Автореферат и диссертация по ветеринарии (16.00.05) на тему:Заживление инфицированных ран и состояние системы гемостаза у бычков на фоне гиперкальциемии и гипергепаринемии

ДИССЕРТАЦИЯ
Заживление инфицированных ран и состояние системы гемостаза у бычков на фоне гиперкальциемии и гипергепаринемии - диссертация, тема по ветеринарии
АВТОРЕФЕРАТ
Заживление инфицированных ран и состояние системы гемостаза у бычков на фоне гиперкальциемии и гипергепаринемии - тема автореферата по ветеринарии
Богданов, Валерий Владимирович Оренбург 2003 г.
Ученая степень
кандидата ветеринарных наук
ВАК РФ
16.00.05
 
 

Автореферат диссертации по ветеринарии на тему Заживление инфицированных ран и состояние системы гемостаза у бычков на фоне гиперкальциемии и гипергепаринемии

На правах рукописи

Богданов Валерий Владимирович

ЗАЖИВЛЕНИЕ ИНФИЦИРОВАННЫХ РАН И СОСТОЯНИЕ СИСТЕМЫ ГЕМОСТАЗА У БЫЧКОВ НА ФОНЕ ГИПЕРКАЛЬЦИЕМИИ И ГИПЕРГЕПАРИНЕМИИ

(экспериментально-клинические исследования)

16.00.05 - ветеринарная хирургия

Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата ветеринарных наук

Оренбург - 2003

Работа выполнена на кафедре хирургии Ульяновской государственной сельскохозяйственной академии

Научный руководитель: доктор ветеринарных наук, профессор Ермолаев В.А.

Официальные оппоненты: доктор ветеринарных наук, профессор

Дмитриева Т.А.; кандидат биологических наук Максимова О.В.

V (

Ведущая организация (предприятие): Казанская государственная академия ветеринарной медицины им. Н.Э.Баумана

Защита состоится "3" октября 2003 г. в 10 часов на заседании диссертационного совета Д 220.051.01 при Оренбургском государственном аграрном университете по адресу: 460795, г. Оренбург, ул. Челюскинцев, 18.

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке Оренбургского ГАУ.

Автореферат разослан "25" августа 2003 г.

Ученый секретарь диссертационного совета, профессор

Тайгузин Р.Ш.

ШУЬ-к 76 S3

1. ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

1.1. Актуальность темы. В патологии животных хирургические заболевания занимают более 40% от всех незаразных болезней животных. В решении данной проблемы внесли значительный вклад отечественные ученые (Кузнецов Г.С., 1964, 1980; Мосин В.В., 1975; Плахотин М.В., 1977; Шакалов К.И., 1981; Шакуров М.Ш., 1983; Лебедев А.В., 1992; и другие).

Ими были изучены многие вопросы заживления ран при различных методах их лечения, установлены определенные закономерности изменений системы крови при хирургической патологии.

Изучением вопросов гемостаза у животных занимались Н.Я.Кокович (1973), Н.Н.Морозова (1977), П.А.Палевич, Л.Ф.Руш (1978), А.С.Кашин (1986), Б.С.Семенов, А.Т.Вощевоз (1990), А.В.Яшин (1998), В.А.Ермолаев (1992-1998).

В медицинской литературе имеются данные о влиянии различных звеньев гемостаза на раневой процесс (Кузин М.И. и др., 1981, 1990; Knighton D. et al., 1982).

Дальнейшее изучение вопросов взаимосвязи гемостаза и заживления ран позволит раскрыть скрытые стороны раневого процесса, что. несомненно, позволит более эффективно воздействовать на процессы регенерации у животных.

Исходя из вышеизложенного, считаем данную проблему актуальной, требующей своего разрешения.

Тема диссертационной работы является частью плана НИР кафедры хирургии УГСХА и имеет номер государственной регистрации 01.9.20013688.

1.2. Целью настоящей работы является изучение заживления инфицированных ран у бычков на фоне гиперкальциемии и гипергепаринемии.

Для достижения намеченной цели предстояло решить следующие задачи:

1. Определить динамику показателей клинического состояния и морфологического состава крови при экспериментальных гнойных процессах (St. aureus) у бычков.

2. Изучить характер заживления экспериментальных ран у крупного рогатого скота в условиях гиперкальциемии и гипергепаринемии.

3. Установить клиническое состояние бычков, морфологический состав и физические свойства крови при заживлении экспериментально инфицированных ран в условиях различной активности системы гемостаза.

4. Изучить изменения показателей системы гемостаза при лечении экс-

POL. НАЦИОНАЛЬНАЯ БИБЛИОТЕКА С. Петербург

периментально инфицированных ран у бычков на фоне гиперкальциемии и гипергепаринемии.

1.3. Научная новизна работы. Получены сведения, которые расширяют представление о влиянии раневого процесса на состояние системы крови у крупного рогатого скота.

Впервые установлены коагулопатические сдвиги в организме крупного рогатого скота при экспериментально инфицированных кожно-мышечных ранах.

Предложены новые методы повышения активности процессов заживления экспериментально инфицированных кожно-мышечных ран.

Ветеринарная хирургия пополнилась данными, которые могут быть использованы для разработки более эффективных и физиологичных методов воздействия на репаративный процесс.

1.4. Теоретическая и практическая значимость работы. Отмечены некоторые аспекты патогенеза при хирургической патологии крупного рогатого скота, связанные с гемостазиологическими сдвигами.

Получены сведения о степени влияния гнойного (St. aureus) и раневого процессов на активность системы гемостаза.

Выявлены особенности динамики клинико-физиологических, гематологических и гемостазиологических показателей в послеоперационном периоде при разных медикаментозных способах воздействия.

Предложены препараты-корректоры системы гемостаза, способствующие сокращению сроков лечения инфицированных ран.

1.5. Внедрение. Научные разработки внедрены в учебный процесс кафедр хирургии: Оренбургского, Новосибирского, Башкирского государственных аграрных университетов, Ульяновской, Самарской государственных сельскохозяйственных академий.

1.6. Апробация работы. Основные положения диссертационной работы доложены и обсуждены на: научно-практических межвузовских конференциях Ульяновской государственной сельскохозяйственной академии (Ульяновск, 1999, 2001); Международной конференции в Казанской государственной академии ветеринарной медицины им.Н.Э.Баумана (Казань, 2001); Международной конференции в Оренбургском государственном аграрном университете (Оренбург, 2001).

1.7. Публикации. По теме диссертации опубликовано четыре работы.

1.8. Структура и объем работы. Диссертация изложена на 168 страницах машинописного текста и включает введение, обзор литературы, собствен-

ные исследования, обсуждение полученных результатов, выводы, практические предложения. Работа иллюстрирована 36 таблицами и 30 рисунками. Список литературы включает 188 источников, в том числе 51 зарубежных авторов.

1.9. Основные положения, выносимые на защиту:

1. Клинико-гемостазиологические изменения у бычков под воздействием St. aureus.

2. Заживление экспериментальных ран у крупного рогатого скота протекало эффективнее в группах с применением препаратов корректоров.

3. Динамика клинического состояния, морфологического состава, физических свойств крови и системы гемостаза при лечении экспериментально инфицированных ран у бычков на фоне гиперкальциемии и гипергепарине-мии.

2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

Для опытов были использованы 15 клинически здоровых бычков черно-пестрой породы, средней упитанности в возрасте 8-12 месяцев. Были сформированы три группы по пять голов в каждой, из них первая и вторая подопытные и контрольная.

Клинические и гематологические исследования проводились в лаборатории кафедры хирургии у животных всех групп в одни и те же сроки.

Первые фоновые исследования проводили с интервалом пять дней.

Гнойные процессы у бычков вызывали внутримышечным введением St. aureus.

На третьи сутки после инфицирования в месте воспалительного инфильтрата формировали кожно-мышечные раны - делая разрез кожи, подкожной клетчатки и мышц однотипно у всех животных.

Скорость заживления ран определяли с помощью обведения ее контуров, наносимых на целлофан и переведенных на миллиметровую бумагу. Высчитывали площадь, определяли время появления грануляций и эпителиальной ткани. Проводили термометрию раневой и контрольной поверхности, вели фотографирование. Повязки на раны не накладывали.

Учет клинических, гематологических и гемостазиологических показателей вели до введения взвеси микробов и после введения через трое суток, сразу после вскрытия воспалительного очага, а затем через три, шесть, 24 часа, двое, четверо, шестеро, десять, 14, 21 и 30 суток. Схема опытов представлена в таблице 1.

Таблица 1

Схема опытов

Сроки исследований 1 группа | 2 группа | 3 группа

Фоновые Первоначальное клиническое, гематологическое и гемостазиологическое исследование

Через сутки Внутримышечное введение взвеси культуры Staphylococcus aureus 1 мл на животное (2 млрд. микробных тел по спектру мутности)

Предоперационный период Клиническое, гематологическое и гемостазиологическое исследование

На третьи сутки после введения культуры Формирование гнойной кожно-мышечной раны путем вскрытия инфицированного (гнойного) очага

Фаза гидратации Местное применение раствора перманганата калия 1 -1 ООО

Фаза дегидратации Местное применение линимента бальзамического (по Вишневскому)

На 1,2, 3, 4, 5 сутки после формирования кожно-мышечной раны Внутривенное введение

10% р-р хло- гепарина рида кальция е

Сразу после операции, далее через 3, 6, 24 часа, на 2, 4, 6, 10, 14, 21 и 30 сутки Клиническое, гематологическое и гемостазиологическое исследование

Все лабораторные и клинические исследования выполняли по единым методикам, на всех этапах работы изучали следующие показатели:

температуру тела, частоту пульса и дыхания (Смирнов A.M., Конопель-ко П.Я., Пушкарев Р.П. и др., 1988);

морфологические показатели: эритроциты, лейкоциты, гемоглобин, ге-матокрит, лейкограмма, СОЭ (Кондрахин И.П., Курилов Н.В., Малахов А.Г. и др., 1985).

Показатели системы гемостаза изучали по следующим методикам: количество тромбоцитов по И.И.Данилову и В.А.Крыжановскому (1967); количество фибриногена по Р.А.Рутбергу (1961); содержание гепарина (по Сир-маи) в модификации В.А.Ермолаева (1997); активность фактора XIII в плазме крови по В.П.Балуде, Н.Н.Жуковской, Ж.Н. Руказенковой (1965); силиконовое время свертывания плазмы крови по Беллеру и Граффу (1971); протромбино-вое время по Квину в модификации по В.Н.Туголукову (1952); время свертывания крови по Ли и Уайту и ЛИПК (1971); аутокоагуляционный тест по Бер-

карду (1965); уровень фибринолитической активности крови по М.А.Котовщиковой и В.И.Кузнику (1962).

