Автореферат и диссертация по медицине (14.00.32) на тему:Сочетанное воздействие химического и радиационного факторов низкой интенсивности на цитогенетические и биохимические реакции организма экспериментальных животных

ДИССЕРТАЦИЯ
Сочетанное воздействие химического и радиационного факторов низкой интенсивности на цитогенетические и биохимические реакции организма экспериментальных животных - диссертация, тема по медицине
АВТОРЕФЕРАТ
Сочетанное воздействие химического и радиационного факторов низкой интенсивности на цитогенетические и биохимические реакции организма экспериментальных животных - тема автореферата по медицине
Баранцева, Мария Юрьевна Москва 2007 г.
Ученая степень
кандидата медицинских наук
ВАК РФ
14.00.32
 
 

Автореферат диссертации по медицине на тему Сочетанное воздействие химического и радиационного факторов низкой интенсивности на цитогенетические и биохимические реакции организма экспериментальных животных

I [а правах рукописи

БЛРЛНЦЕВЛ МАРИЯ ЮРЬЕВНА

СОЧЕТАННОЕ ВОЗДЕЙСТВИЕ ХИМИЧЕСКОГО И РАДИАЦИОННОГО ФАКТОРОВ НИЗКОИ ИНТЕНСИВНОСТИ НА ЦИТОГЕНЕ1ИЧЕСКИЕ И БИОХИМИЧЕСКИЕ РЕАКЦИИ ОРГАНИЗМА ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫХ ЖИВОТНЫХ

14.00 32 - авиационная, космическая и морская медицина

Автореферат диссер тации на соискание ученой степени кандидата медицинских паук

МОСКВА-2007

Работа выполнена в Государственном научном центре Российской Федерации - Институте медико-бнологических проблем Российской академии наук.

Научные руководители:

доктор медицинских наук Мухамедиева Лапа Низамовна доктор медицинских наук Федоренко Корне Сергеевич

Официальные оппоненты:

доктор биологических паук III гемберг Андреи Сергеевич

доктор медицинских наук, профессор Бородавко Виктор Константинович

Ведущая организация: Государственный научно-исследовательский испытательный институт военной медицины МО РФ, г. Москва

Защита состоится «¿¿г; 2007 г в /о — _ на заседании

диссертационного Совета К 002. 111. 01 в Государственном научном центре Российской Федерации-Институте медико-биологических проблем РАН (123007, Москва, Хорошевское шоссе, 76-а).

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке Государственного научного центра Российской Федерации - Института медико-биологических проблем РАН.

Автореферат разослан "/Р г.

Ученый секретарь диссертационного совета

кандидат биологических наук

И.П. Пономарева

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность проблемы. В условиях длительных пилотируемых космических полетов участники экспедиции подвергаются сочетаиному воздействию химического и радиационного факторов низкой интенсивности. На современном этапе развития пилотируемой космонавтики при подготовке к длительным межпланетным экспедициям актуальность изучения сочетанного влияния на организм человека химического и радиационного факторов стала одной из основных проблем медико-биологического обеспечения безопасности человека. В связи с этим, для сохранения здоровья и работоспособности космонавтов, как в период осуществления профессиональной деятельности, и, особенно важно, в отдаленные сроки после её завершения, необходимо изучение физиологических возможностей организма на донозологическом уровне при длительном сочетанном воздействии низких доз ионизирующего излучения и комплекса химических веществ в концентрациях, характерных для воздушной среды пилотируемых космических аппаратов. Учитывая, что дальнейшее освоение космического пространства будет идти по пути удлинения сроков пребывания человека на космических орбитах, проблема сочетанного воздействия исследуемых факторов космического полета приобретает особую актуальность.

Исследования сочетанного действия химического и радиационного факторов низкой интенсивности на организм человека и животных в основном проводились в районах, подвергшихся химическому и радиационному загрязнению окружающей среды вследствие радиационных аварий (авария на чернобыльской атомной электростанции), химических выбросов в атмосферу при работе производственных предприятий. Сочетанное радиационно-хнмическое воздействие сопровождалось преимущественно эффектами синергизма и характеризовалось более выраженными метаболическими и цитогенетическими нарушениями в организме животных в отличие от изолированного воздействия повреждающих факторов [А.Ф. Маленченко, 1989; С.И. Заичкина, О.М. Розанова, Г.Ф. Аптикаева, 2001; С.Д. Иванов, В.В. Семенов, Е.Г. Кованько, 2002; W. Burkart, G.L. Finch, T. Jung, 1997; J. Lubin, 1998]. Проведенные исследования подтверждают необходимость изучения биологических эффектов при одновременном воздействии на организм химического и радиационного факторов низкой интенсивности, характерных для длительных пилотируемых космических полетов.

В настоящее время проведено большое количество экспериментальных исследований по моделированию изолированного воздействия химического и радиационного факторов космического полета на организм человека и животных [В.П. Савина, 1986; С. Каландаров, В.П. Бычков, В.А. Коршунов и др.,1987; Л.Н. Мухамедиева, Е.И. Никитин 2001; В.В. Цетлин, Е.А. Дешевая, Н.Д. Новикова, 2002; Л.Н. Мухамедиева, 2003; C.B. Ворожцова, Б.С. Федоренко, В.В.

Цетлин, 2004]. Однако данные исследования проводились без учета модифицирующего влияния на организм химических веществ и ионизирующего излучения при сочетанном их воздействии.

Для изучения биологических эффектов низких доз ионизирующего излучения в опубликованных работах в качестве низких доз часто используется диапазон от 1 до 50 сГр. В свою очередь суммарная обобщенная доза, получаемая космонавтами при осуществлении длительных пилотируемых полетов от детерминированных источников (галактические космические лучи и радиационные пояса земли) в период максимума солнечной активности по расчетам ряда авторов [A.B. Шафнркин, В.П. Бенедиктова, A.B. Коломенский и др., 1998] составляет около 6 бэр в год, а при межпланетных полетах при толщине защиты 10 г/см2, возможно, будет достигать 23 бэр в год. Согласно методическим указаниям по ограничению облучения космонавтов при околоземных космических полетах основной предел эквивалентной дозы космонавта за космический полет продолжительностью до 1 года не должен превышать

0.5 Зв. Следовательно, при моделировании сочетанного воздействия химического и радиационного факторов актуально использование доз ионизирующего излучения, которые бы не превышали 50 сГр и были наиболее приближены к реальным условиям пилотируемых полетов.

Для изучения сочетанного радиационно-химического воздействия на организм были выбраны химические вещества, которые вносят основной вклад (90-95 %) в суммарную загрязненность воздушной среды и входят в приоритетный перечень веществ определяющих качество воздушной среды пилотируемых космических аппаратов (ГОСТ Р50 804 и SSP 50 260) [Л.Н. Мухамедиева, 2003].

Для оценки биологических эффектов химического и радиационного факторов низкой интенсивности, по данным ряда отечественных и зарубежных авторов, актуально использование цитогенетических и биохимических показателей [Л.Н. Мухамедиева, Е.И. Никитин, 2001; Л.Н. Мухамедиева, 2003; C.B. Ворожцова, A.B. Шафиркин, Б.С.Федоренко, 2006; N.M. Bil'ko, N.F. Starodub, V.G. Bebeshko, 1996; N.M. Gulaya, V.M. Margitich, A.A. Chumak, 2000].

Цель исследований. Целью исследований являлось изучение сочетанного воздействия химического и радиационного факторов низкой интенсивности на цитогенетические и биохимические реакции организма экспериментальных животных.

Для достижения поставленной цели были сформулированы следующие задачи:

1. Проведение сравнительной оценки биохимических показателей крови, метаболического статуса эритроцитов, гистохимических исследований липидов ткани легкого и выявление из них наиболее информативных показателей для токсикологической оценки комбинированного

воздействия химических веществ в низких концентрациях (ПДКпка) с однонаправленным биоэффектом на организм животных.

2. Изучение влияния комбинированного воздействия изоэффектпвных концентраций химических веществ (ацетон, ацетальдегид, этанол, аммиак) на характер и динамику хромосомных аберраций в кариоцнтах костного мозга, биохимические изменения периферической крови и показатели метаболизма эритроцитов.

3. Изучение биологических эффектов в организме экспериментальных животных при многократном воздействии гамма-излучения в суммарной дозе 30 сГр на основании цитогенетических и биохимических исследований.

4. Установление изменений динамики цитогенетических, биохимических и гематологических показателей при сочетанием влиянии химического и радиационного факторов низкой интенсивности.

Научная нопнзпа. Впервые при исследовании сочетаниого воздействия химического и радиационного факторов низкой интенсивности на хромосомный аппарат клеток костного мозга и метаболизм в эритроцитах лабораторных животных в дозах и концентрациях, характерных для среды обитания пилотируемых орбитальных станций показано, что совместное воздействие химических веществ в низких концентрациях и гамма-излучения в низких дозах оказывает эффект частичной суммации по сравнению с изолированным влиянием исследуемых факторов.

Практическая и научная значимость работы. Результаты исследований сочетанного радиационного и химического воздействия позволят разработать медико-технические требования к системам жизнеобеспечения направленные на обеспечение безопасности экипажа при осуществлении длительных космических полетов, осуществляемых в настоящее время и в перспективе при полете к Марсу. Результаты сравнительной характеристики динамики показателей цитогенетических нарушений и метаболизма эритроцитов показали, что изменения метаболического статуса эритроцитов могут быть использованы в качестве тест - маркера для оценки состояния здоровья космонавтов при осуществлении длительных межпланетных пилотируемых полетов.

Основные положения, выносимые на защиту: 1. Длительное воздействие комплекса химических веществ с однонаправленным биоэффектом в изоэффективных концентрациях (соответствующих ПДКпка) оказывает более выраженное нарушение деления ядросодержащих клеток костного мозга и сопровождается отсутствием восстановления функциональных сдвигов метаболизма эритроцитов после окончания воздействия по сравнению с влиянием гамма-излучения в суммарной дозе 30 сГр.

2. При сочетанном радиационно-химическом воздействии на организм животных биоэффект химических веществ в низких концентрациях является доминирующим по результатам анализа видов хромосомных аберраций в кариоцитах костного мозга.

3. Сочетанное воздействие гамма-излучения в суммарной дозе 30 сГр и комплекса изоэффективных концентраций химических веществ в низких концентрациях на организм экспериментальных животных приводит к частичной суммации биологических эффектов.

Апробация работы. Основные результаты и положения диссертационной работы доложены и обсуждены на: 9-й Международной конференции «Системный анализ и управление», Крым, Евпатория, 2004 г.; 4-й Молодежной конференции к 10-летию со дня окончания сверхдлнтельного космического полета врача - космонавта Полякова В.В., Москва, 2005 г.; 5-й конференции молодых ученых и специалистов, аспирантов и студентов, посвященной Дню космонавтики, Москва, 2006 г.; 13-й конференции «Космическая биология и авиакосмическая медицина» к 45-летию первого полета человека в космос, Москва, 2006 г.; 4-й Международной конференции «Авиация и космонавтика-2005», Москва, 2005 г.

По теме диссертации опубликовано 8 научных работ.

Диссертация апробирована на заседании секции по «Космической медицине» Ученого совета ГНЦ РФ - ИМБП PAIL

Реализация полученных результатов. Результаты исследований по комбинированному воздействию химических веществ с однонаправленным биоэффектом в конценграциях на уровне ПДКпка использованы при разработке международного нормативного документа для МКС: «Medical Operation Requirements Document Revision В (MORD)» SSP 50260 Air Qualiti, 2004 и международного программного документа для МКС: International Space Station Program «Basic Provisions on Crew Actions in the Event of a Toxic Release on the International Space Station» SSP 50653-01, 2004.

Объем и структура диссертации. Диссертация состоит из введения, 4 глав (обзор литературы, материалы и методы исследований, результаты проведенных исследований, обсуждение результатов), заключения, выводов, списка литературы, приложения и содержит 128 машинописных страниц, включающих 34 таблицы, 5 рисунков. Список литературы включает 206 работ, из них 156 отечественных и 50 зарубежных.

СОДЕРЖАНИЕ РАБОТЫ Материалы и методы исследований

В экспериментах использовано два вида мелких лабораторных животных: 300 половозрелых мышей-самцов массой 20-23 г линии FI(CBA><C57ßL6) и 64 крысы-самца массой

180-220 г линии Wistar. Животных содержали на стандартном пищевом рационе с двухнедельным карантином в условиях вивария.

Опытная группа животных состояла из 180 мышей и 40 крыс. Кроме того, 120 мышей и 24 крысы составляли группу виварного и гермокамерного контролен.

Исследования на животных при моделировании длительного сочетанного воздействия комплекса химических веществ и ионизирующего излучения низкой интенсивности проведены в 4 сериях экспериментов продолжительностью от 30 до 60 суток:

Основные направления и объем экспериментальных исследований представлены в табл. 1.

