Автореферат и диссертация по ветеринарии (16.00.04) на тему:Фармако-токсикологические свойства и терапевтическая эффективность инъекционной формы комплексного антибактериального препарата на основе клиндамицина и спектиномицина

ДИССЕРТАЦИЯ
Фармако-токсикологические свойства и терапевтическая эффективность инъекционной формы комплексного антибактериального препарата на основе клиндамицина и спектиномицина - диссертация, тема по ветеринарии
АВТОРЕФЕРАТ
Фармако-токсикологические свойства и терапевтическая эффективность инъекционной формы комплексного антибактериального препарата на основе клиндамицина и спектиномицина - тема автореферата по ветеринарии
Игнатова, Анна Дмитриевна Москва 2007 г.
Ученая степень
кандидата биологических наук
ВАК РФ
16.00.04
 
 

Автореферат диссертации по ветеринарии на тему Фармако-токсикологические свойства и терапевтическая эффективность инъекционной формы комплексного антибактериального препарата на основе клиндамицина и спектиномицина

На правах рукописи

Игнатова Анна Дмитриевн —«ио^ сдд

ФАР1У1АКО-ТОКСИКОЛОГИЧЕСКИЕ СВОЙСТВА

И ТЕРАПЕВТИЧЕСКАЯ ЭФФЕКТИВНОСТЬ ИНЪЕКЦИОННОЙ ФОРМЫ КОМПЛЕКСНОГО АНТИБАКТЕРИАЛЬНОГО ПРЕПАРАТА НА ОСНОВЕ КЛИНДАМИЦИНА И СПЕКТИНОМИЦИНА

16.00.04 - ветеринарная фармакология с токсикологией

АВТОРЕФЕРАТ

диссертации на соискание ученой степени кандидата биологических наук

Москва - 2007

003052783

Работа выполнена в отделе качества и стандартизации фармакологических лекарственных средств для животных Федерального государственного учреждения «Всероссийский государственный центр качества и стандартизации лекарственных средств для животных и кормов» (ФГУ «ВГНКИ») Федеральной службы по ветеринарному и фитосанитарному надзору (Россельхознадзор) Министерства сельского хозяйства Российской Федерации.

Научный руководитель: Официальные оппоненты:

кандидат ветеринарных наук, доцент Виолин Б.В.

доктор ветеринарных наук, профессор Преображенский С.Н.;

кандидат биологических наук Сорокин М.В.

Ведущая организация - Федеральное государственное учреждение «Федеральный центр токсикологической и радиационной безопасности животных» Россельхознадзора МСХ РФ (г. Казань).

Защита состоится «/^ » ¿Ыь/ьС^^ 2007 года в /У ^часов на заседании диссертационного совета Д. 220.011.01 в Федеральном государственном учреждении «Всероссийский государственный центр качества и стандартизации лекарственных средств для животных и кормов» (ФГУ «ВГНКИ») по адресу: Россия, 123022, г. Москва, Звенигородское шоссе, д.5.

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке ФГУ «ВГНКИ».

Автореферат разослан «Я? » ^•^^^2007 г.

Ученый секретарь диссертационного совета, кандидат ветеринарных наук, доцент, Заслуженный ветеринарный врач РФ

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность проблемы. Респираторные заболевания телят наряду с желудочно-кишечными инфекциями занимают основное место в структуре заболеваний молодняка крупного рогатого скота. Убытки, причиняемые бронхопневмонией, складываются из отставания в росте, снижения привесов, затрат на лечение и профилактику заболевания, смертности животных (Г.К. Волков, В.Д. Баранников, 1995; О. Гамелин, 2002; Е.А. Капитонова, A.C. Оспенцева, A.C. Кашин, 2003). В отдельных хозяйствах гибель молодняка в совокупности с вынужденным убоем достигает 40-55%, а прирост массы тела у больных и переболевших животных снижается в 2-3 раза (JL Слацина, 1982; В. Ардатовский, 1996; Е.С. Воронин, А.Г. Шахов, 1999; М. Полюс, Б. Гранжан, 2004).

Бронхопневмония молодняка крупного рогатого скота представляет собой сложный инфекционный процесс, в котором на разных стадиях развития патологии принимают участие вирусы, микоплазмы, ассоциации бактерий (стафилококки, стрептококки, пастереллы, гемофилюс, эшерихии, сальмонеллы и др.) в различных сочетаниях (И.И. Фельдман, М.Н. Шадрина, 1983; В.М. Данилевский, 1985; А.П. Брылин, 1986; С.К. Димов, В.И. Сайченко, 1997; S.B. Houghton, R.N. Gourlay, 1983; U. Fogarty, P.J. Quinn, J. Hannan, 1988).

Химиотерапия респираторных заболеваний, как правило, направлена на подавление патогенной микрофлоры. Широкое и часто нерациональное применение антибактериальных лекарственных средств при бронхопневмонии телят привело к распространению резистентных микроорганизмов, что является основным фактором, ограничивающим эффективность лечения (А. Жамантаев, 1984; В.Ф. Ковалев, И.Б. Волков, Б.В. Виолин, 1988; Л.И. Ефанова, 1997).

Учитывая, что применение научно-обоснованных комбинаций антибактериальных веществ является важным направлением современной химиотерапии бактериальных инфекций, позволяющим преодолеть проблему антибиотикоре-зистентности, значительно расширить спектр антимикробного действия, а также уменьшить токсическое влияние каждого антибиотика в комбинации на организм животных, нам представлялось актуальным разработать удобный в применении, малотоксичный комплексный препарат, активный в отношении основных бактериальных возбудителей респираторных заболеваний телят.

Клиндамицин - антибиотик группы линкозамидов, высоко активный в отношении грамположительной микрофлоры, микоплазм и анаэробов, в течение 30 лет успешно используется в медицине для лечения бактериальных инфекций респираторного тракта (А.Р. Ball, 1981; Т. Barragry, 1992; R.E. Lewis, М.Е. Klep-ser, 1998). Учитывая, что этот антибиотик ранее не применялся для лечения бактериальных инфекций животных в Российской Федерации и не обладает перекрестной резистентностью с большинством других антибактериальных препаратов, он был выбран в качестве одного из действующих веществ комплексного антибактериального препарата для лечения респираторных заболеваний телят.

Обладая высокой активностью в отношении грамположительной микрофлоры и анаэробов, клиндамицин не действует на грамотрицательные бактерии

(G.F. Burrows, 1980; Spizek J., Resanka Т., 2004). Поэтому, учитывая ассоциативный характер этиологии респираторных инфекций, для расширения спектра антибактериального действия в состав комплексного препарата был введен спектиномицин - антибиотик, по своей структуре и механизму действия сходный с аминогликозидами, однако не обладающий присущим им нефро - и ото-токсическим действием, подавляющий развитие эшерихий, пастерелл, сальмонелл и других грамотрицательных микроорганизмов (W.T. Holloway, 1982, Т. Barragry, 1992; J.F. Prescott, J.D. Baggot, 1993), а также, как было установлено нами в опытах in vitro, усиливающий антибактериальные свойства клиндами-цина.

Цели и задачи исследования. Разработать на основе клиндамицина и спектиномицина новый комплексный антибактериальный препарат для лечения респираторных заболеваний телят бактериальной этиологии.

Для этого было необходимо:

- обосновать состав и разработать лекарственную форму комплексного антибактериального препарата на основе клиндамицина и спектиномицина;

- разработать требования к качеству препарата и методы его контроля;

- изучить стабильность препарата в процессе хранения;

- изучить острую токсичность препарата в опытах на лабораторных животных;

- изучить субхроническую токсичность препарата в опытах на лабораторных животных и телятах;

- изучить фармакокинетику клиндамицина и спектиномицина в организме телят после применения препарата;

- определить сроки выведения остаточных количеств клиндамицина и спектиномицина из организма телят после курсового применения препарата;

- определить терапевтическую эффективность комплексного антибактериального препарата на основе клиндамицина и спектиномицина в производственных условиях и разработать схему его применения для лечения респираторных заболеваний телят бактериальной этиологии.

Научная новизна. Впервые разработан комплексный антибактериальный препарат на основе клиндамицина и спектиномицина в форме раствора для инъекций для лечения респираторных заболеваний телят бактериальной этиологии.

Установлено взаимоусиливающее действие комбинации клиндамицина и спектиномицина в отношении грамположительных и грамотрицательных микроорганизмов; изучены фармако-токсикологические свойства и определена терапевтическая эффективность комплексного антибактериального препарата при лечении респираторных заболеваний телят бактериальной этиологии.

Практическая значимость работы.

Разработан и предложен для ветеринарной практики новый комплексный антибактериальный препарат на основе клиндамицина и спектиномицина для лечения респираторных заболеваний телят бактериальной этиологии.

Разработаны методы контроля качества комплексного антибактериального препарата и установлен срок его годности.

Определены сроки возможного использования в пищу человеку мяса и субпродуктов телят после применения комплексного антибактериального препарата.

Разработана схема применения комплексного антибактериального препарата при лечении респираторных заболеваний телят бактериальной этиологии.

Разработана нормативная документация - технические условия и инструкция по применению комплексного антибактериального препарата на основе клиндамицина и спектиномицина.

Основные положения диссертации, выносимые на защиту:

- Научное обоснование состава комплексного антибактериального препарата.

- Качественные и количественные методы контроля комплексного антибактериального препарата на основе клиндамицина и спектиномицина.

- Результаты изучения стабильности комплексного антибактериального препарата при хранении.

- Результаты изучения острой и субхронической токсичности комплексного антибактериального препарата в опытах на лабораторных животных и телятах.

- Результаты изучения фармакокинетики клиндамицина и спектиномицина и определения сроков выведения остаточных количеств антибиотиков из организма телят после применения препарата.

- Результаты определения терапевтической эффективности комплексного антибактериального препарата при лечении респираторных заболеваний бактериальной этиологии у телят.

- Практические предложения по применению комплексного антибактериального препарата на основе клиндамицина и спектиномицина в ветеринарии.

Публикации. По теме диссертации опубликованы 4 научные работы.

Структура и объем диссертации. Диссертация изложена на 163 листах машинописного текста и включает: введение, обзор литературы, собственные исследования, обсуждение, выводы, практические предложения, список литературы. Работа иллюстрирована 31 таблицей, 6 рисунками, 3 графиками, 6 диаграммами и 7 фотографиями. Список литературы содержит 224 источника, в том числе 105 иностранных. Приложение на 9 листах.

СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ Материалы и методы исследований

Работа выполнена в течение 2003-2007 г.г. В опытах было использовано 222 беспородные белые мыши обоего пола массой 18-22 г и 30 телят массой 45180 кг. Клиническое испытание препарата в производственных условиях проведено на 577 телятах.

Определение чувствительности стафилококков, стрептококков, эшери-хий, сальмонелл, пастерелл к клиндамицину, спектиномицину и их комбинаци-

ям проводили на мясо-пептонном агаре (МПА) методом серийных разведений в плотной питательной среде (С.М. Навашин, И.П. Фомина, 1982).

В качестве тест-микроорганизмов использовали музейные культуры и выделенные от больных животных и птиц изоляты: Escherichia coli (серовари-анты 09:K30, 02, 078, 04, 0111, 0139, 08, 018, 020, 015, 01; изоляты 1, 3, 4, 6/3, 4/1, 6/2, 1/5, №7, №27), Salmonella enteritidis (изоляты 1, 4, 15, G, 7, 2, 9/5, 232, 3/5, №27, №11), Salmonella thyphimurium (изолят 371), Salmonella dublin (изоляты MBA, 373, 2301, 315, ВНИИЗЖ), Salmonella gallinarum-pullorum (изоляты 24 КСТ, 10 Б, ЛБ, REV1), Pasteurella multocida (изоляты 1-8), Staphylococcus aureus (изоляты 1-20), Streptococcus spp. (изоляты 1-3).

За минимальную подавляющую концентрацию (МПК) клиндамицина, спектиномицина и их комбинаций принимали наименьшую концентрацию антибиотиков, дающую полную задержку роста культуры на поверхности агара.

Разработка лекарственной формы.

Для производства инъекционной лекарственной формы было необходимо: выбрать соответствующий растворитель с учетом физико-химических свойств действующих веществ, обеспечивающий их полное растворение; выбрать консервант, позволяющий сохранять стерильность инъекционной лекарственной формы при многократном отборе препарата из флакона; установить оптимальное значение рН раствора, позволяющее обеспечить стабильность инъекционной лекарственной формы в течение срока годности, а также обеспечить наименьшее местно-раздражающее действие препарата при внутримышечном введении.

Для стандартизации и контроля качества комплексного антибактериального препарата, а также изучения его стабильности при хранении в соответствии с требованиями Государственной Фармакопеи XI к инъекционным лекарственным формам были предложены методики качественного и количественного контроля препарата с использованием метода высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ) для определения подлинности и массовой доли клиндамицина фосфата и бензилового спирта, метода тонкослойной хроматографии для определения подлинности спектиномицина гидрохлорида и микробиологического метода диффузии в агар для определения массовой доли спектиномицина гидрохлорида в препарате.