Результаты исследований подвергнуты математической обработке с использованием стандартных программ статистического анализа для IBM-совместимых компьютеров. Достоверность результатов определялась по параметрическому критерию Стьюдента (Лакин Г.Ф., 1980).

3. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

3.1. Клиническое состояние, морфологический состав крови и состояние системы гемостаза крупного рогатого скота при стафилококковой инфекции

Клинические исследования указывают, что стафилококковая инфекция у крупного рогатого скота вызывает общую и местную гипертермию, тахикардию, тахипноэ и гипотонию преджелудков.

У всех животных через десять-двенадцать часов после введения St.aureus наблюдалась выраженная, болезненная, умеренно плотной консистенции припухлость, хромота смешанного типа на правую газовую конечность.

Количество эритроцитов в крови животных до введения культуры St. aureus составило 6,35±0,519хЮ12/л. Количество гемоглобина в исходном положении и на третьи сутки в среднем уменьшилось на 1,3 г/л.

Количество лейкоцитов на третьи сутки инфицирования увеличилось до 10,49±1,45х109/л при среднефоновом значении 7,27±0,39х109/л, СОЭ у животных ускорялось через 15,30,45, 60 минут и 24 часа соответственно на 17,39%, на 15,99%, на 28,56%, на 20,23%, на 6,36%.

Гематокрит уменьшился с 36,34±0,58 л/л до 34,14±0,88 л/л.

Время свертывания крови (ВСК) удлиняется в несиликонированных и силиконированных условиях. ВСК (несилик.) удлиняется с 542±14,91 до 543,5±30,56 с. ВСК (силик.) - с 981,07±34,004 до 1406±160,06 с.

s

Таблица 2

Влияние стафилококковой инфекции (St aureus) на показатели клинического состояния, морфологического состава и физических свойств крови животных (и=15)

Показатели (ед. измерения) Исходные данные На 3-й сутки после инфицирования ±Ах to Р

Температура тела, °С 38,8±0,06 39,310,08 +0,5 5,06 <0,001

Частота пульса, уд. в минуту 76,3+2,45 82,412,68 +6,1 1,68 >0,05

Частота дыхания, дых. в минуту 20,2+0,78 25,712,10 4 5,5 2,46 <0,05

Сокращение рубца, раз в 2 минуты 3,9+0,15 3,510,20 -0,4 1,6 >0,05

Местная температура области инфицирования, °С 29,2±0,35 31,310,37 +2,1 4,16 <0,001

Местная температура контрольной поверхности, °С 28,5±0,26 30,3+0,37 + 1,8 3,98 <0,001

Количество эритроцитов, х1012/л 6,35±0,191 6,22+0,519 -0,13 0,23 >0,05

Количество гемоглобина, г/л 101,7+1,82 100,4+3,07 -1,3 0,36 >0,05

Количество лейкоцитов, хЮ9/л 7,27410,3969 10,494+1,4590 +3,22 2,13 <0,05

Лейкограмма, %:

эозинофилы 3,2±0,69 3,610,89 +0,4 0,37 >0,05

нейтрофилы юные 0,04±0,01 0,1710,08 +0,13 1,45 >0,05

нейтрофилы палочкоядерные 1,59±0,29 2,4810,46 +0,89 1,66 >0,05

нейтрофилы сегментоядерные 25,55+1,57 31,3012,03 +5,75 2,24 <0,05

лимфоциты 67,21±1,60 59,9811,84 -7,22 2,96 <0,01

моноциты 2,30±0,34 2,2410,46 -0,06 0,11 >0,05

СОЭ, мм: за 15 минут 1,71+0,132 2,07+0,182 +0,36 1,60 >0,05

за 30 минут 3,73±0,279 4,4410,467 +0,71 1,31 >0,05

за 45 минут 6,23±0,251 8,7210,553 +2,49 4,10 <0,001

за 60 минут 8,32±0,796 10,4310,895 +2,11 2,16 <0,05

за 24 часа 59,93+0,934 64,0011,362 +4,07 2,46 <0,05

Вязкость крови, ЕД 3,58±0,066 3,4110,097 -0,17 1,45 >0,05

Гематокрит, л/л 36,3410,580 34,1410,857 -2,2 2,08 <0,05

Время рекапьцификации удлиняется по сравнению с фоном (87,65±2,96 с) на 28,25 с (Р<0,01). Протромбиновое время удлиняется на 16,5% (Р<0,05),

количество фибриногена увеличивается с 6,34 г/л до 9,00 г/л (Р<0,001), активность фактора XIII снижена, содержание свободного гепарина крови увеличено, активность фибринолиза повышена на 13,1% (Р<0,05).

Таблица 3

Влияние стафилококковой инфекции (St aureus) на показатели гемостаза животных (и=15)

Показатели (ед. измерения) Исходные данные На 3-й сутки после инфицирования ±Ах td Р

Время свертывания крови (несилик.), с 452,1 + 14,91 543,5±30,56 +91,4 2,69 <0,01

ВСК (силик.), с 981,1±30,00 1406,4+160,06 44253 2,61 <0,01

Время рекальцификации, с 87,6+2,96 116,0±6,95 +28,4 3,75 <0,001

Силиконовое время, с 144,4±3,31 162,9±13,93 +18,5 1,29 >0,05

Протромбиновое время, с 51,7±2,00 59,812,94 +8,1 2,38 <0,05

Количество фибриногена, г/л 6,34+0,339 9,01+0,547 +2,67 4,14 <0,001

Количество тромбоцитов, х ] 09/л 619,9±36,05 599,1±44,83 +20,8 0,36 >0,05

Фактор XIII, с 75,0+4,78 68,9+4,14 -6,1 1,01 >0,05

ТПГ, с 168,4+8,19 199,7116,00 +31,3 1,74 >0,05

Свободный гепарин, мкг/мл 12,87+0,733 14,4111,786 -1,54 0,79 >0,05

Фибринолиз, % 1,97±0,052 2,2210,106 +0,25 2,10 <0,05

Показатели АКТ:

А, % 42,7±3,62 45,514,29 +2,8 0,50 >0,05

МА, % 86,2±1,82 84,511,55 -1,7 0,71 >0,05

Ть мин. 2,3±0,15 2,310,34 0 0 >0,05

Тг, мин. 8,3±0,30 6,710,44 -1,55 3,00 <0,01

Ф, мин. 17,6±0,73 17,1+1,02 -05,5 0,40 >0,05

ИАТ, ед. 2,3±0,27 2,710,48 +0,4 0,73 >0,05

ИИТ, ед. 20,8±3,15 17,713,88 -3,1 0,62 >0,05

Исследования показывают, что при стафилококковой инфекции происходят изменения в активности системы гемостаза, выраженные в большей степени как подавление активности протромбинового комплекса, а увеличение количества фибриногена можно расценить как фактор защиты от инфекции.

3.2. Клиническая картина заживления экспериментальных ран у крупного рогатого скота

Через 24 часа после операции размеры ран в контрольной группе были больше на один сантиметр, отеки на два сантиметра, площадь ран на семь см2, чем в первой и второй опытной группе, площадь отеков на 46 см2 больше, чем в первой группе.

На четвертые сутки после операции у животных первой группы закончилась фаза гидратации (самоочищение ран, выделение гноя).

К шестым суткам после операции у животных второй опытной группы закончилась фаза гидратации.

Десятые сутки исследований показали, что у животных первой и второй опытных групп заживление идет лучше, чем в контрольной группе. В первой исчезает болезненность ран. В контрольной группе продолжается фаза гидратации.

Заживление на двадцать первые-тридцатые сутки после операции лучше и интенсивнее протекают в первой и второй опытных группах. В контрольной раны находятся в двух фазах гидратации и дегидратации, при пальпации сохранена болезненность.

Процент уменьшения площади раневой поверхности по суткам (рис. 1) у животных первой группы (хлорид кальция) составил на вторые сутки 3,7%, к десятым суткам - (-1,3%), к четырнадцатым суткам 3,2%, на 30-е сутки 1,9%.

У животных второй группы (гепарин) на четвертые сутки соответствовал 4,6%, к шестым суткам - (-3,6%), к четырнадцатым суткам 2,1%. На 30-е сутки процент уменьшения площади составил 1,8.

У животных контрольной группы на четвертые сутки показатель составил 2,6%, на десятые - (-2,8%), на четырнадцатые 3,5%, к тридцатым суткам 1,0%.

Анализируя полученные данные, можно сказать, что процент уменьшения площади раневой поверхности более выражен у животных первой и второй группы.

Величина относительного заживления ран у животных (рис.2) первой группы (хлорид кальция) на вторые сутки составляла 0,07 см2 на четвертые сутки повысилась до 0,09 см2 до десятых суток шло снижение -0,09 см2, с четырнадцатых суток повышение и к тридцатым суткам составляла 0,84 см2.

Во второй группе (гепарин) величина относительного заживления ран со вторых суток по десятые сутки скачкообразно снижалась. На четырнадцатые сутки составила 0,25 см2 и с повышением к тридцатым суткам составила 0,8 см2

1 группа (хлорид кальция) - 2 группа (гепарин) 3 группа (контрольная)

Рис 1 Динамика процентного уменьшения площади раневой поверхности у животных

Рис.2. Динамика относительного заживления ран

В контрольной группе величина относительного заживления ран, начиная со вторых суток -0,025 см2 по шестые увеличилась до 0,14 см2, к десятым снизилась, с четырнадцатых суток начался рост величины 0,48 см2 и к тридцатым достиг 0,73 см2.

Полученные результаты говорят о том, что величина относительного заживления ран по вторичному натяжению у крупного рогатого скота в первой и второй опытных группах была выше, чем в третьей (контрольной).

3.3. Клиническое состояние, морфологический состав и физические свойства крови крупного рогатого скота при заживлении экспериментально инфицированных кожно-мышечных ранах

У подопытных животных всех групп клинические исследования указывают, что при заживлении экспериментально инфицированных кожно-мышечных ранах отмечается общая и местная гипертермия, тахикардия, та-хипноэ, незначительная атония преджелудков. Идет снижение количества эритроцитов во всех трех группах, соответственно в среднем в первой на 2,06хЮ12/л (Р<0,001), во второй на 0,43хЮ,2/л (Р>0,05), в контрольной на 0,31х10|2/л (Р>0,05). Снижение обусловлено инфекционной анемией, крово-потерей во время операции.

Изменение количества гемоглобина в группах происходит почти аналогично изменениям количества эритроцитов.

Во всех группах, как до операции, так и после нее идет лейкоцитоз. Во второй группе лейкоцитоз после шести суток переходит в лейкоцитопению. Гематокрит у животных во второй группе незначительно отличается от исходных данных и колеблется в пределах 0,3110,013 до 0,37±0,010 л/л.

Незначительные изменения показателей вязкости крови у бычков происходят во второй группе (гепарин) по сравнению с исходными данными. Могут быть обусловлены кровотечением после операции, снижением количества гемоглобина и эритроцитов.

