Лечение ран у животных с помощью пенополиуретановой повязки "Сарэл"

Водопьянов, Иван Федорович

Диссертации по ветеринарии → Ветеринарная хирургия

Автореферат и диссертация по ветеринарии (16.00.05) на тему:Лечение ран у животных с помощью пенополиуретановой повязки "Сарэл"

ДИССЕРТАЦИЯ

АВТОРЕФЕРАТ

Водопьянов, Иван Федорович Нижний Новгород 2008 г.

Ученая степень: кандидата ветеринарных наук

ВАК РФ: 16.00.05

Автореферат диссертации по ветеринарии на тему Лечение ран у животных с помощью пенополиуретановой повязки "Сарэл"

Водопьянов Иван Федорович

Лечение ран у животных с помощью пенополиуретановой повязки «Сарэл»

16.00.05 - ветеринарная хирургия 16.00.04 - ветеринарная фармакология с токсикологией

Автореферат

диссертации на соискание ученой степени кандидата ветеринарных наук

003457202

Санкт-Петербург, 2008

003457202

Работа выполнена на кафедре анатомии, фармакологии с токсикологией ФГОУ ВПО «Нижегородская государственная сельскохозяйственная академия», на кафедре общей и частной хирургии ФГОУ ВПО «Санкт-Петербургская государственная академия ветеринарной медицины».

Научные руководители: член корр. РАСХН

доктор ветеринарных наук, профессор

Стекольников Анатолий Александрович

доктор биологических наук, профессор Великанов Валериан Иванович

Официальные оппоненты: Доктор ветеринарных наук, доцент

Тарасенко Павел Александрович,

Кандидат ветеринарных наук, доцент Нифантова Валентина Павловна

Ведущая организация: ФГОУ ВПО «Казанская государственная

академия ветеринарной медицины имени Н.Э. Баумана»

Защита диссертации состоится 25 декабря 2008 года в 13.00 часов на за-

седании диссертационного совета Д 220.059.01 при ФГОУ ВПО «Санкт-Петербургская государственная академия ветеринарной медицины» по адресу: 196084, Санкт-Петербург, ул. Черниговская, д. 5.

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке ФГОУ ВПО «Санкт-Петербургская государственная академия ветеринарной медицины».

Автореферат разослан ноября 2008 года и размещен на сайте

http://spbgavm.ru

Ученый секретарь

диссертационного совета, у

доктор ветеринарных наук А /, , , ., О.В. Крячко

1. ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность исследопания. Раны во все времена являлись одной из основных хирургических патологий. Так, в промышленном скотоводстве раны и поверхностные язвы составляют 6-16 % от всех заболеваний, т.е. ими поражено 3-9 % всех животных (P.A. Бекмурзин, 2007). В настоящее время при продолжающемся росте интенсивности использования технических средств и различных агрегатов в животноводстве и увеличении давления фактора урбанизации на мелких непродуктивных животных значительного снижения травматичности, а следовательно и раневой патологии, ожидать не приходится. (Г.А. Абишев, 1975; Г.С. Кузнецов, 1980; К.И. Шакалов, 1987; В.В. Мосин, М.Ш. Шакуров, 1991; С.-Х. С. Чапанов, 1991; В.Н. Видении, A.B. Святковский, 1995; В.М. Белогуров, 2000; В.Г. Скопичев, Б.В. Шумилов, 2004; В.Н. Виденин, 2005; A.A. Стекольников, 2005,2007).

История средств лечения ран сопоставима с историей человечества, она берет свое начало задолго до зарождения принципов построения научной ветеринарии. По мере накопления знаний по основным естественнонаучным дисциплинам арсенал местных средств лечения ран значительно расширился и сегодня составляет не одну сотню (В .Д. Федоров и др., 2004). Причем для процесса нахождения и обоснования новых методов лечения ран характерен значительный прогресс в одних направлениях (например, разработка мазей (Д.С. Гафуров, 1985; М.И. Кропы-чева, 2003; В.Д. Соколов, 2005); постоянное появление новых физиотерапевтических методов и др.) и медленное развитие до недавнего времени в других областях (например, разработка средств закрытия раневого дефекта).

С бурным развитием химической промышленности в течение последних десятилетий, наблюдается появление новых перевязочных средств. Так как задача врача ветеринарной медицины заключается в использовании наиболее эффективных современных средств, методов и препаратов в лечении раневой патологии, нами для исследования возможности применения для лечения различных ран у мелких непродуктивных животных была предложена повязка пенополиуретановая «Сарэл». В ходе анализа ее основных практических и терапевтических свойств (отсутствие необходимости дополнительной фиксации, атраэматичность по отношению к раневой поверхности, возможность редкой смены и др.) мы сочли применение этой повязки наиболее оправданным и целесообразным в ветеринарной практике.

Исходя из вышеизложенного, изучение влияния пенополиуретановой повязки «Сарэл» на течение процесса заживления инфицированных размозженных кож-но-мышечных ран, научное обоснование применения данного метода лечения указанных патологий является актуальной задачей.

Цель и задачи исследований. Целью настоящей работы явилось изучение, апробация и внедрение в ветеринарную практику материала для закрытия ран повязки «Сарэл» из открытоячеистого пенополиуретана.

Для реализации поставленной цели были определены следующие основные задачи:

• провести комплексную оценку влияния повязки «Сарэл» на течение раневого процесса у подопытных животных (крыс);

• клинически и морфологически оценить возможность применения повязки «Сарэл» при лечении ран у собак в ветеринарной практике;

• на основе полученных данных разработать рекомендации по применению повязки «Сарэл» в различных фазах раневого процесса в ветеринарной практике при терапии инфицированных ран у собак.

• рассчитать экономическую эффективность от применения предложенного способа лечения инфицированных ран у собак;

Научная новизна.

Впервые изучен лечебный эффект повязки «Сарэл» при заживлении экспериментальных инфицированных размозженных кожно-мышечных ран у крыс и выявлено положительное действие повязки «Сарэл» на течение таких поражений. Проведены комплексные исследования с применением клинических, планиметрических, гистоморфологических, цитологических, гематологических методов процессов регенерации тканей при заживлении таких ран. Впервые в клинической ветеринарной практике в сравнительном аспекте на значительном материале изучено влияние повязки «Сарэл» на заживление поверхностных инфицированных кожно-мышечных ран различной локализации у собак.

Практическая значимость работы.

В комплексном лечении поверхностных кожно-мышечных ран различной локализации и этиологии у животных рекомендуем использовать повязку «Сарэл» для закрытия раневого дефекта.

На основании экспериментальных данных и материалов диссертации разработаны «Рекомендации по применению повязки из эластичного пенополиуретана гелеобразной быстрозастывающей для закрытия ран у животных ПГБ-САРЭЛ» (2008) (утвержденных и согласованных проректором по научно-исследовательской работе ФГОУ ВПО «Нижегородская ГСХА», профессором В.В. Ивениным от 10.03.2008 и Начальником Государственного учреждения Нижегородской области «Государственное ветеринарное управление г. Нижнего Новгорода» Е.А. Помазо-вым от 17.03.2008). Данные, собранные в ходе проведения работы, используются в процессе обучения студентов в курсах «Общая хирургия» и «Ветеринарная и клиническая фармакология. Токсикология» в ФГОУ ВПО «Нижегородская государственная сельскохозяйственная академия», ФГОУ ВПО «Санкт-Петербургская академия ветеринарной медицины», ФГОУ ВПО «Оренбургский государственный аграрный университет», ФГОУ ВПО «Ставропольский государственный аграрный университет», ФГОУ ВПО «Чувашская государственная сельскохозяйственная академия», ФГОУ ВПО «Башкирский государственный аграрный университет» и ФГОУ ВПО «Вятская государственная сельскохозяйственная академия». Метод лечения поверхностных кожно-мышечных ран у мелких непродуктивных животных внедрен в лечебную практику ветеринарного лечебно-диагностического центра «Эврика» (г. Нижний Новгород) и используется специалистами ГУНО «Госвет-управление» Кстовского и Дальне-Константиновского районов Нижегородской области.

Положения, выносимые на защиту.

Материалы по экспериментальному и клиническому изучению лечебных свойств пенополиуретановой повязки «Сарэл» и результаты ее внедрения в ветеринарную практику.

• Пенополиуретановая повязка «Сарэл» при лечении животных может применяться во всех фазах раневого процесса.

• Применение повязки «Сарэл» эффективно при лечении поверхностных инфицированных кожно-мышечных ран различной локализации.

• Лечение поверхностных инфицированных ран у собак повязкой «Са-рэл» в 2,14 раза дешевле, чем лечение традиционными методами.

• Экономическая эффективность применения повязки «Сарэл» для лечения ран у собак на рубль затрат составляет 5,7 р.

Апробация работы.

Основные положения диссертационной работы доложены и обсуждены на: Ш-ей Международной межвузовской научно-практической конференции аспирантов и соискателей «Предпосылки и эксперимент в науке» (Санкт-Петербург, 2005 г.), XVII-й Международной межвузовской научно-практической конференции посвященной 60-летию Победы в Великой Отечественной войне 1941-1945 гг. «Новые фармакологические средства в ветеринарии» (Санкт-Петербург, 2005 г.), Международном симпозиуме «Научные основы обеспечения защиты животных от эко-токсикантов, радионуклидов и возбудителей опасных инфекционных заболеваний» (Казань, 2005 г.), XIII-ом Международном московском конгрессе по болезням мелких домашних животных (Москва, 2005 г.), VI-й научно-практической конференции по болезням лошадей «Болезни лошадей: диагностика, профилактика, лечение» (Москва, 2005 г.), XVHI-й Международной научно-практической конференции «Новые фармакологические средства в ветеринарии» (Санкт-Петербург, 2006г.).

Публикации.

Основные положения диссертации опубликованы в 7 печатных работах, в том числе в двух научных журналах, входящих в список рекомендованных ВАК.

Структура и объём диссертации

Диссертация изложена на 136 страницах компьютерного текста и состоит из введения, обзора литературы, собственных исследований, обсуждения полученных результатов, выводов, списка литературы и приложений. Работа иллюстрирована 15 таблицами и 35 рисунками. Список использованной литературы включает 174 наименования, в том числе 34 - зарубежных авторов.

2. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ 2.1. Материалы и методы исследования

Экспериментально-клинические и лабораторные исследования по изучению влияния лечебного препарата пенополиуретановой (ППУ) повязки «Сарэл» на заживление инфицированных ран у лабораторных животных (крыс) и мелких непродуктивных животных (собак), проведены с 2004 по 2008 гг. в лабораториях кафедры анатомии, фармакологии с токсикологией ФГОУ ВПО «Нижегородская государственная сельскохозяйственная академия» и кафедры общей и частной хирургии ФГОУ ВПО «Санкт-Петербургская академия ветеринарной медицины».

Экспериментально-клиническое исследование состоит из двух серий опытов.

1-я серия опытов. Изучение влияния повязки «Сарэл» на течение раневого процесса экспериментально смоделированных ран у крыс.

2-я серия опытов. Изучение возможности применения повязки «Сарэл» в клинической практике для лечения кожно-мышечных инфицированных ран у собак и влияние её применения на динамику заживления раневого дефекта.