Стабильность комплексного антибактериального препарата изучали в соответствии с «Временной инструкцией по проведению работ с целью определения сроков годности лекарственных средств на основе метода «ускоренного старения» при повышенной температуре». Параллельно изучали стабильность препарата в условиях естественного хранения при комнатной температуре (23±2°С) и при многократном отборе раствора из флакона после первого прокола пробки иглой.

Образцы препарата, расфасованные по 20 мл в стеклянные флаконы, помещали для «ускоренного старения» в термостаты при температурах 37 и 50°С и исследовали через промежутки времени, соответствующие 6, 12, 18 и 24 месяцам хранения. При хранении препарата в естественных условиях исследование образцов проводили через 3, 6, 9, 12 и 18 месяцев после закладки на хране-

ние, а при многократном отборе препарата из флакона образцы исследовали сразу после прокола пробки и затем через 7,14,21 и 28 суток.

Оценку качества препарата в процессе хранения при повышенной и комнатной температуре проводили по показателям: внешний вид, прозрачность, окраска и рН раствора, наличие механических примесей, объем наполнения, подлинность и массовая доля клиндамицина фосфата, спектиномицина гидрохлорида и бензилового спирта, пирогенность и стерильность.

При многократном отборе препарата из флакона в течение 28 суток оценку его качества проводили по показателям: массовая доля клиндамицина фосфата, спектиномицина гидрохлорида и бензилового спирта, рН раствора, стерильность.

Острую токсичность препарата изучали на 102 беспородных белых мышах обоего пола массой 18-20 г. Препарат вводили однократно перорально в дозах: 21200, 26500, 31800, 42400, 53000 и 63000 мг/кг; подкожно в дозах: 10600, 13250, 15900, 18550 и 21200 мг/кг; внутрибрюшинно в дозах: 1590, 2650, 5300, 7950, 9540 и 10600 мг/кг. Каждую дозу препарата испытывали на 6 мышах.

Наблюдение за клиническим состоянием подопытных животных проводили в течение 14 суток после введения препарата, учитывали количество погибших мышей в зависимости от дозы и рассчитывали токсикологические параметры (ЛДо, ЛД]6, ЛДзо, ЛД84 и ЛДшо) по методу Литчифилда-Уилкоксона (МЛ. Беленький, 1969).

Субхроническую токсичность комплексного антибактериального препарата изучали на 120 беспородных белых мышах обоего пола массой 18-22 г. Подопытных животных по принципу аналогов разделили на 4 группы по 30 мышей.

Препарат мышам вводили ежедневно в течение 20 суток подкожно в следующих дозах: 1 группе - 1/5 ЛД50 (3262 мг/кг массы животного); 2 группе -1/10 ЛД5о(1631 мг/кг массы животного); 3 группе - 1/20 ЛД50 (815 мг/кг массы животного); 4 группе (контрольная) - 0,2 мл физиологического раствора.

Наблюдение за клиническим состоянием животных вели на протяжении 31 суток от начала опыта. Определение массы тела у мышей проводили до начала введения препарата и на 7, 14, 21 и 31 сутки опыта.

Для выявления возможного токсического действия комплексного антибактериального препарата на организм животных на 21 и 31 сутки от начала введения на 10 мышах каждой группы проводили определение детоксицирую-щей функции печени с помощью гексеналовой пробы. Гексенал вводили внутрибрюшинно в дозе 60 мг/кг массы тела в форме 0,2% раствора. Учет времени сна начинали с момента принятия мышами бокового положения и заканчивали при появлении координированных движений. В эти же сроки на других 10 мышах каждой группы изучали общекомпенсаторные реакции организма с помощью функциональной пробы плаванием и определяли относительную массу (коэффициенты) внутренних органов: печени, почек, сердца, легких, селезенки,

учитывая, что изменение массы органа, как правило, ведет к существенному изменению его функциональных способностей (В.Н. Гацура, 1976).

Субхроническую токсичность комплексного антибактериального препарата изучали на 16 клинически здоровых телятах массой 60-70 кг, разделенных по принципу аналогов на 4 группы по 4 головы в каждой. Препарат вводили телятам внутримышечно 1 раз в сутки, в течение 20 дней в следующих дозах: 1 группе - пятикратную терапевтическую дозу (75 мг/кг массы тела); 2 группе -двух с половиной кратную терапевтическую дозу (37,5 мг/кг массы тела); 3 группе - терапевтическую дозу (15 мг/кг массы тела); 4 группе - 10 мл физиологического раствора (контроль).

В процессе опыта вели наблюдение за телятами и учитывали общеклиническое состояние, болезненность в месте введения препарата, аппетит, отправление физиологических функций. Клиническое и биохимическое исследование крови проводили до начала введения препарата, на 11 и 21 сутки опыта. О функциональном состоянии печени судили по изменению активности гепатос-пецифических ферментов (аспартатаминотрансферазы (ACT), аланинотрансфе-разы (AJIT)) и содержанию общего билирубина в сыворотке крови. Функциональное состояние почек оценивали по содержанию в сыворотке крови креати-нина и мочевины. На 21 сутки опыта проводили убой телят с целью проведения гистологического исследования органов и тканей животных.

Фармакокинетику клиндамицина и спектиномицина в сыворотке крови после однократного внутримышечного введения комплексного антибактериального препарата в терапевтической дозе 15 мг/кг массы тела изучали на 5 клинически здоровых телятах массой 45-60 кг.

Все животные находились в одинаковых условиях кормления и содержания и в течение 14 дней до опыта и на протяжении опыта не получали никаких лекарственных препаратов.

Образцы крови отбирали в объеме 10 мл до введения и через 15; 30; 45 минут; 1; 1,5; 2; 3; 6; 9; 12; 15; 18; 21; 24 ч после введения препарата. После центрифугирования крови в течение 10 минут при 2000 об/мин. сыворотку отбирали в пробирки и замораживали при температуре минус 18 °С до исследования.

Определение клиндамицина в сыворотке крови проводили с использованием микробиологического метода диффузии в агар с тест-культурой Micrococcus luteus АТСС 9341 (В.Ф. Ковалев и др., 1988). Предел количественного определения - 0,08 мкг/мл. Определение спектиномицина в сыворотке крови проводили после дериватизации предложенным нами методом высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ) с UV-детектированием. Предел количественного определения — 0,1 мкг/мл.

Определение сроков выведения остаточных количеств клиндамицина и спектиномицина после курсового применения препарата проводили на 9 телятах массой 160-180 кг. Животным один раз в сутки внутримышечно в течение 5 дней вводили комплексный антибактериальный препарат в дозе 15 мг/кг массы тела.

На 3, 14 и 21 сутки после последнего введения препарата проводили убой 3 телят. От каждого животного отбирали для исследования пробы печени, почек, мышечной ткани, мышечной ткани из места инъекции, жира, легких, сердца массой около 50 г, а также сыворотку крови.

Содержание клиндамицина и спектиномицина в биосубстратах определяли теми же методами, что и при изучении фармакокинетики.

Терапевтическую эффективность комплексного антибактериального препарата изучали на 577 телятах при бронхопневмонии бактериальной этиологии в хозяйствах Московской, Белгородской и Свердловской областей.

При постановке диагноза учитывали эпизоотическую ситуацию в хозяйствах, клиническую картину заболевания, результаты патологоанатомического, бактериологического исследований, проведенных областными ветлаборатория-ми.

Терапевтическую эффективность препарата на основе клиндамицина и спектиномицина изучали в сравнении с комплексными антибактериальными препаратами в форме раствора для инъекций: зинапримом (сульфаметазин + триметоприм); сульфетримом (эритромицин + триметоприм + сульфадиметок-син) и ультрадиазином (сульфадиазин + триметоприм), зарегистрированными в Российской Федерации для лечения респираторных заболеваний крупного рогатого скота бактериальной этиологии.

Больные животные были разделены на группы по принципу аналогов, учитывая возраст, пол, массу тела, тяжесть заболевания. Все телята находились в одинаковых условиях кормления и содержания.

Комплексный антибактериальный препарат на основе клиндамицина и спектиномицина телятам вводили внутримышечно. Препараты сравнения применяли в соответствии с утвержденными Россельхознадзором инструкциями по применению. Для определения наиболее эффективной дозы комплексного антибактериального препарата первоначально были испытаны следующие схемы применения: 0,5 мл/10 кг массы тела (7,5 мг/кг по сумме действующих веществ) один раз в сутки; 1 мл/10 кг массы тела (15 мг/кг по сумме действующих веществ) один раз в сутки; 1,25 мл/10 кг массы тела (18,75 мг/кг по сумме действующих веществ) один раз в сутки. Дальнейшие исследования продолжили с наиболее эффективными дозами.

За подопытными животными вели ежедневные клинические наблюдения, регистрируя температуру тела, частоту дыхания и сердечных сокращений. Проводили аускультацию животных. При оценке терапевтической эффективности комплексного антибактериального препарата на основе клиндамицина и спектиномицина учитывали: сохранность животных, а также продолжительность курса лечения.

Статистическую обработку полученных результатов проводили методами вариационной статистики, используя руководство Ю.С. Малеты и В.В. Тарасова (1982).

Результаты исследований

Антибактериальная активность клиндамицина. спектиномицина и их комбинаций. Полученные в опытах in vitro результаты (таблица 1) свидетельствуют о высокой чувствительности грамположительных микроорганизмов к клиндамицину. Минимальная подавляющая концентрация антибиотика, действующая на 90% изолятов стафилококков (МПК90), составила 0,155 мкг/мл, а на 50% (МПК50) - 0,076 мкг/мл. Для стрептококков эти показатели соответственно были равны 0,31 мкг/мл и 0,155 мкг/мл.

Табл. 1. Чувствительность микроорганизмов к клиндамицину и спектиномицину

Род микроорганизмов МПК, мкг/мл

Клиндамицин Спектиномицин

МПК50 МПК90 МПК50 МПК90

Staphylococcus (п=20) 0,076 0,155 25,0 25,0

Streptococcus (п=3) 0,155 0,31 6,25 12,5

Escherichia (п=22) >200 >200 12,5 25,0

Salmonella (п=21) >200 >200 12,5 25,0

Pasteurella (п=8) >200 >200 6,25 12,5

Низкую активность клиндамицина в отношении грамотрицательных микроорганизмов компенсирует второй компонент препарата - спектиномицин. В наших исследованиях МПК90 спектиномицина находилась в диапазоне 12,5-25,0 мкг/мл, а МПК50- 6,25-25,0 мкг/мл, причем наибольшей активностью антибиотик обладал в отношении пастерелл и стрептококков.

При изучении антибактериального эффекта сочетания клиндамицина и спектиномицина in vitro нами было установлено, что минимальная подавляющая концентрация каждого из антибиотиков в присутствии другого снижается в 2-8 раз в зависимости от вида микроорганизма.

Например, в присутствии спектиномицина в концентрациях 3,12-6,25 мкг/мл МПК клиндамицина в отношении стафилококков снижается до 0,019 мкг/мл (в 8 раз). И наоборот, наличие в комбинации клиндамицина в концентрациях 0,019-0,038 мкг/мл снижает МПК спектиномицина в отношении стафилококков до 3,12 мкг/мл (в 8 раз).

При добавлении к спектиномицину клиндамицина в концентрации 100 мкг/мл МПК первого в отношении пастерелл снижается до 1,56 мкг/мл (в 8 раз). В то же время, присутствие спектиномицина в концентрациях 3,12-6,25 мкг/мл снижает МПК клиндамицина в отношении пастерелл до 50 мкг/мл (в 4 раза).

Взаимоусиливающий эффект клиндамицина и спектиномицина в комбинации, вероятно, обусловлен тем, что они блокируют различные стадии белкового синтеза в бактериальной клетке. Так, спектиномицин связывается с 30S

субъединицей рибосомы, подавляя инициацию синтеза белка, в то время как клиндамицин связывается с 50S субъединицей рибосомы, нарушая процесс элонгации пептидной цепи.

Установленное взаимоусиливающее действие комбинации клиндамицина и спектиномицина в отношении изученных нами этиологически значимых в развитии респираторных заболеваний телят микроорганизмов, а также расширение спектра антибактериальной активности при их совместном применении позволили включить эти антибиотики в состав комплексного препарата.

При разработке лекарственной формы препарата учитывали, что при септических и респираторных инфекциях наиболее предпочтительно парентеральное введение антибактериальных лекарственных средств, что позволяет обеспечить быстрое достижение терапевтического эффекта за счет поступления действующего вещества в кровь, а затем в органы и ткани, минуя желудочно-кишечный тракт. Поэтому комплексный антибактериальный препарат предложен нами в форме раствора для инъекций.

По внешнему виду лекарственное средство представляет собой бесцветный или светло-желтый прозрачный раствор, содержащий 5% клиндамицина фосфата и 10% спектиномицина гидрохлорида.

Разрешенные Государственной Фармакопеей вспомогательные вещества в составе препарата (бензиловый спирт - 1%, гидроокись натрия для коррекции рН до 3,8-5,5, вода для инъекций до 100%) обеспечивали хорошую растворимость действующих веществ, стерильность препарата при многократном отборе раствора из флакона, стабильность на протяжении всего срока хранения, а также наименьшее местно-раздражающее действие препарата при внутримышечном введении.

Для стандартизации и контроля качества комплексного антибактериального препарата на основе клиндамицина и спектиномицина, а также определения его стабильности при хранении нами были предложены количественные методы контроля, позволяющие определить содержание одного антибиотика в присутствии второго.