Методика проведения экспериментов.

Исследования проводили на испытательном стенде для санитарно-химических и токсикологических исследований (УМБИ-1) Государственного Научного Центра РФ -Институт медико-биологических проблем РАН. Экспериментальный стенд (объемом 12 м3) рассчитан на длительное пребывание животных и оснащен автономными системами жизнеобеспечения, которые используются в пилотируемых космических аппаратах (ПКА). С помощью автономной системы очистки и регенерации воздуха поддерживались концентрации основных газов (кислород, углекислый газ), химических примесей в пределах ПДК для герметичных помещений, а также заданные параметры температуры и влажности воздуха.

Концентрацию кислорода (21 ± 2%), углекислого газа (0,05-0,2%), температуру (24 ± 2°С) и относительную влажность воздуха (65 ± 3%) контролировали круглосуточно. Концентрация аммиака в воздухе составляла 0,05-2,2 мг/м3.

Затравочная смесь состояла из ацетона, ацетальдегида и этанола. Концентрации этих веществ в термокамере в течение всего экспериментального периода колебались в пределах 0,67-1,4; 0,86-1,75; 3,78-9,91 (мг/м3) соответственно и не превышали ПДКпка.

Затравку химической смесью проводили непрерывно в течение экспериментального периода. Дозирование и поддержание постоянных концентраций ацетона, ацетальдегида, этанола в воздухе экспериментальной камеры осуществлялось методом диффузии через пористые полимерные материалы. Дозатор состоит из герметичного металлического стакана, объем которого на 2/3 заполнен стекловолокном. Так как воздух подавался в дозатор, а, следовательно, и выходил из него с постоянной скоростью, то вымывание вещества с поверхности стекловолокна происходило также с постоянной скоростью. Поэтому количество вещества, поступающего в термокамеру, было прямо пропорционально количеству воздуха, подаваемого из дозатора, и времени его дозирования.

Временная зависимость определялась в модельных экспериментах при отработке методики создания и поддержания заданных концентраций ацетона, ацетальдегида, аммиака, этанола.

Таблица 1.

Объем и структура экспериментальных исследований

Виды воздействия Длительность экспериментов, сутки Виды и кол-во животных Исследования костного мозга Биохимические исследования (кол-во проб плазмы крови) Метаболизм эритроцитов (кол-во проб крови) ~истохимическис исследования ткани легкого (кол-во образцов) Гематологические исследования (кол-во образцов крови)

кол-во анафаз (ХА) кол-во образцов костного мозга (кариоциты)

Комбинированное действие химических веществ (ПДКпка) 30 крысы (линии Вистар) 64 64 64 64

Комбинированное действие химических веществ (ПДКпка) 30 мыши Р1(СВА*С 57ВЬ6) 100 2148 100 50 31 100

Гамма-излучение (ЗОсГр) 30 мыши Р1(СВА*С 57ВЬ6) 100 1984 100 32 18 100

Сочетанное действие химических веществ и гамма-излучения 60 мыши РЦСВАхС 57ВЬ6) 100 1849 100 46 15 100

Общее количество животных: крысы - 64, мыши - 300

Общее количество анализов 5981 | 300 192 64 64 364

Метод обеспечивал в течение длительных экспериментов стабильность заданных концентраций химических веществ в воздухе термокамеры (ошибка измерения составляла ±10%).

Содержание в термокамере ацетона, ацетальдегида и этанола и аммиака определяли 1 раз в сутки. Предварительно отбирали пробы воздуха с помощью газового шприца из термокамеры. Полученные газовые пробы вводили в набивные разделительные колонки газового хроматографа. Анализ проб воздуха проводили методом газовой хроматографии (газовые хроматографы - Хьюлетт-Паккард, модели НР 58890 и Вариан-Аэрограф, модели 2860). Расшифровку хромагограмм, идентификацию органических веществ и количественную оценку их в анализируемых пробах проводили с использованием компьютерной техники. Для оперативного анализа аммиака и окиси углерода использовали линейно-колористический метод (индикаторные трубки фирмы «Dreger»).

Облучение мышей низкими дозами гамма-излучения проводили в лаборатории радиобиологии тяжелых ионов в Дубне. Животных подвергали общему равномерному гамма-облучению на установке РХ-у-30 с источником излучения 60СО, Мощность дозы составляла 0,32 сГр/мин, длительность экспозиции - 3 мин. За это время животные получали дозу ~ 1,0 сГр ежедневно. Суммарная доза облучения за 30 дней составила ~ 30,0 сГр.

Исследование сочетанного воздействия комплекса химических веществ в концентрациях, соответствующих ПДКпка и гамма-излучения в суммарной дозе 30 сГр проведено в 60-суточном эксперименте. После 30-ти суточного воздействия комплекса химических веществ животных подвергали в течение 30 суток гамма-облучению в суммарной дозе 30 сГр.

Мышей забивали методом цервикальной дислокации. Забой животных производили на 10, 20, 30 сутки экспериментального периода и на 14, 30 сутки периода восстановления. В те же сроки забивали животных контрольной группы, не подвергавшихся облучению и химическому воздействию.

Исследования костного мозга. Определение общего количества ядросодержащих клеток костного мозга проводилось по стандартной методике [ХМ. Матг, 1957]. После извлечения бедренной кости её помещали в стаканчик емкостью 50 см 3, содержащий 8 см3 3% раствора ледяной уксусной кислоты, слегка подкрашенной метиленовым синим. Кость мелко дробили ножницами. Образовавшую эмульсию сливали в пробирку емкостью 20 см 3. Подсчет общего количества ядросодержащих клеток проводили в камере Горяева.

Анализ количества клеток костного мозга с хромосомными аберрациями в виде мостов и фрагментов проводили с использованием анафазного метода [Г.П. Груздев, 1968].

Гидролиз мазков костного мозга осуществляли с помощью водяной бани в 1-нормальном растворе соляной кислоты при температуре 55-54°С. Окраску препаратов для цитогенетического исследования проводили с помощью 0,05% раствора метиленового синего.

Биохшшческие исследования проводили в гепаринизированной плазме крови животных, используя стандартные коммерческие наборы производства фирмы "DiaSys" (Германия). Определяли активность аспартатаминотрансферазы (ACT), аланинаминотрансферазы (AJIT), креатинфосфокиназы (КФК), лактатдегидрогеназы (ЛДГ), альфа-

тндроксибутиратдегидрогеназы (ОБДГ), щелочной фосфатазы (ЩФ), холинэстеразы (ХЭ), амилазы, а также концентрацию глюкозы, холестерина, триглинерндов, креатишша, мочевины, мочевой кислоты, общего белка и альбумина. Общий билирубин измеряли наборами фирмы "Corniay" (Польша) на биохимическом автоанализаторе "Targa ВТ 3000" (Италия). Малоновый диальдегид определяли методом [К. Yagi, 1976] на спектрофлуориметре модели 650-60 фирмы "Hitachi" (Япония), активность каталазы - методом [М.А. Королюк и соавт.,1988] на спектофотометре "Beckman DU 530" (США). Активность алкогольдегидрогеназы определяли посредством оптического теста Варбурга, используя этанол в качестве субстрата. Плазму крови в каждой пробе суммировали от 4 мышей [A.A. Маркин, O.A. Журавлева, 2006].

Гистохимические исследования ткани легкого крыс на жирно-кислотный состав и общее содержание липидов. Фракции липидов экстрагировали из 0,1 мг ткани с помощью перегнанных органических растворителей - изопропилового спирта и хлороформа. Жирно-кислотный состав липидов определяли газохроматографическим методом на газовом хроматографе "Цвет-110" после высушивания экстрактов липидов в токе азота и последующего метилирования с помощью 12% раствора гидроокиси тетраметиламмония в смеси метанол-изопропанол (1:1) и йодистого метила [Н.М. Вату ля, В.П. Найдина ,1980].

Гематологические исследования содержания гемоглобина и форменных элементов крови проводили по общепринятым методикам [Л.В. Козловская, А.Ю. Николаев, 1984] с использованием прибора «Целлоскоп-134» фирмы «Medata».

Метаболизм эритроцитов оценивали по содержанию аденозинтрифосфорной кислоты (АТФ), лактата, восстановленного глутатиопа (gSH), активности глюкозо-6-фоефатдегидрогеназы (Г6ФДГ), лактатдегидрогеназы (ЛДГ) и гексокиназы (ГК) спектрофото.метрическими методами [E.M.D. Beutler, 1971]; [С.М. Иванова, О.И. Лабецкая, 2006].

Статистическую обработку полученных данных осуществляли с использованием t-критерия Стьюдента, корреляционного и дисперсионного анализа и пакетов программ Statgraf и Excel [В.Ю. Урбах, 1975]. Различия считали достоверными при Р<0,05.

Корреляционный анализ проводили с использованием коэффициента корреляции методом «Зет» Фишера. Коэффициент корреляции считали достоверным при г>г к|,„т (Р=0,005). Исключение отдельных значений, не входящих в генеральную совокупность выборки, производили по критерию Dixon [Л. Закс, 1976].

Результаты исследований и их обсуждение Биохимические и гистохимические показатели при комбинированном воздействии химических веществ в низких концентрациях на организм лабораторных животных.

В данной главе приведены результаты исследований по определению наиболее информативных показателей, которые могут быть использованы для адекватной оценки влияния на организм смеси химических веществ с однонаправленным биоэффектом в концентрациях на уровне 1-1,5 ПДКпка.

Непрерывное 30 суточное воздействие смеси химических веществ не оказало влияния на величину таких интегральных показателей состояния организма животных, как гемоглобин, количество эритроцитов, массу тела, функциональное состояние печени и миокарда, а также на общее содержание и жирно-кислотный состав липидов ткани легкого экспериментальных животных.

Прирост массы тела животных составил в среднем 47,0±2,4 г (от 180 до 220 г), величина гемоглобина крови не изменялась и находилась в пределах 156,6 - 160,0 г/л на протяжении всего экспериментального периода.

Анализ комплекса биохимических показателей при токсикологической оценке комбинированного воздействия химических веществ в ПДКпка показал высокую чувствительность метаболического статуса эритроцитов крови экспериментальных животных (крыс) в ответ на воздействие повреждающего фактора.

Воздействие используемого комплекса химических веществ приводит к компенсаторным изменениям метаболических параметров в эритроцитах с тенденцией к повышению энергообразующих процессов в организме животных и нормализацией метаболических параметров в эритроцитах к 14 суткам периода восстановления [В.В. Поляков, С.М. Иванова, В.Б. Носков, 1998].

Влияние комбинированного воздействия химических eeujecme в низких концентрациях на организм экспериментальных животных.

Длительное комбинированное воздействие смеси химических веществ в концентрациях на уровне ПДКпка не оказало влияния на массу тела, а также на массу органов иммунной и репродуктивной систем экспериментальных животных (мышей). Прирост массы тела животных на протяжении всего экспериментального периода составил в среднем 5,0±0,6 (24,0 - 29,0 г) и 4,1±0,5 г (25,0-29,0) в экспериментальной и контрольной группах соответственно.

Для оценки количества структурных повреждений хромосом в кариоцнтах костного мозга проанализировано 2148 клеток на стадии деления поздней анафазы - ранней телофазы. Установлено, что длительное комбинированное воздействие химических веществ приводит к

повышению количества хромосомных аберрации в кариоцитах костного мозга до 2.8 % (Р<0,01) (табл. 2). Важно отметить, что увеличение количества хромосомных аберрации происходили главным образом за счет фрагментов (96,4 %) (рис. 1), Коли честно мостов составляло лишь 3,6 %. Увеличение содержания аберрантных клеток с фрагментами но сравнению с количеством клеток с мостами указывает на менее выраженную способность хромосом к воссоединению [Б,С. Федореi¡ко. Л.8 Ершов, Н.П. Щербак и др . 2002] Через 14 суток после прекращения воздействия смеси химических веществ, на фоне гибели и последующей элиминации поврежденных клеток из организма наблюдалось снижение частоты аберрантных митозов до 1.9 %, статистически значимо не отличаясь от контрольных данных

Таблица 2.

Изменение числа хромосомных аберраций в клетках костного мозга мышей при длительном комбинированном воздействии смеси химических веществ в концентрациях на уровне ПДКпка,

Аберрантные Количество Количество и виды Сроки исследования.

митозы, % проанализированных хромосомных поломок сутки

анафаз мосты фрагменты

! ,540,4 324 - 5 10

2,8±0,4* 392 - ¡1 20

2,7±D.2* 257 I 6 30

1 ,9±0.5 290 5 14 еуткн восстановительного периода

1,2*0.3 445 3 3 И и парный контроль

0,9±0,5 440 2 3 Гермокамерный контроль

: - Р<0.05

Радиационное Химическое

воздействие воздействие

Сочетай ное радиацнонно-химическое воздействие ^ 8.8 %

91,2%

% %

- хромосомные аберрации (мосты) !,■ Ц- хромосомные аберрации (фрагменты)

Рие. 1 Частота (%) обнаружения видов хромосомных аберраций в кариоцитах костного мозга мышей при изолированном и сочетанном радиационно-химическом воздействии.