В первой серии опытов материалом для исследований служили белые беспородные крысы (самцы) в возрасте 4-5 мес. средней массой на начало эксперимента 230±5,5 г. Всего в опыте находилось 40 крыс. Подбор групп животных проводился по принципу аналогов.

Во второй серии опытов материалом для исследований служили собаки в возрасте от 2 до 5 лет с массой тела 29,7±5,0 кг (всего 46 животных) имеющие поверхностные инфицированные кожно-мышечные раны, различных пород и полов, принадлежащие гражданам г. Нижнего Новгорода, владельцы которых обратились за ветеринарной помощью в Ветеринарный лечебно-диагностический центр «Эврика». Применение повязки «Сарэл» для лечения ран производилось с согласия владельца животного,

В первой серии опытов изучался процесс заживления экспериментальных размозженных инфицированных ран при различных способах лечения. Для моделирования раневого процесса крысам в области холки (между лопатками) подготавливали операционное поле. С помощью трафарета чернилами отмечали место операции и длину разреза и скальпелем наносили резаные кожно-мышечные раны (Гречко В.Н. и соавт., 1993). Длина ран составляла около 2 см, глубина порядка 0,5 см. После нанесения ран края их размозжали. Для инфицирования в полость раны помещали марлевые салфетки (1x1 см), пропитанные 30%-й взвесью фекалий крупного рогатого скота. На раны накладывали кожные швы. Всех раненых животных разделили на 3 группы (п=10). Для лечения ран были использованы следующие методы: в первой группе применяли повязку «Сарэл», во второй - раствор сложного состава с дезинфицирующим, дегидратирующим и дубящим свойствами по прописи: натрия хлорида - 2,5 г, соды питьевой - 2,5 г, фурациллина - 0,025 г, спирта этилового 96 % - 30 мл, воды дистиллированной - до 200 мл. Животных третьей группы не лечили (контроль). Через сутки после нанесения ран кожные швы удаляли, извлекали марлевые салфетки и начинали лечение. Смену повязки «Сарэл» производили по мере ее пропитывания раневым отделяемым, либо самопроизвольного ее снятия животными. Обработки лечебным раствором проводили 1 раз в сутки до полного заживления раны.

Исследование раневого процесса проводили по следующим критериям: изменение клинического состояния животных, характеру заживления раны (внешний вид раневого струпа, срок его отторжения, характер раневого отделяемого, время полной эпителизации раны, изменение площади раны). Кроме этого использовали цитологические, бактериологические, гистологические, гематологические и статистические методы.

Исследования крови у всех групп животных проводили до нанесения ран, а затем через 3, 7 и 14 суток после начала лечения. Кровь для гематологических исследований у крыс забирали из кончика хвоста, а у собак - из подкожной вены предплечья в пробирки с антикоагулянтом (10 %-ый цитрат натрия из расчета 2-3 капли на 1 мл).

Цельную кровь использовали для подсчета количества эритроцитов, лейкоцитов и тромбоцитов в камере Горяева (И.П. Кондрахин и соавт., 1985) и определения концентрации гемоглобина гематитовым методом (по Сали), а также для выведения лейкограммы в мазках, окрашенных по Филипсону (B.C. Кондратьев, 1976).

У собак дополнительно исследовали некоторые биохимические показатели крови (креатинин, мочевину, билирубин, общий белок рефрактометрическим методом на рефрактометре ИРФ-20 (Кондрахин И.П. и соавт., 1985)).

Для качественного и количественного изучения раневой микрофлоры проводили бактериологические и цитологические исследования. С этой целью до введения и после извлечения марлевых салфеток, а также через 3 и 7 суток брали мазки

из ран стерильными ватными тампонами. Посевы делали на чашки Петри с мясо-пептонным агаром и после суточной экспозиции подсчитывали колонии бактерий. В дальнейшем микроорганизмы типировали и определяли их антибиотикочувстви-тельность.

С поверхности ран готовили мазки-отпечатки по методу М. П. Покровской и М. С. Макарова (1942), которые фиксировали в жидкости Карнуа, окрашивали ме-тиленовой синькой по Романовскому—Гимзе в модификации Лилли (1969), на гликоген ШИК-реакцией по Мак-Манусу с докраской эсдергематеином Майера, на нуклеиновые кислоты — галлоцианин-хромовыми квасцами по Эйнарсону (Пирс Э., 1962).

Для оценки скорости заживления экспериментальных кожно-мышечных ран у собак регулярно проводили морфометрию по методу Л.Н. Поповой, 1942 и фотографирование ран.

Для определения площади ран у крыс площадь экспериментальных ран вычисляли по промерам полуосей, использую формулу для вычисления площади эллипса:

S = nab,

где: S - площадь раны (мм2);

a, b - полуоси эллипса (мм).

Для гистологических исследований брали образцы тканей через 3, 7,14 и 21 сутки после нанесения ран. Образцы тканей фиксировали в 10%-ом растворе нейтрального формалина. Заливку в парафин проводили по обычной схеме после проводки в спиртах возрастающей крепости. Срезы готовили на ротационном микротоме. Парафиновые срезы толщиной 7-8 мкм окрашивали гематоксилин-эозином и по Ван-Гизону (Г.А. Меркулов, 1969). Готовые препараты изучали под микроскопом Биолан-М.

Результаты опытов приведены в единицах СИ. Статистическую обработку полученного материала проводили на персональном компьютере IBM-PC, с использованием программы Statistika-5. Программа Statistika-5 является интегрированной системой комплексного статистического анализа и обработки данных в среде Windows (Боровиков П.В., Ивченко Г.И, 2000).

2.2. Результаты исследований

2.2.1. Влияние пенополиуретановой повязки «Сарэл» на течение раневого процесса у крыс при лечении моделированных инфицированных кожно-мышечных ран.

Оценка общего состояния животных. В средне^, у крыс подопытных групп общее состояние приходило в физиологическую норму на 2-3 сутки, в это время наблюдалось восстановление аппетита, подвижности, появлялась нормальная реакция на внешние раздражители. Подобное улучшение общего состояния у животных контрольной группы наблюдалось в среднем лишь к 3-4 дню.

Клиническая картина заживления раны. Изменение площади раны. В течение первых суток после нанесения происходило увеличение площади раны приблизительно на 10% по отношению к исходной площади при минимальном кровотечении.

В первый день лечения гнойно-воспалительные процессы в ранах значительно выражены. В дальнейшем при лечении с помощью повязки «Сарэл» раневая по-

верхность всегда поддерживалась в свободном от гноя состоянии за счет своевременной смены повязки (1 раз в сутки в стадии обильной экссудации раны), образование струпа не происходило. При орошение раны лечебным раствором у животных 2-й опытной группы на 2-3 день раневая поверхность закрывалась струпом. У животных контрольной группы закрытие раны струпом происходило на 1-2 день, заживление раны происходило с выраженными нагноительными процессами.

Из таблицы 1 видно как меняется площадь раневой поверхности у подопытных крыс разных групп на разных сроках течения раневого процесса.

Таблица 1

Площадь экспериментальных ран у крыс подопытных и контрольной групп _^_на различных сроках заживления__

Группы Площадь раневой поверхности, mi/

1 день 3 день 5 день 7 день 9 день 11 день 14 день

Группа 1 165±8,3 1 123±6,52 96+5,8 2 70±4,53 42±3,24 22±2,1 4 2±0,44

Группа 2 161±7,2 1 133±б,8 1 106±6,0 1 82±4,72 61±3,0 2 40±2,5 3 23±1,73

Группа 3 (контрольная) 169±7,5 144±7,3 119±6,2 97±4,9 72+3,7 53±3,3 34±2,4

1 р>0,05; р<0,05;3 р<0,01;4 р<0,001 - степень достоверности различий между площадями раневой поверхности у животных подопытных групп в сравнении с контрольной.

У животных 1-й группы образование молодого сформированного эпителизи-рованного рубца заканчивалось в среднем на 13-15 дни. К этому времени прилежащие ткани были не отечны, мягкие и безболезненные при пальпации. Период ремиссии был без осложнений.

У животных 2-й подопытной и контрольной групп заживление ран происходило в более поздние сроки. На 14-15 сутки у животных этих групп сохранялись отечность прилежащих тканей и их болезненность. Образование молодого соединительнотканного регенерата у крыс 2-й подопытной группы происходило на 17-18 сутки. У контрольных животных полное заживление ран наступало лишь к 20-25 дню.

Гематологические исследования. До начала опыта показатели морфологического и биохимического состава крови у животных подопытных и контрольной групп существенных различий не имели.

Остановимся на рассмотрении наиболее значимых для нас показателей -уровня лейкоцитарной реакции и изменении лейкоформулы.

При лечении повязкой «Сарэл» значительное уменьшение выраженности лейкоцитарной реакции было заметно уже на седьмой день (8,3±0,5х109/л) и сохранялось на этом уровне до полного заживления раневого дефекта. В те же сроки у крыс, лечившихся антисептическим раствором и контрольных животных, лейкоцитоз оставался выраженным в течение длительного времени (на 7-й день 10,9±0,5х109/л, и 10,7±0,8х10'/л; на 14-й день 8,7±0,6х109/л и 10,9±0,8х109/л соответственно).

Ведущими изменения в видовом составе лейкоцитов, являются различное распределение нейтрофилов по зрелости у различных групп животных. Так, наибольший регенераторный сдвиг влево наблюдается у контрольных животных на 7-й день лечения, что совпадает с продолжающейся выраженной лейкоцитарной реакцией. В тоже время у животных, раны которых лечили повязкой «Сарэл» более

выражены процессы созревания нейтрофилов и преобладание сегментоядерных форм, достигающих максимума к 14-му дню лечения.

Количество лимфоцитов у подопытных групп животных на всех сроках лечения заметно ниже, чем у контрольной.

Через трое суток после начала лечения количество моноцитов во всех группах увеличилось по сравнению с начальным уровнем и составило в первой группе 5,8±0,3% (р<0,02), во второй - 6,2±0,4% (р>0,05), в контрольной 7,7+0,6%. Спустя семь суток соответственно 4,5±0,4% (р<0,001), 7,3±0,5 (р<0,02)%, 9,5±0,8%. На четырнадцатые сутки 4,1±0,3% (р<0,05), 4,7±0,3% (р>0,05) и 5,3+0,4% соответственно.

Бактериологические исследования. Основными представителями микрофлоры в инфицирующем агенте являются стафилококки St. spp. и кишечная палочка Е. coli, чувствительные ко всем основным противомикробным препаратам (ампициллин, гентамицин, цефазолин и др.), а также кокковые формы и неспецифическая споровая флора. Перед началом лечения с раневой поверхности животных всех групп выделялось примерно одинаковое количество бактериальных колоний (табл. 2).

Таблица 2

Количество микроорганизмов, выделенных на МПА

_с единицы площади раневой поверхности._

Число колоний на 1 см^ по дням наблюдений Группы животных__1 день__7 день__15 день_

1 группа__137±8 63,5±2 1 ~ 27±1,3 '

2 группа__129+7__77±4__43±3 1

3 группа (контроль)__136±5__86+4__61±2_

р<0,001 - степень достоверности различий между уровнем бактериальной обсемененно-сти ран у животных разных групп.

