Автореферат и диссертация по медицине (14.00.30) на тему:Вирусологический мониторинг как ключевой элемент контроля выполнения в Российской Федерации программы ликвидации полиомиелита

ДИССЕРТАЦИЯ
Вирусологический мониторинг как ключевой элемент контроля выполнения в Российской Федерации программы ликвидации полиомиелита - диссертация, тема по медицине
АВТОРЕФЕРАТ
Вирусологический мониторинг как ключевой элемент контроля выполнения в Российской Федерации программы ликвидации полиомиелита - тема автореферата по медицине
Иванова, Ольга Евгеньевна Москва 2009 г.
Ученая степень
доктора медицинских наук
ВАК РФ
14.00.30
 
 

Автореферат диссертации по медицине на тему Вирусологический мониторинг как ключевой элемент контроля выполнения в Российской Федерации программы ликвидации полиомиелита

Иванова Ольга Евгеньевна

Вирусологический мониторинг как ключевой элемент контроля выполнения в Российской Федерации программы ликвидации полиомиелита

03.00.06 - вирусология 14.00.30 - эпидемиология

Автореферат диссертации на соискааие ученой степени доктора медицинских наук

Москва-2009

003477999

Иванова Ольга Евгеньевна

Вирусологический мониторинг как ключевой элемент контроля выполнения в Российской Федерации программы ликвидации полиомиелита

03.00.06 - вирусология 14.00.30 - эпидемиология

Автореферат диссертации на соискание ученой степени доктора медицинских наук

Москва-2009

Работа выполнена в Учреждении Российской академии медицинских наук Институт полиомиелита и вирусных энцефалитов имени М.П.Чумакова РАМН.

Научный консультант:

Официальные оппоненты:

доктор медицинских наук, профессор, академик РАМН Дроздов Сергей Григорьевич

доктор медицинских наук, профессор, академик РАМН Семёнов Борис Фёдорович

доктор медицинских наук, профессор,

Карпович Лидия Григорьевна

доктор биологических наук, профессор

Тихонова Нина Тимофеевна

Ведущая организация: ФГУН «Санкт-Петербургский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии имени Пастера» Роспотребнадзора

Защита состоится «22> 2009 г. в часов &йлинут на

заседании диссертационного совета Д.001.026.01 при Институте полиомиелита и вирусных энцефалитов им.М.П.Чумакова РАМН по адресу: 142782, Московская область, п/о Институт полиомиелита.

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке Учреждения Российской академии медицинских наук Институт полиомиелита и вирусных энцефалитов имени М.П.Чумакова РАМН.

Автореферат разослан

Ученый секретарь диссертационного совета кандидат биологических наук

2009 г.

Медведкина О. А.

Общая характеристика работы Актуальность проблемы. XX век был ознаменован фундаментальными открытиями в области биологии и медицины, которые предоставили новые возможности для всестороннего изучения, диагностики, терапии и предупреждения инфекционных заболеваний. Впечатляющим итогом борьбы с инфекциями стала успешное завершение в 1980 г. Программы Всемирной Организации Здравоохранения (ВОЗ) по ликвидации оспы. В 1988 г. Всемирная Ассамблея Здравоохранения приняла решение о глобальной ликвидации полиомиелита (Resolution WHA 41.28. WHO, 1988), а страны-члены ВОЗ, в том числе Российская Федерация (РФ), приступили к его выполнению. Так как вирус полиомиелита (полиовирус, ПВ) вызывает клинически выраженное заболевание только у незначительного числа инфицированных, критерием ликвидации полиомиелита является ликвидация дикого ПВ. Поэтому для реализации программы ликвидации полиомиелита было необходимо создание и практическое внедрение чувствительной, достоверной, максимально полной системы вирусологического подтверждения отсутствия а) случаев заболевания, вызванных диким ПВ, и б) дикого ПВ в любых возможных материалах (клинических пробах, пробах из объектов окружающей среды). Учитывая глобальный характер программы, система должна отвечать таким требованиям, как стандартность используемых реагентов, диагностических методов, систем и лабораторных процедур, скорость выполнения исследований, возможность анализа и оценки получаемых результатов экспертами ВОЗ.

Для максимально полного слежения за ПВ стратегия ВОЗ основывается не на клинической диагностике, как это было при ликвидации оспы, а на эпидемиологическом надзоре за заболеваниями с синдромом острого вялого паралича (ОВП). Этот вид надзора является менее специфическим, но, при соблюдении необходимых критериев (выявление не менее 1 случая ОВП на 100 тыс. детей в возрасте до 15 лет) более чувствительным (de Quadros et а!., 1997; Aylward et al., 2000). Так как заболевание с синдромом ОВП может быть следствием многих причин - инфицирования ПВ, неполиомиелитными

энтеровирусами (НПЭВ), другими нейротропиыми вирусами, бактериальными и паразитарными организмами, воздействия токсинов, травматических поражений и т.д. (Marx et al., 2000), каждый случай ОВП должен быть вирусологически исследован для установления этиологии заболевания. Если данные надзора за ОВП в течение 3-х лет подтверждают отсутствие дикого ПВ на определённой территории (регионе, стране), то ВОЗ рассматривает их как доказательство прекращения циркуляции на этой территории.

Национальная программа ликвидации полиомиелита РФ, принятая в 1996 г. (Приказ МЗ РФ № 336/142, 1996), явилась частью Европейской региональной и Глобальной программы ликвидации этого заболевания. К этому времени в РФ проблема полиомиелита как инфекционного заболевания, поражающего ежегодно сотни тысяч детей, была практически решена благодаря массовой вакцинации с помощью оральной полиовирусной вакцины (ОПВ). В 1990-94 гг. ежегодно регистрировали от 3 до 17 случаев паралитического полиомиелита, показатель заболеваемости на 100 тыс. не превышал 0,01-0,05 (Онищенко и др., 2008). Однако политические и социальные изменения, произошедшие в странах, прежде объединённых в составе СССР, привели к разрушению системы вакцинопрофилактики и негативно отразились на ситуации с полиомиелитом. В 1994-95 гг. на долю бывших республик СССР (Таджикистан, Узбекистан, Украина, Азербайджан, Туркменистан) приходилось более 80% случаев полиомиелита в Европейском регионе ВОЗ (Королёва и др., 1993; Sutter et al., 1997; Oblapenko and Sutter, 1997). Методы лабораторной диагностики полиомиелита были достаточно хорошо разработаны и внедрены в практику ещё в 60-70-х гг. XX века, однако системы вирусологического мониторинга ПВ, предназначенной не только для вирусологических исследований заболеваний с типичными клиническими проявлениями, а для выявления и характеристики всех циркулирующих ПВ, в РФ не существовало.

Поэтому целью данной работы явилось создание системы вирусологического мониторинга ПВ, способной решать задачи программы

ликвидации полиомиелита в РФ, а, следовательно, региональной и глобальной

программ ВОЗ.

В задачи работы входило:

1.Внедрить в РФ предложенный ВОЗ алгоритм вирусологического исследования материалов, полученных при выполнении эпидемиологического надзора за полиомиелитом и ОВП.

2.Проводить в Национальной лаборатории по диагностике полиомиелита (НЛ) в ИПВЭ им.М.П.Чумакова РАМН вирусологические исследования всех материалов, собранных при выполнении программы ликвидации полиомиелита в РФ.

3.Создать в НЛ базу для обеспечения вирусологических лабораторий РФ, участвующих в реализации Программы ликвидации полиомиелита, референс-материалами (культурами клеток, вакцинными штаммами Сэбина, диагностическими и тестовыми материалами и т.д.), необходимыми для проведения вирусологических исследований.

4. Проводить координационное и методическое руководство вирусологическими лабораториями РФ, участвующими в реализации Программы ликвидации полиомиелита, разработать предложения для совершенствования надзора за ПВ в РФ. Проводить анализ качества работы Национальной лабораторной сети по полиомиелиту (НЛС).

5.Провести вирусологический и эпидемиологический анализ случаев заболевания полиомиелитом в РФ, установить основные характеристики случаев вакциноассоциированного паралитического полиомиелита (ВАПП) для обоснования предложений по совершенствованию вакцинопрофилактики полиомиелита в РФ.

б.Обосновать необходимость проведения надзора за ПВ с помощью исследования сточных вод как важной составляющей вирусологического мониторинга ПВ.

7.Получить данные о циркуляции НПЭВ в РФ.

Научная новизна.

Показано, что для получения наиболее полных сведений о циркулирующих ПВ необходима система мониторинга, которая включает исследование материалов, полученных при выполнении надзора за полиомиелитом и ОВП и исследовании сточных вод, а также вирусологический анализ всех ПВ, выделенных в лабораториях страны, в соответствии с алгоритмом вирусологических исследований, предложенным ВОЗ.

Впервые проведены широкомасштабные, систематические наблюдения за циркуляцией ПВ на территории РФ в период применения ОПВ (с 1999 по 2007 гг.). Выполнены вирусологические исследования всех материалов (образцов фекалий, сточных вод, сывороток крови, выделенных штаммов ПВ), собранных при выполнении программы ликвидации полиомиелита в РФ и направленных в НЛ в соответствии с нормативно-методическими документами РФ. Впервые установлено происхождение ПВ, выделенных из разных источников (от случаев ОВП, контактных с ними здоровых лиц, сточных вод) на территории РФ с 1999 по 2007 г.

На примере вспышки полиомиелита в Чеченской республике (ЧР) в 1995 г. впервые дана характеристика вспышки, возникшей на ограниченной территории, детское население которой имело недостаточный уровень охвата прививками против полиомиелита и низкий уровень коллективного иммунитета, при общем высоком уровне коллективного иммунитета в стране. Установлена возможность быстрого глобального распространения дикого ПВ из эндемичного региона, формирования очага циркуляции, возникновения вспышечной заболеваемости. Впервые показано, что такая вспышка имеет основные характеристики, свойственные вспышкам полиомиелита в развивающихся странах в до-вакцинальную эру.

Система мониторинга ПВ позволила впервые установить существование длительной скрытой циркуляции вирусов-производных ОПВ, которая может приводить к формированию высоко нейровирулентных вариантов

вакцинородственных полиовирусов (УБРУ), в популяции с высоким (более 95%) уровнем охвата прививками против полиомиелита.

Впервые установлен уровень заболеваемости и основные характеристики ВАПП в РФ в период применения для вакцинации против полиомиелита ОПВ (1998-2005 гг.). Впервые проведён анализ состояния иммунитета и преморбидного статуса детей, заболевших ВАПП.

Показано, что для эффективного мониторинга ПВ необходимо вирусологическое исследование сточных вод. Информативность и чувствительность исследований может быть повышена за счёт обследования сточных вод от отдельных групп населения, в которых наиболее вероятна циркуляция ПВ. В полевых наблюдениях выполнено сравнение эффективности 2-х методов концентрирования сточных вод.

Впервые получены сведения о циркуляции НПЭВ в РФ в период 19992007 гг. Установлен уровень циркуляции НПЭВ среди здорового населения страны (5%), определены «эпидемические» серотипы НПЭВ.

Практическая значимость работы

Создана система вирусологического мониторинга ПВ, которая включает исследование материалов, полученных при выполнении эпидемиологического надзора за полиомиелитом и ОВП, дополнительного надзора за ПВ с помощью исследования сточных вод, анализ всех штаммов ПВ выделенных в РФ, в соответствии с алгоритмом вирусологических исследований, рекомендованным ВОЗ.

Показано, что циркуляция дикого ПВ в РФ прекращена в 1996 г. На основании данных, полученных в период 1999-2002 гг., Европейская Региональная Комиссия по сертификации полиомиелита ВОЗ признала РФ страной, «свободной от полиомиелита». РФ сохраняет этот статус до настоящего времени. Система вирусологического мониторинга позволила установить, что дикие ПВ типа 1, выявленные в РФ в 2004 г., были следствием лабораторной контаминации образцов сточных вод штаммом Макопеу.

Вспышка полиомиелита в 4P в 1995 г. показала, что при недостаточном уровне коллективного иммунитета в регионе или стране, свободной от дикого ПВ, возможно межконтинентальное распространение вируса из пока ещё существующих эндемичных резервуаров и возникновение вспышечной заболеваемости. Для предупреждения такого развития событий необходимо продолжать вакцинацию против полиомиелита и надзор за ПВ на уровне, рекомендованном ВОЗ. Существование длительной скрытой циркуляции вирусов-производных ОПВ, которая может приводить к формированию высоконейровирулентных вариантов вакцинородственных ПВ, является веским доказательством необходимости продолжения этих мероприятий.

Для совершенствования надзора за полиомиелитом и ОВП практически подтверждена эффективность подходов, позволяющих в более короткие сроки получать результаты исследований, что необходимо для экстренной оценки ситуации и формирования эпидемиологических решений. Показана информативность исследования материалов от приоритетных «горячих» случаев ОВП. Установлена возможность оптимизации алгоритма вирусологического исследования, предложенного ВОЗ - использование двух культур клеток (RD и L20B) для выделения ПВ и сокращение общего времени исследования до 10 дней без потери чувствительности.

В полевых исследованиях показано, что эффективность двух методов концентрирования сточных вод (одномоментного и сорбционного) сопоставима; оба метода могут быть использованы для мониторинга IIB.

Результаты анализа случаев ВАПП стали основанием для изменения схемы вакцинации против полиомиелита в РФ: с 2008 г. введена 3-х кратная вакцинация с помощью инактивированной полиовирусной вакцины (ИПВ) и ревакцинация ОПВ.

Установленный уровень циркуляции НПЭВ среди здорового населения РФ может быть использован для оценки и прогноза эпидемической ситуации по энтеровирусным инфекциям (ЭВМ). Методические подходы системы

мониторинга ПВ могут быть основой для эпидемиологического надзора за ненолиомиелитными ЭВИ. На основании результатов изучения циркуляции НПЭВ и опыта проведения мониторинга ПВ подготовлена научно-практическая программа «Эпидемиологический надзор и профилактика энтеровирусной (неполно) инфекции на 2009-20] 1 гг.» (утверждена Главным государственным санитарным врачом РФ Г.Г.Онищенко 31.12.08 г.).

Результаты исследований были использованы при подготовке нормативных и методических документов:

Саннтарные правила

1.Безопасность работы с материалами, инфицированными или потенциально инфицированными диким полиовирусом. СП.1.3.1325-03.-Москва.-2003.

2.Профилактика полиомиелита в иостсертификационный период. СП 3.1.2343-08.-Москва.-2008.

3.Порядок учёта, хранения, передачи и транспортирования материалов, инфицированных или потенциально инфицированных диким полиовирусом. СП 3.1,2260-07.-Москва.-2008.

Методические указании 1.Сбор и концентрирование кишечных вирусов из воды с помощью водопроницаемых пакетов с сорбентом.-Минск-1997.

2.Энтеровирусные заболевания: клиника, лабораторная диагностика,

эпидемиология, профилактика. МУ 3.1 Л .2130-06.-Москва.-2006. З.Санитарно-вирусологический контроль водных объектов. МУК 4.2.2029-05.-Москва.-2006.

4.Эпидемиологический надзор и профилактика энтеровирусной (неполно)

инфекции. МУ 3.1.1.2363-08.-Москва.-2008. 5.Организация и проведение вирусологических исследований материалов от больных полиомиелитом, с подозрением на это заболевание, с синдромом острого вялого паралича (ОВП). МУК 4.2.2410-08.-Москва.-2008.

6.Организация и проведение вирусологических исследований на полиомиелит, друше(неполио) энтеровирусы материала из объектов окружающей среды. МУ 3.1.1,2357-08.-Москва.-2008. 7. Эпидемиологический надзор за полиомиелитом и острыми вялыми параличами в постсертификационный период. МУ 3.1.1.2360-08.-Москва.-2008.

Материалы диссертационной работы были использованы при подготовке практического руководства «Лабораторная диагностика опасных инфекционных болезней» (под ред. академика РАМН, профессора Г.Г.Онищенко и чл-корр. РАМН, профессора В.В.Кутырева.-Москва,-«Медицина».-2009.-470 С.) Основные положения, выносимые на защиту

1. Для реализации программы ликвидации полиомиелита в РФ создана система вирусологического мониторинга ПВ, которая основана на исследовании материалов, полученных при выполнении эпидемиологического надзора за полиомиелитом и ОВП и дополнительных видов надзора за ПВ в соответствии с алгоритмом вирусологических исследований, рекомендованным ВОЗ.

2. Существование ограниченной территории (региона) с низким уровнем коллективного иммунитета к ПВ в неэндемичной стране (регионе) с высоким общим уровнем коллективного иммунитета является фактором риска для возникновения случаев (вспышки) заболевания полиомиелитом в случае заноса дикого ПВ из эндемичного очага. Поэтому мероприятия по иммунизации против полиомиелита и надзору за ПВ в РФ не могут быть прекращены и должны поддерживаться на уровне, рекомендованном ВОЗ.

3. С 1996 г. в РФ прекращена циркуляция дикого ПВ. Выделение дикого ПВ в РФ в 2004 г. было фактом внутрилабораторной контаминации.

4. Уровень заболеваемости и основные характеристики ВАПП в РФ в период применения для иммунизации против полиомиелита ОПВ (1998-2005 гг.) были такими же, как в развитых странах мира, применяющих ОПВ. Факторами риска

для развития ВАПП являются иммуиодефицитное состояние и неблагополучный преморбидный статус ребёнка.

5. В хорошо иммунизированной популяции возможна длительная скрытая циркуляция вирусов-производных ОПВ, которая может привести к формированию высоко нейровирулентных вариантов вакцинородственных полиовирусов. Изменение стратегии применения полиовирусных вакцин в РФ -прекращение применения ОПВ и замена её ИПВ - позволит предотвратить случаи ВАПП у реципиентов вакцины, значительно снизить риск возникновения VDPV.

6. При сохранении эндемичных резервуаров дикого ПВ исследования сточных вод являются важнейшей частью мониторинга ПВ в РФ. Роль этого вида надзора для выявления VDPV будет возрастать по мере сокращения использования ОПВ

7. Система вирусологического мониторинга ПВ может быть использована для решения задачи надзора за неполиомиелитными ЭВМ. Уровень циркуляции НПЭВ среди здорового населения РФ в целом без учёта возрастных, сезонных и географических факторов в межэпидемический период составляет 5±0,4б%. «Эпидемическими» серотипами НПЭВ в период 1999-2007 гг. были вирусы CBV 1-6, Е7,30,11,6.

Апробация работы состоялась на заседании межлабораторного Учёного совета Учреждения Российской академии медицинских наук Институт полиомиелита и вирусных энцефалитов имени М.П.Чумакова РАМН 28 апреля 2009 г.

Материалы исследований были представлены и обсуждены: - на научных конференциях - X Международном Вирусологическом Конгрессе (Иерусалим, Израиль, 1996); Научной конференции «Актуальные проблемы медицинской вирусологии» (Москва^ 1999); Научно-практической конференции "Инфекционные болезни на рубеже XXI века" (Москва, 2000); Научной конференции "Достижения отечественной эпидемиологии в XX веке. Взгляд в будущее" (Санкт-Петербург, 2001); 12-ой конференции Европейской Научной Группы по молекулярной биологии пикорнавирусов (Sea Creast, США,

2002); Международном конгрессе «Ликвидация и элиминация инфекционных болезней - прогресс и проблемы» (Санкт-Петербург, 2003.); 6-м международном форуме по глобальной вакцинологии «Вакцины и иммунизация» (Минск, Беларусь, 2003); Всероссийской научно-практической конференции «Гигиенические проблемы водоснабжения населения и войск» (Санкт-Петербург, 2003); 7-м международном симпозиуме по позитивным РНК-содержащим вирусам (Сан-Франциско, США, 2004); 6-м международном конгрессе «Вода: экология и технология» ЭКВАТЭК-2004 (Москва, 2004); конференции «Генетика в XXI веке: современное состояние и перспективы развития»(Москва, 2004); Научной конференции, посвященной 50-летию ИПВЭ им.М.ПЛумакова РАМН (Москва, 2005); VI Межгосударственной научно-практической конференции государств-участников СНГ «Санитарная охрана территорий государств-участников Содружества Независимых Государств: проблемы биологической безопасности и противодействия биотерроризму в современных условиях» (Волгоград, 2005); Всероссиийской научной конференции «Эпидемиология, лабораторная диагностика и профилактика вирусных инфекций» (Санкт-Петербург, 2005); IX Съезде Всероссийского научно-практического общества эпидемиологов, микробиологов и паразитологов «Итоги и перспективы обеспечения эпидемического благополучия населения Российской Федерации» (Москва, 2007); Международном медицинском форуме «Индустрия здоровья», Симпозиум «Полиомиелит - прошлое, настоящее и будущее (к 100-летию установления вирусной этиологии болезни)» (Москва, 2008); Национальной конференции «Аллергология и клиническая иммунология - междисциплинарные проблемы» (Москва, 2008); Совместном заседании Восточно-Европейского совета экспертов в области вакцинопрофилактики и Совета экспертов по профилактике вирусных гепатитов (Москва, 2008); 4-ой международной конференции, посвящённой 85-летию Санкт-Петербургского НИИЭМ им.Пастера и 120-летию Парижского института Пастера (Санкт-Петербург, 2008); VII Конгрессе детских инфекционистов России (Москва, 2008);

- на совещаниях ВОЗ - 1-м Совещании Европейской Региональной Комиссии по сертификации ликвидации полиомиелита (Париж, Франция,

1996); Совещании по совершенствованию надзора за полиомиелитом и контролю за дифтерией (Берлин, 1996); 3-м совещании ВОЗ но вопросам координации операции МЕКАКАР (Ташкент, Узбекистан, 1996); 2-м консультативном совещании Глобальной лабораторной сети ВОЗ по полиомиелиту (Женева, Швейцария, 1996); 1 -м совещании рабочей группы по надзору за вирусом полиомиелита в окружающей среде (Женева, Швейцария,

1997); Внутрирегиональном координационном совещании ВОЗ по вопросам эпиднадзора и сертификации ликвидации полиомиелита (Киев, Украина, 1998); Совещании Региональной сертификационной комиссии по ликвидации полиомиелита по рассмотрению документации отдельных стран СНГ и Югославии (Кишинёв, Молдова, 2000); Суб-Региональном совещании координаторов по безопасному лабораторному хранению диких полиовирусов (Вена, Австрия, 2001); Совещании по надзору за вирусом полиомиелита в окружающей среде (Копенгаген, Дания, 2002); 12-м консультативном совещание глобальной лабораторной сети по полиомиелиту ВОЗ (Женева, Швейцария, 2006); Совещании Европейской Региональной лабораторной сети по диагностике полиомиелита (Рим, Италия, 2006); Объединённом совещании по вопросам контейнмента и лабораторной сети по полиомиелиту Европейского региона ВОЗ (Мальта, Ст.Джулиан, 2007);

- на пленуме «Вакцинопрофилактика полиомиелита в современных условиях» проблемной комиссии «Полиомиелит и другие энтеровирусные инфекции» (ИПВЭ им.М.П.Чумакова РАМН, Москва, 2008);

Публикации. По результатам работы опубликовано 70 печатных работ; основные материалы представлены в 26 статьях в реферируемых научных журналах, из них 8 опубликованы за рубежом, в одной монографиии, 2 статьях в сборниках.