Для определения подлинности и массовой доли клиндамицина фосфата, как наименее стабильного компонента, а также бензилового спирта предложен метод высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ). Этот метод позволяет определить не только количество действующего компонента, но и обнаружить, в случае их наличия, продукты его распада.

Подобранные нами оптимальные условия хроматографирования (длина волны - 210 нм и элюент - ацетонитрил/раствор калия фосфорнокислого дву-замещенного - 350/800 мл) позволяют одновременно идентифицировать и количественно определять в одной пробе клиндамицин и бензиловый спирт, что значительно сокращает время анализа. Установлено, что при подобранных условиях время выхода пика клиндамицина составляет 3-4 минуты, бензилового спирта - 6-7 минут.

Учитывая то, что клиндамицина фосфат микробиологически не активен, его присутствие в препарате не влияет на результаты количественного опреде-

ления спектиномицина гидрохлорида микробиологическим методом диффузии в агар с тест-культурой Escherichia coli АТСС 26.

Для определения подлинности спектиномицина мы предложили методику хроматографии в тонком слое на пластинках Silufol. Наилучшие результаты дала система растворителей этиловый спирт - аммиак водный (25%) в соотношении 2:1. Пятно, полученное при хроматографировании на пластине Silufol спектиномицина в исследуемом образце препарата, соответствовало пятну стандарта спектиномицина по величине и высоте прохождения (Rf~0,23).

На основании проведенных исследований были установлены требования к качеству готовой инъекционной лекарственной формы препарата на основе клиндамицина и спектиномицина, которые вошли в технические условия (таблица 2).

Табл. 2. Требования к качеству комплексного антибактериального препарата

Наименование показателя Характеристики и нормы

Внешний вид Бесцветный или светло-желтый прозрачный раствор

Прозрачность раствора Должен выдерживать сравнение с растворителем или эталоном № I

Окраска раствора Не должен по интенсивности превышать эталон №26

Объем заполнения, мл Должен быть не менее номинального

рН раствора 3,8-5,5

Наличие механических включений Должно соответствовать установленным требованиям

Подлинность спектиномицина гидрохлорида Пятно спектиномицина в исследуемом образце препарата должно соответствовать пятну стандарта спектиномицина по величине и высоте прохождения (ЯГ~0,23)

Подлинность клиндамицина фосфата и бензилового спирта Время выхода пиков клиндамицина и бензилового спирта в образце препарата должно соответствовать времени выхода пиков в стандартном образце

Массовая доля спектиномицина гидрохлорида, % 9,0-11,0

Массовая доля клиндамицина фосфата, % 4,5-5,5

Массовая доля бензилового спирта, % 0,9-1,1

Пирогенность в тест-дозе 1 мл/кг массы кролика Должен быть апирогенен

Стерильность Должен быть стерилен

Предложенные качественные и количественные методы контроля комплексного антибактериального препарата, позволяют обеспечить оптимальный уровень качества лекарственного средства в процессе его производства, хранения и применения.

Результаты изучения стабильности трех экспериментальных серий лекарственного средства показали, что метод «ускоренного старения» не может быть использован для изучения стабильности инъекционной формы препарата вследствие деградации клиндамицина фосфата в условиях повышенной температуры.

Качественные и количественные показатели препарата при хранении его в условиях комнатной температуры в течение 18 месяцев и при многократном отборе раствора из флакона в течение 28 дней оставались без изменения. Методом высокоэффективной жидкостной хроматографии было определено, что продуктов распада клиндамицина, наименее стабильного компонента в препарате, в период вышеуказанных сроков не образуется.

Результаты проведенных исследований позволили включить в инструкцию по применению и технические условия срок годности препарата 1,5 года и срок использования флакона с препаратом после его первого вскрытия - 4 недели при хранении при температуре не выше 25°С.

В результате изучения острой токсичности комплексного антибактериального препарата на лабораторных животных нами установлено (таблица 3), что независимо от пути введения, по параметрам острой токсичности согласно ГОСТ 12.1.007-76 препарат относится к IV классу опасности - веществам малоопасным (ЛД5О>5000 мг/кг), а в соответствии с классификацией Медведя (1977) -к 4-му классу токсичности - малотоксичным соединениям (ЛД5О>1000 мкг/кг).

Табл. 3. Токсикологические параметры препарата

Максимально переносимая доза, мг/кг лд16, мг/кг лд50, мг/кг лд84, мг/кг Абсолютно смертельная доза, мг/кг

Внутрибрюшинно

1590 4305 8878 (5969 — 10399) 11450 10600

Подкожно

10600 13813 16309 (14562 - 18266) 18806 21200

Перорально

21200 28260 47091 (37976-58392) 65921 >65921

При изучении субхронической токсичности препарата на лабораторных животных было определено, что суммарно введенная в течение 20 дней доза

препарата (65240 мг/кг) не вызывала гибели мышей, поэтому точно рассчитать коэффициент кумуляции не представлялось возможным. Но, учитывая, что эта доза в 4 раза больше среднесмертельной дозы (16309 мг/кг) при однократном введении, по классификации Л.И. Медведя (1968) препарат предположительно можно отнести к веществам с умеренной кумуляцией (КкуМ 3-5).

Достоверное (р<0,05) по сравнению с контрольной группой снижение прироста массы мышей опытных групп, установленное на 14 и 21 сутки, при введении препарата во всех испытанных дозах свидетельствует об угнетении темпов анаболических процессов в организме грызунов при длительном применении лекарственного средства.

Нарушение компенсаторно-приспособительных способностей организма мышей (таблица 4) при введении препарата в дозе 1/5 ЛД5о(3262 мг/кг) выражалось достоверным (р<0,05) по сравнению с контролем уменьшением продолжительности их плавания на 21 день опыта, что, очевидно, связано с угнетением препаратом в наивысшей дозе биохимических реакций в печени, ведущем к снижению скорости утилизации продуктов обмена, образующихся вследствие мышечной нагрузки.

Табл. 4. Влияние комплексного антибактериального препарата на функциональное состояние организма мышей

№ группы Доза препарата Продолжительность плавания (минуты) Время сна (минуты)

21 сутки 31 сутки 21 сутки 31 сутки

1 1/5 ЛДзо 9,36±0,46* 14,53+0,46 37,26+1,88* 32,2912,03

2 1/10 лд50 12,51±0,54 15,26±0,49 39,1013,17* 32,3412,37

3 1/20 ЛД50 12,56±0,67 15,40±0,44 32,10±1,53 33,1812,17

4 Контроль 13,15±0,55 15,00±0,50 28,3112,30 30,2312,17

* - р<0,05

При оценке детоксицирующей функции печени было установлено, что препарат в дозах 1/5 (3262 мг/кг) и 1/10 ЛД50 (1631 мг/кг) вызывает функциональные изменения, выражающиеся достоверным (р<0,05) по сравнению с контролем увеличением продолжительности гексеналового сна мышей на 21 день опыта (таблица 4) Видимо, высокие дозы препарата ингибируют активность микросомальных ферментов гепатоцитов, что приводит к снижению темпов разрушения гексенала, проявляющемся в увеличении времени сна. Увеличение (р<0,05) весовых коэффициентов печени мышей при длительном введении препарата в этих же дозах (1/5 и 1/10 ЛДзо) подтвердило его гепатотоксическое влияние на организм грызунов.

Все изменения в организме мышей, вызванные двадцатидневным введением комплексного антибактериального препарата в высоких дозах, носили обратимый характер, о чем свидетельствует восстановление функций организма животных до нормы через 10 суток после прекращения применения препарата.

В процессе изучения субхронической токсичности комплексного антибактериального препарата на телятах гибели животных не отмечали.

Физиологические показатели (температура тела, частота дыхательных движений и сердечных сокращений) телят, а также основные клинические показатели крови (таблица 5) (за исключением количества тромбоцитов) в течение опыта находились в пределах физиологической нормы и достоверно (р>0,05) не отличались от контроля.

Двадцатидневное введение препарата в двух с половиной кратной терапевтической дозе приводило к достоверному (р<0,05) по сравнению с контролем уменьшению количества тромбоцитов в крови животных.

Табл. 5. Клинические показатели крови телят на 21 сутки опыта

Исследуемые показатели Группа животных

Пятикратная терапевтическая доза 2,5-кратная терапевтическая доза Терапевтическая доза Контроль

Гемоглобин, г/л 107,00±7,24 108,00±5,23 107,75±9,23 101,50±5,43

Гематокрит, % 28,48±2,08 31,43±2,13 29,98±2,66 28,03±0,96

Цветной показатель 0,90±0,09 0,85±0,06 0,79±0,11 0,86±0,12

Эритроциты, млн./мкл 8,02±0,35 8,29±0,54 7,67±0,37 7,36±0,54

Лейкоциты, тыс./мкл 7,00±0,90 8,20±0,34 7,80±0,76 6,98±0,45

Тромбоциты, тыс./мкл 458,75±76,52 392,33±32,13* 425,00±26,67 454,25±28,40

*- р<0,05

Учитывая, что данный эффект не являлся дозозависимым, и количество тромбоцитов находилось в пределах физиологической нормы (260-700 тыс./мкл), полученные результаты могут указывать только на тенденцию возможного угнетающего влияния препарата на гемопоэз при длительном применении.

Содержание общего билирубина в сыворотке крови телят на 21 сутки соответствовало физиологической норме (таблица 6), что свидетельствует об отсутствии влияния препарата на экскреторную функцию печени.

Наблюдаемое на 21 сутки опыта достоверное (р<0,05) повышение активности ACT в пределах физиологической нормы (45,3-110,2 мкмоль/л) в сыворотке крови телят всех опытных и контрольной групп в 1,4-1,5 раз по сравнению с показателем до начала введения, очевидно, было связано с физиологической перестройкой в организме растущих животных, а не с токсическим влиянием препарата. Тем более нарушение функционального состояния печени чаще всего сопровождается одновременным повышением активности ACT и AJIT. Однако активность АЛТ после двадцатидневного введения комплексного

антибактериального препарата у всех животных находилась в пределах физиологической нормы и не была повышена по сравнению с аналогичным показателем до введения препарата.

Табл. 6. Влияние препарата на функциональное состояние печени и почек телят

Показатель Пятикратная терапевтическая доза 2,5-кратная терапевтическая доза Терапевтическая доза Контроль

До введения

Общий билирубин, мкмоль/л 4,75±0,63 4,00±0,72 5,00±0,72 4,50±0,72

АЛТ, мкмоль/л 22,75±5,16 24,00±7,60 31,25±6,60 23,00±5,79

ACT, мкмоль/л 55,25±7,15 62,75±7,06 50,25±7,06 52,50±6,51

Креатинин, мкмоль/л 115,50±11,58 107,00±3,62 103,25±7,78 96,25±7,78

Мочевина, ммоль/л 6,43±0,86 6,90±0,62 8,80±1,64 8,20±2,71

На 21 сутки

Общий билирубин, мкмоль/л 5,00±0,36 5,66±1,93 4,75±0,63 5,50±0,72

АЛТ, мкмоль/л 28,00±5,79 28,67±б,58 31,35±5,15 25,75±4,61

ACT, мкмоль/л 83,25±9,23* 87,67±3,10* 70,75±7,05* 83,25±5,61*

Креатинин, мкмоль/л 94,75±4,43 93,25±4,25 91,67±6,20 89,75±2,71

Мочевина, ммоль/л 8,70±0,44 8,80±0,92 8,47±0,91 8,40±0,43

*- р<0,05

Отсутствие гепатотоксического действия препарата на организм телят подтвердили результаты гистологических исследований, не выявившие каких-либо патологических изменений в ткани печени животных опытных групп даже при введении лекарственного средства в пятикратной терапевтической дозе в течение 20 дней.

При длительном введении препарат не оказывал негативного влияния на функциональное состояние почек животных, о чем свидетельствовали физиологические уровни содержания креатинина и мочевины в сыворотке крови телят

опытных групп (таблица 6) и отсутствие патологических изменений в почечной ткани животных.

При гистологическом исследовании было установлено, что даже в пятикратной терапевтической дозе внутримышечное введение препарата не вызывает деструктивных изменений мышечных волокон, что свидетельствует об отсутствии его местно-раздражающего действия.

Результаты оценки безопасности комплексного антибактериального препарата на основе клиндамицина и спектиномицина для телят при его двадцатидневном введении в терапевтической дозе и дозах, превышающих терапевтическую в 2,5 и 5 раз (соответственно 15, 37,5 и 75 мг/кг массы тела по сумме действующих веществ), показали, что лекарственное средство не оказывает токсического действия на организм животных.

Выявленное в конце опыта снижение количества тромбоцитов в пределах физиологической нормы свидетельствует о возможном угнетающем влиянии препарата при длительном применении на гемопоэз, что было учтено при разработке инструкции по применению лекарственного средства.

Учитывая, что комплексный антибактериальный препарат на практике будет применяться не более 5 дней, даже при случайной передозировке лекарственного средства проявление побочного действия практически исключается.