Самое значительное ускорение СОЭ происходит у животных во второй группе, и ускорялось через 15, 30, 45, 60 минут и 24 часа. Значения соответственно увеличивались на 47% (Р<0,01), 37,8% (Р<0,01). 43,5% (Р<0,001), 45,7% (Р<0,001), 7,6%(Р<0,01).

3.4. Состояние системы гемостаза крупного рогатого скота при заживлении экспериментально инфицированных кожно-мышечных ран

Изменение времени свертывания крови в несиликонированных условиях. В первой опытной группе на вторые сутки после операции и начала лечения ВСК удлинялось до 139% по отношению к фону. Во второй опытной группе самое длинное ВСК бьио на десятой минуте после операции, что составило 2142,7+100,04 с при исходном значении 452,1±14,906 с. Далее к концу исследований показатель ВСК пришел к исходному значению. В контрольной группе показатели ВСК в ходе исследования находились на уровне фонового значения.

Время свертывания крови в силиконированных условиях в первой опытной группе изменялось в пределах от 1406,4±160,065 с на третьи сутки после инфицирования и до 862,7±72,32 с на четырнадцатые сутки после операции. Во второй опытной группе ВСК изменялось в следующих пределах: 3897,5±95,88 с - 842,5±43,41 с. Самое долгое свертывание крови наблюдалось сразу после операции и составило 397% по отношению к фону. К концу исследований ВСК приблизилось к исходному значению. В контрольной группе ВСК на шестые сутки после операции было самым длинным - 1491,5+240,16 с и превысило фоновые показатели на 52%.

Время рекальцификации в первой опытной группе изменялось от 69,4+5,57 с до 147,4±14,34 с. Самое короткое время свертываемости плазмы наблюдалось на вторые сутки после операции и было ниже фонового показателя на 21%. Сразу после этого время рекальцификации резко увеличилось и максимального значения достигло на четвертые сутки после операции, что составило 168% по отношению к фону. Во второй опытной группе изменение показателей по отношению к исходному показателю было значительным - 71,1+6,06 с -477,2±151,19 с. Первое резкое увеличение времени рекальцификации было на десятой минуте после операции и начала лечения и по отношению к фону оно составляло 293%, затем оно вернулось к исходным данным, но в последующем на первые сутки после операции приняло максимальное значение и составило 477,2±51,19 с или 548% по отношению к исходному показателю. Далее свертываемость плазмы равномерно укорачивалось и приблизилось к фону (87,6+2,96 с). В контрольной группе время рекальцификации стремительно увеличивалось после операции и на третьем часу оно превышало фон на 77%, а затем укоротилось и находилось на уровне фона.

В первой опытной группе (СаС12) сразу после инфицирования силиконо-

вое время незначительно удлиняется, а в более поздние сроки достоверно укорачивается на 40-60 секунд - 27-39% (Р<0,001). На четвёртые сутки после ранения достоверно удлиняется, а в последующие сроки исследований остаются в пределах исходных показателей. Во второй опытной группе (гепарин) силиконовое время через десять минут после ранения и введения гепарина было самым длинным и составило 969 с или превышало фоновое значение на 574% (Р<0,001), через шесть часов происходило достоверное укорочение силиконового времени на 55 с или 39% (Р<0,001). В последующие сроки приближалось к исходному и на одиннадцатые сутки не отличалось от фона.

В контрольной группе происходили недостоверные изменения силиконового времени. Исходного значения они достигали к десятым суткам. В контрольной группе время свертывания крови изменялось не достоверно.

Силиконовое время плазмы крови отражает активность факторов гемо-коагуляции независимых от фактора-контакта - силиконового времени. Проведенные исследования позволяют сделать следующее заключение:

Введение хлорида кальция приводит к угнетению Хагеман - зависимого пути образования тромбопластина и активации Хагеман - независимого пути образования тромбопластина.

Введение гепарина - угнетает более сильно Хагеман - зависимый путь образования тромбопластина (до шести суток), а второй путь - после резкого и короткого угнетения происходит активация, которая продолжается до десяти суток.

У всех животных после инфицирования происходит достоверное (Р<0,05) удлинение протромбинового времени на 22-32% или на одиннадцать-пятнадцать секунд. В первой опытной группе (СаСЬ) сразу после введения хлорида кальция происходило укорочение протромбинового времени и оно максимально на шестой час исследований - 13% (Р<0,05). Затем происходило достоверное удлинение, и оно нарастало до вторых суток (Р<0,05-0,01) на 3844%. К шестым суткам исследований протромбиновое время было близко к фоновым значениям. Протромбиновое время во второй группе (гепарин) удлинялось на 99%, максимально на шестой час исследований приближалось к исходным данным, и с незначительными колебаниями сохранялось на этом уровне.

В контрольной группе на третьи сутки после инфицирования происходило удлинение протромбинового времени на 30% и этот уровень удерживался до 24 часов после ранения. Затем оно приближалось к фоновым данным, однако, до конца исследований было удлиненным (Р<0,05).

При всех методах воздействия протромбиновый комплекс (факторы VIII, X, V, II и их активность) угнетается. Наиболее сильно оно выражено под воздействием гепарина, но оно быстро проходящее.

Более стойкое и длительное угнетение протромбинового комплекса отмечается в контрольной группе.

Применение хлорида кальция характеризуется повторяющимися повышением и угнетением активности протромбинового комплекса.

Особенно сильное увеличение концентрации фибриногена получили в первой опытной группе и контрольной, достоверно увеличивалось на 77% и 74% (Р<0,05-0,001). И приближалось к фоновым значениям на четвертые, десятые сутки исследований.

При применении гепарина - вторая опытная группа - происходило уменьшение концентрации фибриногена на 36-41%. В последующие сроки происходило постепенное увеличение количества фибриногена через три часа, и в последующем не отличались от исходного уровня.

После ранения у животных второй опытной группы содержание свободного гепарина было максимальным (до 40 мкг/мл при фоне 12 мкг/мл) на десятой минуте после ранения, а на шестой час приходило к исходному уровню и в течение всего срока наблюдений не отличалось от исходного значения. У животных при применении хлорида кальция количество свободного гепарина увеличивалось постепенно и через 24 часа после ранения было увеличено на 56%. Затем уменьшалось и в последующие сроки их значение не отличалось от фоновых. В контрольной группе содержание свободного гепарина нарастало, и максимальное увеличение приходилось на вторые-четвертые сутки исследований, а на шестые сутки и в последующие сроки исследований уровень свободного гепарина не отличался от фона.

У животных контрольной и первой опытной групп толерантность плазмы к гепарину (ТПГ) была пониженной на 7% (14%). У животных контрольной группы ТПГ нарастала и была максимальной через 24 часа после ранения, а в последующие сроки с недостоверными колебаниями сохранялась до конца исследований на уровне фоновых значений. При применении хлорида кальция у животных в первые шесть часов после ранения ТПГ уменьшалась, что говорит о гиперкоагуляции, и в после дующие 24 дня происходило нарастание толерантности плазмы к гепарину, а далее возвращалось к исходному уровню. У животных второй опытной группы первые четверо суток увеличивается толерантность плазмы к гепарину и в последующие сроки не отличается от исходного уровня.

Таблица 4

Динамика показателей системы гемостаза у крупного рогатого скота с экспериментально __инфицированными кожно-мыше_чными ранами (хлорид кальция) __

Сроки исследования Время свертывания крови(не-силик), с Время свертывания крови (си-лик ), с Время ре-капьцифи-кации, с Силиконовое время, с Протром-биновое время, с Фибриноген плазмы, г/л Толерантность плазмы к гепарину, с Свободный гепарин, мкг/мл Уровень фибриноли-за, %

х±5у;р х±Бх; р дс±5х;р л: ± Sx ; р x±Sx; р х±5'х; р р х±5г;р X±Sx;p

Исходные данные 452,1±14,9| 981,1 ±30,00 87,6±2,96 144,4±3,31 51,7±2,00 6,34±0,33 168,4±8,19 12,87±0,733 1,97±0,052

На 3 сутки после инфицирования 543,5±30,5 <0,01 1406,4± 160,06 <0,01 11б,0±6,95 0,001 162.9+13,93 >0,05 59,8±2,94 <0,05 9,01 ±0,547 <0,001 199,7± 16,00 >0,05 14,41±1,786 >0,05 2,22±0,106 <0,05

После ранения и начала лечения через 10 минут 6П,6±31,б <0,01 И56,б± 180,32 >0,05 90,9+2,31 0,05 149,0± 12,66 >0,05 57,0± 7,81 >0,05 11,1011,492 <0,05 144,6+19,88 >0,05 13,30+0,722 >0,05 2,60±0,267 <0,05

3 часа 557,0±31,9 <0,05 925,0±111,62 >0,05 81,1 ±4,91 -0,05 96,4+5,23 <0,001 44,9±5,40 >0,05 8,44± 1,076 >0,05 139,5± 13,04 >0,05 16,72+2,175 >0,05 2,88±0,372 <0,05

6 часов 574,4±40,5 <0,05 1172,2+145,8 >0,05 101,1±5,16 0,05 114,6±8,l 1 <0,001 43,1±8,82 >0,05 8,30±0,840 >0,05 147,9+9,15 >0,05 15,47±3,506 >0,05 2,29±0,214 >0,05

24 часа 534,9+69,3 <0,05 1174,6+167,4 >0,05 83,0±8,91 -0,05 215.2±11,42 <0,001 69,1 ±8,81 <0,05 7,96± 1,643 >0,05 24!, 1 ± 14,34 <0,01 21,38±1,867 <0,01 2,10±0,179 >0,05

2 суток 631,4 ±28,14 <0,001 1222,2±98,0| >0,05 69 4±5,57 0,05 !78,7± 17,43 >0,05 71,7±6,09 <0,01 9,21 ±0,532 <0,01 170,1 ±6,34 <0,001 16,62±3,394 <0,05 2,25±0,233 >0,05

4 суток 474,2± 18,91 >0,05 984,9±94,16 >0,05 147,4±14.34 -0,001 310,1 ±69,39 <0,05 56,1±3,68 >0,05 6,05±0,65 >0,05 235,1 ±16,08 <0,01 6,45±3,233 >0,05 2,06±0,131 >0,05

б суток 545,2±67,3 >0,05 929,8±65,02 <0,05 115,6±21,49 •0,05 162,4+8.15 >0,05 50,5±2,67 >0,05 7,71 ±0,876 >0,05 181,6± 17,56 >0,05 10,50±2,338 >0,05 1,93±0,128 >0,05

10 суток 591,0±52,7 >0,05 942,4±б6,7 <0,05 91.50±2,71 0.05 145,7±5,49 >0,05 58,4+2,43 <0,05 7,94±0,30 >0,05 1 !7,9±9,099 <0,05 9,10+3,348 >0,05 2,11±0,162 >0,05