Хромосомные нарушения в кариоцитах коотного мозга сопровождались изменением метаболического статуса эритроцитов периферической крови (рис. 2).

При анализе динамики обменных процессов в эритроцитах мышей прослеживалось фазовое течение приспособительных реакций с активацией энергообразущщмх процессов к 10 суткам

экспериментального периода и стабилизацией интенсивности гликолиза к 20 и 30 суткам в период воздействия смеси химических веществ. Активация гликолитических процессов в эритроцитах отражает развитие приспособительных реакций организма, направленных на поддержание энергетических затрат, связанных с детоксикацией химических веществ. Характерной особенностью воздействия химического фактора низкой интенсивности на протяжении всего экспериментального периода явилось низкое содержание восстановленного глутатиона в эритроцитах, свидетельствующее о пониженной клеточной резистентности и связано, вероятно, с токсическим действием смеси химических веществ на мембраны клеток [Е.С. Северин, 2003].

После прекращения воздействия химических веществ на организм животных к 14 суткам восстановительного периода не происходило стабилизации обменных процессов в эритроцитах. Снижение активности анаэробных процессов в клетках сопровождалось активацией окислительных реакций.

Рис. 2. Метаболизм эритроцитов (мкМ/г Нв) мышей при воздействии изоэффективных концентраций смеси химических веществ.

Реакция костного мозга мышей в ответ на длительное воздействие химических веществ низкой интенсивности проявлялась в виде увеличения количества кариоцитов к 10 суткам экспериментального периода на 8,2 % относительно групп виварного и гермокамерного контролей (Р<0,05) с последующим восстановлением численности гемопоэтических клеток (табл. 3). Временное увеличение клеток костного мозга, по-видимому, обусловлено компенсаторным усилением пролиферативной активности клеточной популяции в ответ па действие повреждающего фактора. К 14 суткам периода последействия общее число ядросодержащих клеток костного мозга оставалось сниженным и составляло 43,1 ±2,5 млн (Р<0,05), статистически значимо отличаясь от контрольных значений.

Временное повышение количества кариоцитов костного мозга сопровождалось увеличением количества лейкоцитов в периферической крови до 15,4±1,0 тыс/мм3 (Р<0,05) (табл. 3). Данная реакция может быть связана с усилением лейкопоэтической функции костного мозга п этот период. Однако уже к 30 суткам химического воздействия количество лейкоцитов снизилось до 9,8±0,7 тыс/мм3, находясь на уровне контрольных значений.

Таблица 3.

Изменение количества кариоцитов костного мозга (млн.) и лейкоцитов периферической крови (тыс/мм3) мышей при комбинированном действии изоэффективных концентраций смеси веществ.

Исследуемые показатели Гермокамерный контроль Виварный контроль Сроки исследования, сутки Восстановительный период,сутки

10 20 30 14

Количество кариоцитов 64,4±3,4 62,7±2,3 69,7±3,5* 63,5±3,8 64,5±2,9 43,1±2,5*

Количество лейкоцитов 11,6±2,1 12,3±1,8 14,9±0,5* 15,4±1,0* 9,8±0,7 9,4±0,7

*- показатели достоверны по отношению к виварному и гермокамерному контролю, Р<0,05.

Проведенные биохимические исследования плазмы крови показали, что комбинированное действие химических веществ в низких концентрациях не вызывает существенных нарушений обмена веществ в органах-«мишенях»: печень, миокард, почки. К 10 суткам химического воздействия наблюдалось незначительное снижение интенсивности метаболических процессов в организме животных и активация перекисного окисления липидов, с последующей стабилизацией обменных процессов.

Цитогенетические, биохимические и гематологические исследования в организме экспериментальных животных после воздействия гамма - излучения в низких дозах.

На протяжении всего экспериментального периода масса тела животных опытной группы не отличалась от контрольной группы и колебалась в пределах физиологической нормы (18.122.0 гр.). Многократное воздействие гамма-облучения сопровождалось обратимым повышением массы тимуса и селезенки до 0,39 % и 0,54 % (Р<0,05) соответственно. Это может быть связано с активацией иролиферативных процессов в органах в ответ на воздействие радиационного фактора. Показано также снижение массы семенников (Р<0,05), по-видимому, обусловленное гибелью части клеток и запустением семенных канальцев, уменьшением размеров и количества половых клеток в органе, связанных с задержкой сперматогенеза [Е.Ф. Конопля, 2001]. К 30 суткам периода восстановления масса семенников оставалась сниженной, составляя 0,68 % против 0,82 % у необлученных мышей (Р<0,05).

Для определения числа хромосомных аберраций в виде мостов и фрагментов было проанализировано 1984 клетки на стадии поздней анафазы - ранней телофазы (табл. 4). В ходе исследований установлена нелинейная зависимость частоты цитогенетических нарушений от дозы ионизирующего излучения. Так, при достижении суммарной дозы облучения 10 сГр количество хромосомных аберраций было выше (1,7 %), чем при дозе 20 сГр, когда число аберрантных митозов приближалось к контрольному уровню (1,0 %). Возможно, повышение радиорезистентности кариоцитов костного мозга происходит в результате включения репарационных процессов при достижении определенного уровня повреждения клеток [В. Marples, М.С. Joiner, 1993].

Дальнейшее повышение суммарной дозы облучения до 30 сГр (30 сутки экспериментального периода) способствовало увеличению хромосомных аберраций, количество которых достигало 2,6 % (Р<0,01). К 14 и 30 суткам периода восстановления частота аберрантных митозов снижалась и составляла 1,6 и 1,0 % соответственно, свидетельствуя об элиминации поврежденных клеток из организма облученных животных. При анализе видов хромосомных поломок в клетках костного мозга мышей (рис. 1) при воздействии низких доз ионизирующего излучения показано, что 66,7 % аберраций хромосом приходилось на количество мостов и 33,3 % - на количество фрагментов, отражая высокую способность кариоцитов костного мозга к восстановлению хромосомного аппарата клеток.

Таблица 4.

Изменение числа аберрантных митозов в карноцитах костного мозга мышей при воздействии гамма-излучения в низких дозах.

Аберрантные митозы, % Кол-во проанализированных анафаз Количество и виды хромосомных поломок Сроки исследования, сутки

мосты фрагменты

1,7±0,5 348 3 3 10

1,4±0,4 282 3 1 20

2,6±0,3* 236 4 2 30

1,6±0,4 360 4 1 14 сутки восстановительного периода

1,0±0,3 337 2 1 30 сутки восстановительного периода

1,0±0,4 421 3 1 Контроль (необлученные животные)

*-Р<0,05

Многократное воздействие гамма-облучения в суммарной дозе 30 сГр способствовало незначительному снижению анаэробных процессов в эритроцитах к 10 и 30 суткам от начала

эксперимента и активацией энергообразующих процессов к 20 суткам гамма-облучения, что является, по-видимому, приспособительной реакцией организма в ответ на многократное воздействие ионизирующего излучения в низких дозах (рис. 3). Воздействие на организм лабораторных животных гамма-облучения в низких дозах характеризовалось также преобладанием восстановительных процессов в эритроцитах. На протяжении всего экспериментального периода наблюдалось повышение активности Г-6-ФД и уровня восстановленного глутатиона, обеспечивающего детоксикацию продуктов ПОЛ и защиту макромолекул от окислительных радикалов.

В период последействия к 14 и 30 суткам исследуемые показатели метаболизма эритроцитов статистически значимо не отличались от контрольных данных.

Рис. 3. Метаболизм эритроцитов (мкМ/г Нв) мышей при воздействии гамма-излучения в суммарной дозе 30 сГр.

Анализ изменений общего содержания ядросодержащих клеток костного мозга экспериментальных животных при воздействии на организм низких доз гамма-излучения (табл. 5) показал обратимое снижение количества кариоцитов костного мозга до 30,1±6,4 млн, тогда как в необлученной группе животных этот показатель находился в пределах 59,7±7,7 млн., что связано, по-видимому, с задержкой клеточного деления полипотентных клеток костного мозга в ответ на действие ионизирующего излучения [С.П. Ярмонепко, 1988]. Несмотря на изменения в количестве ядросодержащих клеток костного мозга (Р<0,05), количество лейкоцитов в периферической крови оставалось стабильным и находилось в пределах 10,4 - 11,4 тыс/мм3

(табл. 5).

Таблица 5.

Общее число кариоцитов костного мозга (млн.) и лейкоцитов периферической крови (тыс/мм3) мышей при воздействии гамма-излучения в низких дозах.

Исследуемые показатели Контроль Сроки исследования, сутки Восстановительный период, сутки

10 20 30 14 30

Количество кариоцитов 59,7±7,7 30,1±6,1* 41,2±6,6* 52,1±7,9 48,4±6,4* 63,6±3,5

Количество лейкоцитов 11,5±0,9 10,8±0,4 11,2±0,6 11,2±0,7 10,4±0,4 11,4±0,7

* - Р< 0,05

Биохимические исследования плазмы крови животных показали, что динамика интенсивности обменных процессов при длительном воздействии низких доз гамма-излучения характеризуется волнообразным течением, с периодами, как спада, так и активации метаболических процессов. После прекращения воздействия низких доз ионизирующего излучения, несмотря на тенденцию к нормализации исследованных биохимических альтераций, увеличение концентрации малонового диальдегида на 72 % (Р<0,05) и повышение активности каталазы на 36 % относительно контрольных данных свидетельствуют об отсутствии восстановления обменных процессов.

Цитогенетические, биохимические и гематологические показатели при сочетанием воздействии химического и радиационного факторов низкой интенсивности на организм

животных.

Длительное сочетанное воздействие химических веществ и гамма-облучения в низких дозах не оказывало существенного влияния на массу тела животных, массу органов иммунной и репродуктивной систем. На протяжении всего экспериментального периода прирост массы тела лабораторных животных в среднем составил 4,2±0,5 г (26,0 - 30,0 г).

При сочетанием радиационно-химическом воздействии наблюдалась нелинейная зависимость между изменением количества хромосомных аберраций в кариоцитах костного мозга и дозой гамма-облучения (табл. 6). Так к 10 суткам экспериментального периода количество аберрантных митозов увеличивалось относительно контрольных значений (1,4 %) и составило 2,1 % от общего количества проанализированных анафаз. Однако к 20 суткам сочетанпого воздействия, несмотря на увеличение длительности воздействующих факторов, количество аберрантных мнгозов статистически значимо не отличалось от контрольного уровня и составляло 1,6 %. Наблюдаемая нелинейная зависимость «доза-эффект» связана, по-видимому, с развитием устойчивости клеток костного мозга к длительному воздействию химических веществ и ионизирующего излучения. Количество хромосомных повреждений при сочетанием радиационно-химическом воздействии повышалось в основном за счет фрагментов - 91,2 %, тогда как количество мостов составляло лишь 8,8 % от общего количества

хромосомных поломок (рис. 1). Повреждение хромосомного аппарата клеток более характерно для изолированного воздействия химического фактора, что свидетельствует о доминирующей его роли при сочетанном воздействии химических веществ и гамма-облучения.

При сочетанном действии исследованных факторов на организм животных количество цитогенетических повреждений оставалось повышенным до 14 суток восстановительного периода (2,2 %) (Р<0,05). Тогда как при изолированном химическом и радиационном воздействии в те же сроки уровень ХА приближался к контрольным значениям, то есть процессы восстановления протекали более интенсивно. Эффект частичного суммирования при сочетанном воздействии двух факторов, по-видимому, обусловлен высокой чувствительностью кроветворной ткани к воздействию химических веществ в низких концентрациях и ионизирующего излучения в низких дозах.

Таблица 6.

Количество хромосомных аберраций в кариоцитах костного мозга мышей при сочетанном воздействии химического и радиационного факторов низкой интенсивности.

Аберрантные Количество Количество и виды Сроки исследования.