Фармакокинетические исследования показали, что уже через 15 минут после внутримышечного введения клиндамицин обнаруживался в крови телят в концентрациях, в 5-10 раз превышающих антибактериальные (график 1), что, учитывая бактерицидный характер действия его в высоких концентрациях, позволяет контролировать развитие устойчивых штаммов. Уровень клиндамицина, достаточный для ингибирования чувствительных микроорганизмов, в т.ч. микоплазм, сохранялся в сыворотке до 18 часов

График 1. Фармакокинетика клиндамицина в сыворотке крови телят

■с 3,25

I з

я 2,75 I 2,5 I 2,25

| 1,75

5 1'5 ? 1,25

I 1

га 0,75 £ 0,5 § 0,25

§ о

* 012345678 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 23 24

Время после введения, ч

Концентрация спектиномицина в сыворотке достигала антибактериальных значений для большинства чувствительных микроорганизмов через 15-30 минут (график 2) и, учитывая взаимоусиливающее действие антибиотиков, установленное нами ранее в опытах in vitro, поддерживалась в крови в ингиби-рующих концентрациях до 9 ч.

График 2. Фармакокинетика спектиномицина в сыворотке крови телят

5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 Время после введения, ч

Полученные средние значения концентраций клиндамицина и спектиномицина в сыворотке крови телят, изменяющиеся во времени, подвергались фармакокинетической оценке методом последовательного логарифмирования и описывались в рамках двухкамерной модели с учетом всасывания следующим уравнением:

С = Ae'at + Be pt -

(А+В)е

где С - концентрация антибиотика в сыворотке;

А и В - величины отрезка на оси ординат при экстраполяции прямой к моменту времени 1=0 в фазу распределения и элиминации, соответственно; а, р, к, е - фармакокинетические константы.

Фармакокинетические параметры клиндамицина и спектиномицина характеризовались высокими значениями максимальных концентраций (Стах-2,89 и 28,27 мкг/мл, соответственно) и быстрым временем их достижения (1тах=45 мин).

Очевидно, малый объем распределения спектиномицина в периферических тканях (Ус155=286 мл/кг) при одновременно малой степени связывания с белками крови (6-8,5%) объясняется тем, что вследствие высокой ионизации и низкой липофильности антибиотик слабо проникает через клеточные мембраны, попадая, главным образом, в межклеточное пространство. Короткий период

полувыведения спектиномицина (11/2р-130,7мин) обусловлен его высокой водо-растворимостью, вследствие чего он выводится из организма за счет гломеру-лярной фильтрации, не подвергаясь биотрансформации.

Высокий показатель объема распределения клиндамицина в периферической (Vdss=5202,9 мл/кг) камере свидетельствует о его хорошем проникновении в клетки тканей, что позволило нам прогнозировать высокую эффективность препарата в отношении микоплазм, являющихся внутриклеточными паразитами. Достаточно продолжительный период полувыведения (ti/2p=330,8 мин) клиндамицина фосфата, очевидно, объясняется постепенным гидролизом антибиотика щелочной фосфатазой крови до активной формы, а также постепенным высвобождением его из белковых комплексов в крови.

Учитывая, что клиндамицин и спектиномицин in vitro обладают постантибиотическим эффектом, проявляющемся в продолжении подавления роста бактерий при удалении антибиотиков из инкубационной среды (S.C. Ebert, W.A. Craig, 1990; R.E. Lewis, M.E. Klepser, 1998), мы предположили, что препарат оказывает антибактериальный эффект в организме телят при его назначении с более длительными интервалами введения по сравнению с рассчитанными. Как было позже подтверждено в производственных условиях, применение препарата с 24 часовым интервалом оказалось эффективным при лечении респираторных заболеваний телят бактериальной этиологии.

При изучении сроков выведения антибиотиков из организма телят после курсового пятидневного применения препарата в дозе 15 мг/кг массы тела было установлено, что клиндамицин не накапливался и достаточно быстро выводился из организма животных. На третьи сутки его обнаруживали в печени, почках, месте инъекции, легких, жире в концентрациях 0,14-0,21 мкг/г, а на 14 сутки его содержание во всех исследованных биосубстратах было ниже предела количественного определения метода (0,08 мкг/г). Спектиномицин обнаруживали в организме телят на 3 и на 14 сутки после окончания курсового применения препарата. Причем наибольшие его количества регистрировали в месте инъекции и в почках. Через 3 недели содержание спектиномицина во всех исследованных биосубстратах находилось ниже предела количественного определения метода (0,1 мкг/г), что дало основание рекомендовать использовать в пищу человека мясо и субпродукты телят, не ранее, чем через 21 день после окончания курсового применения препарата.

При изучении терапевтической эффективности комплексного антибактериального препарата на основе клиндамицина и спектиномицина в производственных условиях было установлено, что при введении один раз в сутки в течение 3-5 дней в дозе 0,5 мл/10 кг массы тела (7,5 мг/кг по сумме действующих веществ) лекарственное средство оказалось недостаточно эффективным и обеспечивало сохранность только 89,7% животных (таблица 7).

Увеличение дозы препарата до 1,0 и 1,25 мл/10 кг массы тела (15 и 18,75 мг/кг по сумме действующих веществ) приводило к повышению эффективности лечения бронхопневмонии телят до 96,3 и 96,9 % соответственно, при этом достоверных различий в эффективности применения этих доз не установлено (р>0,05).

Эффективность применения препарата на основе клиндамицина и спекти-номицина в дозах 1,0 и 1,25 мл/10 кг массы тела превышала эффективность лечения телят препаратами сравнения на 2,4-6,9%, а курс лечения при этом сокращался на 0,8-3,3 дня.

Табл. 7. Эффективность комплексного антибактериального препарата при бронхопневмонии бактериальной этиологии у телят

Показатели Препарат на основе

клиндамицина и 2 2 Я к а к Е(

спектиномицина О. С л К к о. <0

0,5 1,0 1,25 -ел ч « О. н

мл/10 мл/10 мл/10 со и ч >,

кг кг кг

Количество животных, голов 39 178 185 40 66 69

Продолжительность лечения, дней 7,4±0,5 4,2±0,8 4,0±0,7 7,3±0,7 4,0±0,5 5,0±0,7

Эффективность, % 89,7 96,3 96,9 90,0 93,9 91,3

Таким образом, результаты изучения терапевтической эффективности в производственных условиях позволяют считать, что разработанное нами комплексное антибактериальное лекарственное средство на основе клиндамицина и спектиномицина в дозе 1,0 мл/10 кг массы тела (15 мг/кг по сумме действующих веществ) при внутримышечном введении один раз в сутки в течение 3-5 суток может быть использовано для лечения респираторных заболеваний телят бактериальной этиологии.

Результаты проведенных нами исследований по разработке лекарственной формы, методов контроля качества, изучению антибактериальных, фарма-ко-токсикологических свойств и терапевтической эффективности комплексного антибактериального препарата на основе клиндамицина и спектиномицина были использованы при разработке технических условий и инструкции по применению лекарственного средства в ветеринарии.

ВЫВОДЫ

1. Разработан новый комплексный антибактериальный препарат на основе клиндамицина и спектиномицина в форме раствора для инъекций для лечения респираторных заболеваний телят бактериальной этиологии. Комбинация клиндамицина и спектиномицина обладает взаимоусиливающим действием в отношении грамположительных (стафилококки, стрептококки) и грамотрица-тельных (пастереллы, сальмонеллы, эшерихии) микроорганизмов. Установлено,

что минимальная подавляющая концентрация каждого из антибиотиков в присутствии другого снижается в 2-8 раз в зависимости от вида чувствительного микроорганизма.

2. Комплексный антибактериальный препарат на основе клиндамицина и спектиномицина отвечает стандартным требованиям, предъявляемым к инъекционным лекарственным формам, и стабилен в течение 18 месяцев при хранении в условиях комнатной температуры и в течение 28 суток после первого вскрытия флакона.

3. Комплексный антибактериальный препарат на основе клиндамицина и спектиномицина по параметрам острой токсичности независимо от пути введения (перорально, подкожно, внутрибрюшинно) согласно ГОСТ 12.1.007-76 относится к IV классу опасности - веществам малоопасным. ЛД50 для белых мышей при пероральном введении составляет 47091 мг/кг, при подкожном введении - 16309 мг/кг, при внутрибрюшинном введении - 8878 мг/кг.

4. Двадцатидневное введение комплексного антибактериального препарата в форме раствора для инъекций в дозе 1/5 от ЛД50 приводит к временному нарушению компенсаторно-приспособительных способностей, а в дозах 1/5 и 1/10 от ЛД50 к временному нарушению детоксицирующей функции печени белых мышей, восстанавливающихся через 10 дней после прекращения применения препарата.

5. Двадцатидневное введение комплексного антибактериального препарата в терапевтической дозе и в дозах, в 2,5 и 5 раз превышающих терапевтическую (соответственно, 15, 37,5 и 75 мг/кг массы тела по сумме действующих веществ), не оказывает токсического действия на организм телят. Снижение количества тромбоцитов в пределах физиологической нормы в конце опыта свидетельствует о возможном угнетающем влиянии препарата на гемопоэз при длительном применении.

6. Фармакокинетика клиндамицина и спектиномицина после однократного внутримышечного введения препарата в дозе 15 мг/кг массы тела характеризуется высокими значениями максимальных концентраций антибиотиков (Сщах клинД=2,89; Стах СПСКТ=28,27 мкг/мл), быстрым временем их достижения (^тах==45 мин), малым объемом стационарного распределения спектиномицина (Ус155=286 мл/кг) и высоким объемом стационарного распределения клиндамицина (Ус155=5202,9 мл/кг) в организме телят.

7. Остаточные количества клиндамицина и спектиномицина после пятидневного внутримышечного введения комплексного антибактериального препарата в дозе 15 мг/кг массы тела полностью выводятся из организма телят через 21 сутки.

8. Комплексный антибактериальный препарат на основе клиндамицина и спектиномицина в дозе 1 мл/10 кг массы тела (15 мг/кг по сумме действующих веществ) при применении в течение 3-5 дней обладает 94,4-97,6 % эффективностью при лечении респираторных заболеваний телят бактериальной этиологии.

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

1. Разработан и предложен для ветеринарной практики новый комплексный антибактериальный препарат на основе клиндамицина и спектиномицина для лечения респираторных заболеваний телят бактериальной этиологии.

2. Результаты исследований нашли отражение в разработанной нормативной документации, переданной для регистрации лекарственного средства в Российской Федерации в Россельхознадзор:

- технических условиях ТУ 9348-054-47611900-2007 «Клиндаспектин раствор для инъекций»;

- инструкции по применению Клиндаспектина раствора для инъекций в ветеринарии.

3. На лекарственное средство, содержащее в качестве действующих веществ клиндамицин и спектиномицин, получен патент РФ на изобретение № 2227741 «Препарат для профилактики и лечения инфекционных заболеваний животных и птиц бактериальной этиологии».

СПИСОК РАБОТ, ОПУБЛИКОВАННЫХ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ

1. С. Ионов, А. Игнатова, Е. Елисеева. Клиндаспектин - препарат против ассоциированных инфекций. // Птицеводство. - 2005. - № 4. - С. 53-54.

2. Б.В. Виолин, А.Д. Игнатова, И.Д. Игнатова. Изучение токсичности комплексного инъекционного препарата на основе клиндамицина и спектиномицина в опытах на лабораторных животных. // Сборник научных трудов ВГНКИ. - 2006. - Т. 67. - С. 182-188.

3. А.Д. Игнатова, Б.В. Виолин. Изучение субхронической токсичности инъекционной формы клиндаспектина в опытах на телятах. // Аграрная наука,-2006. - № 7. - С. 25-28.

4. С.Н. Ионов, А.Д. Игнатова, E.H. Елисеева. Клиндаспектин при бактериальных инфекциях птиц. // Ветеринария. - 2007. - № 1. - С. 13-17.

Заказ № 99/02/07 Подписано в печать 19 02 2007 Тираж 100 экз Уел пл 1,25

000 "Цифровичок", тел (495) 797-75-76, (495) 778-22-20 " у/ www.cfr.ru ; е-таИ:т/о@с/г.ги

 
 

Оглавление диссертации Игнатова, Анна Дмитриевна :: 2007 :: Москва

ВВЕДЕНИЕ

1. ЛИТЕРАТУРНЫЙ ОБЗОР

1.1. Респираторные заболевания молодняка крупного рогатого скота

1.2. Антибактериальная терапия респираторных заболеваний телят

1.3. Антибиотикорезистентность микроорганизмов и пути ее преодоления

1.4. Комбинированная антибактериальная терапия

1.5. Клиндамицин

1.6. Спектиномицин

2. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.1. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

2.2. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.2.1. Изучение чувствительности бактерий к клиндамицину, спектиномицину и их комбинациям

2.2.2. Разработка лекарственной формы комплексного антибактериального препарата

2.2.3. Химико-фармацевтические исследования

2.2.4. Изучение стабильности комплексного антибактериального препарата

2.2.5. Изучение острой токсичности комплексного антибактериального препарата в опытах на белых мышах

2.2.6. Изучение субхронической токсичности комплексного антибактериального препарата в опытах на белых мышах 87 •

2.2.7. Изучениие субхронической токсичности комплексного антибактериального препарата в опытах на телятах

2.2.8. Изучение фармакокинетики клиндамицина и спектиномицина в организме телят после однократного применения препарата

2.2.9. Определение сроков выведения клиндамицина и спектиномицина из организма телят после применения антибактериального препарата 102 2.2.10. Терапевтическая эффективность комплексного антибактериального препарата в производственных условиях

3. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ

ВЫВОДЫ

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

 
 

Введение диссертации по теме "Ветеринарная фармакология с токсикологией", Игнатова, Анна Дмитриевна, автореферат

Актуальность проблемы

Бронхопневмония телят наряду с желудочно-кишечными инфекциями занимает основное место в структуре заболеваний молодняка крупного рогатого скота [1, 3,11,20, 111,115, 117].