Структура и объем диссертации. Диссертация изложена на 273 страницах машинописного текста, состоит из введения, 7 глав (6 глав включают

данные литературы, описание использованных материалов и методов, результаты собственных исследований), обсуждения, выводов и списка литературы, содержащего 284 источника (67 отечественных и 217 иностранных). Работа содержит 39 таблиц и 17 рисунков.

Содержание работы Материалы и методы исследований Для выполнения разделов работы, посвящённых вирусологическим результатам надзора за ОВП, исследованию приоритетных («горячих») случаев ОВП, случаев ВАПП, дополнительному надзору за ПВ, безопасному лабораторному хранению диких ПВ, были исследованы различные материалы, собранные в РФ с 1999 по 2007 гг. в соответствии с нормативными документами РФ в ходе выполнения программы ликвидации полиомиелита. При изучении вспышки полиомиелита в ЧР в 1995 г. исследовали клинические материалы от больных детей, госпитализированных в 1-ю инфекционную больницу г.Москвы, больных детей из Республики Ингушетия (РИ) и здоровых контактных лиц из этих республик. Обоснование оптимизации традиционной схемы вирусологических исследований выполнили на основании результатов исследований материалов, полученных от случаев ОВП и здоровых контактных лиц во время проведения эпиднадзора за ОВП в РФ и странах СНГ (Армении, Азербайджане, Беларуси, Грузии, Казахстане, Кыргызстане, Молдове, Таджикистане, Туркменистане, Узбекистане, Украине) в 2004-05 гг. Полевые наблюдения в разделе работы, посвященном исследованию сточных вод, выполняли в Доме ребёнка г.Омска в 2004-05 гг. Результаты наблюдения за циркуляцией НПЭВ в РФ в 1999-2007 гг. получены при исследовании материалов, собранных при выполнении надзора за ОВП, дополнительного надзора за ПВ, от спорадических случаев и вспышек ЭВМ. Сбор материалов в рамках надзора за ОВП проводили сотрудники Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека РФ (Роспотребнадзор) и служб здравоохранения стран СНГ в соответствии с нормативными документами стран и рекомендациями ВОЗ. Виды материалов и

объём исследований, соответствующие направлениям работы, представлены в табл. 1.

Алгоритм вирусологического исследования образцов фекалий (сточных вод) соответствовал рекомендациям ВОЗ (WHO, 1997; WHO, 2004; WHO, 2003) и включал следующие этапы: подготовку фекальных проб (проб сточных вод) для исследования; выделение вируса на культуре клеток; идентификацию вируса; внутритиповую дифференциацию (ВТД) ПВ; генетическую характеристику (при получении противоречивых результатов в одном из двух методов ВТД).

Использовали культуры клеток, референс-штаммы (вакцинные штаммы Сэбина 3-х типов) и диагностические системы, рекомендованные и полученные из источников ВОЗ. Выделение ПВ и НПЭВ из образцов фекалий и сточных вод проводили на культурах клеток RD, НЕр-2, L20B, полученных из RIVM, Bilthoven, Нидерланды и CDC, Атланта, США. Идентификацию выделенных изолятов проводили в реакции нейтрализации микрометодом. Для идентификации ПВ использовали поликлональные моноспецифические кроличьи анти-сыворотки (RIVM), для идентификации НПЭВ - пулы иммунных к НПЭВ лошадиных сывороток (RJVM), позволяющих идентифицировать 20 серотипов вирусов ECHO (Е), вирус Коксаки А9 (CAV9), серотипы 1-6 вирусов группы Коксаки В (CBV). Идентификацию штаммов НПЭВ, которые не могли быть идентифицированы в реакции нейтрализации, выполняли методом анализа частичной нуклеотидной последовательности для области генома VP1 (Nix et al, 2006; секвенирование выполнено А.Н.Лукашевым).

ВТД проводили с помощью а) иммуноферментного анализа (ИФА) с использованием перекрёстно-адсорбированных кроличьих антисывороток к вакцинным и диким штаммам ПВ трёх серотипов (van Wezel and Hazendonk, 1979; van der Avoort et al., 1995) производства RIVM и б) метода диагностической полимеразной цепной реакции (ПЦР), разработанного Yang et al, 1991, с праймерами, специфичными к вакцинным штаммам Сэбина,

Таблица 1

Виды материалов и объем выполненных исследований

Направление исследований Вид материала Объём исследований

Надзор за заболеваниями с синдромом ОВП Образцы фекалий 842 больных с синдромом ОВП (в том числе от 308 приоритетных «горячих» случаев) 1684 пробы

Штаммы ПВ от: - случаев ОВП и здоровых контактных лиц - сточных вод - из других источников (здоровые дети, случаи ЭВИ) 5588 штаммов: 800 3770 1018

Изучение вспышки полиомиелита в ЧР в 1995 г. Материалы из ЧР: - образцы фекалий 53 больных - сыворотки крови 29 больных - образцы фекалий 25 здоровых контактных лиц - сыворотки крови 25 здоровых контактных лиц Материалы из РИ: - образцы фекалий 5 больных - образцы фекалий здоровых контактных лиц - сыворотки крови здоровых контактных лиц 155 проб 55 проб 61 проба 23 пробы 6 проб 91 проба 3 пробы

Паралитический полиомиелит в РФ в 1998-2005 гг. Образцы фекалий 93 больных полиомиелитом Сыворотки крови 39 больных ВАПП Штаммы ПВ, выделенные от больных полиомиелитом Образцы фекалий, повторно собранные у 36 больных ВАПП на 60-й и 90-й день от начала заболевания; выделенные штаммы полиовирусов 186 проб 61проба 121 штамм 60 проб 15 штаммов

Исследование сточных вод как подход к контролю циркуляции ПВ в закрытых детских коллективах Образцы фекалий детей из Дома ребёнка г.Омска; выделенные штаммы ПВ и НПЭВ Образцы сточных вод; выделенные штаммы ПВ- и НПЭВ 354 пробы 170 штаммов 194 пробы 82 штамма

Безопасное лабораторное хранение диких ПВ (контейнмент). Исследование случая внугрилаборатор-ной контаминации. Образцы сточных вод Штаммы ПВ 6 проб 12 штаммов

Наблюдение за циркуляцией НПЭВ в РФ в 19992007 гт. Штаммы НПЭВ, выделенные от случаев ОВП, здоровых контактных лиц, спорадических случаев ЭВИ, сточных вод 1048 штаммов

Оптимизация традиционной схемы вирусологических исследований Образцы фекалий больных с сиидромом ОВП и здоровых контактных лиц Штаммы ПВ и НПЭВ 1638 проб 1117 штаммов

предоставленными CDC, Атланта, США. Генетическая характеристика ПВ получена на основании определения нуклеотидной последовательности вирусного генома на участке, кодирующем белок VP1(~ 900 nt) методом частичного секвенирования (Cherkasova et al., 2002). Молекулярно-биологические исследования выполнены сотрудниками НИИ физико-химической биологии им. А.Н.Белозерского МГУ им.Ломоносова Е.А.Коротковой, Е.А.Черкасовой, М.Л.Яковенко.

Изучение нейровирулентности штаммов ПВ с помощью теста на трансгенных мышах (TgPVR-21), полученных из Центрального Института экспериментальных животных, Токио, Япония, было проведено по инициативе автора Е.М.Драгунской в Администрации по контролю пищевых и лекарственных продуктов (FDA), США (Abe et al., 1995; WHO, 2002).

Уровень нейтрализующих гуморальных антител определяли в реакции микронейтрализации со штаммами Сэбина 3-х типов на культуре клеток НЕр-2. Вакцинные штаммы Сзбина были предоставлены Национальным Институтом Биологических Стандартов и Контроля (NIBSC), Великобритания.

Анализ состояния иммунитета детей с ВАПП выполнен проф. Л.И.Краснопрошиной на основании результатов исследований, проведённых в НИИВС им. Мечникова или в медицинских учреждениях, где были госпитализированы больные, по нашей инициативе. Иммунофенотипирование лимфоцитов проводили с помощью моноклональных AT к CD3+, CD4+, CD8+, CD16+, CD72+ и CD20+ (ООО «Сорбент»), меченых ФИТЦ («МедБиоспектр») на проточном цитофлюориметре (Jackson , 1990). Содержание сывороточных IgG, IgM, IgA определяли методом радиальной иммунодиффузии по Mancini (Mancini et al., 1970). Функциональную активность фагоцитарной системы изучали в реакции фагоцитоза со стафилококками и в НСТ-тесте (спонтанный и активированный зимозаном кислородный метаболизм) (Хаитов и др., 1995).

При исследовании сточных вод использовали а) одномоментный метод отбора воды (1,0 л) и концентрирование вирусов с помощью двухфазного разделения (одномоментный метод) и б) метод сорбции вирусов с помощью

пакетов с сорбентом - макропористым стеклом (МПС) (сорбционный) и последующую элюцию (WHO, 2003).

Оценку качества работы лабораторий по диагностике полиомиелита РФ выполняли на основании анализа документов, используемых в глобальной лабораторной сети ВОЗ: ежемесячных и еженедельных форм лабораторного отчёта, листов ежегодной аккредитации лаборатории. Классификацию случаев ОВП проводили на основе «вирусологической схемы» (WHO, 1998), классификацию случаев ВАПП - в соответствии с рекомендациями ВОЗ (ВОЗ, 1998) Для классификации и характеристики случаев ОВП и ВАПП использовали карты эпидемиологического расследования случая полиомиелита и ОВП (части I, II - с результатами повторного осмотра ребёнка через 60 дней от начала паралича, III - с заключением Национальной комиссии по диагностике полиомиелита и ОВП), выписки из историй болезни. При анализе результатов исследований использовали компьютерные программы Epilnfo, Excel, таблицы Генеса (Генес, 1967). Для расчётов частоты возникновения случаев ВАПП использовали подход, применённый Kohler et al., 2002.

Результаты

Вспышка полиомиелита в Чеченской республике в 1995 г. До начала выполнения программы ликвидации полиомиелита в 1996 г., системы вирусологического мониторинга ПВ в РФ не существовало. Контроль за полиомиелитом основывался на клиническом выявлении случаев заболевания. Подтверждением присутствия диких ПВ в РФ стала вспышка полиомиелита в 4P в 1995 г. Предпосылками её возникновения были низкий уровень вакцинации против полиомиелита в 4P (в 1994 г. вакцинация не проводилась), неудовлетворительные санитарные условия и массовая миграция населения, связанные с военным конфликтом на территории 4P.

Вспышка продолжалась с марта по декабрь, большинство случаев заболевания пришлось на июль-август. Географически она охватила всю территорию 4P, затем вышла за её пределы (последний случай заболевания выявили в РИ в декабре). Всего заболело 146 детей, 6 из них умерли.

Демографический анализ (выполнен по выборкам, для которых были доступны данные) показал, что возраст больных (58 детей) не превышал 11 лет, преобладали дети в возрасте до 1 года. Среди 53 больных было 34 мальчика и 19 девочек. Все дети не были привиты против полиомиелита, за исключением 3-х, которые получили 1-2 прививки. У всех заболевание имело характерное для полиомиелита развитие и течение со стойкими остаточными парезами и параличами.

Дикий ПВ типа I выделяли 72% (38 из 53 обследованных больных) и 60% (3 из 5 обследованных больных) из ЧР и РИ, соответственно.

При исследовании сывороток больных установили наличие нейтрализующих антител к ПВ типа 1 в высоких титрах и отсутствие антител к ПВ типа 2 и 3 (табл. 2). В сыворотках взрослых контактных лиц выявили присутствие антител ко всем 3-м типам ПВ, у многих - в высоких титрах. При этом значительное количество контактных было вовлечено в эпидемический процесс: 7% (2 из 27 обследованных) и 21% (15 из 71 обследованного) здоровых контактных лиц из ЧР и РИ, соответственно, выделяли дикий ПВ, что могло быть связано с массивной инвазией вируса в кишечник, превосходящей протективный уровень секреторных антител. Картину широкого распространения эпидемического ПВ среди частично или полностью вакцинированной популяции наблюдали во время многих вспышек в развивающихся странах (Patriarca et al., 1997).

Таблица 2

Результаты серологического исследования больных и контактных лиц

Тип Количество обследованных лиц

ПВ Всего С титрами антител (log2) к вирусам полиомиелита

<3 з 4 5 б 7 8 9 10 11 >11

Больные

1 29 1 3 1 12 4 4 4

2 29 28 1

3 29 27 1 1

Контактные

1 22 1 2 3 16

2 20 1 2 5 4 3 5

3 20 4 I 3 2 4 4 2

Распространение дикого ПВ в популяции поддерживалось за счёт больных, достаточно долго выделявших вирус: 11 детей (50%) в течение месяца после начала заболевания, 9 детей (41%) - в течение 2-х месяцев , 2 ребёнка (9%) - более двух месяцев (время прекращения экскреции не было установлено, так как дети выбыли из наблюдения). На фоне продолжающейся вспышки в ЧР и появления первых клинических случаев в РИ, провели однократную кампанию вакцинации ОПВ. Циркуляция диких ПВ в РИ не была прервана, на что указывает спектр вирусов, выделенных от контактных из РИ: 13 человек выделяли дикий ПВ типа 1, 8 - вакцинный ПВ типа 1, 2 - одновременно вакцинный и дикий ПВ типа 1, по одному контактному выделяли вакцинный ПВ типа 2 и смесь вакцинных ПВ типа 1 и 3.

Генетический анализ нескольких случайно выбранных штаммов дикого ПВ типа 1 из ЧР и РИ позволил установить их тесную связь друг с другом и принадлежность к Т-генотипу (Черкасова и др., 1996; Ivanova et al., 2001). Штаммы этого генотипа циркулировали на территории бывшего СССР в 90-х годах прошлого века, с ними были связаны вспышки полиомиелита в 1993-1994 гг. (Таджикистан, Украина, Узбекистан), они обнаруживали родство со штаммами, выделенными в Пакистане в 1991 и 1995 гг. (Липская и др., 1998; Черкасова и др., 1996) Это позволило предположить, что в 90-х годах прошлого века происходило глобальное распространение дикого ПВ типа 1 с Индийского субконтинента через Центральную Азию в Европейский регион (Lipskaya et al., 1996; Липская и др, 1998).

Таким образом, эпидемиологические характеристики и клинические проявления этой вспышки были такими же, как у классических вспышек полиомиелита в развивающихся странах в до-вакцинальную эру; как и большинство вспышек того времени она была связана с диким ПВ типа 1 (Patriarca et al., 1997). Следствием интенсивной миграции жителей из эпидемического очага могли стать заиосы дикого ПВ в другие регионы РФ, но отсутствие системы мониторинга ПВ не позволило оценить масштабы распространения вируса.

Национальная сеть лабораторий по диагностике полиомиелита РФ. Анализ качества работы. С 1998 г. вирусологические исследования в рамках программы ликвидации полиомиелита в РФ проводятся в Национальной сети лабораторий (НДС) по диагностике полиомиелита (Приказ МЗ РФ № 386). Она состоит из Национальной лаборатории (HJ1) в ИПВЭ им.М.П.Чумакова РАМН и 6 Суб-национальных лабораторий (CHJ1) на базе вирусологических лабораторий ФГУЗ «Центр гигиены и эпидемиологии» Роспотребнадзора в Свердловской области, г.Екатеринбург, Ставропольском крае, г.Ставрополь, Омской области, г.Омск, Хабаровском крае, г.Хабаровск, в г.Москве и ФГУН Институт эпидемиологии и микробиологии им.Пастера, Санкт-Петербург. Порядок взаимодействия в НДС соответствует функциональным обязанностям лабораторий по диагностике полиомиелита разного уровня, рекомендованным ВОЗ (WHO, 2004) и закреплённым нормативно-методическими документами РФ (Онищенко Г.Г. и др., 2008). Материалы от случаев ОВП и контактных лиц исследуются только в соответствующих СНЛ и НЛ. СНЛ выполняют выделение вирусов из образцов фекалий и их идентификацию. Все изоляты ПВ и НПЭВ, оригинальные образцы фекалий, из которых они были выделены, пересылают в НЛ. НЛ проводит повторное исследование позитивных образцов фекалий, ре-идентификацию изолятов, ВТД штаммов ПВ и молекулярно-генетические исследования. Выделение и идентификация вирусов должны быть закончены в течение 28 дней от момента получения фекальных образцов, ВТД - в течение 7 дней после получения изолята ПВ или его идентификации. НЛ проводит ре-идентификацию и ВТД всех штаммов ПВ, выделенных из любых материалов (сточных вод, от здоровых лиц и проч.) любыми вирусологическими лабораториями РФ. НЛ снабжает все лаборатории, участвующие в реализации Программы ликвидации полиомиелита, референс-магериалами (культурами клеток, вакцинными штаммами Сэбина, диагностическими и тестовыми материалами), что обеспечивает стандартность исследований в разных лабораториях.

Все лаборатории НЛС проходят процедуры внешнего и внутреннего

контроля качества в виде ежегодной аккредитации, профессионального тестирования (детекция и идентификация вирусов в зашифрованном наборе образцов фекалий), подтверждения идентификации изолятов в НЛ. Результаты исследования и показатели качества работы в виде еженедельных отчётов направляются в НЛ и Европейское региональное бюро ВОЗ. Анализ и оценка показателей качества работы НЛС в 1999-2007 гг. (табл. 3) показал, что они соответствуют требованиям ВОЗ.

Таблица 3

Качество работы НЛС РФ в 1999-2007 гг. (критерий ВОЗ - не менее 80%)

у Показа-\ тели Индекс эпиднадзора* Пациенты с 2-мя пробами стула, собран- Пробы, собранные в течение 14 дней после Пробы, доставленные в лабораторию в Пробы удовлетворительного качества, Пробы, исследования которых закончено Результаты профессио нального теста ВОЗ, Подтверждение идентификации в НЛ

Год\ ными с интервалом 24-48 час, % начала заболевания, % течение 72 часов после отбора,% % в течение 28 дней,% %. В числителе результаты СНЛ, в знаменателе - НЛ вирусов, выделенных в СНЛ из материалов от случаев ОВП, %

1999 0,8 85,6 87,6 52,5 95,2 64,1 73,4/100 -

2000 0,87 96,9 90,9 69,9 93,2 88,9 96,7/100 93

2001 0,89 98 93,5 88 96 98 100/100 94,4

2002 0,9 100 92,8 95,3 96,4 99,1 100/100 96,6

2003 0,88 99,6 95,5 98,4 98,2 99 100/100 97,7

2004 0,93 100 .95,2 99,4 100 99,9 100/100 97,4

2005 0,91 99,7 93 98,8 99 100 100/100 91

2006 0,92 99,8 92,3 98,7 99,4 100 100/100 98,2

2007 0,93 100 94 97,2 99,4 96,5 100/100 96,8

'индекс эпиднадзора рассчитывается путём умножения показателя заболеваемости неполиомиелитиымн ОВП на 100 тыс. детей в возрасте до 15 лет на процент случаев с адекватными пробами стула, собранными в течение 14 дней после начала паралитического заболевания.

Таким образом, НЛС РФ обеспечивает высокую достоверность и

оперативность вирусологических исследований.

Вирусологические результаты надзора за ОВП в РФ. В течение 9 лет (1999-2007 гг.) в НЛС РФ на основании первичных донесений были Исследованы 5126 случаев ОВП. Впоследствии Национальная комиссия по диагностике полиомиелита и ОВП окончательно классифицировала как ОВП 3692 случая. «Разрыв» между обследованными в лаборатории и окончательно классифицированными случаями ОВП был наибольшим до сертификации Европейского региона как «свободного от полиомиелита» в 1999-2001 гг. (до 317 случаев в 2000 г.), что объяснялось, главным образом, несовершенством клинической диагностики заболеваний с синдромом ОВП. Разрыв постепенно уменьшился в последующие годы (до 88 случаев в 2007 г.). Учитывая, что индекс эпиднадзора за полиомиелитом и ОВП на этапе после сертификации соответствовал требованиям ВОЗ и превышал показатели досертификационного периода (табл. 3), следует признать, что надзор за полиомиелитом и ОВП в РФ достиг оптимального качества.

Система верификации в НЛ материалов от случаев ОВП, из которых в СНЛ были выделены ПВ и НПЭВ, и от 10% «негативных» случаев обеспечивает высокую надёжность получаемых результатов. В 1999-2007 гг. НЛ обследовала материалы от 842 случаев ОВП. В целом в течение 9 лет в НЛС было исследовано 10301 образец фекалий от больных с синдромом ОВП и 2235 образцов фекалий от здоровых контактных лиц. Частота выделения ПВ от больных с ОВП постепенно снижалась в течение периода наблюдения от 14,4% в 1999 г. до 5,5% в 2007г. (в среднем 7,9 ± 0,27%), от контактных лиц была наибольшей в 1999 г. (5,9%), составляя в среднем 4,4 ± 0,43%. Наиболее высокое выделение ПВ в 1999 г. совпадало с проведением в РФ массовых кампаний по дополнительной иммунизации против полиомиелита, отражает интенсивность циркуляции вирусов-производных ОПВ среди населения, может быть объяснена несовершенством клинической диагностики ОВП на первоначальных этапах надзора. В целом среди 465 случаев ОВП, связанных с выделением ПВ, преобладали (р < 0,05) случаи, от которых выделяли ПВ типа 3

и смеси ПВ по сравнению с ПВ типа 1 и 2 (33,3 ± 2,2%, 27,3 ± 2,1%, 21,5 ± 1,9% и 17,9 ± 1,8%, соответственно).

