., Jentsch F. et al. Radiotherapy of non metastatic Ewing's sarcoma // J. Cancer. Res. Clin. Oncol. 1985. - Vol. 110. - P. 127.

169. Qian X., Jin L., Shearer B.M. et al. Molecular diagnosis of Ewing's sarcoma primitive neuroectodermal tumor in formalin-fixed paraffin-embedded tissues by RT-PCR and fluorescence in situ hybridization // Diagn. Mol. Pathol. -2005.-Vol. 14. P.23-28.

170. Raftopoulos H., Antman K.H. Chemotherapy of sarcomas of bone and soft tissue: The chemotherapy source book, 3rd Edition. Published by Lippincott Williams & Wilkins, 2001. P. 760-778.

171. Raney B., Schnaufer L., Ziegler M. et al. Treatment of children with neurogenic sarcoma: experience at the Children's Hospital of Philadelphia, 19581984 // Cancer. 1987. - Vol.59. - P.l-5.

172. Raney R.B., Alien A., O'Neill J. et al. Malignant fibrous histiocytoma of soft tissue in childhood // Cancer. 1991. - Vol.262. - P.58-63.

173. Rangdaeng S., Truong L.D. Comparative immunohistochemical staining for desmin and muscle-specific actin. A study of 576 cases // Am. J. Clin. Pathol. 1991.-Vol. 96.-P. 32-45.

174. Razek A., Perez C.A., Tefft M. et al. Local control related to radiation dose, volume and site of primary lession in Ewing's sarcoma // Cancer. 1980. -Vol.46.-P.516-521.

175. Rettig W.J., Garin-Chesa P., Huvos A.G. Ewing's sarcoma: new approaches to histogenesis and molecular plasticity (editorial comment) // Lab. Invest. 1992. - Vol.66. - P.133-137.

176. Riggi N., Stamenkovic I. The biology of Ewing sarcoma // Cancer Lett. 2007. - Vol.254 (1). - P.l-10.

177. Rodriguez-Galindo C., Spunt S.L., Pappo A.S. Treatment of Ewing sarcoma family of tumors: current status and outlook for the future // Med. Pediatr. Oncol. 2003.-Vol.40.-P.276-287.

178. Rodriguez-Galindo C., Liu T., Krasin M.J. et al. Analysis of prognostic factors in Ewing sarcoma family of tumors: review of St.Jude Children's Research Hospital studies //Cancer. -2007. Vol.110 (2). - P.375-384.

179. Roessner A.J., Ergens H. Round cell tumors of bone // Pathol. Res. Pract. 1993. - Vol. 189. - P. 1111 -1136.

180. Rosen G., Caparros B., Nirenberg A. et al. Ewing sarcoma: ten-year experience with adjuvant chemotherapy // Cancer. 1981. - Vol.47. - P.2204-2213.

181. Rosen G. Management of malignant bone tumors in children and adolescents // Pediatr. Clin. North. Am. 1976. - Vol.23. - P.183-213.

182. Rosito P., Mancini A.F., Rondell R. et al. Italian cooperative study for the treatment of children and young adults with localized Ewing sarcoma of bone // Cancer. 1999. - Vol. 86. - P. 421.

183. Rossi S., Orvieto E., Furlanetto A. et al. Utility of the immunohistochemical detection of FLI-1 expression in round cell and monoclonal antibody // Mod. Pathol. 2004. - Vol.17. - P.547-552.

184. Sandberg A.A., Bridge J.A. Updates on cytogenetics and molecular genetics of bone and soft tissue tumors: Ewing sarcoma and peripheral primitive neuroectodermal tumors // Cancer Genet. Cytogenet. 2000. - Vol. 123. - P.1-26.

185. Sauer R., Jurgens H., Burgers J.M.V. et al. Prognostic factors in the treatment of Ewing's sarcoma // Radiother. Oncol. 1987. - Vol. 10. - P. 101.

186. Schmidt D., Harms D., Burdach S. Malignant peripheral neuroectodermal tumors of childhood and adolescence // Virchows. Arch. A Histopathol. Anat. 1985. - Vol.406. - P.351-365.

187. Schmidt D., Herrmann C., Jurgens H., Harms H. Malignant peripheral neuroectodermal tumor and its necessary distinction from Ewing's sarcoma: a report from the Kiel Pediatric Tumor Registry // Cancer. 1991. - Vol.68. -P.2251-2259.

188. Schmidt D., Harms D. The applicability of immunohistochemistry in the diagnosis and differential diagnosis of malignant soft tissue tumors // Klin. Paediatr. 1990. - Vol.202. - P.224-229.