До 90% телят в послеотъемный период подвержено респираторным инфекциям. Убытки, причиняемые бронхопневмонией, складываются из отставания в росте, снижения привесов, стоимости лекарств, затрат труда на лечение и профилактику заболевания, смертности животных [2, 22, 50, 79]. В отдельных хозяйствах гибель молодняка в совокупности с вынужденным убоем достигает 40-55%, а прирост массы тела у больных и переболевших снижается в 2-3 раза [80, 93].

В возникновении и развитии респираторных заболеваний молодняка важную роль играет бактериальная микрофлора (стрептококки, стафилококки, пастереллы, сарцины, протей, гемофилюс, эшерихии и др.), которая часто осложняет течение вирусных и микоплазменных инфекций [85, 107, 120, 145].

При определенных условиях бактериальная микрофлора является первопричиной для возникновения респираторной патологии (при усилении вирулентности или токсигенности, изменениях ассоциаций микробов, высокой концентрации бактерий и др.) Но обычно микроорганизмы являются вторичным фактором, вызывающим бронхопневмонию, развиваясь после первичного повреждения слизистой респираторного тракта телят вирусами и мико-плазмами [15, 29,152].

Массовые респираторные болезни молодняка крупного рогатого скота представляют собой сложные инфекционные процессы, в которых на разных стадиях развития патологии принимают участие вирусы, микоплазмы, бактерии и другие возбудители в различных сочетаниях [31].

Химиотерапия респираторных заболеваний, как правило, сконцентрирована на подавлении патогенной микрофлоры [16,18].

Широкое и часто нерациональное применение антибактериальных лекарственных средств при респираторных болезнях телят привело к распространению резистентных микроорганизмов, что является основным фактором, ограничивающим эффективность лечения. В связи с этим возникает необходимость поиска новых эффективных средств для лечения бронхопневмонии телят [44,45, 155, 163].

Учитывая, что бронхопневмония редко протекает в виде моноинфекции, а чаще при участии сочетаний различных патогенов, для ее лечения недостаточно применения одного антибактериального вещества, требуются комплексы антибиотиков, одновременно действующих на всю ассоциацию возбудителей патологического процесса [7, 40, 44, 147].

Клиндамицин, антибиотик группы линкозамидов, высоко активный в отношении грамположительной микрофлоры, микоплазм и анаэробов, в течение 30 лет успешно применяется в медицине для лечения бактериальных инфекций респираторного тракта. [123,129,172,181].

Отсутствие резистентных штаммов и перекрестной устойчивости с большинством других антибактериальных препаратов, хорошая биодоступность при парентеральном пути введения, высокая эффективность, возможность проявления синергизма в комбинации с другими антибиотиками [119, 124, 153, 189], а также то, что клиндамицин ранее не применялся для лечения бактериальных инфекций крупного рогатого скота в Российской Федерации, позволило нам выбрать этот антибиотик в качестве одного из действующих веществ комплексного препарата для лечения респираторных заболеваний телят бактериальной этиологии.

Обладая высокой активностью в отношении грамположительной микрофлоры и анаэробов, клиндамицин не действует на грамотрицательные бактерии [124, 127, 138]. Поэтому, учитывая ассоциативный характер этиологии респираторных инфекций, для расширения спектра антибактериального действия в состав комплексного инъекционного препарата введен спектиноми-цин - антибиотик, подавляющий развитие эшерихий, пастерелл, сальмонелл и других грамотрицательных микроорганизмов [140, 220, 223], а также, по нашим данным, усиливающий антибактериальные свойства клиндамицина.

Разработанный нами комплексный препарат на основе клиндамицина и спектиномицина обладает широким спектром антибактериального действия в отношении большинства микроорганизмов, играющих роль этиологического фактора в возникновении респираторных заболеваний телят.

Цель работы

Разработать на основе клиндамицина и спектиномицина новый комплексный антибактериальный препарат для лечения респираторных заболеваний телят бактериальной этиологии.

Задачи исследования

- Обосновать состав и разработать лекарственную форму комплексного антибактериального препарата на основе клиндамицина и спектиномицина.

- Разработать требования к качеству комплексного антибактериального препарата и методы его контроля.

- Изучить стабильность комплексного антибактериального препарата в процессе хранения.

- Изучить острую токсичность комплексного антибактериального препарата в опытах на лабораторных животных.

- Изучить субхроническую токсичность комплексного антибактериального препарата в опытах на лабораторных животных и телятах.

- Изучить фармакокинетику клиндамицина и спектиномицина в организме телят после применения комплексного антибактериального препарата.

- Определить сроки выведения остаточных количеств клиндамицина и спектиномицина из организма телят после курсового применения препарата;

- Определить терапевтическую эффективность комплексного антибактериального препарата на основе клиндамицина и спектиномицина в производственных условиях и разработать схему его применения для лечения респираторных заболеваний телят бактериальной этиологии.

- На основе результатов исследований разработать технические условия и инструкцию по применению комплексного антибактериального препарата и представить на утверждение в установленном порядке.

Научная новизна

- Впервые разработан комплексный антибактериальный препарат на основе клиндамицина и спектиномицина в форме раствора для инъекций для лечения респираторных заболеваний телят бактериальной этиологии.

- Установлено взаимоусиливающее действие комбинации клиндамицина и спектиномицина в отношении грампололсительных и грамотрицатель-ных микроорганизмов; изучены фармако-токсикологические свойства и определена терапевтическая эффективность комплексного антибактериального препарата при лечении респираторных заболеваний телят бактериальной этиологии.

Практическая значимость работы

- Разработан и предложен для ветеринарной практики новый комплексный антибактериальный препарат на основе клиндамицина и спектиномицина для лечения респираторных заболеваний телят бактериальной этиологии.

- Разработаны количественные и качественные методы контроля комплексного антибактериального препарата, позволяющие обеспечить оптимальный уровень качества лекарственного средства в процессе его производства, хранения и применения.

- Установлен срок годности препарата.

- Определены сроки возможного использования в пищу человеку мяса и субпродуктов телят после курсового применения комплексного антибактериального препарата.

- Разработана схема применения комплексного антибактериального препарата при лечении респираторных заболеваний телят бактериальной этиологии.

- Разработана нормативная документация - технические условия и инструкция по применению комплексного антибактериального препарата на основе клиндамицина и спектиномицина.

Основные положение, выносимые на защиту:

- Научное обоснование состава комплексного антибактериального препарата.

- Качественные и количественные методы контроля комплексного антибактериального препарата на основе клиндамицина и спектиномицина.

- Результаты изучения стабильности комплексного антибактериального препарата при хранении.

- Результаты изучения острой и субхронической токсичности комплексного антибактериального препарата в опытах на лабораторных животных и телятах.

- Результаты изучения фармакокинетики клиндамицина и спектиномицина и определения сроков выведения остаточных количеств антибиотиков из организма телят после применения препарата.

- Результаты определения терапевтической эффективности комплексного антибактериального препарата при лечении респираторных заболеваний телят бактериальной этиологии.

- Практические предложения по применению комплексного антибактериального препарата на основе клиндамицина и спектиномицина в ветеринарии.

1. ЛИТЕРАТУРНЫЙ ОБЗОР

 
 

Заключение диссертационного исследования на тему "Фармако-токсикологические свойства и терапевтическая эффективность инъекционной формы комплексного антибактериального препарата на основе клиндамицина и спектиномицина"

выводы

1. Разработан новый комплексный антибактериальный препарат на основе клиндамицина и спектиномицина в форме раствора для инъекций для лечения респираторных заболеваний телят бактериальной этиологии. Комбинация клиндамицина и спектиномицина обладает взаимоусиливающим действием в отношении грамположительных (стафилококки, стрептококки) и грамотрицательных (пастереллы, сальмонеллы, эшерихии) микроорганизмов. Установлено, что минимальная подавляющая концентрация каждого из антибиотиков в присутствии другого снижается в 2-8 раз в зависимости от вида чувствительного микроорганизма.

2. Комплексный антибактериальный препарат на основе клиндамицина и спектиномицина отвечает стандартным требованиям, предъявляемым к инъекционным лекарственным формам, и стабилен в течение 18 месяцев при хранении в условиях комнатной температуры и в течение 28 суток после первого вскрытия флакона.

3. Комплексный антибактериальный препарат на основе клиндамицина и спектиномицина по параметрам острой токсичности независимо от пути введения (перорально, подкожно, внутрибрюшинно) согласно ГОСТ 12.1.007-76 относится к IV классу опасности - веществам малоопасным. ЛД5о для белых мышей при пероральном введении составляет 47091 мг/кг, ЛД50 при подкожном введении - 16309 мг/кг, ЛД50 при внутрибрюшинном введении - 8878 мг/кг.

4. Двадцатидневное введение комплексного антибактериального препарата в форме раствора для инъекций в дозе 1/5 от ЛД50 приводит к временному нарушению компенсаторно-приспособительных способностей, а в дозах 1/5 и 1/10 от ЛД50 к временному нарушению детоксицирующей функции печени белых мышей, восстанавливающихся через 10 дней после прекращения применения препарата.

5. Двадцатидневное введение комплексного антибактериального препарата в терапевтической дозе и в дозах, в 2,5 и 5 раз превышающих терапевтическую (соответственно, 15, 37,5 и 75 мг/кг массы тела по сумме действующих веществ), не оказывает токсического действия на организм телят. Снижение количества тромбоцитов в пределах физиологической нормы в конце опыта свидетельствует о возможном угнетающем влиянии препарата на гемопоэз при длительном применении.

6. Фармакокинетика клиндамицина и спектиномицина после однократного внутримышечного введения препарата в дозе 15 мг/кг массы тела характеризуется высокими значениями максимальных концентраций антибиотиков (Стах клинд =2,89; СтахСПСКТ=28,27 мкг/мл), быстрым временем их достижения (tmax=45 мин), малым объемом стационарного распределения спектиномицина (Vdss=286 мл/кг) и высоким объемом стационарного распределения клиндамицина (Vdss=5202,9 мл/кг) в организме телят.

7. Остаточные количества клиндамицина и спектиномицина после пятидневного внутримышечного введения комплексного антибактериального препарата в дозе 15 мг/кг массы тела полностью выводятся из организма телят через 21 сутки.

8. Комплексный антибактериальный препарат на основе клиндамицина и спектиномицина в дозе 1 мл/10 кг массы тела (15 мг/кг по сумме действующих веществ) при применении в течение 3-5 дней обладает 94,4-97,6 % эффективностью при лечении респираторных заболеваний телят бактериальной этиологии.

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

1. В результате проведенных исследований разработано и предложено для использования в ветеринарии новое комплексное антибактериальное лекарственное средство на основе клиндамицина и спектиномицина для лечения респираторных заболеваний телят бактериальной этиологии.

2. Результаты исследований нашли отражение в разработанной нормативной документации (технические условия ТУ 9348-054-476119002007 «Клиндаспектин раствор для инъекций» и инструкция по применению Клиндаспектина раствора для инъекций в ветеринарии), которая передана для регистрации лекарственного средства в Российской Федерации в Рос-сельхознадзор.

3. На лекарственное средство, содержащее в качестве действующих веществ клиндамицин и спектиномицин, получен патент РФ на изобретение № 2227741 «Препарат для профилактики и лечения инфекционных заболеваний животных и птиц бактериальной этиологии».

 
 

Список использованной литературы по ветеринарии, диссертация 2007 года, Игнатова, Анна Дмитриевна

1. Аксенова В.М., Гурова С.В., Никулина Н.Б. Распространенность заболеваний бронхопневмонией телят в хозяйствах Пермской области. Перспективы эндолимфатической терапии. // Эффективность адаптивных технологий. Ижевск, 2003. - С. 270-274.

2. Амирбеков М.А., Хамроев К.Б., Егорова А.Н. Респираторные болезни у телят. Диагностика и лечение. // Ветеринария. 1985. - Т.1. - С. 38-39.

3. Ардатовский В. Отчего гибнет молодняк? // Ветеринарный вестник.- 1996. -№2.-С. 2-3.

4. Аржаков В.Н. Оценка действия in vitro сочетаний антибиотиков на патогенные микроорганизмы. Новосибирск. - 1983. - С. 59-64.

5. Аржаков В.Н., Пфайфер В.И. Лекарственные формы антибиотиков при бронхопневмонии телят. // Научно-технический бюллетень. ВАСХНИЛ.- Сибирское отделение. 1983. - Вып. 40. - С. 25-28.

6. Бабкина Т.Н., Таран Г.Г. Сравнительная эффективность методов лечения телят, больных бронхопневмонией. // Пути и средства повышения эффективности диагностики и лечебно-профилактических мероприятий при незаразной патологии животных. 1999. - С. 13-15.