В течение 8 лет (2000-2007 гг.) 5588 штаммов ПВ, выделенных из различных источников, были подвергнуты ВТД, результаты которой подтвердили их вакцинное происхождение и отсутствие циркуляции (или заноса) диких ПВ на территории РФ. На основании этого в 2002 г. Европейская Региональная Сертификационная Комиссия признала за РФ статус «страны, свободной от полиомиелита», который сохраняется в последующие годы.

Молекулярно-генетический анализ 67 штаммов, проявлявших противоречивые свойства в одном из методов ВТД, позволил идентифицировать 6 из них как VDPV - вакцинородственные, значительно (> 1% нуклеотидных замен на участке генома VP1) дивергировавшие от гомотипичного вакцинного предка (WHO, 2002) (табл. 4). Был установлен факт длительной независимой эволюции от вакцинных предков наиболее изменённых штаммов . RUS 11262-99 и RUS 11264-99, выделенных от невакцинированной иммуиокомпетентной 7-месячной девочки и здорового контактного из дома ребёнка г.Пермь: «возраст» штаммов к моменту их изоляции составлял около двух и полутора лет, соответственно (Cherkasova et al., 2002; Cherkasova et al., 2003). Выявление KDPK-штаммов показало, что возможности для скрытой циркуляции вирусов-производных ОПВ, которая может привести к формированию высоконейровирулентных вариантов вакцинородственных ПВ, существуют не только среди недостаточно иммунизированного населения, но и в хорошо иммунизированной популяции.

Оптимизация традиционной схемы вирусологических исследований.

Скорость, достоверность, полнота вирусологических исследований важны для принятия адекватных противоэпидемических решений в ответ на случай (или вспышку) заболевания полиомиелитом. Согласно традиционной схеме вирусологического исследования образцов фекалий (WHO, 1997; 2004), главная цель которого - выделение ПВ, общая продолжительность наблюдения за

Таблица 4

Характеристики VDPV-штаммов, выявленных в РФ в 1999-2007 гг.

№ штамма Происхождение штамма Тип Результат ВТД % замен на участке генома VP1 (900 нт)

ИФА ПЦР

RUS 11262-99 ОВП,ВАПП 1 NSL* Sab+*** 2,65%

RUS 29008-07 ОВП 1 NSL Sab+ 1%

RUS 11264-99 здоровый ребёнок, контакт cRUS 11262-99 3 1,8%

RUS 14170-01 сточная вода 1 NSL Sab+ 1%

RUS 16690-01 сточная вода 1 NR** Sab+ 1,11%

RUS 13049-00 ребёнок, ОКИ 2 NR Sab+ 1% ■

* - не сходный по антигенным свойствам с вакцинным штаммом (non-Sabin-Iike, NSL);

**- штамм не взаимодействует с сыворотками специфичными к вакцинному и дикому штамму ПВ;

*** - штамм, имеющий вакцинное происхождение (WHO, 2004).

зараженными культурами клеток должна составлять не менее 14 дней. Мы провели ретроспективный анализ процедуры и результатов лабораторных исследований 1638 образцов фекалий от случаев ОВП и здоровых контактных лиц из РФ и стран СНГ, выполненных в НЛ в 2004-05 гг., в 557 (34%) из которых были детектированы различные вирусы (табл. 5). Культуры клеток RD, . L20B и Нер-2 оказались практически одинаково чувствительны для выделения IIB, но клетки RD позволяли выделять широкий спектр различных цитопатогенных НПЭВ.

Таблица 5

Спектр цитопатогениых вирусов, выделенных из образцов стула на различных культурах клеток _-

Вирусы • Количество образцов стула, содержащих вирусы, проявлявших ЦПЭ на культурах клеток

RD L20B Нер-2

Полиовирусы 234 232 233

ECHO 91 0 0

КоксакиВ 69 0 79

нтапэв 94 0 7

Адено 14 3 61

Всего 502 235 380

Анализ появления выраженного (4+) дитопатического эффекта (ЦПЭ) при исследовании образцов стула, содержащих полиовирусы, на различных культурах клеток показал, что большинство образцов проявляли ЦПЭ в течение 5. дней при первичном заражении культур клеток RD и L20B (97,4% и 92,2% образцов, соответственно). Во время следующего пассажа все образцы проявили 4+ ЦПЭ в течение 5 дней. Скорость появления 4+ ЦПЭ на культуре клеток RD при. инокуляции фекальных суспензий с установленным присутствием ПВ как в первичном заражении (56,9±32,2 часа), так и при последующем пассаже (28,1±13,5), была достоверно выше (р < 0,05), чем на культуре клеток L20B (71,8±33,3 и 31,8±17,2 часа, соответственно).

При использовании только одной культуры клеток возможны «потери» ПВ: наблюдали расхождение результатов при выделении ПВ на различных культурах (для 10 образцов из 1638 - 4 «негативных» образца при исследовании на культуре RD, 6 - на культуре L20B, 5 - на культуре НЕр-2).

Таким образом, общее время исследования образцов может быть сокращено до 10 дней: алгоритм исследования образца фекалий «5 дней наблюдения для первичного заражения, 5 дней - для первого пассажа» обеспечивает высокую достоверность выделения ПВ. Оптимальной схемой является одновременное параллельное исследование образца на культурах RD и L20B, дополнительным преимуществом которой является возможность выделения широкого спектра цитопатогенных вирусов, главным образом группы ECHO. Лаборатории НЛС РФ используют также культуру НЕр-2. Это позволяет дополнительно детектировать CBV, некоторые другие цитопатогеиные вирусы (например, аденовирусы), что важно для расширения знаний об этиологии неполиомиелитных ОВП.

Совершенствование надзора за полиомиелитом и ОВП. С 2002 г. в систему надзора за полиомиелитом и ОВП внедрено определение «приоритетнй («горячий)» случай ОВП» (Письмо № 21ФЦ/1505 от 15.04.02 г.), к которым относятся случаи ОВП у детей, не привитых/неполностью привитых против полиомиелита, прибывших из зон военных конфликтов, эндемичных по

полиомиелиту стран, беженцев, а также случаи, в которых можно заподозрить полиомиелит, у лиц любого возраста (МУЗ. 1.1.2360, Москва, 2008). Для полного лабораторного исследования материалов ог «горячего» случая ОВП, включая ВТД ПВ в случае его выделения, в максимально короткий срок, материалы в течение 72 часов от момента отбора доставляются в HJI. В течение 6 лет (2002-2007 гг.) 308 «горячих случаев» ОВП было зарегистрировано и исследовано в НЛ. Непривитые против полиомиелита дети составляли 32,8%, 67,3% из них были старше 3-х месяцев. Среди последних дети, относящиеся к «группам риска» составляли меньшинство (36,8%). Большая часть непривитых детей старше 3-х месяцев - «домашние» дети, которые не посещают организованные детские коллективы, являясь, таким образом, группой риска.

Частота выделения ПВ из образцов фекалий от «горячих случаев» (от 28,9% до 41%) значительно превышала частоту выделения ПВ от случаев ОВП в целом (максимально - 8,6%). Таким образом, приоритетные «горячие» случаи ОВП - это эпидемиологически точно выбранная группа, вирусологические исследования материалов из которой позволяют получать значительный объём информации о ПВ, циркулирующих в РФ.

Паралитический полиомиелит в РФ в 1998-2005 гг. Выполнена комплексная (клиническая, вирусологическая, эпидемиологическая) характеристика случаев полиомиелита, зарегистрированных в РФ в период применения ОПВ с 1998 по 2005 гг. Среди 3294 зарегистрированных случаев ОВП 93 (2,8 %) были случаи с клинической картиной полиомиелита (табл. 6), которые классифицировали следующим образом: 58 (62,4%) ВАПП у реципиентов ОПВ, 25 (26,9%) «контактный» ВАПП, 8 (8,6%) случаев ОВП, «совместимых с диагнозом полиомиелит», 2 случая (2,2%) полиомиелита неясной этиологии. Случаи полиомиелита неясной этиологии и 6 случаев, «совместимых с диагнозом полиомиелит», Национальная комиссия экспертов отнесла к случаям ВАПП у реципиентов ОПВ. Ещё 2 «совместимых» случая с большой степенью вероятности не были связаны с диким ПВ (Иванова и др.,

2007). Таким образом, за 8 лет в РФ зарегистрирован 91 случай ВАПП (66 «реципиентных» и 25 «контактных).

Таблица б

Случаи полиомиелита в РФ в 1998-2005 гг.

Год Коли- Количество случаев полиомиелита Количество случаев ВАПП

чество по окончательной

случа- классификации V

ев Всего ВАПП ВАПП Случаи, Полио- всего . У контакт

ОВП У У "сов- миелит реципи- -ный

реципи- контак- мести- неяс- ентов

ентов тных мые" с ной ОПВ

ОПВ лиц полио- этиоло-

миели- гии

том

1998 369 6 3 2 1 - 6 4 2-

1999 524 11 7 3 - 1 11 8 3

2000 452 12 И 1 - - 12 11 1

2001 431 14 10 2 2 ■ ' - . -13 11 2

2002 411 15 6 5 . 4 - 14 9 : 5 ■

2003 367 13 8 5 1 - - ; 13 8 5

2004 385 14 9 4 . - 1 14 10 4

2005 355 8 4 3 1 8 5 ■ " 3

Всего 3294 93 58 25 : 8 2 •■• 91 66 25

Среди 66 больных ВАПП-реципиентов ОПВ 59 детей (89,4%) заболели после получения первой дозы, 7 (10,6%) - после второй. Среди случаев контактного ВАПП большинство детей не были вакцинированы (19 из 25,76%), 6 детей (24%) имели сведения о вакцинации. Учитывая длительный срок от момента получения ОПВ до возникновения паралича, выделение ПВ вакцинного происхождения, установленные контакты с возможным источником ПВ, эти случаи были отнесены к контактным случаям ВАПП. У больных ВАПП-реципиентов ОПВ период времени между получением ОПВ и началом паралича колебался от 6 до 35 дней (ш = 20,8±7,1). Среди больных полиомиелитом (возраст I - 24 мес.) преобладали дети до 1 года (82 из 93, 88,2%). Они составляли 92,4% (61 ребёнок из 66) среди случаев ВАПП у реципиентов, 80% (20 из 25) среди контактных случаев. Средний возраст всех больных полиомиелитом составил 6,4±4,4 мес., больных ВАПП-реципиентов ОПВ 5,7±3,6 мес., контактных ВАПП 7,9±5,2 мес. Результаты анализа

вакцинального статуса, данные о времени развития заболевания после получения ОПВ, о возрасте больных согласуются с данными наблюдений авторов из Беларуси, США, Великобритании (Ермолович и др., 2002; Nkowane etal., 1984; Strebel et al., 1992; Joce et al., 1992).

Случаи полиомиелита были зарегистрированы в 50 административных регионах РФ, географических и сезонных закономерностей распределения случаев не наблюдали.

Клиническая картина заболевания у всех больных была типичной. Среди клинических форм преобладала спинальная (97% среди всех случаев полиомиелита, 97% среди ВАПП у реципиентов, 96% среди контактных случаев ВАПП). В зависимости от локализации поражений монопарезы составили 40%, парапарезы - 32%, тетрапарезы - 27%. Наиболее редкой формой локализации (1 случай) был трипарез. Остаточные вялые парезы с развитием контрактур, атрофией мышц и другими последствиями наблюдали у всех больных. Два случая закончились летально.

ПВ были выделены от 83 случаев ВАПП (таб. 7). Вирусы одного типа выделяли чаще (р<0,05), чем смесь ПВ (70% и 30%, соответственно) как среди случаев ВАПП у реципиентов (60%), так и у контактных (92%) случаев, р <0,05. От случаев ВАПП в целом наиболее часто выделяли ПВ типа 3, затем 2 и 1 (52,9%, 29,8%, 17,4%, соответственно, р <0,05). Такое соотношение характерно для развитых стран (Strebel et al., 1992). Среди случаев ВАПП у реципиентов ПВ типа 3 (56%) преобладал над ПВ типа 2 (27,5%) и 1 (17,4%), р <0,05. От случаев ВАПП у контактных чаще выделяли ПВ типов 3 и 2 (43,3% и 36,7%, соответственно), чем ПВ типа 1 (20%).

Все выделенные штаммы (121) имели вакцинное происхождение и все, кроме пяти, проявляли характерные для вакцинных вирусов антигенные свойства. Степень дивергенции пяти штаммов от вакцинного предка была различна (Cherkasova et al., 2002, 2003, 2005; Иванова и др., 2007). Один из них (RUS 11262-99, табл. 4) был отнесён к VDPV.

Таблица 7

Результаты вирусологического исследования случаев полиомиелита в РФ,

1998-2005 гг. ;

Случаи ВАПП Количество случаев с выделением полиовирусов . . Количество штаммов ПВ каждого типа, выделенных от случаев

Всего Один тип Смесь ГШ

всего 1 2. 3 всего 1+2 1+3 2+3 1+2+3. . 1 2 3

Всего 83 58 10 13 35 25 1 . 5 14 5 21 36 64

У реципиентов 58 35 6 4 25 23 0 .4 14 . 5 .15 . 25 51

У контактных 25 23 4 9 10 2 1 1 0 0 6 И 13

Риску развития ВАШ! в наибольшей степени подвержены дети с дефектами иммунитета (Sutter, 1994; Khetsuriani et al., 2003), около 16% из них могут длительно выделять ПВ (Khetsuriani et al., 2003), который в процесс продолжительной репликации в организме хозяина способен значительно дивергировать от вакцинного предка. Для выявления возможных случаев длительной экскреции ПВ больными ВАПП, в 2002-05 гг. повторно были обследованы 36 больных ВАПП (из 49 зарегистрированных). Образцы фекалий отбирали на 60-й (28 детей) и 90-й (32 ребёнка) дни после начала заболевания. Три ребёнка (два были иммунокомпрометированы) выделяли ПВ более 2 месяцев.

Непривитой ребёнкок с пшогаммаглобулинемией выделял ПВ типа 2 в течение 78 дней (штамм RUS 18130). Выделенные штаммы ПВ проявляли антигенные свойства, нехарактерные для вакцинных, была установлена положительная динамика накопления мутаций в процессе репродукции вируса в организме ребёнка (Cherkasova et al., 2005) и высокая нейровирулентность в тесте на трансгепных мышах (Иванова и др., 2007). От ребёнка с агаммаглобулинемией, заболевшего на 128-й день после 3-й дозы ОПВ, ПВ

типа 2 выделили на 15-й (штамм RUS 20494) и 112-й (штамм RUS 20420) дни. Антигенные свойства штаммов не отличались от свойств штаммов Сэбина, однако в тесте на трансгенных мышах они проявляли высокую . нейровирулентность, более поздний был охарактеризован как более нейровирулентный, В антигеном сайте AgSl участка генома VP1 было выявлено наличие мутаций (Yakovenko et al., 2006). У третьего ребёнка, заболевшего после 1-й дозы ОПВ, длительность экскреции ПВ составила 109 дней: образцы, отобранные на 23-й, 59-й и 109-й день, содержали, соответственно, смесь ПВ типа 2 и 3, ПВ типа 1 и ПВ типа 2. Все штаммы имели вакцинное происхождение и антигенные свойства, характерные для вакцинных вирусов.

Повторные исследования образцов фекалий не выявили длительных экскреторов ПВ. Потенциально им мог быть ребёнок с агаммаглобулинемией, который выделял ПВ, по-крайней мере, 3 месяца. Однако он был потерян из наблюдения, из образцов, которые удалось отобрать на 345-й и 349-й дни, был выделен вирус Е22. ПВ, выделенные от этих детей, не могут быть отнесены к VDPV, но изменения в геноме и значительное повышение нейровирулентности в процессе репродукции вируса в кишечнике, говорят о том, что больные ВАПП, особенно с дефектами иммунитета, потенциально могут быть источником ре-интродукции изменённого ПВ в популяцию.

Из 38 детей-больных ВАПП с известным преморбидным статусом 35 имели различные нарушения состояния здоровья: перинатальное поражение ЦНС (19 больных), гипогаммаглобулинемию (6), парапроктит (7), дерматит, пиодермию, фурункулёз (4) анемию (4), пневмонию, бронхопневмонию, частые респираторные заболевания (9). У большинства диагнозы были сочетанными. Среди серологически обследованных детей с реципиентным ВАПП 23 из 24 (95,8%) имели антитела к одному (8,3%), двум (29,2%) или трём типам ПВ (58,3%) в сыворотках, отобранных в начале заболевания. В периоде реконвалесценции все дети имели антитела к ПВ (к одному типу 8,3%, двум -16,7%, трём - 75%). Исследование 15 сывороток детей с контактным ВАПП

показало, что в начале заболевания 3 ребёнка (20%) не имели антител к ПВ того типа, который был выделен от них, в период реконвалесцеиции все дети имели антитела. Дефицит показателей гуморального и клеточного иммунитета был выявлен у всех 16 иммунологически обследованных детей с ВАПП. У большинства (81,3%) были выявлены нарушения гуморального звена иммунитета. Наблюдали снижение уровня CD3+ в 86,7%, CD4+ в 35,7% и CD8+ в 91,7% случаев. Содержание иммуноглобулинов сыворотки крови/ изученное у 15 детей, показало, что уровень IgG был снижен у 6 (40%) детей, уровень IgM у одного ребёнка (6,7%), уровень IgA у 6 (40%). У одного из детей выявили агаммаглобулинемию, у 3-х - врождённый дефицит IgA. Большинство детей (11 из 13) имели неблагоприятный преморбидный статус (частые "респираторные инфекции, дисбактериоз, дерматиты). Полученные результаты указывают, что иммунодефицитное состояние является фактором риска развития поствакцинального осложнения в виде ВАПП после применения ОПВ. Образование вируснейтрализующих антител к ПВ у всех детей, свидетельствовало о способности организма к формированию специфического противовирусного иммунного ответа.

Оценили риск развития ВАПП в РФ в период применения ОПВ (1998 -2005 гг.). Частота возникновения случаев ВАПП составила 1 случай на 1,6 млн. распределённых доз ОПВ; частота развития ВАПП у реципиентов ОПВ - 1 случай на 2,2 млн. распределённых доз ОПВ; частота развития ВАПП у реципиентов первой дозы ОПВ - 1 случай на 186 тыс. детей. Эти величины близки к показателям, полученным в США (Nkowane et ab, 1987; Schönberger L.B. et al., 1976; Strebel et al., 1992), ниже показателей, полученных в Беларуси (Самойлович, 2004). Возникновение случаев ВАПП в стране, свободной от дикого ПВ нельзя считать приемлемым, поэтому в 2008 г. в Национальный календарь прививок РФ были внесены изменения, в соответствии с которыми в РФ вводится последовательная схема вакцинации против полиомиелита (ИПВ+ОПВ).

Значение дополнительного надзора за ПВ для программы

ликвидации полиомиелита. Надзор за синдромом ОВП является «золотым стандартом», рекомендованным ВОЗ для слежения за ПВ (Birmingham et al.„ 1997), на основании результатов которого выносится заключение о существовании циркуляции (заносов) дикого ПВ в стране. Факты выделения диких ПВ или значительно дивергировавших дериватов ОПВ из сточных вод при отсутствии случаев детекции вирусов в материалах от случаев ОВП (el Bassioni L. et al., 2003; Manor et al., 1999; Tambini et al., 1993), в том числе, в странах с хорошим надзором за ОВП и хорошо иммунизированным населением (Blomqvist et al., 2004; Cernakova et al., 2005; Manor et al., 1999; WHO, WER, 2008) подтверждают необходимость дополнительной информации о циркулирующих ПВ. Такие сведения могут быть получены при вирусологических исследованиях сточных вод. В РФ эти исследования выполняются в лабораториях Центров гигиены и эпидемиологии Роспотребнадзора в соответствии с алгоритмом, рекомендованным ВОЗ (WHO, 2003; WHO, 2004). В HJ1 направляются все выделенные штаммы ПВ, все выделенные неидентифицированные ЦПА (для исключения присутствия в пробе ПВ). Таким образом, вирусологические исследования сточных вод в РФ являются частью системы мониторинга за ПВ. Среди 3770 штаммов ПВ, подвергнутых ВТД в 2000-2007 гг., дикие не были обнаружены, что явилось дополнительным подтверждением отсутствия циркуляции диких ПВ в стране. Надзор за ПВ с помощью исследования сточных вод предоставляет значительно большее количество ПВ изолятов, чем надзор за ОВП (3770 и 800, соответственно). По наблюдениям 1999-2005 гг. количество штаммов ПВ с изменёнными антигенными свойствами, выделенными из сточных вод (238 из 2653, 8,9%) превышало количество таких штаммов, полученных при исследовании материалов от случаев ОВП и контактных лиц (52 из 1415, 3,7%). Это говорит об информационном значении исследования сточных вод для получения сведений о циркулирующих в стране ПВ. Находка VDPV-wismuob (R US 14170-01, RUS 16690-01, табл. 4) подтверждает возможность формирования и циркуляции значительно дивергировавших ПВ вакцинного

происхождения в хорошо иммунизированной популяции.

Исследование сточных вод определённых групп населения, в которых наиболее вероятна циркуляция ПВ, например, воспитанники домов ребёнка, детских домов (Иванова и др., 2005; СЬегказоуа е! а!., 2002; СЬегкавоуа е1 а!., 2005) позволяет повысить информативность и чувствительность надзора за ПВ.

