Автореферат и диссертация по медицине (14.04.02) на тему:Структурно-функциональное исследование биополимеров растительного и грибного происхождения и совершенствование методов их анализа

ДИССЕРТАЦИЯ
Структурно-функциональное исследование биополимеров растительного и грибного происхождения и совершенствование методов их анализа - диссертация, тема по медицине
АВТОРЕФЕРАТ
Структурно-функциональное исследование биополимеров растительного и грибного происхождения и совершенствование методов их анализа - тема автореферата по медицине
Оленников, Даниил Николаевич Улан-Удэ 2012 г.
Ученая степень
доктора фармацевтических наук
ВАК РФ
14.04.02
 
 

Автореферат диссертации по медицине на тему Структурно-функциональное исследование биополимеров растительного и грибного происхождения и совершенствование методов их анализа

На правах рукописи

0050171^

Олейников Даниил Николаевич

Структурно-функциональное исследование биополимеров растительного и грибного происхождения и совершенствование методов их

анализа

14.04.02 - фармацевтическая химия, фармакогнозия

Автореферат диссертации на соискание ученой степени доктора фармацевтических наук

1 о [.;;.["> ш

Улан-Удэ - 2012

005017094

Работа выполнена в Федеральном государственном бюджетном учреждении науки Институте общей и экспериментальной биологии СО РАН

Научный консультант:

доктор химических наук, профессор

Рохин Александр Валерьевич

Официальные оппоненты:

доктор биологических наук, профессор кафедры неорганической и аналитической химии ФГБОУ ВПО "Восточно-Сибирский государственный университет технологий и управления" Минобрнауки России

Анцупова Татьяна Петровна

доктор фармацевтических наук, профессор кафедры фармацевтической химии ГБОУ ВПО "Сибирский государственный медицинский университет" Минздравсоцразвития России

Краснов Ефим Авраамович

доктор химических наук, профессор, заместитель директора по научно-исследовательской работе ФГУН Байкальский институт природопользования СО РАН

Могнонов Дмитрий Маркович

Ведущая организация:

ГНУ Всероссийский институт лекарственных и ароматических

растений РАСХН

Защита состоится "22" мая 2012 г. в 10— час. на заседании диссертационного совета ДМ 003.028.02 при Федеральном государственном бюджетном учреждении науки Институте общей и экспериментальной биологии СО РАН по адресу: 670047, г. Улан-Удэ, ул. Сахьяновой, 6.

С диссертацией можно ознакомиться в Центральной научной библиотеке Бурятского научного центра СО РАН по адресу: 670047, г. Улан-Удэ, ул. Сахьяновой, 6.

Автореферат разослан "20" апреля 2012 г.

Ученый секретарь диссертационного совета, кандидат биологических наук

— хобракова В.Б.

Общая характеристика работы

Актуальность темы исследования. Биополимеры в последние годы привлекают внимание многих исследователей в связи с тем, что ранее считавшиеся инертными, они оказались веществами с широким спектром биологической активности (Оводов, 1998, 2009; Ebringerova et al., 2000). К числу наиболее часто изучаемых макромолекулярных соединений природного происхождения после белков относятся углеводные (полисахариды) и фенольные биополимеры (меланины) (Heinze et al., 2006). Наличие практической значимости и фармакологической активности выявлено для всех известных классов полисахаридов и меланинов, поэтому экспериментальные работы в настоящее время ориентированы в таких направлениях как исследование структуры, разработка технологий производства, химическая модификация, поиск новых источников, определение биологической активности и расширение спектра их практического применения (Медведева и др., 2003; Щербухин, Анулов, 1999). Несмотря на более чем вековую историю химии биополимеров, объем экспериментальной и теоретической информации продолжает увеличиваться с каждым годом, что свидетельствует о неугасающем интересе к данным природным соединениям (Arifkhodzhaev, 2000).

Кроме макромолекулярных соединений растительного происхождения, особый интерес вызывают грибные метаболиты как перспективные фармакологические агенты (Mizuno, 1985; Moradali et al., 2007; Wasser, 1999). Учитывая недостаточную степень изученности базидиальных видов, актуальными остаются химико-биологические исследования грибов, произрастающих на территории России, а также полученных с применением биотехнологических способов (Babitskaya et al., 1996).

Биополимеры являются большей частью гидрофильными соединениями и входят в число обязательных компонентов практически любых экстракционных форм из лекарственного сырья. Однако степень изученности этих веществ даже для фармакопейных видов не превышает 30-40% (Зуева и др., 2010). С целью формирования полной картины химических и фармакологических влияний подобных препаратов на организм человека необходимо расширение сведений о структуре компонентов и биологической активности для видов, разрешенных к применению в медицинской практике.

Наряду с химическими исследованиями, необходимыми остаются исследования по разработке современных методов стандартизации препаратов. Анализ имеющейся к настоящему времени нормативной документации свидетельствует о том, что существующие подходы в ряде случаев не позволяют получать адекватные результаты, т.к. приемлемы для ограниченного числа объектов, обладают низкой воспроизводимостью результатов и мало пригодны для использования в системе надлежащей лабораторной практики (Бовтенко и др., 2009). В этой связи востребованными являются комплексные экспериментальные работы по созданию схем анализа, учитывающих индивидуальные особенности химического состава лекарственного сырья и препаратов и характеризующихся удовлетворительными валидационными параметрами.

Таким образом, исследования в области изучения структуры, биологической активности и разработки методов анализа биополимеров растительного и грибного происхождения являются актуальными.

Целью работы является определение состава, структуры и биологической активности полисахаридов и меланинов растительного и грибного происхождения и совершенствование методов исследования углеводов в лекарственном сырье.

Для достижения указанной цели необходимо было решить следующие задачи:

1) провести химическое исследование полисахаридов семейств Lamiaceae, Fabaceae, Asteraceae, Ericaceae и Plantaginaceae для выявления перспективных источников биологически активных и промышленно важных полисахаридов;

2) изучить химический состав полисахаридов пряно-вкусовых и суккулентных растительных видов как нетрадиционных источников полисахаридов;

3) определить строение полисахаридов биотехнологически перспективных видов базидиомицетов;

4) исследовать состав и строение меланинов ферментированного растительного сырья семейства Lamiaceae и стерильных форм базидиомицетов;

5) разработать рациональные методические подходы к выбору критериев подлинности и количественному анализу лекарственного сырья, нормируемого по содержанию полисахаридов;

6) разработать унифицированную систему стандартизации углеводных компонентов в лекарственном сырье;

7) выявить особенности строения биополимеров, обусловливающих наличие иммуномодулирующей и антиоксидантной активности.

Научная новизна. Впервые проведено исследование и получены данные о содержании и строении биополимеров в 114 объектах растительного (111 видов, 17 сем.) и грибного происхождения (3 вида, 3 сем.) и выделено 183 полимера 14 структурных типов углеводной (173) и фенольной природы (10), представителей классов гомо-, гетерополисахаридов и меланинов. Выделены полисахариды 2 новых структурных типов: частично ацетшированные глюкоарабиногалактаны из семейства Lamiaceae, разветвленный aft-глюкан (пиптопоран I) из плодовых тел Piptoporus betulimis (Piptoporaceae).

В результате исследования полисахаридов 45 видов семейства Lamiaceae установлено присутствие в них а-4,6-глюканов, глюко-1,2-фруктанов, арабино-3,6-галактанов, 1,6-галактанов, гомогалактуронанов, рамногалактуронанов, арабиногалактан-протеиновых комплексов. Выявлена возможность применения некоторых ipynn полисахаридов в качестве маркерных соединений при хемосистематической характеристике данного семейства.

В 12 видах семейства Fabaceae впервые выявлено присутствие галактоманнанов (Astragalus, Gleditsla, Glycyrrhiza, Gueldemtaedtia, Oxytropis). В родах Caragana, Onobrychis, Sophora и Vicia в качестве доминирующих определены а-4,6-глюканы. Для скринингового анализа состава галактоманнанов

предложен методический подход с использованием данных поляриметрического анализа.

Выявлены новые источники инулина в видах семейства Asteraceae и установлено, что для родов Cacalia, Cirsiuni, Echinops, Lactuca, Scorzonera, Stemmacantha характерно накопление линейных поли- и олигоглюкофруктанов. В составе полисахаридов листьев Cacalia hastata установлено присутствие арабиногалакганов и галактуронанов, обладающих гипогликемическим и ранозаживляющим действием.

Установлено, что доминирующими полисахаридами некоторых видов пряно-вкусовых растений (Elettaria cardamomum, Myristica fragrans, Piper nigrum, Pimenta dioica, Zingiber officinale) являются а-4,6-глюканы разной степени разветвленности. Выявлено, что основными полисахаридами суккулентных видов являются галактуронаны, арабинаны, арабиногалактаны (Agave), фруктаны (Brasilopuntia, Opuntia), маннаны {Aloe, Kalanchoé), глюкозаминаны (Callisia).

В составе полисахаридов плодовых тел Laetiporus sulphureus, полученных с применением метода природных плантаций, установлено присутствие гетероглюканов, гликопротеидов, линейных а-1,3-, р-1,3-глюканов и разветвленного ß-З.б-глкжана. В склероциях Inonotus obliquus обнаружены линейные ß-1,3- и а-1,3-глюканы.

Впервые установлено строение меланинов ферментированных листьев некоторых видов семейства Lamiaceae и показано, что они представляют собой высокомолекулярные соединения с м.м. 4-10 кДа, содержащие конденсированные участки и боковые группы в виде гидрокси- и метоксибензольных остатков. Установлено, что склероции Laetiporus sulphureus способны к накоплению меланина дигидронафтапинового типа, впервые обнаруженного в базидиальном виде. Показано, что меланин склероциев Inonotus obliquus представляет собой гетерогенный комплекс, состоящий из высокоароматичных полимеров с молекулярной массой 2-20 кДа, высоким содержанием карбоксильных и фенольных гидроксильных групп. Установлено, что химическая дериватизация (ацетилирование, дезацетилирование, восстановление) влияет на спектральные свойства меланинов. Показано, что растительные и грибные меланины обладают высокой антиоксидантной, антирадикальной и хелатирующей активностью.

Показано, что на выраженность иммуномодулирующей и антиоксидантной активности растительных полисахаридов оказывает влияние степень разветвления основной цепи макромолекулы.

Практическая значимость работы. Разработана методика количественного определения глюкофруктанов в растительном сырье с применением модифицированного резорцинового метода, рекомендованная для анализа сырья и препаратов корней девясила, лопуха и одуванчика. Разработана методика количественного определения полисахаридов в растительном сырье с применением модифицированного антрон-серного метода. Предложен методический подход для определения группового состава углеводов в растительном сырье с использованием комбинации экстракционного метода

Бейли и модифицированного антрон-серного метода. Разработанная методика рекомендована для анализа полисахаридов в 23 видах растительного сырья и показана ее эффективность для дальнейшего использования в практике фармацевтического анализа. Разработана унифицированная схема анализа углеводов в растительном сырье, представляющая собой алгоритм выбора критериев подлинности и метода количественного определения для сырья, нормируемого по содержанию полисахаридов. Данная схема позволяет проводить адекватную стандартизацию растительных объектов.

По результатам комплексных лабораторных и опытно-промышленных исследований разработана и утверждена нормативная документация для организации промышленного производства препарата "Мукалтин таблетки, 50 мг" - регистрационное удостоверение ЛС-000800 "Мукалтин" для ЗАО "Вифитех"; ФСП для ЛС 000800-301211 "Мукалтин таблетки, 50 мг" (ЗАО "Вифитех").

Полученные данные используются в учебном процессе на кафедре фармации медицинского факультета ФГБОУ ВПО "Бурятского государственного университета".

На защиту выносятся:

1.Результаты исследования структуры новых полисахаридов: частично ацетилированных глюкоарабиногалактанов из семейства Lamiaceae и разветвленного сф-глюкана (пиптопорана I) из плодовых тел Piptoporus betulimis.

2,Обоснование возможности использования полисахаридов как хемосистематических маркеров семейства Lamiaceae.

3.Данные о составе и строении полисахаридов из нетрадиционных видов растительного сырья: пряно-ароматических и суккулентных видов.

4.Результаты исследования меланинов ферментированного растительного сырья семейства Lamiaceae и стерильных форм базидиомицетов.

5.Обоснование возможности использования унифицированной схемы анализа углеводов в растительном сырье.

б.Данные по иммуномодулирующей и антиоксидантной активности растительных полисахаридов.

Апробация работы. Основные результаты диссертации были доложены и обсуждены на: VI, VII Международных конференциях «Биоантиоксидант» (Москва, 2002, 2006); IV Международной научно-практической конференции "Здоровье и образование в XXI веке" (Москва, 2003); IV Международной конференции "Актуальные проблемы современной науки" (Самара, 2003); Международных научных школах-конференциях "Экология Южной Сибири и сопредельных территорий" (Абакан, 2003, 2005); Международной конференции "Дорно-орнийн анагаах ухааны хосолмол тогтолцоо" (Улан-Батор, 2005); II Международном симпозиуме "Chemistry of Herbal Medicine and Mongolian Drugs" (Улан-Батор, 2006); VII Международном симпозиуме по химии природных соединений (Ташкент, 2007); IV Международном симпозиуме "Traditional Medicine and Herbal Drugs" (Улан-Батор, 2009); Всероссийском научно-практическом молодежном симпозиуме "Экология Байкала и Прибайкалья" (Иркутск, 1999); VIII, IX, X Российском национальном конхрессе "Человек и

лекарство" (Москва, 2001, 2002, 2003); Всероссийской молодежной научно-технической конференции "Молодые ученые Сибири" (Улан-Удэ, 2003); И Всероссийской конференции "Новые достижения в химии и химической технологии растительного сырья" (Барнаул, 2005); Всероссийской конференции "Биоразнообразие экосистем Внутренней Азии" (Улан-Удэ, 2006); IV Всероссийской конференции "Химия и технология растительных веществ" (Сыктывкар, 2006); Всероссийской конференции "Экология в современном мире: взгляд научной молодежи" (Улан-Удэ, 2007); II съезде микологов России (Москва, 2008).

Личный вклад автора. Вклад автора состоял в формировании направления исследования, активном участии во всех этапах исследования, постановке конкретных задач и их экспериментальном решении, интерпретации и обсуждении экспериментальных данных. Диссертационная работа представляет собой обобщение результатов многолетних исследований, полученных автором лично.

Работа выполнена в рамках научно-исследовательских программ и

при финансовой поддержке интеграционного проекта №54 "Научные основы разработки новых лекарственных препаратов. Перспективы использования возобновляемого сырья"; гранта РФФИ 08-04-98045 "Влияние природных факторов среды на характер накопления биологически активных веществ в плодовых телах дереворазрушающих грибов Прибайкалья"; проекта СО РАН №V1.52.1.3. "Молекулярно-клеточные механизмы стресс-индуцированных патологических состояний и коррекция их средствами природного происхождения"; проекта №VI.44.1.7. "Структурная организация и динамика компонентов растительного покрова в условиях климатических изменений"; Лаврентьевского конкурса молодежных проектов СО РАН, проект №6.22 "Структурно-функциональное исследование биополимеров растительного и базидиального происхождения как соединений с иммуностимулирующей и антиоксидантной активностью".

Публикации. По результатам диссертационной работы получено 2 патента РФ на изобретение и опубликовано 112 научных работ, в том числе 68 статей в периодических изданиях, рекомендованных ВАК МО и науки РФ.

Структура и объем диссертации. Диссертация изложена на 310 печатных страницах, состоит из введения, основной части (6 глав), общих выводов, списка цитируемой литературы, состоящего из 352 источников, в том числе 325 на иностранных языках, и включает 55 рисунков, 101 таблицу и 4 приложения.

Основное содержание работы

Объекты и методы исследования. Объекты исследования были собраны в различных районах республики Бурятия, Алтайского края, Иркутской и Новосибирской областей, а также приобретены через аптечную сеть. Общее содержание углеводов определяли фенол-сернокислотным методом (Dubois et al., 1956), уроновых кислот - 3,5-диметилфенол-сернокислотным методом (Usov et al., 1995), белка - по методу Бредфорд (Bradford, 1976); метоксильные/ацетильные группы определяли после гидролиза с NaOH/HCl методом ГЖХ (Tomoda et al.,

1986). Реакцию на присутствие арабиногалактан-протеиновых комплексов (AGPs) проводили методом радиальной диффузии на агаровых дисках, импрегнированных реактивом Yariv (Biosupplies Australia Ltd.) (Diallo et al., 2001).

Полный кислотный гидролиз проводили в 2 M ТФУ (120°С, 6 ч), частичный кислотный гидролиз арабиногалактанов - 12.5 M (СООН)2 (100°С, 5 ч), галактуронанов - 1 M ТФУ (80°С, 6 ч), ферментативный гидролиз - с а-амилазой и пектиназой. Получение частично метилированных альдитолацетатов проводили смесью NaOH/Mel в ДМСО с последующим гидролизом 90% НСООН и ацетилированием Ас20 в присутствии 4-Ы,Ы'-диметиламинопиридина (Olennikov et al., 2009). Для определения состава аминокислот вещества гидролизовали 6 M НС1 (110°С, 12 ч), и далее анализировали на автоматическом аминокислотном анализаторе ААА-339 (Microtechna).

Гель-хроматографию проводили на Сефадексе G-10, G-25, G-100, G-200 (Farmacia), Молселекте ДЭАЭ-25 (Reanal), Sephacryl 300 HR (Sigma-Aldrich Inc.), ионообменную хроматографию - на ДЭАЭ-целлюлозе (Sigma-Aldrich Inc.). Диализ проводили в диализных тубах с пределом эксклюзии 2 кДа (Sigma-Aldrich Inc.). Спектрофотометрические исследования проводили на спектрофотометре СФ-2000 (ОКБ Спектр). ИК-спектры регистрировали на ИК-Фурье спектрометре ФТ-801 (Симекс) в пленке на ZnSe-окнах-подложках. ГХ/МС исследование проводили на хромато-масс-спектрометре 6890N, соединенном с масс-квадрупольным детектором 5973N (Agilent Technologies). Спектры 'H-, 13С-ЯМР регистрировали на ЯМР-спектрометре VXR 500S (Varían) для 1% растворов веществ в D20, NaOD или с/6-ДМСО.

ВЭЖХ моносахаридов проводили на жидкостном хроматографе Милихром А-02 (Эконова), колонка Separon 5-NH2 (80x2 мм, 5 цм); подвижная фаза MeCN-Н20 3:1, V 0.1 мл/мин, Т 22°С; УФ-детектор при 190 нм. ВЭЖХ полисахаридов проводили на жидкостном хроматографе Summit (Dionex), колонка TSK gel GMPxl (300x7.8 мм, 5 рм), подвижная фаза - Н20, v 1 мл/мин, Т 20°С, УФ-детектор UVD 170S при X 190 нм. Предварительную калибровку колонки проводили с применением стандартных декстранов с молекулярными массами 2000, 500, 100, 40 кДа (Sigma-Aldrich Inc.).

Иммуномодулирующую активность веществ определяли на модели азатиоприновой иммуносупрессии по методу Cunningham (1956) и согласно (Руководство ..., 2005). При исследовании антиоксидантной активности определяли антирадикальную активность в отношении радикалов ДФПГ (DPPH) (Seyoum et al., 2006), АБТС (ABTS) (Ding et al., 2010), связывание супероксидных радикалов (SSA) - в неэнзиматической системе феназин метасульфата-НАДН (Ozen et al., 2011), инактивацию пероксида водорода (ЫА) - в системе феноловый красный-пероксидаза (Badami, Channabasavaraj, 2007), связывание оксида азота (II) - с нитропруссидом натрия и реактивом Грисса (NOS) (Kumar et al., 2008), хелатирование ионов Fe2+ - фенантролиновым методом (FCA) (Олейников с соавт., 2009), Ре3+-восстановительную активность (FRAP) (Katalinic et al., 2006), пероксидную деградацию Р-каротина - в системе олеиновая кислота-ДМС0-Н202 (СВА) (Olennikov et al., 2011).

Результаты исследований Углеводные биополимеры растительного происхождения

Полисахариды семейства Lamiaceae

Впервые проведено систематическое исследование полисахаридных компонентов 45 видов семейства Lamiaceae. В составе нейтральных полимеров выявлено наличие представителей следующих классов: а-4,6-глюканы, глюко-1,2-фруктаны, арабино-3,6-галактаны, 1,6-галактаны. Присутствие

полигалактуронанов как обязательных компонентов было обнаружено во всех изученных представителях Lamiaceae. Полимеры данного типа отличаются высоким содержанием галактуроновой кислоты (50-80%), наличием ацетилирования и метоксилирования основного кора и боковых цепей, общая степень этерификации может достигать 70% (высокоэтерифицированные пектины). В основной цепи макромолекулы всегда присутствуют остатки 1,2-связанной рамнозы, что позволяет определить пектины Lamiaceae как рамногалактуронаны. Присутствие белка, а также положительная реакция по Yariv указывает на наличие сложных арабиногалактан-протеиновых комплексов, также характерных для данного семейства.

Из некоторых представителей данного семейства выделены полимеры, отнесенные к новому классу полисахаридов - частично ацетилированные глюкоарабиногалактаны, обнаруженные в видах родов Glechoma, Lamium, Lophanthus, Panzerina, Schizonepeta и Scutellaria.

Частично ацетилированный глюкоарабиногалактан Panzerina lanata. Из надземной части P. lanata был выделен полисахарид PLWH-2 с м.м. 75.4 кДа, состоящий из Glc, Ara и Gal (1:1.5:4.0); [a]D20 +69° (с 1.8, Н20). ИК-спектр (v, см" '): 3410, 2935, 1740, 1439, 1370, 1331, 1232, 1152, 1104, 1022, 921, 855, 829, 624, 534. По данным ГЖХ полисахарид содержит 12.3% ацетильных групп. В продуктах формолиза и гидролиза перметилата дезацетилированного полисахарида PLWH-2' обнаружены (ГХ/МС) 2,3,4-три-0-Ме-Са1р, 3,4-ди-О-Ме-Galp, 2,4-An-0-Me-Galp, 2,3,4-три-О-Ме-Агар, 2,3,4,6-TeTpa-O-Me-Glcp в соотношении 1.50:1.14:1.09:1.49:1 и следы 2,3,4,6-TeTpa-O-Me-Galp и 4-0-Ме-Galp, т.е. основная цепь PLWH-2' построена из (1—>6)-связанной галактопиранозы, часть которой замещена по С-2 и С-3 единичными остатками арабинопиранозы и глюкопиранозы.

Строение PLWH-2 и PLWH-2' далее исследовали с применением метода 13С-ЛМР спектроскопии (табл. 1). Из положения сигналов атомов C-1 галактозы и глюкозы в спектре PLWH-2 следует, что их аномерные центры обладают а-конфигурацией, а арабиноза - p-конфигурацией. Замещенные атомы С-2, С-3 и С-6 галактозы основной цепи резонируют при 81.74, 84.67 и 66.03 м.д., соответственно, а ацетильные группы - при 20.72 и 175.94 м.д. Для атома С-3 арабинозы наблюдается 2 сигнала, вызванных присутствием в PLWH-2 ее ацетилированных и неацетилированных остатков, соотношение интегральных интенсивностей которых составляет 1:3.95, т.е. 4 из 5 остатков арабинозы содержат ацетильную группу. Ацетилирование у С-3 арабинозы подтверждается наличием второго сигнала атома С-2 при 68.14 м.д., что вызвано р-эффектом

ацетилирования (смещение положения сигнала соседнего атома в сильное поле). Сигнал С-2 глюкозы смещается в слабое поле относительно такового свободной а-глкжопиранозы, что обусловлено а-эффектом ацетилирования у атома С-3, приводящим к смещению положения сигнала соседнего атома углерода в слабое поле.

Таблица 1. Данные 13С-ЯМР РЬ\Ун-2 и РЬ\Ун-2'

Моносахаридный 5 (иС), м.д.

остаток С-1 С-2 | С-3 П^ С-4 1 С-5 С-б | ацетат

РЬ\Ун-2

—♦6-Оа1р-а-1—► 100.29 70.04 71.42 70.11 72.03 66.03

81.74 84.67 20.72 175.94

Агар-р-1—> 100.83 69.53 68.14 69.83 68.39 70.52 63.83

01ср-а-1—» 99.06 74.01 76.07 70.63 73.08 60.91

РЬ\¥н-2'

—>6-Са1/>-а-1—» 100.27 70.01 71.39 70.09 71.98 66.31

81.80 84.70

Агар-Р-1— 100.95 69.54 69.87 70.48 63.80

01ср-а-1 —> 99.10 72.77 74.42 70.75 73.12 61.24

В 13С-ЯМР-спектре полимера PLWн-2t исчезают сигналы углеродных атомов ацетильных групп, а также сигналы, обусловленные ацетилированием остатков арабинозы (68.14 и 68.39 м.д. у Р1^н-2). Также наблюдается смещение в сильное поле сигналов атомов С-2 и С-3 глюкозы, что является следствием дезацетилирования. В результате проведенных исследований установлено, что доминирующий полимер комплекса водорастворимых полисахаридов надземной части Ратегта 1апШа представляет собой ацетилированный глюкоарабиногалактан, основная цепь которого построена из а-(1—>6)-гапактопиранозных остатков, содержащих у атомов С-2 и С-3 единичные остатки арабинопиранозы и глюкопиранозы, которые в свою очередь ацетилированы по положению С-3.

Водорастворимые полисахариды как хемотаксономические маркеры в семействе Ьагшасеае. Сведения о составе и строении полисахаридных компонентов позволяет в ряде случаев решать не только химические задачи, но также рассматривать возможность использования полисахаридов как хемосистематических маркеров в рангах определенного таксона наряду с традиционными хемо-маркерами, представителями групп низкомолекулярных фенольных, терпеновых и азот-содержащих соединений. Так, с использованием данных литературы и полученных экспериментальных данных, нами рассмотрен вопрос об особенностях строения полисахаридов семейства Ьагшасеае.

Исследования данного семейства показали, что для более архаичных родов подсемейства А]1^о1с1еае в составе водорастворимых полисахаридов отмечено присутствие глюкофруктанов (СИ), отсутствующих в более продвинутых подсемействах (рис. 1). В составе пектиновых веществ гомогалактуронаны доминируют над рамногалактуронанами (1Ш). Для подсемейства ЗсЩеНакнсЬае, а также некоторых представителей колена №ре1еае выявлено наличие

глюкоарабиногалактанов (GAG), которые, вероятно, являются некоторой промежуточной формой арабиногалактанов (AG), типичных для продвинутых колен подсемейства Saturejoideae. Наличие арабиногалактан-протеиновых комплексов (AGP) характерно для более продвинутых подсемейств.