14 суток 599,9±62,7 >0,05 862,7+72,3 <0,05 92,9±I0,11 -0,05 147,83±2,84 .-0.05 60,6±3,77 <0,05 6.66±0,32 >0,05 154,7±9,68 >0,05 11,27±3,659 >0,05 2,И±0,095 >0,05

21 сутки 538,6±45,7 >0,05 1003,9±59,5 --0,05 77,7±5,43 0,05 147,00+6,91 ^0,05 68,5+5,11 <0,01 6,25±0,554 >0,05 165,6±17,93 >0,05 П,97±0,773 >0,05 1,93±0,127 >0,05

30 суток 415,2+47,54 >0,05 932 5+132,9 >0,05 77 0±5,12 0,05 142,75±13,88 >0,05 47,4±2,87 >0,05 6,51 ±0,225 >0,05 153,9+18,10 >0,05 16,87+0,775 <0,05 2,09±0,210 >0,05

Таблица 5

Динамика пока!ателей системы гемостаза у крупного рогатого скота с экспериментально ____инфицированиыми кожно-мышечными ранами (гепарин)_______

Сроки исследования Время свертывания крови (не-силик.), с Время свертывания крови (си-лик ), с Время ре-кальцифи-ксшин, с Силиконовое время.с Протром-биновое время, с Фибриноген плазмы, г/л Толерантность плазмы к гепарину, с Свободный гепарин, м кг/мл Уровень фибриноли-за, %

х±5л.;р л-±5д., р л-±5г; р х ± Зх; р х±Бх; р х ±5*; р

Исходные данные 452,1 + 14,91 981,1+30,00 87,б±2,96 144,4±3,31 5|,7±2,00 6,34±0,33 168,4±8,19 12,87+0,733 1,97+0,052

На 3 сутки после инфицирования 543,5+30,56 <0,01 1406,4±160,06 <0,01 116.0±6,95 '0,001 162,9+13.93 >0,05 59,8±2,94 <0,05 9,01 ±0,547 <0,001 199,7± 16,00 >0,05 14,41 ±1,786 >0,05 2,22+0,106 <0,05

После ранения и начала лечения через 10 минут 2142,7+100,04 <0,001 3897,5+95,88 <0,001 257,2±59,74 -0,01 949,5±22,8118 <0.001 96,7±21,24 <0,05 6,36± 1,823 >0,05 378,4±48,31 <0,001 40,75+7,868 <0,01 2,90±0,315 <0,05

3 часа 706,9±46,4б <0,001 1354,4+99,31 <0,001 84,4±5,19 -0,05 114,9+12,41 >0,05 56,0±4,64 >0,05 10,38±2,461 >0,05 145,7+16,45 >0,05 16,65±2,286 <0,05 2,40±0,250 >0,05

6 часов 555,5+49,25 <0,05 1113,2±110,39 >0,05 94.0±3,07 -0,05 85.3±5,65 <0,001 49,0± 1,39 >0,05 9,93±2,067 >0,05 150,0±21,2 9 >0,05 7,07±3,630 >0,05 2,39+0,239 >0,05

24 часа 596,7+84,79 <0,05 П54,7± 140,83 <■0,05 477 2+151,19 -0,05 138,7±5,86 >0,05 44,0±8,39 >0,05 9,05± 1,074 >0,05 456,7+119,55 <0,05 15,47+1,36 >0,05 2,37±0,216

2 суток 719,5±78,71 <0,01 1231,0±133,80 <0,05 93 0±9,78 >0,05 143,5±2,72 >0.05 52,3±4,65 >0,05 7,49±0,063 >0,05 188,6+27,08 >0,05 12,67±4,009 >0,05 2,26±0,170 >0,05

4 суток 579,4±47,94 <0,05 1116,7±8Э,24 >0,05 86.0+6 57 •0,05 124.8+17,29 >0,05 53,0±6.67 >0,05 8,55±1,003 <0,05 177,2±26,02 >0,05 14,15±5,285 >0,05 2,24±0,187 >0,05

6 суток 538,0±28,3| <0,05 968,5±93,51 >0,05 71.1 ±7,07 --0,05 114,2±5,65 <0,05 44,0+5,40 >0,05 8,93±0,085 >0,05 140,9± 19,03 >0,05 6,45±3,233 >0,05 1,99±0,162 >0,05

10 суток 484,2=14,01 >0,05 851,5±53,88 >0,05 74 5+7,56 -0,05 164 8± 16,29 >0,05 53,2±6,52 >0,05 8,41 ±0,056 >0,05 134,1+8,82 >0,05 11,90+1.911 >0,05 2,17±0,144 >0,05

14 суток 472,7±51,64 >0,05 861,5±47,19 >0,05 117.9± 10.68 0,05 113,0+16,01 ~0,05 53,3±!,93 >0.05 6,88±0,049 >0,05 139,9± 19,53 >0,05 12,88+0,833 >0,05 2,01±0,108 >0,05

21 сутки 441,0+53,70 >0,05 842,5+43,41 >0,05 90,0+9,39 -0,05 147,3±18,80 >0,05 52.7±1,38 >0,05 6,66±0,025 >0,05 140,2±6,52 >0,05 11,85±2,700 >0,05 2,04+0,108 >0,05

30 суток 420,7+27,71 >0,05 861,7+47,43 | 87,2±5,82 >0,05 I 0,05 145,7±4,34 >0,05 54,511,71 >0,05 6,66±0,034 >0,05 130,5±11,42 >0,05 14,85±9,001 >0,05 2,08±0,088 >0,05

Таблица 6

Динамика показателей системы гемостаза у крупного рогатого скота с экспериментально _ инфицировэнными кожно-мышечными ранами (контроль) __

Сроки исследования Время свертывания крови(не-силик ), с Время свертывания крови (си-лик ). с Время ре-кальиифи-кации, с Силиконовое время, с Протром-биновое время, с Фибриноген плазмы, г/л Свободный гепарин, мкг/мл Толерантность плазмы к гепарину, с Уровень фибриноли-за, %

х ± Бх ; р *±5Х; Р а- ± 5 Т: р х ± 5Х; р Р х±Бх;р

Исходные данные 452,1 ±14,91 981,1130,00 87 о±2,96 144,413,31 51,7±2,00 6,3410,33 12,8710,733 168,418,19 1,9710,052

На 3 сутки после инфицирования 543,5130,5 <0,01 1406,4± 160,06 <0,01 116.016 95 -0,001 162,9113,93 >0,05 59.812,94 <0,05 9,0110,547 <0,001 14,4111,786 >0,05 199,7116,00 >0,05 2,22±0,106 <0,05

После нанесения раны через 10 минут 531,2151,75 >0,05 1139,1 ±221.3 >0,05 113,516,35 "■0,05 163,515,18 >0,05 64,415,67 <0,05 10,6010,292 <0,001 21,8514,353 >0,05 157,0116,87 >0,05 2,8410,235 <0,05

3 часа 419,5±100,76 >0,05 1172,1 ±281,67 >0,05 80 117,89 >0,05 142,2110,45 >0,05 54,711,63 <0,05 10,0810,334 <0,001 16,7212,175 >0,05 139,5113,04 >0,05 2,8810,372 <0,05

6 часов 476+39,62 >0,05 1479,9± 187,3 <0,05 155.9± 19,56 -0,05 161,419,69 >0,05 70,315,75 <0,01 9.2710,393 <0,001 16,1012,455 >0,05 184,4120,17 >0,05 2,4810,267 >0,05

24 часа 471,1 ±68,40 >0,05 1020,61176,84 >0,05 72,117,31 -0,05 156,0111,09 >0,05 64,313,94 <0,01 9,8810,890 <0,01 21,1513,104 >0,05 202.0114,34 >0,05 2,0010,095 >0,05

2 суток 510,6±61,32 >0,05 998,9^69,05 >0,05 83,916,27 >0,05 158,314,57 >0,05 52,412,02 >0,05 10,77Ю,135 <0,01 26,0513,429 <0,05 147,719,72 >0,05 2,1610,131 >0,05

4 суток 511,7±24,53 >0,05 1079,2±119.27 >0,05 83 419,24 '0,05 165,014,36 >0,05 52,613,52 >0,05 9,7410,121 <0,05 14,5510,0 >0,05 181,2113,90 >0,05 2,1110,062 >0,05

6 суток 501,2±49,83 >0,05 1491,51240,16 >0,05 93 0±8,96 -0,05 136,928,70 >0,05 53,312,81 >0,05 8,3210,492 <0,01 14,7011,146 >0,05 106,515,42 <0,01 2,1010,123 >0,05

10 суток 511,8±49,54 >0,05 1178,41114,46 >0,05 120,518,93 0.05 140,215,43 >0,05 53,612,08 >0,05 5,4210,646 >0,05 12.67+0,625 >0,05 204,7111,92 <0,05 2,1510,173 >0,05

14 суток 467,5±60,96 >0,05 970,0177,71 >0,05 97,018,94 >0,05 137,4111,32 >0,05 51,016,19 >0,05 6,73+0,187 >0,05 10,6511,400 >0,05 191,0113,07 >0,05 2,0710,056 >0.05

21 сутки 485,0±49,08 >0,05 820,4±85,49 >0,05 96,714,97 --0,05 152,517,79 >0,05 53,312,41 >0.05 6,3310,264 >0,05 13,9310,625 >0,05 197,0119,08 -0,05 2,0710,090 >0,05

30 суток 471,5148,83 >0,05 832,2139,39 >0,05 91,518,18 -0,05 141,713,50 >0,05 50,613.31 >0,05 6,1910,282 >0,05 13,3014,629 <0,05 139,0111,90 >0,05 2,0810,111 >0,05

Уровень фибринолиза в первой опытной группе изменялся в пределах 2,8810,372 % - 1,93+0,128 % Уровень фибринолиза начал увеличиваться еще на третьи сутки после инфицирования и достиг максимального значения на третьи сутки после операции, превысив фоновые показатели на 46%. В дальнейшем уровень фибринолиза снизился и приблизился к фоновому показателю, что составляет 1,9710,052 %. Во второй опытной группе максимальный уровень фибринолиза в крови наблюдался на десятой минуте после операции и начала лечения, а в последующие сроки значения равномерно снижались и на тридцатые сутки после операции они составляли 105% по отношению к фону. В контрольной группе фибринолиз крови в ходе эксперимента не снижался ниже фоновых данных. Наивысший уровень фибринолиза наблюдался через три часа после операции и начала лечения, и составлял 2,8410,235 % или 144% относительно фона.

Следовательно, введение хлорида кальция и гепарина вызывают наибольшее колебание уровня фибринолиза.