Провели полевые исследования по оценке возможностей двух методов отбора и концентрирования сточных вод - одномоментного и сорбционного (\¥НО, 2003), для наблюдения за циркуляцией ПВ в закрытом детском коллективе. В течение 6 месяцев ежемесячно собирали пробы фекалий детей в Доме ребёнка и одновременно пробы сточных вод из коллектора Дома ребёнка и общего коллектора, принимающего стоки жилого микрорайона. Исследования сточных вод продолжили далее в течение 5 месяцев. Установили, что исследование сточных вод позволяет проводить долгосрочный мониторинг циркуляции ПВ и НПЭВ, менее трудоёмко, более эффективно - количество содержащих цитопатогенные вирусы образцов фекалий составляло 44±2,6%, образцов сточных вод 79%±7 (р<0,05) для сорбционного метода, 50±22% (р>0,05) для одномоментного. Статистически достоверной разницы между количеством позитивных проб, полученных при отборе каждым из методов, не установлено.

Исследование образцов фекалий выявило преобладание (р < 0,05) НПЭВ различных серотипов. Выделили 170 штаммов энтеровирусов: 71 (42%) штамм ПВ 3-х серотипов, 99 (58%) штаммов НПЭВ - 44 штамма Е 3, 6, 9, 25 и 29 серотипов, I штамм САУ9 и 54 штамма, которые не удалось идентифицировать в реакции нейтрализации (нетипирующиеся НПЭВ - нтНПЭВ). Из 32 штаммов, выделенных сорбционным методом, 23 (72%) были ПВ 3-х серотипов и 9 (28%) - НПЭВ (ЕЗ, 6, 25, нтНПЭВ). Преобладание ПВ (р < 0,05) среди изолятов из сточных вод, отобранных сорбционным методом, может быть связано со свойствами сорбента (Баева и др., 1990; Конторович и др., 1996). Одномоментным методом выделено 4 штамма: 2 штамма ПВ типа 1 и 3 и 2 штамма вируса Е 6 и 13.

Сезонная динамика выделения энтеровирусов из проб фекалий и сточной воды имела одинаковые тенденции: удельный вес позитивных проб в целом увеличивался к октябрю (68,9% и 100%, соответственно), ПВ преобладали с . мая по июль (до 31,6% и 85,7%,соответственно) доля проб, содержащих НПЭВ, увеличивалась с августа по сентябрь (67,2 и 100%, соответственно).

Сравнение эффективности методов отбора сточных вод за весь период наблюдения не выявило достоверной разницы частоты выделения вирусов (в коллекторе дома ребёнка - 72±6% для сорбционного, 50±14% для одномоментного метода; в общем коллекторе - 31 ±7% и 31±13%, соответственно). Сорбционный метод был более эффективен при отборе сточных вод из коллектора дома ребёнка, чем из общего коллектора (72% и 31%, соответственно, р <0,05); частота выделения вирусов с помощью одномоментного метода из коллектора дома ребёнка (50%) и общего коллектора (31%) достоверно не отличалась.

Штаммы ПВ (138), выделенные из образцов фекалий и сточных вод в ходе всего исследования, имели вакцинное происхождение. Секвенирование участка генома УР1 штаммов ПВ типа 1 с изменёнными антигенными свойствами, выделенными из пробы фекалий, отобранной от ребёнка на 66-й день после вакцинации, и из пробы сточной воды, собранной сорбционным методом в тог же день, выявило их идентичность и слабую (< 0,5% нуклеотидных замен) дивергенцию от вакцинного предка. Такая «парная» находка показала чувствительность исследования сточных вод.

Детские учреждения закрытого типа должны быть отнесены к «учреждениям риска» в отношении ПВ. Вакцинацию ОПВ проводили не одномоментно, а в разное время. Исследование охватывало детей, получивших от 1-й до 3-х доз ОПВ, а также непривитых. Наблюдали высокую частоту выделения ПВ (32% в июле, что можно считать высоким показателем (8атоПоу1сЬ е1 а1., 2003), экскрецию ПВ непривитыми на момент отбора пробы (3 ребёнка) и длительное выделение ПВ некоторыми детьми (выделение ПВ типа 1 на 301-й день после вакцинации у I ребёнка, смеси ПВ типа 1 и 2 ещё в

течение 77 дней после следующей дозы ОПВ). Необходимой мерой для ограничения циркуляции штаммов-производных ОПВ, способных к трансформации в высоконейровирулентные VDPV, является, прежде всего, ограничение применения ОПВ и замена её ИПВ, соблюдение карантинных мероприятий.

Внутрилабораторная контамииация диким ПВ в условиях выполнения Программы безопасного лабораторного хранения диких ПВ в

РФ. Глобальная ликвидация полиомиелита невозможна без системы мероприятий, направленной на выявление всех возможных неприродных источников диких ПВ и надёжного и безопасного их хранения (контейнмента). Пока население планеты активно вакцинируется против полиомиелита и уровень коллективного иммунитета высок, «утечка» дикого ПВ из лаборатории может остаться незамеченной, если такое событие произойдёт в иных условиях, последствия могут быть катастрофическими. Известны эпизоды выноса дикого ПВ из лабораторий в настоящее время (Mulders et al., 1997; WHO, 2003), имеются сообщения об обнаружении диких ПВ в коллекциях фекалий, собранных вне связи с исследованиями по полиомиелиту (Davies, et al., 2003; Pallansch and Staples, 2002; Savoilainen and Hovi, 2003). Поэтому система надзора за ПВ должна быть в состоянии выявить источник происхождения дикого ПВ в случае экстремальной ситуации.

С 1996 г. дикие штаммы ПВ не используются в качестве референс-штаммов в вирусологических лабораториях РФ (Письмо Госкомсанэпиднадзора России от 06.05.96 г. № 4/82-11). Однако в 2004 г. был выявлен факт внутрилабораторной контаминации исследуемых образцов диким штаммом Mahoney ПВ типа 1 в одной из вирусологических лабораторий (лаборатории X), которая заявляла об уничтожении диких вирусов.

Исследовали материалы из лаборатории X: штаммы ПВ, «выделенные» из образцов сточных вод; оригинальные образцы сточных вод; эталонные штаммы ПВ типов 1, 2 и 3 (штаммы Сэбина), используемые в лаборатории X для проведения серологических исследований.

Шесть цитопатогенных агентов (64Х, 66Х. 67Х, 75Х. 79Х, 84Х), «выделенных» из образцов сточных вод в лаборатории X, были идентифицированы как ПВ типа 1. По результатам ИФА штаммы обладали .антигенными свойствами, нехарактерными для вакцинных ПВ (NSL), по результатам ПЦР имели вакцинное происхождение (Sab+). Такие свойства могли проявлять как слабо изменённые (<1% отличий на участке генома VP1), так и значительно дивергировавшие (>1% отличий) от вакцинного предка ПВ. Частичное секвенирование геномов (район VP1) штаммов X и сравнительный анализ их нуклеотидных последовательностей с соответствующей последовательностью вакцинного штамма Sabin типа 1 показали, что все 6 штаммов на этом участке идентичны друг другу и имеют 8 нуклеотидных отличий от вакцинного предка (рис. 1). Образцы сточных вод были отобраны в разные дни в течение месяца в трёх разных городах, что позволило заподозрить внутрилабораторную контаминацию проб одним штаммом ПВ. Сравнение последовательности нуклеотидов штаммов X с соответствующей известной последовательностью дикого штамма типа 1 Mahoney (GeneBank, регистрационный номер AY082689) выявило их полную идентичность. Штамм Mahoney - дикий предшественник вакцинного ПВ штамма Sabin типа l(Sabin and Boulgcr, 1973) - был выделен в 1941 г. в США, при ВТД проявляет свойства NSL в ИФА и Sab+ в ПЦР. В настоящее время штамм Mahoney в природе не встречается, используется для производства ИПВ, широко применяется в вирусологических лабораториях мира в качестве эталонного штамма. Дня выявления возможного источника и механизма контаминации, в HJI были исследованы оригинальные образцы сточных вод.

Из 6 оригинальных образцов 3 дали негативный результат, из 3-х выделили смесь ПВ типов 1, 2 и 3, смесь типов 1 и 3, и ПВ типа 2. Все ПВ типов 2 и 3 были охарактеризованы как вакцинородственные. ПВ типа 1 (штаммы 66 и 67, рис . 1) проявляли такие же свойства, как и 6 штаммов X (NSL в ИФА, Sab\ в ПЦР). Секвенирование района VP1 геномов этих штаммов и сравнительный анализ их нуклеотидных последовательностей с

соответствующими последовательностями штаммов типа 1 Sabin и Mahoney показали, что штаммы идентичны друг другу, имеют 8 нуклеотидных замен по сравнению со штаммом Sabin типа 1 и 12 по отношению к штаммам X и штамму Mahoney. Таким образом, штаммы 66 и 67 не являются штаммами Mahoney, но представляют собой измененные варианты вакцинного штамма Sabin типа 1, а наблюдаемая степень дивергенции объясняет их характеристику в ИФА как NSL. Отсутствие штамма Mahoney в оригинальных образцах сточных вод, позволило заключить, что источник контаминации находился внутри лаборатории, а сама контаминация произошла на одном из этапов исследования образцов.

Sabin (тип 1)

Mahoney

Ne 64х, ббх. 67х, 75х, 79х, 84х

N9 66, 67 (тип 1)

Инг :

VP1

в 7 Т.Н.

Рисунок 1. Схематичное изображение нуклеотидных последовательностей ПВ штаммов на геномном участке VP1. Вертикальной чертой (|) отмечены нукпеотидные замены по сравнению с вакцинным штаммом Sabin типа 1. Также показано расположение участка VP1 на ПВ геноме (размеры генома приведены в тысячах нуклеотидов). * Нукпеотидные позиции, соответствующие границам участка VP1.

Исследование штаммов Сэбина, которые использовались в лаборатории как эталонные, проверка лабораторной документации, порядка проведения исследований (Иванова и др., 2006) показали, что дикие ПВ 3-х типов, в том

числе Mahoney, не были уничтожены в лаборатории и в течение, по крайней мере, 7 лет ошибочно использовались как вакцинные.

Выявление факта контаминации подтвердило эффективность и чувствительность системы вирусологического мониторинга ПВ.

Наблюдение за циркуляцией НПЭВ в РФ в 1999-2007 гг. Наиболее характерное клиническое проявление полиовирусной инфекции - синдром ОВП - может вызываться некоторыми серотипами НПЭВ - CAV, CBV, Е, EV70 и 71 (Pallansch and Roos, 2001). В то же время она может проявляться в виде асептического менингита или лёгкого лихорадочного состояния. Поэтому глобальная программа ликвидации полиомиелита ВОЗ рассматривает энтеровирусный надзор как дополнительный вид надзора за ПВ в странах, где циркуляция «местных» диких ПВ прекращена (ВОЗ, 2005). В РФ надзора за НПЭВ до недавнего времени (до 2009 г.) не существовало. Система надзора за ПВ, нацеленная, прежде всего, на обнаружение ПВ, позволяет детектировать и идентифицировать НПЭВ и вирусы, принадлежащие к другим семействам. Поэтому приоритетные сведения о НПЭВ, циркулировавших в РФ с 1999 по 2007 гг. были накоплены, главным образом, в результате надзора за ПВ.

Впервые получены данные об интенсивности циркуляции НПЭВ в РФ в период применения ОПВ. По результатам 9 лет наблюдения частота выделения НПЭВ от больных с синдромом ОВП составила 3,8±0,19 %. Ни у одного пациента, из образцов фекалий которого были выделены НПЭВ, не был диагностирован полиомиелит. Так как «целевой» группой при проведении надзора за ОВП являются дети в возрасте до 15 лет, а случаи ОВП регистрируются в течение всего года без сезонных подъёмов и спадов, можно полагать, что эта цифра отражает средний уровень циркуляции НПЭВ среди детского населения РФ в межэпидемический период. Частота выделения НПЭВ от контактных лиц составила 5±0,46%. Так как в группу контактных входили лица разного возраста, в том числе взрослые, то эта величина соответствует уровню циркуляции НПЭВ среди здорового населения РФ в целом, без учёта возрастных, сезонных и географических факторов. Эти значения могут быть

использованы для эпидемиологической оценки и прогнозирования ситуации по энтеровирусам.

Результаты серотипирования изолятов НПЭВ (табл. 8), полученные при проведении различных исследований (надзор за ОВП, спорадические случаи ЭВИ, сточные воды, здоровые лица) показали, что в течение 9 лет наблюдения наиболее часто на территории РФ выделяли CBV1-6, Е7, 30, 11, б, 25 и 13. Некоторые из этих серотипов превалировали в это же время среди НПЭВ в европейских странах (Е30, 6, 11, 7, 9, CBV5) и С1ПА (Antona et al., 2007; Khetsuríani et al., 2006). Совпадение основных циркулирующих серотипов отражает способность некоторых НПЭВ к достаточно быстрому глобальному распространению, что было подтверждено на молекулярном уровне, например, для Е30 (Lukashev et al, 2008; Savolainen et al, 2001). В РФ вирусы CBV 1-6, E7, 30, 11, 6 обнаруживались практически каждый год, но с разной частотой, что позволяет отнести их к «эпидемическим» серотипам (Khetsuríani et al, 2006). «Эпидемический» характер циркуляции Е6, 7, 30 был подтвержден результатами расшифровки некоторых вспышек ЭВИ, зарегистрированных в РФ (Иванова и др., 2008; Лукашев и др., 2008; Резник и др, 2007; Яшкулов и др., 2003).

Идентификация с помощью анализа частичной нуклеотидной последовательности области генома VP1 (Nix et al, 2006) 34 серологически неидентифицированных штаммов показала, что большую часть составляли вирусы группы САУ, а также вирусы Е и смеси НПЭВ; EV71, ЕV90, СВV1.

В разных группах наблюдения лидировали те же серотипы НПЭВ, циркуляция которых преобладала в РФ в целом: случаи ОВП и контактных лица - CBV1-6, Е11, 6, 13, 25, 30; ЭВИ, включая спорадические случаи менингитов, - Е30, CBV1-6, Е6, 9, 11, 7; сточные воды - Е7, CBV1-6, El 1, 6, 25, 12; здоровые дети - CBV1-6, Е30, 9, 29, 13. Вместе с тем, в группах были отмечены свои особенности. Так, НТНПЭВ значительно реже (р<0,001) обнаруживали при исследовании материалов от ЭВИ (8%). Выделение Е25 от больных с синдромом ОВП (6,4%) и из сточных вод (5,6%) значительно

Таблица 9

Результаты серотипирования НПЭВ в HJI по диагностике полиомиелита

(1999-2007 гг.)

1999 2000 2001 2002 2003 2004 2005 2006 2007 всего

Ссротйп^. абс %

CBV1-6 6 10 39 22 13 13 23 44 69 239 22,8

НТНПЭВ* 16 37 34 28 19 25 8 17 27 211 20,1

Е7 1 2 7 11 10 6 1 11 51 100 9,5

Е30 29 9 5 30 1 21 95 9,1

E1I 3 28 24 9 3 5 4 1 17 94 9,0

Е6 1 5 4 2 6 4 5 32 28 87 8,3

Е25 1 3 б 6 5 5 б 12 44 4,2

Е13 5 2 14 3 4 3 2 33 3,1

Е9 1 20 5 26 2,5

Е12 3 10 3 1 2 7 26 2,5

ЕЗ 1 4 5 4 2 6 22 2,1

Е4 1 6 5 12 М

Е14 5 1 2 3 11 1,0

Е20 I 3 2 4 10 0,95

Е29 8 1 1 10 0,95

CAV9 - 9 9 0,9

El 1 1 1 1 4 0,4

Е21 1 1 2 4 0,4

Е22" 3 1 4 0,4

ЕЗЗ 2 1 3 0,3

Е2 2 2 0,2

EI9 1 1 0,1

Е27 1 1 0,1

Всего 35 150 130 129 80 117 67 162 292 1048 100

Изоляты, выделенные при исследовании вспышек ЭВМ или эпизодов повышенной заболеваемости, в таблицу не включены.

Порядок расположения серотипов НПЭВ находится в соответствии с количеством штаммов. * - НТНПЭВ - нстипирующиеся неполиоэнтеровирусы - вирусы, которые не удалось идентифицировать в реакции нейтрализации с помощью набора пулов лошадиных антисывороток А-С производства RJVM. **- вирус ECHO 22 в настоящее время отнесён к роду Parechovirus (Parechovirus I).

превышало (р<0,001) выделение этого серотипа от больных ЭВИ (1,2%) и здоровых лиц (1,5%). Е12 чаще всего выделяли из сточных вод (4,9%) и не выделяли от больных с синдромом ОВП (р=0,001). Роль НПЭВ в развитии заболеваний с неврологической симптоматикой однозначно не определена. Наиболее очевидные доказательства получены для EV71 (Shindarov et al.,1979; Shahmahmoodi et al. 2008). По нашим данным среди НПЭВ, выделенных от случаев ОВП, преобладали CBV1-6 и Е11, что согласуется с наблюдениями многих исследователей (Самойлович и др., 2007; Junttila et al., 2007; Bahri et al., 2005). Очевидно, что установление связи НПЭВ определённых серотипов и различных заболеваний (как с неврологической симптоматикой, так и терапевтических) требует дальнейших наблюдений на основе системы

эпиднадзора за неполиомиелитными ЭВИ. Сеть лабораторий по диагностике полиомиелита РФ может быть базой для вирусологического компонента надзора.

Выводы

1. В РФ создана система вирусологического мониторинга ПВ, которая включает исследование материалов, полученных при выполнении эпидемиологического надзора за полиомиелитом и ОВП, дополнительного надзора за ПВ с помощью исследования сточных вод, вирусологический анализ всех штаммов ПВ, выделенных в РФ, в соответствии с алгоритмом вирусологических исследований, рекомендованным ВОЗ. Для проведения мониторинга создана и закреплена нормативно-методическими документами система взаимодействия лабораторий, участвующих в реализации программы ликвидации полиомиелита в РФ, которая обеспечивает непрерывность, оперативность и полноту вирусологических исследований. Высокие показатели качества работы HJIC гарантируют достоверность получаемых результатов. Выявление и расшифровка случая лабораторной контаминации диким ПВ подтвердили чувствительность системы вирусологического мониторинга ПВ и эффективность оперативного взаимодействия сети лабораторий по диагностике полиомиелита РФ.

2. Сохранение в мире эндемичных очагов дикого ПВ определяет необходимость продолжения иммунизационных и надзорных мероприятий по полиомиелиту в странах, свободных от дикого ПВ. На примере вспышки полиомиелита в Чечне и Ингушетии в 1995 г., вызванной диким ПВ типа 1, показана возможность быстрого глобального распространения дикого ПВ из эндемичного региона и возникновение вспышечной заболеваемости на ограниченной территории с низким уровнем коллективного иммунитета в неэндемичной стране.

3. Результаты вирусологического мониторинга показали, что циркуляция дикого ПВ прекращена в РФ в 1996 г. На основании этих данных 20 июня 2002 г. Европейская Региональная Сертификационная Комиссия признала РФ

«страной, свободной от полиомиелита».

4. Установлен уровень заболеваемости и основные характеристики ВАПП в РФ в период применения для вакцинации против полиомиелита ОПВ (1998-2005 гг.). Частота возникновения случаев ВАПП составила 1 случай на 1,6 млн. распределённых доз ОПВ, 1 случай на 2,2 млн. распределённых доз для реципиентов ОПВ, 1 случай на 186 тыс. детей для реципиентов первой дозы ОПВ. Большинство случаев ВАПП возникало у реципиентов ОПВ после получения 1-й дозы вакцины (89,4%), у контактных - среди непривитых детей (76%). Среди больных ВАПП преобладали дети в возрасте до 1 года (88,2%). Период времени от момента получения ОПВ до развития ВАПП составил 21 день (20,8±7,1). Случаи ВАПП были связаны с ПВ-дериватами вакцинных штаммов Сэбина типа 3, затем типов 2 и 1 (52,9, 29,8, 17,4 % случаев, соответственно). Иммунодефицитное состояние и неблагополучный преморбидный статус ребёнка являются факторами риска для развития ВАПП.

5. В хорошо иммунизированной популяции возможна длительная скрытая циркуляция вирусов-производных ОПВ, которая приводит к формированию высоко нейровирулентных вариантов вакцинородственных ПВ. Прекращение применения ОПВ и замена её ИПВ позволит предотвратить случаи ВАПП у реципиентов вакцины, значительно снизить риск возникновения УИРУ. В настоящее время в РФ существуют биологические условия для безопасного перехода от последовательной схемы вакцинации против полиомиелита (ИПВ+ОПВ) к исключительному применению ИПВ: высокий уровень коллективного иммунитета и отсутствие циркуляции диких ПВ.

6. В странах, в которых прекращена циркуляция дикого ПВ, вирусологические исследования сточных вод являются важнейшей частью мониторинга ПВ. Такие исследования имеют прогностическое значение для выявления заносов дикого ПВ из сохраняющихся эндемичных резервуаров, роль этого вида надзора будет возрастать для выявления циркулирующих ПВ-производных ОПВ в случае планируемого прекращения её использования.

Информативность исследований может быть повышена за счёт обследования сточных вод от отдельных групп населения, в которых наиболее вероятна циркуляция ПВ.

7. Система вирусологического мониторинга ПВ позволяет получать сведения о циркуляции НПЭВ. Установленный уровень циркуляции НПЭВ среди здорового населения РФ в 1999-2007 гг. (5%) может быть использован для оценки и прогноза эпидемической ситуации по ЭВИ. Определены «эпидемические» серотипы НПЭВ - вирусы CBV 1-6, Е7, 30, 11, 6. Сеть лабораторий по диагностике полиомиелита РФ может быть лабораторной основой для эпидемиологического надзора за неполиомиелитными ЭВИ.