Полисахариды семейства Lamiaceae

I. Proitantheroideae GF a-G AG AGP GAG RG

II. Ajugoideac (Ajuga, Amefhystea) |

III. Sculellaroideoe (Scutellaria) |

IV. Stachydoîdeae :

Lamiinae (Phhmis, Galeopsis, Lamium, I ;

Leonurus4 Panzerina, Betonica) | :

V. Satureioideae | :

Ncpdeae (Agasfache, Lophanfhus, Szhizonepeta, : I

Nepeta, Glechoma, Dracocephalum) |

Prunclleae (Prunella) Melkslnati (Ziziphora, Melissa) Hyuopinae (Hyssopus) Thymiane (Maiorana, Origanum, Thymus) Menthmae (Mentha) Rosmorineae (Rosmarinum) Lavcmduleae (Lavandula) Sa/vieae (Salvia) Elsholizieae (EhhoItzia) Ocimeoe fOcimum)

Рис. 1. Распределение структурных типов полисахаридов в семействе Lamiaceae.

Таким образом, можно предположить, что архаичные таксоны семейства Lamiaceae продуцируют условно «простые» группы полисахаридов -гомоглюканы и гомогалактуронаны, а для эволюционно более поздних таксонов наблюдается усложнение структуры биополимеров, объясняемое, по всей видимости, большими биохимическими возможностями их представителей.

Полисахариды семейства Fabaceae

Галактоманнаны семян. В ходе химического изучения семян 20 видов сем. Fabaceae присутствие галактоманнанов (ГМ) было выявлено в 12 из них, представителях родов Astragalus, Gleditsia, Glycyrrhiza, Gueldenstaedtia и Oxytropis (табл. 2). Наличие ПС данного класса не было обнаружено в видах Caragana (С. arborescens, С. buriatica, С. pygmaea, С. spinosa), Onobrychis (О. arenaria, О. sibiricä), Sophora flavescens, Vicia megalotropis, для которых доминирующими ПС-компонентами являются а-4,6-глюканы.

Исследования тонкой структуры ГМ показало, что их макромолекулы построены по типу "гребня" (основная цепь состоит из остатков ß-Manp, соединенных (1—»4)-связью, причем часть из них замещены по положению С-6 единичными остатками a-Galp) и имеют строение, характерное для большинства ГМ семян семейства Fabaceae. Исключение составляет ГМ семян Gueldenstaedtia monophylla, у которого боковые заместители в основной цепи представлены единичными остатками a-Galp (-90%) и 6-O-a-GaI/j-Galp (-10%). ГМ с подобным строением были ранее выделены из семян Cassia angustifolia, Gleditsia ferox, G.

amorphoides и Trifolium repens (Alam, Gupta, 1986; Grasdalen, Painter, 1980; Srivastava, Kapoor, 2006).

Таблица 2. Характеристика ГМ семян 12 видов сем. Fabaceae ________ _____________

" Вид " I WGm, %Т Gal:Man j~j>;], мл/г | [g]0, ° | М.м., кДаТ К5иЬ, | R,M

Astragalus

A. alpinus 0.59 1:1.48 870.3 +67.9 999 67 16:55:29

A. cicer 5.90 1:1.39 925.5 +71.9 1064 72 18:20:62

A. danicus 3.39 1:1.40 471.7 +73.1 472 71 18:25:57

A. sericeocanus 3.58 1:1.58 764.6 +65.3 876 63 15:51:34

A. tibetanus 4.65 1:1.33 1337.1 +76.4 1549 75 10:42:48

Gleditsia

G. sinensis 15.00 1:2.69 1064.0 +21.4 1230 37 23:47:30

Glycyrrhiza

G. uralensis 2.06 1:1.52 1193.1 +64.8 1379 66 25:19:56

Gueldenstaedtia

G. monophylla 2.05 1:1.91 664.7 +45.2 808 50 23:42:35

Oxytropis

O. campanulata 2.91 1:1.09 1363.6 +91.9 1580 - -

O. lanata 3.68 1:1.36 1697.7 +76.8 1976 74 14:44:42

O. recognita 4.11 1:1.06 1287.8 +94.4 1491 - -

O. trichophysa 3.78 1:1.14 1239.1 +86.7 1433 - -

Wo„, - выход, м.в.с.с; Ksub - степень замещения основной цепи; RM - соотношение различно замешенных маннозных блоков [Man-Man : (Gal)Man-Man / Man-Man(Gal) : (Gal)Man-Man(Gal)].

Микроскопическое обнаружение галактоманнанов. Предварительная оценка наличия ГМ может быть дана по результатам микроскопического исследования поперечных срезов эндоспермов семян после гистохимического окрашивания реактивом Фелинга и/или реактивом Люголя (рис. 2).

Astragalus cicer Glycyrrhiza uralensis Astragalus alpinus

Рис. 2. Фрагменты поперечных срезов эндоспермов семян. Зерна ГМ представляют собой темные округлые образования внутри клеток.

Зависимость оптического вращения от состава галактоманнанов. Ранее для описания зависимости состава ГМ от величины [сх]0 предложено уравнение:

[а]с = 3.2-^а|-61.55, где содержание галактозы в полисахариде (%) (Mestechkina et al., 2006).

Учитывая полученные сведения и данные литературы (около 150 ГМ), с применением корреляционног о анализа было показано, что зависимость [а|и -линейна и описывается уравнением:

[а]и = 2.443v^'3' - 33.864,

с величиной коэффициента регрессии г2 = 0.9021 (рис. 3). Следует отметить, что

наиболее достоверные результаты расчета Faboideae и полимеров с содержанием галактозы 25-50%. Ошибка определения содержания галактозы в реальных объектах с использованием данной формулы не превышает 10-12%.

а-Глюканы подземных органов. В корнях некоторых видов сем. Fabaceae (Astragalus membranaceus, Gueldenstaedtia monophylla, Sophora flavescens) установлено наличие полисахаридов группы а-глюканов, представляющие собой разветвленные гомоглюканы, содержащие в основной цепи остатки а-(1—>4)-связанной глюкопиранозы, замещенной по положению С-6 единичными остатками а-глюкопиранозы (табл. 3).

наблюдаются для ГМ подсем.

-20

Рис. 3. Зависимость содержания галактозы (%) от величины удельного вращения ([а]п, °) для ГМ.

Таблица 3. Характеристика а-глюканов подземных органов сем. Fabaceae

Вид

Astragalus membranaceus

Gueldenstaedtia monophylla Sophora flavescens

Название Г<хЪ,° BV М.м., кДа Кьг, %

А„,Р-2-1 +87.1 0.104 90 0.0

А„,Р-2-3 +195.7 0.385 204 12.7

G,„P-1-2/1 +150.3 0.264 164 8.4

S/P-1-1/2 +157.4 0.364 85 10.7

BV - "голубое число", оптическая плотность при 610 нм; степень замещения основной цепи.

Полисахариды семейства Asteraceae Глюкофруктаны подземных органов. Учитывая приуроченность накопления глюкофруктанов (ГФр) к подземным органам, было проведено исследование корней и корневищ около 30 видов данного сем., в результате чего выявлено присутствие ГФр в 12 родах, в т.ч. Arctium, Aster, Cacalia, Cichorium, Cirsium, Echinops, Inula, Lactuca, Rhaponticum, Saussurea, Scorzonera и Taraxacum; следовое содержание или отсутствие характерно для родов Artemisia, Bidens, Carduus, Centaurea, Gnaphalium, Tanacetum и Tussilage). Перспективными для дальнейших исследований были признаны 8 видов: Cacalia hastata, Cirsium

Таблица 4. Содержание спирто- (СР-ГФр) и водорастворимых ГФр (ВР-ГФр) в подземных органах 8 видов сем. Asteraceae, '

esculentum, Echinops latifolius, Lactuca sibirica, Stemmacantha carthamoides, Saussurea lappa, Scorzonera austriaca, Taraxacum officinale (табл. 4), содержание ГФр в которых составило 12.SS-SS.78% (м.в.с.с.). Структурные исследования доминирующих компонентов показали, что они являются линейными ß-(2—> i )-фруктофурананами с м.м. 2.5-70

Вид СР-ГФр ВР-ГФр

Cacalia hastata 13.08+0.27 13.55+0.10

Cirsium esculentum 17.92+0.23 11.33+0.15

Echinops latifolius 11.80+0.21 9.66+0.10

Lactuca sibirica 16.05+0.24 20.58+0.41

Saussurea lappa 10.73+0.14 43.05+0.42

Scorzonera austriaca 10.33+0.11 9.46+0.09

Sthemmacantha carthamoides 2.76+0.04 10.07+0.14

Taraxacum officinalis 15.35+0.31 28.39+0.57

кДа (рис. 4).

Содержание низкомолекулярных ГФр (олигофруктанов) в корнях исследованных видов составляет 2.76-17.92%, и они представлены набором (1 ь-Р-фруктофуранозил)„-производных нистозы (табл. 5). Согласно данным ИЭ-ВЭЖХ доминирующими компонентами являются кестоза, нистоза, 1р-(3-фруктофуранозил-нистоза и 1F-P-- фруктофуранозил-1р-Р-фруктофуранозил-нистоза.

0 2 4 S В ID 12 14 1в 18 20 Учитывая важную биологическую функцию

Рис. 4. Хроматограмма (ВЭЖХ) НИЗК°- И ВЫСОКОМОЛеКуЛЯрнь.Х ГФр, МОЖНО ГФр Saussurea lappa. рекомендовать исследованные виды в качестве

перспективного лекарственного сырья для получения препаратов гипогликемического и пробиотического действия.

Таблица 5. Содержание олигофруктанов в корнях б видов сем. Asteraceae, мг/г м.в.с.с.

ГФр' С. hastata E. latifoiius L. sibirica S. lappa S. austríaca T. officinale

gf п.09±0.12 22.18±0.24 17.46±0.19 21.03±0.18 11.47±0.12 34.54±0.38

gf2 21.77±0.22 6.14±0.07 13.90±0.15 11.43±0.12 15.19±0.17 14.89±0.16

GFj 3.31±0.04 4.13±0.05 3.56±0.04 2.21±0.03 5.17±0.05 3.68±0.04

gf4 11.73±0.12 19.00±0.21 24.22±0.27 8.36±0.10 6.40=fc0.07 16.12±0.18

-gf5 11.52±0.12 5.19±0.06 20.08±0.22 6.76±0.07 8.06±0.09 4.61±0.05

GF - сахароза, GF2 - 1-кестоза, GF3 — нистоза, GF.1 - 1р-0-фруктофуранозил-нистоза, GFS - 1р-Э-фруктофуранозил-1 р-Р-фруктофуранозил-нистоза.

Полисахариды листьев Cacalia hasta ta. Из листьев С. hastata выделено три полисахарида - какаланы А-С, являющиеся арабиногалактанами; в составе пектиновых веществ выявлено присутствие гомогалактуронана и рамногалактуронана. По данным фармакологических исследований полисахариды С. hastata обладают выраженным гипогликемическим и ранозажинляющим действием.

Полисахариды пряно-вкусовых растений

Исследование 14 видов пряно-вкусовых растительных видов, используемых в качестве пряностей и специй, показало, что для данных объектов характерно высокое содержание свободных углеводов (70.57-326.90 мг/г) и полисахаридов (3.66-55.30 мг/г) (табл. 6). По характеру доминирования определенных классов полисахаридов виды делятся на глюкан-содержащие (Curcuma longa, Elettaria cardamomum, Kaempferia galanga, Myristica fragrans, Piper longum, Piper nigrum, Zingiber officinale) и галактуронан-содержащие (Carthamus tinctoriiis, Cinnamomum verum, Crocus sativus, Illicium verum, Laurus nobilis, Pimenta dioica, Syzygium aromaticum). Исследование структуры доминирующих полисахаридов Curcuma longa, Elettaria cardamomum, Kaempferia galanga, Myristica fragrans, Piper nigrum и Zingiber officinale показало, что они являются глюканами различной степени разветвленности, в основной цепи которых присутствуют остатки а-(1—>4)-связанной глкжопиранозы с замещением по С-6 единичными (реже более длинными) остатками (цепями) а-глюкопиранозы.

Таблица 6. Содержание и характеристика свободных углеводов (СУ) и ВРПС некоторых пряно-вкусовых растений_______________

Вид Тривиальное название СУ, мг/г ВРПС, мг/г Ia 2° Доминирующий класс ПС "

Carthamus tinctorius сафлор 326.90 13.04 - + AGP, RG

Cinnamomum verum корица 70.57 4.65 - + AGP, RG

Crocus sativus шафран 213.84 14.15 - ± RG, AG

Curcuma longa куркума 104.93 40.44 + - G, AGI

Elettaria cardamomum кардамон 122.05 16.93 + ± G

lllicium verum бадьян 134.52 13.15 - ± RG, AG

Kaempferia galanga галанг 51.43 5.14 + ± G

Laurus nobilis лавровый лист 187.60 3.66 - + RG, AGP

Myristica fragrans мускатный орех 117.99 18.60 + - G

Pimenta dioica перец душистый 115.88 6.96 - ± RG

Piper longum перец длинный 112.54 55.30 + ± G, AGP

Piper nigrum перец черный 78.95 36.24 + + G, AGP

Syzygium aromaticum гвоздика 118.89 4.93 - + RG

Zingiber o fficinale имбирь 150.48 51.43 + - G

' реакция Сакса; ° реакция с реактивом Yariv; ' AG - арабиногалактан, AGP - арабиногалактан-протеиновый комплекс, AGI - арабиноглнжан, G - глюкан, RG - рамногалакгуронан.

Полисахариды суккулентных видов

Исследование полисахаридных компонентов суккулентных видов было проведено для представителей родов Agave (Asparagaceae), Aloe (Asphodelaceae), Brasilopuntia, Opuntia (Cactaceae), Callisia (Commelinaceae), Kalanchoe (Crassulaceae). Установлено, что доминирующими компонентами ВРПС указанных видов являются галактуронаны (HGU, RG), арабинаны, арабиногалактаны (Agave), фруктаны (Brasilopuntia, Opuntia), маннаны (Aloe, Kalanchoe). Все исследованные виды отличаются высоким содержанием пектиновых веществ (15-40% м.в.с.с.) и могут рассматриваться в качестве сырьевых источников получения пектиновых препаратов, особенно виды Aloe и Kalanchoe, широко применяющиеся для получения лекарственных препаратов.

Глюкозаминан побегов Callisia fragrans. Из побегов С. fragrans был выделен полимер CFP-1-2 (м.м. 44 кДа), содержащий 30.1% нейтральных моносахаридов (Gal:Ara:Glc 4.2:3.7:1) и 67.8% гексозаминов (GlcN:GalN 8.4:1). С использованием методов термического анализа (ТГ, ДТГ, ДСК) установлено, что на кривой ДСК для CFP-1-2 присутствуют характерные для хитина экзотермический максимум в области 300-330°С (321.2°С) высотой 0.21 В/г и эндотермический максимум в области 60-90°С (74.3°С) (рис. 5). Оба максимума присутствуют на кривой ДСК для исходного полимера CFP'-1-2 (312.3 и 88.7°С), на которой также отмечен выраженный эндо-пик при 163.3°С, свойственный галактанам и уронид-содержащим полимерам. В 13С-ЯМР-спектре CFP'-l-2 наблюдаются

термограммы для CFP-1-2 ([3]) и ДСК-термограмма для хитина ([2]-2).

химические сдвиги при 103.9 (С-1), 56.4 (С-2), 74.2 (С-3), 83.3 (С-4), 77.4 (С-5) и 60.7 (С-6), что позволяет охарактеризовать полимер как р-(1—>4)-глюкозаминан, содержащий в боковых цепях остатки нейтральных моносахаридов.

Полисахариды рода Kalanchoe. Впервые проведено исследование полисахаридных компонентов четырех видов Kalanchoe-. К. daigremoriîiana, К. laciniata, К. pinnata и К. tubiflora. Установлено, что доминирующими углеводными полимерами данного рода являются 1,4-маннаны, ранее обнаруженные в видах Aloe.

Полисахариды семейств Ericaceae и Plantaginaceae

ВРПС семейства Ericaceae отличаются относительно высоким содержанием маннозы (22.1-50.8 моль%), глюкозы (6.2-25.7 моль%) и реже рамнозы {Rhododendron dauricum - 14.8 моль%), что наравне с другими показателями свидетельствует о присутствии глюкозо- и маннозосодержащих полимеров (табл. 7). Из фракции ВРПС Rh. dauricum был выделен полимер RjW-1, состоящий из маннозы и дающий растворы с высокими значениями вязкости ([г|] 2193.8 мл/г), охарактеризованный как 1,4-маннан. Полисахариды данного семейства ранее не изучались.

Для ВРПС и ПВ трех видов Plantago характерно высокое содержание уроновых кислот (52.7-64.7 моль%) и высокая степень этерификации 66.4-91.5%, что позволяет отнести полисахариды данного рода к высокоэтерифицированным пектинам. Выявлено, что полисахариды Plantago обладают антирадикальной (1С5о 1.42-2.58 мг/мл) и антиатерогенной активностью. Степень связывания атерогенных липопротеидов сыворотки крови составляет 39.15-42.77% от таковой гепарина.

Таблица 7. Характеристика полисахаридов некоторых видов семейств Plantaginaceae

Ericaceae и

Вид

Выход, %

Ara

Fuc

Gal

Glc

Man

Rha

Xyl UA

Ericaceae

A. uva-ursi (1) 0.4 +24.9 6.3 - - 22.4 49.7 8.2 - 13.3

A. uva-ursi (2) 0.3 +34.2 9.7 - - 21.7 42.6 1.1 1.8 23.0

A. uva-ursi (3) 3.2 +144.0 14.5 - 17.3 4.5 - 1.8 2.6 59.2

Rh. dauricum (2) 1.8 +27.3 14.0 3.3 14.8 6.2 22.1 14.8 2.5 22.2

Rh. aureum (2) 2.2 +25.7 5.6 2.0 3.7 12.5 50.8 0.3 4.0 20.1

V. туг till us (2) 1.9 +27.3 16.9 - 17.3 25.7 27.4 сл. 0.7 11.9

V. vitis-idaea (2) 2.4 +30.9 15.9 - 14.2 22.3 30.1 0.2 1.9 15.3

Plantaginaceae

P. depressa (2) 6.7 +109.2 19.6 0.6 6.4 4.5 3.1 0.9 6.1 58.7

P. depressa (3) 5.5 +126.4 11.5 сл. 15.4 1.5 4.0 0.6 7.3 59.6

P; media (2) 8.0 +115.7 8.6 0.4 19.7 4.3 6.9 1.1 6.2 52.7

P. media (3) 3.5 + 137.8 9.4 сл. 13.6 2.8 5.4 0.4 7.3 61.0

P. salsa (2) 7.3 +112.7 12.4 0.9 14.9 6.3 4.1 1.8 2.2 57.3

P. salsa (3) 5.7 +140.3 11.7 0.2 15.7 2.1 2.5 2.2 1.3 64.7

Вилы родов Arcloslaphyllos (A. полисахариды, экстрагируемые

), Rhododendron (Rh.). Vaccinium (К), Plantago (Л); при 20 (1) и 90°С (2). пектиновые вещества (3); сл. -

фракции ПС: водорастворимые следы.

Углеводные биополимеры грибного происхождения

Полисахариды плодовых тел Laeíiporus sulphureus. Из плодовых тел Laetiporus sulphureus, полученных с применением метода природных плантаций, выделены водорастворимые эндополисахариды. При исследовании доминирующего полисахарида - латипорана А (0.28% м.в.с.с., м.м. 56 кДа) установлено, что он представляет собой р-1,3-глюкан, содержащий в положении С-6 остатки маннозы, галактозы, фукозы, ксилозы и рамнозы. Также выявлено присутствие двух гликопротеидов (латипораны В и D). В экспериментах in vivo установлено наличие антиоксидантного эффекта латипорана А. Были получены щелочерастворимые полисахариды с выходом 42.7%. Установлено строение доминирующего полимера (16.05% от массы плодовых тел), названного латиглюкан I, представляющего собой линейный р-1,3-глюкан (молекулярная масса 180 кДа, [a]D -17°). Минорные латиглюканы II и III являются Р-3,6- и а-1,3-глюканами, соответственно.

Разветвленный сф-глюкан плодовых тел Piptoporus betulinus. Из щелочерастворимых компонентов Р. betulinus был выделен полисахарид PBA-3-2 с м.м. 270 кДа (рис. 6). PBA-3-2. Glc 98.2%, [a]D +107° (1.0, 5% КОН). ИК-спектр (V, см"1): 1418, 1361, 1263, 1205, 1145, 1083, 1026, 929, 890 ф-связь), 847 (а-связь), 824 (1,3-связь).

Согласно данным ГХ/МС, после метилирования в составе продуктов гидролиза PBA-3-2 обнаружены 2,3,4,6-Terpa-Me-O-Glcp, 2,4,6-три-Me-O-GIcp и 2,4-flH-Me-Ô-Glcp в соотношении 1:4.8:1. Полученные данные свидетельствуют о том, что основная цепь PBA-3-2 состоит из остатков незамещенной (1—>3)-связанной Glcp и имеется небольшое число точек ветвления основной цепи по положению С-6, причем боковые цепи представлены единичными остатками Glcp. В составе продуктов метилирования РВА-З-2-d обнаружена 2,4,6-Tpn-Me-OGlcp и следы 2,3,4,6-тетра-Ме-0-Glcp, что указывает на линейный характер полимера, который представляет собой основную цепь макромолекулы РВА-3-2. Сведения о строении PBA-3-2 указывают на то, что он является а-(1—+3)-глюканом, содержащим небольшое количество боковых цепей у атомов С-6, однако остается невыясненным факт наличия полосы р-связей в ИК-спектре РВА-3-2. Для исследования данного вопроса было проведено изучение РВА-3-2 и РВА-З-2-d с применением 13С-ЯМР-спектроскопии (рис. 7, табл. 8).

В аномерной области спектра присутствуют три сигнала при 101.5, 101.8 и 106.3 м .д., отнесенные к атомам С-1 остатков незамещенной и замещенной Glcp основной цепи и Glcp боковых цепей, соответственно. Положения первых двух сигналов указывают на a-конфигурацию аномерных центров Glcp в основной цепи. Для сигналов С-1 Glcp боковых цепей наблюдается сильное смещение в слабое поле, что объясняется ее p-конфигурацией. Смещение сигналов атомов С-3

0.8 0.60,40.2-

0.2

0»= и

3

VL

о 50 100 МЛ

Рис. 6. Гель-хроматограмма фракции щелочерастворимых полисахаридов P. betulinus. 2 -РВА-3-2. На врезке хроматограмма РВА-3-2 (2).

замещенной и незамещенной С\ср основной цепи в слабое поле (85.3 и 86.3 м.д.) относительно такового свободной а-С1ср указывает на их участие в образовании связи (1—>3)-типа, а расположение сигнала атома С-6 замещенных остатков при 68.1 м.д. подтверждает наличие замещения по данному положению. Следует также отметить наличие сдвига сигнала атома С-5 замещенной 0\чр в сильное поле (73.5 м.д.), что подтверждает присутствие заместителя у атома С-6. Соотношение интегральных интенсивностей сигналов С-3 незамещенной и замещенной &ср основной цепи составляет 4.77, что близко к результатам, полученным ранее методом метилирования (4.76). Значения химических сдвигов атомов С-2-С-6 Иср боковых цепей близки к таковым свободной Р-С1ср, т.е., в боковых цепях присутствуют единичные остатки (3-01ср.

Таблица 8. Данные 13С-ЯМР РВА-3-2

Моносахарид- 5 (1JC), м.д.

ный остаток C-l C-2 C-3 C-4 C-5 C-6

->3-a-Glc/)-l—> 101.5 72.6 85.3 70.1 73.8 61.2

->3,6-a-Glc/?-l-» 101.8 72.6 86.3 70.1 73.5 68.1

(3-GIcp-l-> 106.3 73.1 76.1 71.3 75.8 61.8

a-Glc/? 92.7 72.1 73.4 70.4 72.1 61.3

р-Glcp 96.5 74.8 76.4 70.3 76.6 61.5

I

150

—г~ 100

(Шашков, Чижов, 1976).

Рис. 7. 13С-ЯМР-спектр РВА-3-2. А - остаток З-О-а-О-глюкопиранозы, В - остаток 3,6-ди-0-замешешюй-а-П-глюкопиранозы, С - остаток р-О-глюкопиранозы, 1-6 -номер атома углерода. На врезке - участок 13С-ЯМР-спектра в диапазоне 72-74 м.д.

Таким образом, проведенные исследования показали, что полисахарид РВА-3-2 из P. betulinus, названный пиптопоран I, является разветвленным глюканом, основная цепь которого построена из остатков а-(1—>3)-Glcp, замещенной на 17.3% по положению С-6 единичными остатками P-Glcp. Глюканы смешанного типа, содержащие одновременно а- и Р-связи, ранее были обнаружены в видах Pleurotus (Pramanik et al., 2005; Rout et al., 2005), однако полисахариды со структурой, аналогичной пиптопорану I, ранее описаны не были.

Полисахариды склероциев Inonotus obliquus. Впервые в составе щелочерастворимых полисахаридов I. obliquus было выявлено присутствие линейных Р-(1—>3)- и а-(1—>3)-глюканов, потенциальных противоопухолевых соединений.

Фенольные биополимеры растительного и грибного

происхождения

Наравне с исследованиями углеводных биополимеров, особый интерес представляет изучение фенольных макромолекулярных компонентов растительной и базидиальной флоры, условно называемые меланинами, и вызывающими пигментацию растений и грибов.

Растительные меланины

Меланин ферментированных листьев Orthosiphon stamineus. Из О.

staminens был выделен темный пигмент OS-M с м.м. 4.4 кДа; С 57.14%, Н 3.92%, N 2.024%, О 36.92%. В составе функциональных групп выявлено присутствие карбоксильных (9.31±0.32%), карбонильных (7.07±0.24%), фенольных гидроксильных (8.67±0.28%) и пирокатехиновых групп (3.52±0.11%). Согласно данным химических превращений, УФ, ИК, ВЭЖХ, полимер охарактеризован как меланин. Структурные исследования OS-M показали, что для макромолекулы характерно присутствие монозамещенных 2-гидрокси-, 4-гидроксибензольных, тризамещенных 3,4,5-тригидроксибензольных, частично метоксилированных дизамещенных фрагментов, а также монозамещенных 2-гидроксибензольных остатков, связанных через кислородный мостик с основным скелетом макромолекулы. Установлено, что процессы химической дериватизации меланинов (ацетилирование, дезацетилирование, метилирование, восстановление) влияют на характер УФ- и ИК-спектров получаемых производных. Разработана методология УФ-спектрального анализа меланинов с целью выявления индивидуальных характеристик (логарифмический наклон поглощения, хроматический коэффициент). Рассмотрена возможность использования дифференциального варианта анализа (Де-метод).

В результате показано, что метилирование, ацетилирование, деэтерификация и восстановление смещают положение первичной B-полосы в УФ-спектре в коротковолновую сторону при одновременном батохромном сдвиге положения вторичной B-полосы как в нейтральной, так и щелочной средах. При всех видах дериватизации слабая K-полоса исчезает. В дифференциальных спектрах всех производных, кроме восстановленного образца меланина, отсутствует первичная B-полоса. Наиболее стабильными являются вторичная B-полоса и K-полоса, хотя они претерпевают значительные изменения в положении и интенсивности. При метилировани и ацетилировании происходит гипсохромный сдвиг вторичной В-полосы, а при восстановлении - батохромный сдвиг. При деэтерификации полоса вырождается в слабое плечо. K-полоса при всех видах дериватизации смещается в коротковолновую сторону спектра при одновременном снижении интенсивности.