7. Байбурский В.Л., Анюхина Т.А. Комбинированные антибиотические препараты в ветеринарии. // Антибиотики и химиотерапия. 1992. - Т. 32.-№2.-С. 50-53.

8. Барышников П.И. Микоплазмы в патологии крупного рогатого скота. // Ветеринария. 1997. - № 10. - С. 11-14.

9. Беленький М.Л. Элементы количественной оценки фармакологического эффекта. Л.: Медгиз, 1963. - С. 43-87.

10. Актуальные проблемы ветеринарной медицины, животноводства, общест-вознания и подготовки кадров на Южном Урале. Троицк. - 1998. - 4.1. - С. 6-7.

11. Бережинская В.В., Долгова Г.В. Антибиотики-макролиды и их применение в комбинированной фармакотерапии. // Антибиотики и химиотерапия. 1989. - №8. - С. 49-51.

12. И.Бриан JT. Бактериальная резистентность и чувствительность к хими-опрепаратам. М.: Медицина, 1984 - 358 с.

13. Брылин А.П. Микрофлора легких телят, больных бронхопневмонией, и влияние на нее аэрозоля гентамицина. // Доклады ВАСХНИЛ. 1983. -С. 44-46.

14. Брылин А.П, Микрофлора легких у телят. // Ветеринария. 1986. -№2. - С. 34-38.

15. Васильев B.C. Лечение острой бронхопневмонии телят. // Профилактика и лечение болезней крупного рогатого скота. 1984. - С. 77-81.

16. П.Викторов Д.В., Пивень Н.Н. Активный мембранный транспорт и множественная антибиотикорезистентность бактерий. // Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. 2001. - №3. - С. 3-8.

17. Виноградов Е.Я., Васильев М.Ф., Кусакин И.Н. Лечение бронхопневмонии у телят. // Сборник научных трудов Ленинградского ветеринарного института. 1985. - Т.82. - С. 9-12.

18. Временная инструкция по проведению работ с целью определения сроков годности лекарственных средств на основе метода «ускоренного старения» при повышенной температуре. И 42-2-82. Приказ Минздрава СССР и Минмедпрома № 430/224 от 18.04.83 г.

19. Волков Г.К., Баранников В.Д. Проблема выращивания здорового молодняка. // Ветеринария. 1995. - С. 125-126.

20. Воробьев П.А., Дворецкий Л.И., Желнов В.В. Спутник интерниста. Лабораторная и инструментальная диагностика. М.: Ньюдиамед - АО, 1997. -212 с.

21. Воронин Е.С., Шахов А.Г. Современная концепция этиологии, профилактики и лечения болезней молодняка сельскохозяйственных животных. // Состояние, проблемы и перспективы развития ветеринарной науки России. Москва. - 1999. - Т.1. - С. 209-214.

22. Галушко JI.X. Стабильность комплексных лекарственных форм антибиотиков при различных режимах хранения. // Бюллетень ВНИИ экспериментальной ветеринарии. 1984. - Вып. 54. - С. 62-66.

23. Гамелин О. Актуальность инфекционных респираторных заболеваний у крупного рогатого скота. // Ветеринар. 2002. - №6. - С. 406.

24. Гацура В.Н. Методы первичного фармакологического исследования биологически активных веществ. -М.: Медицина, 1974. С. 5-16, 125, 128.

25. ГОСТ 12.1.007-76 Вредные вещества. Классификация и общие требования безопасности. М.: Издательство стандартов. - 1984. - С. 2.

26. Государственная Фармакопея СССР.- X изд. М.: Медицина, 1968. -С. 951.

27. Государственная Фармакопея СССР. XI изд. - Вып. 1,2.- М.: Медицина, 1998.

28. Данилевский В.М. Бронхопневмонии телят: этиология, патогенез, диагностика, профилактика и лечение. // Ветеринария. 1985. - №1. - С. 1619.

29. Джупина С.И. Респираторные болезни молодняка сельскохозяйственных животных. // Научно-технический бюллетень Всесоюзной академии сельскохозяйственных наук им. В.И. Ленина. Новосибирск. - 1983. - 39 с.

30. ЗГДимов С.К., Сайченко В.И. Ассоциированные эпизоотические процессы у молодняка сельскохозяйственных животных. Новосибирск. - 1997. -С. 58-60.

31. Евглевский А.А., Михалева Т.И. Стебловская С.Ю. Эффективность препаратов при желудочно-кишечных и респираторных болезнях телят. // Повышение продуктивных качеств, улучшение профилактики и лечения животных. Курск. - 2005. - 4.1. - С. 99-100.

32. Егоров Н.С. Основы учения об антибиотиках. М.: Высшая школа, 1979. - 455 с.

33. Ефанова Л.И. Чувствительность микрофлоры, выделенной из трупов телят и поросят, к антибиотикам. // Актуальные проблемы ветеринарной хирургии. Воронеж. - 1997. - С. 101-102.

34. Жамантаев А. Биологические свойства кокковой микрофлоры, выделенной при респираторных болезнях телят. // Профилактика и меры борьбы с инфекционными и незаразными болезнями сельскохозяйственных животных в Казахстане. 1984. - С. 109-116.

35. Инструкция по контролю на механические включения инъекционных лекарственных средств. РД-42-501-98. Москва, 1998.

36. Каган Ю.С. Общая токсикология пестицидов. Киев: Здоров'я,' 1981.-С. 22-25,31-33.

37. Капитонова Е.А., Оспенцева А.С., Кашин А.С. Особенности течения респираторных болезней телят в современных экологических условиях и меры борьбы с ними. // Сибирский вестник сельскохозяйственной науки. 2003. -№3(149).-С. 48-51

38. Карпуть И.М. Рациональное применение антибиотиков в животноводстве. // Ветеринарная наука производству. - 1988. - Т.26. - С. 153-158.

39. Кек Ж, Борн П.М. Новые концепции антибиотикотерапии в ветеринарной медицине. // Ветеринария. 1997. - №7. - С. 56-58.

40. Кивман Г.Я., Рудзит З.А., Яковлев В.П. Фармакокинетика химиоте-рапевтических препаратов. М.: Медицина, 1982. - 256 с.

41. Ковалев В.Ф., Волков И. Б., Виолин Б.В. Антибиотики, сульфаниламиды и нитрофураны в ветеринарии. М.: Агропромиздат, 1988. - 223 с.

42. Ковалев В.Ф., Нечаева JT.A. Резистентность эшерихий и сальмонелл, выделенных в разных регионах страны, к применяемым антибиотикам. // Разработка методов контроля биологических препаратов и диагностических средств. Москва. - 1989. - С. 36-40.

43. Ковалев Н.А., Болтак В.М. Этиологическая роль микоплазм при респираторных заболеваниях телят. // Актуальные проблемы патологии сельскохозяйственных животных. Минск. - 2000. - С. 19-21.

44. Колесова Е.Н., Казанков И.Н. Устойчивость серотипов Е. coli к антибактериальным препаратам. // Инфекционные болезни сельскохозяйственных животных. 1983. - С. 138-139.

45. Колосов А.А. Пастереллез молодняка сельскохозяйственных животных. // Профилактика болезней молодняка. Новосибирск. - 1990. - С. 130133.

46. Кондрацки М., Пиляшек Я. Легочно-суставной синдром у скота на фоне инфекции М. bovis. // Технология получения и выращивания молодняка сельскохозяйственных животных и рыбопосадочного материала. Минск. -1993.-С. 180-181.

47. Кориков П.Н. Этиология и терапия бронхопневмоний телят в комплексе доращивания. // Инфекционные болезни телят. Кишинев. - 1988. - С. 25-31.

48. Костромитинов Н.А. Современное представление о возникновении резистентных штаммов микроорганизмов к химиотерапевтическим препаратам. // Вестник РАСХН. 2001. - №3. - С. 73-76.

49. Криштофорова Б.В. Неонатология телят. // Актуальные проблемы ветеринарии. Барнаул. - 1995. - С. 69-70.

50. Кудлай А.Г., Чубуков В.Ф., Оганесян М.Г. Генетика лекарственной устойчивости бактерий. М.: Медицина, 1972. - 225 с.

51. Ланчини Д., Перенти Ф. Антибиотики: Пер. с англ. М.: Мир, 1985. - 272 с.

52. Лемехов П.А. Болезни органов дыхания у молодняка. // Животновод. 1994. -№ 2-3. - С. 6-8.

53. Лысухо А.С., Полозюк О.Н. Комплексный метод лечения телят, больных бронхопневмонией. // Пути и средства повышения эффективности диагностики и лечебно-профилактических мероприятий при незаразной патологии животных. 1999. - С. 48-50.

54. Малета Ю.С., Тарасов В.В. Математические методы статистического анализа в биологии и медицине. М.: Московский университет - 1982. -170 с.

55. Марантиди А.Г. Диагностика, лечение и профилактика неспецифической бронхопневмонии телят в промышленных комплексах. Москва. -1984.- 16 с.

56. Марасинская Е.И., Фролова Л.В. Основные возбудители бактериальных инфекций и их чувствительность к антибиотикам. // Перспективы развития регионов России в XXI в. Ижевск. - 2002. - Т.1. - С. 143-144.

57. Масимов Н.А. Интенсивность эпизоотического процесса при респираторных инфекциях телят. // Проблемы лейкоза и инфекционных заболеваний сельскохозяйственных животных. М. - 1988. - С. 96-97.

58. Масимов Н.А., Есепенок В.А., Владимирова В.А. Выделение пастерелл и стрептококков при смешанных респираторных инфекциях телят. // Использование физиологических и биологических факторов в ветеринарии и животноводстве. 1992. - С. 55.

59. Мастыко Г.С., Веремей Э.С. Перспективы и методика применения антибиотиков. // Ветеринария. 1984. - №1. - С. 63-64.

60. Мейнелл Г. Бактериальные плазмиды. М.: Мир, 1981. - С. 184-185.

61. Мирошниченко И.И. Основы фармакокинетики. М.: Гэотар-Мед, 2002.-С. 117-120.

62. Мозгов И.Е. Антибиотики в ветеринарии. М.: Колос, 1971. - 288 с.

63. Молчанов М.В., Берлиозова Е.Ф. Приемы повышения сохранности новорожденных телят. // Зоотехния. -1991. №9. - С. 41-43.

64. Навашин С.М., Сазыкин Ю.О. Молекулярные основы современной антибиотикотерапии. // Антибиотики и химиотерапия. 1988. - №1. - С. 3-12.

65. Навашин С.М., Фомина И.П. Рациональная антибиотикотерапия. -М.: Медицина, 1982.-496 с.

66. Новых А.А., Новых Н.Н., Харченко Ю.М. К вопросу диагностики ассоциативных инфекций. // Диагностика, профилактика и лечение заболеваний сельскохозяйственных животных. Ставрополь. - 1996 (1997). - С. 43-45.

67. Ноздрин Г.А., Леляк А.И. Пути решения проблемы лекарственной устойчивости микроорганизмов к антибиотикам. // Ветеринария Сибири. -1999,-№2. С. 23-25.

68. Палунина В.В. Роль кокковой микрофлоры в этиологии и патогенезе пневмонии поросят и разработка средств борьбы с ними. Воронеж.- 1988. -24 с.

69. Парфенов И.С. Рациональные лекарственные формы антибиотиков при болезнях молодняка. // Труды ВИЭВ Всесоюзного института экспериментальной ветеринарии. - 1983. - Т.58. - С. 120-130.

70. Пахомов Г. Бронхопневмония молодняка сельскохозяйственных животных. // Ветеринарный вестник. 1996. - №2. - С.5.

71. Пашилов Н.А., Зоткин Г.В. Смешанное проявление инфекционного ринотрахеита и пастереллеза у телят. // Профилактика и лечение инфекционных и инвазионных заболеваний сельскохозяйственных животных в условиях Нечерноземья. 1987. - С. 5-7.

72. Писаренко Н.И., Шегидевич Э.А. Роль пастерелл при респираторной патологии ягнят в хозяйствах Ставропольского края. // Диагностика, профилактика и лечение болезней сельскохозяйственных животных в зоне Северного Кавказа. 1984. - С. 68-73.

73. Полюс М, Гранжан Б. Вспышка респираторной инфекции в стаде молочного крупного рогатого скота. // Ветеринар. 2003. - №5. - С. 4-5.

74. Полюс М, Гранжан Б. Респираторная инфекция в стаде молочных коров наносит серьезный экономический ущерб. // Главный зоотехник. -2004. №3. - С. 54-55.

75. Рабинович М.И. Влияние ряда лекарств на основные показатели крови. // Ветеринария. 1998. - № 10. - С. 43-46.

76. Рабинович М.И. Несовместимость лекарственных веществ. // Ветеринария. 1990. - №10. - С. 50-57.

77. Рабинович М.И. Особенности комбинированного применения ряда химиотерапевтических средств. // Ветеринария. -1991. №7. - С. 59-67.

78. Рабинович М.И. Химиотерапевтические средства: справочник. М.: Колос, 2004.- 190 с.

79. Равилов А.З., Гаффаров Х.З. Клинико-эпизоотологические особенности и специфическая профилактика смешанных форм респираторных инфекций телят. // Труды Второго съезда ветеринарных врачей Республики Татарстан. Казань. - 2001. - С. 121-133.