На 7 день лечения основным представителем микрофлоры у животных различных групп была Е. coli. Снижение уровня бактериальной обсемененности при лечении пенополиуретановой повязкой объясняются тем, что она обеспечивает активный отвод раневого отделяемого от поверхности раны и элиминацию бактериальных агентов вместе с экссудатом. На 15 день количество высеваемых Е. coli значительно уменьшилось, и основным компонентом раневой флоры стал энтерококк. В контрольной группе с поверхности ран по-прежнему в умеренных количествах высевались монокультуры кишечной палочки и энтерококка, стафилококки, а также их ассоциации друг с другом и некоторыми другими микроорганизмами.

Цитологические исследования. До начала лечения обнаруживалась острая раневая, смешанная инфекция с наличием у подавляющей части животных стафилококков, стрептококков и грамотрицательной микрофлоры. Процесс фагоцитоза микрофлоры был заторможен — незавершенный фагоцитоз достигал 35 % с наличием 18—45 стафилококков в цитоплазме нейтрофилов и макрофагов.

Отмечалась резко выраженная воспалительная реакция, протекавшая с массовой гибелью (71,8±4%) и дистрофией (25,1±2,3%) нейтрофилов. Количество относительно сохранных нейтрофилов было резко снижено (3,1 ± 0,2%). Содержание мононуклеарных клеток (лимфоцитов, макрофагов, полибластов) было низким.

На 7-й день лечения наблюдалось значительное падение числа некротически измененных нейтрофильных лейкоцитов: с 69,9±6,9 % до 13,7±5,95 % при лечении

повязкой «Сарэл» (группа 1), с 63,6±10,02% до 31,6+2,26% при лечении антисептическим раствором (группа 2) и с 71,73±3,8 % до 45,8±2,4 % ¿<0,01) в контрольной группе. Вместе с тем резко увеличивалось относительное содержание нейтрофиль-ных лейкоцитов с нормально сегментированными ядрами у всех групп животных.

Через 14-15 дней лечения повязкой «Сарэл» и антисептическим раствором у большинства животных воспалительная реакция выражена слабее, чем в контрольной группе. Содержание погибающих некротически измененных нейтрофилов падало. Одновременно количество нейтрофилов с нормальной структурой ядер возрастало.

На фоне затухания воспаления и гноеобразования активировалась регенерация ран с увеличением в отпечатках малодифференцированных полибластов и молодых соединительнотканных клеток (профибробластов, фибробластов). Полученные данные свидетельствовали о том, что повязка «Сарэл» достоверно активнее создавала условия для стимулирования регенерации мягких тканей раны, чем антисептический раствор.

Гистологические исследования. На третий день лечения выявляется четкий кожно-мышечный дефект с признаками местной воспалительно-некротической реакции. По краю раны лежат группы отторгающихся клеток, наблюдаются признаки мукоидного набухания дермы: ее волокна разрыхлены, утолщены, гомогенизированы, края их размыты и неровные. В более глубоких слоях наблюдаются множественные скопления дистрофически измененных клеток с кариопикнозом и кариорексисом.

На 7-й день заживления раневого дефекта на поверхности раны четко заметны признаки регенерации: увеличивается количество мелких и средних кровеносных сосудов; формируется молодой эпидермис. Вместе с тем продолжаются дегенеративные процессы, наиболее выраженные у животных контрольной группы. В препаратах от животных, лечение которых производили повязкой «Сарэл», в целом можно отметить следующие отличительные черты: умеренная очаговая воспалительная реакция, более активная регенерация эпидермиса, слой его имеет большую толщину; наличие большего числа вновь образованных мелких сосудов на единицу площади, распределение которых более равномерно. Кроме этого отмечается наличие более зрелой вновь образованной соединительной ткани, коллагеновые волокна имеют сформированную структуру.

На 14-й день образование незрелого соединительно-тканного рубца, заполняющего большую часть раневого дефекта, наблюдается только у животных первой подопытной труппы. Микроскопически у животных контрольной группы диффузная лейкоцитарная инфильтрация, умеренная пролиферация фибробластов в дерме, в мягких тканях очаги воспаления с множественными гранулемами, которые состоят из крупных многоядерных клеток. У животных подопытных групп эпидермис обычного строения, дерма малокровна, на отдельных участках разрыхлена, со слабой лейкоцитарной диффузной инфильтрацией, в подкожно-жировом слое единичные воспалительные очаги с инфильтрацией лейкоцитами и пролиферацией фибробластов, редкие мелкие бурые очаговые кровоизлияния.

2.2.2. Влияние пенополиуретановой повязки «Сарэл» на течение раневого процесса у собак при лечении поверхностных инфицированных кожно-мышечных ран.

Мы проводили лечение инфицированных ран у собак с помощью пенополиуретановой повязки «Сарэл» в сравнительном аспекте при использовании обще-

принятых методов лечения. Из животных имевших на момент поступления поверхностные инфицированные кожно-мышечные раны нами были сформированы 2 группы по принципу аналогов.

Животных первой группы (всего 23 собаки) лечили с помощью повязки «Сарэл», а животных второй группы (всего 23 собаки) сложным раствором по прописи: натрия хлорида - 2,5 г, соды питьевой - 2,5 г, фурацилина - 0,025 г, спирта этилового 96 % - 30 мл, воды дистиллированной - до 200 мл. Раны на момент поступления локализовались в различных областях тела (спина, конечности, брюшная стенка, шея).

При первичном приеме проводилась первичная хирургическая обработка ран. В случае необходимости осуществлялась седация. После первичной обработки ран во всех случаях глухое закрытие раны было невозможным.

Сразу после первичной обработки ран у животных первой группы накладывали повязку «Сарэл», так чтобы она полностью покрывала рану и участок здоровой кожи на расстоянии 1-2 см от края раны. Смену повязки в период выраженных экссудативных процессов (первые 5-7 дней) проводили один раз в 1-2 дня, на дальнейших этапах лечения - один раз в 3-5 дней либо после самопроизвольного отслоения вплоть до полного заживления. У животных второй группы орошение раневой поверхности сложным раствором проводили один раз в день до заживления.

Оценка общего состояния животных. У части животных (9 собак, 19,6 %) наблюдались признаки генерализации воспалительного процесса, что характеризовалось повышением общей температуры тела, снижением подвижности и аппетита. В ходе лечения ран происходила быстрая нормализация температуры тела у всех животных. Общее состояние собак нормализовалось через 2-3 суток после начала лечения.

Макроскопическая характеристика ран при заживлении. Площадь ран в момент поступления составила 27,2±3,5 см2 в первой группе и 25,1+3,6 см2 во второй. Изменение площади раневой поверхности в процессе заживления представлено в таблице 3 и на рисунке 1,

Таблица 3.

Площадь раневой поверхности на разных сроках заживления__

Срок наблюдения Площадь раневой поверхности, сиг

Группа 1 Группа 2

1 день 27,2±2,4 1 26,1 ±2,5

3 день 25,1±1,9 ' 25,0±2,2

5 день 22,9±1,7 1 24,2±1,8

7 день 19,6±1,5 1 22,4±1,6

10 день 16,6±0,92 20,5±1,2

14 день 12,8+0,73 16,9±1,1

21 день 7,9±0,5 4 12,б±0,9

28 день 0,8±0,1 4 6,8+0,5

р>0,05;1 р<0,05;р<0,01;4 р<0,001 - степень достоверности различий между площадями раневой поверхности у животных подопытной и контрольной групп.

т-1-1-1-1-1-1-

3 5 7 10 14 21 28 срок заживления, дни

Рисунок 1. Динамика заживления ран у собак.

Из таблицы 3 и рисунка 1 хорошо видно, что заживление ран при лечении повязкой «Сарэл» происходит достоверно быстрее. На 1 день наблюдения у животных обеих групп происходило активное очищение раневой поверхности от остатков девитализированных тканей с выраженными экссудативными процессами.

Изменения в процессах заживления между животными двух групп становятся заметны уже к 3-му дню, при этом у животных первой группы очищение раны от нежизнеспособных тканей в основном заканчивается. Площадь раневой поверхности составляла 25,1±2,8 см2. У животных второй группы раневая поверхность частично покрывалась фибриновым струпом. Воспалительные явления более выражены, отек распространялся на 2,5-3,0 см по периферии раневого дефекта. Площадь раневой поверхности составляла 25,0±3,2.

В дальнейшем изменения в течение раневого процесса становятся более заметными. На 7-е сутки раневая поверхность у животных 1-й группы в основном свободна от экссудата. Грануляции почти полностью покрывают дно и края раны, они некровоточивые, плотные, мелкозернистые, ярко-розового цвета. По краям ран появляется кайма эпителизации, шириной 2-3 мм. На раневой поверхности лежит сухой, темно-коричневого цвета струп, который полностью отторгается на 10-12 сутки исследования. Грануляции покрыты небольшим слоем гноя, они бледно-розового цвета, отечны, кровоточивы.

На 14 сутки течения раневого процесса. Раны животных 1-й группы полностью заполнены грануляционной тканью и с поверхности покрыты тонкой фибри-новой пленкой. Утолщенный плоский многослойный ороговевающий эпителий по краю рамы наползает на грануляционную ткань в виде ободка шириной 5-7 мм, у животных 2-й группы эпителиальный ободок шириной 2-4 мм.

21 сутки течения раневого процесса. К этому времени у животных 1-й группы раневой дефект выполнялся рубцующейся грануляционной тканью и эпители-зовался на 85-90 %. Во 2-й группе у животных раны полностью заполнились грануляционной тканью. Эпителизация отмечалась лишь по краю раневого дефекта в виде эпителиального валика шириной до 5 мм.

28 сутки течения раневого процесса. У животных подопытной группы раневая поверхность эпителизировалась. Площадь раневой поверхности у животных 2-й группы на 28 сутки составляла 22,2 % по сравнению с первоначальной площадью раневого дефекта. Эпителизация заканчивалась через 5-7 суток.

Гематологические исследования. У собак при лечении ран пенопо-лиуретановой повязкой наблюдалось плавное умеренное повышение уровня лейкоцитов до 12,6±1,2х109/л на третьи сутки лечения, а затем постепенное снижение и возвращение этого показателя в физиологическую норму к 14-му дню (10,2±0,8х109/л). При лечении традиционными методами системная лейкоцитарная реакция была резко выражена (табл. 4). Других значимых изменений со стороны гематологических показателей не наблюдалось.

Таблица 4

Содержание лейкоцитов в крови собак в ходе эксперимента_

Срок исследования Лейкоциты, 10у/л

Группа 1 Группа 2

Во время первичного приема 11,5±0,8 12,2±1,1

3 сутки 12,6±1,2 14,8±1,3

7 сутки 11,8±0,9 2 16,5±1,4

14 сутки 10,2+0,8 1 13,7±1,3

28 сутки 9,5±0,7 10,4+0,9

р<0,05; р<0,02; - степень достоверности различий между морфо-биохимическими показателями крови у животных подопытной и контрольной групп

Бактериологические исследования. Исследования микробного пейзажа во время первичного приема животных показали наличие значительной обсемененно-сти ран у животных обеих групп. Количество бактериальных колоний на единицу площади, выделенных с МПА, у животных разных групп на различных сроках проведения исследования показано в таблице 5.