Установлено, что значение хроматического коэффициента зависит от величины логарифмического наклона поглощения (LOA) прямо пропорционально (рис.8). Чем меньше величина коэффициента, определяющая степень ароматичности меланина, тем ниже показатель LOA. Таким образом, значение LOA может служить одним из показателей ароматичности меланинов.

Для ИК-спектров производных меланинов выявлено, что метилирование не вызывает смещение полос при 1714 и 1633 см'1, однако интенсивность последней полосы возрастает; при ацетилировании наблюдается смещение полосы при 1714 до 1757 см'1, что вызвано образованием

•ЕЗ

£ _ ®

Я

° ш

- lä SJ

та Е о

-0.005 -0.0045 -0.004 -0,0035 -0.003

Logarithmic slope of absorbance Рис. 8. Зависимость

логарифмического наклона поглощения от хроматического коэффициента.

сложноэфирных группировок. Положение полосы при 1515 см"1, вызванной скелетными колебаниями ароматического кольца, остается практически неизменным при всех видах дериватизации. Для слабой полосы при 1443 см'1 в нативном меланине наблюдается увеличение интенсивности после метилирования и ацетилирования, что подтверждает ее отнесение к сумме колебаний алифатических цепочек, а также симметричных и асимметричных колебаний С-Н связей в метоксильных группах. В спектре ацетилированного образца меланина наблюдается увеличении интенсивности полосы при 1370 см'1, которая отсутствует в спектрах других производных меланина и, вероятно, отвечает за колебания присутствующих ацетильных групп. После ацетилирования наблюдается увеличение интенсивности полосы при 1209 см"1, что позволяет связать ее появление с колебаниями С-О-С групп в простых и сложных эфирах. В то же время метилирование вызывает появление полосы при 1262 см"1, связанной с колебаниями С-О-С групп в метоксильных группах.

Изучение антиоксидантной активности OS-M с использованием методов in vitro показало, что OS-M оказывает выраженное антиоксидантное действие в отношении свободных радикалов, молекул NO, инактивирует молекулы пероксида водорода и хелатирует ионы Fe (табл. 9). Сравнительный анализ полученных данных показал, что в ряде случаев антиоксидантная активность меланина близка и иногда может превышать таковую розмариновой кислоты — известного антиоксидантного соединения из О. stamineus.

Таблица 9. Антиоксидантная активность OS-M, розмариновой кислоты (RA), водного экстракта листьев Orthosiphon stamineus (AEOS) и галловой кислоты (GA), IC50, мкг/мл а_

Объект DPPH ABTS SSA NOSA HIA FCA CBA

OS-M 7.91 3.36 43.49 22.22 13.36 11.41 12.81

RA 3.91 1.78 10.02 6.96 3.52 >500 42.89

AEOS 15.48 11.85 11.38 8.11 185.73 22.31 41.80

GA 0.98 0.311 76.42 7.24 5.14 >500 12.30

* DPPH - антирадикальная активность в отношении радикала DPPH", ABTS - антирадикальная активность в отношении катион-радикала ABTS'+, SSA - связывание супероксид-анион радикалов, NOSA - связывание молекул NO, HIA - инактивания молекул Н2О2, FCA - FcJ+-хелатирующая активность, СВА - ß-carotene bleaching assay (СВА).

Присутствие фенольных биополимеров, близких по строению и физико-химическим свойствам к OS-M, было также выявлено в ферментированных листьях других представителей семейства Lamiaceae: Dracocephalum foetidum, Lophanthus chinensis, Mentha x piperita, M. canadensis, Schizonepeta multifida (табл. 10).

Таблица 10. Физико-химическая характеристика меланинов некоторых видов Lamiaceae

Вид Содержание, % m.m., Кда E465/E665 C,% H,% 0,% N,%

Dracocephalum foetidum 0.22 6.1 4.68 56.2 3.9 38.8 1.1

Lophanthus chinensis 0.74 5.2 4.93 58.3 4.0 36.3 1.4

Mentha x piperita 0.57 6.8 4.21 59.6 3.7 35.8 0.9

M. canadensis 0.18 7.7 4.04 57.4 3.8 36.1 2.7

Schizonepeta multifida 0.23 9.2 4.61 57.9 4.0 36.1 2.0

Сведения о высокой антиоксидантной активности меланина О slamineus позволяют рекомендовать для дальнейшего химического и биологического исследования растительные продукты, полученные в результате ферментации сырья, традиционно используемого в неферментированном состоянии.

Грибные меланины

Меланины склероциев Laetiporus sulphureus. Из склероциев L. sulphureus был выделен меланиновый комплекс, представляющий собой смесь трех полимеров фенольной природы JIM-I, J1M-2 и J1M-3 с молекулярными массами 63, 34 и 9.1 кДа, соответственно; компонент ЛМ-3 был доминирующим. С применением химических и спектральных методов установлено, что меланин L. sulphureus относится к дигидронафталиновому типу и характеризуется доминированием конденсированных фенольных фрагментов. К настоящему времени меланины дигидронафталинового типа обнаружены в микромицетах классов дейтеромицетов (Aspergillus carbonarius, Alternaría alternata, Paecilomyces variotti) (Babitskaya et al., 2006), аскомицетов (Asperisporium caricae, Pleurophragmium sp., Tuber melanosporum) (Paim et al., 1990), дотидеомицетов (Phyllosticta capitalensis) (De Angelis et al., 1996) и леотиомицетов (Sclerotinia sclerotiorum) (Butler et al., 2009). Следует отметить, что исследования меланинов базидиомицетов немногочисленны: известно, что они отличаются высокой степенью ароматичности (Cerrena maxima) (Koroleva et al., 2007) и могут принадлежать к пирокатехиновому (Inonotus obliquus, Phellinus robustus) и y-глутаминил-п-оксибензольному типам (Babitskaya et al., 2002). Присутствие меланина дигидронафталинового типа в базидиальном виде установлено впервые.

Результаты изучения биологической активности меланина L. sulphureus показали, что его можно рекомендовать для использования в качестве эффективного и безопасного пищевого или фармацевтического антиоксиданта.

Меланины склероциев Inonotus obliquus. Проведено фракционирование полимерных компонентов меланина склероциев Inonotus obliquus, в результате чего было выделено 6 пигментных фракций (суммарный выход 52.13% м.в.с.с.). С применением элементного анализа, УФ-, ИК-, 13С-ЯМР спектроскопии и гель-хроматографии установлено, что выделенные фракции различаются по степени ароматизации, данным молекулярно-массового распределения и содержанию функциональных групп. Доминирующие компоненты представляют собой высокоароматичные полимеры с молекулярной массой 2-20 кДа, высоким содержанием карбоксильных и фенольных гидроксильных групп.

Анализ полученных результатов и данных литературы для других представителей грибных меланинов с использованием диаграммы Ван Кревелена показал, что выделенные фракции можно условно разделить на группы с большей и меньшей степенью ароматичности (рис. 9). Элементный состав первой группы близок к таковому меланинов Cerrena maxima, Aspergillus glaucus, Eurotium echinulatum, Oidiodendron tenuissimum и синтетического феомеланина (Knicker et al., 1995; Koroleva et al., 2007), а данные для второй группы - к меланинам Hendersonula toruloidea, Ulocladium atrum и ранним сведениям о меланинах I. obliquus (Babitskaya et al., 2000). Расположение в зоне гуминовых и фульвокислот

почв и торфа может указывать на близость меланинов I. obliquus к группе гуминоподобных веществ.

Дополнительно нами был использован структурный параметр т] (Gyul'maliev et al., 2007), не зависящий от молекулярной массы соединения и ранее не применявшийся для анализа грибных пигментов. Установлено, что диапазон значений г| для данной группы соединений составляет 2.06-3.85, а для I. obliquus -2.46-3.16. Корреляционный анализ выявил, что наблюдается прямо пропорциональная линейная зависимость соотношения Н/С от т|, описываемая уравнением регрессии

ц = 1.453 • Н/С + 1.057 (г2 = 0.9078), т.е. возрастание г) свидетельствует о большей алифатичности соединений, а снижение характерно для ароматических и конденсированных компонентов. Для олигомерных производных гиспидина величины Н/С и т| находятся в интервалах 0.60-0.90 и 1.9-2.1, соответственно, что близко к нижней границе для грибных меланинов и указывает на их сравнительно большую ароматичность.

Н/С

1.6

1,2

ЮМ-5

0,8 -

0,4 -

10M-1

Д Д

HA/FA

О д

IOM-4 _ „ . ЮМ-6

I \ 10М-3

©7 Д 2 • 3 Я4

□ 5

4 -

3 -

ш

.-7

СНд

о

0,5

1

О/С

0

1

3

Н/С

а б

Рис. 9. а. Диаграмма Ван Кревелена для грибных меланинов и индивидуальных соединений. 1 -пигментные фракции ЬюпоШз оЬИдиш, 2 - меланин 1. оЬИциих, 3 - грибные меланины, 4 -ДОПА-меланин, 5 - феомеланин. НА/ГА - зона гуминовых и фульвокислот почв и торфа, б. Диаграмма зависимости С/Н от г). ИМ - грибные меланины, Нр - производные гиспидина, В -бензол, в - графит, N - нафтатан, Р - фенол.

Общая антиоксидантная емкость пигментных фракций I. оЬПдш/х составила 150.51-569.40 мг/г. Наиболее выраженной активностью исследованные образцы обладают в отношении свободных радикалов (БРРН', АВТБ^) и некоторых активных форм кислорода (02", ОН", Н202). Значения 1С5о°т1, составили 6.85-

54.17 мкг/г, 1С50 мкг/г и 1С50ШО

6.69-28.07 мкг/г, 1С50 6.11-67.24 мкг/г, 1С50ОИ' 0.98-7.37

5.21-11.92 мкг/г. Установлено наличие значительной Ре2+-хелатирующей и Ре1 ^восстановительной способности - 2.07-33.91 Ре27мг и 0.963.73 мМ Ре" /мг, соответственно. На модели окислительной деградации Р-каротина выявлена высокая антиоксидантная активность (1С50 14.62 мкг/мл), сравнимая с эффективностью галловой кислоты (1С50 12.30 мкг/мл). Менее заметное влияние исследованные фракции оказывают на процесс связывания

молекул оксида азота (II) - от 335.24 до >1000 мкг/мл. С применением регрессионного анализа было выявлено, что для фракций с высоким содержанием пирокатехиновых, кислород-содержащих функциональных групп (соотношение О/С) и высокой степенью ароматичности (соотношение Н/С) характерна большая антиоксидантная активность. Сравнительный анализ сведений об антирадикальной активности производных гиспидина показал меньшую эффективность низкомолекулярных метаболитов в инактивации свободных радикалов. Данное обстоятельство, возможно, объясняется наличием у полимерных пигментов более сложной сетчатой структуры, позволяющей исполнять роль "ловушек" свободных радикалов.

Следует отметить, что сведения о спектральных свойствах пигментных фракций I. obliquus и производных гиспидина указывают на их возможную структурную близость и позволяют высказать предположение, что низкомолекулярные вещества являются биогенетическими предшественниками полимерных соединений. Предположительно, биосинтез производных гиспидина идет от ацетата или 3,4-дигидроксибензальдегида через ряд присоединений ацетильных групп с последующими декарбоксилированием и димеризацией образовавшихся интермедиатов. Вероятно, данный процесс не заканчивается на образовании олигомеров и в итоге приводит к появлению более сложных структур, формирующих пигментный комплекс I. obliquus. Таким образом, проведенные исследования показали, что способ выделения меланина из склероциев I. obliquus влияет на физико-химические свойства получаемых экстрактов и их активность, что следует учитывать при создании экстракционных препаратов из чаги.

Иммуномодулирукмцая активность растительных а-глюканов

Исследование иммуномодули-рующего действия растительных а-глюканов показало, что наибольшее влияние на активность оказывает степень разветвления кора макромолекулы. Так для линейного глюкана Astragalus membranaceus (AmG-2-l) она минимальная, а для глюкана Elettaria cardamomum (ECW-1-2) со степенью разветвления кора 46.1% - наибольшая (рис. 10). Полученные результаты описываются линейной зависимостью со значением коэффициента детерминации >0.6. Также было отмечено влияние молекулярной массы полимеров на проявление у них иммуностимулирующей активности, причем в ряду от глюкозы до

1000 800 600 -400 -200 ;

AmG-2-l AcWG-2 j SfP-1-1/2

ECW-1-2

PtWP-2/1-2

9

> 0 ......SbRP-1"

0

10

20

30

40

Рис. 10. Влияние а-4,6-глюканов на гуморальный иммунитет в условиях азатиоприновой иммуносупрессии. По осп абсцисс - степень разветвленности (КЬт), %: по осу ординат -количество АОК/Ю6 енленоиитов. ЯЕ - график уравнения линейной регрессии: у = 14.021л: + 78.596. г1 = 0.6645.

400

300

полимеров с м.м. 100-300 кДа она возрастала, после чего снижалась.

Присутствие глюканов в составе таких растительных иммуномодуляторов как Scutellaria baicalensis, Sophora flavescens, Astragalus membranaceus и др. помимо других классов соединений, например, фенольной или терпеновой природы, указывает на их возможное совместное участие в формировании общего действия на организм. В связи с этим для ряда растительных объектов нами было проведено сравнительное исследование иммуномодули-рующей активности полисахаридов и доминирующих низкомолекулярных метаболитов. На примере компонентов корней софоры желтоватой было установлено, что в условиях азатиоприновой иммуносупрессии у мышей глюкан и два доминирующих пренилированных флаванона - софорафлаванон G и кураринон, обладали близкой степенью активности, причем глюкан StP-l-l/2 выраженности реакции ГЗТ превосходил активностью флавоноиды (рис. 11).

Рис. 11. Влияние глюкана S<P-1 -1 /2, софорафлавонона С и кураринона на антителообразование (АОК/106

спленопитов; а) и выраженность реакции ГЗТ, % (б). Экспериментальные группы: 1 -интактная, 2 — азатиоприн (50 мг/кг, А), 3 - А + S/P-1-1/2 (50 мг/кг), 4 - А + софорафлаванон G (50 мг/кг), 5 - А + кураринон (50 мг/кг).

по

Антиоксидантная активность полисахаридов

Учитывая возрастающий интерес к антиоксидантным свойствам полисахаридов, было проведено сравнительное исследование выделенных полимеров с применением витральных моделей (DPPH, ABTS, FRAP, СВА, FCA). В результате было установлено, что отсутствие или слабая выраженность антиоксидантных свойств наблюдалась для глюканов, арабиногалактанов, галактоманнаннов и глюкофруктанов (рис. 12).

все гомо-ПС i

Ara/Gal пектины

GalUA Э

DPPH ASTS СВА Fe-CA

щМШШI

Момбранослабилизация

Рис. 12. Антиоксидантная активность полисахаридов. GalUA - галактуроновая кислота, AG - арабиногалактаны, HGA - гомогалактуронаны, RG - рамногалактуронаны, ПВ - пектиновые вещества.

Наличие данного вида активности было отмечено только для представителей гак называемого «пектинового комплекса». Было выявлено, что антирадикальные

свойства возрастают в процессе усложнения структуры пектина: так у суммарного очищенного комплекса пектина, не содержащего фенольной примеси, активность всегда был а выше, чем у компонентов. Подобный характер влияния был отмечен при проверке мембраностабилизирующих свойств (перекисный, осмотический, свободнорадикальный типы гемолиза), а также по действию на активность ферментов антиоксидантной защиты организма - супероксиддисмутазу и каталазу. Металлохелатирующая активность была более выражена у галактуронановых коров, что объясняется более высоким содержанием свободных карбоксильных групп.

Совершенствование методов анализа углеводов

В РАСТИТЕЛЬНОМ СЫРЬЕ Модифицированный резорциновый метод Исследование реакции фруктозы с резорцином. Исследована колориметрическая реакция фруктозы с резорцином и выявлены оптимальные условия ее проведения. Определение состава проводили групповым методом с последующим представлением полученных данных в виде поверхностей, а также построением: изоадсорбатных карт, являющихся плоскостными моделями поверхностей отклика в координатах сНСг-Сеюн и позволяющим наглядно представить результаты эксперимента (рис. 13).

Рис. 13. Поверхность отклика для продуктов реакции инулина с резорцином и ее проекция на

ось Сеюн - снс1>

Спектральный анализ показал, что спектр поглощения комплекса фруктозы с резорцином обладает двумя экстремумами в видимой области - 400 и 480 нм (рис. 14). Компоненты раствора по отдельности не влияют на интенсивность максимумов. В качестве аналитической длины волны была выбран максимум при 480 нм по причине его удаленности от коротковолновой области, в которой могут находиться полосы поглощения сопутствующих веществ фенольной природы. Установлено, что в присутствии 16% НС1 и 48% этанола достигается максимальная оптическая плотность при минимальной относительной ошибке

определения (2.03%). Для стабилизации окрашенного комплекса фруктозы с резорцином предложено введение в реакционную смесь тиомочевины. Изучены спектральные характеристики окрашенных комплексов с резорцином других моносахаридов и установлено, что наименьшее влияние на интенсивность оптической плотности растворов фруктозы в выбранных условиях оказывают арабиноза и рамноза.

Исследование реакции инулина с резорцином. Определены оптимальные условия проведения реакции инулина с резорцином и проведены исследования по установлению состава реакционной смеси. Определено, что в состав реакционной смеси должны входить 15% НС1, 52% этанола, что позволяет добиться максимальной оптической плотности. Введение тиомочевины замедляет процесс разрушения аналитического компонента. Выявлено, что инулин обладает частичной растворимостью в водных растворах этанола различной концентрации; так 50% растворимость наблюдается уже для растворов этанола с концентрацией 61-65%, поэтому при проведении процедур подготовки растительного сырья для анализа рекомендуется использовать только 95% этанол, который при 3-кратной экстракции позволяет практически полностью извлечь низкомолекулярные углеводы. Разработанные методические подходы были применены для анализа глюкофруктанов в трех видах лекарственного сырья: корневищах и корнях девясила высокого, корнях лопуха и корнях одуванчика лекарственного. Проведенный метрологический анализ показал, что методики воспроизводимы и достоверны. В ходе разработки изменений к существующим ФС было выявлено, что применение в качестве критерия подлинности хроматографической (ВЭТСХ) картины состава олигомерных глюкофруктанов не позволяет отличать данные виды сырья, т.к. состав указанной группы соединений у них близкий. В этой связи было предложено введение показателей состава и количественного содержания второго доминирующего класса соединений - фенилпропаноидов.

Модифицированный антрон-серный метод

Рассмотрена возможность модификации антронового метода Дрейвуда для спекгрофотометрического определения углеводов, результатом чего является увеличение точности и воспроизводимости получаемых результатов. Для устранения недостатков классического метода рассмотрена возможность разведения пробы 95% этанолом. Относительная ошибка определения модифицированного метода не превышает 4% (для классического варианта 810%). Исследование спектров поглощения продуктов взаимодействия антрона с моносахаридами показало, что они обладают характерным максимумом в области

200 300 400 500 600 700 Рис. 14. Спектры поглощения комплексов с резорцином фруктозы (1), инулина (2) и водного извлечения Inula helenium (3).

405-411 нм, за исключением галактуроновой кислоты, экстремум которой находится при 424 нм.

Время, достаточное для образования окрашенного комплекса при 100°С, составляет 10 мин. Введение дополнительной процедуры охлаждения реакционной смеси после добавления концентрированной серной кислоты нецелесообразно, т.к. это не оказывает влияния на интенсивность окраски конечного комплекса. Устойчивость оптической плотности растворов после добавления этанола наблюдается в течение 10-12 часов. При исследовании продуктов взаимодействия антрона и моносахаридов в среде этанола методом изомолярных серий установлено, что они реагируют в эквимолярном соотношении. Разработанный метод был применен для количественного анализа полисахаридов в ряде растительных объектов и препаратов.

Для анализа полисахаридов в объектах, дающих вязкие извлечения при использовании воды в качестве экстрагента, предложено использование 1% раствора натрия хлорида. Результатом применения является улучшение реологических параметров получаемых экстрактов и, как следствие, повышение выхода полисахаридов и сокращение времени аналитического процесса. Исследование основных физико-химических свойств полученных образцов ВРПС показало, что общее содержание углеводных компонентов в данном случае увеличивается на 17-35%. Предварительное измельчение сырья приводит к ухудшению реологических параметров извлечений и снижению содержания полисахаридов.

Методика количественного анализа группового состава углеводного комплекса растительных объектов. Разработана методика количественного определения группового состава углеводного комплекса растительных объектов (свободные углеводы, водорастворимые полисахариды, пектиновые вещества и гемицеллюлозы) из одной навески, основанная на объединении известной схемы разделения углеводов по Бейли и модифицированного спектрофотометрического метода Дрейвуда. Проведенный метрологический анализ показал, что относительная ошибка определения не превышает 5%. Разработанная методика была апробирована на ряде видов растительного сырья, относящегося к разным морфологическим группам.

Создание унифицированной схемы анализа углеводов в растительном сырье

Критерии подлинности. Для существующей в настоящее время нормативной документации на растительное сырье (ФС, ФСП, ТУ) характерно использование ряда неспецифичных методов качественного определения полисахаридных компонентов.

1. Реакция преципитации водных извлечений из растительного объекта этанолом, приводящая к образованию осадка (взвеси, мути). Положительный результат при использовании данного метода дают все растительные объекты, т.к. полисахариды являются их обязательными составляющими.

2. Реакции, основанные на образовании окрашенных комплексов между моносахаридами, образующимися после кислотного гидролиза водного

извлечения, и фенолами (нафтол, карбазол, резорцин, антрон, фенол и др.). Положительный результат проявляется для любых объектов растительного происхождения, т.к. они содержат сахарозу, при гидролизе которой выделяется фруктоза, реагирующая с нафтолом или резорцином, либо галактуроновую кислоту - компонент водорастворимой части пектиновых веществ (реакция с карбазолом), или любой другой моносахарид, реагирующий с общими реактивами на углеводы (антрон, фенол и др.).

Таблица 11. Критерии подлинности лекарственного сырья, нормируемого по содержанию полисахаридов______

Объект Определяемая группа соединений Метод Детектируемые компоненты

Использование качественных реакций (КР)

Laminaria, Fucus Фуканы KP с реактивом Дише Фукоза

Callisia fragrans Свободные аминосахара KP с реактивом Эльсона-Моргана Глюкозам ин

Определение моносахаридного состава

Althaea officinalis Арабинаны ВЭТСХ Арабиноза

Armeniaca vulgaris Глюкуроноарабино-галактаны вэтсх Арабиноза, галактоза

Linum usiiatissimum, Plantado psyllium Арабиноксиланы ВЭТСХ Арабиноза, ксилоза

Trigonella foenum-graecum Галактоманнаны вэтсх Галактоза, манноза

Салеп Глюкоманнаны ВЭТСХ Глюкоза, манноза

Трагакант Арабиноглюкуронаны вэтсх Арабиноза, глюкуроновая кислота

Определение состава свободных углеводов

Arctium sp., Echinacea purpurea, Inula helenium, Taraxacum officinale Глкжофруктаны ВЭТСХ Фруктоза, сахароза, 1-кестоза, нистоза

Определение неуглеводных компонентов

Aloe arborescens Пироны ВЭТСХ, ВЭЖХ Алоэнин

Bidens tripartita Флавоноиды, фенилпропаноиды ВЭТСХ, ВЭЖХ Лютеолин-7-глюкозид, хлорогеновая кислота

Cetraria islándica Депсняы ВЭТСХ, ВЭЖХ Усниновая кислота

Plantago major Флавоноиды, фенилпропаноиды ВЭТСХ, ВЭЖХ Лютеолин-7-глюкозид. хлорогеновая, кофейная кислоты

Kalanchoe pinnata Флавоноиды ВЭТСХ, ВЭЖХ Кверцетин, кемпферол

Sambucus nigra Флавоноиды, фенилпропаноиды ВЭТСХ, ВЭЖХ Рутин, изокверцитрин, хлорогеновая, кофейная кислоты

Tussilago farfaro Фенилпропаноиды ВЭТСХ, ВЭЖХ Хлорогеновая, кофейная кислоты

Tilia sp. Флавоноиды ВЭТСХ. ВЭЖХ Гиперозид, рутин

Viola tricolor Фенолокислоты ВЭТСХ, ВЭЖХ Салициловая кислота

Исключение составляют специфические методы детекции ряда моносахаридов, например реакция Дише для фукозы (на фукоинданы Laminaria sp. и Fucus sp.) или реакция Эльсона-Моргана для аминосахаров (свободный

глюкозамин в соке Callisia fragrans). Однако применение указанных методов ограничено крайне редкой встречаемостью определяемых ими групп углеводов (табл. 11). В этой связи при определении подлинности растительного сырья следует использовать более специфичные свойства полисахаридов, как, например, моносахаридный состав. Процедура анализа состоит в предварительном гидролизе фракции полисахаридов, полученной после осаждения этанолом, в среде 3 М ТФУ с последующим хроматографическим анализом с применением ТСХ, ВЭТСХ, ВЭЖХ или ГЖХ (ГХ/МС). Несмотря на большую стоимость и длительность данного метода анализа, полученные результаты могут более достоверно характеризовать объект.

В ряде случаев возможно определение не мономерных составляющих полисахаридов, а их олигомерных предшественников, постоянно присутствующих в сырье, каковыми являются олигомерные глюкофруктаны, сопутствующие полиглюкофруктанам. Так в составе спирторастворимых компонентов корней Inula helenium, Arctium sp., Taraxacum officinale и др. всегда идентифицируется наличие 1-кестозы, нистозы и более высокомолекулярных глюкофруктанов, анализ которых может быть проведен с использованием методов ТСХ или ВЭТСХ.

В ходе анализа объектов, для которых характерны сходные составы свободных углеводов и полисахаридов, необходимо использование других классов соединений как идентификаторов подлинности (табл. 11).

Количественный анализ. Для проведения количественного анализа полисахаридов в лекарственном сырье достаточным является использование двух основных методов: резорцинового метода (для определения глюкофруктанов) и антрон-серного метода (для определения суммарного содержания полисахаридов) (табл. 12). Дополнительным методом анализа углеводов может считаться метод Эльсона-Моргана, используемый для характеристики сырья и препаратов Callisia fragrans. Исследование различных параметров (аналитические характеристики, безопасность, правильность результатов) других методов, используемых в настоящее время в фармакопейном анализе (гравиметрический, пикриновый, фенол-серный, карбазольный методы), указывает на их несоответствие требованиям надлежащей лабораторной практики.