80. Руководство по экспериментальному (доклиническому) изучению новых фармакологических веществ. М.: Ремедиум, 2000. - С. 18-24.

81. Садиков В.Е. Профилактика инфекционных болезней крупного рогатого скота. М.: Россельхозиздат, 1982. - С. 124-135.

82. Сахацкий И.М. Внутрилегочное введение антибиотиков при бронхопневмонии телят. // Ветеринария. 1989. - Т.5. - С. 59-60.

83. Селиванов А.С., Морозов А.П., Ковалев В.Ф. Антибиотики для практики. // Ветеринария. 1984. - №4. - С. 53-56.

84. Сидоренко С.В. Теоретические и практические аспекты проблемы антибиотикорезистентности. // Антибиотики и химиотерапия. 1992. - №9. -С. 44-47.

85. Сидоров И.В. Комплексные химиотерапевтические препараты для лечения и профилактики болезней молодняка сельскохозяйственных животных. Троицк. - 1996. - С. 81-83.

86. Сидоров И.В. Современные средства химиотерапии заболеваний молодняка сельскохозяйственных животных. // Экологические проблемы патологии, фармакологии и терапии животных. Воронеж. - 1997. - С. 25-28.

87. Слацина JI. Здоровье и заболеваемость телят в промышленном производстве. Минск: Ураджай, 1982. - С. 51-52.

88. Страчунский J1.C., Белоусов Ю.Б., Козлов С.Н. Механизмы резистентности микроорганизмов. // Практическое руководство по антиинфекционной терапии.- НИИАХ СГМА, 2000-2006. Сайт Интернета http://www.iacmac.ru.

89. Сулейманов С.М., Бацула П.И. Комплексная система профилактики респираторных болезней телят. // Ветеринария. 1988. - №6.- С. 52-54.

90. Тамошкин Д.А., Сотников В.В., Сотников М.Б. Антибиотикотери-пия в ветеринарии. // Материалы Девятого Московского международного ветеринарного конгресса. М. - 2001. - С. 209-213.

91. Татарчук О.П. Новые тенденции антибиотикотерапии. // Ветеринария. 2004. - №12. - С. 12-14.

92. Теришин И.М. Пути преодоления антибиотикорезистентности. JL: Медицина, 1978. - 123 с.

93. Толяронок Г.Э., Лях Ю.Г. Чувствительность возбудителей бактериальных инфекций животных к антибиотикам и обоснованность их комбинированного применения. // Ветеринарная медицина Беларуси. 2003. - №4-5.-С. 14-18.

94. Торубаров А.А. Опыт лечения телят, больных неспецифической бронхопневмонией. // Проблемы межклеточного обмена электролитов, бел-ково-минерального питания и резистентности животных. Курск. - 1998. - С. 10-11.

95. Тэрыцэ И.Н., Тэрыцэ Ю.И. Определение срока включения антибиотиков в комплекс лечения телят, больных бронхопневмонией. // Профилактика и меры борьбы с болезнями молодняка сельскохозяйственных животных. Минск. - 1990. - С. 119-120.

96. Урбан В.П., Найменов И.Л. Болезни молодняка в промышленном животноводстве. М.: Колос, 1984. - С. 163-165.

97. Ухин А.В. Принципы антибиотикотерапии в пульмонологии.// Антибиотики и антибиотикотерапия. 1992. - Т.37. - №5. - С. 46-51.

98. Федюк В.И. Опыт комплексной терапии больных бронхопневмонией телят. // Ветеринария. 1985. - Т.9. - С. 54-55.

99. Фельдман И.И., Шадрина М.Н. Этиология и профилактика энзоотической бронхопневмонии телят. // Инфекционные болезни сельскохозяйственных животных. 1983. - С. 64-66.

100. Франклин Т., Сноу Д. Биохимия антимикробного действия.- М.: Мир, 1984.-238 с.

101. Шахбанов А. Чувствительность микроорганизмов к антибиотикам и влияние последних на ультраструктуру бактерий. // Сборник научных трудов Дагестанского научно-исследовательского института. 1984. - Т. 15. -С. 17-21.

102. Шахов А.Г. Актуальные проблемы болезней молодняка в современных условиях. // Этиология и профилактика желудочных и респираторных болезней. Воронеж. - 2002. - С. 3-4.

103. Шахов А.Г., Сулейманов С.М. Этиология, терапия и профилактика болезней молодняка сельскохозяйственных животных. Воронеж. - 1995. -С. 9-17.

104. Шендеров Б.А. Антимикробные препараты и нормальная микрофлора. Проблемы и возможные пути их решения. // Антибиотики и химиотерапия. 1988. - №12. - С. 921-926.

105. Шимко В.В., Дмитраченко Г.Н., Скибо В.Н., Иванова З.Н. Анти-биотикорезистентность условно-патогенных бактерий. // Ветеринарная наука производству. - 1998. - Вып. 33. - С. 103-108.

106. Шимко В.В., Скибо В.Н., Иванова З.Н. Антибиотикорезистент-ность микроорганизмов возбудителей пневмонии молодняка крупного рогатого скота и свиней. //Наука-производству. - Гродно. - 1996. - С. 138-139.

107. Шошиева JI.H., Орлова Г.М., Макаровская Л.Н. Антибиотикочув-ствительность и химические структуры бактериальной клетки. // Антибиотики. 1980. - №6. - С. 468-474.

108. Юров К.П. Болезни телят и их профилактика. // Состояние, проблемы и перспективы развития ветеринарной науки России. Москва. - 1999. -С. 214-216.

109. Яковлев С.В. Микробиологические и фармакодинамические факторы, определяющие клинический эффект антибиотикотерапии. // Антибиотики и химиотерапия. 1999. - № 5. - Стр. 3-5.

110. Allewelt М., Schuler P., Bolcskei P.L. Ampicillin + sulbactam vs clindamycin + cefalosporin for the treatment of aspiration pneumonia and primary lung abscess. // Clin. Microbiol. Infect. 2004. - 10 (2): 163-70.

111. Anon. Therapy of calf pneumonia. // Irish Veter. News. 1990. - V. 12.-№.4.-P. 1-6.

112. Austin M.N., Beigi R.H., Meyn L.A. Microbiologic response to treatment of bacterial vaginosis with topical clindamycin or metronidazole. // J. Clin. Microbiol. 2005. - 43 (9): 4492-7.

113. Ball A.P. Clindamycin in the 1980s. // J. of Antimicrobial Chemotherapy. -1981. №7. - P. 81-84.

114. Barragry T. Antibiotics in veterinary practice. // Irish Veter. News. -1992.-Vol. 14. -№. 10.-P. 27-41.

115. Barza M., Guiliano M., Jacobus N.V., Gorbach S.L. Effects of broad-spectrum parenteral antibiotics on "Colonization resistance" of intestinal microflora of humans. // Antimicr. Agents Chemother. 1987. - №.31. - P. 723727.

116. Batzias G.C., Delis G.A. A new HPLC/UV method for the determination of clindamycin in dog blood serum. // J. Pharm. Biomed. Anal. 2004. - 35 (3): 545-54.

117. Behra-Miellet J., Dubreuil L., Jumas-Bilak E. Antianaerobic activity of moxifloxacin, clindamycin, metronidazole and beta-lactams. // Int. J. Antim-icrob. Agents. 2002. - 20 (5): 366-74.

118. Berg J.N., et al. Clinical models for anaerobic bacteria: Infections in dogs and their use in testing of efficacy of clindamycin and lincomycin. // Am. J. Vet. Res. 1992.- 45: 1299.

119. Bisno A.L., Stevens D.L. Streptococcal infections of skin and soft tissue. // N. Engl. J. Med. 1996. - 334: 240-245.

120. Blais J., Tardif C., Chamberland S. Effects of clindamycin on intracellular replication, protein syntesis, and infectivity of Toxoplasma gondii. // Antim-icrob. Agents Chemother. 1993. - 37 (12): 2571-7.

121. Boriello S.P., Carman R.J. Association of iota-toxin and Clostridium spiroforme with both spontaneous and antibiotic-associated diarrhea and colitis in rabbits. //J. Clin. Microbiol. 1983. - 17: 414.

122. Braden T.D., Johnson C.A., Gabel C.L., et al. Posologic evaluation of clindamycin, using a canine model of posttraumatic osteomyelitis in dogs. // Am. J. Vet. Res. 1978.-48 (7): 1101-5.

123. Braden T.D. Wakenell P. Efficasy of clindamycin in the treatment of Staphylococcus aureus osteomyelitis in dogs. // J. Am. Vet. Med. Assoc. 1988. -192(12).-P. 1721-1725.

124. Brown M.B., Barza M., Brusch J.L. et al. Pharmacokinetics of lincomycin and clindamycin phosphate in a canine model. // J. Infect. Dis. 1975. -131(3): 252-60.

125. Brown S.A., Dieringer T.M., Hunter R.P. et al. Oral clindamycin disposition after single and multiple doses in normal cats. // J. Vet. Pharm. Ther. -1989.- 12:209-16.

126. Brown S.A. et al. Tissue concentrations of clindamycin after multiple oral doses in normal cats. // J. Vet. Pharmacol. Ther. 1990. - 13: 270.

127. Budsberg S.C., Kemp D.T., Wolski N. Pharmacokinetics of clindamycin phosphate in dogs after single intravenous and intramuscular administrations. // Am. J. Vet. Res. 1992. - 53 (12): 2333-6.

128. Burrows G.F. Pharmacotherapeutics of macrolides, lincomycin and spectinomycin. // J. Am. Vet. Med. Ass. 1980. - V.176. - P. 1072-1077.

129. Chin A., Gill M.A., Ito M.K. Evaluation of two different clindamycin dosage regimens. // Ther. Drug Monit. 1989. - 11: 421-424.

130. Cook B. Successful treatment of an outbreak of Salmonella dublin infection in calves using spectinomycin. // Vet. Rec. 1973. - 93: 80.

131. Craig W. Pharmacodynamics of antimicrobal agents as a basis for determining dosage regimens. // Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. Supp. 1993. -1:6-8.

132. Creen G.G. et al. Clindamycin for treatment of Toxoplasma polymyositis in a dog. //J. Am. Vet. Med. Assoc. -1985. 17: 631.

133. Debremaeker D., Adams E., Nadal E., Van Hove B. Analysis of spectinomycin by liquid chromatography with pulsed electrochemical detection. // J. Chromotogr. A. 2002. - 953 (1-2): 123-32.

134. Drinkovic D., Fuller E.R. Shore K.P. Clindamycin treatment of Staphylococcus aureus expressing inducible clindamycin resistance. // J. Antim-icrob. Chemother. -2001.-48 (2): 315-6.

135. Dufour-Gesbert F., Dhelly A., Marois C., Kempf I. Epidemiological study on Mycoplasma synoviae infection in layers. // Vet. Microbiol. 2006. - 114 (1-2): 148-54.

136. Ebert S.C., Craig W.A. Pharmacodynamic properties of antibiotics: Application to drug monitoring and dosage regimen design. // Infect. Control Hosp. Epidemiol. 1990. - 6: 319-326.

137. Eliopoulos G.M., Eliopoulos C.T. Antibiotic Combinations: Should They Be Tested? // Clinical Microbiology Reviews. 1988. - Vol.1. - №.2. - P. 139-156.

138. El-Sayed M.G., el-Aziz M.I. Serum concentrations and tissue residues of spectinomycin in chickens. // Dutch Tierarztl. Wochenschr. 1995. - 102 (11): 446-50.

139. European Pharmacopoeia. 4,h Edition, 2002. - P. 941, 1942.

140. Fass R.J., Sholand J.F., Hodges G.R. et al. Clindamycin in the treatment of anaerobic infections. // Ann. Intern. Med. 1973.- 78: 853-859.

141. Flaherty J.F., Rodoni L.C., Guglielmo J., et al. Comparative pharmacokinetics and serum inhibitory activity of clindamycin in different dosage regimens. // Antimicrob. Agents. Chemother. 1988. - 32: 1825-1829.

142. Fogarty U., Quinn P.J., Hannan J. A new look at factors predisposing to enzootic pneumonia in calves. // Irish Veter. News. 1988. - V. 10. - №3. - P. 11-15.

143. Frank A.L., Marcinak J.F., Mangat P.D. Clindamycin treatment of methicillin-resistant Staphylococccus aureus infections in children. // Pediatr. Infect. Dis. J.-2002.-21 (6): 530-4.

144. Freed M., Clarke J.P., Bowersock T.L., et al. Effect of spectinomycin on Escherichia coli infection in 1-day-old ducklings. // Avian Dis. 1993. - 37: 763-6.

145. Friedland I.R., McCracen G.H. Management of infections caused by antibiotic-resistant Streptococcus pneumoniae. // N. Engl. J. Med. 1994. - 331: 337-382.

146. From the Centers for Disease Control and Prevention. Update on spectinomycin availability in the United States. / JAMA. 2001. - 286 (11): 13089.

147. Genetzky R., Zeman D., Miskimins D., et al. Intravenous spectinomy-cin-associated deaths in feedlot cattle. // J. Vet. Diagn. Invest. 1994. - 5: 266-9.

148. Gerding D.N. Clindamycin, cephalosporins, fluorquinolines, and Clostridium difficile-associated diarrhea: this is an antimicrobial resistance problem. // Clin. Infect. Dis. 2004. - 38 (5): 646-8.