Список основных работ, опубликованных по теме диссертации

1. Иванова О.Е., Сейбиль В.Б., Липская Г.Ю., Мартыненко И.Н., Конторович

B.Б., Царегородцев А.Д., Малышкина Л.П., Черкасова Е.А., Рогинская Е.С., Еремеева Т.П., Ефимова В.Ф., Садовникова В.Н., Лещйнская Е.В., Дроздов

C.Г. Вирусологическое и серологическое исследование вспышки полиомиелита в Чеченской республике в 1995 г. //Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии.-1996.-№3.-С.11-13.

2. Lipskaya G.Y., Kutateladze T., Saidov S., Ivanova O., Cherkasova L., Drozdov S., Pallansch M., Kew O., Agol V.I. Dynamics of wild poliovirus circulation in the former Soviet Union // X-th International congress of Virology.-1996.- Jerusalem, Israel.-P.143.

3. Черкасова E.A., Липская Г.Ю., Белова Г.И., Бондаренко В.И., Задорожная В.И., Иванова О.Е., Конторович В.Б., Королёва Г.А., Кутателадзе Т.Н., Максумов С.С., Синяк Л.И., Дроздов С.Г. Обнаружение штаммов вируса полиомиелита в природных изолятах и их идентификация с помощью цепной полимеразной реакции//Молекулярная генетика, микробиология и вирусология.-1996.-№ 2.-С.25-13.

4. Конторович В.Б, Иванова O.E., Еремеева Т.П., Ширман Г.А, Казанцева В.А.. Метод концентрирования вирусов в водных объектах окружающей среды//Вопросы вирусологии -199б.-№ 1 .-С.40-42.

5. Липская Г.Ю, Черкасова Е.А., Иванова O.E., Дроздов С.Г. Генотипирование диких штаммов вируса полиомиелита, изолированных на территории России и СНГ в 1987-1995 гг. //Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии,-1998.-№5.-С.70-74.

6. Лещинская Е.В, Мартыненко И.Н, Леонтьева И.Я, Иванова O.E., Рогинская Е.С, Прыткова М.И. Полиомиелит в России в 1970-1995 гг.//Эпидемиология и инфекционные болезни.-1998.-№ 3.-С.11-15.

7. Ivanova O.E., Eremeeva Т.Р, Karganova G.G., Rumyantsev A.A, Leshinskaya E.V., Lipskaya G.Yu, Cherkasova E.A, Korotkova E.A, Grachev V.P, Drozdov S.G.. Poliomyelitis in Russia in 1998-1999. Hin F.Brown (ed.). Progress in Polio Eradication: Vaccine Strategies for the End Game. Developments in Biologicals. Karger.-2001 .-Vol. 105.-P. 219-223.

8. Ivanova O.E., Eremeeva T.P, Lipskaya G.Y., Cherkasova E.A., Gavrilin E.V., Drozdov S.G. Outbreak of paralytic poliomyelitis in the Chechen Republic in 1995. // in F.Brown (ed.). Progress in Polio Eradication: Vaccine Strategies for the End Game. Developments in Biologicals. Karger.-2001 .-Vol. 105.-P. 231-237.

9. Cherkasova E.A, Korotkova E.A, Yakovenko M.L, Ivanova O.E., Eremeeva T.P, Chumakov K.M., Agol V.A. Long-term circulation of vaccine-derived poiioviruses that causes paralytic disease//J. of Virology.-2002.-Vol.76 (13).-P.6791-6799.

Ю.Иванова O.E., Еремеева Т.П. Национальная лабораторная сеть Российской Федерации по диагностике полиомиелита и её роль в выполнении программы ВОЗ по ликвидации полиомиелита//Эпидемиология и вакцинопрофилактика.-2003.-№ 1 .-С.26-30.

И.Иванова O.E., Еремеева Т.П., Воронцова Т.В, Садовникова В.Н, Ясинский A.A. Итоги деятельности Национальной лабораторной сети по диагностике

полиомиелита в Российской Федерации в 2002 году//Эпидемиология и вакцинопрофилактика.-2003.-№4.-С.37-40.

12. Иванова O.E., Еремеева Т.П., Короткова Е.А., Лковенко M.JI., Чернявская О.П., Воронцова Т.В., Ясинский A.A. Надзор за полиомиелитом и ОВП в Российской Федерации до и после сертификации ликвидации полиомиелита в Европейском регионе, 1999-2003 гг.Юпидемиология и вакцинопрофилактика.-2004.-№ 4( 17).-С.6-12.

13. Лукашев А.Н., Иванова O.E., Еремеева Т.П., Лашкевич В.А., Черненко К.Е.. Молекулярная эпидемиология вируса ECHO 30. на территории России и стран СНГ.//Вопросы вирусологии!-2004.-№ 5.-С.1246.

14. Cherkasova Е.А., Yakovenko M.L., Rezapkin G.V., Korotkova E.A., Ivanova O.E., Eremeeva T.P., Krasnoproshina L.I., Romanenkova N.I., Rozaeva N.R., Sirota L., Agol V.l., Chumakov K.M. Spread of vaccine-derived poliovirus from a paralytic case in immunodeficient child: an insight into natural evolution of oral poHovaccine.//Virology.-2005.-Vol.79(2).-P.1062-1070.

15. Иванова O.E., Романенкова Н.И., Еремеева Т.П., Розаева Н.Р., Бичурина М.А., Чернявская О.П., Ясинский A.A. Риск развития случаев острого вялого паралича и вакциноассоциированного полиомиелита в закрытых детских коллективах - домах ребёнка и детских лечебных стационарах.//Эпидемиология и вакцинопрофилактика.-2005.-№ 1(20).-С.14-18.

16.Иванова O.E. Вакциноассоциированныи паралитический полиомиелит.//Эпидемиология и вакцинопрофилактика. - 200б.-№5(30).-С.42-48. •

17.Иванова O.E., Еремеева Т.П., Короткова Е.А., Яковенко М.Л., Курибко С.Г., Фёдорова В.Б., Бабкина Г.М., Петина B.C., Воронцова Т.В., Ясинский A.A. Ликвидация полиомиелита в мире: внутрилабораторная контаминация диким полиовирусом в условиях выполнения Программы безопасного лабораторного хранения диких полиовирусов (контейнмента) в Российской Федерации.//Вопросы вирусологии.-2006.-№ 6.-С.43-46.

18.Yakovenko M.L., Cherkasova E.A., Rezapkin G.V., Ivanova O.E., Ivanov A.P., Eremeeva T.P., Baykova O.Y., Chumakov K.M., Agol V.I. Antigenic evolution of vaccine-derived polioviruses: changes in individual epitopes and relative stability of the overall immunological properties.//.! of Virology.-2006.-Vol.80(6).-P.2641-2653.

19.Краснопрошииа Л.И., Иванова O.E., Еремеева Т.П., Сходова С.А., Чернявская О.П.. Дефекты клеточного и гуморального иммунитета у детей с вакциноассоциированным паралитическим полиомиелитом.//Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии.-2006.-Ж7.-С.47-54.

20. Иванова О.Е. Значение дополнительного надзора за полиовирусом для программы ликвидации полиомиелита.//Эпидемиология и вакцинопрофилактика.-2007.-№ 5.-С.8-15.

21. Иванова О.Е, Еремеева Т.П., Лещинская Е.В., Короткова Е.А., Яковенко М.Л., Чернявская О.П., Черкасова Е.А., Драгунская Е.М., Деконенко Е.П., Мартыненко И.Н., Краснопрошина Л.И., Сорокина М.П. Паралитический полиомиелит в Российской Федерации в 1998-2005 гг.//Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии.-2007.-№ 5.-С.37-44.

22.Lukashev A.N., Ivanova О.Е., Eremeeva Т.Р., Gmyl L.V. Analysis of echovirus 30 isolates from Russia and new independent states revealing frequent recombination and reemergence of ancient lineages.//J of Clinical Microbiology.-2008.-Vol.46(2).-P.665-670.

23.Лукашев A.H., Резник В.А., Иванова O.E., Еремеева Т.П., Каравянская Т.Н., Перескокова М.А., Лебедева Л.А., Лашкевич В.А., Михайлов М.И. Молекулярная эпидемиология вируса ECHO 6 - возбудителя вспышки серозного менингита в Хабаровске в 2006 г .//Вопросы вирусологии.-2008.-№ 1.-C.16-2I.

24. Баранов А.А., Горелов А.В., Иванова О.Е., Идрисова Р.С., Крамарев С.А., Матвеев В.А., Михайлов М.И.. Намазова Л.С., Платонов А.Е., Подколзин А.Т., Романенко В.В., Семененко Т.А., Таточенко В.К., Харит С.М., Чернышова Л.И., Шамшева О.В., Шаханина И.Л., Шахгильдян И.В.

Контроль за инфекциями с преимущественно энтеральной передачей средствами специфической профилактики в Республике Беларусь, Республике Казахстан, Российской Федерации и Украине: современное состояние вопроса.//Эпидемиология и вакцинопрофилактика.-2008.-№ 6(43).-C.3-17.

25.Иванова О.Е., Еремеева Т.П., Лукашев А.Н., Байкова О.Ю., Морозова Н.С., Мустафина А.Н. Наблюдение за циркуляцией неполиомиелитных энтеровирусов в Российской Федерации в 1999-2007 гг.//Медицинская вирусология. Труды ИПВЭ им.М.П.Чумакова РАМН.-2008.-Москва,-T.XXV.-C. 11-22.

26. Yakovenko M.L., Korotkova Е.А., Ivanova О.Е., Eremeeva T.P., Samoilovich E., Uhova I., Gavrilin G.V., Agol V.I. Evolution of the Sabin vaccine into pathogenic derivates without appreciable changes in antigenic properties: need for improvement of current poliovirus surveillance.//.! of Virology.-2009.-Vol.83(7).-P.3402-3406.

27.Иванова O.E., Еремеева Т.П., Байкова О.Ю., Логиновских Н.В., Чепурко Т.Г., Короткова Е.А., Яковенко М.Л., Мустафина А.Н. Исследование сточных вод в доме ребёнка как подход к надзору за циркуляцией полиовирусов.//Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии.-2009.-№ 1.-С.12-16.

28. МсWilliam L.E.C., Bendig J., Cabrerizo M., Cardosa J., Hyypia Т., Ivanova O.E., Kelly A., Kroes A.C., Lukashev A., MacAdam A., McMinn P., Roivainen M., Trallero G., Evans D.J., Simmonds P. Transmission networks and population turnover of echovirus 30.//J of Virology.-2009.-Vol.83(5).-P.2109-2118.

Монография

Онищенко Г.Г., Дроздов С.Г., Лялина Л.В., Бичурина М.А., Грачёв В.П.,

Иванова О.Е., Ясинский А.А., Романенкова Н.И., Жебрун А.Б. Проблемы

ликвидации полиомиелита. -2008.- Санкт-Петербург. - 303 С.

.-49

Список сокращений ... ВАПП - вакциноэссоциированный паралитический полиомиелит ВОЗ (WHO) - Всемирная Организация Здравоохранения (World Health Organization)

ВТД - внутритиповая дифференциация полиовирусов

ИПВ — инактивированная полиовирусная вакцина

ИФА (ELISA) - иммуноферментный анализ (enzyme linked immunosorbent

assay)

HJI - Национальная референс-лаборатория

HJIC - Национальная лабораторная сеть

НПЭВ - неполиомиелитные энтеровирусы

НТНПЭВ - нетипирующиеся неполиомиелитные энтеровирусы

ОВП - острый вялый паралич

ОПВ - оральная полиовирусная вакцина

ПВ - вирус полиомиелита (полиовирус)

IIIJP (PCR) - полиомеразная цепная реакция

РРЛ - Региональная референс-лаборатория

CHJI - Суб-национальная референс-лаборатория

VDPV - значительно дивергировавшие от вакцинного предка полиовирусы (vaccine-derived polioviruses)

ЦПЭ (ЦПД) - цитопатический эффект (цитопатическое действие) ЭВИ - энтеровирусная инфекция

 
 

Оглавление диссертации Иванова, Ольга Евгеньевна :: 2009 :: Москва

Список сокращений.5'>

Введение.

Глава 1. Глобальная инициатива ВОЗ по искоренению полиомиелита.20'

1.1. Вирус полиомиелита и полиомиелит.

1.1.1. Характеристика вируса полиомиелита^.

1.1.2. Патогенез.и болезнь.23 ^

1.1.3. Профилактика полиомиелита.

1.2. Стратегия программы искоренения полиомиелита.

1.2.1. Иммунизация.

1.2.2. Надзор за-вирусом полиомиелита.

1.2.3. Эпидемиологический надзор за ОВП.' 38>

Глава 2. Вирусологические исследования в программе искоренения полиомиелита. Лабораторная сеть и функции лаборатории.44f

2.1. Национальная сеть лабораторий-по диагностике полиомиелита Российской Федерации: Анализ качества-работы.

2.2. Лабораторные исследования и>методы.:.

2.2:1. Выделение вируса на культуре клеток и его идентификация

2.2.2. Внутритиповая дифференциация полиовирусов.

2.2.3. Материалы и методы, использованные в работе.

2.2.4. Оптимизация лабораторных исследований.

2.3. Вирусологические результаты надзора за ОВП в РФ.

2.4. Сертификация ликвидации полиомиелита.

2.5. Совершенствование надзора за полиомиелитом и ОВП

Глава 3. Прогресс в выполнении программы искоренения полиомиелита.

3.1. Заболеваемость полиомиелитом в Российской Федерации.

3.2.Вспышка полиомиелита в Чеченской Республике в 1995г.

Глава 4. Некоторые проблемы, возникающие на этапе постсертификации ликвидации полиомиелита в РФ.

4.1. Вакциноассоциированный паралитический полиомиелит.

4.2. Паралитический полиомиелит в РФ в 1998 - 2005 гг.

4.2.1. Вирусологические исследования.

4.2.2: Наблюдение за длительностью экскреции полиовирусов у детей с ВАШ!.

4.2.3. Серологические исследования.

4.2.4. Частота возникновения ВАПП.

4.2.5. Изучение показателей клеточного и гуморального иммунитета у детей с ВАПП.

4.3. Вакцинородственные полиовирусы.

Глава 5. Значение дополнительного надзора за полиовирусом для программы ликвидации полиомиелита.

5.1. Результаты дополнительного надзора за вирусом полиомиелита в Российской Федерации.

5.2. Исследование сточных вод как подход к контролю циркуляции полиовирусов в закрытых детских коллективах.

Глава 6. Безопасное лабораторное хранение диких полиовирусов (контейнмент).

6.1. Выполнение программы по безопасному лабораторному хранению диких полиовирусов (контейнмент) в Российской Федерации.

6.2. Внутрилабораторная контаминация диким полиовирусом в условиях выполнения Программы безопасного лабораторного хранения диких полиовируов в Российской Федерации.

Глава 7. Лабораторная сеть по диагностике полиомиелита

Российской Федерации как основа для надзора за неполиомиелитными энтеровирусами. Результаты наблюдения за циркуляцией неполиомиелитных энтеровирусов в Российской Федерации в 1999-2007 гг., полученные при надзоре за вирусом полиомиелита.

Обсуждение.

Выводы.

 
 

Введение диссертации по теме "Эпидемиология", Иванова, Ольга Евгеньевна, автореферат

Актуальность проблемы

Двадцатый век был ознаменован фундаментальными открытиями в области биологии и медицины, следствием которых стали новые возможности не только для всестороннего изучения и терапии инфекционных заболеваний, но и для предупреждения их возникновения, а именно, создание высокоэффективных вакцинных препаратов и развитие методов лабораторной диагностики. Наиболее впечатляющим итогом борьбы человечества с инфекциями стало успешное завершение в 1980 г. Программы Всемирной Организации Здравоохранения (ВОЗ) по ликвидации оспы. В 1988 г. Всемирная Ассамблея Здравоохранения приняла решение о глобальной ликвидации полиомиелита, а страны-члены ВОЗ, в том числе — Российская Федерация, приступили к выполнению этого решения. Программа ликвидации полиомиелита во многом опиралась на научный и практический опыт выполнения программы ликвидации оспы, где под ликвидацией понимали прерывание трансмиссии инфекции и исчезновение заболеваний. Так как вирус полиомиелита (полиовирус, ПВ) вызывает клинически выраженное заболевание только у незначительного числа инфицированных, критерием ликвидации полиомиелита является ликвидация возбудителя. Поэтому реализация программы ликвидации полиомиелита была невозможна без создания и практического внедрения чувствительной, высокодостоверной и максимально полной системы вирусологического подтверждения отсутствия а) случаев заболевания, вызванных диким полиовирусом, и б) дикого полиовируса в любых возможных материалах (клинических пробах, пробах из объектов окружающей среды). Глобальный характер программы продиктовал такие требования к лабораторным исследованиям, как стандартность используемых реагентов, диагностических методов, систем и лабораторных процедур, скорость выполнения лабораторных исследований, возможность анализа и оценки получаемых результатов экспертами ВОЗ.

Национальная программа ликвидации полиомиелита Российской Федерации, принятая в 1996 г., явилась частью Европейской региональной и Глобальной программы ликвидации этого заболевания. К этому времени в РФ проблема полиомиелита как массового инфекционного заболевания, жертвами которого ежегодно становились сотни тысяч детей, была практически решена благодаря массовой вакцинации с помощью оральной полиовирусной вакцины (ОПВ), в стране регистрировали до нескольких десятков заболевших. Однако дикие вирусы полиомиелита продолжали циркулировать и в сопредельных странах, и в РФ. Хотя методы лабораторной диагностики полиовирусной инфекции были достаточно хорошо разработаны ещё в 60-70-е годы XX века, системы вирусологического мониторинга вируса полиомиелита, отвечающей перечисленным выше требованиям, не существовало. Поэтому для выполнения программы ликвидации полиомиелита в РФ, а следовательно, региональной и глобальной программ ВОЗ, было необходимо создание такой системы, что и явилось целью данной работы.

В задачи работы входило:

1.Внедрить^в^РФ предложенный ВОЗ алгоритм вирусологического исследования материалов, полученных при выполнении эпидемиологического надзора за полиомиелитом и острыми вялыми параличами (ОВП).

2.Проводить в Национальной лаборатории по диагностике полиомиелита (НЛ) в ИПВЭ им.М.П.Чумакова РАМН вирусологические исследования всехjviarepnajiOB, собранных при выполнении программы ликвидации полиомиелита в РФ.

3.Создать в HJI базу для обеспечения вирусологических лабораторий РФ, участвующих в реализации Программы ликвидации полиомиелита, референс-материалами (культурами клеток, вакцинными штаммами Сэбина, диагностическими и тестовыми материалами и т.д.), необходимыми для проведения вирусологических исследований.

4.Проводить координационное и методическое руководство вирусологическими лабораториями РФ, участвующими в реализации Программы ликвидации полиомиелита, разработать предложения для совершенствования надзора за полиовирусом в РФ. Проводить анализ

I качества работы Национальной лабораторной сети по полиомиелиту \(НЛС). ~

5.Провести вирусологический и эпидемиологический анализ случаев i заболевания полиомиелитом в РФ, установить основные характеристики случаев вакциноассоциированного паралитического полиомиелита (ВАШ!) для обоснования предложений по совершенствованию вакцинопрофилактики полиомиелита в РФ.

6. Обосновать необходимость проведения надзора за вирусом* полиомиелита с помощью исследования сточных вод как важной составляющей вирусологического мониторинга полиовируса.

7.Получить данные о циркуляции неполиомиелитных энтеровирусов (НПЭВ) в РФ. ^^

Научная новизна

Показано, что для получения наиболее полных сведений о циркулирующих полиовирусах необходима система мониторинга, которая включает исследование материалов, полученных при выполнении надзора за полиомиелитом и ОВП и исследовании сточных вод, а также вирусологическийанализ„всехлптаммовполиовирусов, выделенных в лабораториях страны, в соответствии с алгоритмом вирусологических исследований, предложенным ВОЗ.

Впервые проведены широкомасштабные, систематические наблюдения за циркуляцией вируса полиомиелита на территории РФ в период применения ОПВ (с 1999 по 2007 гг.). Выполнены вирусологические исследования всех материалов (образцов фекалий, сточных вод, сывороток крови, выделенных штаммов полиовирусов), собранных при выполнении программы ликвидации полиомиелита в РФ и направленных в HJI в соответствии с нормативно-методическими документами РФ. Впервые установлено происхождение полиовирусов, выделенных из разных источников (от случаев ОВП, контактных с ними здоровых лиц, сточных вод) на территории РФ с 1999-по 2007 г.

На примере вспышки полиомиелита в Чеченской республике (ЧР) в 1995 г. впервые дана характеристика вспышки, возникшей на ограниченной территории, детское население которой имело недостаточный уровень охвата- прививками против полиомиелита и низкий уровень коллективного иммунитета, при общем высоком уровне коллективного иммунитета в стране. Установлена возможность быстрого глобального распространения дикого полиовируса из эндемичного региона, формирования очага циркуляции, возникновения вспышечной заболеваемости. Впервые показано, что такая вспышка имеет основные характеристики, свойственные вспышкам полиомиелита в развивающихся странах в до-вакцинальную эру.

Система мониторинга вируса полиомиелита позволила впервые установить существование длительной скрытой циркуляции вирусов-производных ОПВ, которая может приводить к формированию высоко нейровирулентных вариантов вакцинородственных полиовирусов (VDPV), в популяции с высоким (более 95%) уровнем охвата прививками против полиомиелита.

Впервые установлен уровень заболеваемости и основные характеристики ВАПП в РФ в период применения для вакцинации против полиомиелита ОПВ (1998-2005 гг.). Впервые проведён анализ состояния иммунитета и преморбидного статуса детей, заболевших ВАПП.

Показано, что для эффективного мониторинга вируса полиомиелита необходимо вирусологическое исследование сточных вод. Информативность и чувствительность исследований может быть повышена за счёт обследования сточных вод от отдельных групп населения, в которых наиболее вероятна циркуляция полиовируса. В полевых наблюдениях выполнено сравнение эффективности 2-х методов концентрирования сточных вод.

Впервые получены сведения о циркуляции НПЭВ в РФ в период 1999-2007 гг. Установлен уровень циркуляции НПЭВ среди здорового населения страны (5%), определены «эпидемические» серотипы НПЭВ.