Следует отметить, что включение количественного определения полисахаридов в спецификацию на растительное сырье оправдано только в двух случаях:

1) если растительный объект является концентратором данной группы биополимеров, (например, корни алтея лекарственного, корневища и корни девясила высокого и др.);

2) если полисахаридные компоненты являются носителем (или одним из важных составляющих) фармакологического эффекта извлечений (препаратов) из растительного объекта. Во всех остальных случаях количественное определение полисахаридов не может являться показателем качества растительного сырья, т.к. они являются обязательными компонентами любой растительной ткани и всегда будут присутствовать в составе экстрактивных веществ. В таблице 12 приведены

примеры использования предложенных подходов для анализа полисахаридов в лекарственном сырье.

Таблица 12. Количественный анализ лекарственного сырья, нормируемого по содержанию

полисахаридов

Объект Группа углеводов Метод3 PCO6 Рекомендуемый показатель, не менее, %

Aloe arborescens полисахариды АСМ GalA 10.0

Arctium sp. глюкофруктаны РМ Frc 10.0

Althaea officinalis полисахариды АСМ Ara 8.0

Armeniaca vulgaris полисахариды АСМ Ara 20.0

Bidens tripartita полисахариды АСМ GalA 3.0

Callisia fragrans аминосахара МЭМ GlcN 1.0

Cetraria islandica полисахариды АСМ Gic 15.0

Echinacea purpurea глюкофруктаны РМ Frc 10.0

Fucus sp. полисахариды АСМ Gic 30.0

Inula helenium глюкофруктаны РМ Frc 15.0

Kalanchoe pinnata полисахариды АСМ Man 8.0

Laminaria sp. полисахариды АСМ Gic 30.0

Linum usitatissimum полисахариды АСМ Xyl 4.0

Plantago major полисахариды АСМ GalA 2.0

Plantago psyllium полисахариды АСМ Xyl 6.0

Sambucus nigra полисахариды АСМ GalA 2.0

Taraxacum officinale глюкофруктаны РМ Frc 15.0

Tilia sp. полисахариды АСМ GalA 2.0

Trigonella foenum-graecum полисахариды АСМ Man 15.0

Tussilago farfara полисахариды АСМ GalA 2.0

Viola tricolor полисахариды АСМ GalA 5.0

Салеп глюкоманнаны АСМ Man 80.0

Трагакант полисахариды АСМ GlcA 70.0

а АСМ - антрон-серный метод, МЭМ - метод Эльсона-Моргана, РМ - резорциновый метод; 0 Ara - арабиноза, Frc - фруктоза, GalA - галактуроновая кислота, GlcA - глюкуроновая кислота, Man - маниоза, Ху1 - ксилоза.

В ходе разработки аналитических процедур при работе с нефармакопейными видами сырья необходимо придерживаться следующего алгоритма действий (рис. 15).

1. На первом этапе изучения нефармакопейных видов лекарственного сырья наравне с проведением анатомических, ресурсоведческих и технологических исследований, осуществляется расширенный химический анализ экстрактивных веществ, включая низко- и высокомолекулярные соединения.

2. Если полисахаридные компоненты представляют потенциальный интерес как возможный класс действующих веществ, то проводится исследование состава, структуры и биологической активности для суммарных фракций или индивидуальных полимеров.

3. С применением методов количественного анализа определяется возможность отнесения полисахаридов к группе доминирующих соединений комплекса экстрактивных веществ. Если количественное содержание

полисахаридов не превышает 0.5-1%, то в качестве соединений, содержание которых следует нормировать в лекарственном сырье, выбирается другой класс веществ.

ЛЕКАРСТВЕННОЕ СЫРЬЕ

1. Известен ли химический состав?

ДА | НЕТ

1а. Химическое исследование |

1 ПОЛИСАХАРИДЫ (ПС) 1

2. Известны ли данные о составе, структуре и биологической активности ПС?

ДА | НЕТ

2а.Химико-биологическое исследование 1

3. Являются ли ПС доминирующей (одной из) группой соединений?

ДА I НЕТ

За. Выбор другого класса соединений

4. Являются ли ПС действующей (одной из) группой соединений?

ДА | НЕТ

4а. Выбор другого класса соединений

(выбор метода определения подлинности)

_5. Доминирующий класс ПС - глгоканы и (или) галактуронаны_

да | ' Гнет ' ~

Определение неуглеводных компонентов Применение качественных реакций (ВЭТСХ, ВЭЖХ) (фуканы, глюкозаминаны), анализ

моносахаридного состава (ВЭТСХ -арабинаны, галактаны, маннаиы, кснланы), анализ олигосахаридного состава (ВЭТСХ - глюкофруктаны)

1 I

(выбор метода количественного анализа) _6. Доминирующий моносахарид ПС_^_

Фруктоза Аминосахара Другие моносахариды

I I I

резорциновый метод метод Эльсона-Моргана антрон-серный метод

Рис. 15. Алгоритм выбора критериев подлинности и метода количественного анализа для лекарственного сырья, нормируемого по содержанию полисахаридов.

4. На следующем этапе исследования проводится изучение фармакологических (биологических) свойств экстрактивных веществ объекта и определяются соединения, ответственные за проявление фармакологического (биологического) эффекта. Определяется степень выраженности эффекта для полисахаридов. Если данный класс соединений не вносит значительного вклада в наличие у препаратов из объекта того или иного вида активности, то в качестве

соединений, содержание которых следует нормировать в лекарственном сырье, выбирается другой класс веществ.

5. Если полисахариды являются одним из действующих классов соединений, то принимается решение о включении данных веществ в число нормируемых и выбирается метод определения подлинности объекта на основании сведений об особенностях строения полисахаридов. Если в качестве доминирующих компонентов определены представители классов глюканов или галактуронанов, то определение критериев подлинности проводится по неуглеводным соединениям.

6. В случае доминирования в полисахаридном комплексе представителей классов фуканов, глюкозаминанов, арабинанов, галактанов, маннанов, ксиланов или глюкофруктанов в качестве критериев подлинности выбирают один из подходящих методов, включая применение качественных реакций, анализ моно- и олигосахаридного состава.

7. Далее, исходя из сведений о моносахаридном составе (или принадлежности полисахаридов к одному из полимерных классов), выбирается метод количественного анализа объекта.

Использование данного алгоритма позволяет рационально подойти к выбору критериев подлинности и методов количественного анализа лекарственного сырья.

В заключении следует отметить, что, несмотря на необходимость проведения фундаментальных научных исследований в области изучения структуры и биологической активности природных биополимеров, актуальной остается задача использования лекарственных средств, содержащих данные соединения. Анализ имеющейся номенклатуры лекарств, разрешенных к применению в официнальной практике, свидетельствует о том, что ассортимент полисахарид- и меланин-содержащих препаратов ограничен, в связи с чем необходимыми являются исследования по созданию лекарственных средств с использованием рациональных технологий производства, а также разработка современных методов стандартизации подобных препаратов.

выводы

1. В результате проведенных исследований выделены растительные полисахариды новых структурных типов. В надземной части некоторых представителей сем. Lamiaceae (Lophanthus, Panzerirta, Scutellaria) выявлено присутствие нового класса полисахаридов - частично ацетшированных глюкоарабиногалактанов, представляющих собой а-(1—>6)-галактаны, содержащие у С-2 и С-3 единичные остатки арабинопиранозы и глюкопиранозы, ацетилированых по положению С-3.

2. Изучен состав полисахаридных компонентов 45 видов сем. Lamiaceae и установлено присутствие а-4,6-глюканов, глюко-1,2-фруктанов, арабино-3,6-галактанов, 1,6-галактанов, полигалактуронанов, рамногалактуронанов, арабиногалактан-протеиновых комплексов. Выявлена возможность применения

хемогаксономических подходов для характеристики видов данного семейства с использованием некоторых групп полисахаридов в качестве хемо-маркеров.

3. При исследовании состава полисахаридов семян сем. Fabaceae в 12 видах выявлено присутствие галактоманнанов (Astragalus, Gleditsia, Glycyrrhiza, Gueldenstaedtia и Oxytropis). Для представителей родов Caragana, Onobiychis, Sophora и Vicia в качестве доминирующих определены а-4,6-глюканы. Для скринингового анализа состава галактоманнанов предложен методический подход с использованием данных поляриметрического анализа.

4. Выявлены новые источники инулина в представителях сем. Asteraceae и установлено, что для родов Cacalia, Cirsium, Echinops, Lactuca, Scorzonera, Stemmacantha характерно накопление линейных глюкофруктанов и олигомерных производных (1-кестозы, нистозы, l'-ß-фруктофуранозил-нистозы, lF-ß-фруктофуранозил-1р-Р-фруктофуранозил-нистозы). В составе полисахаридов листьев Cacalia hastata установлено присутствие арабиногалактанов и галактуронанов, обладающих гипогликемическим и ранозаживляющим действием.

5. Установлено, что доминирующими компонентами водорастворимых полисахаридов некоторых видов пряно-вкусовых растений (Elettaria cardamomum, Myristica fragrans, Piper nigrum, Pimenta dioica, Zingiber officinale) являются a-4,6-глюканы различной степени разветвленное™.

6. Установлено, что доминирующими полисахаридами суккулентных видов являются галактуронаны, арабинаны, арабиногалактаны (Agave), фруктаны (Brasilopuntia, Opuntia), маннаны (Aloe, Kalanchoe) и глюкозаминаны (Callisia).

7. Из плодовых тел Piptoporus betulinus (Piptoporaceae) выделен новый представитель класса базидиальных 3,6-глюканов — разветвленный aß-глюкон (пиптопоран 1). В составе полисахаридов плодовых тел Laetiporus sulplmreiis, полученных с применением метода природных плантаций, установлено присутствие гетероглюкана (латипоран А), гликопротеидов (латипораны В, D), линейных а-1,3- {латиглюкан Г), Р-1,3-глюканов (латиглюкан III) и разветвленного Р-3,6-глюкана (латиглюкан II). В склероциях Inonotus obliquus обнаружены линейные ß-1,3- и а-1,3-глюканы.

8. Изучено строение меланинов ферментированных листьев некоторых видов сем. Lamiaceae и установлено, что они представляют собой высокомолекулярные соединения с м.м. 4-10 кДа, содержащие в составе макромолекулы конденсированные участки и боковые группы в виде гидрокси- и метоксибензольных остатков.

9. Установлено, что склероции Laetiporus sulphureus способны к накоплению меланина, структурное исследование которого показало его отнесение к дигидронафталиновому типу; присутствие меланина этого типа в базидиальном виде установлено впервые. Выявлено, что меланин склероциев Inonotus obliquus представляет собой гетерогенный комплекс, состоящий из высокоароматичных полимеров с молекулярной массой 2-20 кДа, высоким содержанием карбоксильных и фенольных гидроксильных групп. Установлено, что возрастание значения структурного параметра г|, ранее не применявшегося для описания

данных соединений, характерно для более алифатичных меланинов, а снижение отмечается для ароматических и конденсированных полимеров. Показано, что все исследованные меланины обладают выраженной антиоксидантной активностью.

10. Разработана методика количественного анализа глюкофруктанов в растительном сырье с применением модифицированного резорцинового метода. Разработаны методики количественного анализа глюкофруктанов в трех видах лекарственного сырья: корневищах и корнях девясила высокого, корнях лопуха и корнях одуванчика лекарственного. Проведенный метрологический анализ показал, что методики воспроизводимы и достоверны. Разработана методика количественного определения полисахаридов в растительном сырье с применением модифицированного антрон-серного метода. Предложен методический подход для определения группового состава углеводов в растительном сырье с использованием комбинации экстракционного метода Бейли и модифицированного антрон-серного метода. Разработанная методика применена для анализа полисахаридов в ряде видов растительного сырья и показана ее эффективность для дальнейшего использования в практике фармацевтического анализа.

11. Разработана унифицированная схема анализа углеводов в лекарственном сырье, нормируемом по содержанию полисахаридов, позволяющая проводить адекватную стандартизацию растительных объектов.

12. Установлено, что на выраженность иммуномодулирующей и антиоксидантной активности растительных полисахаридов оказывает влияние степень разветвления кора макромолекулы.

СПИСОК ОСНОВНЫХ ПУБЛИКАЦИЙ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ

1. Olennikov D.N. Biologically active substances from Cacalia hastata L. 1. Carbohydrates and their hypoglycemic activity / D.N. Olennikov, L.M. Tankhaeva, G.G. Nikolaeva, A.V. Tsyrenzhapov, S.M. Nikolaev, G.V. Chekhirova // Chemistry of Natural Compounds.- 2004,- Vol.40.- №1.- P.l-5.

2. Олейников Д.H. Фармакогностическая характеристика листьев какалии копьевидной (Cacalia hastata L.) / Д.Н. Олейников, О.Г. Потанина, Л.М. Танхаева, Г.Г. Николаева II Хгшия растительного сырья- 2004.- №3.- С.43-52.

3. Олеников Д.Н. Биологически активные вещества сухого экстракта какалии копьевидной / Д.Н. Олеников, Л.М. Танхаева, Г.Г. Николаева, A.B. Рохин, Д.Ф. Кушнарев //Химия растительного сырья,- 2004.- №3.- С.59-62.

4. Олейников Д.Н. Разработка технологии получения сухого экстракта какалии копьевидной / Д.Н. Олейников, Л.М. Танхаева, Г.Г. Николаева // Химия растительного сырья,- 2004. - №3.- С. 53-58.

5. Олейников Д.Н. Разработка технологии получения экстракта подорожника большого сухого / Д.Н. Олейников, Л.М. Танхаева // Химия растительного сырья,- 2006,- №1,- С.47-52.

6. Способ получения средства, обладающего противовоспалительной активностью. Патент РФ на изобретение №2206333 от 20 июня 2003 г. (П.Б.

Лубсандоржиева, М.И. Бальхаев, И.О. Убашеев, С.М. Николаев, Е.Г. Григорьев, Д.Н. Олейников, А.С. Коган, Д.В. Санданов).

7. Olennikov D.N. Absorption spectra of carbohydrates and related compounds in H2SO4 / D.N. Olennikov, L.M. Tankhaeva // Chemistry of Natural Compounds-2006,- Vol.42.- №3.- P.262-264.

8. Olennikov D.N. Quantitative analysis of polysaccharides from Plantago major leaves using the Dreywood method / D.N. Olennikov, L.M. Tankhaeva, A.B. Samuelsen // Chemistry of Natural Compounds. - 2006,- Vol.42.- №3,- P.265-268.

9. Олейников Д.Н. Методика количественного определения группового состава углеводного комплекса растительных объектов / Д.Н. Олейников, J1.M. Танхаева // Химия растительного сырья,- 2006,- №4.- С.29-33.

Ю.Оленников Д.Н. Групповой состав углеводов некоторых растений семейства Lamiaceae / Д.Н. Олейников, J1.M. Танхаева // Химия растительного сырья,-2006,- №4,- С.35-37.

11.Олейников Д.Н. Модификация антронового метода количественного определения углеводов и его применение для анализа растительного сырья, содержащего полисахариды / Д.Н. Олейников, JI.M. Танхаева II Бюллетень сибирской медицины,- 2006,- Прил. 2.- С.118-119.

12.Олейников Д.Н. Подорожник большой (Plantago major L.). Химический состав и применение / Д.Н. Олейников, A.B. Samuelsen, JI.M. Танхаева ЧХимия растительного сырья,- 2007.- №2.- С. 37-50.

13.Olennikov D.N. Lamiaceae carbohydrates. I. Pectinic substances and hemicelluloses from Mentha x piperita / D.N. Olennikov, L.M. Tankhaeva // Chemistry of Natural Compounds.- 2007,- Vol.43.- №5.- P.501-507.

14.Olennikov D.N. Carbohydrates from Sophora flavescens seeds / D.N. Olennikov, L.M. Tankhaeva, D.V. Sandanov // Chemistry of Natural Compounds.- 2007.-Vol.43.- №5.- P.603-604.

15.Olennikov D.N. Lamiaceae carbohydrates. II. Water-soluble polysaccharides from Mentha x piperita / D.N. Olennikov, L.M. Tankhaeva II Chemistry of Natural Compounds.- 2007,- Vol.43.- №6,- P.648-651.

16,Оленников Д.Н. Исследование процесса экстракции полисахаридов семян льна / Д.Н. Олейников, JI.M. Танхаева II Химия растительного сырья.- 2007.-№4,- С. 28-32.

17.Олейников Д.Н. Методика количественного определения суммарного содержания полисахаридов в семенах льна / Д.Н. Оленников, JI.M. Танхаева // Химия растительного сырья - 2007,- №4,- С. 33-36.

18.Оленников Д.Н. Исследование колориметрической реакции инулина с резорцином в зависимости от условий ее проведений / Д.Н. Оленников, JI.M. Танхаева // Химия растительного сырья,- 2008,- №1,- С.87-94.

19.Оленников Д.Н. Методика количественного определения суммарного содержания полифруктанов в корневищах и корнях девясила высокого / Д.Н. Оленников, JI.M. Танхаева, Г.В. Чехирова, Е.В. Петров // Химия растительного сырья,- 2008,- № 1.- С.95-100.

20.0леиников Д.Н. Исследование препарата «Сок подорожника» / Д.Н. Оленников, JI.M. Танхаева II Фармация,- 2008.- №1.- С.14-16.

21.Олейников Д.Н. Исследование колориметрической реакции фруктозы с резорцином в зависимости от условий ее проведений / Д.Н. Олейников, Л.М. Танхаева ПХимия растительного сырья - 2008.- №2.- С.69-74.

22.01ennikov D.N. Lamiaceae carbohydrates. III. Water-soluble polysaccharides from Origanum vulgare / D.N. Olennikov, L.M. Tankhaeva // Chemistry of Natural Compounds.- 2008,- Vol.44.- №5.- P.630-631.

23.Olennikov D.N. Lamiaceae carbohydrates. IV. Water-soluble polysaccharides from Scutellaria baicalensis / D.N. Olennikov, N.K. Chirikova, L.M. Tankhaeva // Chemistry of Natural Compounds.- 2008.- Vol.44.- №5.- P.556-559.

24.01ennikov D.N. Lamiaceae carbohydrates. V. Glucoarabinogalactan from Scutellaria baicalensis / D.N. Olennikov, A.V. Rokhin, L.M. Tankhaeva // Chemistry of Natural Compounds.- 2008,- Vol.44.- №5.- P.560-563.

25.0Iennikov D.N. Polysaccharides of Fabaceae. I. Galactomannan of Astragalus sericeocanus seeds / D.N. Olennikov, A.V. Rokhin II Chemistry of Natural Compounds.- 2008,- Vol.44.- №6,- P.685-687.

26. Olennikov D.N. Organic acids and carbohydrates of fruiting bodies of Laetiporus sulphureus / D.N. Olennikov, S.V. Agafonova, A.V. Nazarova, G.B. Borovskii, T.A. Penzina // Chemistry of Natural Compounds- 2008.- Vol.44.- №6,- P.762-763.

27,OIennikov D.N. Chemical composition of Callisia fragrans juice / D.N. Olennikov, T.A. Ibragimov, I.N. Zilfikarov, V.A. Chelombit'ko II Chemistry of Natural Compounds.- 2008.- Vol.44.- №6.- P.776-777.

28,Оленников Д.Н. Химический состав сока каллизии душистой (Callisia fragrans Wood.) и его антиоксидантная активность (in vitro) / Д.Н. Олейников, И.Н. Зилфикаров, А.А. Торопова, Т.А. Ибрагимов // Химия растительного сырья.- 2008.- №4,- С. 95-100

29.Ибрагимов Т.А. Фармакогностическое исследование каллизии душистой / Т.А. Ибрагимов, Д.Н. Олейников, И.Н. Зилфикаров, Л.М. Елисеева // Фармаиия,-

2008.- №7,- С.24-26.

ЗО.Чирикова Н.К. Фармакогностическое исследование надземной части шлемника байкальского (Scutellaria baicalensis Georgi) / Н.К. Чирикова, Д.Н. Оленников, Л.М. Танхаева IIХимия растительного сырья - 2009.- №1.- С. 73-78.

31 .Olennikov D.N. Glucofructans from Taraxacum officinale roots / D.N. Olennikov, L.M. Tankhaeva, A.V. Rokhin // Chemistry of Natural Compounds- 2009.- Vol.45.-№2.- P.141-144.

32.Olennikov D.N. Polysaccharides of Fabaceae. II. Galactomannan of Astragalus danicus seeds / D.N. Olennikov, A.V. Rokhin // Chemistry of Natural Compounds-

2009,- Vol.45.- №3,- P.297-299.

ЗЗ.Хобракова В.Б. Иммуномодулирующие свойства глюкоарабиногалактана шлемника байкальского / В.Б. Хобракова, С.М. Николаев, Д.Н. Оленников // Российский аллергологический журнал,- 2009,- №3,- С.264-265.

34,OIennikov D.N. Lamiaceae carbohydrates. VI. Water-soluble polysaccharides from Lophanthus chinensis / D.N. Olennikov, A.V. Rokhin, L.M. Tankhaeva // Chemistry of Natural Compounds.- 2009.- Vol.45.- №3,- P.300-303.

35.Olennikov D.N. Chemical composition of Aloe arborescens and its change by biostimulation / D.N. Olennikov, T.A. Ibragimov, V.A. Chelombit'ko, A.V.

Nazarova, A.V. Rokhin, I.N. Zilfikarov // Chemistry of Natural Compounds.- 2009,-Vol.45.- №4.- P.478-482.

36.01ennikov D.N. Water-soluble polysaccharides of Laetiporus sulphureus (Bull.: Fr.) Murr. fruit bodies / D.N. Olennikov, S.V. Agafonova, G.B. Borovskii, T.A. Penzina, A.V. Rokhin // Applied Biochemistry and Microbiology.- 2009,- Vol.45.- №5.-P.536-543.

37.Olennikov D.N. Pectinic substances of Aloe arborescens / D.N. Olennikov, A.V. Nazarova, A.V. Rokhin // Chemistry of Natural Compounds - 2009.- Vol.45.- №5.-P.611-614.

38.Olennikov D.N. Polysaccharides from Arctostaphyllos uva-ursi / D.N. Olennikov, A.V. Nazarova II Chemistry of Natural Compounds - 2009.- Vol.45.- №5,- P.702-703.

39.01ennikov D.N. Lamiaceae carbohydrates. VII. Glucoarabinogalactan from Partzerina lanata / D.N. Olennikov, A.V. Nazarova, A.V. Rokhin, L.M. Tankhaeva, T.V. Kornopol'tseva // Chemistry of Natural Compounds.- 2009.- Vol.45.- №6.-P.811-814.

40.01ennikov D.N. Alkali-soluble polysaccharides of Laetiporus sulphureus (Bull.: Fr.) Murr. fruit bodies / D.N. Olennikov, S.V. Agafonova, G.B. Borovskii, T.A. Penzina, A.V. Rokhin // Applied Biochemistry and Microbiology.- 2009.- Vol.45.- №6.-P.626-630.

41. Способ получения стоматологической пленки, обладающей противовоспалительным действием. Патент РФ на изобретение №2393292 от 1.04.2009 г. (Д.Н. Олейников, Я.Г. Разуваева, С.Р. Аюшиева) (опубл. 27.07.2010, Бюл. №21).

42.Olennikov D.N. Galactomannan from the seeds of Chinese honey locust (Gleditsia sinensis Lam.) / D.N. Olennikov, A.V. Rokhin // Applied Biochemistry and Microbiology.- 2010,- Vol.46.- №1,- P.103-107.

43.Ломбоева C.C. Фармакогностическое исследование надземной части ортилии однобокой (Orthilia secunda (L.) House.) / C.C. Ломбоева, Л.М. Танхаева, Д.Н. Олейников // Химия растительного сырья.- 2010.- №1,- С.109-114.

44.0ленников Д.Н. Методика количественного определения суммарного содержания полифруктанов в корнях лопуха / Д.Н. Олейников, Л.М. Танхаева // Химия растительного сырья,- 2010.- №1,- С.115-120.

45.Olennikov D.N. Polysaccharides of Fabaceae. III. Galactomannan of Astragalus danicus seeds / D.N. Olennikov, A.V. Rokhin // Chemistry of Natural Compounds.-2010,-Vol.46.-№2,-P.165-168.

46.01ennikov D.N. Chemical composition of Callisia fragrans juice. II. Carbohydrates / D.N. Olennikov, A.V. Nazarova, A.V. Rokhin, T.A. Ibragimov, I.N. Zilfikarov // Chemistry of Natural Compounds.- 2010.- Vol.46.- №2.- P.273-275.

47,Оленников Д.Н. Химический состав шлемника байкальского (Scutellaria baicalensis Georgi) / Д.Н. Олейников, Н.К. Чирикова, Л.М. Танхаева II Химия растительного сырья.- 2010.- №2,- С. 77-84.

48.Хобракова В.Б. Влияние сухого экстракта софоры желтоватой и выделенных из нее фракций на состояние клеточного звена иммунного ответа / В.Б.

Хобракова, А.Б. Шоболова, Д.Н. Олейников, С.М. Николаев // Бюллетень BCHUCO РАМН.- 2010.- №2.- С.219-221.

49.0Iennikov D.N. Minor glucanes from Laetiporus sulphureus basidiocarps / D.N. Olennikov, S.V. Agafonova, A.V. Nazarova, A.V. Rokhin // Chemistry of Natural Compounds.- 2010,- Vol.46.- №3,- P.444-445.

50.01ennikov D.N. Galactomannan of the locoweed (Oxytropis lanata (Pallas) DC) seeds / D.N. Olennikov, A.V. Rokhin // Applied Biochemistry and Microbiology.-2010.- Vol.46.- №4,- P.444-448.

51.Таихаева Л.М. Методика количественного определения суммарного содержания полифруктанов в корнях лопуха / JI.M. Танхаева, Д.Н. Оленников IIХимия растительного сырья.- 2010.- №2.- С.85-89.

52.Olennikov D.N. Galactomannan from the seeds of Ural Licorice (Glycyrrhiza uralensis Fisch.) / D.N. Olennikov, A.V. Rokhin // Applied Biochemistry and Microbiology.- 2010,- Vol.46.- №5.- P.540-544.

53.Оленников Д.Н. Исследование химического состава алоэ древовидного (Aloe arborescens Mill.) / Д.Н. Оленников, Т.А. Ибрагимов, И.Н. Зилфикаров II Химия растительного сырья.- 2010.- №3,- С.77-82.

54,Оленников Д.Н. Химический состав сока алоэ древовидного и его антиоксидантная активность / Д.Н. Оленников, Т.А. Ибрагимов, И.Н. Зилфикаров, Л.М. Танхаева, А.А. Торопова // Химия растительного сырья.-2010,-№3,- С.83-90.

55,Оленников Д.Н. Химический состав и антиоксидантная активность растительного средства "Фитоуросепт" / Д.Н. Оленников, А.А. Торопова, Л.М. Танхаева, А.Г. Мондодоев, С.М. Николаев II Растительные ресурсы.- 2010,-Т.46,- №4,- С. 143-150.