189. Schmidt D., Harms D., Jurgens H. et al. Small-cell pediatric tumors: histology, immunohistochemistry, and electron microscopy // Clin. Lab. Med. -1987.-Vol. 7. P.63-89.

190. Schuck A., Ahrens S., Paulussen M. et al. Local therapy in localised Ewing tumors: results of 1058 patients treated in the CESS 81, CESS 86, and EICESS 92 trials // Int. J. Radiat. Oncol. Biol. Phys. 2003. - Vol.55. - P. 168177.

191. Scotlandi K., Serra M., Manara M. et al. Immunostaining of the p30.32MIC2 antigen and molecular detection of EWS rearrangements for the diagnosis of Ewing's sarcoma and peripheral neuroectodermal tumor // Hum. Pathol. — 1996. Vol.27. - P.408-416.

192. Scully S.P., Temple H.T., O'Keefe R.J. et al. Role of surgical resection in pelvic Ewing's sarcoma // J. Clin. Oncol. 1995. - Vol.13. -P.2336-2341.

193. Seemeayer T.A., Vekemans M., de Chadarevian J. Histological and cytogenetic findings in a malignant tumor of the chest wall and lung (Askin tumor) // Virchows Arch. A Histopathol. Anat. 1985. - Vol.408. - P289-296.

194. Shankar A.G., Pinkerton C.R., Atra A. et.al. Local therapy and other factors influencing site of relapse in patients with localised Ewing sarcoma // Eur. J. Cancer. 1999. - Vol.12. - P.1698-1704.

195. Simon M:A., Finn H.A. Diagnostic strategy for bone and soft-tissue tumors // J. Bone and Joint Surg. 1993. - Vol.75-A. - P.622-631.

196. Smith M.A., Ungerleider R.S., Horowitz M.E., Simon R. Influence of doxorubicin dose intensity on response and outcome for patients with osteogenic sarcoma and Ewing's sarcoma // J. Natl. Cancer. Inst. 1991. - Vol. 83. - P. 1460.

197. Smith T.A., Machen S.K., Fisher C., Goldblum J.R. Usefulness of cytokeratin subsets for distinguishing monophasic synovial sarcoma from malignant peripheral nerve sheath tumor // Am. J. Clin. Pathol. 1999. - Vol. 112. -P. 641-648.

198. Smorenburg C.H., Van Groeningen C.J., Meijer O.W. et al. Ewing's sarcoma and primitive neuroectodermal tumour in adults: single-centre experience in The Netherlands//Neth. J. Med. 2007. - Vol.65(4).- P.132-136.

199. Sorensen P.H.B., Lessnick S.L., Lopez-Terrada D. et al. A second Ewing's sarcoma translocation, t(21;22) fuses the EWS gene to another ETS-family transcription factor, ERG // Nat. Genet. 1994. - Vol. 6. - P. 146-151.

200. Stavropoulos N.E., Filiadis I., Ioachim E. et al. Prognostic significance of p53, bcl-2 and Ki-67 in high risk superficial bladder cancer // Anticancer Res. 2002. - Vol.22(6B). - P.3759-3764.

201. Strauss S.J., Mc Tiernan R., Driver D. et al. Single center experience of a new intensive induction therapy for Ewing family of tumors: feasibility, toxicity, and stem cell mobilization properties // J. Clin. Oncol. 2003. - Vol.15. -P.2974-2981.

202. Sugimoto T., Umezawa A., Hata J. Neurogenic potential of Ewing's sarcoma cells // Virchows. Arch. 1997. - Vol.430(l).- P.41-46.

203. Suster S. Recent advances in the application of immunohistochemical markers for the diagnosis of soft tissue tumors // Semin. Diagn. Pathol. 2000. -Vol.17.-P.225-235.

204. Swanson P.E., Wick M.R. 50ft tissue tumors. In: Diagnostic imunopathology, 2nd ed. Ed by R.B. Colvill, A.K. Bhan, R.T. McCluskey. New York: Raven Press, 1995. - P.599-616.

205. Takahashi H., Ohara S., Yamada M. et al. Esthesioneuroepithelioma: a tumor of true olfactory epithelium origin. An ultrastructural and immunohistochemical study // Acta. Neropathol. (Berl). 1987. - Vol.75. - P. 147155.

206. Takatoshi O., Veena N., Rao E., Reddy S.P. EWS/Fli-1 chimeric protein is a transcriptional activator // Cancer Res. 1993. — Vol.53. - P.5859-5863.