149. Gobbi L., Quintavalla F. Clinical pharmacokinetics of linco-spectin steril solution in calves. // Clinica Medica Veterinaria. 1990. - P. 435-441.

150. Goren E., et al. Therapeutic efficacy of medicating drinking water with spectinomycin and lincomycin-spectinomycin in experimental Escherichia coli infection in poultry. //Vet. Q. 1988. - 10: 191.

151. Gourlay R.N., Thomas L.H., Wyld S.G. Experimental Pasteurella multocida pneumonia in calves. // Res. In Veter. Sc. 1989. - V.47. - №2. - P. 185189.

152. Green C.E., Lappin M.R., Marks A. Effect of clindamycin on clinical, hematological and biochemical parameters in clinically healthy cats. // J. Am. Anim. Hosp. Assoc. 1992. - 28: 232-6.

153. Greenwood D. Bacterial resistance to antibiotics. // Pig Veter. J. -1999.- V.24. P.38-46.

154. Harvey R.G., Noble W.C., Ferguson E.A. A comparation of lincomy-cin hydrochloride and clindamycin hydrochloride in the treatment of superficial pyoderma in dogs. // Clin. Infect. Dis. 1993. - 132: 351-3.

155. Havari J., Lincoln J. Pharmacologic features of clindamycin in dogs and cats. // J. Am. Vet. Med. Assoc. 1989. - 195 (1): 124-5.

156. Holloway W.T. Spectinomycin. // Med. Clin. North Am. 1982. - 66 (1).-P. 169-172.

157. Houghton S.B., Gourlay R.N. Synergism between Mycoplasma bovis and Pasteurella haemolytica in Calf pneumonia. // Veterinary Record. 1983. -V.l 13. - P. 41-42.

158. Humdy A.H. Therapeutic effects of lincomycin and spectinomycin water medication on swine dysentery. // Canadian J. of Comparative Medicine. -1974.-V.38.-P. 1-6.

159. Jenkins W.L. Clinical pharmacology of antibacterials used in bacterial bronchopneumonia in cattle. //Mod. Vet. Pract. 1985. - 66: 264-8.

160. Jones R.N., Cormican M.G., Wanger A. Clindamycin resistance among erythromycin-resistant Streptococcus pneumoniae. // Diagn. Microbiol. Infect. Dis.- 1996.-25:201-204.

161. Kehrenberg C., Schwarz S., Jacobsen L. A new mechanism for chloramphenicol, florfenicol and clindamycin resistance: methylation of 23S ribo-somal RNA at A2503. // Mol. Microbiol. 2005. - 57 (4): 1064-73.

162. Klein N.C., Cunha B.A. New uses of older antibiotics. // Med. Clin. North Am. 2001. - 85 (1): 125-32.

163. Ksiezyk M., Danek A. Studies on absorbtion and elimination of drugs. // Int. J. Clin. Pharmacol. Therap. Toxicol. 1973. - №8. - P. 222-227.

164. Kusumi R., Metzler C. Pharmacokinetics of spectinomycin in volunteers with renal insufficiency. // Chemotherapy. -1981. №27. - P. 95-98.

165. Lammintausta K., Tokola R., Kalimo K. Cutaneous adverse reactions to clindamycin: results of skin tests and oral exposure. // British J. of Dermatology. 2001. - V.146. - P. 643-648.

166. Lappin M.R., Green C.E., Winston S. et al. Clinical feline toxoplasmosis. // J. Vet. Int. Med. 1989. - 3 (3): 139-43.

167. LaRosa S.P., Tomecki K.J. Antibiotics: what is new? // Cutis. 2004. -73 (5 Suppl.): 10-4.

168. Lavy E., Ziv G., Shem-Tov E., Glickman A. Pharmacokinetics of clindamycin HC1 administered intravenously, intramusculary and subcutaneously to dogs. //J. Vet. Pharmacol. Therap. 1999. - V.22. - P. 261-265.

169. Leclerc R., Courvalin P. Bacterial resistance to macrolide, linco-samide and streptogramin antibiotics by target modification. // Antimicrob. Agents Chemother. 1991. - 35: 1267-1272.

170. Lewis R.E., Klepser M.E. Update on clindamycin: New Pharmacokinetic and Pharmacodynamic Data. // Infect. Med. 1998. - 15 (10). - P. 726-731.

171. Lincosamides Veterinary—Systemic. // USP DI Drugs for Animal Use 1. Micromedex, Inc., 2000. - Сайт Интернета www.usp.org/frameset.htm.

172. Majers J.D., Mason S.J. Lincomycin-associated enterocolitis in rabbits. // J. Am. Vet. Med. Assoc. 1984. - 185 (6): 670-2.

173. Marr J.K., Lim A.T., Yamamoto L.G. Erythromycin-indused resistance to clindamycin in Staphylococcus aureus. // Hawai Med. J. 2005. - 64 (1): 6-8.

174. Merrigan M.M., Sambol S.P., Johnson S. Prevention of fatal Clostridium difficile-associated disease during continuous administration of clindamycin in hamsters. //J. Infect. Disease. 2003. - 188 (12): 1922-7.

175. Nicholas R.A., Ayling R.D. Mycoplasma bovis: disease, diagnosis and control. // Res. Vet. Sci. 2003. - 74 (2): 105-12.

176. Nichols D.J., Bye A., Novak E. Pharmacokinetics of trospectinomycin sulphate in healthy subjects after single intravenous and intramuscular doses. // Br. J. Clin. Pharmacol. 1991.-32 (2): 255-7.

177. Noren Т., Tang-Feldman Y.J., Cohen S.H. Clindamycin resistant strains of Clostridium difficile isolated from cases of C. difficile associated diarrhea (CDAD) in a hospital in Sweden. // Diagn. Microbiol. Infect. Dis. 2002. - 42 (2): 149-51.

178. Novak E. et al. Human safety and pharmacokinetics of a single intramuscular dose of a novel spectinomycin analog, trospectomycin. // Antimicrob. Agents Chemother. 1990. - 34: 2342.

179. Panzer J.D., Brown D.C. Clindamycin levels in various body tissues and fluids. //J. of Clinical Pharm. 1972. - №12. - P. 259-262.

180. Peterson J.L., Willard M.D., Less G.E., et al. Toxoplasmosis in two cats with inflammatory intrstinal disease. // J. Am. Vet. Med. Assoc. -1991.-199 (4): 473-6.

181. Phillips I., Warren C. Sysceptibility of Bacteroides fragilis to spectinomycin. // J. Antimicrob. Chemother. 1975. - №1. - P. 91-95.

182. Plaisance K.I., Drusano G.L., Forrest A. et. al. Pharmacokinetic evaluation of two dosage regimens of clindamycin phosphate. // Antimicrob. Agents Chemother. 1989. - 33: 618-620.

183. Poumarat F., Le Grand D. et al. Efficasy of spectinomycin against Mycoplasma bovis indused pneumonia in conventionally reared calves. // Veter. Microbiol. 2001. - V.80. - Iss.l. - P. 23-35.

184. Prescott J.F., Baggot J.D., editors. Antimicrobial therapy in veterinary medicine. Ames, IA: Iowa State University Press, 1993. - P. 87-89.

185. Raisbeck M.F., Holt G.R. Lincomycin associated enterocolitis in horses. // J. Am. Vet. Med. Assoc. 1984. - 185 (6): 670-2.

186. Rasmussen F. Tissue damage at the ingection site after intramuscular ingection of drugs in food-producting animals. // Trends in veterinary pharmacology and toxicology. Amsterdam.: Elsevier Scientific Publishers, 1980. - P. 230237.

187. Rich M., Deighton L., Roberts L. Clindamycin-resistant Staphylococcus aureus isolated from animals. // Vet. Microbiol. 2005. - 111 (3-4): 237-40.

188. Rosenblatt J.E., Gerdts A.M. Activity of spectinomycin against anaerobes. // Antimicrob. Agents Chemother. 1977. - №12. - P.37-39.

189. Rovers J.P., Hersich A.L., Einarson T.R. Meta-analysis of parental clindamycin dosing regimens. // Ann. Pharmacother. 1995. - 29: 852-858.

190. Schwarz S. et al. In vitro activities of spectinomycin and comparator agents against Pasteurella multocida and Mannheimia haemolitica from respiratory tract infections of cattle. // J. of Antimicr. Therap. 2004. - №53. - P. 379-382.

191. Scott D.W., Beningo K.E. et al. Efficasy of clindamycin hydrochloride capsules for the treatment of deep pyoderma due to Staphylococcus intermedius infection in dogs. // Canad. Veter. J. 1998. - V.39. - №.12. - P. 753-756.

192. Spectinomycin. Veterinary-Systemic. // USP DI. Drugs for Animal Use 1. Micromedex, 2000. - Сайт Интернета www.usp.org.

193. Spizek J., Resanka T. Lincomycin, clindamycin and their applications. // Appl. Microbiol. Biotechnol. 2004. - 64 (4): 455-64.

194. Staempfli J.R., Prescott J.F., Brash M.L. Lincomycin indused severe colitis in ponies: association with Clostridium cadaveris. // Can. J. Vet. Res. -1992.- 56 (2): 168-9.

195. Stevens D.L., Bryant A.E., Yan S. Invasive group A streptococcal infection: New concepts in antibiotic treatment. // Int. J. Antimicrob. Agents. 1994. - №4. - P. 297-301.

196. Swenson G.H., Barbiers A.R. The distribution and depletion of lincomycin in swine following parenteral administration. International Pig Veterinary Society Proceedings. - 4th ed. - 1976. - V.5. - P. 301-303.

197. Swenson G.H., Vanhemelrijck J. Parenteral therapy of respiratory disease in calves with lincomycin-spectinomycin antibiotic combination. // Proceedings. 1982. - V.l. - P. 104-108.

198. Thilstead J.P., Newton W.M., Crandell R.A. Fatal diarrhea in rabbits resulting from the feeding of antibiotic-contaminated feed. // J. Am. Vet. Med. Assoc. 1981.- 179 (4): 360-2.

199. Thomas L.H., Howard C.J. Stoff E.J. Mycoplasma bovis Infection in Gnobiotic Calves and Combined Infection with Respiratory Syncytial Virus. // Vet. Pathol. 1986.-23:253-258.

200. Townsend R.J., Baker R. Pharmacokinetic comparation of three clindamycin phosphate dosage schedules. // Drug Intell. Clin. Pharm. 1987. - 21: 279-281.

201. Venning C.M., Curtis M.A., Egerton J.R. Treatment of virulent footrot with lincomycin and spectinomycin. // Aust. Vet. J. 1990. - 67 (6): 258-60.

202. Veringa E.M., Verhoef J. Clindamycin subinhibitory concentrations enhances antobody and complement-depend phagocytosis by human polymorphonuclear leukocytes of Staphylococcus aureus. // Chemotherapy. - 1987. - 33: 243-249.

203. Vomand K.C., Sumano H. Adverse drug reactions in cattle. // J. Am. Vet. Med. Assoc. 1990. - 197 (7): 899-905.

204. Weber D.J., Barbiers A.R. Lallinger A.R. Pharmacokinetics of clindamycin following subcutaneous administration of clindamycin phosphate in the canine. //J. Vet. Pharmacol. Therap. 1980. - №.3. - P. 133-143.

205. Weingarten-Arams J., Adam H.M. Clindamycin. // Pediatr. Rev.2002.-23 (4): 149-50.

206. Wittmann S., Arit M., Rothe G. Differential effects of clindamycin on neutrophilis of healthy donors and septic patients. // Int. Immunopharmacol. -2004. 4 (7): 929-37.

207. Woodward K. Spectinomycin. // Veterinary Medicines Directorate. -Ministry of agriculture, Fisheries and Food. UK, 2000. - Сайт Интернета www.inchem.org.

208. Wynalda M.A., Hutzler J.M., Koets M.D., Podoll T. In vitro metabolism of clindamycin in human live intestinal microsomes. // Drug Metab. Dispos.2003.-31 (7): 878-87.

209. Ye Y.R., Bektic E. Simultaneous determination of tretinoin and clindamycin phosphate and their degradation products in topical formulations by reverse phase HPLC. // J. Sep. Sci. 2004. - 27 (1-2): 71-7.

210. Yoshimura H., Takagi M., Ishimura M. Comparative in vitro activity of 16 antimicrobial agents against Actinobacillus pleuropneumoniae. // Vet. Res. Commun.-2002.-26(1): 11-9.

211. Ziv G., Sulman F.G. Binding of antibiotics to bovine and ovine serum. // Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 1972. - 2 (3). - P. 206-213.

212. Ziv G., Sulman F.G. Serum and milk concentrations of spectinomycin and tylosin in cows and ewes. // Am. J. Vet. Res. 1973. - 34 (3). - P. 329-333.

213. Zurenco G.E., Ford C.W., Novak E. Trospectomycin, a novel spectinomycin analogue: antibacterial activity and preliminary human pharmacokinetics. // Drugs Exp. Clin. Res. 1988. - 14 (6): 403-9.

214. Zurenco G.E., Yagi B.H., Varva J.J. In vitro antibacterial activity of trospectin, a novel spectinomycin antibiotic analog. // Antimicrob. Agents. Chemother. 1988. - №32. - P. 216-223.