митозы, % проанализированных хромосомных поломок сутки

анафаз мосты фрагменты

2,1±0,5 362 1 7 10

1,б±0,4 303 - 5 20

3,0±0,3* 406 2 11 30

2,2±0,3* 358 8 14 сутки восстановительного периода

1,4±0,4 420 2 4 Контроль

* - Р<0,05

При сочетанном воздействии на организм животных химического и радиационного факторов низкой интенсивности наблюдаются фазные изменения показателей интенсивности метаболических процессов в эритроцитах, проявляясь активацией приспособительных реакций к 20 суткам воздействия в виде усиления энергообразующих процессов в эритроцитах (рис. 4). Это выражалось достоверным (Р<0,02) повышением одного из основных ферментов гликолиза — ЛДГ на 51% и увеличением уровня лактата на 52% (Р<0,001) относительно величин исследуемых показателей в контрольной группе животных. Данные изменения сопровождались повышением активности Г-6-ФД на 49% (Р<0,02), направленного на поддержание в эритроцитах уровня восстановленного глутатиона и предотвращения, тем самым, окислительной деструкции клеток. Важно отметить, что к концу 14 суточного периода наблюдения после окончания сочетанного радиационио-химического воздействия на организм животных восстановления метаболических процессов в эритроцитах не наблюдалось. Интенсивность энергообразующнх процессов в клетках оставалась сниженной и

сопровождалась активацией окислительных реакций. Тогда как изолированное влияние на организм животных гамма-излучения в низких дозах сопровождалось тенденцией к восстановлению метаболических реакций в эритроцитах в этот период. При комбинированном влиянии химических веществ на организм животных в период последействия изменения метаболизма эритроцитов также сохранялись, но были, однако, менее выраженными, чем при сочетанном раднационно-химическом воздействии.

Таким образом, исследование обмена веществ эритроцитов при сочетанном радиационно-химическом воздействии свидетельствует о частичной суммацин биологических эффектов, связанное, вероятно, с единым механизмом действия ионизирующего излучения и химических веществ на мембраны клеток.

Рис. 4. Метаболизм эритроцитов (мкМ/г Нв) мышей при сочетанном воздействии химических веществ и гамма-излучения.

Анализ экспериментальных данных показал высокую корреляционную зависимость между изменением количества хромосомных аберраций в клетках костного мозга и показателями метаболизма эритроцитов (лактат, ЛДГ, Г6ФД) при изолированном и сочетанном воздействии ионизирующего излучения и химических веществ на организм животных (рис. 5).По-видимому, между уровнем хромосомных повреждений в клетках костного мозга и активностью метаболических процессов в эритроцитах существует причинно-следственная связь. Хромосомные повреждения в клетках - предшественниках эритроидного ряда могут быть причиной изменения метаболических реакций зрелых форм эритроцитов [Н.Н. Великий, 1999]. Тем не менее, нельзя исключать непосредственного воздействия ионизирующего излучения и химических веществ на мембраны эритроцитов, т.к. нарушение целостности мембран может приводить к нарушению ионного баланса клетки и неблагоприятно отражаться на метаболических процессах [С.П. Ярмоненко, 1988].

Рис.5. Корреляционная связь между пактател ими метаболизма эритроцитов (лактат, ЛДГ» Г-Й-ФД1 и количеством хромосомных аберраций п карноцнтач костного мозга мышей при сочетанном радиационно-химическом воздействии.

Сочетанпое раднационно-химической воздействие характеризовалось волнообразными изменениями общего количества карноцитов костного мозга, которые зависели от длительности действия повреждающих факторов (табл. 7). Так, к 10 суткам экспериментального периода наблюдалось статистически значимое (Р<0,95) снижение общего количества ядром)держащих клеток костного мозга па 55.4% по отношению к контролю, свидетельствуя о задержке клеточного деления, обусловленного влиянием ионизирующего излучения на митотическую активность клеток костного мозга, так как при изолированном лучевом воздействии в те же сроки количество кари опито в также снижалось почти в 2 раза Однако к 20 суткам сочетание™ действ и» количество ядросодержащнх клеток возросло и достигло 6К.0±3,4 млн (Р<0.05), что может быть связано с повышением активности клеточного деления клетками, сохранившими неизмененную иролиферативную способность [СЛ1. Ярмоленко, 1988]. К 30 суткам сочетай ¡ierro радиационно-химпческфго roí действия и 14 суткам восстановительного периода количество кариоцитов костного мозга находилось на уровне контрольных значений и составляло 59.6+3,2 и 59,7±2,8 млн соответственно, свидетельствуя о регенерации клеточного деления в костном мозге.

Фазные изменения при длительном сочетай ном действии химического и радиационного факторов низкой интенсивности на организм животных наблюдаюсь также при исследовании количества лейкоцитов и периферической крови (табл. 7). Наличие лейкопении может быть связано со снижением лейкопоэтической функции костного мозга в этот период и характерно для Воздействия на организм малых доз ионизирующего излучения ¡Jl.fl. Николаевич, JIM. Винник, А.П. АмвросьеВ, 2000], Однако в наших экспериментах изолированное влияние радиационного фактора в отличие от сочетай и ого раоиационно-химического воздействия не сопровождалось снижением количества лейкоцитов в периферической крови, что может

10 20 I Лэ1ггат и аберрантные митозы Г6ФД и аберрантные митоэы

30 14 eoccí 30 еосст

■ ЛДГ и аберрантные митозы

свидетельствовать о модификации биологических эффектов при совместном влиянии на организм смеси химических веществ и гамма-излучения в низких дозах.

Таблица 7.

Общее число кариоцитов костного мозга (млн.) и лейкоцитов периферической крови (тыс/мм3) мышей (М±т) при сочетанием радиационно-химнческом действии факторов низкой интенсивности.

Исследуемые показатели Контроль Сроки исследования, сутки Восстановительный период, сутки

10 20 30 14

Количество кариоцитов 59,9±0,6 36,3±2,7* 68,0±3,4* 59,6±3,2 59,7±2,8

Количество лейкоцитов 11,5±0,7 5,7±0,6* 4,9±0,3* 6,9±0,3 6,8±0,5

* - Р<0,05

При комплексном биохимическом исследовании крови животных установлено, что сочетанное воздействие химических веществ и ионизирующего излучения не оказывало существенного влияния на биоэнергетические и пластические функции организма. Отсутствие нарушений обмена веществ при слабых радиацпонно-химических воздействиях подтверждается сбалансированным состоянием свободнорадикальных процессов (МДА) и антиоксидантного статуса организма (каталаза) на протяжении всего эксперимен тального периода.

Заключение

Реакции организма животных при сочетанием воздействии химического и радиационного факторов низкой интенсивности представлены на схеме 1.

Совместное воздействие комплекса химических веществ в низких концентрациях и гамма-облучения в суммарной дозе 30 сГр приводит к более выраженным цитогенетическим и метаболическим изменениям в организме животных, чем изолированное воздействие химического и радиационного факторов. При сочетанием радиационно-химическом воздействии на основе анализа видов хромосомных аберраций установлено, что химический фактор является доминирующим.

Схема 1.

Частичная суммацня биологических эффектов при сочетанием воздействии связана, по-видимому, с едиными механизмами воздействия на одни и те же биологические мишени. Использование комплекса химических веществ, как и ионизирующего излучения, способствует активации свободнорадикальных процессов в организме, что могло привести к повреждению мембран клеток и, соответственно, нарушению в них метаболических процессов. Длительное комбинированное воздействие химических веществ (ацетон, ацетальдегид, аммиак, этанол) в низких концентрациях совместно с ионизирующим излучением в низких дозах способствовало индукции цитогенетических повреждении в клетках костного мозга. По-видимому, компоненты клеточного ядра кариоцитов костного мозга так же являются единой мишенью, как для ионизирующего излучения, так и для комплекса исследуемых химических веществ.

Анализ экспериментальных исследований показал высокую корреляционную зависимость между изменением количества хромосомных аберраций в клетках костного мозга и показателями метаболизма эритроцитов (лактат, ЛДГ, Г6ФД) при изолированном и сочетанном воздействии ионизирующего излучения и химических веществ на организм животных. Повышение количества хромосомных аберраций в клетках костного мозга и изменение митотической активности клеток этого органа может быть одной из причин нарушения метаболических процессов в эритроцитах периферической крови, как при химическом, так и при радиационном воздействии.

Важно отметить, что изолированное химическое воздействие оказывало более выраженные нарушения хромосомного аппарата в ядросодержащих клетках костного мозга и метаболические сдвиги обменных процессов в эритроцитах, чем гамма-облучение в низких дозах.

Наблюдаемые фазовые изменения количества кариоцитов кроветворного органа способствовали изменению морфологического состава периферической крови в виде лейкопении.

Результаты экспериментальных исследований сочетанного радиационно-химического воздействия на организм животных необходимо учитывать при коррекции гигиенических нормативов при осуществлении длительных межпланетных пилотируемых полетов. Результаты сравнительной характеристики динамики показателей цитогенетических нарушений и метаболизма эритроцитов показали, что изменения метаболического статуса эритроцитов могут быть использованы в качестве тест - маркера для оценки состояния здоровья космонавтов при осуществлении длительных межпланетных пилотируемых полетов.

Выводы:

1. Длительное комбинированное воздействие химических веществ в низких концентрациях на организм животных приводит к более выраженным повреждениям хромосомного аппарата в ядросодержащих клетках костного мозга по сравнению с гамма-облучением в низких дозах.

2. Комбинированное воздействие низких концентраций химических веществ оказывает более выраженное воздействие на метаболизм эритроцитов, по сравнению с гамма-облучением в низких дозах, и сопровождается активацией окислительных реакций в эритроцитах с сохранением наблюдаемых функциональных изменений после окончания химического воздействия.

3. При сочетанном радиационно-химическом воздействии на организм животных количество хромосомных аберраций повышается в основном за счет фрагментов (91,2 %), как и при изолированном химическом воздействии (96,4 %), свидетельствуя о доминирующей роли химического фактора.

4. При сочеганно.м воздействии химического и радиационного факторов низкой интенсивности, в отличие от их изолированного действия, хромосомные нарушения в кариоцитах костного мозга и метаболические сдвиги в эритроцитах периферической крови сохраняются после прекращения воздействия повреждающих факторов.

5. Изменения метаболизма эритроцитов являются высоко информативными показателями и могут быть использованы для адекватной оценки влияния на организм смеси химических веществ с однонаправленным биоэффектом в концентрациях на уровне ПДКпка.

6. Установлена высокая корреляционная зависимость (г = 0,88) между изменениями интенсивности метаболических процессов в эритроцитах и количеством хромосомных аберраций в клетках костного мозга при изолированном и сочетанном воздействии химических веществ в низких концентрациях и гамма-облучения в суммарной дозе 30 сГр.

7. Результаты экспериментальных исследований сочетанного воздействия на организм животных химического и радиационного факторов низкой интенсивности могут быть использованы в дальнейших исследованиях, направленных на совершенствование гигиенических нормативов и разработку медико-технических требований к перспективным системам жизнеобеспечения межпланетных пилотируемых космических полетов.

Работы, опубликованные по теше диссертации.

1. Цитогенетические и биохимические исследования при длительном комбинированном воздействии неэффективных концентраций химических веществ с однонаправленным биоэффектом на организм лабораторных животных //Авиакосмическая и экологическая медицина. 2006. №3. С. 50-54 (в соавторстве с Ивановой С.М., Пахомовой A.A., Никитиным Е.И. и др.).

2. Метаболические аспекты клеточного гомеостаза при ингаляционном воздействии химических веществ малой интенсивности // Тез. докл. 9-й междунар. конф. «Системный анализ и управление». Крым. Евпатория. 2004. С. 156 (в соавторстве с Ивановой С.М.)

3. Повторные радиационные воздействия в низкой дозе на критические системы организма лабораторных животных //Тез. докл. 4-й молодежной конф. М. 2005. С. 8.

4. Цитогенетические и биохимические исследования при хроническом сочетанном воздействии химического и радиационного факторов в низких дозах на организм лабораторных животных // Тез. докл. 13-й конф. «Космическая биология и авиакосмическая медицина». М. 2006. С. 34 (в соавторстве с Мухамедиевой Л.П., Федоренко Б.С., Ивановой С.М.и др.).

5. Цитогенетические и биохимические исследования при длительном комбинированном воздействии пзоэффективных концентраций химических веществ с однонаправленным биоэффектом // Тез. докл. 5-й конференции молодых ученых и специалистов, аспирантов и студентов, посвященной дню космонавтики. М. 2006. С. 9 (в соавторстве с Пахомовой A.A., Ворожцовой C.B.).

6. Показатели метаболизма эритроцитов при воздействии на организм радиационного и химического факторов низкой интенсивности // Тез. докл. 4-й междунар. конф. «Авиация и космонавтика». М. 2005. С. 110 (в соавторстве с Ворожцовой C.B., Никитиным Е.И., Ивановой С.М.).

7. Роль обоняния человека при оценке загрязнения воздушной среды пилотируемых космических аппаратов компонентами газовыделений термодеструкции полимеров // Авиакосмическая и экологическая медицина. 2006. Т. 40. № 6. С. 32-36 (в соавторстве с Соломиным Г.И., Мухамедиевой Л.И., Никитиным Е.И.).

8. Цитогенетические и биохимические реакции организма экспериментальных животных при сочетанном воздействии радиационного и химического факторов низкой интенсивности // Авиакосмическая и экологическая медицина. 2007. Т. 41. №2. С. 45-49 (в соавторстве с Мухамедиевой Л.Н., Федоренко Б.С., Ивановой С.М. и др.).