56.Olennikov D.N. Polysaccharides of Fabaceae. IV. Galactomannan of Gueldenstaedtia monophylla seeds / D.N. Olennikov, I.Yu. Selyutina, A.V. Rokhin // Chemistry of Natural Compounds.- 2010,- Vol.46.- №5,- P.673-676.

57.Chirikova N.K. Pharmacognostic study of aerial parts of Baikal skullcap (Scutellaria baicalensis Georgi) / N.K. Chirikova, D.N. Olennikov, L.M. Tankhaeva // Russian Journal of Bioorsanic Chemistry- 2010.-Vol.36.- №7,- P.909-914.

58,OIennikov D.N. Polysaccharides of Fabaceae. V. a-Glucan from Sophoraflavescens roots / D.N. Olennikov, A.V. Stolbikova, A.V. Rokhin, V.B. Khobrakova, Tankhaeva L.M. // Chemistry of Natural Compounds- 2011.- Vol.47.- №2.- P.l-6.

59.0Iennikov D.N. Phenylpropanoids and polysaccharides of Plantago depressa and P. media / D.N. Olennikov, A.V. Stolbikova, L.M. Tankhaeva, E.V. Petrov // Chemistry of Natural Compounds.- 2011.- Vol.47.- №2.- P.165-169.

60.0Iennikov D.N. Lamiaceae carbohydrates. VIII. a-Glucan from Scutellaria baicalensis roots / D.N. Olennikov, A.V. Stolbikova, A.V. Rokhin, V.B. Khobrakova II Chemistry of Natural Compounds.- 2011.- Vol.47.- №2,- P.190-193.

61.Olennikov D.N. Melanin of Laetiporus sulphureus (Bull.: Fr.) Murr sterile form / D.N. Olennikov, S.V. Agafonova, A.V. Stolbikova, A.V. Rokhin // Applied Biochemistry and Microbiolosv.- 2011.- Vol.47.- №3.- P.298-303.

62-OIcnnikov D.N. Glucofructanes from Saussarea lappa roots / D.N. Olennikov, L.M. Tankhaeva, A.V. Rokhin // Chemistry of Natural Compounds.- 2011.- Vol.47.- №3.-P.349-342.

63.Olennikov D.N. Polysaccharides of Fabaceae. VI. Galactomannans of Astragalus alpinus and A. tubetanus seeds / D.N. Olennikov, A.V. Rokhin // Chemistry of Natural Compounds.- 2011.- Vol.47.- №3.- P.343-346. 64.Olennikov D.N. Antioxidant components of Laetiporus sulphureus (Bull.: Fr.) Murr. fruit bodies / D.N. Olennikov, L.M. Tankhaeva, S.V. Agafonova // Applied Biochemistry and Microbiology.-2011.- Vol.47.- №4,- P.419-425. 65.Olennikov D.N. Alkali-soluble polysaccharides of lnonotus obliquus sclerotia / D.N. Olennikov, A.V. Rokhin, S.V. Agafonova // Chemistry of Natural Compounds.-2011.- Vol.47.- №6,- P.847-848. 66.Olennikov D.N. Chemical investigation of Caragana spinosa runners / D.N. Olennikov, L.M. Tankhaeva, V.V. Partilkhaev // Chemistry of Natural Compounds.-

2011.- Vol.47.- №6,- P.861-863.

67.Olennikov D.N. A quantitative assay for total fructans in burdock (Arctium spp.) roots / D.N. Olennikov, L.M. Tankhaeva // Russian Journal of Bioorzanic Chemistry.- 2011,- Vol.37.- №7,- P.819-827. 68.Olennikov D.N. Branched glucan from the fruiting bodies of Piptoporus betulinus (Bull.:Fr) Karst. / D.N. Olennikov, S.V. Agafonova, A.V. Rokhin, T.V. Penzina, G.B. Borivskii // Applied Biochemistry and Microbiology.- 2012,- Vol.48.- №1,-P.65-70.

69. Olennikov D.N. Chemical investigation of Caragana spinosa seeds / D.N. Olennikov, L.M. Tankhaeva, V.V. Partilkhaev // Chemistry of Natural Compounds.-

2012,-Vol.48.-№1,-P.104-106.

70.Olennikov D.N. Physicochemical characteristics and antioxidant activity of melanoidin pigment from the fermented leaves of Orthosiphon stamineus Benth., Lamiaceae / D.N. Olennikov, L.M. Tankhaeva // Revista Brasileira de Farmacoznosia.- 2012,- Vol.22.- №2.- P.284-290.

Автор выражает глубокую признательность и благодарность за предоставление исследовательского материала и обсуждение результатов работы д.фарм.н., проф. Т.А. Асеевой, д.м.н., проф. С.М. Николаеву, к.фарм.н. Г.В. Чехировой, к.фарм.н. Т. В. Корнопольцевой, к.б.н. В.Б. Хобраковой, к.б.н. Я.Г. Разуваевой, к.б.н. A.A. Тороповой, к.б.н. Д. В. Санданову, д.м.н. А.Г. Мондодоеву, д.м.н., проф. Л.Н. Шантановой (ИОЭБ СО РАН, Улан-Удэ), д.фарм.н. H.H. Зилфикарову (ЗАО "Вифитех", Москва), к.б.н. C.B. Агафоновой, к.б.н. Л.В. Дударевой, к.х.н. A.B. Столбиковой (Назаровой), к.б.н. Т.А. Пензиной, д.б.н., проф. Г.Б. Боровскому (СИФИБР СО РАН, Иркутск), к.фарм.н. С. С. Ломбоевой (Иркутская Государственная сельскохозяйственная академия, Иркутск), к.б.н. И.Ю. Селютиной, д.б.н., проф. Черемуискиной В.А. (ЦСБС СО РАН, Новосибирск), к.фарм.н. Н.К. Чириковой (ЯГУ, Якутск) и PhD A.B. Samuelsen (Institute of Pharmacy, Oslo, Norway).

Особую благодарность автор выражает своему бессменному коллеге, критику и другу - к.фарм.н. Ларисе Максимовне Танхаевой (ИОЭБ СО РАН, Улан-Удэ), за любовь, искренность, внимание, всестороннюю научную и моральную поддержку, а также д.х.н. Александру Валерьевичу Рохину (ИГУ, Иркутск), за постоянную поддержку, ценные советы, трудолюбие, терпение и помощь в выполнении диссертационной работы.

Использованные сокращения и абрревиатуры. AOK антителообразование, ВРПС - водорастворимый полисахарид, ВЭТСХ -высокоэффективная тонкослойная хроматография, ВЭЖХ - высокоэффективная жидкостная хроматография, ГЖХ - газожидкостная хроматография, ГЗТ -гиперчувствительность замедленного типа, ГМ - галактоманнан, ГФр -глюкофруктан, ГХ/МС - газовая хроматография - масс-спектрометр ия, ДСК -дифференциальная сканирующая калориметрия, ИК - инфракрасный, ИЭ -ионэксклюзионный, кДа - килодальтон, KP - качественная реакция, м.в.с.с. -масса воздушно-сухого сырья, м.м. - молекулярная масса, ПВ — пектиновые вещества, подсем. - подсемейство, ПС - полисахарид, сем. - семейство, СУ -свободный углевод, ТГ - термогравиметрия, ТСХ - тонкослойная хроматография, ТФУ - трифторуксусная кислота, ЯМР - ядерный магнитный резонанс. ABTS - 2,2'-азино-бис(3-этилбензотиазолин-6-сульфоновой кислоты) катион-радикал, СВА - окислительная деструкция ß-каротина в системе ß-каротин-олеиновая кислота-ДМС0-Н202, DPPH - 1,1-дифенил-2-пикрилгидразил радикал, FCA - Ге2+-хелатирующая активность, FRAP - Ре3+-восстановительная способность, HGU - гомогалактуронан, HIA - инактивация молекул пероксида водорода (Н202), 1С50 - инактивация 50% частиц, LOA - логарифмический наклон поглощения, NOSA - связывание молекул NO, RG - рамногалактуронан, SSA -инактивация супероксидных радикалов (02*"). Ara - арабиноза, Fue - фукоза, Gal - галактоза, GalA - галактуроновая кислота, GalN - галактозамин, Glc - глюкоза, GlcA — глюкуроновая кислота, GIcN - глюкозамин, Man - манноза, Rha -рамноза, Ху1 - ксилоза.

Подписано в печать 16.04.2012 г. Формат 60x84 1/16. Бумага офсетная. Объем 2,4 печ. л. Тираж 120. Заказ № 62.

Отпечатано в типографии Изд-ва Федерального государственного бюджетного учреждения науки БНЦ СО РАН 670047 г. Улан-Удэ ул. Сахьяновой, 6.

 
 

Оглавление диссертации Оленников, Даниил Николаевич :: 2012 :: Улан-Удэ

Введение

Список сокращений

Глава 1. Биополимеры растительного и грибного 16 происхождения. Наукометрическое исследование данных литературы

1.1. Полисахариды

1.2. Меланины

Глава 2. материалы и методы

2.1. Сырье

2.2. Методы выделения полимерных компонентов

2.3. Методы очистки полимерных компонентов

2.4. Аналитические методы разделения

2.5. Препаративные методы разделения

2.6. Физико-химические методы

2.7. Химические методы

2.8. Химические реакции

2.9. Биохимические методы

2.10. Статистические методы

2.11. Стандартные образцы веществ сравнения (СОВС)

Глава 3. Углеводные биополимеры растительного 5 5 происхождения

3.1. Полисахариды семейства Губоцветные (Ьам1асеае)

3.1.1 .Частично ацетилированные глюкоарабиногалактаны

3.1.2 .Галактуронаны и арабиногалактаны

3.1.3 .а-Глюканы подземных органов

3.1 АВодорастворимые полисахариды как 85 хемотаксономические маркеры семейства Губоцветные

3.2. Полисахариды семейства Бобовые (Fabaceae) 87 3.2.1 .Галактоманнаны семян 8 7 3.2.2.Неманнановые полисахариды семян 97 3.2.3 .а-Глюканы подземных органов

3.3. Полисахариды семейства Сложноцветные (Asteraceae) 105 3.3.1 .Глюкофруктаны подземных органов 105 3.3.2.Полисахариды листьев Cacalia hastata

3.4. Полисахариды пряно-вкусовых растений 117 3.4.1.Общая характеристика водорастворимых полисахаридов 117 пряно-вкусовых растений

3.4.2.Водорастворимые глюканы семян Elettaria cardamomum

3.5. Полисахариды суккулентных видов 125 3.5.1 .Галактуронаны листьев Aloe arborescens

3.5.2.Глюкозаминан побегов Callisia fragrans

3.5.3.Полисахариды рода Kalanchoe

3.6. Полисахариды семейств Ericaceae и Plantaginaceae

3.6.1.Полисахариды родов Arctostaphyllos, Rhododendron и 136 Vaccinium

3.6.2. Полисахариды рода Plantago

3.7. Распределение полисахаридных классов по 138 морфологическим группам растительных видов

3.8. Иммуномодулирующая активность растительных а- 141 глюканов

3.9. антиоксидантная активность полисахаридов

Глава 4. углеводные биополимеры грибного происхождения

4.1 .Полисахариды плодовых тел Laetiporus betulinus

4.2.Полисахариды плодовых тел Piptoporus betulinns

4.3 .Полисахариды склероциев Inonotus obliquus

Глава 5. Фенольные биополимеры растительного и 168 грибного происхождения

5.1 .Меланины растительного происхождения

5.1.1.Меланин ферментированных листьев Orthosiphon 170 stamineus

5.2 .Меланины грибного происхождения

5.2.1 .Меланин склероциев Laetiporus sulphureus

5.2.2.Меланины склероциев Inonotus obliquus

Глава 6. Совершенствование методов анализа углеводов в растительном сырье

6.1. Модифицированный резорциновый метод 205 6.1.1 .Исследование реакции фруктозы с резорцином

6.1.2.Исследование реакции инулина с резорцином

6.1.3.Количественный анализ глюкофруктанов в корневищах и 215 корнях девясила высокого

6.2. Модифицированный антрон-серный метод 221 6.2.1 .Спектры поглощения комплексов углеводов и 221 родственных соединений с антроном в серной кислоте в присутствии этанола

6.2.2.Применение модифицированного антрон-серного метода 224 для анализа полисахаридов в листьях подорожника большого

6.2.3.Применение модифицированного антрон-серного метода 229 и солевого экстрагента для анализа полисахаридов в семенах льна посевного

6.2.4.Методика количественного анализа группового состава 234 углеводного комплекса растительных объектов

6.3. Создание унифицированной схемы анализа углеводов в лекарственном сырье

 
 

Введение диссертации по теме "Фармацевтическая химия, фармакогнозия", Оленников, Даниил Николаевич, автореферат

Актуальность исследования. Биополимеры в последние годы привлекают внимание многих исследователей в связи с тем, что ранее считавшиеся инертными, они оказались веществами с широким спектром биологической активности [13, 92]. К числу наиболее часто изучаемых макромолекулярных соединений природного происхождения после белков относятся углеводные (полисахариды) и фенольные биополимеры (меланины) [123]. Наличие практической значимости и фармакологической активности выявлено для всех известных классов полисахаридов и меланинов, поэтому экспериментальные работы в настоящее время ориентированы в таких направлениях, как исследование структуры, разработка технологий производства, химическая модификация, поиск новых источников, определение биологической активности и расширение спектра их практического применения [26, 27]. Несмотря на более чем вековую историю химии биополимеров, объем экспериментальной и теоретической информации продолжает увеличиваться с каждым годом, что свидетельствует о неугасающем интересе к данным природным соединениям [32].

Кроме макромолекулярных соединений растительного происхождения особый интерес вызывают грибные метаболиты как перспективные фармакологические агенты [203, 204, 331]. Учитывая недостаточную степень изученности базидиальных видов, актуальными остаются химико-биологические исследования грибов, произрастающих на территории России, а также полученных с применением биотехнологических способов [35, 36].

Биополимеры являются большей частью гидрофильными соединениями и входят в число обязательных компонентов практически любых экстракционных форм из лекарственного сырья. Однако степень изученности этих веществ даже для фармакопейных видов не превышает

30-40% [13]. С целью формирования полной картины химических и фармакологических влияний подобных препаратов на организм человека необходимо расширение сведений о структуре компонентов и биологической активности для видов, разрешенных к применению в медицинской практике.

Наряду с химическими исследованиями необходимыми остаются исследования по разработке современных методов стандартизации препаратов. Анализ имеющейся к настоящему времени нормативной документации свидетельствует о том, что существующие подходы в ряде случаев не позволяют получать адекватные результаты: приемлемы для ограниченного числа объектов, обладают низкой воспроизводимостью результатов и мало пригодны для использования в системе надлежащей лабораторной практики [2]. В этой связи востребованными являются комплексные экспериментальные работы по созданию схем анализа, учитывающих индивидуальные особенности химического состава лекарственного сырья и препаратов и характеризующихся удовлетворительными валидационными параметрами.

Таким образом, исследования в области изучения структуры, биологической активности и разработки методов анализа биополимеров растительного и грибного происхождения являются актуальными.

Целью работы является определение состава, структуры и биологической активности полисахаридов и меланинов растительного и грибного происхождения и совершенствование методов исследования углеводов в лекарственном сырье.

Для достижения указанной цели необходимо было решить следующие ЗАДАЧИ-'

1) провести химическое исследование полисахаридов семейств Lamiaceae, Fabaceae, Asteraceae, Ericaceae и Plantaginaceae для выявления перспективных источников биологически активных и промышленно важных полисахаридов;

2) провести химическое исследование пряно-вкусовых и суккулентных растительных видов как нетрадиционных источников полисахаридов;

3) провести химическое исследование полисахаридов биотехнологически перспективных видов базидиомицетов;

4) провести химическое исследование меланинов ферментированного растительного сырья семейства Lamiaceae и стерильных форм базидиомицетов;

5) разработать рациональные методические подходы к выбору критериев подлинности и количественному анализу лекарственного сырья, нормируемого по содержанию полисахаридов;

6) разработать унифицированную систему стандартизации углеводных компонентов в лекарственном сырье;

7) выявить особенности строения биополимеров, обусловливающих наличие иммуномодулирующей и антиоксидантной активности.

Научная новизна. Впервые проведено исследование и получены данные о содержании и строении биополимеров в 114 объектах растительного (111 видов, 17 сем.) и грибного происхождения (3 вида, 3 сем.) и выделено 183 полимера 14 структурных типов углеводной (173) и фенольной природы (10), представителей классов гомо-, гетерополисахаридов и меланинов. Выделены полисахариды 2 новых структурных типов: частично ацетилированные глюкоарабиногалактаны из семейства Lamiaceae, разветвленный а/З-глюкан (пиптопоран I) из плодовых тел Piptoporus betulinus (Piptoporaceae).

В результате исследования полисахаридов 45 видов семейства Lamiaceae установлено присутствие в них а-4,6-глюканов, глюко-1,2-фруктанов, арабино-3,6-галактанов, 1,6-галактанов, гомогалактуронанов, рамногалактуронанов, арабиногалактан-протеиновых комплексов. Выявлена возможность применения некоторых групп полисахаридов в качестве маркерных соединений при хемосистематической характеристике данного семейства.

В 12 видах семейства Fabaceae впервые выявлено присутствие галактоманнанов (Astragalus, Gleditsia, Glycyrrhiza, Gueldenstaedtia, Oxytropis). В родах Caragana, Onobrychis, Sophora и Vicia в качестве доминирующих определены а-4,6-глюканы. Для скринингового анализа состава галактоманнанов предложен методический подход с использованием данных поляриметрического анализа.

Выявлены новые источники инулина в видах семейства Asteraceae и установлено, что для родов Cacalia, Cirsium, Echinops, Lactuca, Scorzonera, Stemmacantha характерно накопление линейных поли- и олигоглюкофруктанов. В составе полисахаридов листьев Cacalia hastata установлено присутствие арабиногалактанов и галактуронанов, обладающих гипогликемическим и ранозаживляющим действием.

Установлено, что доминирующими полисахаридами некоторых видов пряно-вкусовых растений (Elettaria cardamomum, Myristica fragrans, Piper nigrum, Pimenta dioica, Zingiber officinale) являются а-4,6-глюканы разной степени разветвленности. Выявлено, что доминирующими полисахаридами суккулентных видов являются галактуронаны, арабинаны, арабиногалактаны (Agave), фруктаны (Brasilopuntia, Opuntia), маннаны (Aloe, Kalanchoé), глюкозаминаны (Callisia).

В составе полисахаридов плодовых тел Laetiporus sulphureus, полученных с применением метода природных плантаций, установлено присутствие гетероглюканов, гликопротеидов, линейных а-1,3-, ß-1,3-глюканов и разветвленного Р-3,6-глюкана. В склероциях Inonotus obliquus обнаружены линейные ß-1,3- и а-1,3-глюканы.

Впервые установлено строение меланинов ферментированных листьев некоторых видов семейства Ьапиасеае и показано, что они представляют собой высокомолекулярные соединения с м.м. 4-10 кДа, содержащие конденсированные участки и боковые группы в виде гидрокси- и метоксибензольных остатков. Установлено, что склероции ЬаеЫрогт 5и1ркигеш способны к накоплению меланина дигидронафталинового типа, впервые обнаруженного в базидиальном виде. Показано, что меланин склероциев ЫопоЫх оЪИцит представляет собой гетерогенный комплекс, состоящий из высокоароматичных полимеров с молекулярной массой 2-20 кДа, высоким содержанием карбоксильных и фенольных гидроксильных групп. Установлено, что химическая дериватизация (ацетилирование, дезацетилирование, восстановление) влияет на спектральные свойства меланинов. Показано, что растительные и грибные меланины обладают высокой антиоксидантной, антирадикальной и хелатирующей активностью.

Показано, что на выраженность иммуномодулирующей и антиоксидантной активности растительных полисахаридов оказывает влияние степень разветвления основной цепи макромолекулы.

Практическая значимость работы. Разработана методика количественного определения глюкофруктанов в растительном сырье с применением модифицированного резорцинового метода, рекомендованная для анализа сырья и препаратов корней девясила, лопуха и одуванчика. Разработана методика количественного определения полисахаридов в растительном сырье с применением модифицированного антрон-серного метода. Предложен методический подход для определения группового состава углеводов в растительном сырье с использованием комбинации экстракционного метода Бейли и модифицированного антрон-серного метода. Разработанная методика рекомендована для анализа полисахаридов в 23 видах растительного сырья и показана ее эффективность для дальнейшего использования в практике фармацевтического анализа. Разработана унифицированная схема анализа углеводов в растительном сырье, представляющая собой алгоритм выбора критериев подлинности и метода количественного определения для сырья, нормируемого по содержанию полисахаридов. Данная схема позволяет проводить адекватную стандартизацию растительных объектов.

По результатам комплексных лабораторных и опытно-промышленных исследований разработана и утверждена нормативная документация для организации промышленного производства препарата "Мукалтин таблетки, 50 мг" - регистрационное удостоверение ЛС-000800 "Мукалтин" для ЗАО "Вифитех"; ФСП для ЛС 000800-301211 "Мукалтин таблетки, 50 мг" (ЗАО "Вифитех").

На защиту выносятся:

1 .Результаты исследования структуры новых полисахаридов: частично ацетилированных глюкоарабиногалактанов из семейства Ьапиасеае и разветвленного а(3-глюкана (пиптопорана I) из плодовых тел Р1рШрогш ЬеШИпт.

2.0боснование возможности использования полисахаридов как хемосистематических маркеров семейства Ьапиасеае.

3.Данные о составе и строении полисахаридов из нетрадиционных видов растительного сырья: пряно-ароматических и суккулентных видов.

4.Результаты исследования меланинов ферментированного растительного сырья семейства Ьагшасеае и стерильных форм базидиомицетов.

5.Обоснование возможности использования унифицированной схемы анализа углеводов в растительном сырье. б.Данные по иммуномодулирующей и антиоксидантной активности растительных полисахаридов.

Апробация работы. Основные результаты диссертации были доложены и обсуждены на: VI, VII Международных конференциях «Биоантиоксидант» (Москва, 2002, 2006); IV Международной научно-практической конференции "Здоровье и образование в XXI веке" (Москва, 2003); IV Международной конференции "Актуальные проблемы современной науки" (Самара, 2003); Международных научных школах-конференциях "Экология Южной Сибири и сопредельных территорий" (Абакан, 2003, 2005); Международной конференции "Дорно-орнийн анагаах ухааны хосолмол тогтолцоо" (Улан-Батор, 2005); II Международном симпозиуме "Chemistry of Herbal Medicine and Mongolian Drugs" (Улан-Батор, 2006); VII Международном симпозиуме по химии природных соединений (Ташкент, 2007); IV Международном симпозиуме "Traditional Medicine and Herbal Drugs" (Улан-Батор, 2009); Всероссийском научно-практическом молодежном симпозиуме "Экология Байкала и Прибайкалья" (Иркутск, 1999); VIII, IX, X Российском национальном конгрессе "Человек и лекарство" (Москва, 2001, 2002, 2003); Всероссийской молодежной научно-технической конференции "Молодые ученые Сибири" (Улан-Удэ, 2003); II Всероссийской конференции "Новые достижения в химии и химической технологии растительного сырья" (Барнаул, 2005); Всероссийской конференции "Биоразнообразие экосистем Внутренней Азии" (Улан-Удэ, 2006); IV Всероссийской конференции "Химия и технология растительных веществ" (Сыктывкар, 2006); Всероссийской конференции "Экология в современном мире: взгляд научной молодежи" (Улан-Удэ, 2007); II съезде микологов России (Москва, 2008).

Личный вклад автора. Вклад автора состоял в формировании направления исследования, активном участии во всех этапах исследования, постановке конкретных задач и их экспериментальном решении, интерпретации и обсуждении экспериментальных данных.

Диссертационная работа представляет собой обобщение результатов многолетних исследований, полученных автором лично.

Работа выполнена в рамках научно-исследовательских программ и при финансовой поддержке интеграционного проекта №54 "Научные основы разработки новых лекарственных препаратов. Перспективы использования возобновляемого сырья"; гранта РФФИ 0804-98045 "Влияние природных факторов среды на характер накопления биологически активных веществ в плодовых телах дереворазрушающих грибов Прибайкалья"; проекта СО РАН №У1.52.1.3. "Молекулярно-клеточные механизмы стресс-индуцированных патологических состояний и коррекция их средствами природного происхождения"; проекта №У1.44.1.7. "Структурная организация и динамика компонентов растительного покрова в условиях климатических изменений"; Лаврентьевского конкурса молодежных проектов СО РАН, проект №6.22 "Структурно-функциональное исследование биополимеров растительного и базидиального происхождения как соединений с иммуностимулирующей и антиоксидантной активностью".

Публикации. По результатам диссертационной работы получено 2 патента РФ на изобретение и опубликовано 112 научных работ, в том числе 68 статей в периодических изданиях, рекомендованных ВАК МО и науки РФ.

Структура и объем диссертации. Диссертация изложена на 310 печатных страницах, состоит из введения, основной части (6 глав), заключения, списка цитируемой литературы, состоящего из 463 источников, в том числе 447 на иностранных языках, и включает 55 рисунков, 101 таблицу и 3 приложения.

 
 

Заключение диссертационного исследования на тему "Структурно-функциональное исследование биополимеров растительного и грибного происхождения и совершенствование методов их анализа"

Общие выводы

1. В результате проведенных исследований выделены растительные полисахариды новых структурных типов. В надземной части некоторых представителей сем. Lamiaceae (Lophanthus, Panzerina, Scutellaria) выявлено присутствие нового класса полисахаридов - частично ацетилированных глюкоарабиногалактанов, представляющих собой а-(1 —>6)-талактаны, содержащие у С-2 и С-3 единичные остатки арабинопиранозы и глюкопиранозы, ацетилированых по положению С-3.

2. Изучен состав полисахаридных компонентов 45 видов сем. Lamiaceae и установлено присутствие а-4,6-глюканов, глюко-1,2-фруктанов, арабино-3,6-галактанов, 1,6-галактанов, полигалактуронанов, рамногалактуронанов, арабиногалактан-протеиновых комплексов. Выявлена возможность применения хемотаксономических подходов для характеристики видов данного семейства с использованием некоторых групп полисахаридов в качестве хемо-маркеров.

3. При исследовании состава полисахаридов семян сем. Fabaceae в 12 видах выявлено присутствие галактоманнанов {Astragalus, Gleditsia, Glycyrrhiza, Gueldenstaedtia и Oxytropis). Для представителей родов Caragana, Onobrychis, Sophora и Vicia в качестве доминирующих определены а-4,6-глюканы. Для скринингового анализа состава галактоманнанов предложен методический подход с использованием данных поляриметрического анализа.

4. Выявлены новые источники инулина в представителях сем. Asteraceae и установлено, что для родов Cacalia, Cirsium, Echinops, Lactuca, Scorzonera, Stemmacantha характерно накопление линейных глюкофруктанов и олигомерных производных (1-кестозы, нистозы, lF-p-фруктофуранозил-нистозы, 1 г-р-фруктофуранозил-1 р-Р-фруктофуранозил-нистозы). В составе полисахаридов листьев Cacalia hastata установлено присутствие арабиногалактанов и галактуронанов, обладающих гипогликемическим и ранозаживляющим действием.