Таблица 5

Количество колоний микроорганизмов, выделенных с раневой поверхности на МПА

Группы собак Число колоний на 1 смг по дням наблюдений

1 день 3 день 7 день 14 день

1-я (опытная) 120+6,3 76±4,2 1 14+1,1 1 5±0,3 1

2-я (контрольная) 126+5,5 107±4,9 93+7,2 80±4,5

р<0,001 - степень достоверности различий между уровнем бактериальной обсемененно-

ста ран у животных подопытной группы в сравнении с контролем.

В первый день в обеих группах количество колоний микроорганизмов на единицу площади отличалось незначительно. В дальнейшем у собак первой группы, при использовании повязки «Сарэл» происходила быстрая очистка раневой поверхности от бактериального загрязнения, уже на 3-й день обсемененность умень-

шалась почти вдвое до 76+4,2 (р<0,001) на квадратный сантиметр, а к 7 дню составляла 14±1,1 (р<0,001). В те же сроки при использовании традиционной схемы лечения уровень обсемененности уменьшался незначительно. Практически полное освобождение раневой поверхности от бактериальных агентов при использовании повязки «Сарэл» происходило на 14-й день (уровень обсемененности 5±0,3 (р<0,001) колоний на см2), а в контрольной группе в этот период обсемененность составляла 80±4,5 колоний на см2.

Использование повязки «Сарэл» оказывало значительное влияние на качественный состав микрофлоры. Уже к 7-му дню лечения относительное количество высокопатогенных микроорганизмов заметно снижалось (St. aureus с 32 % до 19 %, Ps. aeroginosa с 15 % до 6 %, Pr. mirabilis с 7 % до 2 %), а среди микрофлоры раны преобладали кокковые формы и спорообразующие палочки. В контрольной группе значительного изменения качественного состава раневой микрофлоры не происходило вплоть до 14-го дня лечения и далее.

Цитологические исследования мазков-отпечатков с раневой поверхности. В 1 сутки наблюдения у всех животных на цитологических отпечатках раневой поверхности встречались нейтрофилы, лимфоциты и моноциты, большое количество стафилококков. Большое число полиморфноядерных лейкоцитов были деструктивно изменены.

На 3-й сутки при исследовании раневых отпечатков животных отмечено большое количество нейтрофильных гранулоцитов, активно участвующих в фагоцитировании микробов. У животных первой группы процент фагоцитирующих нейтрофилов больше, чем у животных второй группы. У животных второй группы одноядерные клетки гистиоцитарного происхождения наблюдались в гораздо меньшем количестве.

На седьмые сутки исследования в цитологических отпечатках с раневой поверхности животных 1-й группы в поле зрения отмечено умеренное количество лейкоцитов, среди них полиморфноядерные лейкоциты составляют 40-50 % с заметным преобладанием сохранных форм. Подавляющее большинство нейтрофилов активно участвует в фаголизе микробов. Много одноядерных клеток гистиоцитарного происхождения, большое количество полибластов которые активно участвовали в фагоцитировании микробов. В раневых отпечатках контрольных животных полиморфноядерные лейкоциты составляли 70-80 %, появлялись единичные поли-бласты, макрофаги, встречались профибробласты в меньшем количестве, чем у животных подопытной группы.

Гистологические исследования биоптатов раневой поверхности. На 3-7-е сутки течения раневого процесса при гистологическом исследовании биоптатов животных первой группы сосуды кровеносного русла расширены, полнокровны. Стенки мелких сосудов набухшие, разрыхленные. Отмечается эмиграция лейкоцитов за пределы сосудов и инфильтрация окружающих тканей. Развивается бурная пролиферация молодых соединительнотканных элементов, основу которых составляют фибробласты, образующие типичную струюуру грануляционной ткани. Между этими клетками в аморфном промежуточном веществе соединительной ткани заметны беспорядочно расположенные нежные короткие коллагеновые волокна. Полиморфноядерные лейкоциты, входящие в состав воспалительного инфильтрата, большей частью дегенеративно изменены. По краям раны в эпидермисе отчетливо выявляются признаки регенерации. В клетках эпидермального регенерата выражена вакуолизация. Тучных клеток встречается около 10-12 в поле зрения.

При гистологическом исследовании ран у животных контрольной группы мы наблюдали дефект тканей, включающий эпидермис, дерму и подкожные мышцы. Раневая поверхность покрыта струпом, состоящим из фрагментов, разделенных отечной тканевой жидкостью. Под фибринотканевым струпом выявляется клеточный эмиграт инфильтрирующий ткани, состоящий из полиморфноядерных лейкоцитов и лимфоцитов. Глубокие слои дермы по краю раны набухают, увеличиваются в объеме и выступают из-под эпидермиса. Экссудат содержит большое количество одноядерных полибластов. В сосудах микроциркуляториого русла отмечается стаз эритроцитов. Стенка сосудов утолщена. Тучноклеточная реакция, также как и фибробластическая, слабая.

На 7-14 сутки при гистологическом исследовании биоптатов из раневого дефекта животных 1-й группы видно, что поверхность грануляций покрыта узким лейкоцитарным валом, состоящим из большого количества нейтрофильных лейкоцитов, гистиоцитов, эпителиальных клеток. Основное место в тканях раны занимают регенеративные процессы, характеризующиеся бурной пролиферацией фиб-робластов, развитием капиллярной сети и образованием молодой грануляционной ткани. Фибробластическая реакция сильно выражена. Стенки капилляров тонкие, превалируют наполненные кровью капилляры. Эпидермис активно регенерирует, нарастая на рубцующуюся грануляционную ткань.

При гистологическом исследовании биоптатов животных 2-й группы неполноценная соединительная грануляционная ткань сформирована лишь в глубине раневой ниши, расположение коллагеновых волокон хаотичное, выражен отек, ней-трофильная и лимфоидная инфильтрация, беспорядочно ориентированные немногочисленные фибробласты, тромбоз сосудов. Тучноклеточная реакция в этом участке слабая. Капилляры по краям раневого дефекта расширены, некоторые из них облитерированы. По краям раны отмечена некоторая активность базального слоя эпителиоцитов, что заметно по нарастанию эпителиальных клеток на незрелую грануляционную соединительную ткань и фигурам митоза в некоторых эпителио-цитах.

На 28 сутки исследования при гистологическом исследовании биоптатов животных 1-й группы рана заполнена зрелой грануляционной тканью, характеризующейся уменьшением числа сосудов и клеточных элементов - макрофагов, тучных клеток, фибробластов. Толстые коллагеновые пучки преимущественно ориентированы к поверхности раны. Новообразованный эпителий покрывает грануляционную ткань.

У животных 2-й группы раневой дефект заполнен незрелой грануляционной тканью, состоящей из тонких пучков коллагеновых волокон и молодых клеточных элементов (фибробластов, макрофагов, тучных клеток). В глубине соединительной ткани имеются частично тромбированные капилляры с набухшими стенками и участками периваскулярной инфильтрации лимфоцитами и плазматическими клетками. Капиллярная сеть еще не достаточно развита. Тучных клеток немного, в среднем 7-8 в одном поле зрения. Раневая поверхность полностью не эпителизирована, пролиферативная активность базального слоя слабая.

Результаты исследований позволяют рекомендовать повязку «Сарэл» для широкого использования в практической деятельности ветеринарных специалистов.

выводы

1. В настоящее время, когда не создано ни одного средства раневого закрытия удовлетворяющего всем требованиям практической ветеринарной хирургии, пенополиуретановая повязка «Сарэл» наиболее полно отвечает критериям, предъявляемым к «идеальной повязке».

2. Применение повязки из пенополиуретана при терапии экспериментальных инфицированных размозженных кожно-мышечных ран у крыс производит выраженный терапевтический эффект. При этом заживление ран у крыс происходит на 17-23 % быстрее по сравнению с традиционными методами лечения и на 3235 % быстрее по сравнению с контролем.

3. При лечении поверхностных инфицированных кожно-мышечных ран в клинической практике у собак пенополиуретановая повязка сокращает сроки очищения ран от гнойного экссудата и некротических масс, появления грануляций и краевой эпителизации. Заживление инфицированных ран происходит на 16-20 % раньше по сравнению с традиционными методами лечения.

4. Пенополиуретановая повязка обеспечивает закрытие раневого дефекта на любых участках тела собаки (за исключением области головы) без дополнительной фиксации. Ее особенностью является отсутствие необходимости частой смены повязки (до 1 раза в 5-6 дней), что позволяет экономить перевязочные материалы и лекарственные средства, улучшать условия труда ветеринарного специалиста.

5. Простота приготовления и использования повязки, а также отсутствие значительных болевых ощущений при ее удалении с раны позволяют менять повязку без применения седгтивных средств, транквилизаторов, и анальгетиков не только в ветеринарной клинике, но и в домашних условиях согласно назначению врача или после самопроизвольного отслоения. Это обеспечивает непрерывность лечения, позволяет, избавиться от стрессового воздействия транспортировки на организм животного и упрощает уход за больным животным.

6. Лечение поверхностных инфицированных ран у собак повязкой «Сарэл» в 2,14 раза дешевле, чем лечение традиционными методами. Экономическая эффективность применения повязки «Сарэл» для лечения ран у собак на рубль затрат составляет 5,7 р.

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

1. С целью сокращения сроков заживления инфицированных поверхностных кожно-мышечных ран для закрытия раневого дефекта предлагается использовать пенополиуретановую повязку «Сарэл» на основании «Рекомендации по применению повязки из эластичного пенополиуретана гелеобразной быстрозасты-вающей для закрытия ран у животных ПГБ-САРЭЛ» (2008) (утвержденных и согласованных проректором по научно-исследовательской работе ФГОУ ВПО «Нижегородская ГСХА», профессором В.В. Ивениным от 10.03.2008 и Начальником Государственного учреждения Нижегородской области «Государственное ветеринарное управление г. Нижнего Новгорода» Е.А. Помазовым от 17.03.2008).

2. Основные положения и выводы диссертации предлагаем использовать в учебном процессе при чтении лекций, проведении лабораторно-практических занятий, оформлении учебно-методических указаний для студентов профильных высших профессиональных образовательных учреждений.

СПИСОК РАБОТ ОПУБЛИКОВАННЫХ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ

1. Водопьянов И.Ф. Морфологические особенности течения раневого процесса при применении двухкомпонентных пенополиуретановых повязок у собак. / Водопьянов И.Ф., Великанов В.И. // Морфология, Т. 133 (№ 4). Санкт-Петербург, Эскулап, 2008, С. 62.

2. Водопьянов И.Ф. Лечение инфицированных кожно-мышечных ран у собак с помощью повязки «Сарэл» / Водопьянов И.Ф., Великанов В.И., Сокольников A.A., Послов Г.А. Н Ветеринарный врач 2008, №5. - С. 41-43.

3. Послов Г.А. Новое в вопросах десмургии при лечении ран / Послов Г.А., Водопьянов И.Ф., Великанов В.И. // Материалы III Международной межвузовской научно-практической конференции аспирантов и соискателей «Предпосылки и эксперимент в науке», Санкт-Петербург 2005 г. - С. 46-47.