Заказ № 13-Ь/03/07 Подписано в печать 27.03.2007 Тираж 100 экз. Усл. п.л. 1,5

. ООО "Цифровичок", тел. (495) 797-75-76; (495) 778-22-20 лумуг. с/г. ги ; е-таИ: т/о@с/г. ги

 
 

Оглавление диссертации Баранцева, Мария Юрьевна :: 2007 :: Москва

Список сокращений

Содержание

Введение

1. Обзор литературы

1.1. Радиационные условия и формирование химического состава воздушной среды в пилотируемых космических аппаратах при осуществлении длительных космических полетов

1.2. Биологические эффекты низких доз ионизирующего излучения

1.3. Комбинированное воздействие на организм химических веществ в низких концентрациях

1.4. Гигиеническая характеристика сочетанного воздействия химического и радиационного факторов низкой интенсивности

2. Материалы и методы исследований

2.1. Характеристика используемых групп

2.2. Методика проведения экспериментов

2.3. Методы получения и анализа исследуемого материала

2.4. Статистическая обработка результатов исследований

3. Результаты проведенных исследований

3.1. Биохимические и гистохимические показатели при комбинированном воздействии химических веществ в низких концентрациях на организм лабораторных животных

3.2. Влияние комбинированного воздействия химических веществ в низких концентрациях на организм экспериментальных животных

3.3. Цитогенетические, биохимические и гематологические исследования в организме экспериментальных животных после воздействия гамма - излучения в низких дозах

3.4. Цитогенетические, биохимические и гематологические показатели при сочетанном воздействии химического и радиационного факторов низкой интенсивности на организм животных

 
 

Введение диссертации по теме "Авиационная, космическая и морская медицина", Баранцева, Мария Юрьевна, автореферат

Актуальность проблемы

В условиях длительных пилотируемых космических полетов участники экспедиции подвергаются сочетанному воздействию химического и радиационного факторов низкой интенсивности. На современном этапе развития пилотируемой космонавтики при подготовке к длительным межпланетным экспедициям актуальность изучения сочетанного влияния на организм человека химического и радиационного факторов стала одной из основных проблем медико-биологического обеспечения безопасности человека. В связи с этим, для сохранения здоровья и работоспособности космонавтов, как в период осуществления профессиональной деятельности, и, особенно важно, в отдаленные сроки после её завершения, необходимо изучение физиологических возможностей организма при длительном сочетанном воздействии низких доз ионизирующего излучения и комплекса химических веществ в концентрациях, характерных для воздушной среды ПКА. Учитывая, что дальнейшее освоение космического пространства будет идти по пути удлинения сроков пребывания человека на космических орбитах, проблема сочетанного воздействия исследуемых факторов космического полета приобретает особую актуальность.

Исследования сочетанного действия химического и радиационного факторов низкой интенсивности на организм человека и животных в основном проводились в районах, подвергшихся химическому и радиационному загрязнению окружающей среды вследствие радиационных аварий (авария на ЧАЭС), химических выбросов в атмосферу при работе производственных предприятий. Сочетанное радиационно-химическое воздействие сопровождалось преимущественно эффектами синергизма и характеризовалось более выраженными метаболическими и цитогенетическими нарушениями в организме животных в отличие от изолированного воздействия повреждающих факторов /А.Ф. Маленченко, 1989; С.И. Заичкина, О.М. Розанова, Г.Ф. Аптикаева, 2001; С.Д. Иванов, В.В. Семенов, Е.Г. Кованько, 2002; W. Burkart, G.L. Finch, Т. Jung, 1997; J. Lubin, 1998/. Проведенные исследования подтверждают необходимость изучения биологических эффектов при одновременном воздействии на организм химического и радиационного факторов низкой интенсивности, характерных для длительных пилотируемых космических полетов.

В настоящее время проведено большое количество экспериментальных исследований по моделированию изолированного воздействия химического и радиационного факторов космического полета на организм человека и животных /В.П. Савина, 1986; С. Каландаров, В.П. Бычков, В.А. Коршунов и др., 1987; J1.H. Мухамедиева, Е.И. Никитин 2001; В.В.

Цетлин, Е.А. Дешевая, Н.Д. Новикова, 2002; JT.H. Мухамедиева, 2003; С.В. Ворожцова, Б.С. Федоренко, В.В. Цетлин, 2004/. Однако данные исследования проводились без учета модифицирующего влияния химических веществ и ионизирующего излучения при сочетанном воздействии на организм.

Для изучения биологических эффектов низких доз ионизирующего излучения в опубликованных работах в качестве низких доз часто используется диапазон от 1 до 50 сГр. В свою очередь суммарная обобщенная доза, получаемая космонавтами при осуществлении длительных пилотируемых полетов от детерминированных источников (ГКЛ и РПЗ) в период максимума СА по расчетам ряда авторов /А.В. Шафиркин, В.П. Бенедиктова, А.В. Коломенский и др., 1998/ составляет около 0,06 Зв в год, а при межпланетных полетах при толщине защиты 10 г/см возможно будет достигать 0,23 Зв в год. Согласно методическим указаниям по ограничению облучения космонавтов при околоземных космических полетах основной предел эквивалентной дозы космонавта за космический полет продолжительностью до 1 года не должен превышать 0,5 Зв. Следовательно, при моделировании сочетанного воздействия химического и радиационного факторов актуально использование доз ионизирующего излучения, которые бы не превышали 50 сГр и были наиболее приближены к реальным условиям пилотируемых полетов.

Для изучения сочетанного радиационно-химического воздействия на организм были выбраны химические вещества, которые вносят основной вклад (90-95 %) в суммарную загрязненность воздушной среды и входят в приоритетный перечень веществ определяющих качество воздушной среды пилотируемых космических аппаратов (ГОСТ Р50 804 и SS Р50 260) /Л.Н. Мухамедиева, 2003/.

Основываясь на изложенном выше материале, научный и практический интерес представляют исследования, направленные на изучение сочетанного радиационно-химического воздействия факторов низкой интенсивности на организм в условиях, характерных при осуществлении длительных пилотируемых полетов. Для оценки биологических эффектов химического и радиационного факторов, по данным ряда отечественных и зарубежных авторов, актуально использование цитогенетических и биохимических показателей /Л.Н. Мухамедиева, Е.И. Никитин, 2001; Л.Н. Мухамедиева, 2003; С.В. Ворожцова, А.В. Шафиркин, Б.С.Федоренко, 2006; N.M. Bil'ko, N.F. Starodub, V.G. Bebeshko, 1996; N.M. Gulaya, V.M. Margitich, A.A. Chumak, 2000/.

Цель и задачи исследования

Целью исследований являлось изучение сочетанного воздействия химического и радиационного факторов низкой интенсивности на цитогенетические и биохимические реакции организма экспериментальных животных. Задачи исследования предусматривали:

- проведение сравнительной оценки биохимических показателей крови, метаболического статуса эритроцитов, гистохимических исследований липидов ткани легкого и выявление из них наиболее информативных показателей для токсикологической оценки комбинированного воздействия химических веществ в низких концентрациях (ПДКпка) с однонаправленным биоэффектом на организм животных;

- изучение влияния комбинированного воздействия изоэффективных концентраций химических веществ (ацетон, ацетальдегид, этанол, аммиак) на характер и динамику хромосомных аберраций в кариоцитах костного мозга, биохимических изменений периферической крови и показателей метаболизма эритроцитов;

- изучение биологических эффектов в организме экспериментальных животных при многократном воздействии гамма-излучения в суммарной дозе 30 сГр на основании цитогенетических и биохимических исследований;

- установление изменений динамики цитогенетических, биохимических и гематологических показателей при сочетанном влиянии химического и радиационного факторов низкой интенсивности.

Научная новизна

Впервые при исследовании сочетанного воздействия химического и радиационного факторов низкой интенсивности на хромосомный аппарат клеток костного мозга и метаболизм в эритроцитах лабораторных животных в дозах и концентрациях, характерных для среды обитания пилотируемых орбитальных станций показано, что совместное воздействие химических веществ в низких концентрациях и гамма-излучения в низких дозах оказывает эффект частичной суммации по сравнению с изолированным влиянием исследуемых факторов.

Практическая и научная значимость работы

Результаты исследований сочетанного радиационного и химического воздействия позволят разработать медико-технические требования к системам жизнеобеспечения направленные на обеспечение безопасности экипажа при осуществлении длительных космических полетов, осуществляемых в настоящее время и в перспективе при полете к Марсу. Результаты сравнительной характеристики динамики показателей цитогенетических нарушений и метаболизма эритроцитов показали, что изменения метаболического статуса эритроцитов могут быть использованы в качестве тест - маркера для оценки состояния здоровья космонавтов при осуществлении длительных межпланетных пилотируемых полетов.

Реализация полученных результатов

Результаты исследований по комбинированному воздействию химических веществ с однонаправленным биоэффектом в концентрациях на уровне ПДКпка использованы при разработке международного нормативного документа для МКС: «Medical Operation Requirements Document Revision В (MORD)» SSP 50260 Air Qualiti, 2004 и международного программного документа для МКС: International Space Station Program «Basic Provisions on Crew Actions in the Event of a Toxic Release on the International Space Station» SSP 50653-01, 2004.

Основные положения, выносимые на защиту

Длительное воздействие комплекса химических веществ с однонаправленным биоэффектом в изоэффективных концентрациях (соответствующих ПДКпка) оказывает более выраженное нарушение деления ядросодержащих клеток костного мозга и сопровождается отсутствием восстановления функциональных сдвигов метаболизма эритроцитов после окончания воздействия по сравнению с влиянием гамма-излучения в суммарной дозе 30 сГр.

При сочетанном радиационно-химическом воздействии на организм животных биоэффект химических веществ в низких концентрациях является доминирующим по результатам анализа видов хромосомных аберраций в кариоцитах костного мозга.

Сочетанное воздействие гамма-излучения в суммарной дозе 30 сГр и комплекса изоэффективных концентраций химических веществ в низких концентрациях на организм экспериментальных животных приводит к частичной суммации биологических эффектов.

Апробация работы

Основные результаты и положения диссертационной работы доложены и обсуждены на:

9-й международной конференции «Системный анализ и управление», Крым, Евпатория, 2004 г.;

4-й молодежной конференции к 10-летию со дня окончания сверхдлительного космического полета врача - космонавта Полякова В.В., Москва, 2005;

4-й Международной конференции «Авиация и космонавтика-2005», Москва, 2005 г.

5-й конференции молодых ученых и специалистов, аспирантов и студентов, посвященной Дню космонавтики, Москва, 2006;

13-й конференции «Космическая биология и авиакосмическая медицина» к 45-летию первого полета человека в космос, Москва, 2006.

Диссертация апробирована на секции по «Космической медицине» Ученого совета ГНЦ РФ - Института медико-биологических проблем РАН По теме диссертации опубликовано 8 научных работ.

Объем и структура диссертации

Диссертация состоит из введения, 4 глав (обзор литературы, материалы и методы исследований, результаты проведенных исследований, обсуждение результатов), заключения, выводов, списка литературы, приложения и содержит 128 машинописных страниц, включающих 34 таблицы, 5 рисунков. Список литературы включает 206 работ, из них 156 отечественных и 50 зарубежных.

 
 

Заключение диссертационного исследования на тему "Сочетанное воздействие химического и радиационного факторов низкой интенсивности на цитогенетические и биохимические реакции организма экспериментальных животных"

Выводы:

1. Длительное комбинированное воздействие химических веществ в низких концентрациях на организм животных приводит к более выраженным повреждениям хромосомного аппарата в ядросодержащих клетках костного мозга по сравнению с гамма-облучением в низких дозах.

2. Комбинированное воздействие низких концентраций химических веществ оказывает более выраженное воздействие на метаболизм эритроцитов, по сравнению с гамма-облучением в низких дозах, и сопровождается активацией окислительных реакций в эритроцитах с сохранением наблюдаемых функциональных изменений после окончания химического воздействия. Коэффициент комбинированного действия составил 1,89, что свидетельствует о частичной суммации биологических эффектов при воздействии веществ в смеси.

3. При сочетанном радиационно-химическом воздействии на организм животных количество хромосомных аберраций повышается в основном за счет фрагментов (91,2 %), как и при изолированном химическом воздействии (96,4 %), свидетельствуя о доминирующей роли химического фактора.

4. При сочетанном воздействии химического и радиационного факторов низкой интенсивности в отличие от их изолированного действия хромосомные нарушения в кариоцитах костного мозга и метаболические сдвиги в эритроцитах периферической крови сохраняются после прекращения воздействия повреждающих факторов.