5. Установлено, что доминирующими компонентами водорастворимых полисахаридов некоторых видов пряно-вкусовых растений (Elettaria cardamomum, Myristica fragrans, Piper nigrum, Pimenta dioica, Zingiber officinale) являются а-4,6-глюканы различной степени разветвленности.

6. Установлено, что доминирующими полисахаридами суккулентных видов являются галактуронаны, арабинаны, арабиногалактаны (Agave), фруктаны (Brasilopuntia, Opuntia), маннаны (Aloe, Kalanchoe) и глюкозаминаны (Callisia).

7. Из плодовых тел Piptoporus betulinus (Piptoporaceae) выделен новый представитель класса базидиальных 3,6-глюканов - разветвленный aß-глюкан (пиптопоран I). В составе полисахаридов плодовых тел Laetiporus sulphureus, полученных с применением метода природных плантаций, установлено присутствие гетероглюкана (латипоран А), гликопротеидов (латипораны В, D), линейных а-1,3- (латиглюкан Г), р-1,3-глюканов (латиглюкан III) и разветвленного р-3,6-глюкана (латиглюкан II). В склероциях Inonotus obliquus обнаружены линейные ß-1,3- и а-1,3-глюканы.

8. Изучено строение меланинов ферментированных листьев некоторых видов сем. Lamiaceae и установлено, что они представляют собой высокомолекулярные соединения с м.м. 4-10 кДа, содержащие в составе макромолекулы конденсированные участки и боковые группы в виде гидрокси- и метоксибензольных остатков.

9. Установлено, что склероции Laetiporus sulphureus способны к накоплению меланина, структурное исследование которого показало его отнесение к дигидронафталиновому типу; присутствие меланина этого типа в базидиальном виде установлено впервые. Выявлено, что меланин склероциев ЫопоШб оЫ'щит представляет собой гетерогенный комплекс, состоящий из высокоароматичных полимеров с молекулярной массой 2-20 кДа, высоким содержанием карбоксильных и фенольных гидроксильных групп. Установлено, что возрастание значения структурного параметра г|, ранее не применявшегося для описания данных соединений, характерно для более алифатичных меланинов, а снижение отмечается для ароматических и конденсированных полимеров. Показано, что все исследованные меланины обладают выраженной антиоксидантной активностью.

10. Разработана методика количественного анализа глюкофруктанов в растительном сырье с применением модифицированного резорцинового метода. Разработаны методики количественного анализа глюкофруктанов в трех видах лекарственного сырья: корневищах и корнях девясила высокого, корнях лопуха и корнях одуванчика лекарственного. Проведенный метрологический анализ показал, что методики воспроизводимы и достоверны. Разработана методика количественного определения полисахаридов в растительном сырье с применением модифицированного антрон-серного метода. Предложен методический подход для определения группового состава углеводов в растительном сырье с использованием комбинации экстракционного метода Бейли и модифицированного антрон-серного метода. Разработанная методика применена для анализа полисахаридов в ряде видов растительного сырья и показана ее эффективность для дальнейшего использования в практике фармацевтического анализа.

11. Разработана унифицированная схема анализа углеводов в лекарственном сырье, нормируемом по содержанию полисахаридов, позволяющая проводить адекватную стандартизацию растительных объектов.

12. Установлено, что на выраженность иммуномодулирующей и антиоксидантной активности растительных полисахаридов оказывает влияние степень разветвления кора макромолекулы.

 
 

Список использованной литературы по медицине, диссертация 2012 года, Оленников, Даниил Николаевич

1. Багаутдинова Р.И. Фруктозосодержащие углеводы растений разных семейств локализация и состав / Р.И. Багаутдинова, Г.П. Федосеева, Т.Ф. Оконешникова // Химия коми, моделир. Бутл, сообщ- 2005.- № 5.- С.13-16.

2. Беляков К.В. Методологические подходы к определению биологически активных веществ в лекарственном растительном сырье спектрофотометрическим методом- Москва, 2004.- 186 с.

3. Березина B.C. Содержание и состав суммарных водорастворимых полисахаридных комплексов в надземной части Lamium album L. и Galeobdolon luteum Huds. / B.C. Березина, M.H. Повыдыш, JI.С. Теслов, A.JI. Буданцев II Растит, ресурсы 2003.- Т. 39.- С. 69-76.

4. Гаммерман А. Ф., Семичов Б.В. Словарь тибето-латино-русских названий лекарственного растительного сырья, применяемого в тибетской медицине. Улан-Удэ: БКНИИ, 1963.

5. Закис Г.Ф. Функциональный анализ лигнинов и их производных Рига: Зинатне, 1987.

6. Злобин A.A. Пектиновые полисахариды рябины обыкновенной Sorbus aucuparia L. / A.A. Злобин, E.A. Мартинсон, С.Г. Литвинец, И.А. Овечкина, Е.А. Дурнев, Р.Г. Оводова II Химия растит, сырья 2011.-№1.- С. 39-44.

7. Злобин A.A. Состав и свойства пектиновых полисахаридов зверобоя продырявленного Hypericum perforatum L. / A.A. Злобин, E.A. Мартинсон, И.А. Овечкина, Е.А. Дурнев, Р.Г. Оводова, С.Г. Литвинец // Химия растит, сырья.- 2011.- №1.- С. 33-38.

8. Козлова Р.Ю. Зависимость активности фракций пектиновых полисахаридов от их структуры, установленной методом ЯМР / Р.Ю. Козлова, В.В. Клочков, В.Г. Винтер // Уч. зап. Казанск. госуд. ун-та.-2007.-Т. 149.-С. 125-137.

9. Комисаренко Н.Ф. Меланин из семян Aesculus hippocastanum I Н.Ф Комисаренко., А.И. Деркач, A.A. Зинченко // Фармаком.- 1995.- № 4.-С. 33-34

10. Куцик Р.В. Каланхоэ перистое (Бриофиллюм чашечковый). Kalanchoe pinnata (Lam.) Pers. (Аналитический обзор) / P.B. Куцик, Б.М. Зузук // Провизор.- 2004.- №4.- С. 52-62.

11. Лях С.П., Рубан E.JI. Микробные меланины.- Наука: Москва, 1972.185 с.

12. Никитина A.C. Полисахариды змееголовника молдавского, культивируемого в условиях Ставропольского края / A.C. Никитина, О.И. Попова // Вестник ВГУ, Серия: Химия, биология, фармация-2006.- №2.- С. 327-329.

13. Оводов Ю.С., Головченко В.В., Гюнтер Е.А., Попов C.B. Пектиновые вещества растений европейского севера России.- Екатеринбург: УРО РАН, 2009.- 112 с.

14. Оводова Р.Г. Выделение и химическая характеристика полисахаридов (вибурнанов) из шрота ягод калины обыкновенной / Р.Г. Оводова, В.В. Головченко, C.B. Попов II Химия растит, сырья 1999.- №1.- С. 5357.

15. Олейников Д.Н. Химический состав сока каллизии душистой (Callisia fragrans Wood.) и его антиоксидантная активность (in vitro) / Д.Н. Олейников, И.Н. Зилфикаров, A.A. Торопова, Т.А. Ибрагимов // Химия растит, сырья 2008.- №4,- С. 95-100.

16. Олейников Д.Н. Методика количественного определения группового состава углеводного комплекса растительных объектов / Д.Н. Олейников, JI.M. Танхаева II Химия растит, сырья 2006.- №4.- С. 2933.

17. Олейников Д.Н. Подорожник большой (Plantago major L.). Химический состав и применение / Д.Н. Олейников, A.B. Samuelsen, JI.M. Танхаева II Химия растит, сырья 2007.- № 2.- С. 37-50.

18. Ott В.Д. Сучасш дашпро роль пребютиюв в дитячому харчуванш / В.Д. Ott, О.М. Мукв1ч // Проблемы харчування.- 2005.- № 5.- С. 2-5.

19. Руководство по экспериментальному (доклиническому) изучению новых фармакологических веществ / Ред. Р.У. Хабриев. М.: Медицина, 2000. С. 18-24.

20. Свиридов А.Ф. Химические методы частичного расщепления полисахаридов / А.Ф. Свиридов, О.С. Чижов // Биоорг. химия.- 1976.Т. 2.-С. 315-350.

21. Селиванов Ф.Ф. // Журн. русск. физ.-хим. общ- 1888.- Т. 20.- С.267 (цит. по Коренман И.М. Методы определения органических соединений М.: Наука, 1975.- 359 е.).

22. Соловьева Т.Ф. Общая характеристика полисахаридов Аралиевых / Т.Ф. Соловьева, Т.И. Прудникова, Ю.С. Оводов // Растит, ресурсы-1968.- Т. 4.-С. 497-501.

23. Чушенко В.Н. Полисахариды Adonis vernalis L. и A. wolgensis Steven / В.Н. Чушенко, В.Я. Яцюк, Н.Ф. Комисаренко, О.Б. Карамова // Растит, ресурсы.- 1995.- Т. 31.- С. 97-99.

24. Шашков A.C. Спектроскопия 13С-ЯМР в химии углеводов и родственных соединений / A.C. Шашков, О.С. Чижов // Биоорганич. химия.- 1976.- Т. 2.- С. 437-497.

25. Шиврина А.Н. Химическая и спектрофотометрическая характеристика воднорастворимых гуминоподобных соединений, образуемых грибом Inonotus obliquus (Pers.) Pil. / А.Н. Шиврина II Почвоведение 1962.- Т. 11.- С. 51-60.

26. Щербухин В.Д. Галактоманнаны отечественной флоры (обзор) / В.Д. Щербухин// Прикл. биохим. микробиол- 1993.- Т. 29.- С. 803-813.

27. Щербухин В.Д. Галактоманнаны семян Бобовых (обзор) / В.Д. Щербухин, О.В. Анулов // Прикл. биохим. микробиол 1999.- Т. 35.- С. 257-274.

28. Abdukadirov I.T. Carbohydrates from Ajuga turkestanica / I.T. Abdukadirov, M.A. Khodzhaeva, M.T. Turakhozhaev, A.U. Mamatkhanov // Chem. Nat. Comp.- 2004.- Vol. 40.- P. 85-86.

29. Alam N. Structure of a water-soluble polysaccharide from the seeds of Cassia angustifolia / N. Alam, P.C. Gupta // Planta Med.- 1986.- Vol. 52.-P. 308-310.

30. Andrews P. The galactan of Strychnos nwc-vomica seeds/ P. Andrews, L. Hough, J.K.N. Jones///. Chem. Soc.- 1954.-P. 806-810.

31. Arifkhodzhaev A.O. Glucans of higher plants / A.O. Arifkhodzhaev // Chem. Nat. Comp.- 1997.- Vol. 33.- P. 1-10.

32. Awale S. Neoorthosiphonone A; a nitric oxide (NO) inhibitory diterpene with new carbon skeleton from Orthosiphon stamineus / S. Awale, Y. Tezuka, M. Kobayashi, J. Ueda, S. Kadota // Tetrahedr. Lett 2004,- Vol. 45.- P. 1359-1362.

33. Babitskaya V.G. The nature of melanin pigments of several micro- and macromycetes / V.G. Babitskaya, V.V. Shcherba // Appl. Biochem. Microbiol.- 2002.- Vol. 38.- P. 286-291.

34. Babitskaya V.G. Melanin pigments from the fungi Paecilomyces variotii and Aspergillus carbonarius / V.G. Babitskaya, V.V. Shcherba, T.V. Fillimonova, E.A. Grigirchuk // Appl. Biochem. Microbiol 2000.- Vol. 36.- P. 128-133.

35. Bacon J.S.D. Fructose and glucose in the blood of the foetal sheep / J.S.D. Bacon, D.J. Bell // Biochem. J.- 1948.- Vol. 42.- P.397-405.

36. Bacon J.S.D. The carbohydrates of the Jerusalem artichoke and other Compositae / J.S.D. Bacon, J. Edelman // Biochem. J- 1951.- Vol. 48.- P. 114-126.

37. Badami S. In vitro antioxidant activity of thirteen medicinal plants of India's Western Ghats / S. Badami, K.P. Channabasavaraj // Pharm. Biol.-2007.- Vol. 45.- P. 392-396.

38. Bailey R.W. Galactomannans and other soluble polysaccharides in Sophora seed / R.W. Bailey // New ZelandJ. Bot.- 1974.-Vol. 12.-P. 131-136.

39. Bailey R.W. Carbohydrate composition of particulate preparations from mung bean (Phaseolus aureus) shoots / R.W. Bailey, S. Haq, W.Z. Hassid // Phytochemistry.- 1967.- Vol. 6.- P. 293-301.

40. Baker J.L. LVIII. Mannogalactan and laevulomannan. Two new polysaccharides / J.L. Baker, T.H. Pope II J. Chem. Soc. Trans 1990.- Vol. 77.- P. 696-705.

41. Bell A.A. Biosynthesis and functions of fungal melanins / A.A. Bell, M.H. Wheeler II Ann. Rev. Phytopathol.- 1986.- Vol. 24.- P. 411-451.

42. Barclay T. Inulin A versatile polysaccharide with multiple pharmaceutical and food chemical uses / T. Barclay, M. Ginic-Markovic, P. Cooper, N. Petrovsky II J. Excip. Food Chem- 2010.- Vol. 1.- P. 27-50.

43. Batle I., Tous J. Carob tree. Ceratonia siliqua L. Promoting the conservation and use of underutilized and neglected crops. 17. Rome: IPRI, 1997. P. 23-25.

44. Bell D.J. Structural studies on inulin from Inula helenium and on levans from Dactylis glomerata and Lolium italicum / D.J. Bell, A. Palmer // J. Chem. Soc.- 1952.- P. 3741-3744.

45. Bilinska B. Progress in infrared investigations of melanin structures / B. Bilinska // Spectrochim. Acta A.- 1996.- Vol. 52.- P. 1157-1162.

46. Borrelli R.C. Chemical characterization and antioxidant properties of coffee melanoidins / R.C. Borrelli, A. Visconti, C. Mennella // J. Agric. Food Chem.- 2002.- Vol. 50.- P. 6527-6533.

47. Bradford M.M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein dye binding / M.M. Bradford //Anal. Biochem.- 1976.- Vol. 72.- P. 248-254.

48. Braga M.R. Changes in pectins of the Xylopodium of Ocimum nudicaule from dormancy to sprouting / M.R. Braga, N.C. Carpita, S.M.C. Dietrich, R.D.C.L. Figueiredo-Ribeiro // Braz. J. Plant Physiol- 2006.- Vol. 18.- P. 325-331.

49. Brugnerotto J. An infrared investigation in relation with chitin and chitosan characterization / J. Brugnerotto, J. Lizardi, F.M. Goycoolea, W. Arguelles-Monal, J. Desbrieres, M. Rinaudo // Polymer.- 2001.- Vol. 42.- P. 35693580.

50. Buchala A.J. A glucomannan from the tubers of Orchis morio / A.J. Buchala, G. Franz, H. Meier // Phytochemistry.- 1974.- Vol. 13.- P. 163166.

51. Butler M.J. Fungal melanins: A review / MJ. Butler, A.W. Day // Can. J. Microbiol- 1998.- Vol. 44.- P. 1115-1136.

52. Butler M.J. Melanin synthesis by Sclerotinia sclerotiorum / M.J. Butler, R.B. Gardiner, A.W. Day // Mycologia.- 2009.- Vol. 101.- P. 296-304.

53. Cao W. Structural analysis of water-soluble glucans from the root of Angelica sinensis (Oliv.) Diels / W. Cao, X.-Q. Li, L. Liu, M. Wang, H.-T. Fan, Ch. Li, Zh. Lv, X. Wang, Q. Mei // Carbohydr. Res.- 2006.- Vol. 341.-P. 1870-1877

54. Capek P. A water soluble glucomannan isolated from an immunomodulatory active polysaccharide of Salvia officinalis L. / P. Capek // Carbohydr. Polym.- 2009.- Vol. 75.- P. 356-359.

55. Capek P. Water-soluble polysaccharides from Salvia officinalis L. possessing immunomodulatory activity / P. Capek, V. Hribalova // Phytochemistry.- 2004.- Vol. 65.- P. 1983-1992.

56. Capek P. Characterization of immunomodulatory polysaccharides from Salvia officinalis L. / P. Capek, V. Hribalova, E. Svandova, A. Ebringerova, V. Sasinkova, J. Masarova // Int. J. Biol Macromol.- 2003.- Vol. 33.- P. 113-119.

57. Capek P. Polysaccharides from the roots of the marsh mallow {Althaea officinalis L., var. Rhobusta): structural features of an acidic polysaccharide / P. Capek, J. Rosik, A. Kardosova, R. Toman // Carbohydr. Res 1987.-Vol. 164.- P. 443-452.

58. Capek P. Polysaccharides from the roots of the marsh mallow {Althaea officinalis L.): Structure of an arabinan / P. Capek, R. Toman, A. Kardosova, J. Rosik // Carbohydr. Res.- 1983.- Vol. 117.- P. 133-140.

59. Carbik I. Immunologically active polysaccharides from the aqueous extract of Nerium oleander / I. Carbik, K.H.C. Baser, H.Z. Ozel, B. Ergun, H. Wagner // Planta Med.- 1990.- Vol. 56.- P. 668.

60. Carpita N.C. Structural models of primary cell walls in flowering plants: Consistency of molecular structure with the physical properties of the walls during growth / N.C. Carpita, D.M. Gibeaut // Plant J.- 1993.- Vol. 3.- P.l-30.

61. Castro R.R. Analgesic activity of a polysaccharide in experimental osteoarthritis in rats / R.R. Castro, J.P.A. Feitosa, P.L. Rodrigues da Cuntha, F.A. Castro da Rocha // Clin. Rheumatol- 2007.- Vol. 26.- P. 1312-1319.

62. Cerezo A.S. The constitution of a galactomannan from the seed of Gleditsia amorphoides! A.S. Cerezo II J. Org. Chem.- 1965.- Vol. 30.- P. 924-927.

63. Chakraborty I. A water-insoluble (1—>-3)-|3-d-glucan from the alkaline extract of an edible mushroom Termitomyces eurhizus / I. Chakraborty, S. Mondal, D. Rout, S.S. Islam // Carbohydr. Res.- 2006.- Vol. 341.- P. 29902993

64. Chamomile: industrial profiles. Eds. R. Franke, H. Schilcher / Medicinal and Aromatic Plants industrial profiles.- Vol. 42.- Boca Raton, London, New York, Singapore: Taylor & Francis, 2005.- 280 p.

65. Chang Y.-H. Physicochemical properties of waxy and normal corn starches treated in different anhydrous alcohols with hydrochloric acid / Y.-H. Chang, J.-H. Lin, S.-Y. Chan // Food Hydrocoll.- 2006.- Vol. 20.- P. 322339.

66. Chen H. Enhancement of exo-polysaccharide production and antioxidant activity in submerged cultures of Inonotus obliquus by lignocellulose decomposition / H. Chen, M. Yan, J. Zhu, X. Xu // J. Ind. Microbiol. Biotechnol.- 2011.- Vol. 38.- P. 291-298.

67. Chen H.S. An acidic polysaccharide from Tribulus terrestrisl H.S. Chen, W.N. Leung, Y.X. Xu // Chin. Chem. Lett.- 2002.- Vol. 13.- P. 625-628.

68. Chen J. Medicinal importance of fungal p-(l—>3), (1—>6)-glucans / J. Chen, R. Seviour // Mycol. Res.- 2007.- Vol. 111.- P. 635-652.

69. Chen R. Antioxidant and immunobiological activity of water-soluble polysaccharide fractions purified from Acanthopanax senticosus / R. Chen,

70. Z. Liu, J. Zhao, R. Chen, F. Meng, M. Zhang, W. Ge // Food Chem.- 2011.-Vol. 127.- P. 434-440.

71. Chirikova N.K. Chemical composition of Scutellaria baicalensis / N.K. Chirikova, D.N. Olennikov II Chem. Nat. Comp.- 2008.- Vol. 44.- P. 361362.

72. Chun H. Purification and characterization of anti-complimentary polysaccharide from leaves of Thymus vulgaris L. / H. Chun, W.J. Jun, D.H. Shin, B.S. Hong, H.Y. Cho, H.C. Yang // Chem. Pharm. Bull.- 2001.-Vol. 49.- P. 762-764.

73. Chun H. Purification and biological activity of acidic polysaccharide from leaves of Thymus vulgaris L. / H. Chun, D.H. Shin, B.S. Hong, H.Y. Cho, H.C. Yang II Biol. Pharm. Bull.- 2001.- Vol. 24.- P. 941-946.

74. Chushenko V.N. Carbohydrates of the flowers of Convallaria majalis and C. keiskei / V.N. Chushenko, E.V. Vinnik, N.F. Komissarenko, E.P. Stupakova, T.V. Petukhova, V.V. Zinchenko 11 Chem. Nat. Comp.- 1992.-Vol. 28.- P. 242-243.

75. Corsaro M.M. Polysaccharides from seeds of Strychnos species / M.M. Corsaro, I. Giudicianni, R. Lanzetta, C.E. Marciano, P. Monaco, M. Parrilli II Phytochemistry.- 1995.-Vol. 39.-P. 1377-1380.

76. Courtois J., Le Dizet Action de l'a-galactosidase du café sur quelques galactomannanes / J.Courtois // Carbohydr. Res.- 1966.- Vol. 3.- P. 141151.

77. Coviello T. Scleroglucan: A versatile polysaccharide for modified drug delivery / T. Coviello, A. Palleschi, M. Grassi, P. Matricardi, G. Bocchinfuso, F. Alhaique // Molecules- 2005.- Vol. 10.- P. 6-33.

78. Cunningham A.J. A method of increased sensitivity for detecting single antibody forming cells / A.J. Cunningham // Nature 1965.- Vol. 207.- P. 1106-1107.

79. Das N.N. Structure of the D-fructan isolated from garlic {Allium sativum) bulbs / N.N. Das, A. Das // Carbohydr. Res.- 1978.- Vol. 64.- P. 155-167.

80. Das N.N. Structure of the d-galactan isolated from garlic (Allium sativum) bulbs / N.N. Das, A. Das, A. Kumar Mukherjee // Carbohydr. Res 1977.-Vol. 56.- P. 337-349.

81. Davis E.A. Isolation and an N.M.R. study of pectins from flax (Linum usitatissimum L.) / E.A. Davis, C. Derouet, C. Herve Du Penhoat, C. Morvan // Carbohydr. Res.- 1990.- Vol. 197.- P. 205-215.

82. De Angelis F. Partial structures of truffle melanins / F. De Angelis, A. Arcadi, F. Marinelli, M. Paci, D. Botti, G. Pacioni, M. Miranda // Phytochemistry.- 1996.- Vol. 43.- P. 1103-1106.

83. Ding H. Antioxidant and antimelanogenic properties of rosmarinic acid methyl ester from Origanum vulgare! H. Ding, T. Chou, C. Liang // Food Chem.- 2010.- Vol. 123.- P. 254-262.

84. Dreywood R. Qualitative test for carbohydrate material / R. Dreywood // Ind. Eng. Chem. Anal. Ed.- 1946.- Vol. 18.- P. 499.

85. Dubois M. Colorimetric method for determination of sugars and related substances / M. Dubois, K.A. Gilles, J.K. Hamilton, P.A. Rebers, F. Smith II Anal. Chem.- 1956.- Vol. 28.- P.350-356.

86. Dzhumamuratova A. Polysaccharides of some species of Glycyrrhiza / A. Dzhumamuratova, E. Seitmuratov, D.A. Rakhimov, Z.F. Ismailov // Chem. Nat. Comp.- 1979.- Vol. 14.- P. 437.

87. Ebringerova A. Mitogenic and comitogenic activities of polysaccharides from some European herbaceous plants / A. Ebringerova, A. Kardosova, Z. Hromadkova, V. Hfibalova II Fitoterapia.- 2003.- Vol. 74.- P. 52-61.

88. Edwards S. Primary structure of arabinoxylans of ispaghula husk and wheat bran / S. Edwards, M.F. Chaplin, A.D. Blackwood, P.W. Dettmar // Proc. Nutr. Soc.- 2003.- Vol. 62.- P. 217-222.

89. Egorov A.V. Water-soluble galactomannan from the seed of ground honeysuckle (Lotus corniculatus L.): Structure and properties / A.V. Egorov, N.M. Mestechkina, R.Ya. Plennik, V.D. Shcherbukhin // Appl. Biochem. Microbiol.- 2003.- Vol. 39.- P. 509-511.

90. Egorov A.V. Composition and structure of galactomannan from the seed of Gleditsia ferox Desf. / A.V. Egorov, N.M. Mestechkina, V.D. Shcherbukhin // Appl. Biochem. Microbiol.- 2004.- Vol. 40.- P. 314-318.

91. Egorov A.V. Determination of the primary and fine structures of a galactomannan from the seed of Gleditsia triacanthos f. inermis L./ A.V. Egorov, N.M. Mestechkina, V.D. Shcherbukhin // Appl. Biochem. Microbiol.- 2003.- Vol. 39.- P. 398-402.

92. Ellis D.H. The location and the analysis of melanins in the cell walls of some soil fungi / D.H. Ellis, D.A. Griffiths // Can. J. Microbiol.- 1974.-Vol. 20.- P. 1379-1386.

93. Englyst H.N. Classification and measurement of nutritionally important starch fractions / H.N. Englyst, S.M. Kingman, J.H. Cummings // Eur. J. Clin. Nutr.- 1992.- Vol. 46 (Suppl. 2).- P. S33-S50.

94. Erdei A. Enhancement of the immune response by y-inulin // Abstr. IXSem. Inulin.- Hungary, 2002.- P. 10-11.

95. Ernst M. Purification and characterization of a new fructan series from species of Asteraceae / M. Ernst, N.J. Chatterton, P.A. Harrison // New Phytol.- 1996.- Vol. 132.- P. 63-66.

96. Falkehag S.I., Marton J., Adler E. Chromophores in craft lignin. In J. Marton (Ed.), Lignin structure and reactions. Advances in Chemistry. Ser. 59 Washington: American Chemical Society, 1966. p. 75-89.

97. Fang J.-N. Immunologically active polysaccharides of Acanthopanax senticosus / J.-N. Fang, A. Proksch, H. Wagner // Phytochemistry 1985.-Vol. 24.- P. 2619-2622.

98. Femenia A. Compositional features of polysaccharides from Aloe vera {Aloe barbadensis Miller) plant tissues / A. Femenia, E.S. Sánchez, S. Simal, C. Rosselló H Carbohydr. Polym.- 1999.- Vol. 39.- P. 109-117.

99. Fincher G.B. Arabinogalactan-proteins: structure, biosynthesis, and function / G.B. Fincher, B.A. Stone, A.E. Clarke // Ann. Rev. Plant Physiol- 1983.- Vol. 34.- P 47-70.

100. Fogarty R.V. Fungal melanins and their interaction with metals / R.V. Fogarty, J.M. Tobin // Enzyme Microbiol Technol.- 1996.- Vol. 19.- P. 311-317.