При инфицировании у бычков в 25% случаях появлялся положительный этаноловый тест. После ранения и в последующие сроки наблюдений отрицательным он был только у животных второй опытной группы при внутривенном введении гепарина. Во всех остальных группах в разные сроки исследований был положительный этаноловый тест У животных первой опытной группы он сразу увеличивался в первые шесть часов ранения на максимальном уровне В более поздние сроки тест был отрицательным. У животных контрольной группы сразу после ранения этаноловая проба в 100% случаев была положительной и только на десятые сутки становилась отрицательной.

Проведённые экспериментальные исследования указывают на то. что при экспериментально инфицированных кожно-мышечных ранах у бычков происходит в первые, вторые и четвертые сутки коагулопатические сдвиги при введении хлорида кальция. У животных контрольной группы - в виде незначительной активности свёртывающей и противосвёртывающей активности крови. Активация коагуляционного гемостаза более выражена, что может приводить к ДВС-синдромам и нарушениям гемоциркуляции в месте патологического очага (в ране, в области воспаленных тканей и т.д.).

Усиление противосвёртывающей активности гепарином профилакти-рует ДВС-синдромы и тромбозы.

Введение в комплекс лечебных мер, при инфицированных ранах крупного рогатого скота, гепарина более оправданно с физиологических и биологических точек зрения.

21

4. ВЫВОДЫ

1. Стафилококковая инфекция у крупного рогатого скота вызывает удлинение времени свертывания крови, силиконового и протромбинового времени, увеличивает количество фибриногена с 6,34 г/л до 9,00 г/л или на 41,9 %, снижает активность фактора XIII, увеличивает содержание свободного гепарина крови и усиливает фибринолиз.

2. Величина относительного заживления ран по вторичному натяжению у бычков была выше в первой и второй опытных группах.

3. При инфицированных кожно-мышечные ранах у крупного рогатого скота, в первые четверо-десять суток с момента ранения, сокращается время свертывания крови в несиликонированных условиях на 17,4 % и в силикони-рованных - на 28,9 %, протромбиновое время удлиняется на 53,2 %, увеличивается количество фибриногена с 6,11 г/л до 10,8 г/л (на 62,2 %), уменьшается активности фактора XIII на 20-45%, повышается уровень свободного гепарина и фибринолиза.

4. Введение хлорида кальция приводит к угнетению Хагеман-зависимого пути образования тромбопластина и активации Хагеман-независимого пути образования тромбопластина.

Введение гепарина угнетает более сильно Хагеман-зависимый путь образования тромбопластина (до шестых суток), а второй путь - после резкого и короткого угнетения происходит активация, которая продолжается до десятых суток.

5. При ранах и всех методах воздействия угнетается активность протромбинового комплекса. Наиболее сильно оно выражено под воздействием гепарина. Применение хлорида кальция характеризуется повторяющимися повышением и угнетением активности протромбинового комплекса. Более стойкое и длительное угнетение протромбинового комплекса возникает в контрольной группе.

6. У животных контрольной и первой опытной групп ТПГ была пониженной на 7% (14%). У животных второй опытной группы в первые четверо суток увеличивается ТПГ У животных контрольной и первой опытной группы в первые часы после ранения наблюдается гиперкоагуляция, а у второй группы - гипокоагуляция.

7. При экспериментально инфицированных кожно-мышечных ранах у бычков в первые, вторые и четвертые сутки после введения хлорида кальция возникают коагулопатические сдвиги. У животных контрольной группы - в виде незначительной активности свёртывающей и противосвёртывающей активности крови Активация коагуляционного гемостаза более выражена, что может приводить к ДВС-синдромам и нарушениям гемоциркулямии в месте

патологического очага (в ране, в области воспаленных тканей и т.д.).

8. Усиление противосвёртывающей активности гепарином профилак-тирует ДВС-синдромы и тромбозы. Введение в комплекс лечебных мер, при инфицированных ранах крупного рогатого скота, гепарина профилактирует коагулопатические сдвиги и приводит к более быстрому заживлению ран.

5. ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ:

1. Гемостазиокорректирующие препараты 10%-ный раствор хлорида кальция, гепарин могут быть рекомендованы для ускорения заживления инфицированных ран.

2. Основные положения диссертационной работы могут быть использованы в качестве учебного материала по следующим учебным дисциплинам: физиологии и патофизиологии сельскохозяйственных животных, клинической диагностике, ветеринарной хирургии, а также при проведении научных исследований при хирургической патологии.

6. СПИСОК РАБОТ, ОПУБЛИКОВАННЫХ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ

1. Ермолаев В.А., Богданов В.В., Лаврентьева С.А. Гемостазиологиче-ские аспекты раневого процесса у крупного рогатого скота при гипергепари-немии / Диагностика, лечение и профилактика заболеваний животных // Сборник научных трудов. - Ульяновск, 1999. - ч.2. - С.36-41.

2. Богданов В.В. Динамика ВСК и количества тромбоцитов при заживлении экспериментально инфицированных ран у крупного рогатого скота / Актуальные вопросы морфологии и хирургии XXI века // Мат. Межд. науч. конф. - Оренбург, 2001. - С.48-49.

3. Ермолаев В.А., Богданов В В. Динамика морфологического состава и физических свойств крови крупного рогатого скота при заживлении экспериментально инфицированных ран // Мат. Межд. науч. конф. - Казань, 2001. - С.16-17.

4. Богданов В.В. Особенности динамики лейкограммы при заживлении ран у бычков в условиях различной активности системы гемостаза // Вестник Ульяновской государственной сельскохозяйственной академии. - Ульяновск, 2001.-№ 1. - С.58-59.

РНБ Русский фонд

2006-4 7683

04 СЕН 2003

 
 

Оглавление диссертации Богданов, Валерий Владимирович :: 2003 :: Оренбург

ВВЕДЕНИЕ.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1. Раневой процесс.

1.1.1. Раневая инфекция.

1.1.2. Течение раневого процесса.

1.1.3. Виды заживления ран.

1.1.4. Лечение гнойных ран.

1.2. Современное представление о системе гемостаза.

1.2.1. Гемостаз при различной хирургической патологии.

2. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ.

2.1. Материал и методика исследований.

2.2. Результаты экспериментальных исследований.

2.2.1. Клиническое состояние, морфологический состав, физические свойства крови и состояние системы гемостаза крупного рогатого скота при стафилококковой инфекции.

2.2.2. Клиническая картина заживления экспериментальных рану крупного рогатого скота.

2.2.3. Клиническое состояние, морфологический состав и физические свойства крови крупного рогатого скота при заживлении экспериментально инфицированных кожно-мышечных ран.

2.2.4. Состояние системы гемостаза крупного рогатого скота при заживлении экспериментально инфицированных кожно-мышечных

 
 

Введение диссертации по теме "Ветеринарная хирургия", Богданов, Валерий Владимирович, автореферат

Актуальность темы. В патологии животных хирургические заболевания занимают более 40 % от всех незаразных болезней. В решении данной проблемы внесли значительный вклад отечественные ученые Г.С.Кузнецов (1964, 1980); В.В.Мосин (1975); М.В.Плахотин (1966); КИ.Шакалов (1972); М.Ш.Шакуров (1983); А.В.Лебедев (2000); и другие.

Ими были изучены многие вопросы заживления ран при различных методах их лечения, установлены определенные закономерности изменений системы крови при хирургической патологии.

Изучением вопросов гемостаза у животных занимались Н.Я.Кокович (1973); Т.А.Палевич и др. (1975); Н.Н.Морозова (1977); Т.А.Палевич, А.Ф.Руш (1978); А.С.Кашин (1970; 1989); В.П.Балуда (1957, 1958, 1962, 1980); В.А.Ермолаев (1998); Б.С.Семенов, А.Т.Вощевоз (1990); А.В.Яшин (1998). Эти исследования не касаются вопроса влияния системы гемостаза на течение раневого процесса у животных. Хотя в хирургической практике они имеют определенное теоретическое и практическое значение.

В медицинской литературе имеются данные о влиянии различных звеньев гемостаза на раневой процесс. По данным М.И.Кузина и др. (1976, 1990), система гемостаза активно влияет на течение раневого процесса у человека. Knighton D. et al. (1982) указывают, что фибрин оказывает лейкотоксическое и бактериостатическое действие при заживлении ран. Повышенная концентрация фибриногена в общем кровотоке заметно замедляет заживление ран. При дефиците Ф-ХШ Н. Furstenberg et al. (1975) отмечают плохое заживление ран. Длительно незаживающие раны характеризуются резкой активизацией фибри-нолиза, локальная гнойная инфекция у человека сопровождается гиперкоагуляцией, в основном за счет увеличения уровня фибриногена.

Дальнейшее изучение вопросов взаимосвязи гемостаза и заживления ран позволит раскрыть скрытые стороны раневого процесса, что, несомненно, позволит более эффективно воздействовать на раневые процессы у животных.

Исходя из вышеизложенного, считаем данную проблему актуальной, требующей своего разрешения.

Тема диссертационной работы является разделом государственного плана научно-исследовательской работы Ульяновской государственной сельскохозяйственной академии (регистрационный номер НИР 01830016993 и 01.9.20013688).

Целью настоящей работы является изучение заживления инфицированных ран у бычков на фоне гиперкальциемии и гипергепаринемии.

Для достижения намеченной цели предстояло решить следующие задачи:

1. Определить динамику показателей клинического состояния и морфологического состава крови при экспериментальных гнойных процессах (St. aureus) у бычков.

2. Изучить характер заживления экспериментальных ран у крупного рогатого скота в условиях гиперкальциемии и гипергепаринемии.

3. Установить клиническое состояние бычков, морфологический состав и физические свойства крови при заживлении экспериментально инфицированных ран в условиях различной активности системы гемостаза.

4. Изучить изменения показателей системы гемостаза при лечении экспериментально инфицированных ран у бычков на фоне гиперкальциемии и гипергепаринемии.

Научная новизна. Получены сведения, которые расширяют представление о влиянии раневого процесса на состояние системы крови у крупного рогатого скота.

Впервые установлены коагулопатические сдвиги в организме крупного рогатого скота при экспериментально инфицированных кожно-мышечных ранах.

Предложены новые методы повышения активности процессов заживления экспериментально инфицированных кожно-мышечных ран.

Ветеринарная хирургия пополнилась данными, которые могут быть использованы для разработки более эффективных и физиологичных методов воздействия на репаративный процесс.

Теоретическая и практическая значимость работы. Выявлены некоторые аспекты патогенеза при хирургической патологии крупного рогатого скота, связанные с гемостазиологическими сдвигами. Получены сведения о степени влияния гнойной хирургической раны, раневого процесса на активность системы гемостаза.

Выявлены особенности динамики клинико-физиологических, гематологических и гемостазиологических показателей в послеоперационном периоде при разных медикаментозных способах воздействия.

Предложены препараты-корректоры системы гемостаза, способствующие сокращению сроков лечения инфицированных ран.

Результаты исследований используются при чтении лекций и проведении лабораторных и практических занятий по общей и частной ветеринарной хирургии в Ульяновской ГСХА, Оренбургском ГАУ и т.д.