5. Изменения метаболизма эритроцитов являются высоко информативными показателями и могут быть использованы для адекватной оценки влияния на организм смеси химических веществ с однонаправленным биоэффектом в концентрациях на уровне ПДКпка, а также при сочетанном радиационно-химическом воздействии.

6. Установлена высокая корреляционная зависимость (г = 0,88) между изменениями интенсивности метаболических процессов в эритроцитах и количеством хромосомных аберраций в клетках костного мозга при изолированном и сочетанном воздействии химических веществ в низких концентрациях и гамма-облучения в суммарной дозе 30 сГр.

7. Результаты экспериментальных исследований сочетанного воздействия на организм животных химического и радиационного факторов низкой интенсивности могут быть использованы в дальнейших исследованиях по совершенствованию гигиенических нормативов и разработке медико-технических требований к перспективным системам жизнеобеспечения межпланетных пилотируемых космических полетов.

Заключение

Реакции организма животных при сочетанном воздействии химического и радиационного факторов низкой интенсивности представлены на схеме 1.

Совместное воздействие комплекса химических веществ в низких концентрациях и гамма-облучения в суммарной дозе 30 сГр приводит к более выраженным цитогенетическим и метаболическим изменениям в организме животных, чем изолированное воздействие химического и радиационного факторов. Частичная суммация биологических эффектов определялась с помощью наиболее чувствительных биологических систем (таблица 4.1): цитогенетических нарушений в ядросодержащих клетках костного мозга, метаболических изменений в эритроцитах периферической крови. При сочетанном радиационно-химическом воздействии на основе анализа видов хромосомных аберраций установлено, что химический фактор является доминирующим.

Частичная суммация биологических эффектов при сочетанном воздействии связана, по-видимому, с едиными механизмами воздействия на одни и те же биологические мишени. Использование комплекса химических веществ, как и ионизирующего излучения, способствует активации свободнорадикальных процессов в организме, что могло привести к повреждению мембран клеток и, соответственно, нарушению в них метаболических процессов. Длительное комбинированное воздействие химических веществ (ацетон, ацетальдегид, аммиак, этанол) в низких концентрациях совместно с ионизирующим излучением в низких дозах способствовало индукции цитогенетических повреждений в клетках костного мозга. По-видимому, компоненты клеточного ядра кариоцитов костного мозга так же являются единой мишенью, как для ионизирующего излучения, так и для комплекса исследуемых химических веществ.

Анализ экспериментальных исследований показал высокую корреляционную зависимость между изменением количества хромосомных аберраций в клетках костного мозга и показателями метаболизма эритроцитов (лактат, ЛДГ, Г6ФД) при изолированном и сочетанном воздействии ионизирующего излучения и химических веществ на организм животных. На основе наших исследований и анализа литературных данных выявленная статистическая зависимость может носить и функциональный характер. Так, повышение количества хромосомных аберраций в клетках костного мозга и изменение митотической активности клеток этого органа может быть одной из причин нарушения метаболических процессов в эритроцитах периферической крови, как при химическом, так и при радиационном воздействии.

Важно отметить, что изолированное химическое воздействие оказывало более выраженные нарушения хромосомного аппарата в ядросодержащих клетках костного мозга и метаболические сдвиги обменных процессов в эритроцитах, чем гамма-облучение в низких дозах.

Наблюдаемые фазовые изменения количества кариоцитов кроветворного органа способствовали изменению морфологического состава периферической крови в виде лейкопении.

Результаты экспериментальных исследований сочетанного радиационно-химического воздействия на организм животных необходимо учитывать при коррекции гигиенических нормативов для химических веществ и ионизирующего излучения, в особенности при осуществлении длительных межпланетных пилотируемых полетов. Результаты сравнительной характеристики динамики показателей цитогенетических нарушений и метаболизма эритроцитов показали, что изменения метаболического статуса эритроцитов могут быть использованы в качестве тест - маркера для оценки состояния здоровья космонавтов при осуществлении длительных межпланетных пилотируемых полетов.

 
 

Список использованной литературы по медицине, диссертация 2007 года, Баранцева, Мария Юрьевна

1. Афанасьев Р.В., Давыдов Б.И., Зуев В.Г., Беспалюк Г.Н. Неопределенность отдаленных последствий малых доз ионизирующих излучений. Тез. докл. XIII конференции по космической биологии и авиакосмической медицине. М., 2006, с. 23.

2. Байкова В.Н., Казанова Г.В., Думбрайс К.О. и др. Показатели системы перекисного окисления липидов у детей, проживающих на территории, загрязненной радионуклидами после аварии на Чернобыльской АЭС. Российский онкологический журнал. 1998, №2, с.53-55.

3. Балакин В.Е., Заичкина С.И., Розанова О.М., и др. Эффект возрастной стабилизации генома при действии малых доз ионизирующего излучения. Профилактика старения. 2001, вып. 4, с. 18-21.

4. Барабой В.А., Брехман И.И., Голотин В.Г., Кудряшов Ю.Б. Перекисное окисление и стресс. СПб., Наука, 1992, 148 с.

5. Бобков В.Г., Кеирим-Маркус И.Б., Демин В.П. и др. Радиационная безопасность при космических полетах. М., 1964, с.338.

6. Богданов И.М., Сорокина М.А., Маслюк А.И. Проблема оценки эффектов воздействия "малых" доз ионизирующего излучения. Бюллетень сибирской медицины. 2005, № 2, с. 145-151.

7. Боков А.Н. Динамика выделения вредных веществ в зависимости от времени после изготовления материала. В кн.: «Гигиена и токсикология высокомолекулярных соединений». Д., Химия, 1975, с. 24-27.

8. Будник М.И. Клетки периферической крови при воздействии на организм факторов низкой интенсивности химической и физической природы. Автореф. дисс. канд. биол. наук, М., 2003, с. 9-17.

9. Булдаков JT.A., Калистратова B.C. Положительное действие малых доз ионизирующих излучений на организм животных и человека. Энергия, 2004, №11, с. 16-25.

10. Бурлакова Е.Б., Голощапов А.Н., Горбунова Н.В. и др. Особенности биологического действия «малых» доз облучения. Радиационная биология. Радиоэкология, 1996, т. 36, №4, с. 610-631.

11. Бурлакова Е.Б., Додина Г.П., Красавин Е.А. Действие малых доз ионизирующего излучения и химических загрязнений на человека и биоту. Бюллетень общественной информации по атомной энергии, 1999, №5-6, с. 36-40.

12. Бурлакова Е.Б. Влияние низкоинтенсивного облучения в малых дозах на возникновение спонтанного лейкоза у мышей. III Международный симп. «Механизм действия сверхмалых доз», М., 2002, с. 47-51.

13. Василенко И.Я., Василенко О.И. Медицинские проблемы техногенного загрязнения окружающей среды. Гигиена и санитария, 2006, №1, с. 22-25.

14. Ватуля Н.М, Найдина В.П. Исследование содержания жирных кислот в плазме крови с помощью газожидкостной хроматографии. Актуальные проблемы космической биологии и медицины, М., 1980, с. 98-99.

15. Верное С.Н., Вакулов П.В., Горчаков Е.В. и др. Радиационные пояса Земли и космические лучи. М., Просвещение, 1970.

16. Великий Н.Н., Старикович JI.C., Коробов В.Н., Дацюк JI.A. Влияние хронического воздействия рентгеновского излучения на метаболизм и функционирование эритроцитов. Радиационная биология. Радиоэкология, 1999, т. 39, .№ 4. с. 425-429.

17. Виленчик М.М. Модификация канцерогенных и противоопухолевых эффектов излучений. 1 Всесоюзный радиобиологический съезд М., Пущино, 1989, т.1, с. 287.

18. Воробьев А.П. Гигиеническая оценка модифицирующего действия факторов окружающей среды химической и радиационной природы на организм человека. Автореф. канд. биол. наук, Оренбург, 2005, с. 19-20.

19. Воронцова З.А., Шлыков И.П., Абрамов М.М. Радиомодифицирующий эффект этанола: дозо-временная динамика. Тез. докл. X конференции по космической биологии и авиакосмической медицине, М., Слово, 7-10 июня 1994. с. 328-329.

20. Ворожцова С.В. Федоренко Б.С. Цетлин В.В. Влияние низких доз ускоренных заряженных частиц с различными ЛПЭ на цитогенетические изменения в клетках эпителия роговицы мышей. Авиакосмическая и экологическая медицина, 2004, №4, с. 44-49.

21. Ворожцова С.В., Раков Д.В. Цитогенетические изменения в клетках млекопитающих после облучения протонами с энергией 1000 МэВ и гамма-лучами l37Cs. Авиакосмическая и экологическая медицина, 2005., т. 39, № 3, с. 38-41.

22. Газенко О.Г., Генин A.M. Человек под водой и в космосе. В сб.: «Материалы симпозиума по проблемам токсикологии в замкнутых экологических системах». М., «Воениздат», 1967, 390 с.

23. Гераськин С.А., Севанькаев А.В. Универсальный характер закономерностей индукции цитогенетических повреждений низкодозовым облучением и проблема оценки генетического риска. Радиационная биология. Радиоэкология, 1999, т. 39, №1, с. 35-40.

24. Германова А.Л. Ацетальдегид. Научные обзоры советской литературы по токсичности и опасности химических веществ. М., Внешторгиздат, 1989, вып. 111, 64 с.

25. Германова А.Л. Ацетон. Научные обзоры советской литературы по токсичности и опасности химических веществ. М., 1986, вып. 97, 47 с.

26. Гончарова И.А., Фрейдин М.Б., Карпов А.Б. и др. Молекулярно-генетические подходы, применяемые для оценки воздействия радиации на геном и индивидуальную радиочувствительность человека. Сибирский медицинский журнал, 2003, № 5, с. 78-83.

27. Гончаренко Е.Н., Антонова С.В., Ахалая МЛ. Влияние малых доз ионизирующей радиации на уровень содержания катехоламинов и кортикостероидов в надпочечниках мышей. Радиационная биология Радиоэкология, 2000, т. 40, №2, с. 160-161.

28. Григорьев А.И., Потапов А.Н. Медико-биологическое обеспечение пилотируемой марсианской экспедиции. Авиакосмическая и экологическая медицина, 2003, №5, с.23-29.

29. Григорьев Ю.Г. Космическая радиобиология. М., Энергоатомиздат, 1982.

30. Григорьев Ю.Г., Ковалев Е.Е., Петров В.Н. Радиационная безопасность экипажей кораблей «Союз». В кн.: Космические полеты на кораблях «Союз». М., «Наука», 1976, с. 89-117.

31. Григорьев А.И., Коваленко Е.А. Проблема гомеостаза в космической антропоэкологии. Тез. докл. VIII Всесоюзной конференции по космической биологии и авиакосмической медицине. М., Калуга, Наука, 1986, с. 42-45.

32. Губернский Ю.Д. Перспективные направления гигиенического исследования урбанизированной жилой среды. Гигиена и санитария, 2000, №1, с. 8-12.

33. Дружинин В.Г., Минина В.И., Мокрушина Н.В. Цитогенетические нарушения у рабочих коксохимического производства. Медицина труда и промышленная экология, 2002, №10, с. 22-24.

34. Дружинин В.Г. Хромосомные нарушения у населения крупного промышленного региона: пространственно-временной цитогенетический мониторинг. Автореф. дисс. докт.биол.наук. М., 2003, с. 14-18.

35. Егорова Н.Н. Состояние свободнорадикального окисления как критерий гигиенической оценки опасности атмосферных загрязнений. Автореф. дисс. докт.мед.наук, М., 1999, с. 15-21.

36. Елисеева О.И. Некоторые гематологические и биохимические нарушения при хроническом ингаляционном воздействии у-бутиролактона. В сб.: Гигиеническое значение факторов малой интенсивности в условиях производства и населенных мест. М., 1983, с. 67-72.

37. Ермаков А.В., Вейко Н.Н., Моисеева О.С. Транспозиция локусов хромосом в клетках-свидетелях при воздействии адаптирующих доз ионизирующей радиации. Радиационная биология. Радиоэкология, 2005, т. 45, №5, с. 535-540.

38. Жербин Е.А., Новоселова Г.С., Комар В.Е. Комбинированное действие излучения и химических факторов. НКРЗ, 1982, 20 с.

39. Журков B.C., Катосова Л.Д., Платонова В.И. и др. Анализ хромосомных аберраций в лимфоцитах крови женщин контактирующих с диоксинами. Токсикологический вестник, 2000, №2, с. 2-6.

40. Заичкина С.И., Клоков Д.Ю., Розанова О.М. Зависимость величины цитогенетического адаптивного ответа в клетках костного мозга крыс от дозы хронического гамма-облучения in vivo. Радиационная биология. Радиоэкология, 1999, т. 39, №4, с. 404-405.