4. Водопьянов И.Ф. Морфологические и биохимические показатели крови собак на фоне применения двухкомпонентных пенополиуретановых композиций при лечении ран. / Водопьянов И.Ф., Великанов В.И. // Материалы XVII Международной межвузовской научно-практической конференции посвященной 60-летию Победы в Великой Отечественной войне 1941-1945 гг. «Новые фармакологические средства в ветеринарии», Санкт-Петербург 2005 г. - С. 62.

5. Послов Г.А. Применение пенополиуретановых композиций для лечения ран у животных (в эксперименте) / Послов Г.А., Водопьянов И.Ф. // Материалы XIII Международного московского конгресса по болезням мелких домашних животных 23-25 апреля 2005 г., М., 2005. - С. 97-98.

6. Водопьянов И.Ф. Новое в лечении длительно незаживающих ран и трофических язв у животных (статья) / Водопьянов И.Ф., Великанов В.И., Послов Г.А., Стекольников A.A. // Материалы XVIII Международной научно-практической конференции «Новые фармакологические средства в ветеринарии» 16-19 мая 2006 года. Санкт-Петербург, 2006. - С. 10.

7. Водопьянов И.Ф. Состояние морфо-биохимических показателей крови собак на фоне применения двухкомпонентных пенополиуретановых композиций при лечении ран (тезисы) / Водопьянов И.Ф., Великанов В.И. // Материалы XX съезда физиологического общества им. И.П. Павлова, 4-8 июня 2007 г., М., 2007. - С. 181.

Подписано в печать 14.11.2008 Объем 1,0 п.л. Тираж 100 экз. Заказ № 288 Отпечатано в типографии НГСХА Нижний Новгород, пр. Гагарина, д. 97

Оглавление диссертации Водопьянов, Иван Федорович :: 2008 :: Нижний Новгород

СОДЕРЖАНИЕ.

ВВЕДЕНИЕ.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1. Учение о ране и патогенезе раневого процесса.

1.2. Фармакокоррекция инфицированных ран.

1.3. Обзор современных перевязочных средств.

2. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ.

2.1. Материалы и методы исследования.

2.2. Экспериментальное изучение эффективности лечения инфицированных ран мягких тканей под повязкой «Сарэл».

2.3. Результаты клинических исследований.

Лечение поверхностных инфицированных ран мягких тканей у собак.

Введение диссертации по теме "Ветеринарная хирургия", Водопьянов, Иван Федорович, автореферат

Актуальность темы. Раны во все времена являлись одной из основных хирургических патологий. Так, в промышленном скотоводстве раны и поверхностные язвы составляют 6-16 % от всех заболеваний, т.е. ими поражено 3-9 % всех животных (Р.А. Бекмурзин, 2007). В настоящее время при продолжающемся росте интенсивности использования технических средств и различных агрегатов в животноводстве и увеличении давления фактора урбанизации на мелких непродуктивных животных значительного снижения травматичности, а следовательно и раневой патологии, ожидать не приходится. (Г.А. Абишев, 1975; Г.С. Кузнецов, 1980; К.И. Шакалов, 1987; В.В. Мосин, М.Ш. Шакуров, 1991; С.-Х. С. Чапанов, 1991; В.Н. Видении, А.В. Святковский, 1995; В.М. Белогуров, 2000; В.Г. Скопичев, Б.В. Шумилов, 2004; В.Н. Видении, 2005; А.А. Стекольников, 2005, 2007).

История средств лечения ран сопоставима с историей человечества, она берет свое начало задолго до зарождения принципов построения научной ветеринарии. В эпоху античности уже первые ученые-универсалы старались привести основания для применения различных местных препаратов в научные рамки. По мере накопления знаний по основным естественнонаучным дисциплинам арсенал местных средств лечения ран значительно расширился и сегодня составляет не одну сотню (В.Д. Федоров и др., 2004). Для процесса нахождения и обоснования новых методов лечения ран характерен значительный прогресс в одних направлениях (например, разработка мазей (Д.С. Гафуров, 1985; М.И. Кропычева, 2003); появление новых физиотерапевтических методов и др.) и практически полное до недавнего времени отсутствие нововведений в других областях (в том числе в сфере средств закрытия раневого дефекта).

Сейчас, с бурным развитием химической промышленности в течение последних десятилетий, наблюдается появление новых перевязочных средств. Так как задача врача ветеринарной медицины заключается в использовании наиболее эффективных современных средств, методов и препаратов в лечении раневой патологии, нами для исследования возможности применения для лечения различных ран у сельскохозяйственных и мелких непродуктивных животных была предложена повязка пенополиуретановая «Сарэл». В ходе анализа ее предполагаемых практических и терапевтических свойств (отсутствие необходимости дополнительной фиксации, атравматичности по отношению к раневой поверхности, возможность редкой смены и др.) мы сочли применение этой повязки наиболее оправданным и целесообразным именно в ветеринарной практике.

Исходя из вышеизложенного, изучение влияния пенополиуретановой повязки «Сарэл» на течение процесса заживления инфицированных размозженных кожно-мышечных ран, научное обоснование применения данного метода лечения указанных патологий является актуальной задачей.

Цель и задачи исследований. Целью настоящей работы явилось изучение, апробация и внедрение в ветеринарную практику нового материала для закрытия ран повязки «Сарэл» из открытоячеистого пенополиуретана.

Для реализации поставленной цели были определены следующие основные задачи:

• рассчитать экономическую эффективность от применения предложенного способа лечения инфицированных ран у собак.

Научная новизна. Впервые изучен лечебный эффект повязки «Сарэл» при заживлении экспериментальных инфицированных размозженных кожно-мышечных ран у крыс и выявлено положительное действие повязки «Сарэл» на течение таких поражений. Проведены комплексные исследования с применением клинических, планиметрических, гистоморфологических, цитологических, гематологических методов процессов регенерации тканей при заживлении таких ран. Впервые в клинической ветеринарной практике в сравнительном аспекте на значительном материале изучено влияние повязки «Сарэл» на заживление поверхностных инфицированных кожно-мышечных ран различной локализации у собак.

Практическая значимость работы. В комплексном лечении поверхностных кожно-мышечных ран различной локализации и этиологии у животных рекомендуем использовать повязку «Сарэл» для закрытия раневого дефекта.

ВПО «Ставропольский государственный аграрный университет», ФГОУ ВПО «Чувашская государственная сельскохозяйственная академия», ФГОУ ВПО «Башкирский государственный аграрный университет» и ФГОУ ВПО «Вятская государственная сельскохозяйственная академия». Метод лечения поверхностных кожно-мышечных ран у мелких непродуктивных животных внедрен в лечебную практику ветеринарного лечебно-диагностического центра «Эврика» (г. Нижний Новгород) и используется специалистами ГУНО «Госветуправление» Кстовского и Дальне-Константиновского районов Нижегородской области.

Апробация работы. Основные положения диссертационной работы доложены и обсуждены на: Ш-ей Международной межвузовской научно-практической конференции аспирантов и соискателей «Предпосылки и эксперимент в науке» (Санкт-Петербург, 2005 г.), XVII-й Международной межвузовской научно-практической конференции посвященной 60-летию Победы в Великой Отечественной войне 1941-1945 гг. «Новые фармакологические средства в ветеринарии» (Санкт-Петербург, 2005 г.), Международном симпозиуме «Научные основы обеспечения защиты животных от экотоксикантов, радионуклидов и возбудителей опасных инфекционных заболеваний» (Казань, 2005 г.), ХШ-ом Международном московском конгрессе по болезням мелких домашних животных (Москва, 2005 г.), VI-й научно-практической конференции по болезням лошадей «Болезни лошадей: диагностика, профилактика, лечение» (Москва, 2005 г.), XVIII-й Международной научно-практической конференции «Новые фармакологические средства в ветеринарии» (Санкт-Петербург, 2006 г.).

Публикации результатов исследований. Основные положения диссертации опубликованы в 7 печатных работах, в том числе в двух научных журналах, входящих в список рекомендованных ВАК.

Основные положения, выносимые на защиту. Материалы по экспериментальному и клиническому изучению лечебных свойств новой пенополиуретановой повязки «Сарэл» и результаты его внедрения в ветеринарную практику.

• Лечение поверхностных инфицированных ран у собак повязкой «Сарэл» в 2,14 раза дешевле, чем лечение традиционными методами. Экономическая эффективность применения повязки «Сарэл» для лечения ран у собак на рубль затрат составляет 5,7 р.

Объем и структура работы. Диссертация изложена на 136 страницах компьютерного текста и состоит из введения, обзора литературы, собственных исследований, обсуждения полученных результатов, выводов, списка литературы и приложений. Работа иллюстрирована 15 таблицами и 35 рисунками. Список использованной литературы включает 174 наименования, в том числе 34 - зарубежных авторов.

Заключение диссертационного исследования на тему "Лечение ран у животных с помощью пенополиуретановой повязки "Сарэл""

4. ВЫВОДЫ

2. Применение повязки из пенополиуретана при терапии экспериментальных инфицированных размозженных кожно-мышечных ран у крыс оказывает выраженный терапевтический эффект. При этом заживление ран у крыс происходит на 17-23 % быстрее по сравнению с традиционными методами лечения и на 32-35 % быстрее по сравнению с контролем.

4. Пенополиуретановая повязка обеспечивает закрытие раневого дефекта на любых участках тела собаки (за исключением области морды) без дополнительной фиксации. Ее особенностью является отсутствие необходимости частой смены повязки (до 1 раза в 5-6 дней). Это позволяет экономить перевязочные материалы и лекарственные средства, улучшая условия труда ветеринарного специалиста.

5. Простота приготовления и использования повязки, а также отсутствие значительных болевых ощущений при ее удалении с раны позволяют менять повязку без применения седативных средств, транквилизаторов, и анальгетиков не только в ветеринарной клинике, но и в домашних условиях согласно назначению врача или после самопроизвольного отслоения. Это обеспечивает непрерывность лечения, позволяет избавиться от стрессового воздействия транспортировки на организм животного и упрощает уход за больным животным.

5. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

1. С целью сокращения сроков заживления инфицированных поверхностных кожно-мышечных ран для закрытия раневого дефекта предлагается использовать пенополиуретановую повязку «Сарэл» на основании «Рекомендации по применению повязки из эластичного пенополиуретана гелеобразной быстрозастывающей для закрытия ран у животных ПГБ-САРЭЛ» (2008) (утвержденных и согласованных проректором по научно-исследовательской работе ФГОУ ВПО «Нижегородская ГСХА», профессором В.В. Ивениным от 10.03.2008 и Начальником Государственного учреждения Нижегородской области «Государственное ветеринарное управление г. Нижнего Новгорода» Е.А. Помазовым от 17.03.2008).

Список использованной литературы по ветеринарии, диссертация 2008 года, Водопьянов, Иван Федорович

1. Абишев Г.А. Травматизм сельскохозяйственных животных. Алма-Ата: Кайнар, 1975.-168 с.

2. Абрамова Л.А. Фармакотерапевтический справочник ветеринарного врача. Ростов на Дону: Феникс, 2003. - 512 с. |

3. Адамян А.А. Основные проблемы в области создания перевязочных jсредств. // Материалы 1 Всесоюзной конференции «Современные iiподходы к разработке эффективных перевязочных средств и шовных материалов». -М., 1989, с. 15-17.

4. Анисимов В.Н., Ботпяков А.Г., Воробьев А.В. и др. Лечение ран мягких тканей (достижения и перспективы) // Вестник Нижегородского отделения РАЕН.— 1997. №1.— С. 10-15.