Практическая значимость работы

Создана система вирусологического мониторинга вируса полиомиелита, которая включает исследование материалов, полученных при выполнении эпидемиологического надзора за полиомиелитом и ОВП, дополнительного надзора за полиовирусом с помощью исследования сточных вод, анализ всех штаммов полиовирусов, выделенных в РФ, в соответствии с алгоритмом вирусологических исследований, рекомендованным ВОЗ.

Показано, что циркуляция дикого вируса полиомиелита в РФ прекращена в 1996 г. На основании данных, полученных в период 19992002 гг., Европейская Региональная Комиссия по сертификации полиомиелита ВОЗ признала РФ страной, «свободной от полиомиелита». РФ сохраняет этот статус до настоящего времени. Система вирусологического мониторинга позволила установить, что дикие вирусы полиомиелита типа 1, выявленные в РФ в 2004 г., были следствием лабораторной контаминации образцов сточных вод штаммом Mahoney.

Вспышка полиомиелита в ЧР в 1995 г. показала, что при недостаточном уровне коллективного иммунитета в регионе или стране, свободной от дикого полиовируса, возможно межконтинентальное распространение вируса из пока ещё существующих эндемичных резервуаров и возникновение вспышечной заболеваемости. Для предупреждения такого развития событий необходимо продолжать вакцинацию против полиомиелита и надзор за вирусом полиомиелита на уровне, рекомендованном ВОЗ. Существование длительной скрытой циркуляции вирусов-производных ОПВ, которая может приводить к формированию высоконейровирулентных вариантов вакцинородственных полиовирусов, является веским доказательством необходимости продолжения этих мероприятий.

Для совершенствования надзора за полиомиелитом и ОВП практически подтверждена эффективность подходов, позволяющих в более короткие сроки получать результаты исследований, что необходимо для экстренной оценки ситуации и формирования эпидемиологических решений. Показана информативность исследования материалов от приоритетных «горячих» случаев ОВП. Установлена возможность оптимизации алгоритма вирусологического исследования, предложенного ВОЗ - использование двух культур клеток (RD и L20B) для выделения полиовируса и сокращение общего времени исследования до 10 дней без потери чувствительности.

В полевых исследованиях показано, что эффективность двух методов концентрирования сточных вод (одномоментного и сорбционного) сопоставима; оба метода могут быть использованы для мониторинга вируса полиомиелита.

Результаты анализа случаев ВАПП стали основанием для изменения схемы вакцинации против-полиомиелита в РФ: с 2008 г. введена 3-х кратная вакцинация с помощью инактивированной полиовирусной вакцины (ИПВ) и ревакцинация ОПВ.

Установленный уровень циркуляции НПЭВ среди здорового населения РФ может быть использован» для оценки и прогноза эпидемической ситуации ' по энтеровирусным инфекциям (ЭВИ). Методические подходы системы мониторинга вируса полиомиелита могут быть основой для эпидемиологического надзора за неполиомиелитными ЭВИ. На основании результатов изучения циркуляции НПЭВ и опыта проведения мониторинга полиовируса подготовлена научно-практическая * программа «Эпидемиологический надзор и профилактика энтеровирусной (неполно) инфекции на 2009-2011 гг.» (утверждена Главным-государственным санитарным врачом РФ Г.Г.Онищенко 31.12.08 г.).

Результаты* исследований были использованы при подготовке нормативных и методических документов:

Санитарные правила

1. Безопасность работы с материалами, инфицированными или потенциально инфицированными диким полиовирусом. СП. 1.3.1325-03.-Москва.- 2003.

2.Профилактика полиомиелита в постсертификационный период. СП 3.1.2343-08. - Москва. - 2008.

3.Порядок учёта, хранения, передачи и транспортирования материалов, инфицированных или потенциально инфицированных диким полиовирусом. СП 3.1.2260-07. - Москва. - 2008.

Методические указания 1.Сбор и концентрирование кишечных вирусов из воды с помощью водопроницаемых пакетов с сорбентом. - Минск. - 1997.

2.Энтеровирусные заболевания: клиника, лабораторная диагностика, эпидемиология, профилактика. МУ 3.1.1.2130-06. - Москва. - 2006.

3.Санитарно-вирусологический контроль водных объектов. МУК 4.2.2029-05.-Москва.-2006.

4. Эпидемиологический надзор и профилактика энтеровирусной (неполно) инфекции. МУ 3.1.1.2363-08. - Москва. - 2008.

5.Организация и проведение вирусологических исследований материалов от больных полиомиелитом, с подозрением на это заболевание, с синдромом острого вялого паралича (ОВП). МУК 4.2.2410-08. - Москва. -2008.

6. Организация и проведение вирусологических исследований на полиомиелит, другие (неполно) энтеровирусы материала- из объектов окружающей среды. МУ 3.1.1.2357-08. - Москва. - 2008.

7. Эпидемиологический надзор за полиомиелитом' и острыми вялыми параличами, в постсертификационный период. МУ 3.1.1.2360-08. -Москва. - 2008.

Материалы диссертационной работы были использованы при подготовке практического руководства «Лабораторная диагностика опасных инфекционных болезней» (под ред. академика РАМН, профессора Г.Г.Онищенко и чл-корр. РАМН, профессора В.В.Кутырева. - Москва. -«Медицина». - 2009. - 470 С.) Основные положения, выносимые на защиту

1. Для реализации программы ликвидации полиомиелита в РФ создана система мониторинга полиовируса, которая основана на исследовании материалов, полученных при выполнении эпидемиологического надзора за полиомиелитом и ОВП и дополнительных видов надзора за полиовирусом в соответствии с алгоритмом вирусологических исследований, рекомендованным ВОЗ.

2. Существование ограниченной территории (региона) с низким уровнем коллективного иммунитета м вирусу полиомиелита в неэндемичной стране (регионе) с высоким общим уровнем коллективного иммунитета является фактором риска для возникновения случаев (вспышки) заболевания полиомиелитом при заносе дикого полиовируса из эндемичного очага. Поэтому мероприятия по иммунизации населения против? полиомиелита и надзору за полиовирусом в РФ* не могут быть прекращены и должны поддерживаться на уровне, рекомендованном ВОЗ.

3. С 1996 г. в РФ прекращена циркуляция дикого вируса полиомиелита. Выделение дикого- полиовируса в РФ в- 2004 г. было фактом внутрилабораторной контаминации.

4. Уровень заболеваемости и основные характеристики, ВАПП в РФ в период-применения для иммунизации против4 полиомиелита ОПВ (1998-2005 гг.) были такими же, как в развитых странах мира, применяющих ОПВ'. Факторами' риска для развития ВАПП являются иммунодефицитное состояние и неблагополучный преморбидный статус ребёнка.

5. В' хорошо иммунизированной популяции возможна^ длительная' скрытая циркуляция вирусов-производных ОПВ, которая может привести к формированию высоко нейровирулентных вариантов f вакцинородственных полиовирусов. Изменение стратегии применения полиовирусных вакцин в РФ* - прекращение применения ОПВ и замена- её ИПВ - позволит предотвратить случаи ВАПП у реципиентов вакцины, значительно снизить риск возникновения VDPV.

6. При сохранении в мире эндемичных резервуаров дикого вируса полиомиелита, существовании возможности его заноса в страны, «свободные от полиомиелита», исследования сточных вод являются важнейшей частью мониторинга полиовируса в РФ. Роль этого вида надзора для выявления циркулирующих вирусов полиомиелита, в том числе, VDPV, будет возрастать по мере сокращения использования ОПВ

7. Система вирусологического мониторинга вируса полиомиелита может быть использована для решения задач надзора за неполиомиелитными ЭВИ. Уровень циркуляции НПЭВ среди здорового населения РФ в целом без учёта возрастных, сезонных и географических факторов в межэпидемический период составляет 5±0,46%. «Эпидемическими» серотипами НПЭВ в период 1999-2007 гг. были вирусы CBV 1-6, Е7, 30, 11, 6.

Публикации и апробация работы

По результатам работы опубликовано 70 печатных работ; основные материалы представлены в 26 статьях в реферируемых научных журналах, из них 8 опубликованы зарубежом, в одной монографиям, 2 статьях в сборниках.

Материалы исследований были представлены и обсуждены: - на научных конференциях - X Международном Вирусологическом Конгрессе (Иерусалим, Израиль, 1996); Научной конференции «Актуальные проблемы медицинской вирусологии» (Москва, 1999); Научно-практической конференции "Инфекционные болезни на рубеже XXI века"(Москва, 2000); Научной конференции "Достижения отечественной эпидемиологии в XX веке. Взгляд в будущее" (Санкт-Петербург, 2001); 12-ой конференции Европейской Научной Группы по молекулярной биологии пикорнавирусов (Sea Creast, США, 2002); Международном конгрессе «Ликвидация и элиминация инфекционных болезней - прогресс и проблемы» (Санкт-Петербург, 2003.); 6-м международном форуме по глобальной вакцинологии «Вакцины и иммунизация» (Минск, Беларусь, 2003); Всероссийской научно-практической конференции «Гигиенические проблемы водоснабжения населения и войск» (Санкт-Петербург, 2003); 7-м международном симпозиуме по позитивным РНК-содержащим вирусам (Сан-Франциско, США, 2004); 6-м международном конгрессе «Вода: экология и технология» ЭКВАТЭК-2004 (Москва, 2004); конференции «Генетика в XXI веке: современное состояние и перспективы развития»(Москва, 2004); Научной конференции, посвящённой 50-летию ИПВЭ им.М.П.Чумакова РАМН (Москва, 2005); VI Межгосударственной научно-практической конференции государств-участников СНГ «Санитарная охрана территорий государств-участников Содружества Независимых Государств: проблемы биологической безопасности и противодействия биотерроризму в современных условиях» (Волгоград, 2005); Всероссиийской научной конференции «Эпидемиология, лабораторная диагностика и профилактика вирусных инфекций» (Санкт-Петербург, 2005); IX Съезде Всероссийского научно-практического общества эпидемиологов, микробиологов и паразитологов «Итоги и перспективы обеспечения эпидемического благополучия населения Российской Федерации» (Москва, 2007); Международном медицинском форуме «Индустрия здоровья», Симпозиум «Полиомиелит — прошлое, настоящее и будущее (к 100-летию установления вирусной этиологии болезни)» (Москва, 2008); Национальной конференции «Аллергология и клиническая иммунология - междисциплинарные проблемы» (Москва, 2008); Совместном заседании Восточно-Европейского совета экспертов в области вакцинопрофилактики и Совета экспертов по профилактике вирусных гепатитов (Москва, 2008); 4-ой международной конференции, посвящённой 85-летию Санкт-Петербургского НИИЭМ им.Пастера и 120-летию Парижского института Пастера (Санкт-Петербург, 2008); VII Конгрессе детских инфекционистов России (Москва, 2008);

- на совещаниях ВОЗ — 1-м Совещании Европейской Региональной I

Комиссии по сертификации ликвидации полиомиелита (Париж, Франция, 1996); Совещании по совершенствованию надзора за полиомиелитом и контролю за дифтерией (Берлин, 1996); 3-м совещании ВОЗ по вопросам координации операции МЕКАКАР (Ташкент, Узбекистан, 1996); 2-м консультативном совещании Глобальной лабораторной сети ВОЗ по полиомиелиту (Женева, Швейцария, 1996); 1-м совещании рабочей группы ПО' надзору за вирусом полиомиелита в окружающей среде (Женева, Швейцария, 1997); Внутрирегиональном координационном совещании-ВОЗ по вопросам эпиднадзора и сертификации ликвидации полиомиелита (Киев, Украина, 1998); Совещании Региональной сертификационной комиссии по ликвидации полиомиелита по рассмотрению документации отдельных стран СНГ и Югославии (Кишинёв, Молдова; 2000); Суб-Региональном совещании координаторов по безопасному лабораторному хранению диких полиовирусов (Вена, Австрия, 2001); Совещании, по надзору за вирусом полиомиелита в окружающей среде (Копенгаген, Дания, 2002); 12-м консультативном совещание глобальной лабораторной сети по с полиомиелиту ВОЗ (Женева, Швейцария, 2006); Совещании Европейской Региональной лабораторной- сети по диагностике полиомиелита (Рим, Италия, 2006); Объединённом совещании по вопросам контейнмента и лабораторной сети по* полиомиелиту Европейского региона^ ВОЗ (Мальта, Ст.Джулиан, 2007);

- на пленуме «Вакцинопрофилактика полиомиелита в современных условиях» проблемной комиссии «Полиомиелит и другие энтеровирусные инфекции» (ИПВЭ им.М.П.Чумакова РАМН, Москва, 2008);

Апробация работы состоялась на заседании- межлабораторного Учёного совета Учреждения Российской академии медицинских наук Институт полиомиелита и вирусных энцефалитов имени М.П.Чумакова РАМН 28 апреля 2009 г.

Благодарности

Выражаю глубокую благодарность дирекции ИПВЭ им.М.П.Чумакова РАМН за предоставленные возможность и условия выполнения данной работы. i г f

Выражаю искреннюю признательность сотрудникам ИПВЭ им.М.П.Чумакова РАМН Т.П.Еремеевой, А.Е.Лукашеву, А.Н.Мустафиной, сотрудникам Института физико-химической биологии им.А.Н.Белозерского МГУ им.М.В.Ломоносова Е.А.Коротковой, Г.Ю.Липской, Е.А.Черкасовой, М.ЛЛковенко, а также всем сотрудникам лаборатории вирусологии полиомиелита и других энтеровирусных инфекций — референс-центра ВОЗ по надзору за полиомиелитом ИПВЭ им.М.П.Чумакова РАМН за содействие и помощь в процессе выполнения работы. Выражаю благодарность члену-корреспонденту РАН и РАМН, доктору биологических наук, профессору В.И.Аголу за ценные дискуссии. Также благодарю сотрудника Европейского Регионального Бюро ВОЗ Е.В.Гаврилина за сотрудничество.

Особую благодарность приношу моему научному консультанту доктору медицинских наук, профессору, академику РАМН С.Г.Дроздову за постоянное внимание, всесоторонние помощь, поддержку и продуктивное обсуждение результатов.

20 . ;■.'.,•■.■■■ Глава 1. Глобальная инициатива ВОЗ по искоренению полиомиелита

В 1988 г. Всемирная? Ассамблея Здравоохранения (ВАЗ) приняла решение об искоренении (эрадикации) полиомиелита в< мире к 2000 году [249]. Эта инициатива вдохновлялась успешным выполнением программы ВОЗ по борьбе с оспой - 8 мая 1980 года 33-я сессия ВАЗ объявила о глобальной эрадикации этого заболевания; [121]. Победа; была столь триумфальной, что задней немедленно последовала сериям бурных дискуссий о том, какие инфекционные заболевания должны быть искоренены в будущем- [132]. Иод искоренением (эрадикацией) заболевания; в настоящее время; понимают постоянное снижение до нулевого1 уровня во всём мире, случаев инфекции; вызванной специфическим агентом, которое достигается в результате обдуманных, действий' [112]. После достижения; эрадикации, инфекционного заболевания в продолжении этих; действий нет . необходимости. Для достижения-; этой стадии; управления' инфекцией должнььбыть последовательно выполнены.несколько;этапов:

Контроль. Снижение случаев- заболевания, распространённости заболеваемости или смертности до локально приемлемого уровня- в. результате продуманных усилий. Этот этап требует продолжения действий для;; сохранения! достигнутого результата. Примером такого этапа; управленияшнфекцией, являются? диарейные заболевания:

Элиминация* заболевания. Снижение до нулевого уровня случаев определённого заболеванияжотдельных географических зонах в результате продуманных усилий. При этом существует циркуляция? возбудителя; и для сохранения достигнутого результата требуется продолжение действий. В качестве примера.можно привести столбняк новорождённых.

Элиминация: инфекции. Снижение до нулевого уровня случаев инфекции, вызванной специфическим агентом, в определённых географических зонах в результате продуманных усилий. Циркуляция возбудителя на этой территории прервана, но необходимо продолжение мероприятий для предотвращения возможного восстановления трансмиссии, (например, в результате завоза из эндемичной страны). Примером заболеваний; элиминация которых достигнута в некоторых регионах мира, являются корь и полиомиелит.

В контексте современного понимания управления инфекцией под эрадикацией (наиболее часто используют менее точный Г термин «ликвидация») полиомиелита подразумевают не только прекращение случаев заболевания, вызванных диким вирусом полиомиелита во всём, мире, но прерывание его циркуляции, то есть — прекращение существования возбудителя в природе.

О технической возможности искоренения инфекционного заболевания свидетельствуют, по крайней мере, три индикатора [82, 112]:

- существование эффективных средств для прерывания трансмиссии; инфекционного агента;

- наличие доступной диагностическою системы, достаточно специфичной и чувствительной для - выявления уровня инфекции, который может привести к трансмиссии;:

- жизненный цикл возбудителя; искоренение которого планируется; возможен только в человеческом организме, возбудитель не имеет резервуаров среди других позвоночных и не воспроизводится в окружающей среде.

Полиомиелит, вызываемый диким полиовирусом, был признан, как заболевание, которое может быть искоренено, по крайней мере, на уровне региона. Выбор полиомиелита в качестве инфекции-кандидата для, искоренения* был основан на накопленных в течение 100 лет знаниях о природе- и биологических свойствах вируса полиомиелита, хорошо изученной эпидемиологии заболевания; возможностях клинической и лабораторной диагностики, опыте борьбы с полиомиелитом, имеющемся во многих странах и регионах мира, в первую очередь — полувековом опыте эффективной вакцинопрофилактики этого заболевания.

Ниже приводятся некоторые общие сведения о вирусе полиомиелита и заболевании, важные для понимания формирования программы эрадикации полиомиелита.

 
 

Заключение диссертационного исследования на тему "Вирусологический мониторинг как ключевой элемент контроля выполнения в Российской Федерации программы ликвидации полиомиелита"

242 Выводы.

1. В РФ создана система вирусологического мониторинга ПВ, которая включает исследование материалов, полученных при выполнении эпидемиологического надзора за полиомиелитом и ОВП, дополнительного надзора за ПВ с помощью исследования сточных вод, вирусологический анализ всех штаммов ПВ, выделенных в РФ, в соответствии с алгоритмом вирусологических исследований, рекомендованным ВОЗ. Для проведения мониторинга создана и закреплена нормативно-методическими документами система взаимодействия лабораторий, участвующих в реализации программы ликвидации полиомиелита в РФ, которая обеспечивает непрерывность, оперативность и полноту вирусологических исследований. Высокие показатели качества работы HJIC гарантируют достоверность получаемых результатов. Выявление и расшифровка случая лабораторной контаминации диким ПВ подтвердили чувствительность системы вирусологического мониторинга ПВ и эффективность оперативного взаимодействия сети лабораторий по диагностике полиомиелита РФ.

2. Сохранение в мире эндемичных очагов дикого ПВ определяет необходимость продолжения иммунизационных и надзорных мероприятий по полиомиелиту в странах, свободных от дикого ПВ. На примере вспышки 1 полиомиелита'в Чечне и Ингушетии в 1995 г., вызванной диким ПВ типа 1, показана возможность быстрого глобального распространения дикого ПВ из эндемичного региона и возникновение вспышечной заболеваемости на ограниченной территории с низким уровнем коллективного иммунитета в неэндемичной стране.

3. Результаты вирусологического мониторинга показали, что циркуляция дикого ПВ прекращена в РФ в 1996 г. На основании этих данных 20 июня 2002 г. Европейская Региональная Сертификационная Комиссия признала РФ «страной, свободной от полиомиелита».

4. Установлен уровень заболеваемости и основные характеристики ВАПП в

РФ в период применения- для- вакцинации против полиомиелита ОПВ (19982005 гг.). Частота возникновения случаев ВАПП составила 1 случай на \,6. млн. распределённых доз ОПВ - .1 случай на 2,2 млн. распределённых доз для реципиентов ОПВ, 1 случай на 186 тыс. детей для реципиентов первой дозы ОПВ; Большинство случаев ВАПП возникало у реципиентов ОПВ; после получения Г-й дозы вакцины (89,4%), у контактных - среди непривитых детей (76%); Среди больных ВАПП преобладали дети в возрасте до 1 года (88,2%). Период времени от момента получения ОПВ до развития ВАПП составил 21 день (20,8±7,1). Случаи ВАПП были; связаны, с ПОВ-дериватамш вакцинных штаммов, Сэбина типа 3, затем типов- 2 и 1 (52,9, 29,8, 17,4 % случаев, соответственно). Иммунодефицитное состояние и неблагополучный преморбидный статус ребёнка, являются факторами риска для развития ВАПП. ' \

5. В хорошо иммунизированной популяции возможна длительная скрытая циркуляция вирусов-производных ОПВ;. которая приводит к формированию высоко нейровирулентных вариантов вакцинородственных ПВ'; Прекращение применения, ОПВ и замена её ИПВ- позволит предотвратить; случаи ВАПП у реципиентов вакцины, значительно снизить риск возникновения' VDPV. В настоящее время; в РФ существуют биологические^ условия для безопасного перехода, от последовательной; схемы вакцинации против^ полиомиелита (ИПВ-гОПВ) к исключительному применению , ИПВ:: высокий уровень коллективного иммунитета и отсутствие циркуляции диких ПВ^

6.' В странах, в которых прекращена циркуляция: дикого ПВ, вирусологические исследования: сточных вод являются, важнейшей частью мониторинга ПВ. Такие исследования имеют прогностическое значение для выявления заносов дикого ПВ из сохраняющихся эндемичных резервуаров, роль этого вида надзора будет возрастать для.выявления циркулирующих ПВ-производных ОПВ в случае планируемого прекращения, её использования. Информативность исследований может быть повышена за счёт обследования сточных вод от отдельных групп населения, в которых наиболее вероятна циркуляция ПВ.