41. Залогуев С.Н., Савина В.П., Мухамедиева Л.Н. и др. Санитарно-гигиеническая характеристика среды обитания орбитальной станции «Салют-7». Космическая биология и авиакосмическая медицина, 1984, № 2, с. 40-43.

42. Иванов С.Д., Семенов В.В., Кованько Е.Г. Влияние малых доз радиации на токсические эффекты низких концентраций ртути. Токсикологический вестник, 2002, №4, с. 34-38.

43. Иванов С.Д., Кованько Е.Г., Ямшанов В.А. Изменения ДНК лейкоцитов крови при малых дозах радиационно-химических воздействий и сокращение продолжительности жизни животных. Клиническая геронтология, 1999, №3, с. 21-28.

44. Иванова С.М., Лабецкая О.И. Метаболизм эритроцитов. В кн. Орбитальная станция «Мир», М., 2001, т. I, с. 612-615.

45. Иванова С.М., Ярлыкова Ю.В., Лабецкая О.И. и др. Система крови в условиях космических полетов и после их завершения. В кн. Орбитальная станция «Мир», М., 2002, т. 2, с. 171-174.

46. Иванова С.М., Брантова С.С., Лабецкая О.И. и др. Влияние длительного космического полета на метаболизм эритроцитов и функциональное состояние их мембран. Космическая биология и авиакосмическая медицина, 1990, №6, с. 18-21.

47. Ильин Л.А., Кириллов В.Ф., Коренков И.П. Радиационная гигиена, М., Медицина, 1999, 380 с.

48. Источники, эффекты и опасность ионизирующей радиации. Доклад НКДАР ООН за 1988 г. (пер. с англ.) М., 1993, т. 2.

49. Карпенко В.Н., Диденко М.Н., Ташкер И.Д. и др. Комбинированное действие фосфорорганического пестицида ДДВФ и этанола. Гигиена и санитария, 1993. № 1, с 6466.

50. Карелин А.О. Проблемы методологии оценки окружающей среды и пути их решения. Гигиена и санитария, 2006, №1, с. 25-27.

51. Керим-Маркус И.Б. Особенности лучевого канцерогенеза у человека при малых дозах и малой мощности дозы. Радиационная биология. Радиоэкология, 1998, т.38, №5, с. 673683.

52. Юпоченович В.И. Опыт работы в области гигиены окружающей среды в республике Беларусь. Гигиена и санитария, 2005, №6, с. 36-40.

53. Коган Ю.С. Способ количественной оценки комбинированного и комплексного действия на организм химических и физических факторов внешней среды. Гигиена и санитария, 1973, №12, с. 89-91.

54. Косенко М.М., Остроумова Е.В., Крестинина Л.Ю. и др. Анализ раковойзаболеваемости у облученного населения прибрежных сел реки Теча. Медицинская радиология и радиационная безопасность, 2001, т. 46, № 6, с. 22-30.

55. Конопля Е.Ф. Функциональное состояние репродуктивной системы в условиях действия низкоинтенсивного хронического облучения в малых дозах. Тез. докл. IV съезда по радиационным исследованиям, М., 2001, т. 1, с. 294.

56. Кудряшов Ю.Б. Радиационная биофизика (ионизирующие излучения). Под ред. В.К. Мазурика, М.Ф. Ломанова, М., Физматлит, 2004,448 с.

57. Кузин A.M. Проблема «малых» доз и идеи гормезиса в радиобиологии. Радиобиология, 1985, т. 31, № 1, с. 16-21.

58. Кузин A.M. Природный радиоактивный фон и его значение для биосферы Земли. М., Наука, 1991, 116 с.

59. Кузин A.M. Стимулирующее действие ионизирующего излучения на биологические процессы (к проблеме биологического действия малых доз), М., Атомиздат, 1977,135 с.

60. Курляндский Б.А., Филова В.А. Общая токсикология. М., Медицина, 2002, 608 с.

61. Куликов В.Ю., Семенюк А.В., Колесникова Л.И. Перекисное окисление липидов и холодовой фактор. Новосибирск, Наука, 1988, 191 с.

62. Кустов В.В, Тиунов Л.А. Токсикология продуктов жизнедеятельности и их значение в формировании искусственной атмосферы герметизированных помещений. Проблемы космической биологии и медицины, М., Наука. 1969, т. 11, с. 130-133.

63. Кустов В.В., Тиунов Л.А., Васильев Г.А. Комбинированное действие промышленных ядов, М., Медицина, 1975, 255 с.

64. Кустов В.В., Белкин В.И., Абидин Б.И. и др. Влияние ограничения подвижности животных. Интенсивность образования и выведения некоторых газообразных продуктов жизнедеятельности. Космическая биология и медицина, 1971, т. 5, № 2, с. 14-17.

65. Литвинов Н.Н. Совершенствование научных основ профилактики заболеваемости, обусловленной химическими нагрузками малой интенсивности. Тез. докл. второго съезда токсикологов России, М., 2003, с. 159-160.

66. Магомедов М.Г. Показатели перекисного окисления липидов у белых крыс при сочетанном радиационно-химическом воздействии. Материалы российской научной конф. «Медицинские аспекты радиационной и химической безопасности», СПб., 2001, с. 336-338.

67. Маленченко А.Ф. Хромосомные аберрации в семенниках мышей при сочетанном действии нитрата натрия и излучения. Доклады АН БССР, 1989, т. 33, №11.

68. Мирошниченко Л.И., Петров В.М. Динамика радиационных условий в космосе. М., Энергоатомиздат, 1985.

69. Митрофанов Ю.А. Индуцированная изменчивость хромосом эукариот. М., наука, 1994, с. 18-45.

70. Москалев Ю.И., Булдаков Л.А., Ильин В.Н., Кудрицкий Ю.К. Изучение зависимости доза-эффект с позиций радиационной гигиены. Медицинская радиология, 1983, №4, с. 74-82.

71. Моссэ И.Б. Роль первичных поражений азотистых оснований ДНК в проявлении радиогенетических эффектов в клетке. Академия наук СССР научный совет по проблемам радиобиологии. Информационный бюллетень, 1983, №27, с. 16-18.

72. Мухамедиева Л.Н. Закономерности формирования и гигиеническое регламентирование многокомпонентного загрязнения воздушной среды пилотируемых орбитальных станций. Автореф. дисс. докт. мед. наук. М., 2003, 50 с.

73. Мухамедиева Л.Н., Никитин Е.И. Физиологические реакции организма на ингаляционное воздействие химических факторов малой интенсивности. Тез. докл. XVIII съезда физиологического общества имени И.П. Павлова, Казань, 25-28 сентября. 2001, с. 553-554.

74. Нефедов Ю.Г., Савина В.П., Соколов Н.Л., Рыжкова В.Е. Изучение состава микропримесей в воздушной среде гермообъектов. Труды III Всесоюзной конференции по авиационной и космической медицине. М., Калуга, 20-23 мая 1969, т. 3, с. 19.

75. Нефедов Ю.Г., Заголуев С.Н., Шилов В.М., Борщенко В.В. К проблеме формирования среды обитания кабины космического корабля. Проблемы космической медицины. М., 1966. с. 287-288.

76. Пелевина И.И., Готлиб В .Я., Кудряшова О.В. Нестабильность генома после воздействия радиации в «малых» дозах (в 10-километровой зоне аварии на ЧАЭС и в лабораторных условиях). Радиационная биология. Радиоэкология, 1996, т. 36, № 4, с. 546-560.

77. Петров В.М., Акатов Ю.А., Архангельский В.В., Бенгин В.В., Бондаренко В.А., Митрикас В.Г. и др. Научные радиационно-физические и радиобиологические эксперименты. В кн. Орбитальная станция «Мир»., М., 2002, т. 2, с. 412-459.

78. Петров В.М., Бенгин В.В., Коломенский А.В., Шуршаков В.А. Проблемы радиационной безопасности экипажа марсианской экспедиции. Авиакосмическая и экологическая медицина, 2003, №5, с.50-56.

79. Петров В.М., Власов А.Г. Оценка радиационного риска детерминированных эффектов воздействия космической радиации при пилотируемой экспедиции на Марс. Авиакосмическая и экологическая медицина, 2004, № 4, с. 37-44.

80. Пилинская М.А. Цитогенетические эффекты в соматических клетках лиц, пострадавших вследствие Чернобыльской катастрофы, как биомаркер действия ионизирующих излучений в малых дозах. Международный журнал радиационной медицины, 1999, № 2, с. 60-66.

81. Пинигин М.А. Теория и практика оценки комбинированного действия химического загрязнения атмосферного воздуха. Гигиена и санитария, 2001, №1, с. 9-13.

82. Поляков В.В., Иванова С.М., Носков В.Б. Гематологические исследования в условиях космических полетов. Авиакосмическая и экологическая медицина, 1998, №2, с. 9-18.

83. Попов A.M., Горшунова А.И. Исследование газовыделения некоторых резин, полученных радиационным и обычным способом вулканизации. Каучук и резина. 1969, №5., с. 22-23.

84. Потапов А.Н. Подходы к медико-биологическому обеспечению пилотируемых полетов на Марс. Авиакосмическая, гипербарическая медицина и биология. Инф. Бюлл. 1, М., 1992, с.3-11.

85. Ревазова Ю.А., Жуков B.C. Генетические подходы к оценке безопасности факторов среды обитания человека. Вестник РАМН, 2001, №10, с. 77-79.

86. Ревазова Ю.А. Генотоксическое действие ксенобиотиков. В кн. Общая токсикология. Под ред. Курляндского Б.А., Филова В.А., М., Медицина, 2002, с. 385-396.

87. Рипстайн У. Дж., Коулман М.Э. Токсикологическая оценка космического корабля «Колумбия» (пер. с англ.). Космическая биология и авиакосмическая медицина, 1984, № 4, с. 87-96.

88. Роббинс Д.Е., Петров В.М., Шиммерлинг В. И., Ушаков И.Б. Ионизирующая радиация. В кн. Космическая биология и медицина. ТЗ. Книга 2. Человек в космическом полете, М., наука, 1997, с.155-204.

89. Савина В.П. Перспективы регламентирования газовой среды герметичных помещений. Тез. докл. VIII Всесоюзной конференции по космической биологии и авиакосмической медицине., М., Калуга, Наука, 1986, с. 252-254.

90. Савина В.П., Соломин Г.И., Микос К.Н. Токсиколого-гигиеническая характеристика среды. В кн.: Результаты медицинских исследований выполненных на орбитальном научно-исследовательском комплексе «Салют-6 Союз». Л., Наука. 1986. с. 39-43.

91. Салахов Р.А., Камилов Ф.Х., Фархутдинов P.P. и др. Энергетический статус эритроцитов у работников производства пиромеллитового диангидрида. Здравоохранение Башкортостана, 1998, №5-6, с. 20-26.

92. Саноцкий И.В., Фоменко В.Н. Отдаленные последствия влияния химических соединений на организм. М., Медицина ,1979,232 с.

93. Севанькаев А.В. Радиочувствительность хромосом лимфоцитов человека в митотическом цикле. М., Энегроатомиздат, 1987, 159 с.

94. Северин Е.С. Биохимия: Учебник. М., Гэотар-мед, 2003, 784 с.

95. Севанькаев А.В. Современное состояние вопроса количественной оценки цитогенетических эффектов в области низких доз радиации. Радиобиология. 1991, т. 31, вып. 4, с. 600-605.

96. Соломин Г.И. Безопасность применения неметаллических материалов. В кн. Орбитальная станция «Мир». М., 2001. т. 1. с. 153-158.

97. Соломин Г.И., Яблочкин В.Д., Горшунова А.И. и др. Исследование воздушной среды макета космической орбитальной станции «Салют 6». В сб. тезисов «Авиационная медицина», Калуга, 1979. с. 89-90.

98. Солдатов С.К., Ушаков И.Б. Малые дозы и.и. и ближайшие и отдаленные гематологические сдвиги (обзор литературы). Медицина труда и промышленная экология, 1995, №9, с. 20-22.

99. Стокингер Г.Е. Обоснованность и опасность экстраполирования предельно допустимых концентраций вредных веществ применительно к условиям непрерывного воздействия (пер. с англ.). Человек под водой и в космосе. М., Воениздат, 1967, с. 133156.

100. Сычева Л.П., Рахманин Ю.А., Ю.А. Ревазова Ю.А., Журков B.C. Роль генетических исследований при оценке влияния факторов окружающей среды на здоровье человека. Гигиена и санитария, 2005, №6, с. 59-62.

101. Тахауов P.M., Семенова Ю.В., Карпов А.Б. и др. Доклиническая диагностика гомеостатического дисбаланса у работников плутониевого производства. Сибирский медицинский журнал, 2003, т. 18, № 5, с. 90-96.

102. Тернов В.Н. Сравнительная оценка риска воздействия различных источников ионизирующего излучения. Здравоохранение, 1998, с. 30-31.