Основные положения, выносимые на защиту

1. Клинико-гемостазиологические изменения у бычков под воздействием St. aureus.

2. Заживление экспериментальных ран у крупного рогатого скота протекало эффективнее в группах с применением препаратов корректоров.

3. Динамика клинического состояния, морфологического состава, физических свойств крови и системы гемостаза при лечении экспериментально инфицированных ран у бычков на фоне гиперкальциемии и гипер-гепаринемии.

Апробация работы. Основные положения диссертационной работы доложены и обсуждены на: научно-практических межвузовских конференциях Ульяновской государственной сельскохозяйственной академии (Ульяновск, 1999, 2001); Международной конференции в Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана (Казань, 2001); Международной конференции в Оренбургском государственном аграрном университет (Оренбург, 2001).

Публикации. Основные положения диссертации изложены в 4 печатных работах.

Объем и структура диссертации. Работа изложена на 168 страницах машинописного текста и состоит из введения, обзора литературы, материала и методики исследований, результатов собственных исследований, обсуждения полученных результатов, выводов и практических предложений. Список литературы включает 188 источников, из них 51 иностранных авторов. Диссертация иллюстрирована 36 таблицами, 30 рисунками.

 
 

Заключение диссертационного исследования на тему "Заживление инфицированных ран и состояние системы гемостаза у бычков на фоне гиперкальциемии и гипергепаринемии"

ВЫВОДЫ

1. Стафилококковая инфекция у крупного рогатого скота вызывает уд-лииение времени свертывания крови, силиконового и протромбинового времени, увеличивает количество фибриногена с 6,34 г/л до 9,00 г/л или на 41,9 %, снижает активность фактора XIII, увеличивает содержание свободного гепарина крови и усиливает фибринолиз.

2. Величина относительного заживления ран по вторичному натяжению у бычков была выше в первой и второй опытных группах.

3. При инфицированных кожно-мышечные ранах у крупного рогатого скота, в первые четверо-десять суток с момента ранения, сокращается время свертывания крови в несиликонированных условиях на 17,4 % и в силикони-рованных - на 28,9 %, протромбиновое время удлиняется на 53,2 %, увеличивается количество фибриногена с 6,11 г/л до 10,8 г/л (на 62,2 %), уменьшается активность фактора XIII на 20-45%, повышается уровень свободного гепарина и фибринолиза.

4. Введение хлорида кальция приводит к угнетению Хагеман -зависимого пути образования тромбопластина и активации Хагеман -независимого пути образования тромбопластина.

Введение гепарина - угнетает более сильно Хагеман - зависимый путь образования тромбопластина (до шести суток), а второй путь - после резкого и короткого угнетения происходит активация, которая продолжается до десяти суток.

5. При ранах и всех методах воздействия угнетается активность протромбинового комплекса. Наиболее сильно оно выражено под воздействием гепарина. Применение хлорида кальция характеризуется повторяющимися повышением и угнетением активности протромбинового комплекса. Более стойкое и длительное угнетение протромбинового комплекса возникает в контрольной группе.

6. У животных контрольной и первой опытной групп ГШ была понисуток увеличивается ТПГ. У животных контрольной и первой опытной группы в первые часы после ранения наблюдается гиперкоагуляция, а у второй группы - гипокоагуляция.

7. При экспериментально инфицированных кожно-мышечных ранах у бычков в первые двое-четверо суток после введения хлорида кальция возникают коагулопатические сдвиги. У животных контрольной группы - в виде незначительной активности свёртывающей и противосвёртывающей активности крови. Активация коагуляционного гемостаза более выражена, что может приводить к ДВС-синдромам и нарушениям гемоциркулямии в месте патологического очага (в ране, в области воспаленных тканей и т.д.).

8. Усиление противосвёртывающей активности гепарином профилак-тирует ДВС-синдромы и тромбозы. Введение в комплекс лечебных мер, при инфицированных ранах крупного рогатого скота, гепарина профилактирует коагулопатические сдвиги и приводит к более быстрому заживлению ран.

5. ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

1. Гемостазиокоррегирующие препараты - 10%-ный раствор хлорида кальция, гепарин могут быть рекомендованы для ускорения заживления инфицированных ран.

2. Основные положения диссертационной работы могут быть использованы в качестве учебного материала по следующим учебным дисциплинам: физиологии и патофизиологии сельскохозяйственных животных, клинической диагностике, ветеринарной хирургии, а также при проведении научных исследований при хирургической патологии.

 
 

Список использованной литературы по ветеринарии, диссертация 2003 года, Богданов, Валерий Владимирович

1. Абдуллаев М.М. Изменение фибринолитической активности и факторов свертывающей системы крови у хирургических больных до и после оперативного вмешательства: Автореф. . канд. дисс. Баку, 1967. - 20 с.

2. Алимов Т.У. Применение антикоагулянтов в хирургической клинике. В кн.: Система свертывания крови и фибринолиз. - Киев, Здоровье, 1969.-С. 35 -40.

3. Андреенко Г.В. Значение фибринолиза в защитных реакциях проти-восвёртывающей системы. Дис. док. биол. наук. - М., 1964. - 433 с.

4. Андреенко Г.В. Значение фибринолиза в защитных реакциях проти-восвёртывающей системы: Автореферат, дис. . док. биол. наук. М., 1964. -24 с.

5. Андреенко Г.В. Фибринолиз, химия и физиология процесса. Клиническое применение фибринолизина. - М.: Медицина, 1967. - 248 с.

6. Андреенко Г.В. Фибринолиз // Биохимия животных и человека «Свёртывание крови и фибринолиз». Киев, 1982, вып. 6. - С. 84-94.

7. Арьев Т.Я. Раны и их лечение. Руководство по хирургии. М., 1962. - Т.1. - С.647-684.

8. Адамян А.А., Добыш С.В. и др. Лечение гнойных ран гелевином и биологически активными дренирующими сорбентами // Хирургия. 1998. -№ 3. - С.28-31.

9. Балуда В.П. Влияние болевого раздражения на свёртывание крови // Патологическая физиология и экспериментальная терапия. 1957, т. 1, № 6, с. 41.

10. Ю.Балуда В.П. Влияние болевого раздражения на функциональное состояние свертывающей системы крови. (Экспериментальное исследование): Автореф.дисс. Томск, 1958. - 20 с.

11. Балуда В.П., Маляровский В.Н., Ойвин И.А. Лабораторные методы исследования свертывающей системы крови. М.: Медгиз, 1962. - с.

12. Балуда В.П., Жуковская Н.А., Руказенкова Ж.Н. Ускоренный метод определения активности фибриназы // Лабораторное дело. 1965. - № 7. -С.417-419.

13. Балуда В.П., Баркаган З.С., Гольдберг Е.Д., Кузник Б.И., Лакин К.М. Лабораторные методы исследования системы гемостаза. Томск: Красное Знамя, 1980.-313 с.

14. Баркаган З.С. Вопросы патологии сосудов и кровообращения. Ба- -ку, 1972.-С.36.

15. Баркаган З.С. Система гемостаза // Руководство по гематологии. -М., 1985. Т.1. - С. 133-156.

16. Баркаган З.С. Гемморагические заболевания и синдромы. М.: Медицина, 1988. -480-с.

17. Баркаган З.С. Патогенез и терапия нарушений гемостаза у онкологических больных // Тер.архив. 1997. - № 7. - С.65-67.

18. Блатун Л.А., Яковлев В.П. и др. Офлоксацин в комплексной терапии осложненных форм раневой инфекции // Антибиотики и химиотерапия. -1994. -№ 1. С.33-37.

19. Блатун Л.А., Светухин A.M. и др. Клинико-лабораторная эффективность современных мазей на полиэтиленгликолевой основе при лечении гнойных ран // Антибиотики и химиотерапия. 1999. - № 7. - С.25-32.

20. Блатун Л.А., Пучков Л.С. и др. Применение перфоксацина для лечения больных с гнойными ранами мягких тканей. // Антибиотики и химиотерапия. 1999. - № 1. - С.20-23.

21. Борисевич В.Б., Борисевич Б.В., Смирнов A.M. Раневой процесс и закономерности заживления ран И Ветеринария. 1999. - № 5. - С.48-52.

22. Васильев А.В. Гематология сельскохозяйственных животных. М.: Сельхозгиз, 1948. - 439 с.

23. Васильев А.В. Клиническая диагностика внутренних болезней сельскохозяйственных животных. М.: Колос, 1964. - 438 с.

24. Васин Г.Н. Заживление и лечение мягких тканей у крупного рогатого скота: Автореф. дисс. Казань, 1967. - 20 с.

25. Верник С.Д. Применение лейкоцитарного индекса интоксикации для оценки эффективности лечения инфильтратов // Хирургия. 1972. - № 9. -С.84-87.

26. Вишневский А.А., Шрайбер М.И. Военно-полевая хирургия. М.: Медицина, 1975.-332 с.

27. Вощевоз А.Т. Применение фибринолизина при лечении ран у крупного рогатого скота // Сб. науч. трудов, СПбГАВМ. 1993. № 120. -С.41-44.

28. Гирголав С.С. Огнестрельные раны // Опыт советской медицины в Великой Отечественной войне 1941-1945 гг.-М., 1951. Т.1. - С.15-60, 126132; 139-141.

29. Гирголав С.С. Огнестрельная рана. Л.: Воен.-мед. акад., 1956.330 с.

30. Громацкий Н.И. К механизму действия гепарина на тромбоциты //

31. Врачебное дело. 1969. - № 3. - С. 90-92.

32. Давыдовский И.В. Огнестрельная рана человека. М.: Изд-во АМН СССР, 1952.-Т.1.-468 с.

33. Давыдовский И.В. Общая патология человека. 2-е изд. М.: Медицина, 1969.-611 с.

34. Даниленко М.В., Туркевич Н.М. Клиническое применение димекси-да. Киев: Здоров'я, 1976. - 183 с.

35. Даниленко М.В., Коваль И.И., Бойко Н.И., Жук А.В. Применение димексида при хирургической инфекции // Хирургия. 1984. - № 4. - С. 1922.

36. Данилов И.Н., Крыжановский B.J1. Подсчёт тромбоцитов в цитрат-но-фурацилиновом растворе // Лабораторное дело. 1967. - № 12. - С.730-732.

37. Даценко Б.М., Тамм Т.И. Изучение многокомпонентной мази на водорастворимой основе с диоксидином // Клин. хир. 1981. - № 1. - С.43-45.

38. Даценко Б.М., Костюченок Б.М., Перцев И.М., Калиниченко В.Н. Местное лечение гнойных ран // Хирургия. 1984. - № - С. 136-141.

39. Довгялло Г.Х., Крыжановский В.Л. Система гемостаза в норме и патологии. Минск: Беларусь, 1973. - 14 с.