5. Аничков Н.Н., Волкова К.Г., Гаршин В.Г. Морфология заживления ран. -М.: Медгиз, 1951.-123 с.

6. Антибактериальная терапия. Практическое руководство. Под. ред. Л.С. Страгунского, Ю.Б. Белоусова, С.Н. Козлова. М.: 2000. С. 145-150.

7. Анюлис Э.Ю., Расимас П.И., Раулинайтис А.Ю. Применение процеля для лечения гнойных ран // Ветеринария. 1988. - № 3. - С.50-52

8. Арутюнян Б.М., Толстых П.И., Симонов АЛ. Губчатые перевязочные материалы из солей альгиновой кислоты в лечении гнойных ран // Хирургия. 1991.- №7.- С. 44-47.

9. Ашфаров А.А. Коллагеновая губка ТИК в комплексной терапии гнойно-некротических осложнений послеоперационных ран и гангрены нижних конечностей при сахарном диабете // Вестник хирургии. 1992.- №7.- С. 202-203.

10. Баранов В.А. Иммунодефицит и его коррекция при термической травме кожи животных: Дис. канд. вет. наук. Казань, 1993. - 161 с.

11. Барсуков Н.А. Лечение инфицированных ран // Ветеринария. 1986. - № 8 - С.68-69.

12. Бекмурзин Р.А. Сравнительная оценка использования «Фузобаксана-1» и «Некрогеля» при лечении гнойно-некротических поражений пальцев у коров. Автореф. дисс. канд. вет. наук. Оренбург, 2007. 27 с.

13. Белов А.Д., Плахотин Б.А., Башкиров Б.А. и др. Общая ветеринарная хирургия. М.: Агропромиздат, 1990. - 592 с.

14. Белогуров В.М. Изучение возможности артериовенозных реваскуляризаций у собак при огнестрельном ранении конечностей. Дис. канд. вет. наук. М., 2000. - С 4-6.

15. Белоусов Ю.Б., Моисеев В.К., Лепахин В.К. Клиническая фармакология и фармакотерапия. М.: Универсум паблишинг, 1997. - 530 с.

16. Беркутов А.Н. Особенности течения и лечения травматических и огнестрельных ран. М.: Медицина, 1984.

17. Бецкий О.В. Применение низкоинтенсивных электромагнитных волн миллиметрового диапазона в медицине // Мед. радиология. 1992. - № 34. - Т. 37.-С. 53-54.

18. Билич Г.А., Назарова Л.В. Фундаментальные и прикладные аспекты регуляции регенерации. (РАМН) // Морфология. 1998. - №3, т. 113. -С.25.

19. Биологически активные перевязочные средства в комплексном лечении гнойно-некротических ран: Метод, реком. №2000/56. Под. ред. В.Д. Федорова и И.М. Чижа. Москва - 2000. - 39 с.

20. Биохимические методы исследования в клинике (справочник). Под ред. акад. АМН ССР проф. А.А. Покровского 1969 - 652 с.

21. Блатун JI.А. Фармакотерапия: Возможности современных мазей в лечении гнойных ран, трофических яхв. Журнал Фармацевтический вестник. 2002. № 3 (242). - С. 20-26.

22. Богданович У.Я., Гордеева А.И., Краснощекова Е.Е., Веселовский ДА. Лечение ран лазерным излучением в эксперименте и клинике: Тез. докл. Научно-практическая конференция травматологов и ортопедов. -Липецк, 1975.-С.38.

23. Борисевич В.Б., Борисевич Б.В., Смирнов A.M. Раневой процесс и закономерности заживления ран. // Ветеринария, 1999. № 5. С. 48-52.

24. Боровиков И.П., Ивченко Г.И. Прогнозирование в системе Statistica в среде Windows // М., Финансы и статистика. 2000. - 381 с.

25. Брок И. Основы иммунологии / И. Брок, X. Фримель // М.: Мир, 1986. -254 с.

26. Великанов А.В. Открытые повреждения раны - Саратов, 1997. Internet: http://www.doktor.ru/doktor/referat/index.htm - 7 с.

27. Веремей Э.И. Магнитотерапия в клинической ветеринарной медицине // Ветеринария. 1996. - №5. - 45 с.

28. Веремей Э.И., Лакисов В.М., Персикова ИМ. Влияние ультразвука на течение раневого процесса у животных // Ветеринария. 1988. - №1. -С.54.

29. Видении В.Н. Осложнения операционных ран у животных.: Дисс. д-ра вет. наук: СПб., 2005 452 с.

30. Видении В.Н., Святковский А.В. Гнойно-воспалительные осложнения при операциях у собак и кошек // Наши пациенты комнатные животные: матер, конф. Ассоциации врачей ветеринарной медицины -Санкт-Петербург, 1995. - С. 69-71.

31. Войцехович С.Ф. Готовая болыперазмерная универсальная повязка певой помощи с небинтовой фиксацией. Дис. канд. мед. наук. Иваново, 1970.

32. Воспроизведение заболеваний у животных для экспериментально-терапевтических исследований / Под ред. Н.В. Лазарева Л., 1954. -189с.

33. Гаибов А.Г., Султанов P.M. Морфологические особенности прижизенных ран мягких тканей, 1989.

34. Гаркави А.В., Елисеев А.Т. Раны и раневая инфекция. Медицинская помощь 2000. №4. - С. 25-32.

35. Гафуров Д.С. Влияние профезима с канамицином и линимента А.В.Вишневского на раневой процесс у крупного рогатого скота: Авто-реф. дис. канд. вет. наук. М., 1985. - 16 с.

36. Гирголав С.С. Огнестрельная рана. -Л.: Воен.-мед. акад., 1956. 331 с.

37. Гусейнов А.З. Динамика заживления гнойных ран под влиянием иммунорегулирующих препаратов // Архив патологии. 1988. - вып. 9. -Т. 50. -С.28-34.

38. Данелия Р.Е. Эффективность мефопрана в сочетании с новокаиновой блокадой при лечении животных с инфицированными ранами и их осложнениями: Дис. канд. вет. наук. Казань, 1988. - 201 с.

39. Даурова Т.Т., Андреев С Д., Кассин В.Ю. Новые перевязочные средства //Хирургия.- 1982.- №4.- С. 113-115.

40. Дергунов Ю.И., Анисимов В.Н., Куранов А.А. и др. А. с. №20 53785. Пенополиуретановая композиция для лечения ран мягких тканей, 1996.

41. Дерябин И.И., Хавинсон В.Х., Морозов В.Г. и др. Применение препарата тимуса (тималина) у больных с тяжелой травмой // Тр. Воен. мед. акад. -Л., 1984. Т. 215. - С. 135-138.

42. Долгушин И.И., Эберт Л.Я., Лифшиц Р.И. Иммунология травмы. -Свердловск, 1989, 188 с.

43. Дорофейчук В.Г, Определение уровня лизоцима // Лаб. дело. 1968. - № 1.-С. 28-30.

44. Ерюхин И.А., Белый В.Я., Вакнер В.К. Воспаление как общебиологическая реакция. JL: Наука. - 1991.

45. Ефименко Н.А. и др. Современные тенденции в создании биологически активных материалов для лечения гнойных ран / Н.А. Ефименко, Ф.Е. Шеин, М.Л. Толстых, А.С. Теплянин // ВМЖ.- 2002.- №1.- С. 48-52.

46. Жаков М.С. Иммуноморфология и иммунопатология: Учебное пособие для студентов и врачей ветеринарной медицины. Витебск: ВГАВМ, 1996. - 37 с.

47. Заремба Л.А. Комплексное лечение гнойных ран протеолитическими ферментами и нитрофуранами / Труды XXIX Всесоюзного съезда хирургов. -Киев, 1975. С. 87-89.

48. Зиганшина Л.Е., Студенцова И.А., Зиганшин А.У. Экспериментальное обоснование использования димефосфона для местного лечения ран: Мат. Всесоюзной конференции «Местное лечение ран» М., 1991. - С. 213-214.

49. Зуманиги Н. Особенности раневого процесса в условиях диабета и влияние электростимуляции на заживление ран: Автореф. дис. канд. мед. наук. М., 1994, - 16 с.

50. Измайлов Г.А., Резник B.C., Измайлов С.Г., Терещенко В.Ю. и др. Опыт применения отечественного препарата ксимедон в хирургии: Мат. клинико-экспериментальных исследований по актуальным вопросам диагностики и лечения. Казань, 1998. - С. 58.

51. Иммунология / под ред. У Пола, пер. с англ. М.: Мир, 1987-1988. - Т.1-3. - 568 с.

52. Ишанкулиев Ю.Х. Комплексное лечение гнойных ран с применением нейропептидов, сорбентов и лазерного излучения: Автореф. дис. канд. мед. наук. М, 1992. - 19 с.

53. Казеев Г.В., Варламов Е.В., Старченкова А.В., Резвов С.М. Наставления по применению метода электропунктуры при терапии незаразных заболеваний сельскохозяйственных животных с помощью прибора «Вокал-В». -Москва, 1991. 15 с.

54. Камаев М.Ф. О значении бактериального протеолиза при лечении инфицированных ран протеолитическими ферментами и их ингибиторами // Клиническая хирургия. 1980. - №1. - С. 53-54.

55. Карлов В.А., Родштат И.В. и др. Опыт применения КВЧ терапии миллиметрового диапазона при лечении ран. Сов. Медицина. 1991. - № 3. - С. 20-21.

56. Кашин А.С., Медведева JI.B., Юрова В.А. Микрофлора при заживлении лапаротомных ран // «Ветеринария», № 10, 2001. С.35-38.

57. Колычев Н.М., Госманов Р.Г. Ветеринарная микробиология и иммунология. М.: КолосС, 2003, 432 с.

58. Кондрахин И.П. и др. Клиническая лабораторная диагностика в ветеринарии: Справочное издание. М.: Агропромиздат, 1985. - 287 с.

59. Корнишин А.Н. Влияние новокаинизации соответствующей зоны симпатической иннервации на течение раневого процесса: Тезисы докладов Республиканской научно-производственной конференции. Казань, 1991 (29-31 мая). С. 66.

60. Коростелева В.П. Эффективность электрохимически активированных растворов (ЭХАР) при лечении инфицированных ран у животных: Дис. канд. вет. наук. Казань, 1997. - 107 с.

61. Кост Е.А., Стенко М.И. Исследование фагоцитоза. / Справочник по клиническим лабораторным методам исследования. М.: Медицина, 1975. -С. 56-57.

62. Котельников В.П. Раны и их лечение. М. Знание, 1991. - 64 с.

63. Кропычева М.И. Схемы применения мази химедим при лечении плотоядных с гнойно-некротическими ранами // Новые фармакологические средства в ветеринарии: матер. 15-й междунар. научно-практ. Конф. Санкт-Петербург, 2003. - С. 19.

64. Кудряшов А.А., Лаковников Е.А. Анализ исследований биопрепаратов от собак и кошек // Ветеринарная практика: Научно-практический журнал последипломного образования. № 1 (17), 1999 - Санкт-Петербург. - С. 16-18.

65. Кузин М.И., Костюченок Б.М. и др. Количественный контроль микрофлоры гнойных ран. // Хирургия. 1981. - №22.