101. Fujiwara T. Chemical structure of the water-soluble polysaccharide of Phellodendron amurense Ruprecht / T. Fujiwara, K. Arai // Carbohydr. Res.- 1982.-Vol. 101.-P. 305-313.

102. Gan E.V. Oxidation of NADH by melanin and melanoproteins / E.V. Gan, H.F. Haberman, I.A. Menon // Biochim. Biophys. Acta Enzymol.- 1974.-Vol. 370.- P. 62-69.

103. Garbacki N. Anti-inflammatory and immunological effects of Centaurea cyanus flower-heads / N. Garbacki, V. Gloaguen, J. Damas, P. Bodart, M. Tits, L. Angenot II J. Ethnopharmacol.- 1999.- Vol. 68.- P. 235-241.

104. Ghosh R. Mimosa pudica apyrase requires polysaccharide and Ca2+ for the activity / R. Ghosh, P.C. Sen, S. Biswas // Mol. Cell. Biochem.- 1998.- Vol. 187.- P. 47-55.

105. Gibson G.R. Selective stimulation of bifidobacteria in the human colon by oligofructose and inulin / G.R. Gibson, E.R. Beatty, X. Wang, J.H. Cummings // Gastroenterology.- 1995.- Vol. 108.- P. 975-982.

106. Golovchenko V.V. Structural study of bergenan, a pectin from Bergenia crassifolia / V.V. Golovchenko, O.A. Bushneva, R.G. Ovodova, A.S. Shashkov, A.O. Chizhov, Yu.S. Ovodov // Russ. J. Bioorg. Chem- 2007.-Vol. 33.- P. 47-56.

107. Gonda R. An acidic polysaccharide having activity on the reticuloendothelial system from the bark of Eucommia ulmoides / R. Gonda, M. Tomoda, N. Shimizu, M. Kanari // Chem. Pharm. Bull.- 1990.-Vol. 38.- P. 1966-1969.

108. Gorin A.G. Chemical investigation of polysaccharides of Plantago major L. leaves / A.G. Gorin // Chem. Nat. Comp.- 1965.- Vol. 1.- P.297-302.

109. Grasdalen H. Studies of composition and sequence in legume-seed galactomannans / H. Grasdalen, T.J. Painter // Carbohydr. Res 1980.- Vol. 81.-P. 59-66.

110. Guinesi L.S. The use of DSC curves to determine the acetylation degree of chitin/chitosan samples / L.S. Guinesi, E.T.G. Cavalheiro // Thermochim. Acta.- 2006.- Vol. 444.- P. 128-133.

111. Gyul'maliev A.M. Classification of fossil fuels according to structural-chemical characteristics / A.M. Gyul'maliev, G.S. Golovin, S.G. Gagarin // Solid Fuel Chem.- 2007.- Vol. 41.- P. 257-.

112. Guo Q. Fractionation and physicochemical characterization of psyllium gum / Q. Guo, S.W. Cui, Q. Wang, J. Christopher Young // Carbohydr. Polym.- 2008,- Vol. 73.- P. 35-43.

113. Gupta V. Tamarind kernel gum: An upcoming natural polysaccharide / V. Gupta, R. Puri, S. Gupta, S. Jain, G.K. Rao // Syst. Rev. Pharm.- 2010.-Vol. 1.- P. 50-54.

114. Gutiérrez A. Structural characterization of extracellular polysaccharides produced by fungi from the genus Pleurotus / A. Gutiérrez, A. Prieto, A.T. Martinez // Carbohydr. Res.- 1996.- Vol. 281.- P. 143-154.

115. Haaland E. Water-soluble polysaccharides from the leaves of Tussilago farfara L. / E. Haaland // Acta Chem. Scand.- 1969.- Vol. 23.- P. 25462548.

116. Hakomori S.-I. A rapid permethylation of glycolipid, and polysaccharide catalyzed by methylsulfinyl carbanion in dimethyl sulfoxide / S.-I. Hakomori HJ. Biochem.- 1964.- Vol. 55.- P.205-208.

117. He L. Research progress on polysaccharides from Ginkgo biloba / L. He, Z. Guo-Ying, X. Jian-Ping, L. Jun-Ang, Z. Huai-Yun, T. Yimin // J. Med. Plant Res.- 2012.- Vol. 6.- P. 171-176.

118. Heinze Th., Liebert T., Koschella A., Esterification of polysaccharides, Berlin, Heidelberg, 2006.

119. Helenius A., Aebi M. Intracellular functions of N-linked glycans / A. Helenius, M. Aebi II Science.- 2001.- Vol. 291.- P.2364-2369.

120. Hikino H. Isolation and hypoglycemic activity of eleutherans A, B, C, D, E, F, and G: Glycans of Eleutherococcus senticosus roots / H. Hikino, M. Takahashi, K. Otake, C. Konno // J. Nat. Prod.- 1986.- Vol. 49.- P. 293297.

121. Hilz H. Cell wall polysaccharides in black currants and bilberries -Characterization in berries, juice, and press cake / H. Hilz, E.J. Bakx, H.A. Schols, A.GJ. Voragen // Carbohydr. Polym.- 2005.- Vol. 59.- P. 477-488.

122. Hirsch E. Melanized dopaminergic neurons are differentially susceptible to degeneration in Parkinson's disease / E. Hirsch, A.M. Graybiel, Y.A. Agid II Nature.- 1988.- Vol. 334.- P. 345-348.

123. Hopf H. Characterization of the 'reserve cellulose' of the endosperm of Carum carvi as a P(l-4)-mannan / H. Hopf, O. Kandler // Phytochemistry-1977.- Vol. 16.- P. 1715-1717.

124. Houseknecht J.B. Chemistry and biology of arabinofuranosyl- and galactofuranosyl-containing polysaccharides / J.B. Houseknecht, T.L. Lowary // Curr. Opin. Chem. Biol.- 2001.- Vol. 5.- P. 677-682.

125. Hurr K.A. Evidence for the recent dispersal of Sophora (Leguminosae) around the Southern Oceans: Molecular data / K.A. Hurr, P.J. Lockhart, P.B. Heenan, D. Penny II J. Biogeography.- 1999.- Vol. 26.- P. 565-577

126. Jacobson E.S. Pathogenic roles for fungal melanins / E.S. Jacobson // Clin. Microbiol. Rev.- 2000.- Vol. 13.- P. 708-717.

127. Jansson-Charrier M. Le Approach of uranium sorption mechanisms on chitosan and glutamate glucan by IR and 13C-NMR analysis / M. Jansson-Charrier, I. Saucedo, E. Guibal, P. Cloirec // React. Funct. Polym.- 1995.-Vol. 27.- P. 209-221.

128. Jelsma J. Polymorphism in crystalline (1—>-3)-(x-d-glucan from fungal cellwalls / J. Jelsma, D.R. Kreger // Carbohydr. Res.- 1979.- Vol. 71.- P. 51-64

129. Jezequel V. Curdlan: A new functional P-glucan / V. Jezequel // Cer. Foods World.- 1998.- Vol. 43.- P. 361-364.

130. Jordan E. Structure and properties of polysaccharides from Viscum album (L.) / E. Jordan, H. Wagner // Oncology.- 1988.- Vol. 43 (Suppl. 1).- P. 815.

131. Jork H., Funk W., Fischer W., Wimmer H. Thin-Layer Chromatography.-vol. la.- Weinheim, 1990.- 464 p.

132. Kardosova A. A biologically active fructan from the roots of Arctium lappa L., var. Herkules / A. Kardosova, A. Ebringerova, J. Alfoldi, G. Nosal'ova, S. Franova, V. Hribalova // Int. J. Biol. Macromol.- 2003.- Vol. 33.- P. 135140.

133. Kardosova A. Antioxidant activity of medicinal plant polysaccharides / A. Kardosova, E. Machova // Fitoterapia.- 2006.- Vol. 11.- P. 367-373.

134. Katalinic V. Screening of 70 medicinal plant extracts for antioxidant capacity and total phenols / V. Katalinic, M. Milos, T. Kulisic, M. Jukic // Food Chem.- 2006.- Vol. 94.- P. 550-557.

135. Kato K. Infrared spectroscopy of some mannans / K. Kato, M. Nita, T. Mizuno // Agric. Biol. Chem.- 1973.- Vol. 37.- P. 433-435.

136. Kato Y. Isolation and characterization of a xyloglucan from gobo (Arctium lappa L.) / Y. Kato, T. Watanabe // Biosci. Biotech. Biochem 1993.- Vol. 57.- P. 1591-1592.

137. Keller N.P. Fungal secondary metabolism From biochemistry to genomics / N.P. Keller, G. Turner, J.W. Bennett // Nature Rev. Microbiol.- 2005.-Vol. 3.- P. 937-947.

138. Kelly G.S. Larch arabinogalactan: Clinical relevance of a novel immune-enhancing polysaccharide / G.S. Kelly // Altern. Med. Rev 1999.- Vol. 4.-P. 96-103.

139. Khan M.A. Spectrophotometric method for the quantitative determination of lactulose in pharmaceutical preparations / M.A. Khan, Z. Iqbal, M.R. Jan, J. Shan, W. Ahmad, Z.U. Haq, Obaidulla // J. Anal. Chem.- 2006.-Vol. 61.- P. 37-41.

140. Khodzhaeva M.A. Carbohydrates of Allium. V. Glucofructan of Allium cepa / M.A. Khodzhaeva, E.S. Kondratenko // Chem. Nat. Comp.- 1984.-Vol. 20.- P. 358-359.

141. Khodzhaeva M.A. Carbohydrates of the fruit of Rosa canina / M.A. Khodzhaeva, B.T. Sagdullaev, M.T. Turakhozhaev, Kh.N. Aripov // Chem. Nat. Comp.- 1998.- Vol. 34.- P. 736-737.

142. Khodzhaeva M.A. Allium carbohydrates I. Isolation and characterization of the polysaccharides / M.A. Khodzhaeva, Z.F. Ismailov. // Chem. Nat. Comp.- 1979.-Vol. 15.-P. 114-118.

143. Kim Y.O. Anti-cancer effect and structural characterization of endo-polysaccharide from cultivated mycelia of Inonotus obliquus / Y.O. Kim, H.W. Park, J.H. Kim, J.Y. Lee, S.H. Moon, C.S. Shin // Life Sci.- 2006.-Vol. 79.- P. 72-80.

144. Kim Y.S. Compositional analysis of polysaccharide from Sanguisorba officinalis and its anticoagulant activity / Y.S. Kim, J.E. Roh, H.S. Ann // Korean J. Pharmacogn.- 1993.- Vol. 24.- P. 124-130.

145. Klunk W.E. Quantitative evaluation of Congo red binding to amyloid-like proteins with a beta-pleated sheet conformation / W.E. Klunk, J.W. Pettegrew, D.J. Abraham // J. Histochem. Cytochem.- 1989.- Vol. 37.- P. 1273-1281.

146. Knicker H. 13C and 15N NMR analysis of some fungal melanins in comparison with soil organic matter / H. Knicker, G. Almendros, F.J. Gonzalez-Vila, H.-D. Lodemann, F. Martin // Org. Geochem- 1995.- Vol. 23.- P. 1023-1028.

147. Kuduk-Jaworska J. Immunomodulating polysaccharide fractions of Menyanthes trifoliata L. / J. Kuduk-Jaworska, J. Szpunar, K. G^siorowski, B. Brokos // Z. Naturforsch.- 2004.- Vol. 59c.- P. 485-493.

148. Kukhta E.P. Pectins of the family Lamiaceae (Labiatae) / E.P. Kukhta, V.Ya. Chirva, M.R. Borovskii, M.A. Tolmacheva, I.V. Eroshenko // Chem. Nat. Comp.- 1982.- Vol. 26.- P. 251-255.

149. Kuliev V.B. Polysaccharides of the fruits of Crataegus orientalis / V.B. Kuliev, L.V. Poletaeva // Chem. Nat. Comp.- 1985.- Vol. 18.- P. 612-613.

150. Kulka R.G. Colorimetric estimation of ketopentoses and ketohexoses / R.G. Kulka // Biochem. J.- 1956,- Vol. 63.- P. 542-548.

151. Kumar S. Antioxidant and free radical scavenging potential of Citrullus colocynthis (L.) Schrad. methanolic fruit extract / S. Kumar, D. Kumar, Manjusha, K. Saroha, N. Singif, B. Vashishta // Acta Pharm.- 2008.- Vol. 58.- P. 215-220.

152. Kurbanova A.D. Polysaccharides of saponin-bearing plants. XV. Structure of glucoarabinogalactan from Acantophyllum Borszczowii roots / A.D. Kurbanova, A.O. Arifkhodzhaev, D.A. Rakhimov, A.S. Shashkov // Chem. Nat. Comp.- 2003.- Vol. 39.- P. 438-441.

153. Lappin G.R. Colorimetric method for determination of traces of carbonyl compounds / G.R. Lappin, L.C. Clark // Anal. Chem.- 1951.- Vol. 23.- P. 541-542.

154. Laurent T.C. Hyaluronan / T.C. Laurent, J.R.E. Fraser // FASEB J.- 1992.-Vol. 6.- P.2397-2404.

155. Lee I.-K. New antioxidant polyphenols from the medicinal mushroom Inonotus obliquus / I.-K. Lee, Y.-S. Kim, Y.-W. Jang, J.-Y. Jung, B.-S. Yun //Bioorg. Med. Chem. Lett.- 2007.- Vol. 17.- P. 6678-6681.

156. Leschziner C. The structure of a galactomannan from the seed of Gleditsia triacanthos / C. Leschziner, A.S. Cerezo // Carbohydr. Res 1970.- Vol. 15.-P. 291-299.

157. Leung M.Y.K. Polysaccharide biological response modifiers / M.Y.K. Leung, C. Liu, J.C.M. Koon, K.P. Fung II Immunol. Lett.- 2006.- Vol. 105.-P. 101-114.

158. Li Zh.-x. Polysaccharides of Sophora subprostrata roots / Zh.-x. Li, Y.-z. Chen, Ch.-g. Huang, Y.-z. Chen // Acta Bot. Boreali-Occident. Sin 2000.-Vol. 20.- P. 294-299.

159. Li Sh.-g. Characterization and anti-tumor activity of a polysaccharide from Hedysarum polybotrys Hand.-Mazz / Sh.-g. Li, D.-g. Wang, W. Tian, X.-x. Wang, J.-x. Zhao, Zh. Liu, R. Chen // Carbohydr. Polym.- 2008.- Vol. 73.-P. 344-350

160. Lin M.-G. Advances in studies on structure-activity relationship of antitumor polysaccharides / M.-G. Lin, Y.-F. Yang, Y.-H. Li // Chin. Trad. Herb. Drugs.- 2007.- Vol. 38.- P. 949-953.

161. Lipkind G.M. A computer-assisted structural analysis of regular polysaccharides on the basis of 13C-n.m.r. data / G.M. Lipkind, A.S. Shashkov, Y.A. Knirel, E.V. Vinogradov, N.K. Kochetkov // Carbohydr. Res.- 1988.-Vol. 175.-P. 59-75.

162. Liu C.P. Chemical studies on SC3, a polysaccharide from Salvia chinensis / C.P. Liu, X.S. Wang, J.N. Fang // Yao Xue Xue Bao.- 2002.- Vol. 37.- P. 189-193.

163. Ma M.-H. A review on anti-viral action of polysaccharide / M.-H. Ma, Y.-H. Yi, H.-F. Tang // Pharm. Care Res.- 2004.- Vol. 4.- P. 305-308.

164. Mackinder B. Sophora toromiro / B. Mackinder, M. Staniforth II Curtis's Bot. Mag.- 1997.- Vol. 14.- P. 221-226

165. Madar Z. Polysaccharide composition of a gel fraction derived from fenugreek and its effect on starch digestion and bile acid absorption in rats / Z. Madar, I. Shomer // J. Agric. Food Chem.- 1990.- Vol. 38.- P. 15351539.

166. Maeda I. Properties of gels formed by heat treatment of curdlan, a bacterial B-1,3 glucan / I. Maeda, H. Saito, M. Masada, A. Misaki, T. Harada // Agric. Biol. Chem.- 1967.- Vol. 31.- P. 1184-1188.

167. Makhatadze M. Immunopharmacologic study of glucofructan from Symphytum asperum roots / M. Makhatadze, A.M. Bostoganashvili, V. Barbakadze, E. Kemertelidze, H. Dekanosidze // Ann. New York Acad. Sci-1993.- Vol. 685.- P. 383-385.

168. Malikova M.Kh. Plant polysaccharides VIII. Polysaccharides of Lagochilus zeravschanicus / M.Kh. Malikova, D.A. Rakhimo// Chem. Nat. Comp-1997.- Vol. 33.- P. 438-440.

169. Mallabaev A. Carbohydrates of Aerva lanata / A. Mallabaev, D.A. Rakhimov, Yu.M. Murdakhaev // Chem. Nat. Comp.- 1989.- Vol. 25.- P. 369-370.

170. Martynov E.G. Polysaccharides of Primula veris / E.G. Martynov, D.Yu. Makarov, V.L. Panov, A.E. Martynov // Chem. Nat. Comp 1986.- Vol. 22.- P. 473-474.

171. Martynov E.G. Polysaccharides of Berberis vulgaris / E.G. Martynov, E.A. Stroev, D.D. Peskov // Chem. Nat. Comp.- 1984.- Vol. 20.- P. 99-100.

172. Maruyama K. O-acetylated xyloglucan in extracellular polysaccharides from cell-suspension cultures of Mentha / K. Maruyama, C. Goto, M. Numata, T. Suzuki, Y. Nakagawa, T. Hoshino, T. Uchiyama // Phytochemistry.- 1996.- Vol. 41.- P. 1309-1314.

173. Maruyama K. Pectins in extracellular polysaccharides from a cellsuspension culture of Mentha / K. Maruyama, H. Yamamoto, T. Uchiyama // Biosci. Biotech. Biochem.- 1998.- Vol. 62.- P. 2223-2225.

174. Mathur V. Fenugreek and other lesser known legume galactomannan-polysaccharides: Scope for developments / V. Mathur, N.K. Mathur // J. Sei. Ind. Res.- 2005.- Vol. 64.- P. 475-481.

175. Maksimov V.l. A method for hexosamine measurement in chitin hydrolysates / V.l. Maksimov, V.E. Rodoman, E.V. Maksimova // Appl. Biochem. Microbiol.- 1999.- Vol 35.- P. 230-234.

176. Mestechkina N.M. Study of galactomannan from Amorpha fruticosa L. seeds / N.M. Mestechkina, O.V. Anulov, V.D. Shcherbukhin // Appl. Biochem. Microbiol.- 1998.- Vol. 34.- P. 497-500.

177. Mestechkina N.M. Composition and structure of a galactomannan macromolecule from seeds of Astragalus lehmannianus Bunge / N.M. Mestechkina, O.V. Anulov, N.I. Smirnova, V.D. Shcherbukhin // Appl. Biochem. Microbiol.- 2000.- Vol. 36.- P. 502-506.

178. Mestechkina N.M. Study of galactomannan from seeds of Trifolium hybridum L / N.M. Mestechkina, O.V. Anulov, N.I. Smirnova, V.D. Shcherbukhin // Appl. Biochem. Microbiol.- 1996.- Vol. 32.- P. 590-592.

179. Metner J.M. Melanin accelerates the tyrosinase-catalyzed oxygenation of p-hydroxyanisole (MMEH) / J.M. Metner, M.E. Townsel, C.L. Moore, G.D. Williamson, B.J. Soteres, M.S. Fisher, I. Willis // Pigm. Cell Res.- 1990.-Vol.3.- P. 90-97.

180. Mirzaeva M.R. Water-soluble polysaccharides of seeds of the genusr

181. Gleditsia / M.R. Mirzaeva, R.K. Rakhmanberdyeva, E.L. Kristallovich,

182. D.A. Rakhimov, N.I. Shtonda // Chem. Nat. Comp.- 1998.- Vol. 34.- P. 653-655.

183. Mirzaeva M.R. Structure of galactomannan from seeds of Gleditsia macracantha / M.R. Mirzaeva, R.K. Rakhmanberdyeva, D.A. Rakhimov // Chem. Nat. Comp.- 1999.- Vol. 35.- P. 505-507.

184. Mizuno M. Anti-tumor polysaccharide from the mycelium of liquid-cultured Agaricus blazei Mill / M. Mizuno, K.-I. Minato, H. Ito, M. Kawade, H. Terai, H. Tsuchida // Biochem. Molec. Biol. Int.- 1999.- Vol. 47.- P. 707-714.

185. Mizuno T. Antitumor active substances from mushroom / T. Mizuno // Food Rev. Int.- 1995.- Vol. 11.- P. 23-61.

186. Mizuno T. Food function and medicinal effect of mushroom fungi / T. Mizuno // FoodIngred- 1993.- Vol. 158.- P. 8-23.

187. Mosca L. Melanins from tetrahydroisoquinolines: Spectroscopic characteristics, scavenging activity and redox transfer properties / L. Mosca, C. Blarzino, R. Coccia, C. Foppoli, A.M. Rosei // Free Rad. Biol. Med.- 1998.- Vol. 24.- P. 161-167.

188. Muller B.M. Chemical structure and biological activity of water-soluble polysaccharides from Cassia augustifolia leaves / B.M. Muller, J. Kraus, G. Franz // Planta Med.- 1989.- Vol. 55.- P. 536-539.

189. Muller B.M. Polysaccharide aus Neriun oleander, struktur und biologische aktivitat / B.M. Muller, F. Rosskopf, D.H. Paper, J. Kraus, G. Franz II Pharmazie.- 1991.- Vol. 46.- P. 657-663.

190. Naran R. Novel rhamnogalacturonan I and arabinoxylan polysaccharides of flax seed mucilage / R. Naran, G. Chen, N.C. Carpita // Plant Physiol-2008.-Vol. 148.-P. 132-141.

191. Ni W. Preparation of a glucan from the roots of Rubus crataegifolius Bge. and its immunological activity / W. Ni, X. Zhang, H. Bi, J. Iteku, L. Ji, Ch. Sun, J. Fang, G. Tai, Y. Zhou, J. Zhao // Carbohydr. Res.- 2009.- Vol. 344.-P. 2512-2518.

192. Nicolaus R.A. The structure of sepiomelanin / R.A. Nicolaus, M. Piattelli, E. Fattorusso // Tetrahedron.- 1964.- Vol. 20.- P. 1163-1167.

193. Nio Y. Recent progress in research on a plant polysaccharide, PSK / Y. Nio, M. Itakura, S. Yano, S.-I. Sumi, K. Tamura // Biotherapy- 2000.- Vol. 14. p. 849-858.

194. Nishimura K. Immunological activity of chitin and its derivatives / K. Nishimura, S. Nishimura, N. Nishi // Vaccine.- 1984.- Vol. 2.- P. 93-99.

195. Nosanchuk J.D. The contribution of melanin to microbial pathogenesis / J.D. Nosanchuk, A. Casadeval // Cell. Microbiol.- 2003.- Vol. 5.- P. 203223.

196. Novikova L.N. Composition of humic substances in oxidized brown coal from Mongolia / L.N. Novikova, R. Erdenechimeg, B. Purevsuren, T.I. Vakul'skaya, D.F. Kushnarev, A.V. Rokhin // Solid Fuel Chem 2010.-Vol. 44.- P. 78-88.

197. Olennikov D.N. Melanin of Laetiporus sulphureus (Bull.: Fr.) Murr sterile form / D.N. Olennikov, S.V. Agafonova, A.V. Stolbikova, A.V. Rokhin // Appl. Biochem. Microbiol- 201 la.- Vol. 47.- P. 298-303.

198. Olennikov D.N. Lamiaceae carbohydrates. V. Glucoarabinogalactan from Scutellaria baicalensis / D.N. Olennikov, A.V. Rokhin, L.M. Tankhaeva // Chem. Nat. Comp.- 2008.- Vol. 44.- P. 560-563.

199. Olennikov D.N. Polysaccharides of Fabaceae. V. a-Glucan from Sophora flavescens roots / D.N. Olennikov, A.V. Stolbikova, A.V. Rokhin, V.B. Khobrakova, L.M. Tankhaeva // Chem. Nat. Comp.- 2011.- Vol. 47.- P. 1-6.

200. Olennikov D.N. A quantitative assay for total fructans in burdock (Arctium spp.) roots / D.N. Olennikov, L.M. Tankhaeva // Russ. J. Bioorg. Chem.-2011.- Vol.37.- P. 893-898.

201. Olennikov D.N. Lamiaceae carbohydrates. I. Pectinic substances and hemicelluloses from Mentha x piperita / D.N. Olennikov, L.M. Tankhaeva // Chem. Nat. Comp.- 2007.- Vol. 43.- P. 501-507.

202. Olennikov D.N. Quantitative analysis of polysaccharides from Plantago major leaves using the Dreywood method / D.N. Olennikov, L.M. Tankhaeva, A.B. Samuelsen // Chem. Nat. Comp.- 2006,- Vol. 42.- P. 265268.

203. Ollmann M.M. Antagonism of central melanocortin receptors in vitro and in vivo by agouti-related protein / M.M. Ollmann, B.D. Wilson, Y.-K. Yang, J.A. Kerns, Y. Chen, I. Gantz, G.S. Barsh // Science.- 1997.- Vol. 278.- P. 135-138.

204. O'Neill M.A. Rhamnogalacturonan II: Structure and function of a borate cross-linked cell wall pectic polysaccharide / M.A. O'Neill, T. Ishii, P. Albersheim, A.G. Darvill 1/ Ann. Rev. Plant Biol.- 2004.- Vol. 55.- P. 109139.

205. Oosterveld A. Characterization of hop pectins shows the presence of an arabinogalactan-protein / A. Oosterveld, A.G.J. Voragen, H.A. Schols // Carbohydr. Polym.- 2002.- Vol. 49.- P. 407-413.11

206. Ovodov Yu.S. Polysaccharides of the berries of Eleutherococcus senticosus / Yu.S. Ovodov, V.I. Shibaeva // Chem. Nat. Comp.- 1969.- Vol. 5.- P. 501.

207. Ovodova R.G. Structural studies and physiological activity of lemnan, a pectin from Lemna minor L. / R.G. Ovodova, V.V. Golovchenko, A.S. Shashkov, S.V. Popov, Yu.S. Ovodov // Russ. J. Bioorg. Chem.- 2000.-Vol. 26.- P. 669-676.

208. Paim S. Characterization of fungal melanins and soil humic acids by chemical analysis and infrared spectroscopy / S. Paim, L.F. Linhares, A.S. Mangrich, J.P. Martin // Biol. Fertil. Soils.- 1990.- Vol. 10.- P. 72-76.

209. Papetti A. Isolation of an in vitro and ex vivo antiradical melanoidin from roasted barley / A. Papetti, M. Daglia, C. Aceti // J. Agric. Food Chem.-2006.- Vol. 54.- P. 1209-1216.