40. Еропкин А.Г., Яковлев В.П., Блатун Л.А. Эффективность цефмета-зола при лечении раневой инфекции // Антибиотики и химиотерапия. 1995. - Т.40, № 1. - С.27-30.

41. Ермолаев В.А., Семенов Б.С., Лютинский С.И. Методические рекомендации по применению методов исследования системы гемостаза в ветеринарии. Ульяновск, 1998, - 73 с.

42. Золотухин С.И., Миронова М.И. Оценка антиадгезивного действия гепарина // Система свертывания крови и фибринолиз. Киев.: Здоровье. -1969. - С.57-58.

43. Калашйиков А.П., Клейменов Н.И., Баканов В.Н. и др. Нормы и рационы кормления сельскохозяйственных животных. М.: Агропромиздат,1985.-352 с.

44. Калиниченко В.Н. Применение левомицетинсодержащих многокомпонентных мазей на гидрофильной основе для лечения гнойных ран: Авто-реф. дис. канд. мед. наук. Харьков, 1983. - 26 с.

45. Камаев М.Ф. Инфицированная рана и ее лечение. М.: Медицина, 1970.- 159 с.

46. Карлов В.А., Думчев В.А. Раны и раневая инфекция. Вып.1. Вопросы морфологии и метаболизма раневого процесса: Научный обзор. М., ВНИИМИ, 1975.- 117 с.

47. Кабанов Н.Я., Осинцев Е.Ю. Открытый метод хирургического лечения гнойных ран // Хирургия. 1991. - № 7. - С.32-35.

48. Кашин А.С. К вопросу применения эпсилон-аминокапроновой кислоты для остановки кровотечения у животных // Мат. Всесоюзной конфер. по вопросам вет. хирургии. Харьков, 1970. С. 104-105.

49. Кашин А.С. О некоторых экономических результатах хирургической работы // Сб. науч. тр. Ленингр. вет. ин-т, 1989. вып. 102. - С.75-76.

50. Кокович Н.Я. Состояние свертывающей системы крови у стельных коров // Сб. науч. трудов / Харьковский СХИ, т. 188, 1973, с.27-29.

51. Кокович Н.Я. Показатели свертывающей системы крови у коров в пуерпиральный период // Сб. науч. трудов // Харьковский СХИ, т. 188, 1973, с.29-30.

52. Коршунов Г.В. О влиянии блуждающего нерва на уровень гепарина крови // Гепарин, физиология, биохимия, фармакология и клиническое применение: М., 1969. С.29-31.

53. Кострикова Э.В. Экспериментальное изучение ранозаживляющего действия препарата «Аекол» (искусственное масло облепихи) // Ортопедия, травматология и протезирование. 1989. - № 1. — С.32-36.

54. Костюченок Б.М., Шимкевич Л.Л., Амирасланов Ю.А. и др. Цитологические изменения обширных гнойных ран в процессе лечения в управляемой абактериальной среде // Сов. мед. 1983. - № 4. - С.34-40.

55. Котовщикова М.А., Кузник Б.И. Простой метод определения лизиса и ретракции кровяного сгустка. Лабораторное дело. - 1962. - № 5. - С.6-9.

56. Кудрявцев А.А. Исследование крови в ветеринарной диагностике. -Часть 1. М.: Сельхозгиз, 1959. -375 с.

57. Кудрявцев А.А., Кудрявцева Л.А. Клиническая гематология животных. М.: Колос, 1974. - 399 с.

58. Кудряшов Б.А. Проблемы свёртывания крови и тромбообразования. -М.: Высшая школа, I960 243 с.

59. Кудряшов Б.А. Физиологическая антисвёртывающая система и её значение. Вопросы медицинской химии. - 1960. - т. 6, вып. 1. - С.3-12.

60. Кудряшов Б.А. Проблемы физиологической регуляции гемостаза. -Успехи современной биологии. 1967. - т. 64, вып.2. - С.268-293.

61. Кудряшов Б.А. Свёртывающая и противосвёртывающая система крови и их регуляторные взаимоотношения: Труды XXVIII Всесоюзного съезда хирургов. М., 1967. - С.315-318.

62. Кудряшов Б.А. Современное состояние проблемы взаимоотношения свёртывающей и противосвёртывающей системы крови // Архив патологии. -1971.-№ 1. С.3-14.

63. Кудряшов Б.А. Биологические проблемы регуляции жидкого со. стояния крови. М.: Медицина, 1975. - 448 с.

64. Кузин М.И., Ефимова Н.Е., Осипова Н.А. Нейролептанальгезия в хирургии. М.: Медицина, 1976. - 312 с.

65. Кузин М.И., Костюченок Б.М. Раны и раневая инфекция. М.: Медицина, 1990.-591 с.

66. Кузнецов Г.С. Хирургические операции у крупного рогатого скота. -Л.: Колос, 1964.-248 с.

67. Кузнецов Г.С. Хирургические болезни животных в хозяйствах промышленного типа. Л.: Колос, 1980. - 80 с.

68. Лакин Г.Ф. Биометрия. М.: Высшая школа, 1980. -293 с.

69. Лакисов В.М. Лечение бактериально-загрязненных ран у крупногорогатого скота с применением антибиотиков и глухого шва // Уч. зап. Витебского ветеринарного ин-та. 1966. - Т.19. - С.25-21.

70. Липатов К.В. и др. Опыт применения Бетадина в лечении гнойных ран // Мед. помощь. 1999. - № 3. - С.37.

71. Липатов К.В, Сопромадзе М.А. и др. Использование физических методов в лечении гнойных ран // Хирургия. 2001. - № 10. - С.56-61.

72. Липатов К.В., Сопромадзе М.А. и др. Комбинированная озоно-ультразвуковая терапия лечения гнойных ран // Хирургия. 2002. - № 1. -С.36-39.

73. Лебедев А.В., Лукъяновский В.А., Семенов Б.С. Общая ветеринарная хирургия. М.: Колос, 2000. - 488 с.

74. Маркосян А.А. Работа И.П. Павлова по кровообращению. М.: АМН РСФСР, 1951.-28 с.

75. Маркосян А.А. Нервная регуляция свёртывания крови. М.: АМН РСФСР, 1960.- 184 с.

76. Маркосян А.А. Система свёртывания крови. К 100-летию первой работы А.А.Шмидта по свёртыванию крови // Физиол. журнал СССР им. И.М. Сеченова. 1962. - т. 48. - № 11. - С. 1431-1434.

77. Маркосян А.А. Внутренняя среда организма и свёртывание крови // Материалы конференции по проблемам свёртывания крови. Баку, 1966. -С.177-179.

78. Маркосян А.А. Физиология свёртывания крови. М.: Медицина, 1966.-463 с.

79. Маркосян А.А. Физиология тромбоцитов. Л.: Наука, 1970. -164 с.

80. Маркосян А.А., Путинцева Е.Г. Тромбоцитопоэтины // Успехи физиологических наук. 1970. - № 1. - С. 55.

81. Маркосян А.А., Чепуров А,К. Влияние изменений коагулянтной активности крови на трансмуральный потенциал сосудистой стенки // Физиол. журнал СССР им. И.М. Сеченова. 1970. - № 10. - С. 1451.

82. Мачабели М.С. Система свертывания крови. Тбилиси.: 1961. - 100с.

83. Мартьянов С.Н. О видовых особенностях реакивности организма крупного рогатого скота при хирургической патологии // Ветеринария. -1960.-№ 11.-С.7-8.

84. Машковский М-Д. Лекарственные средства. М.: Медицина, 1967587 с.

85. Машковский М.Д. Лекарственные средства. М.: Медицина, 1987, т.Н - с.117-118.

86. Мельникова В.М. Химиопрофилактика и химиотерапия раневой инфекции // Ортопедия, травматология и протезирование. 1988. - № 11. -С.14-18.

87. Мозгов И.Е. Фармакология. М.: Колос, 1969. - 477 с.

88. Мозгов И.Е. Фармакология. М.: Колос, 1974. - 416 с.

89. Мозгов И.Е. Фармакология. М.: Колос, 1985, с.276-277.

90. Морозова Н.Н. Некоторые показатели свертывающей системы крови у телят красной степной породы // Сб. науч. трудов / Донской СХИ, т. 12, в.2, 1977, с.50-52.

91. Мосин В.В. Новое в лечении незаразных болезней сельскохозяйственных животных. М.: Россельхозиздат, 1975. - 165 с.

92. Мямлина Г.А., Соловьева И.И. Изменение морфологического состава крови и ее свертывающей системы после введения гепарина // Гепарин, физиологии, биохимия, фармакология и клиническое применение: М., 1969. -С.40-42.

93. Никитин В.Н. О возрастных изменениях белой крови крупного рогатого скота. Тр. / Харьковский вет. ин-т. - 1947. - т. 4. - С.89-99.

94. Никитин В.Н. Атлас крови сельскохозяйственных и лабораторных животных. М.: Сельхозгиз, 1949. - 70 с.98,Оливков Б.М. Общая ветеринарная хирургия. М.: Сельхозлит, 1949, С.168-190.

95. Падейская Е.Н. Рациональное применение диоксидина в клиникегнойной инфекции. Антибактериальные препараты // Сборник науч. трудов / Всесоюзн. науч.-исслед. химико-фармацевтический ин-т- М.: 1984. С.6-23.

96. ЮО.Палевич Т.А., Палевич В.М., Мичкин М.Н. Влияние аминазина на свертываемость крови у крупного рогатого скота. В кн.: Актуальные вопросы профилактики и лечения болезней сельскохозяйственных животных. Омск, 1975, С.64-68.

97. Палевич Т.А., Руш А.Ф. Влияние фосфотиамина на свертывание крови // Ветеринария, 1978, № 6, с. 82-83.

98. Перцев И.М. Бофармацевтическое обоснование составов и технологии мазей с анастезирующими и антибактериальными веществами: Авто-реф. дис. . докт. фарм. наук. Харьков, 1979. - 32 с.

99. ЮЗ.Перцев И.М., Даценко Б.М., Белов С.Г. и др. Многокомпонентные мази на гидрофильной основе для лечения гнойных ран // Клин. хир. 1984. -№ 1.-С.136-141.

100. Пирогов Н.И. Начала общей военно-полевой хирургии. — М.: Изд-во АН СССР: 1941-1944.-Т.1-2.

101. Плахотин М.В. Общая ветеринарная хирургия. М.: Колос, 1966. -С.69-71.

102. Юб.Постолов М.П. Свертывающая и противосвертывающая системы крови при хирургических заболеваниях органов брюшной полости // Системы свертывания крови и фибринолиз. Киев, Здоровье, 1969. С.386-387.

103. Поваженко И.Е., Братюха С.И. Общая ветеринарная хирургия. -М.: Колос, 1971. С.92-93.

104. Преображенский М.Я. Физическая антисептика при лечении ран. -СПб., 1894.-267 с.