207. Tanaka K., Iwakuma T., Harimaya K. et al. EWS-Flil antisense oligodeoxynucleotide inhibits proliferation of human Ewing's sarcoma and primitive neuroectodermal tumor cells // J. Clin. Invest. 1997. — Vol. 15; 99(2). -P.239-247.

208. Thiele C.J. Pediatric peripheral neuroectodermal tumours, oncogenes and differentiation // Cancer Invest. 1990. - Vol.8. - P.629-639.

209. Tiemey J.F., Mosseri V., Stewart L.A. et al. Adjuvant chemotherapy for soft-tissue sarcoma: Review and meta-analysis of the published results of randomized clinical trials // Brit. J. Cancer. 1995. - Vol.72. - P.469-457.

210. Toretsky J.A., Connell Y., Neckers L. et al. Inhibition of EWS-FLI-1 fusion protein with antisense oligodeoxynucleotides // J. Neurooncol. 1997. -VoI.31(l-2). - P.9-16.

211. Triche T.J., Askin F.B., Kissane J.M. Neuroblastoma, Ewing sarcoma, and the differential diagnosis of small, round, blue cell tumour // Major problem in pathology. Feingold M., Bennington J., eds. Vol.18. Philadelphia: Saunders, 1987. -P.145-195.

212. Triche T.J. Neuroblastoma and other childhood neural tumours: a review//Pediat. Pathol. 1990,- Vol. 10. -P. 175-193.

213. Tsokos M., Linnoila R.I., Chandra R.S., Triche T.J. Neurospecific enolase in the diagnosis of neuroblastoma and other small, round-cell tumors in children // Hum. Pathol. 1993. - Vol. 15. - P.575-584.

214. Ture-Carel C., Aurias A., Mugneret F. et al. Chromosomesin Ewing's sarcoma. I. An evaluation of 85 cases of remarkable consistency of t(l I;22)(q24;ql2) // Cancer Genet. Cytogenet. 1988. - Vol.32. - P.229-238.

215. Ture-Carel C., Philip I., Berger M.P. et al. Chromosome study of Ewing's sarcoma (ES) cell lines. Consistency of a reciprocal translocation t( 11 ;22)(q24;q 12) // Cancer.Genet.Cytogenet. 1984. - Vol.12. - P. 1-19.

216. Van Geel A.N., Pastorino V., Jauch K.W. et al. Surgical treatment of lung metastases. The EORTC-STBSG study of 255 patients // Cancer. 1996. -Vol.77. -P.675-682.

217. Van Unnik J.A., Coindre J.M., Contesso C. et al. Grading of soft tissue sarcomas: experience of the EORTC soft tissue and bone sarcoma group // Eur. J. Cancer. 1993. - Vol.29 A. - P.2089-2093.

218. Vander G.R.A. Osteosarcoma and its variants // Orthop. Clin. North America. 1996. - Vol.27. - P.575-581.

219. Van Valen F., Winkelmann W., Jurgens H. Type I and type II insulinlike growth factor reccptors and their function in human Ewing's sarcoma cells // J. Cancer. Res. Oncol. 1992. - Vol.118. - P.269-275.

220. Verma S., Quirt I., McCready D. et al. Systematic Review of Systemic Adjuvant Therapy for patients at High Risk for Recurrent Melanoma // Cancer. -2006. Vol.10, № 7. - P. 1431-1442.

221. Veronesi U., Adamus J., Aubert C. et al. A randomized trial of adjuvant chemotherapy and immunotherapy in cutaneous melanoma // N. Engl. J. Med. 1982. - Vol.307. - P.913-916.

222. Vietti T.J., Gehan E.A., Nesbit M.E. et al. Multimodal therapy in metastatic Ewing's sarcoma: an intergroup study // Natl. Cancer. Inst. Monogr. -1981.-Vol.56.-P.279-284.

223. Vlasak R., Sim F.H. Ewing's sarcoma // Orthop. Clin. North America. 1996.-Vol.27.-P.591-603.

224. Vohra V.G. Roentgen manifestations in Ewing's sarcoma. A study of 156 cases // Cancer. 1967. - Vol.20. - P.727-733.

225. Wang M., Nilsson G., Carlberg M. et al. Specific and sensitive detection of the EWS/FLI1 fusion protein in Ewing's sarcoma by Western blotting //Virchows Arch. 1998.-Vol.432.-P.131-134.

226. Wasylyk B., Hahn S.L., Giovane A. The Ets family of transcription factors // Eur. J. Biochem. 1993. - Vol.211. - P.7-18.