210. Patankar M.S. A revised structure for fucoidan may explain some of its biological activities / M.S. Patankar, S. Oehninger, T. Barnett, R.L. Williams, G.F. Clark// J. Biol. Chem.- 1993.- Vol. 268.- P. 21770-21776.

211. Paulsen B.S. Plant polysaccharides with immunostimulatory activities / B.S. Paulsen// Curr. Org. Chem.- 2001.- Vol. 5.- P. 939-950.11

212. Paulsen B.S. Bioactive pectic polysaccharides / B.S. Paulsen, H. Barsett // Adv. Polym. ScL- 2005.- Vol. 186.- P. 69-101.

213. Pérez S. A complex plant cell wall polysaccharide: Rhamnogalacturonan II. A structure in quest of a function / S. Pérez, M.A. Rodríguez-Carvajal, T. Doco II Biochimie.- 2004.- Vol. 85.- P. 109-121.

214. Piattelli M. The structure of melanins and melanogenesis-V. Ustilagomelanin / M. Piattelli, E. Fattorusso, R.A. Nicolaus, S. Magno // Tetrahedron.- 1965.- Vol. 21.- P. 3229-3236.

215. Polie A.Ya. Structure of tanacetan, a pectic polysaccharide from tansy Tanacetum vulgar e L / A. Ya. Polie, R.G. Ovodova, A.O. Chizhov, A. S. Shashkov, Yu.S. Ovodov II Biochemistry (Moscow).- 2002.- Vol. 67.- P. 1371-1376.

216. Polyakova N.S. Polysaccharides of Ungernia. XIII. Carbohydrates of the leaves of the genus Ungernia / N.S. Polyakova, D.A. Rakhimov, E.S. Kondratenko // Chem. Nat. Comp.- 1984.- Vol. 20.- P. 612-614.

217. Popov S.V. Immunostimulating activity of pectic polysaccharide from Bergenia crassifolia (L.) Fritsch / S.V. Popov, G.Yu. Popova, S.Yu. Nikolaeva, V.V. Golovchenko, R.G. Ovodova // Phytother. Res 2005.-Vol. 19.- P. 1052-1056.

218. Popov S.V. Chemical characterization and anti-inflammatoiy effect of rauvolfian, a pectic polysaccharide of Rauvolfia callus / S.V. Popov, V.G.

219. Vinter, O.A. Patova, P.A. Markov, I.R. Nikitina, R.G. Ovodova, G.Yu. Popova, Yu.S. Ovodov II Biochemistry (Moscow).- 2007.- Vol. 72.- P. 778784.

220. Pramanik M. Structural analysis of a water-soluble glucan (Fr.I) of an edible mushroom, Pleurotus sajor-caju / M. Pramanik, I. Chakraborty, S. Mondal, S.S. Islam // Carbohydr. Res.- 2007.- Vol. 342.- P. 2670-2675

221. Proksch A. Structural analysis of a 4-O-methyl-glucuronoarabinoxylan with immuno-stimulating activity from Echinacea purpurea / A. Proksch, H. Wagner // Phytochemistry.- 1987.- Vol. 26.- P. 1989-1993.

222. Puhlmann J. Immunologically active polysaccharides from Arnica montana herbs and tissue cultures / J. Puhlmann, H. Wagner // Planta Med- 1989.-Vol. 55.- P. 99.

223. Qu D. A role for melanin-concentrating hormone in the central regulation of feeding behaviour / D. Qu, D.S. Ludwig, S. Gammeltoft, M. Piper, M.A. Pelleymounter, M.J. Cullen, W.F. Mathes, E. Maratos-Flier // Nature-1996.- Vol.380.-P. 243-247.

224. Raetz C.R.H. Lipopolysaccharide endotoxins / C.R.H. Raetz, C. Whitfield II Ann. Rev. Biochem.- 1992.- Vol. 71.- P.635-700.

225. Rajadhyaksha M. In vivo confocal scanning laser microscopy of human skin: Melanin provides strong contrast / M. Rajadhyaksha, M. Grossman, D. Esterowitz, R.H. Webb, R.R. Anderson // J. Invest. Dermatol 1995.-Vol. 104.- P. 946-952.

226. Rakhimov D.A. Carbohydrates of Peganum harmala / D.A. Rakhimov, M.I. Igamberdieva, E.S. Kondratenko // Chem. Nat. Comp 1983.- Vol. 19.- P. 260-262.

227. Rakhimov D.A. Polysaccharides of saponin-bearing plants. Carbohydrates of Yucca gloriosa / D.A. Rakhimov, E.S. Kondratenko, S.A. Khamidkhodzhaev // Chem. Nat. Comp.- 1983.- Vol. 19.- P. 601-602.

228. Rakhimov D.A. Polysaccharides of plant tissues. II. Polysaccharides of Ruta graveolens callus culture / D.A. Rakhimov, R.P. Zakirova // Chem. Nat. Comp.- 2002.- Vol. 38.- P. 350-351.

229. Rakhmanberdyeva R.K. Galactomannans from Gleditsia aquatica / R.K. Rakhmanberdyeva// Chem. Nat. Comp.- 2005.- Vol. 41.- P. 220-221

230. Rakhmanberdyeva R.K. Structure of galactomannan from Gleditsia delavayi seeds / R.K. Rakhmanberdyeva // Chem. Nat. Comp 2004.- Vol. 40.- P. 215-217.

231. Rakhmanberdyeva R.K. Galactomannans from two species of Gleditsia studied by 13C NMR / R.K. Rakhmanberdyeva, M.R. Mirzaeva, D.A. Rakhimov, N.D. Abdullaev // Chem. Nat. Comp.- 1999.- Vol. 35.- P. 498501.

232. Ramberg J.E. Immunomodulatory dietaiy polysaccharides: A systematic review of the literature / J.E. Ramberg, E.D. Nelson, R.A. Sinnott // Nutrit. J.- 2010.- Vol. 9.-art. no. 54.

233. Ramesh H.P. Two-dimensional NMR spectroscopic studies of fenugreek (Trigonella foenum-graecum L.) galactomannan without chemical fragmentation / H.P. Ramesh, K. Yamaki, H. Ono, T. Tsushida // Carbohydr. Polym- 2001.- Vol. 45.- P. 69-77.

234. Ramos-Sanchez M.C. Thermolytical techniques to characterize fungal polysaccharides and bacterial lipopolysaccharides / M.C. Ramos-Sanchez, A. Rodriguez-Torres, J.A. Leal, F.J. Martin-Gil, J. Martin-Gil // Biotechnol. Prog.- 1991.- Vol. 7.- P. 526-533.

235. Ravi Kumar M.N.V. A review of chitin and chitosan applications / M.N.V. Ravi Kumar II React. Fund. Polym.- 2000.- Vol. 46.- P. 1-27.

236. Redgwell R.J. Structural features of cell-wall polysaccharides of onion Allium cepa / R.J. Redgwell, R.R. Selvendran // Carbohydr. Res 1986.-Vol. 157.- P. 183-199.

237. Rhee S.J. A comparative study of analytical methods for alkali-soluble (3-glucan in medicinal mushroom, Chaga (Inonotus obliquus) / S.J. Rhee, S.Y. Cho, K.M. Kim, D.-S. Cha, H.-J. Park // LWT.- 2008.- Vol. 41.- P. 545-549.

238. Ridley B.L. Pectins: Structure, biosynthesis, and oligogalacturonide-related signaling / B.L. Ridley, M.A. O'Neill, D. Mohnen // Phytochemistry.-2001.- Vol. 57.- P. 929-967.

239. Roe J.H. A colorimetric method for the determination of fructose in blood and urine / J.H. Roe II J. Biol. Chem.- 1934.- Vol. 107.- P. 15-22.

240. Roe J.H. A photometric method for the determination of inulin in plasma and urine / J.H. Roe, J.H. Epstein, N.P. Goldstein // J. Biol. Chem.- 1949.-Vol. 178.- P. 839-845.

241. Rowley J.A. Alginate hydrogels as synthetic extracellular matrix materials / J.A. Rowley, G. Madlambayan, D.J. Mooney // Biomaterials- 1999.- Vol. 20.-P. 45-53.

242. Rout D. Chemical analysis of a new (1—>3)-, (1—>6)-branched glucan from an edible mushroom, Pleurotus florida / D. Rout, S. Mondal, I. Chakraborty, M. Pramanik, S.S. Islam // Carbohydr. Res.- 2005.- Vol. 340.-P. 2533-2539

243. Sagdullaev B.T. Lipids and carbohydrates from Althaea nudiflora and A. armeniaca roots / B.T. Sagdullaev, R.Kh. Shakhidoyatov, M.A. Khodzhaeva, T.V. Chernenko, M.T. Turakhozhaev, M.A. Abduazimova // Chem. Nat. Comp.- 2001.- Vol. 37.- P. 208-212.

244. Saito Y. Molecular characterization of the melanin-concentrating-hormone receptor / Y. Saito, H.-P. Nothacker, Z. Wang, S.H.S. Lin, F. Leslie, O. Civelli II Nature.- 1999.- Vol. 400.- P. 265-269.

245. Samuelsen A.B. Characterization of a biologically active arabinogalactan from the leaves of Plantago major L. / A.B. Samuelsen, B.S. Paulsen, J.K. Wold, S.H. Knutsen, H. Yamada // Carbohydr. Polym.- 1998.- Vol. 35.-P. 145-153.

246. Samuelsen A. B. Characterization of a biologically active pectin from Plantago major L. / A. B. Samuelsen, B.S.Paulsen, J.K. Wold, H. Otsuka, H. Kiyohara, H. Yamada, S.H. Knutsen // Carbohydr. Polym- 1996.-Vol. 30.- P. 37-44.

247. Samuelsen A.B. Isolation and partition characterization of biologically active polysaccharides from Plantago major L. / A.B. Samuelsen, B.S. Paulsen, J.K. Wold, H. Otsuka, H. Yamada, T. Espevik // Phytoter. Res-1995.- Vol. 9.- P. 211-218.

248. Sanavova M.Kh. Iris polysaccharides. III. Carbohydrates from Iris pseudacorus / M.Kh. Sanavova, D.A. Rakhimov III Chem. Nat. Comp-2004,- Vol. 40.- P. 83-84.

249. Santos C.N.S. Melanin-based high-throughput screen for L-tyrosine production in Escherichia coli / C.N.S. Santos, G. Stephanopoulos // Appl. Environ. Microbiol.- 2008.- Vol. 74.- P. 1190-1197.

250. Santos-Neves J.C. A novel branched a^-glucan isolated from the basidiocarps of the edible mushroom Pleurotus florida / J.C. Santos-Neves,

251. M.I. Pereira, E.R. Carbonero, A.H.P. Gracher, G. Alquini, P.A.J. Gorin, G.L. Sassaki, M. Iacomini // Carbohydr. Polym.- 2008.- Vol. 73.- P. 309314.

252. Sava V.M. Isolation and characterization of melanic pigments derived from tea and tea polyphenols / V.M. Sava, S. Yang, M. Hong, P. Yang, G.S. Huang // Food Chem.- 2001.- Vol. 73.- P. 177-184.

253. Schepetkin I.A. Botanical polysaccharides: Macrophage immunomodulation and therapeutic potential / I.A. Schepetkin, M.T. Quinn II Int. Immunopharmacol.- 2006.- Vol. 6.- P. 317-333.

254. Schleifer K.H. Peptidoglycan types of bacterial cell walls and their taxonomic implications / K.H. Schleifer, O. Kandler // Bacteriol. Rev.-1972.- Vol.36.- P.407-477.

255. SenGupta U.K. Spectrophotometric studies on amylose-iodine and amylopectin-iodine complexes / U.K. SenGupta, A.K. MuKherjee, K.K. SenGupta // Kolloid-Zeitschr. Zeitschr. Polym.- 1966.- Vol. 208.- P. 32-34.

256. Senni K. Marine polysaccharides: A source of bioactive molecules for cell therapy and tissue engineering / K. Senni, J. Pereira, F. Gueniche, C. Delbarre-Ladrat, C. Sinquin, J. Ratiskol, G. Godeau // Marine Drugs.-2011.-Vol. 9.-P. 1664-1681.

257. Seymour F.R. Fourier-transform, infrared difference-spectrometry for structural analysis of dextrans / F.R. Seymour, R.L. Julian, A. Jeanes, B.L. Lamberts // Carbohydr. Res.- 1980.- Vol. 86.- P. 227-246

258. Seyoum A. Structure-radical scavenging activity relationships of flavonoids / A. Seyoum, K. Asres, F.K. El-Fiky // Phytochemistry- 2006.- Vol. 67.- P. 2058-2070.

259. Shahidullah M. The sensitivity and selectivity of the Seliwanoff test for fructose / M. Shahidullah, S.S.M.A. Khorasani // Anal. Chim. Acta 1972.-Vol. 61.- P. 317-319.

260. Shetty K. Prevention of vitrification associated with in vitro shoot culture of orégano (Origanum vulgare) by Pseudomonas spp. / K. Shetty, O.F.

261. Curtis, R.E. Levin, R. Witkowsky, W. Ang I I J. Plant Physiol.- 1999.- Vol. 147.- P. 447-451.

262. Shi L. A novel water-soluble a-(l—>4)-glucan from the root of Cudrania tricuspidata / L. Shi, Y.-L. Fu, K.-Sh. Chen 11 Fitoterapia- 2007.- Vol. 78.-P. 298-301

263. Shibata N. Structure of fungal cell wall polysaccharides / N. Shibata, Y. Okawa II Jap. J. Med. Mycol.- 2006.- Vol. 47.- P. 179-184.

264. Shimada M. Mice lacking melanin-concentrating hormone are hypophagic and lean / M. Shimada, N.A. Tritos, B.B. Lowell, J.S. Flier, E. Maratos-Flier II Nature.- 1998.- Vol. 396.- P. 670-679.

265. Shimizu N. A novel neutral polysaccharide having activity on the reticuloendothelial system from the root of Glycyrrhiza uralensis / N. Shimizu, M. Tomoda, M. Kanari, R. Gonda, A. Satoh, H. Satoh // Chem. Pharm. Bull.- 1990.- Vol. 38.- P. 3069-3071.

266. Shimizu N. The core structure and immunological activities of glycyrrhizan UA, the main polysaccharide from the root of Glycyrrhiza uralensis / N. Shimizu, M. Tomoda, K. Takada, R. Gonda // Chem. Pharm. Bull 1992.-Vol. 40.- P. 2125-2128.

267. Skrzypczak-Pietraszek E. Polysaccharides from Melittis melissophyllum L. herb and callus/E. Skrzypczak-Pietraszek, A. Hensel //Pharmazie- 2000.-Vol. 55.- P. 768-771.

268. Smirnova N.I. Fractional isolation and study of the structure of galactomannan from sophora (Styphnolobium japonicum) seeds / N.I. Smirnova, N.M. Mestechkina, V.D. Sherbukhin // Appl. Biochem. Microbiol.- 2004.- Vol. 40.- P. 517-521.

269. Smirnova N.I. Localization of acetyl groups in the macromolecule of glucomannan obtained from roots of Eremurus zangezuricus / N.I. Smirnova, N.M. Mestechkina, V.D. Shcherbukhin // Appl. Biochem. Microbiol.- 2002.- Vol. 38.- P. 467-469.

270. Song J.-Y. Immunomodulatory activity of protein-bound polysaccharide extracted from Chelidonium majus / J.-Y. Song, H.-O. Yang, S.-N. Pyo, I.

271. S. Jung, S.-Y. Yi, Y.-S. Yun II Arch. Pharm. Res.- 2002.- Vol. 25.- P. 158164.

272. Srivastava M. Seed galactomannans: An overview / M. Srivastava, V.P. Kapoor// Chem. Biodiv.- 2005.- Vol. 2.- P. 295-317.

273. Stein G.M. Influence of polysaccharides from Viscum album L. on human lymphocytes, monocytes and granulocytes in vitro / G.M. Stein, U. Edlund, U. Pfiiller, A. Büssing, M. Schietzel // Anticancer Res.- 1999.- Vol. 19.- P. 3907-3914.

274. Steinhorn G. Isolation and characterisation of arabinogalactan-proteins from New Zealand kanuka honey / G. Steinhorn, I.M. Sims, S.M. Carnachan, A.J. Carr, R. Schlothauer // Food Chem.- 2011.- Vol. 128.- P. 949-956.

275. Stevenson T.T. Chemical methods for the analysis of sulphated galactans from red algae / T.T. Stevenson, R.H. Furneaux // Carbohydr. Res 1991.-Vol.210.- P. 277-298.

276. Stone B.A., Clarke A.E. Chemistry and biology of (1^3)-ß-glucans. Victoria: La Trobe University Press. 2009. P. 81-85

277. Sun Y. Structure and biological activities of the polysaccharides from the leaves, roots and fruits of Panax ginseng C.A. Meyer: An overview / Y. Sun // Carbohydr. Polym.- 2011.- Vol. 85.- P. 490-499.

278. Suryanarayanan T.S. Characterization of the melanin pigment of a cosmopolitan fungal endophyte / T.S. Suryanarayanan, J.P. Ravishankar, G. Venkatesan, Th.S. Murali II My col. Res.- 2004.- Vol. 108.- P. 974-978.

279. Suzuki T. Mechanism of the activation of calcium transport by DFAIII / T. Suzuki, H. Hara // Abstr. Vint. Fructan Symp.- Cuba, 2004.- P. 122.

280. Tan M. Isolation and characterization of pigment from Cinnamomum burmanniV peel / M. Tan, D. Gan, L. Wei, Y. Pan, S. Tang, H. Wang // Food Res. Int.- 2011.- Vol. 44.- P. 2289-2294.

281. Tharanathan R.N. Structural features of an L-arabinan derived from mustard seed meal / R.N. Tharanathan, U. Ramadas Bhat, G. Murali

282. Krishna, S.V. Paramahans // Phytochemistry.- 1985.- Vol. 24.- P. 27222723.

283. Thaysen A.C. On the nature of the carbohydrates found in the Jerusalem artichoke / A.C. Thaysen, W.E. Backer, B.M. Green // Biochem. J- 1929.-Vol. 23.- P.444-455.

284. Tomoda M. Plant mucilages. XVI. Isolation and characterization of a mucous polysaccharide, 'Althaea-mucilage O1 from the roots of Althaea officinalis / M. Tomoda, S. Kaneko, M. Ebashi, T. Nagakura // Chem. Pharm. Bull- 1977.- Vol. 25.- P. 1357-1362.

285. Tomoda M. Plant mucilages. XXIV. The structural features of althaea-mucilage O, a reprensentative mucous polysaccharide from the roots of Althaea officinalis / M. Tomoda, N. Satoh, K. Shimada // Chem. Pharm. Bull- 1980,- Vol. 28.- P. 824-830.

286. Tsai H.-F. A developmentally regulated gene cluster involved in conidial pigment biosynthesis in Aspergillus fumigatus / H.-F. Tsai, M.H. Wheeler, Y.C. Chang, KJ. Kwon-Chung // J. Bacteriol.- 1999.- Vol. 181.- P. 64696477.

287. Tu Y. Physicochemical characterization and antioxidant activity of melanin from the muscles of Taihe Black-bone silky fowl (Gallus gallus domesticus Brisson) / Y. Tu, Y. Sun, Y. Tian, M. Xie, J. Chen // Food Chem.- 2009.-Vol. 114.-P. 1345-1350.

288. Turdumambetov K. Glucofructans from Arctium tomentosum roots / K. Turdumambetov, G.A. Bakirov, D.A. Rakhimov // Chem. Nat. Comp-2004.- Vol. 40.- P. 211-214.

289. Usov A.I. Polysaccharides of algae. 48. Polysaccharide composition of several calcareous red algae: Isolation of alginate from Corallina pilulifera

290. P et R (Rhodophyta, Corallinaceae) / A.I. Usov, M.I. Bilan, N.G. Klochkova U Bot. Marina.- 1995.- Vol. 38.- P. 43-52.

291. Valverde P. Variants of the melanocyte-stimulating hormone receptor gene are associated with red hair and fair skin in humans / P. Valverde, E. Healy, I. Jackson, J.L. Rees, A.J. Thody // Nature Gen.- 1995.- Vol. 11.- P. 328330.

292. Van Soest P.J. Methods for dietary fiber, neutral detergent fiber, and nonstarch polysaccharides in relation to animal nutrition / P.J. Van Soest, J.B. Robertson, B.A. Lewis II J. Dairy Sei.- 1991.- Vol. 74.- P.3583-3597.

293. Varljen J. Structural analysis of a rhamnoarabinogalactan and arabinogalactans with immuno-stimulating activity from Calendula officinalis / J. Varljen, A. Liptak, H. Wagner // Phytochemistry- 1989.-Vol. 28.- P. 2379-2383.

294. Wagner H. Immunologically active polysaccharides of Echinacea purpurea cell cultures / H. Wagner, H. Stuppner, W. Schäfer, M. Zenk // Phytochemistry.- 1988.-Vol. 27.-P. 119-126.

295. Wagner H. Biologisch aktive Verbindungen aun dem wasserextrakt von Urtica dioica IH. Wagner, F. Willer, B. Kreher II Planta Med.- 1989.- Vol. 55.- P. 452-454.

296. Wang G. Purification and characterization of water soluble polysaccharide JS1 from Hippophae rhamnoides / G. Wang, Z. Liang, L. Zhang // Chin. Pharm. J.- 1999.- Vol. 34.- P. 229-231.

297. Wang H. Isolation and characterization of melanin from Osmanthus fragrans' seeds / H. Wang, Y. Pan, X. Tang, Z. Huang // LWT.- 2006.- Vol. 39.- P. 496-502.

298. Wang Y.P. Progress of pharmacological research on Angelica polysaccharide / Y.P. Wang // Chin. J. Modern Develop. Trad. Med.-1991.- Vol. 11.-P. 61-63.

299. Warrand J. Flax (Linum usitatissimum) seed cake: A potential source of high molecular weight arabinoxylans / J. Warrand, P. Michaud, L. Picton, G. Muller, B. Courtois, R. Ralainirina, J. Courtois // J. Agric. Food Chem-2005.- Vol. 53.- P. 1449-1459.

300. Warrand J. Structural investigations of the neutral polysaccharide of Linum usitatissimum L. seeds mucilage / J. Warrand, P. Michaud, L. Picton, G. Muller, B. Courtois, R. Ralainirina, J. Courtois // Int. J. Biol. MacromoL-2005.- Vol. 35.-P. 121-125.

301. Wasser S.P. Medicinal properties of substances occurring in higher Basidiomycetes mushrooms: current perspective (review) / S.P. Wasser // Int. J. Med. Mushrooms.- 1999.- Vol. 1.- P. 31-62.

302. Willfor S. Polysaccharides in some industrially important hardwood species / S. Willfor, A. Sundberg, A. Pranovich, B. Holmbom // Wood Sci. Technol.- 2005.- Vol. 39.- P. 601-617.

303. Wold J.K. The water-soluble polysaccharide of opium poppy (Papaver somniferum L.) / J.K. Wold, B. Smestad, R. Winsnes, D. Resser // Acta Chem. Scand.- 1970.- Vol. 24.- P. 1262-1270.

304. Wu Y. Anti-complementary effect of polysacchride B3-PS1 in Herba Scutellariae Barbatae (Scutellaria barbata) / Y. Wu, D.-F. Chen // Immunopharmacol. Immunotoxicol.- 2009.- Vol. 31.- P. 696-701.

305. Xie G. Immunomodulatory activity of acidic polysaccharides isolated from Tanacetum vulgare L. / G. Xie, I.A. Schepetkin, M.T. Quinn // Int. Immunopharmacol 2007.- Vol. 7.- P. 1639-1650.

306. Xu H.-X. Isolation and characterization of an anti-HSV polysaccharide from Prunella vulgaris / H.-X. Xu, S.H.S. Lee, S.F. Lee, R.L. White, J. Blay // Antivir. Res.- 1999.- Vol. 44.- P. 43-54.

307. Yagi A. Structure determination of polysaccharides in Aloe saponaria (Hill.)Haw. (Liliaceae)/ A. Yagi, K. Hamada, K. Mihashi// J. Pharm. Sci-1984.- Vol. 73.- P. 62-65.

308. Yagi A. Aloe mannan, polysaccharide, from Aloe arborescens var. natalensis / A. Yagi, K. Makino, I. Nishioka, Y. Kuchino // Planta Med-1977.-Vol. 31.-P. 17-20.

309. Yakovlev A.I. Polysaccharides of the inflorescences of Tilia cordata / A.I. Yakovlev // Chem. Nat. Comp.- 1985.- Vol. 21.- P. 114.

310. Yakovlev A.I. Dynamic of the accumulation of polysaccharides in Aronia melanocarpa / A.I. Yakovlev, E.G. Martynov // Chem. Nat. Comp 1979.-Vol. 15.-P. 69.

311. Yapo B.M. Pectic substances: From simple pectic polysaccharides to complex pectins A new hypothetical model / B.M. Yapo // Carbohydr. Polym - 2011.- Vol. 86.- P. 373-385.

312. Yoon S.-J. Physiological functions of partially hydrolyzed guar gum / S.-J. Yoon, D.-C. Chu, L.R. Juneja // J. Clin. Biochem. Nutr.- 2006.- Vol. 39.- P. 134-144.

313. Yunuskhodzhaeva N.A. Polysaccharide composition of Polygonum hydropiper and P. aviculare / N.A. Yunuskhodzhaeva, V.N. Abdullabekova, A.D. Kurbanova // Chem. Nat. Comp.- 2006.- Vol. 42.- P. 600-601.

314. Zabaznaya E.I. Polysaccharides of Viola tricolor / E.I. Zabaznaya // Chem. Nat. Comp.- 1985.- Vol. 21.- P. 113.

315. Zhang L. Chemical composition and antitumor activity of polysaccharide from Inonotus obliquus / L. Zhang, C. Fan, S. Liu, Z. Zang, L. Jiao, L. Zhang II J. Med. Plant Res.- 2011.- Vol. 5.- P. 1251-1260

316. Zhauynbaeva K.S. Polysaccharides from seeds of higher plants. Watersoluble polysaccharides from plant seeds of the family Apiaceae /K.S.

317. Zhauynbaeva, D.A. Rakhimov, A.A. Nigmatullaev // Chem. Nat. Comp-2010.- Vol. 46.- P. 783-784.

318. Zhong S. Advances in research of polysaccharides in Cordyceps species / S. Zhong, H. Pan, L. Fan, G. Lv, Y. Wu, B. Parmeswaran, A. Pandey, C.R. Soccol II Food Technol. Biotechnol.- 2009.- Vol. 47.- P. 304-312.

319. Zhu H. Isolation and characterization of an anti-complementary protein-bound polysaccharide from the stem barks of Eucommia ulmoides / H. Zhu, Y. Zhang, J. Zhang, D. Chen // Int. Immunopharmacol.- 2008.- Vol. 8,- P. 1222-1230.

320. Zohuriaan M.J. Thermal studies on natural and modified gums / M.J. Zohuriaan, F. Shokrolahi // Polym. Test.- 2004.- Vol. 23.- P. 575-579.