7. Система вирусологического мониторинга ПВ позволяет получать сведения о циркуляции НПЭВ. Установленный уровень циркуляции НПЭВ среди здорового населения РФ в 1999-2007 гг. (5%) может быть использован для оценки и прогноза эпидемической ситуации по ЭВИ. Определены «эпидемические» серотипы НПЭВ - вирусы CBV 1-6, Е7, 30, 11, 6. Сеть лабораторий по диагностике полиомиелита РФ может быть лабораторной основой для эпидемиологического надзора за неполиомиелитными ЭВИ.

245

 
 

Список использованной литературы по медицине, диссертация 2009 года, Иванова, Ольга Евгеньевна

1. Агол В.И. Парадокс вакцины Сэбина./Медицинская вирусология. Труды Института полиомиелита и вирусных энцефалитов им.М.П.Чумакова РАМН.-2006.-Москва.-Том XX1.I.C.7-14.

2. Бичурина М.А., Лялина Л.В., Романенкова Н.И., Розаева Н.Р. Итоги сертификации ликвидации полиомиелита на территориях СевероЗападного федерального округа России./Аналитический обзор.-2003.-Санкт-Петербург.-80 С.

3. ВОЗ. Глобальная ликвидация оспы./Заключительный доклад Глобальной комиссии по удостоверению ликвидации оспы.-1980.-Женева.-130 С.

4. ВОЗ. Глобальная ликвидация полиомиелита./Отчёт о втором совещании Глобальной Технической Консультативной Группы (ТГК), 28 апреля 1997 г.-1998.-Женева.-\ШО/ЕРШЕ>1/98.04.

5. ВОЗ. Отчёт о 2-м совещании Глобальной комиссии по сертификации ликвидации полиомиелита, 1 мая 1997 г.-1998.-Женева.-WHO/EPI/GEN/98/13.

6. ВОЗ. Руководство по проведению фазы I Глобального плана действий по лабораторной изоляции (контейнменту) диких полиовирусов.-1999.-Глобальная программа по вакцинам и иммунизации. Расширенная программа иммунизации. ВОЗ, Женева.

7. ВОЗ. Новые полиовирусные вакцины для использования после ликвидации полиомиелита.-2002.-Женева.

8. ВОЗ. Глобальный план действий' для обеспечения безопасного лабораторного хранения- диких полиовирусов. Второе издание.-2003,-Женева.-WHO/V&В/03/11.

9. Генес B.C. Некоторые простые методы кибернетической обработки данных диагностических и физиологических исследований.-1967.-Москва1-Наука.-207 С.

10. Грачёв В.П. Полиомиелит.//Эпидемиология и вакцинопрофилактика.-2002.-№ 5.-С. 14-21.

11. Грачёв В.П. Разработка технологии крупносерийного производства оральной* полиомиелитной1 вакцины.//Эпидемиология и вакцинопрофилактика.-2002.-№ 5 .-С. И -13.

12. Грачёв В.П. Разработка и практическое применение вакцин для профилактики-актуальных вирусных инфекций.//Вопросы вирусологии.-2005.-№ 3.-С.32-36.

13. Дроздов С.Г. Глобальная- ликвидация полиомиелита и отечественная медицинская наука.Юпидемиология и вакцинопрофилактика.-2002.-№ 5.-С.9-11.

14. Дроздов С.Г., Казанцева В.А. Патогенные вирусы и проблемы охраныокружающей среды.//Вестник Академии медицинских наук СССР.-1981.-№ 3.-С.85-92.

15. Дроздов С.Г., Лашкевич В. А. Пятидесятилетие Института полиомиелита и вирусных энцефалитов им. М.П.Чумакова РАМН://Вопросы вирусологии.-2005.-№ 3.-С.4-7.

16. Ермолович М.А. Вакциноассоциированный полиомиелит в Беларуси: вирусологическая и иммунологическая характеристика/Автореферат дис. канд. мед. наук.-Минск.-2003.-22 С.

17. Ермолович М.А., Фельдман Э.В., Самойлович Е.О. и др. Характеристика иммунного статуса > больных с вакциноассоциированным полиомиелитом.//Журн. микробиол.-2002.-№ 2.-С.42-50.

18. Иванова» О.Е., Еремеева Т.П., Короткова Е.А. и др. Надзор за полиомиелитом и ОВП' в Российской Федерации до и после сертификации ликвидации1 полиомиелита в s Европейском' регионе, 19992003 годы.//Эпидемиология и вакцинопрофилактика.-2004.-№'4.-С.6-12.

19. Иммунизация детей инактивированной полиомиелитной вакциной (ИПВ)./Методические рекомендации MP 3.3.1.2131-06.-Москва.-200б.-9 С.

20. Инфекционные заболевания в России./Статистический справочник.-Государственный Комитет Санитарно-эпидемиологического надзора.-Москва.-1992.-С.26-27.

21. Инфекционные заболевания в России (1913-2002 гг.)./Информационный сборник.-Москва.-2003.-69 С.

22. Клиника, диагностика и лечение острого полиомиелита./Методические рекомендации.-Москва.-1998.-47 С.

23. Конторович В.Б., Иванова О.Е., Еремеева Т.П. и др. Метод концентрирования вирусов в водных объектах окружающей среды.//Вопросы вирусологии.-1996.-№ 1.-С.40-42.

24. Королёва Г.А., Мартыненко И.Н., Лашкевич В.А. и др. Вспышка полиомиелита в Таджикистане в 1991 г., вызванная вирусом полиомиелита типа 1 при сопутствующей инфекции вирусом ECHO 19.//Вопросы вирусологии.-1993.-№ 5.-С. 210-214.

25. Красильников И.В., Казанцева В.А., Иванова О.Е. и др. Выделение вирусов из воды с использованием пористых кремнезёмов.//Вопросывирусологии.-l985.-№ 5.-С.608-610.

26. Краснопрошина Л.И., Иванова О.Е., Еремеева Т.П. и др. Дефицит клеточного и гуморального иммунитета у детей с вакцинно-ассоциированным паралитическим полиомиелитом.//Журн. микробиол.-2006.-№7.-С.47-54.

27. Лазикова Г.Ф., Ежлова Е.Б., Ясинский А.А. и др. О мероприятиях по поддержанию статуса России как территории, свободной от полиомиелита, в 2003-2005 гг.//Эпидемиология и вакцинопрофилактика.-2007.-№ 1 .-С.21-25.

28. Лашкевич В. А. 100 лет изучения вируса полиомиелита и неполиомиелитных энтеровирусов.//Вопросы вирусологии.-2008.-№ 4.-С.41-44.

29. Лашкевич В. А., Королёва Г. А., Лукашев А.Н. и др. Острый энтеровирусный увеит у детей раннего возраста.//Вопросы вирусологии.-2005 .-№3 .-С.З 6-45.

30. Лещинская Е.В., Иванова О.Е., Еремеева Т.П., Садовникова В.Н. Случаи вакциноассоциированного паралитического полиомиелита в Российской Федерации в 2000-2002 гг.//Российский медицинский журнал.-2004.-№ 3.-С.19- 24.

31. Лещинская Е.В., Мартыненко И.Н., Леонтьева И.Я. и др. Полиомиелит в России в 1970-1995 гг.//Эпидемиология и инфекционные болезни.-1998.-№3.-С.11-15.

32. Медицинские противопоказания к проведению профилактических прививок препаратами национального календаря прививок./Методические указания МУ 3.3.1.1095-02.-Минздрав России.-Москва.-2002.

33. Минин Г.Д., Коробов Л.И., Рожкова Е.В. и др. Итоги реализации программы ликвидации полиомиелита в Республике Башкортастан. Ликвидация полиомиелита в России./Сборник материалов.-Москва.-2006.-С.267-271.

34. Профилактика полиомиелита в постсертификационный период./Санитарно-эпидемиологические правила СП 3. Г. 1.2343-08,-Москва.-2008.-28 С.

35. Резник В.И., Кожевникова Н.В., Каравянская Т.Н. и др. Эпидемиологическая и этиологическая^ характеристика энтеровирусных инфекций в Хабаровском крае//Журн. микробиол.-2007.-№ 5.-G.32-37.

36. Романенко В.В., Юровских А.И., Скрябина С.В. и др. Вакцинопрофилактика инфекционных болезней в Свердловской области.//Эпидемиология и вакцинопрофилактика.-2007.-№ 5.-С.20-30.

37. Садовникова В.Н. Эпидемиологический надзор за полиомиелитом на этапе его-ликвидации./Автореферат дис. канд. мед. наук.-Москва.-2002.-37 С.

38. Самойлович Е.О., Ермолович М.А., Котова И.Ф. и др. Опыт надзора за острым вялым параличом в Беларуси.//Журн. микробиол.-2007.-№2.-С.24-31.

39. Санитарно-вирусологический контроль водных объектов./Методические указания МУК 4.2.2029-05.-Москва.-2006.-37 С.

40. Сейбиль В.Б. Малышкина Л.П. Всемирная Организация Здравоохранения и проблема ликвидации инфекционных заболеваний в мире.//Вопросы вирусологии.-2005.-№3.-С.60-64.

41. Сейбиль В.Б., Фролочкина Т.И. Серозный менингит.//Журн.• микробиол.-2006.-№1.-С.87-92.

42. Хаитов P.M., Пинегин Б.В., Истамов Х.М. Экологическая иммунология.-1995.-Москва.-Медицина.-213 С.

43. Черкасова Е.А., Липская Г.Ю., Белова Г.И. и др. Обнаружение штаммов вируса полиомиелита в природных изолятах и их идентификация с помощью1 полимеразной цепной реакции.//Молекулярная генетика, микробиология и вирусология.- 1996.-№2.-С.25-31

44. Яковенко М.Л. Антигенная изменчивость дериватов полиовирусной вакцины./Автореферат дис. канд. биол. наук.-Москва.-2006.

45. Ясинский А.А., Воронцова Т.В., Котова Е.А. и др. Российская Федерация свободна от полиомиелитам/Эпидемиология и вакцинопрофилактика/-2004.-№4.-С.З-6.

46. Яшкулов- К.Б., Шевырёва М.П., Лазикова Г.Ф. и др. Вспышка энтеровирусной инфекции с серозным менингитом в Республике Калмыкия и меры по её локализации и ликвидации.//Здоровье населения и среда обитания.-2003.-№5.-С.12-16.

47. Abe S., Ota Y., Koike S. et al. Neurovirulence test for oral live poliovaccines using poliovirus-sensitive transgenic mice.//Virology.-1995.-v.206.-P. 10751083.

48. Agol V.I. Recombination and other genomic rearrangements in picornaviruses.//Semin Virol.-1997.-V.8.-P ;1 -9.

49. Agol V.I. Vaccine-derivedpolioviruses.//Biologicals.-2006.-v.34.-P.l03-108.

50. Agol V.I., Chumakov K.M., Ehrenfeld E., Wimmer E. Don't drop current vaccine until we have new ones.//Nature.-2005.-v.435.-P.881.

51. Alexander J.P., Gary H.E., Pallansch M.A. Duration of poliovirus excretionand its implications for acute flaccide paralysis surveillance: a review of the literature.//J Infect Dis.-1997.-v.175 (Suppl. l).-P.176-82.

52. Alexander L.N., Seward J.F., Santibanez T.A. et al. Vaccine Policy Changes and Epidemiology of Poliomyelitis in the United States.//J Am Med* Ass.-2004.-v.292.-P. 1696-1701.

53. Allmond W.Jr., Froeschle J.E., Gilloud N.B. Paralitic poliomyelitis in large laboratory primates.//Am J Epidemiol.-1967.-v.85.-P.229-239.

54. Andrus J.K., Strebel P.M., de Quadros C.A., Olive'J.M. Risk of vaccine-associated paralytic poliomyelitis in Latin America, 1989-91.//Bull of the WHO.-1995.-v.73 .-P.33-40.

55. Antona D., Leveque N., Chomel J.J. et al. Surveillance of enteroviruses in France, 2000^2004.//Eur J'Clin Microbiol Infect Dis.-2007.-v.26.-P.403-412.

56. Arita I., Nakane M., Fenner F. Is polio eradication realistic?//Science.-2006.-V.312.-P.852-854.

57. Aylward R.B. Eradicating polio: today's challenges and tomorrow's legacy.//Annals of Tropical Medicine and Parasitology.-2006.-v.100.-P.401-413.

58. Bahri О/, ben Nejama-Queslati В., Ben Yahia A. et аГ Enteroviruses in Tunisia: virological surveillance over 12 years (1992-2003 .//J Med Microbiol.-2005.-v.54.-P163-69.

59. Balanant J., Guillot S., Candrea A. et ah The.natural genomic variability of4poliovirus analyzed by a restriction fragment polymorphism assay .//Virology.-1991 .-v. 184.-P.645-654.

60. E1* Bassioni L., Barakat I., Nasr E., et ah Prolonged detection of indegenous wild polioviruses in sewage from communities in Egypt.//Am J Epidemioh-2003 .-v. 158.-P.807-815.

61. Bayeva L.Ye., Shirman G.A., Ginevskaya V.A. et аГ. Using different sorbents for the concentration» of enteroviruses.//! Hyg Epidemiol Microbiol Immunol.-1990.-V.34.-P.199-205.

62. Birmingham M.E., Aylward R.B., Cochi, S.L., Hull H.J.F. National1 Immunization Days: State of the art.//J Infect Dis.-1997.-v.175 (Suppl 1).-P.183-188.

63. Birmingham M.E., Linkins R.W., Hull H.F. Poliomyelitis surveiilance: the compass of eradication.//! Infect Dis.-1997.-v.175 (Suppl. 1).-P.T 46-50.

64. Blomqvist S., Savolainen C., Laine P. et al. Characterization' of a highly evolved vaccine-derived poliovirus type*3 isolated* from,sewage in Estonia.//J Virol.-2004.-v.78.-P.4876-83.

65. Bodian E)., Morgan I.M., Howe H.A. Differentiation of types of poliomyelitis viruses. The grouping of fourteen strains into three basic immunological types.//Am. J Hyg.-1949.-v.49.-P.234-45.

66. Brown BA., Oberste M.S., Maher K., Pallansch M. Complete genomic sequencing shows that polioviruses and members of human enterovirus species С are closely related in the non-capsid coding region.//J Virol.-2003.1. V.77.-P.8973-84.

67. CDC. Summary of Notifiable Diseases, United States, I990.//Morbid Mortal Weekly Rep.-1991 .-v.39.-P. 1-61.

68. CDC. Certification of poliomyelitis eradication the Americas, 1994.//Morbid Mortal Weekly Rep.-1994.-v.43.-P.720-722.

69. CDC. Developing and expanding contributions of the Global Laboratory Network for Poliomyelitis Eradication, 1997-1999.//Morbid Mortal Weekly Rep.-2000.-v.49.-P. 156-160.

70. CDC. Certification of poliomyelitis eradication the Western Pacific region, October 2000.//Morbid Mortal Weekly Rep.-2001.-v.50.-P.l-3.

71. CDC. Certification of poliomyelitis eradication European Region, June 2002.//Morbid Mortal Weekly Rep.-2002.-v.51.-P.572-574.

72. CDC. Update on vaccine-derived polioviruses.//Morbid Mortal Weekly Rep.-2006.-v.55.-P. 1093-1097.

73. Cernakova В., Sobotova Z., Rovny I., et al. Isolation of vaccine-derived polioviruses in the Slovac Republic.//Eur J Clin Microbiol Infect Dis.-2005.-V.24.-P.438-439.

74. Cherkasova E.A., Korotkova E.A., Yakovenko M. L. et al. Long-term circulation of vaccine-derived poliovirus resulting in paralytic disease.//J Virol.-2002.-v.76.-P.6791-6799.

75. Cherkasova E., Laassri M., Chizhikov V. et al. Microarray analysis of evolution of RNA viruses: evidence of circulation of virulent highly divergent vaccine-derived polioviruses.//Proc Natl Acad Sci USA.-2003.-V.100.-P. 9398-9403

76. Cherkasova E.A., Yakovenko M.L., Rezapkin G.V. et al. Spread of vaccine-derived poliovirus from a paralytic case in an immunodeficient child: an insight into the natural evolution of oral polio vaccine.//J Virol.-2005.-V.79.-P. 1062-1070.

77. Chumakov K., Ehrenfeld E., Wimmer E., Agol V.I. Vaccinationagainst polio should not be stopped.//Nat Rev Microbiol.-2007.-v.5.-P.952-958.

78. Crainic R., Couillin P., Blondel B. et al. Natural variation of poliovirus neutralization epitope.//Infect Immun.-1983.-v. 41.-P. 1217-1225.

79. Dahling D.R., Wright B.A. Optimization of the BGM cell line culture and viral assay procedures for monitoring viruses in the environment.//Appl Environ Microbiol.-1986.-v.51 .-P.790-812.

80. Davies Ml, Bruce C., Bewley K. et al. Poliovirus type 1 in working stocks of typed human rhinoviruses.//Lancet.-2003.-v.361.-P.l 187-1188.

81. De L., Nottay B.K., Yang C.-F. et al. Identification of vaccine-related polioviruses by hybridization with specific RNA probes.//J Clin Microbiol.-1995.-V.33.-P.562-571.

82. De L., Yang C.-F., da Silva E. et al. Genotype-specific RNA probes for the direct identification of wild polioviruses by blot hybridization.//J Clin Microbiol.-1997.-v.35.-P.2834-2840.

83. Deshpande J.M., Shetty S.J., Siddiqui Z. Environmental surveillance system to track wild poliovirus transmission.//Appl Environ Microbiol.-2003 .-v.69.-P.2919-2927.

84. Deshpande J.M., Nadkarni S.S., Siddiqui Z.A. Detection of MEF-1 laboratory reference strain of poliovirus type 2 in* children with poliomyelitis in India in 2002 & 2003.//Indian J Med Res.-2003.-v.l 18.-P.217-223.

85. Domok I. Experiences associated with the use of live poliovirus vaccine in Hungary, 1959-1982.//Rev Infect Dis.-1984.-v.6 (Suppl 2).-P.413-S418.

86. Dowdle W.R. The principles of disease elimination and eradication.//Bull of the WHO.-1998.-v.76 (Suppl 2).-P.22-25.

87. Dowdle W.R., Birmingham M.E. The biologic principles of poliovirus eradication./Я Infect Dis.-1997.-v.175 (Suppl l).-P.286-292

88. Dowdle W.R., Gary H.E., Sanders R. et al. Can post-eradicationlaboratory containment of wild polioviruses be achieved?//Bull of the WHO.-2002.-v.80.-P1311-316.'

89. Dowdle W.R., de Gourville E., Kew O.M., et al. Polio eradication: the OPV paradox.//Rev Med Virol.-2003.-v.l3.-P.277-291.

90. Dowdle W.R., van der Avoort H., de Gourville E. et al. Containment of polioviruses after eradication and OPV cessation: characterizing risks to improve management.//Risk Analysis.-2006.-v.26.-P. 1449-1469.

91. Dowdle W.R., Wolff C., Sanders R. et al. Will containment of wild poliovirus in ,laboratories and inactivated poliovirus vaccine production* sites be effective for global certification?//Bull of the WHO.-2004.-V.82.-P.59-62.

92. Dowdle W.R., Wolff C. Post-eradication poliovirus facility-associated community risks.//Biologicals.-2006.-v.34.-P.127-132.

93. Ehrenfeld E., Glass R.I1, Agol V.I. et al. Polio immunization: moving forward.//Lancet.-2008.-v.371.-P.1385-1387.

94. Esteves K. Safety of oral poliomyelitis vaccine: results of WHO enquiry.//Bull ofthe WHO.-1988.-V.66.-P.739-746.

95. Fenner F. Global' eradication of smallpox.//Rev Infect Dis.-1982.-v.4.~ P.916-922.

96. Fine P.E., Carneiro I.A. Transmissibility and persistence of oral polio vaccine viruses: implications for. the global poliomyelitis eradication initiative.//AmJ Epidemiol.-1999.-v. 15 0 .-P. 1001-1021'.

97. Gerba C.P., Goyal S.M. Detection and occurrence of enteric viruses in shellfish: a review.//J Food Protect.- 1978.-V.41.-P.743-762.

98. Grachev V.P. Long-term use of oral poliovirus vaccine from Sabin strains in the Soviet Union.//Rev of Infect Dis.-1984.-v.6 (Suppl 2).-P.321-322

99. Grachev V.P., Karganova G.G., Rumyantsev A.A., et al. Evaluation of the new control methods for oral poliomuelitis vaccine.//Progress in Polio Eradication: Vaccines Strategies for the End Game.-Dev. Biol. Basel, Karger.-2001 .-v. 105 .-P.211 -217.

100. Guillot S., Саго V., Cuervo N. et al. Natural genetic exchanges between vaccine and wild poliovirus strains in humans.//J Virol.-2000.-v.74.-P.8434-8443.

101. Halsey N.A., Pinto J., Espinosa-Rosales F., et al. Search for poliovirus carriers among people with primary immune deficiency diseases in the United States, Mexico, Brazil, and the United Kingdom.//Bull of the WHO.2004.-v.-82.-P.3-8.

102. Нага M., Saito Y., Komatsu T. et al. Antigenic analysis of polioviruses isolated from child with agammaglobulinaemia and paralytic poliomyelitis after Sabin vaccine administration./YMicrobiol Immunol.-1981.-v.25.-P.905-913.

103. Henderson D.A. Eradication: lessons from the past.//Bull of the WHO-1998.-v.76 (Suppl 2).-P. 17-21.

104. Hennessey K.A., Lago H., Diomande F. et al. Poliovirus vaccine shedding among persons with HIV in Abidjan, Cotr d'Ivoire.//J Infect Dis.2005.-V.192.-P.2124-2128.

105. Heymann D.L. Polio eradication: finishing the job and protecting the investment.//Bull of the WHO.-2004.-V.82.-P.1.

106. Heymann D.L., Aylward R.B., Wolff C. Dangerous pathogens in'the laboratory: from smallpox to today's SARS setbacks and"tomorrow's polio-free world.//Lancet,v.363 .-P. 1566-1568.

107. Heymann D.L., Sutter R.W., Aylward R.B. A vision of a world without polio: The OPV cessation strategy.//Biologicals.-2006.-v.34.-P.75-79.