227. Weidner N., Tjoe J. Immunohistochemical profile of monoclonal antibody 013: antibody that recognizes glycoprotein p30.32MIC2 and is useful in diagnosing Ewing's sarcoma and peripheral neuroepithelioma // Am. J. Surg. Pathol. 1994.-Vol. 18. -P.486-494.

228. Weiss S.W. Histological typing of soft tissue tumors. Heidelberg: Springer-Verlag/World Health Organization, 1994.

229. Wexler L.H., Delaney T.F., Tsokos M. et al. Ifosfamide and etoposide plus vincristine, doxorubicin, and cyclophosphamide for newly diagnosed Ewing's sarcoma family of tumors // Cancer. 1998. - Vol. 78. - P. 901.

230. Whang-Peng J., Triche T.J., Knutsen T. Cytogenetic characterization of selected small round cell tumors of childhood // Cancer Genet. Cytogenet. -1986. Vol.21. - P. 185-208.

231. Wheatley K., Ives N., Hancock B. et al. Does adjuvant interferon-a for high-risk melanoma provide a worthwhile benefit? A meta-analysis of the randomized trial // Cancer. Treatment. Reviews. 2003. - Vol.29. - P.241-252.

232. Wilkins R.M., Pritchard D.J., Burgert E.O. et al. Ewing's sarcoma of bone: experience with 140 patients // Cancer. 1986. - Vol.58. - P.2551-2555.

233. Winkelmann W., Jürgens H. Lokalkontrolle beim Ewing-Sarcom. Vergleichende Ergebnisse nach intralasionaler, marginaler bzw. Tumorresektion im Gesunden // Z. Orthoph. Grenzgeb. 1989. - Vol. 127. - P.424-426.

234. Workman M.L., Soukup S.W., Neely J.E. et al. Biologie characteristics of four Ewings's sarcomas // Cancer Genet. Cytogenet. 1985. -Vol.15.-P.215-225.

235. Wunder J.S., Paulian G., Huvos A.G. et al. The histological response to chemotherapy as a predictor of the oncological outcome of operative treatment of Ewing sarcoma // J. Bone. Surg. Amer. 1998. - Vol. 80. - P. 1020.

236. Wylie J.P., O'Sullivan B., Catton C., Gutierrez E. Contemporary radiotherapy for soft tissue sarcoma // Semin. Surg. Oncol. 1999. - Vol.17. — P.33-46.

237. Xin J.H., Cowie A., Lachance P., Hassel J.A. Molecular cloning and characterization of REA3, a new member of the Ets oncogene family that is differentially expressed in mouse embryonic cells // Genes Dev. 1992. - Vol.6. -P.481-496.

238. Yang R.S., Eckardt J.J., Eilber F.R. et al. Surgical indications for Ewing sarcoma of the pelvis // Cancer. 1995. - Vol.76. - P.1388-1397.

239. Yee D., Favoni R.E., Lebovic G.S. et al. Insulin-like growth factor I expression by tumors of neuroectodermal origin with the t(ll;22) chromosomal translocation. A potential autocrine growth factor // J. Din Invest. 1990. - Vol. 86. - P.1806-1814.

240. Yoshino N., Kojima T., Asami S. et al. Diagnostic significance and clinical applications of chimeric genes in Ewing's sarcoma // Biol. Pharm. Bull. -2003. Vol.26. - P.585-588.

241. Zhang W.D., Xie C.M., Mo Y.X., Li J.Y. CT and MRI features of peripheral primitive neuroectodermal tumor // Ai Zheng. 2007. - Vol.26(6). -P.643-646.

242. Zoubek A., Dockhorn-Dwornniczak B., Delattre O. et al. Does expression of different EWS chimeric transcripts define clinically distinct risk groups of Ewing tumor patients? // J. Clin. Oncol. 1996. - Vol.14. - P.1245-1251.

243. Zucman-Rossi J., Batzer M.A., Stoneking M. et al. Interethnic polymorphism of EWS intron 6: genome plasticity mediated by Alu retroposition and recombination // Hum. Genet. 1997. - Vol.99, № 3. - P.357-363.

244. Zucman J., Delattre O., Desmaze C. et al. Cloning and characterization of the Ewing's sarcoma and peripheral neuroepithelioma t(ll;22) translocation break points // Genes Chromosomes Cancer. 1992. - Vol.5. -P.271-277.

245. Zucman J., Melot T., Desmaze C. et al. Combinatorial generation of variable fusion proteins in the Ewing family of tumors // EMBO J. 1993. -Vol. 12.-P.4481-4487.