66. Кузин М.И., Костюченок Б.М. Раны и раневая инфекция: Руководство для врачей. 2-е изд., перераб. и доп. - М.: Медицина. - 1990. - 525 с.

67. Кузин Ф.А. Кандидатская диссертация. Методика написания, правила оформления и порядок защиты. Практическое пособие для аспирантов и соискателей ученой степени. М.: Ось-97, 1997. - 208 с.

68. Кузнецов Т.С. Хирургические болезни животных в хозяйствах промышленного типа. JL: Колос, 1980. - С. 3-13.

69. Куплэнд P.M., Робин М. Международный красный крест: классификация ран. М.: Международный Комитет Красного Креста, 1996. - 15 с.

70. Курбанов Р.З. Рецепты некоторых лекарственных препаратов, применяемых в хирургии: Методические указания. Казань, 1988. - 22 с.

71. Лабораторные методы исследования в клинике. / Под ред. В.В. Меньшикова. М., 1987.

72. Лапшин А.А. Стадийность в заживлении резаных кожно-мускульных ран у крупного рогатого скота. Диагностика, лечение и патогенез инфекционных, инвазионных и незаразных заболеваний сельскохозяйственных животных. 1988. С. 102-107.

73. Логинов В.И. Лечение послеоперационных ран низкоинтенсивным широкополосным электромагнитным излучением КВЧ-диапазона. Автореф. дис. канд. мед. наук. Н. Новгород, 2003. 23 с.

74. Луцевич Э.В. Иванян А.А., Толстых Г.П., Олтаржевская Н.Г. и др. Современные раневые покрытия. Под ред. Э.В. Луцевича. Москва-Смоленск, 1996, 87 с.

75. Любинецкий А.П., Томащук И.П. Экспериментально-клиническое обоснование использования сорбционного материала в лечении инфицированных ран // ВМЖ — 1992.— №8.— С. 50-51.

76. Мартьянов С.Н. О клинико-морфологических особенностях раневого процесса у крупного рогатого скота: Автореф. дис. канд. вет. наук. М., 1954,-20 с.

77. Мастыко Г.С. Асептические и септические воспаления у сельскохозяйственных животных. Минск.: Урожай, 1985. - 40 с.

78. Мастыко Г.С. Развитие раневого воспаления у животных и схема лечения // Ветеринария. 1975. - № 8. - С. 79-81.

79. Матвеев JI.B. Болезни собак и кошек. Н.Новгород: Систем-Эксперт, 1997. - 399 с.

80. Машковский М.Д. Лекарственные средства: пособие по фармакотерапии для врачей (в 2 томах). 15-е изд. М.: Новая волна, 2005.

81. Медведева Л.В. Динамика морфологических изменений операционных раневых рубцов на брюшной стенке у кошек.// Материалы сибирского международного ветеринарного конгресса «Актуальные вопросы ветеринарной медицины», Новосибирск, 2005. С. 46-47.

82. Мензул В.А. Новые технологии консервативного и оперативного лечения ожогов у детей // Материалы международной конференции посвященной 70-летию НИИ скорой помощи им. И.И. Джанелидзе. -Санкт-Петербург, 2002. С.363-365.

83. Меркулов Г.А. Курс патологогистологической техники // Л.: Медицина, 1969.-423 с.

84. Минабутдино Р.А., Алексеева И.В., Олешко Л.Н., Панцуркин Л.Н. Применение мази «Аникол» для лечения гнойных ран // Новые фармакологические средства в ветеринарии : матер. 9-й межгос. межвуз. научно-практ. конф. Санкт-Петербург, 1997. - С. 28.

85. Михайлов И.Б. Клиническая фармакология. СПб.: Фолиант, 2000. 525 с.

86. Мосин В.В., Шакуров М.Ш. Состояние и перспективы развития ветеринарной хирургии: Тез. докл. Республиканской научно-производственной конференции. Казань, 1991. - С. 58-59.

87. Мурадян Р.Г., Чекмарев И.А., Адамян А.А. Исследование биологически активных покрытий на основе коллагена // Бюлл. экспериментальной биологии и медицины.— 1995.— №11.— С. 529-531.

88. Навашин С.М., Фомина И.П. Рациональная антибиотикотерапия. М.:1291. Медицина, 1982. 494 с.

89. Наганова Н.Ю. Ируксол в лечении гнойных ран у собак. // Новые фармакологические средства в ветеринарии : матер. 13-й междунар. межвуз. научно-практ. конф. Санкт-Петербург, 2001. - С. 126.

90. Назаренко Г.И., Сугурова И.Ю., Глянцев С.П. Рана. Повязка. Больной. Современные медицинские технологии. М.: Медицина, 2002.

91. Николаев А.В., Мамедов JI.A., Захаров В.В. и др. Состояние иммунореактивных систем при заживлении асептических и инфицированных ран в эксперименте // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. -1988. № 8. - Т. 106. - С. 224-227.

92. Общая ветеринарная хирургия / Ред. А.В. Лебедев, В.А. Лукьяновский, Б.С. Семенов. Москва, Колос, 2000. - 487 с.

93. Оливков Б.М. Лечение инфицированных ран у животных. М.: Сельхоз-гиз, 1950. - 232 с.

94. Передера Б.Я. Прополис при хирургической патологии / Современные проблемы ветеринарной хирургии. Харьков, 1994.

95. Петров С. В. Общая хирургия: Учебник для вузов. — 2-е изд. — 2004. — 768 с.

96. Петряева М.А. Репаративная регенерация кожи после травмы, нанесенной в разное время суток и при воздействии дизилпролином. // Автореф. дисс. канд. мед. наук. СПб. 1992 - 17 с.

97. Пигаревский В.Е. Новое в учении о фагоцитозе и неспецифической резистентности // Арх. патологии. 1977. - Т. 39 - вып. 2. - С.84-94

98. Пирс Э. Гистохимия. М., Изд. иностр. лит-ры, 1962, 929 с.

99. Пламб Д.К. Фармакологические препараты в ветеринарной медицине. -М.: Аквариум, 2002. С. 781-805.

100. Плахотин М.В. Общая и местная реакция организма на травму (клиническая патофизиология) / Общая ветеринарная хирургия. М.: Колос, 1981. -С.33-78.

101. Плахотин М.В. Справочник по ветеринарной хирургии. М.: Колос, 1977. - 256 с.

102. Плехова Н.Г., Исачкова JI.M. К вопросу о взаимодействии нейтрофилов и макрофагов в системе антиинфекционной защиты. Журн. микробиол. - 1997. - № 5. - С.70-73.

103. Покровская М.П., Макаров М.С. Цитология раневого экссудата как показатель процесса заживления раны. М.: Медгиз, 1942. - 44 с.

104. Попова JI.H. Как измеряются границы вновь образующегося эпидермиса при заживлении ран: Автореф. дис. канд. мед. наук. Воронеж, 1942.

105. Послов Г.А. Особенности заживления ран у спортивных лошадей после стрессового воздействия // Ветеринария. 2005. - № 1. - С. 49-51.

106. Практикум по биохимии. Под ред. С.Е. Северина, М. 1989. - 509 с. Ш.Проценко А.А. Влияние протеолитических ферментов и антибиотиковна видовой состав микрофлоры ран // Ветеринария. 1983. - № 4. - С. 5354.

107. Рабинович М.И., Ноздрин Г.А., Самородова И.М., Ноздрин А.Г. Общая фармакология : учеб. Пособие 2-е изд. / под общ. ред. М.И. Рабиновича. СПб.: Лань, 2006. 272 с.

108. Рейдла К.А. Опыт применения тканевых препаратов при лечении ран / Об актуальных вопросах сельского хозяйства. Таллин: Валгус, 1977. -С. 399-402.

109. Руфанов И.Г. Общая хирургия. М.: Медгиз, 1953. - 417 с.

110. Саркисов Д.С., Палицын А.А., Колокольчикова Н.Г. и др. Электроннорадиоавтографическое изучение инфицированной раны человека // Арх.пат. 1984. - № 9. - С. 16-24.

111. Светухин A.M., Прокудина М.В. Современное состояние проблемы использования антибактериальной терапии в комплексномхирургическом лечении больных с синдромом диабетической стопы. РМЖ, Том 5, № 24, 1997.

112. Семенов Б.С. Лебедев А.В. Елисеев А.Н. и др. Частная ветеринарная хирургия. М.: Колос, 1997. - 496 с.

113. Серов В.В., Шехтер А.В. Соединительная ткань. М: Медицина, 1981. -312 с.

114. Скопичев В.Г., Шумилов Б.В. Морфология и физиология животных : учеб. пособие. СПб.: Лань, 2004. - 416 с.

115. Стекольников А.А. Комплексная терапия и терапевтическая техника в ветеринарной медицине. СПб.: Лань, 2007. - 288 с.

116. Столяров Е.А., Иванова В.Д., Колсанов А.В. Заживление гнойных ран мягких тканей при местном лечении // Хирургия. 2003. № 9. - С. 28-32.

117. Стручков В.И., Гостищев В.К., Стручков Ю.В. Руководство по гнойной хирургии. М., 1990.

118. Стручков В.И., Гостищев В.К., Ханш А.С. и др. Влияние биологически активных перевязочных покрытий ран на течение раневого процесса // Вестник хирургии. 1987.- №3.- С. 57-60.

119. Сурина Л.В. Разработка и исследование многокомпонентных мазей на полимерной основе, антимикробного и анестезирующего действия : дисс. канд. мед. наук. М., 1995. - 138 с.

120. Тимофеев С.В. Открытые повреждения у животных. 2001 г.

121. Толкач Н.Г. Эффективность тилозиновой мази при лечении ран у собак. // Новые фармакологические средства в ветеринарии : матер. 15-й междунар. научно-практ. конф. Санкт-Петербург, 2003. - С. 42.

122. Уткин А.В. Антибактериальная терапия гнойно-септических заболеваний на фоне почечной недостаточности.// Антибиотики и химиотерапия. 1991. - Т. 36. - № 6. - С. 45-48.

123. Федоров В.Д., Светухин A.M., Глянцев С.П. Учение о ране: от А.В. Вишневского до наших дней // Хирургия. 2004. - № 8. С. 56-61.

124. Фенчин К.М. Заживление ран. Киев: Здоровье, 1979. - 167 с.

125. Фисенков Н.Н. Применение ЗАЛ при мокнущих ранах и экзематозных поражениях кожи // Новые фармакологические средства в ветеринарии : матер. 14-й междунар. научно-практ. конф. Санкт-Петербург, 2002. -С. 41.

126. Фриденштейн А.Я., Чертков И.Л. Клеточные основы иммунитета. М.: Медицина, 1969. 256 с.

127. Ханин А.Г., Суховеров А.С. Лечение гнойных ран коллагеном с иммобилизированным гентамицином // Хирургия.— 1997.— №76.- С. 44-46.

128. Чапанов С.-Х. С. Особенности течения раневого процесса у крупного рогатого скота при различных состояниях иммунологического статуса: Дисс. канд. вет. наук: Лен. вет. ин-т. Л., 1991. - 238 с.

129. Шакалов К.И., Башкиров Б.А., Семенов Б.С. и др. Хирургические болезни сельскохозяйственных животных. Л.: Агропромиздат, 1987. -С.76-85.