108. Hovi Т., Blomquist S., Nasr E., et al. Environmental surveillance of wild poliovirus circulation in Egypt — balancing between detection sensitivity and workload.//J Virol Methods.-2005.-v.126.-P. 127-34.

109. Hovi Т., Cantell K., Huovilainen A., et al: Outbreak of poliomyelitis in Finland: widespread*circulation of antigenically altered poliovirus type 3 in a vaccinated population.//Lancet.-1986.-1 .-P. 1427-1432.

110. Hovi Т., Lindholm N., Savolainen C. et al. Evolution of wild-type poliovirus in two health siblings excreting the virus over a period of 6 months.//J Gen Virol.-2004.-v.85.-P:369-377.

111. Hovi Т., Stenvik M. Selective isolation of poliovirus-in recombinant murine cell line expressing' the human poliovirus receptor gene.//J Clin Microbiol.-1994.-v.32.-P. 1366-1368.

112. Hovi Т., Stenvik M., Partanen H., Kangas A. Poliovirus surveillance by examination sewage specimens. Quantiative recovery of virus after introduction into seewerage at remote upstream location.//Epidemiol Infect.-2001.-v.127.-P. 101-106.

113. Hull H.F., Birmingham M.E., Melgaard В., Lee J.W. Progress toward global polio eradication.//! Infect Dis.-1997.-v.175 (Suppl l).-P.4-9.

114. Hull B.P., Dowdle W.R. Poliovirus Surveillance: Building the Global

115. PolioEaboratory 'Network.//JTnfectDisirl997:-v. 1*75 (SuppM0.-PdT3-116.

116. Johni T.J; A developing country perspective1: on vaccine-associated: paralytic poliomyelitis./7Bull:ofthe:WHO!-2004l-v.82:-P:53-57.

117. Kew O., Morris-Glasgow V., Landaverde M: et al. Outbreak of poliomyelitis in Hispaniola associated with circulating type 1 vaccine-derived-poliovirus.//Science.-2002.-v.296.-P. 356-359.

118. Kew O.M., Sutter R,.W., de Gourville E.M. et al. Vaccine-derived polioviruses and the endgame strategy for Global Polio eradication.//Annu Rev Microbiol.-2005.-v.59.-P.587-635.

119. Kew O.M., Wright P.F., Agol V.I. et ah Circulating vaccine-derived polioviruses: current state of knowledge.//Bull of the WHO.-2004.-v.82.-P. 16-23.

120. Khan A.J., Gebreselassie H., Asturias E.J. et al. No evidence for prolonged excretion of polioviruses in persons with residual paralytic poliomyelitis in Ethiopia, Pakistan and Guatemala.//Biologicals.-2006.-v.34.-P.113-116.

121. Khetsuriani N., LaMonte-Fowlkes A., Oberste S.M., Pallansch M.A. Enterovirus surveillance United States, 1970-2005.//Morbid Mortal Weekly Rep.-2006.-v.55.-P.l-20.

122. Khetsuriani N., Prevots D.R., Quick L. et al. Persistence of vaccine-derived polioviruses among immunodeficient persons with vaccine-associaterd paralytic poliomyelitis.//J Infect Dis.-2003.-v. 188.-P. 1845-52.

123. Kohler K.A., Banerjee K., Hlady G.W., et al. Vaccine-associated paralytic poliomyelitis in India during 1999: decreased risk despite massive use of oral polio vaccine.//Bull of the WHO.-2002.-V.80.-P.210-216.

124. Kojouharova M., Zuber P.L.F., Gyurova S., et al. Importation and circulation of poliovirus in Bulgaria in 2001.//Bull of the WHO.-2003.-v.81.-P.476-481.

125. Korotkova E.A., Park R., Cherkasova E.A. et al. Retrospective analysis of a local cessation of vaccination against poliomyelitis: a possible scenario for the future.//J Virol.-2003.-v.77.-P.12460-12465.

126. Lefler E., Kott Y. Virus survival in water and wastewater.//Israel J Med , Sci.-1975.-v. 11 .-P. 11. .

127. Lipskaya. G.Y., Kutateladze T.N., Saidov S. et al. Dynamics of wild poliovirus circulation in the Former Soviet Union./Х-th International Congress of Virology.-1996.-Jerusalem, Israel.-P.143

128. Lipskaya G.Y., Chervonskaya E.A., Belova G.I. et al. Geographical genotypes (geotypes) of poliovirus case isolates from the former Soviet Union: Relatedness to other known poliovirus genotypes.//J Gen Virol.-1995.-v.76.-P.1687- 1699.

129. Liu H.-M., Zheng D.-P., Zhang L.-B. et al. Serial recombination during circulation of type 1 wild-vaccine recombinant polioviruses in China.//J Virol.-2003 .-v.77.-P. 10994-101005.

130. Liu X., Levin A., Makinen M., Day J. OPV vs IPV: Past and future choice of vaccine in the Global Eradication Program.//Bethesda, MD. The Partners for the Health Reformplus Project, Abt Associates Inc, 2003.

131. Lukashev A.N., Ivanova O.E.31Eremeeva T.P., Gmyl L.V. Analysis of Echovirus 30 isolates from Russia and New Independent States reveals frequent recombination and re-emergence of • ancient lineages.//J Clin Microbiol.-2008.-v.46.-P.665-670.

132. MacCallum F.O. Hypogammaglobulinemia in the United Kingdom. VII. The role of humoral antibodies in the protection' against and recovery from bacterial and virus infections in hypogammaglobulinaemia.//Spec Rep SerMedRes Counc.-1971.-v.310.-P.72-85.

133. Mancini G., Nacb D.K., Heremans G.S. Futher studies on single radial immunodiffusion. Quntitative analysis of related and unrelated antigens./flmmunochem.-1970.-v.7.-P.261-264.

134. Manor Y., Handsher R., Halmut T. et al. A double-selective tissue culture system for isolation of wild-type poliovirus, from sewage applied in a long-term environmental surveillance.//Appl Environ Microbiol.-1999.-v.65.1. Р.94-97.

135. Manor Y., Handsher R., Halmut T. et al. Detection of poliovirus circulation by environmental surveillance in the absence of clinical cases in Israel and the Palestinian Authority.//J Clin Microbiol.-1999.-V.37.-P.16701675.

136. Martin J. Vaccine-derived poliovirus from long term excretors and the end game of polio eradication.//Biologicals.-2006.-v.34.-P.l 17-122.

137. Martin J., Odoom K., Tuite G. et al. Long-term excretion of vaccine-derived poliovirus by a healthy child.//J Virol.-2004.-v.78.-P.13839-13847.

138. Marx A., Glass J.D., Sutter R.W. Differential diagnosis of acute flaccid paralysis and its role in poliomyelitis surveillance.//Epidemiological Reviews.-2000.-v.22 (2).-P.298-316.

139. Mas Lago P. Eradication of poliomyelitis in Cuba: a historical perspective.//Bull of the WHO.-1999.-v.77.-P.681-687.

140. McLean M., Duclos P., Jacob P., Humphreys P. Incidence of Guillain-Barre syndrome in Ontario and Quebec, 1983-1989, using hospital service databases.//Epidemiology.-1994.-v.5.-P .443-448.

141. McWilliam L.E.C., Bendiq J., Cabrerizo M. et al. Transmission networks and population turnover of echovirus 30.//J Virol.-2009.-v.83.-P.2109-2118.

142. Melnick J.L. Enteroviruses: polioviruses, coxsackie viruses, echoviruses, and newer enteroviruses.// Fields virology. 2nd ed. vol 1 .-Fields B.N., Knipe D.M., Chanock R.M., et al., eds.-New York, Raven Press.-1990-P.549-605.

143. Melnick J.L., Gerba C.P., Wallis C. Viruses in water. Update.//Bull of the WHO.-1978.-V.56.-P.499-508

144. Minor PI Characteristics of poliovirus strains from long-term excretors with primary immunodeficiencies.//Progress in Polio? Eradication: Vaccine Strategies for the End Game.-Brown F. (ed). Dev Biol: Basel, Karger.-2001.-v.l05:-P. 75-80. , "

145. Nelson D.B., Girco R., Evans A.S. Strategic viral surveillance of sewage during and following an oral poliovirus^ vaccine campaign://Am J Epidemiol.-1967.-v.86.-P.641-652.

146. Nix W.A., Oberste M.S., Pallansch M-A. Sensitive, seminested PCR amplification of VP! sequences for direct identification of all enterovirus serotypes from original' clinical specimens.//J: Clin Microbiol:-2006.-v.44.-P.2698-2704.

147. Nkowane B.M.,. Wassilak S.G:F., Orenstein W.A., et al: Vaccine-associated paralytic poliomyelitis, United: States: 1973 through 1984.//J Am

148. Med Ass.-1987.-v.257.-P.1335-40.

149. Oblapenko G., Sutter R.W. Status of poliomyelitis eradication in Europe and the Central Asian Republics of the Former Soviet Union.//J Infect Dis.-1997.-v.175 (Suppl 1).-P.76-81.

150. Olive J.-M., Risi J.B., deQuadros C.A. National Immunization Days: experience in Latin America.//J Infect Dis.-1997.-v.175 (Suppl 1).-P. 189-93.

151. Pallansch M., Staples M. Wild polioviruses found in stored potential infectious materials.//Polio Lab Network.-2002.-8.-P.l-2.

152. Papaventsis D., Markoulatos P, Mangafas N. et al. Enteroviral infection in Greek AIDS patients.//Mol Diagn.-2004.-v.8.-P.l 1-16.

153. Patriarca P.A., Sutter R.W., Oostvogel P.M. Outbreaks of paralytic poliomyelitis, 1976-1995.//J Infect Dis.-1997.-v. 175 (Suppl 1).-P.165-172.

154. Patriarca P.A., Wright P.F., John T.J. Factors affecting the immunogenicity of oral poliovirus vaccine in developing countries.//Rev Infect Dis.-l 991.-V.13.-P.326-339.

155. Pavlov D.N., Van Zyl W.B., Van Heerden J. et al. Prevalence of vaccine-derived polioviruses in sewage and river water in South Africa.//Water Res.-2005.-v.39.-P.3309-3319.

156. Pavlov D.N., Van Zyl W.B., Van Heerden J. et ah Prevalence of vaccine-derived polioviruses in stools of immunodeficient children in South Africa.//J Appl Microbiol.-2006.-v. 101 .-P. 1367-1379.

157. Pavlov D.N., Van Zyl W.B. et al. Poliovirus vaccine strains detected instool- specimens, of immunodeficient children in South Africa.//Diagn Microbiol Infect Dis.-2006.-v.54.-P.23-30

158. Pice R.M. Laboratory-associated-infections: summary and analysis of 3921 cases.//Health Laboratory Science.-1976.-v.13.-P. 105-114.

159. Piirainen L., Stenvik M., Roivainen M. et al. Randomised® controlled trial with the trypsin-modified inactivated poliovirus vaccine: assessment of intestinaldmmunity with live challenge virus.//Vaccine.-1999.-v. 17.-P. 10841090.

160. Pipkin P.A., Wood D.J., Racaniello V.R., Minor P.D: Characterisation of L cells expressing the human poliovirus receptor for the specific detection of polioviruses in vitro.//J Virol Methods.-1993.-v.41.-P.333-340

161. Poyry Т., Stenvic M., Hovi T. Viruses-in. sewage waters during and, after a poliomyelitis outbreak and subsequent nationwide oral- poliovirus vaccination! campaighn in, Finland.//Appl Environ Microbioh-1988.-v.30.-P.212-222.

162. Ranta J., Hovi Т., Arjas E. Poliovirus surveillance by examining sewage water specimens: Studies on detection probability using simulation models.//Risk analysis: an official publication of the Society for Risk Analysis.-2001 .-v.21 .-P. 1087-1096.

163. Ren R., Racaniello V.R. Poliovirus spreads from muscle to the central nervous system by neural pathways./Л Infect Dis.-1992.-v.l66(4).-P.747-752.

164. Rico-Nesse R., Pallansch M.A., Nottay B.K., Kew O.M. Geographic distribution of wild poliovirus type 1 genotypes.//Virology.-1987.-v. 160,1. Р.311-32.

165. Riordan J. Isolation of enteroviruses from sewage before and after vaccine administration.//! Biol and Med.-1962.-v.34.-P.512-520.

166. Rousset D., Racoto-Andrianarivelo M., Razafindratsimandresy R. et al. Recombinant vaccine-derived poliovirus in Madagascar.//Emerg Infect Dis.2003.-v.9.-P.885-887.

167. Sabin AB. Strategies for elimination of poliomyelitis in different parts of the world with use of oral poliovirus vaccine.//Rev-Infect Dis.-1984.-v.6 (Suppl 2).-P.391-396.

168. Sabin AB. Oral poliovirus vaccine: history of its development and use, and- current' strategies to eliminate poliomyelitis from the world.//J Infect Dis.-1985>v. 151 .-P.420-436

169. Sabin, A.B., Boulger L.R. History of Sabin attenuated poliovirus oral live.vaccine strains.//J Biol Stand.-1973.-v. 1.-P. 115-118.

170. Samoilovich E., Roivainen M., Titov L.P., Hovi T. Serotype-specific mucosal immune response and subsequent poliovirus replication in« vaccinated children.//JMed Virol.-2003.-v.71 .-P.274-280.

171. Sangrujee N., Caceres V.M., Cochi S.L. Cost analysis of post-polio certification immunization policies.//Bull of the WHO.-2004.-v.82.-P.9-13.

172. Savoilainen C., Hovi T. Caveat: poliovirus may be hiding under other labels.//Lancet.-2003.-v.361.-P. 1145-1 146.

173. Savolainen C., Hovi Т., Mulders M.N. Molecular epidemiology of echovirus 30 in Europe: succession of dominant sublineages within a single major genotype.//Arch Virol.-2001.-v.l46.-P.521-523.

174. Schonberger L.B., McGowan J.E.Jr., Gregg M.B. Vaccine-associated poliomyelitis in the United States, 1961-1972.//Am J Epidemiol.-1976.-v.104.-P.202-211.

175. Schonberger L.B., Sullivan-Bolyai J.Z., Bryan J.A. Poliomyelitis in the United States.//Adv. Neurol.-1978.-v.l9.-P.17-27

176. Shulman L.M., Handsher R;, Yang G.F. eti al. Resolution; of the pathways of poliovirus type 1 transmission during an outbreak.//Jf Clin

177. Microbiolv-2000.-v.38>P;945^952::

178. Smith J., Leke R., Adams A., Tangermann R. Certification of polio eradication: process and lessons. learned.//Bull of the WHO.-2004.-v.82.1. P.24-30 ■

179. Strcbel P.M., Ion-Nedelcu N., Baughman A.L. et al. Intramuscularinjections withing 30 days of immunization with oral poliovirus vaccine a risk factor for vaccine-associated paralytic poliomyelitis.//New Engl J Med.-1995.-v.332.-P.500-506.

180. Strebel P.M., Sutter R.W., Cochi S.L. et al. Epidemiology of Poliomyelitis in the United States One decade after the last reported case of indigenous wild-assocoated disease.//Clin Infect Dis.-1992.-v.14.-P.568-79.

181. Stewardson A.J., Roberts J.A., Beckett C.L. et al. Imported case of poliomyelitis, Melbourne, Australia, 2007.//Emerg Infect Dis.-2009.-v.15.-P.63-65.

182. Suleman M.A., Johnson B.J., Tarara R. et al. An outbreak of poliomyelitis caused by poliovirus type 1 in captive black and white colobus monkeys (Colobus abyssirticus kikuyuensis) in Kenia.//Trans R Soc Trop Med Hyg.-1984.-v.78.-P.665-669.

183. Sutter R.W., Caceres V.M., Mas Lago P. The role of routine polio immunization in the post-certification era.//Bull of the WHO.-2004.-v. 82.-P.31-39.

184. Sutter R.W., Chudaiberdiev Y.K., Vaphakulov S.H. et al. A large outbreak of poliomyelitis following temporary cessation of vaccination in Samarkand, Uzbekistan, 1993-1994.//J Infect Dis.-1997.-v.175 (Suppl 1).-P.82-85.

185. Sutter R., Kew O.M., Cochi S.L. Poliovirus vaccine live.//Vaccines, 3rd ed.-Plotkin SA, Orenstein WA (eds), Philadelphia, Saunders.-2004.-P: 651-705.

186. Triki PI., Barbouche M.R., Bahri Or et ali Community-acquired poliovirus infectibn in children withprimary immunodeficiency in Tunisia.//! Clin Microbiok-2003 .-v.41.-P; 1203-12Ш

187. Vinje^^ GregoricusMartin?J; et^al. Isolatiomand^characterization;of circulating type К vaccine-derived;poliovirus from sewage and stream- water in Hispaniola.//JTnfect Dis.-2004.-v.l89:-P:iT68-lil;75.

188. WHO Collaborating Study Group. The relationship between persisting spinal paralysis and poliomyelitis vaccine — results of a ten-year271 'enquiry .//Bull .of the WHO.-1982.-v.60.-P.231-242. j

189. WHO Collaborative Study Group on poliovirus vaccine. Factors' affecting the immunogenicity of oral- poliovirus vaccine: a prospective evaluation in Brazil and the Gambia.//J Infect Dis.-1995.-v.171.-P.1097-10106.

190. WHO. Expanded Programme on Immunization. Field guide for supplementary activities aimed at achieving polio eradication.-1995.-WHO, Geneva.-WHO/EPI/GEN/95/1.

191. WHO. Expanded Programme on Immunization. Report' of the First Meeting of the Global1 Commission for the Certification of Poliomyelitis.-1995 .-WHO, Geneva.-WHO/EPI/GEN/95/6.

192. WHO. Manual for virological investigation of poliomyelitis.-1997.-WHO, Geneva.-WHO/EPI/GEN/97.1.

193. WHO. Polio: The beginning of the End.-1997.-WHO, Geneva.

194. WHO: Acute flaccide paralysis (AFP) surveillance: the surveillance strategy for poliomyelitis eradication.//Weekly Epidemiol Rec.-1998.-v.73.-P.113-120.

195. WHO. Report of the Second Meeting of the Technical Consultation Group for- Global Eradication of Poliomyelitis.-1998.-WHO, Geneva.-WHO/EPI/GEN/98/04.

196. WHO. Report of the Third Meeting of the Global Comission for the Certification of Eradication of Polio.-1999.-WHO, Geneva.-WHO/EPI/GEN/9 81/17.

197. WHO. WHO'global action plan* for laboratory, containment of wild polioviruses.-1999.- WHO, Geneva.-WHO/V&B/99.32.

198. WHO. Guidelines for implementing the pre-eradication phase of the global action plan for laboratory containment of wild polioviruses.-2000.-WHO, Geneva.-WHO/V& B/00/21

199. WHO. Transmission of wild poliovirus type 2: apparent global' I ' ' !272 , 'interruption.//Weekly Epidemiol Rec.-2001.-v.76.-P.95-97.

200. WHO. Expanding contributions of the Global Laboratory Network for Poliomyelitis Eradication.//Weekly Epidemiol Rec.-2002.-v.77.-P.133-137.

201. WHO. Recommendations for production and control of poliomyelitis vaccine (oral).//WHO Technical Report Series.-2002.-P.904.

202. WHO. Report of the Interim Meeting of the Technical Consultation Group on the Global Eradication of Poliomyelitis.-2002.-WHO, Geneva.-WHO/EPI/GEN/02.

203. WHO. Contaminants show up in the least expected places. .//Polio Lab Network.-2003.-v.IX (1).-P.3.

204. WHO. Guidelines for environmental surveillance of poliovirus circulation.-2003.-WHO, Geneva.-WHO/V&B/03/03.

205. WHO. Update on actions taken following the isolations of MEF-1 reference poliovirus associated with acute flaccid paralysis cases in India in late 2002 and early 2003.//Weekly Epidemiol Rec.-2003.-v.78.-P.284.

206. WHO.' Global Polio Eradication Initiative, Strategic Plan 2004-2008.//Weekly Epidemiol Rec.-2004.-v.79.-P.55-57.

207. WHO. Laboratory Biosafety Manual. Third edition.-2004.-WHO, Geneva.-WHO/CDS/CSR/LYO/2004/l 1.

208. WHO. Polio laboratory manual, 4th edition.-2004.-WHO, Geneva.-WHO/IVB/04/10.

209. WHO. Progress towards global poliomyelitis eradication: preparation for the'oral poliovirus vaccine cessation era.//Weekly Epidemiol Rec.-2004.-v.79.-P.349-56.

210. WHO. New test algorithm to be implemented in 2007.//Polio Lab Network. Quarterly Update.-2006.-v.12.-P.l-2.

211. WHO. Summary and recommendations of the 12th informal consultation of the WHO Global Polio Laboratory Network, June 2006.//Weekly Epidemiol Rec.-2006.-v.81.-P.417-424.1./ у

212. WHO. Global update on vacine-derived polioviruses, January 2006-August 2007.//Weekly Epidemiol Rec.-2007.-v.82.-P.337-344.

213. WHO. SI. Supplement to the WHO Polio Laboratory Manual. An alternative test algorithm for poliovirus isolation and characterization.//WHO. www.who.int. Polio laboratory publications.

214. WHO. Informal consultation of the Global Polio Laboratory Network -June 2008.//Weekly Epidemiol Rec.-2008.-v.83.-P.261-268.

215. Wyatt HW. Poliomyelitis in hypogammaglobulinemics.//J Infect Dis.-1973.-V.128.-P.802-806.

216. Yakovenko M.L., Cherkasova E.A., Rezapkin G.V. et al. Antigenic evolution of vaccine-derived polioviruses: changes in individual epitopes and relative stability of the overall immunological properties.//J Virol.-2006.-V.80.-P.2641-2653.

217. Yang C.-F., De L., Holloway B.P. et al. Detection and identification of vaccine-related polioviruses by the polymerase chain reaction.//Virus Res.-1991.-v.20.-P. 159-179.

218. Yoshida H., Horie H., Matsuura K., Miyamura T. Characterization of vaccine-derived polioviruses isolated from sewage and river water in Japan.//Lancet.-2000.-v.356.-P. 1461-1463.