105. Рахманов Р.К., Нарчаев Ж.А. Местное лечение гнойных ран куку-мазином // Вестн. хирургии им. И.И.Грекова. 2002. - № 4. - С.74-75.

106. Росс Р. Заживление ран // Молекулы и клетки. М., 1970. - Вып.5. - С.134-152.111 .Рутберг Р.А. Простой и быстрый метод одновременного определения скорости рекальцификации и фибрина крови // Лабораторное дело. -1961. № 6. - С.6-7.

107. Руфанов И.Г. К вопросу о лечении ран // Клиническая медицина. -1935. -№ 10.-С.З-4.

108. З.Семенов Б.С. Болезни пальцев у крупного рогатого скота в промышленных комплексах. Л.: Колос, 1981. - 96 с.

109. Семенов Б.С., Вощевоз А.Т. Показатели фибринолитической активности у крупного рогатого скота // Сб. науч. трудов ЛВИ. 1990. - № 105.- С.139-141.

110. Сирмаи Э. Новые методы исследования системы свёртывания крови. Проблемы гематологии и переливания крови. - 1957. - № 6. - С.38-44.

111. Сирмаи Э. Метод определения свободного гепарина (1958). В кн.: Коблов Л.Ф. Методы и приборы для исследования гемостаза. - М.: Медицина, 1975. - С.35-36.

112. Скипетров В.П. Форменные элементы крови, сосудистая стенка, гемостаз и тромбоз. М.: Медицина, 1974. - 308 с.

113. Смирнов A.M., Копелько П.Я. и др. Клиническая диагностика внутренних незаразных болезней сельскохозяйственных животных. Л.: Колос, Ленингр. отд-ние, 1981. -447 с.

114. Стручков В.И., Григорян А.В., Гостищев В.К. Гнойная рана. М.: Медицина, 1975. - 310 с.

115. Стручков В.И., Гостищев В.К., Стручков Ю.В. Руководство по гнойной хирургии / АМН СССР. М.: Медицина, 1984, 512 с.

116. Туголуков В.Н. О способах определения протромбина крови и применении их в клинике: Автореф. Дис. . канд. мед. наук. М., 1952. - 23 с.

117. Тринклер Н.П. Основы современного лечения ран. Украина, 1926.- 376 с.

118. Ульянов A.M. Клиренс гепарина в условиях возбуждения противо-свертывающей системы животных // Бюл. экспер. биологии и медицины, 1978, Т.85. № 6- - С.651-654.

119. Ханин А.Г., Суховеров А.С. Лечение гнойных ран коллагеном с иммобилизованным гентамицином // Хирургия. 1997. - № 6. - С.44-46.

120. Хемагурова Л.Г. К вопросу о влиянии гепарина на тромбопласти-ческую активность крови // Сборник науч. трудов / Северо-Осет. мед. ин-т, вып. 16, 1967. -С.119-124.

121. Шакалов К.И. Травматизм животных, его профилактика и лечение. Л., Колос, Ленингр. отд-ние, 1972. - 288 с.

122. Шакуров М.Ш. Новокаиновая блокада грудных внутренностных нервов и симпатических стволов эффективный метод патогенетической терапии заболеваний легких, плевры и грудной стенки животных.: Автореф. дис. . д-ра вет. наук. - М., 1983. - 28 с.

123. Шимкевич Л.Л., Амирасланов Ю.А., Титова М.И., Розенфильд М.А. Изучение гемокоагуляции у больных с локальной гнойной инфекцией методами микрокалориметрии и спектрофотометрии // Клин. мед. 1978. - № 11. - С. 107-111.

124. Шимкевич Л.Л., Костюченок Б.М. и др. Изменения гемокоагуляции при сепсисе // Сов. мед. 1978. - № 3. - С.38-44.

125. Шимкевич Л.Л., Костюченок Б.М. и др. Изучение факторов гемостаза грануляционной ткани гнойных ран // Сов. мед. 1981. - № 4. - С.67-72.

126. Шимкевич Л.Л., Амирасланов Ю.А. и др. Цитологические изменения обширных гнойных ран в процессе лечения в управляемой абактериаль-ной среде // Сов. мед. 1983. - № 4. - С.34-40.

127. Шитикова А.С. Изменение тромбоцитов под действием иммунных факторов // Тер. арх. 1982. - Т.54. - № 9. - С. 121-128.

128. Шраер Т.И., Легчило А.Н. и др. Способ лечения гнойных ран // Хирургия. 1989. -№ 8. - С. 114-117.

129. Шнейдер А.Б. Влияние некоторых полисахаридных препаратов на скорость заживления ран кожи вторичным натяжением: Автореф. дис. . канд. мед. наук. Минск, 1983. - 24 с.

130. Эфендиев А.И., Толстых П.И. и др. Местная пролонгированная энзимотерапия гнойных ран // Хирургия. 1991. - № 7. - С.48-50.

131. Яковлев В.П. и др. Применение пефлоксацина для лечения инфицированных ожоговых ран // Антибиотики и химиотерапия. 1996. - № 6. -С.39-43.

132. Яшин А.В. Мембранное пищеварение у телят при нарушении кровоснабжения. Автореф. докт. дисс., СПб, 1998. - 44 с.

133. Ajayji А.А., Horn Е.Н. // Brit. J. clin. Pharmacol. 1993. - VoL35, No 1. -P.90-91.

134. Arata T. Muracami Т., Hirai T. // Postgrad, med. J. 1993. - Vol.69, Suppl.3. - p.393-396.

135. Beguin S., Hemker H.C. // Acta chir. scand. 1990. - Suppl 556. -p.51-56.

136. Beller F.E., Graeff H. Thrombosis and Bleeding Discreders Theory and Methods. Stuttgart, 1971, p.66.

137. Berkarda В., Akokan G., Derman U. Thrombos. Diathes. Haemarb. 1965, 13, № 1/2, p.297.

138. Bick R.L. Disseminated intravascular coagulation and related syndromes, etiology, pathophisiology, diagnosis and management // Amer. J. Hema-tol. 1978. - Vol.5, № 3. -P.265-282.

139. Brace L.D., Fareed J. // Thromb. Res. 1986. - Vol.42, № 6. - P.769782.

140. Brinkhous K.M. Am J. Med. Sci, 198:509, 1939.

141. Cadroy Y., Gaspin D., et al. // Thromb. Haemost. 1995. - Vol.73, № 6. - Abst. 246.

142. Chacon J.P., Criscuolo P.D., Kobata C.M. et al. J. Antimicrob Chemother 1990; 26: Suppl B: 167-172.

143. Dam H. Adv in Enzimol., 2:285., 1942.

144. Dam H. Biochem. Ltschr., 220:158., 1929.

145. Farced J-, Jeske W., et al. // Thromb. Res. 1996. - Vol.81. - № 2.1. P.l.

146. Fenderhut A., Hay J. // Arch Surg. 1993. - Vol.128. - № 2. - P.228

147. Furstenberg H., Schneider B. Erworbener Faktor XIII Manget und postoperative aseptische Wundhelundsstorungen // Zbl. Chir. - 1975. - BdlOO. -№ 13. - S.806-811.

148. Hemker H.C. // Thrombosis and Haemostasis / Eds M. Vestraete, J. Vermylen, R. Lynen, A.J.Eds. Lenven, 1987. - p. 17-36.

149. Husain M.T., Karim X.N., Tajuri S. // Burns. 1989. - Vol.5. - P.299302.

150. Howell W.H. Am. J. Physiol., 63:434, 1923.15 6.Ho well W.H. Bull. Johns Hopkins Hosp., 42:199, 1928.

151. Howes E., Soog J., Harvey S. The healing of wound as determined by their tensile strength // J.A.M.A. 1929. - Vol.92. - P.42-45.

152. Jones S. et al. // Curr. Surg. 1986. - Vol.43. - P.82-83.

153. Knighton D., Hunt Th., Thakral K. et al. Role of Platelets and fibrin in the healing Sequence // Ann. Surg. 1982. - Vol.196, № 4. - P.379-388.

154. Lorand L., Laki K. Biochem. et Biophys. acta, 1954, 13, 448.

155. Lorand L., Dickenman R. Proc. Soc. Exper. Biol. a. Med., 1955, 89, 45.

156. Mellanby I. Proc. Roy.6 Soc. London, В., 113:93. 1933.

157. Mellanby I. Proc. Roy. Soc. London, В., 107:271., 1930-1931.

158. Morawitz P. Ergefn. Physiol., 4:307, 1905.

159. Morawitz P. Arsh. Klin. Med., 79:215, 1904.

160. Moran K., Munster A.M. // Surg. Clin. N. Amer. 1987. - Vol.67, № 2. - P.45-56.

161. Metzaros G., Korcsayi Z. // The Hung. J. 1993. - Vol.41, № 4. -P.132-136.

162. Nacao H., Yanagisava S., Akayama N. et al. // J. Antibiot. 1979. -Vol.32. -P.320-329.

163. Peacock E., van Winkle W. Surgery and biology of wound repair. -Philadelphia: Saunders, 1970 615 p.

164. Peacock E., van Winkle W. Wound Repair. Philadelphia - London -Toronto: 1976. - 699 p.

165. PerlickE. Antikoagulanten. Leipzig, 1964. 416 p.

166. Quick A.J. Aspirin and platelet stickiness. Lancet, 1967, V.l, p.386387.

167. Quick A J. Georgatsos J. G., Hussey C.V. The clotting activity of human erathrocutes. Theoretical and clinical implications. Am. J. mtd. Sci., 1954, V.228, p.207.

168. Quick A J. The physiology and patology of homeostasis. Philadelphia, Lea and Fibirer, 1951.

169. Raekallio J. Enzyme histochemistry of wound healing. Stuttgart: Fischer, 1970.- 187 p.

170. Ross R. The fibroblast and wound repair // Biol. Rev. (Cambr.). 1968. -Vol.43, № 1. -P.51-95.

171. Ross R., Odland G. Human wound repair ||. Inflammatory cells epithe-lial-mesenchymal interrelations and fibrogenesis // J. Cell. Biol. 1968. - Vol.39, № 1. - P.152-168.

172. Ross R. Connective tissue cells, cell proliferation and symthesis of extracellular matrix-a review // Phylos. Trans. R. Soc. Lond. (Biol.). 1975. -Vol.271, № 912. -P.247-259.

173. Steen M. //Postgrad, med. J. 1993. - Vol.69, Suppl.3. - P.584-592. 185.Swedish Study Group. J Antimicrob Chemother 1990; 26: Suppl B: 173-180.

174. Viljanto J. Biochemical basis of tensile strength in wound healing // Acta chir. scand. 1964. - Suppl. 333. - 273 p.

175. Vc been I. Am. J. Physiol., 21:250. 1916.

176. Warner E.D., Brinkhouse K.M. and Smith H.P. Proc. Sec. Exp. Diol. a Med., 37:628.- 1938.