130. Шакуров М.Ш., Макаров А.Г. Эффективность немедикаментозных методов в лечении раневых процессов у собак: Тез. докл. III республиканской научной конференции «Актуальные экологические проблемы Республики Татарстан». Казань, 1997. - С. 173.

131. Шакуров М.Ш., Макаров А.Г., Морозов Г.А. Применение электромагнитных излучений миллиметрового диапазона в лечении ран у животных: Методические рекомендации. Казань, 1998. - 10 с.

132. Шапошников Ю.Г., Кондратьева И.Е. Иммунологические факторы заживления ран // Хирургия. 1981. - № 5. - С. 25-28.

133. Шнейдер А.Б. Влияние некоторых полисахаридных препаратов на скорость заживления ран кожи вторичным натяжением: Автореф. дисс. канд. мед. наук. - Минск, 1983. - 24 с.

134. Щелгачев В.В. Технология приготовления препарата Биогель Б, предназначенного для лечения кожных поражений животных. Автореф. дисс. канд. биол. наук. Москва, 2006. - 18 с.

135. Яковлев С.В. Принципы лечения бактериальных инфекций у больных133пожилого возраста. // Клиническая геронтология. 1995. - №. 3. - С. 7-12.

136. Adamietz LA., Mose S., Haberl A., Saran F.H., Thilmann C., Bottcher H.D. Effect of self-adhesive, silicone-coated polyamide net dressing on irradiated human skin. Radiation Oncology Investigations 1995; 2: 277-282.

137. Baron H. Z. ges. Textilindustr., 1961, Bd 63, S. 927-933.

138. Beck W. Guthrie clin. Bull., 1964, v 34, p. 48-53/

139. Dykes P.J., Heggie R, Hill S.A. Effects of adhesive dressings on the stratum corneum of the skin. J. Wound Care 2001; 10(1): 7-10.

140. Edvards, J.V. Modified cotton gauze dressing that selectively absorbs neutrophil elastic activity in solution. // Wound Repair Regen. 2001. -№9(1). - P.50-58.

141. Fish F., Dawson J.P. Surgical Dressing ligatures and Sutures. London, 1967.

142. Gupta R, Sinnett D, Carpenter R: Antibiotic prophylaxis for post-operative wound infection in clean elective breast surgery. Eur J Surg Oncol 2000 Jun; 26(4): 363-6.

143. Gupta R., Foster M.E., Miller E., Calcium alginate in the management of acute surgical wounds and abscesses, Journal of Tissue Viability, 1991, 1(4), 115-116.

144. Hamit H., Moser E., Walker J. Surg. Gunec. Obstet., 1976. v. 143, p. 809810.

145. Hu, Z. Controlled release from a composite silicone / Hydrogel membrane. // ASAIO J. 2000. - №46(4)/ - Р/ 431-434.

146. Hunt Т.К., Hopf H., Hussain Z. Physiology of wound healing // Adv. Skin Wound Care. 2000. - №13 (2). - P. 6-11.

147. Jacobsson S., Jonsson L., Rank F. et al. Scand. J. plast. Reconstr. Surg.,1341976, v. 10, p. 97-101.

148. Lam P.K., Chan E.S. In vitro elution of antibiotic-impregnated biodegradable calcium alginate wound dressing. // J. Trauma. 2000. - №48(2). - P. 495500.

149. Leaper D.J. et al. Experimental infection and hydrogel dressing // J. Hosp. Inf., 1998.-V.5-P. 69-73.

150. Lin S.Y., Chen K.S., Run-Chu L. Desirn and evalution of drug loaded wound dressing having thermo responsive, adhesive, absorptive and easy peeling properties. // Biomaterials. 2000. - № 22 (22). - P. 999-1004.

151. Locke W.K. et. al. Wound dressing with sustained anti-microbial capability. // J. Biomed. Vater. Res. 2000. - № 53 (1). - P. 8-17.

152. Mangram A.J., Horan T.C., Pearson M.L. Guideline for prevention of surgical site infection, 1999. Hospital Infection Control Practices Advisory Committee. Infect Control Hosp Epidemiol 1999 Apr; 20(4): 250-78; quiz 279-80.

153. Meylan G., Tschantz P. Surgical wounds with or without dressing. Prospective comparative study // Ann. Chir. 2001. - № 126 (5). - P. 459462.

154. Mi F.L. et al. Fabrication and characterization of a sponge-like asymmetric shitosan membrane as a wound dressing // Biomaterials. 2001. - № 22 (2). -P. 165-173.

155. Molan P.S. Potential of honey in the treatment of wound and burns. // Am J. Clin. Dermatol. 2001. - № 2 (1). - P. 13-19.

156. Noe J., Kalish S. Surg. Gynec. Obstet., 1978, v. 147, p. 185-188.

157. Peh K., Khan Т., Ch'ng H. mechanical, bioadhesive, strength and biological evalutins of chitosan film for wound dressing. // J. Pharm. Sci. 2001. - № 3 (3).P. 303-311.

158. Peterson J.M., Barbul A., Breslin RJ. et al. Significance of T-lymphocytes in wound healing // Surgery. 1987. - V. 102. - № 2. - P. 300-304.

159. Rees R.S., Adamson B.F., Lindblad W.J. Use of a cell-based interactive wound dressing to enhance healing of excisional wound in nude mice. //135

160. Wound Repair Regen. 2001. - № 9 (4). - P. 297-304.

161. Seiderer H. Vergleichende Untersuchungen uber neuere Verbandstoffe unter besonderer Berucksichigund der Wundinfection und der Verklebungstendenz. Diss. Munchen, 1966.

162. Stacey M.C. Investigation and treatment of chronic venous ulcer disease. // ANZ J. Surg. 2001. - № 71. - P. 226-229.

163. Thomas S. The importance of secondary dressings in wound care. J Wound Care 1998; 7(4): 189-192.

164. Thomas S. Wound Management and Dressings. London: Pharmaceutical Press, 1994.

165. Tizard I. Veterinary Immunology. Philadelphia, London, Toronto, 1987, p. 483.

166. Tornton F.J. et al. Enhanced collagen accumulation following direct transfection of the inducible nitric oxide synthase gene in cutaneous wounds. // Biochem. Biophys. Res. Commun. 2001. - № 246 (3). - P. 654-659.

167. Ulubayram K. et al. EOF Containing gelatin-based wound dressing. // Biomaterials. 2001. - № 22 (11). - P. 1345-1356.

168. Wood R. Brit. med. J., 1976, v. 1, p. 1444-1445.

169. Woods R.K., Dellinger E.P. Current guidelines for antibiotic prophylaxis of surgical wounds. Am Fam Physician 1998 Jun; 57(11): 2731-40.1. СОГЛАСОВАЦО»1. УТВЕРЖДАЮ»

170. Начальник Государственного учрежденжу^щкегородской област^^^^^гаенное вете^^ГЙвёЧа^ашение г. Низ1.А. Помазов 2008 г.

171. Проректор по исследовател, Ниучно-ой работе П2ХА-, профессор В.В. Ивенин 2008 г.1. РЕКОМЕВДАЦИИпо применению из эластичного пенополиуретана гелеобразной быстрозастывающей для закрытия ран у животных ПГБ-САРЭЛ1. Нижний Новгород 20081. Г Я

172. Составители: доктор биологических наук, профессор В.И. Великанов, доктор ветеринарных наук, профессор А.А. Стекольников, аспирант И.Ф. Водопьянов, кандидат ветеринарных наук Г.А. Послов.

173. Дата введения « 17 » марта 2008 г.

174. ОБЩИЕ СВЕДЕНИЯ И ОСНОВНЫЕ СВОЙСТВА

175. Раны поверхностные кожно-мышечные инфицированные. Раны гранулирующие. Донорские и скальпированные раны.3. ПРОТИВОПОКАЗАНИЯ

176. Обильная экссудация, наличие большого количества некротизированных тканей в глубине раны. Анаэробная раневая инфекция. Индивидуальная чувствительность к компонентам повязки.4. ОСОБЫЕ УКАЗАНИЯ

177. Перед наложением повязки кожу вокруг раны необходимо тщательно освободить от волосяного покрова (выбрить).5. ФОРМА ВЫПУСКА

178. Ампулы: компонент А (светлая прозрачная жидкость) 15 мл, компонент Б (коричневая или бурая прозрачная жидкость) — 5 мл. В картонной упаковке 2 ампулы и полиэтиленовый мешочек для смешивания компонентов.6. УСЛОВИЯ ХРАНЕНИЯ

179. ЗАО «Саров», 603043, Нижний Новгород, пр. Октября, 23, офис 15. ТУ 9393-001-48326159-2002 Р 29/01091102/5223-031. Производитель:

180. ЗАО «Медицинские препараты», 603127, Нижний Новгород, ул. Федосеенко, д. 52. Тел.: (831) 277-85-33, 4317273, факс (931) 297-28-10, e-mail: medpro@ksas.nnov.ru1. Ч01. УТВЕРЖДАЮ

181. ПО «Нижегородская иная академия»,1. М.Б. Терехов2007 г.

182. Акт от 4 октября 2007 годаооб использовании результатов диссертационной работы И.Ф. Водопьянова в учебном процессе академии

183. В диссертационной работе И.Ф. Водопьянова дается научная оценка влияния пенополиуретановой повязки «Сарэл» на скорость и характер заживления инфицированных кожно-мышечных ран у крыс и собак.

184. Установлена возможность использования пенополиуретановой повязки «Сарэл» в клинической ветеринарной практике при лечении животных, имеющих инфицированные кожно-мышечные раны различной локализации и срока давности.

185. Вышеизложенное послужило основанием для внедрения результатов научных исследований Водопьянова И.Ф. в учебный процесс академии.1.V

186. Они используются в процессе обучения студентов ветеринарнойфакультета в ходе чтения лекций и при проведении лабораторнопрактических занятий по курсам «Ветеринарная и клиническая фармакология. Токсикология» и «Общая хирургия».

187. Начальник учебно-методического управления ФГОУ ВПО «НГСХА»1. Л.П. Родионова

188. Заведующий кафедрой анатомии, фармакологии с токсикологией ФГОУ ВПО «НГСХА», д.б.н., заслуженный работник высшей школы РФ, профессор1. В.И. Великанов

189. Доцент кафедры анатомии, фармакологии с токсикологией ФГОУ ВПО «НГСХА», к.в.н.------О.В. Вавина

190. Профессор кафедры внутренних незаразных болезней и хирургии ФГОУ ВПО «НГСХА», к.в.н.1. Б.Ф. Лысенко1ЧЪ

191. УТВЕРЖДАЮ» Ректор ФГОУ ВПО «Вятская государственная сельскохозяйственная академия», к. хим. н., профессор1. Жданов С.Л. 2008 г. •1. N Карта обратной связи

192. Материалы рассмотрены на заседании кафедры хирургии и акушерства ФГОУ ВПО «Вятская государственная сельскохозяйственная академия» 30. мая 2008 г., протокол № 6.

193. Зав. кафедрой хирургии и акушерства ФГОУ ВПО «Вятская государственная сельскохозяйственная академия», Д1.В.Н., цро^рсоржтхщтящмотнсъ1. U-tc.1. В.А. Созинов