103. Тиунов Л.А. Метаболические нарушения при действии химических веществ загрязняющих окружающую среду. Тез. докл. Всесоюзной конф. «Проблемы мониторинга за здоровьем населения промышленных городов». Часть 2-3, Ангарск. 1989, с. 186.

104. Урбах В.Ю. Статистический анализ в биологических и медицинских исследованиях. М., Медицина, 1975, с. 193-195.

105. Ушаков А.С., Иванова С.М., Атауллаханов Ф.И. и др. Особенности метаболизма эритроцитов человека в условиях длительного космического полета. Космическая биология и авиакосмическая медицина, 1985, № 5, с. 19.

106. Ушаков И.Б., Володин А.С., Чикова С.С. и др. Медицинские аспекты защиты здоровья населения от вредного воздействия факторов окружающей среды. Гигиена и санитария, 2005, №6, с. 29-34.

107. Федоренко Б.С., Ершов А.В., Щербак Н.П. и др. Морфологические и цитогенетические нарушения у крыс, находившихся в условиях повышенного радиационного фона на протяжении длительного времени. Авиакосмическая и экологическая медицина, 2002, № 1, с. 21-26.

108. Фонарева Е.И., Коноваленко А.Н. Критерии оценки влияния многокомпонентного загрязнения атмосферного воздуха на здоровье населения. Вопросы санитарной химии и токсикологии воздушной среды. СПб., 1993, вып. 8, с. 24-32.

109. Фучич А. Генотоксические исследования популяций, профессионально подверженных воздействию физических и химических агентов в низких дозах в республике Хорватия. Радиационная биология. Радиоэкология, 2004, т. 44, №3, с. 328-332.

110. Хандогина Е.К., Зверева С.В. Адаптивный ответ и неоднозначное действие малых доз радиации. Тез. докл. 3-й Международной конф. «Генетические последствия чрезвычайных радиационных ситуаций», Дубна, 2005.

111. Хаффнер Дж. Ядерное излучение и защита в космосе. М., Атомиздат, 1971, 320 с.

112. Шальнов Б.И. Изменения условнорефлекторной деятельности собак при действии малых доз радиоактивного натрия-24 на фоне предварительного введения алкоголя. Журнал высшей нервной деятельности им. И.П. Павлова. М., Наука, 1965, т. 15, вып. 3, с. 445-453.

113. Шафиркин А.В., Бенедиктова В.П., Коломенский А.В., Петров В.М., Цетлин В.В. Радиационный риск для космонавтов при осуществлении космических полетов на орбитальной станции «Мир». Авиакосмическая и экологическая медицина, 1998, №4, с. 12-16.

114. Эйдус JI.X., Эйдус B.JI. Проблемы механизма радиационного и химического гормезиса. Радиационная биология. Радиоэкология, 2001, т. 41, №5, с. 627-630.

115. Яворовски 3. Гормезис: благоприятные эффекты излучения. Медицинская радиология и радиационная безопасность, 1997, т. 42, № 2. с. 11-17.

116. Ярмоненко С.П. Радиобиолгия человека и животных. М., Высшая школа, 1988, 424 с.

117. Ярмоненко С.П., Вайсон А.А. Радиобиология человека и животных. М., Высшая школа, 2004, с. 414-415.

118. Armstrong TW, Colborn BL. Predictions of secondary neutrons and their importance to radiation effects inside the International Space Station. Radiat. Meas., 2001, v.33, 3, p.229-234.

119. Avti PK, Pathak CM, Kumar S, Kaushik G, Kaushik T, Farooque A, Khanduja KL, Sharma SC. Low dose gamma-irradiation differentially modulates antioxidant defense in liver and lungs of Balb/c mice. Int. J. Radiat. Biol., 2005, v.81, 12, p.901-910.

120. Azzam EI, de Toledo SM, Raaphorst GP, Mitchel RE. Low-dose ionizing radiation decreases the frequency of neoplastic transformation to a level below the spontaneous rate in C3H ION 1/2 cells. Radiation Research, 1996, v.146,4, p. 369-373.

121. Badhwar GD, Cucinotta FA, O'Neill PM. An analysis of interplanetary space radiation exposure for various solar cycles. Radiat. Res., 1994, v.138, 2, p.201-208.

122. Bertsch W., Zlatkis A. Concentration and analysis of organic volatiles in «Skylab-4». J. Chromatography, 1976, v.99, p. 637-687.

123. Benderitter M, Vincent-Genod L, Pouget JP, Voisin P. The cell membrane as a biosensor of oxidative stress induced by radiation exposure: a multiparameter investigation. Radiat. Res., 2003, v.159,4, p.471-483.

124. Biological Effect of Low Radiation Doses Models, Mechanisms and Uncertainties. Report to the General Assambley, 48 Session of UNSCEAR. Vienna, April 12-16, 1999.

125. Bil'ko NM, Starodub NF, Bebeshko VG, Ternovoi KS. Erythron system function in adults subjected to radiation exposure as a result of the Chernobyl accident. Tsitol. Genet., 1996, v.30,4, p.55-62.

126. Booz J., Feinendegen L.E. A microdosimetric understanding of low-dose radiation effects. Internat. J. Radiat. Biol., 1988, v.53, 1, p. 13-21.

127. Brewer D.A., Hall S.B. A simulation model for the analysis of Space station gasphase trace contaminants. Acta Astronaut, 1987, v. 15, p. 527-543.

128. Brockett R.M. Skylab environmental and crew microbiology studies. Proc. Skylab life sci. symp. Houston, 1974, v. 1, p. 121-143.

129. Burkart W, Jung T. Health risks from combined exposures: mechanistic considerations on deviations from addictively. Mutation Research, 1998, v.411, 2, p.l 19-128.

130. Burkart W., Finch G.L., Jung T. Quantifying health effects from the combined action of low-level radiation and other environmental agents: can new approaches solve the enigma? Sci Total Environmental, 1997, v.205, 1, p.51-70.

131. Cai L., Liu SU. Cytogenetic adaptive response induced by low dose radiation. Yi Chuan Xue Bao., 1991, v.18, 2,p.l09-14.

132. Cohen B. Test of the linear no-threshold theory of radiation carcinogenesis for inhaled radon decay products. Health Phys., 1995, 68, p.157-174.

133. Corkcle J.P., Mobson W.E., Adams J.D. et al. Detalecl study of contaminant Production in a space cabin Simulation of 766 Hg Aerospace Medicine, 1967, v. 38, 5, p. 491.

134. Dobrzynska MM. Damage of genetic material in somatic cells of mice exposed to low doses of X-rays. Rocz Panstw Zakl Hig., 2005, v.56, 1, p. 25-33.

135. Dominguez I, Panneerselvam N, Escalza P, Natarajan AT, Cortes F., Adaptive response to radiation damage in human lymphocytes with hydrogen peroxide as measured by the cytokinesis-block micronucleus technique. Mutat. Res., 1993, v.301, 2, p.135-141.

136. Garattini S., Marcucci F., Mussini F. Biortansformation of drugs to pharmacologically active metabolites. In. Gillette J.R. and Mitchell J.R. ed Concepts in biochemical pharmacology. Berlin. Springer ver lag, 1975, v. 3. p. 113-119.

137. Getselev I, Rumin S, Sobolevsky N, Ufimtsev M, Podzolko M. Absorbed dose of secondary neutrons from galactic cosmic rays inside the International Space Station. Adv. Space Res., 2004, v.34, 6, p.1429-1432.

138. Gulaya NM, Margitich VM, Chumak AA, Lagarde M, Prigent AF, Zhukov AD, Klimashevsky VM, Govseeva NM. Chernobyl clean-up workers erythrocyte membrane lipid content at the remote period. Ukr. Biokhim. Zh., 2000, v.72, 6, p.56-62.

139. Halliwell B, Wasil M., Grootveld. M. Biologically significant acavenging of the myeloperoxidase derived oxidant hypoclorous acid by ascorbic acid. FEBS Lett, 1987, v. 213. p. 15-18.

140. Kohnlein W., Nussbaum R.H. Reassessment of radiogenetic cancer risk and mutagenesis at low doses of ionizing radiation. Advances in Mutagenesis Research. Ed. G.Obe. Berlin a.o.: Springer-Verlag, 1991, l,p.53-80.

141. Lackey T. Physiological benefits from low levels of ionizing radiation. Health Phys., 1982,43, p.771-789.

142. Lackey T. Ionizing radiation promotes protozoan reproduction. Radiat. Res., 1986, 108, p.215-221.tb •

143. Leban M.J., Wagnes P.A. Space station traces contaminate control. Proc. 19 Intersociety conference on environmental systems. San. Diego, С A 1989.

144. Levitt M.D., Lasser R.B., Schwarts F.E. et al. Studies of a flatulent patient. New Engl. J. Med. 1976. v. 295. p. 260-262.

145. Lloyd D.C., Edvards A., Leonard A. et al. Chromosomal aberrations in human lymphocytic induced on vitro by very low doses of X- rays. Int. Radiat. Biol., 1992, v. 61, 3, p.335-343.

146. Lubin J. Radon exposed underground miners and inverse dose rate effects. Health Phys., 1998, 69, p.494-500.

147. Lutz W.K. Dose-response relationship and low dose extrapolation in chemical carcinogenesis. Carcinogenesis, 1990, v.ll, №8, p. 1243-1247.

148. Macklis R.M., Beresford B. Radiation hormesis. J. Nucl. Med., 1991, v. 32, №2, p. 350-359.

149. Marples В., Joiner M.C. The response of Chinese hamster V79 cells to low radiation doses: evidence of enhanced sensitivity of the whol cell population. Radiat. Res., 1993, v. 133, 1, p. 41-51.

150. Moisoi N, Petcu I. A bone marrow peroxidation study on low-dose irradiated rate. Nutrition, 1995,11,(5 suppl), p.585-587.

151. Molhave L., Bach В., Pedersen O.F. Human reaction to low concentrations of Volative organic compounds Environ. Intern., 1986, v. 12, p. 167-175.

152. Neel J.V. Genetic studies at the atomic bomb casualty commission-radiation effects research foundation: 1946-1997. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1998, 95, p. 5432-5436.

153. Pissarenko NF. Radiation environment due to galactic and solar cosmic rays during manned mission to Mars in the periods between maximum and minimum solar activity cycles. Adv. Space Res., 1994, v.14, 10, p.771-778.

154. Preston R.J. Bystander effects, genomic instability, adaptive response, and cancer risk assessment for radiation and chemical exposures. Toxicol. Appl. Pharmacol. 2005. v. 207, 2, p. 550-556.

155. Prokes J, Haas T, Sromova S, Jojkova K, Vulterin K. Hormesis in effect of low uranium doses on organisms. Sb. Lek., 1994, v. 95, 4, p.347-355.

156. Preston R. J., Au W., Bender M.A. et al. Mammalian in vivo and in vitro cytogenetic assays: a report of the US EPA Gene-tox Program. Mutat. Res., 1981, v. 87, p. 143-188.

157. Purohit SC, Bisby RH, Cundall RB. Chemical damage in gamma-irradiated human erythrocyte membranes. Int. J. Radiat. Biol. Relat. Stud. Phys. Chem. Med., 1980, v. 38, 2, p. 159-166.

158. Savina V.P., Micos K.N., Ryzkova V.E. et al. Simulation of space cabin atmosphere Acta astronaut, 1979, v. 6, p. 1251-1254.

159. SchaefFer K.E. Gaseous irement in manned Space flights In.: Bioastronautics. New York. London: Acad. Press., 1964, p. 76-110.

160. Schwenke К, Coslar S, Muhlensiepen H, Altman KI, Feinendegen LE. Lipid peroxidation in microsomes of murine bone marrow after low-dose gamma-irradiation. Radiat. Environ. Biophys., 1994, v. 33, 4, p.315-323.

161. Stronati L, Farris A, Pacchierotti F. Evaluation of chromosome painting to assess the induction and persistence of chromosome aberrations in bone marrow cells of mice treated with benzene. Mutat. Res., 2004, v. 545,102, p. 1-9.

162. Townsend LW, Cucinotta FA, Wilson JW. Interplanetary crew exposure estimates for galactic cosmic rays. Radiat. Res., 1992, v.129, 1, p.48-52.

163. Townsend LW, Nealy JE, Wilson JW, Atwell W. Large solar flare radiation shielding requirements for manned interplanetary missions. J. Spacecr Rockets., 1989, v. 26, 2, p. 126128.

164. Wouters BG, Sy AM, Skarsgard LD. Low-dose hypersensitivity and increased radioresistance in a panel of human tumor cell lines with different radiosensisivity. Radiat. Res., 1996, v. 146, 4, p. 399-413.

165. Zlatkis A., Lichtenstein H.A. et al. Concentration and analysis of volative urinary metabolites. J. Chromatography, 1973, № 11, p. 299-304.