Автореферат и диссертация по медицине (14.00.29) на тему:Детекция и мониторинг специфической реаранжировки генов иммуноглобулинов в процессе лечения острых лимфобластных лейкозов

ДИССЕРТАЦИЯ
Детекция и мониторинг специфической реаранжировки генов иммуноглобулинов в процессе лечения острых лимфобластных лейкозов - диссертация, тема по медицине
АВТОРЕФЕРАТ
Детекция и мониторинг специфической реаранжировки генов иммуноглобулинов в процессе лечения острых лимфобластных лейкозов - тема автореферата по медицине
Давидян, Юлия Рубеновна Москва 2007 г.
Ученая степень
кандидата медицинских наук
ВАК РФ
14.00.29
 
 

Автореферат диссертации по медицине на тему Детекция и мониторинг специфической реаранжировки генов иммуноглобулинов в процессе лечения острых лимфобластных лейкозов

На правах рукописи

у

Давидян Юлия Рубеновна

"Детекция и мониторинг специфической реаранжировки генов иммуноглобулинов в процессе лечения острых лимфобластных лейкозов".

14.00.29 - Гематология и переливание крови

АВТОРЕФЕРАТ диссертации на соискание ученой степени кандидата медицинских наук

Москва, 2007

003055558

Работа выполнена в Государственном учреждении Гематологический Научный центр Российской Академии Медицинских Наук

Научный руководитель:

доктор медицинских наук E.H. Паровичникова

Официальные оппоненты:

доктор биологических наук Н. И. Дризе

доктор медицинских наук, профессор А. И. Карачунский

Ведущее научное учреждение:

Московский Научно-Исследовательский Онкологический институт им. П.А.Герцена Министерства Здравоохранения Российсмэй Федерации

Защита состоится "11 " апреля 2007 г. в 14 час.

на заседании диссертационного Совета Д 001.042.01 при Государственном учреждении Гематологический Научный центр Российской Академии Медицинских Наук по адресу: 125167 Москва, Новозыковский проезд, д.4а

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке Государственного учреждения Гематологический Научный центр Российской Академии Медицинских Наук

Автореферат разослан " 6 " марта 2007 года

Ученый секретарь диссертационного Cobi кандидат медицинских наук

Актуальность проблемы.

Несмотря на интенсификацию лечения и возможность достижения полной ремиссии у 80-85% взрослых больных острым лимфобластным лейкозом (ОЛЛ), длительная безрецидивная выживаемость больных не превышает 30-40%. Как известно, при ОЛЛ существует множество прогностических факторов, определяющих эффективность терапии: возраст пациента, число лейкоцитов в дебюте заболевания, иммунофенотип бластных клеток и цитогенетические аномалии, сроки достижения ремиссии [Hoelzer D., Hematology, 2002]. Эти факторы в определенной степени позволяют проводить дифференцированную терапию ОЛЛ, что в ряде случаев значительно улучшает долгосрочные результаты. Одним из весомых факторов прогноза является чувствительность опухолевых клеток к преднизолону, определяемая с помощью подсчета числа бластных клеток в периферической крови или костном мозге на 7-ой день монотерапии этим препаратом. Так, процент достижения полной ремиссии у больных ОЛЛ, у которых бластные клетки чувствительны к преднизолону, составляет 87%. Кроме того, доказано, что чувствительность опухолевых клеток к преднизолону влияет и на долгосрочные результаты терапии ОЛЛ: общая и безрецидивная выживаемость при чувствительности бластных клеток к преднизолону составляет 33% и 32%, при отсутствии - 22% и 17%, соответственно [Annino L., Blood, 2002]. Этот фактор прогноза стал одним из ключевых в ходе создания нового протокола «ОЛЛ-2005», разработанного в отделении химиотерапии гемобластозов и трансплантации костного мозга.

Исключительно важными факторами прогноза при острых лимфобластных лейкозах являются обнаружение специфических индивидуальных маркеров опухолевых клеток и динамическое исследование минимальной резидуальной болезни (МРБ). При мониторинге МРБ в ходе проведения терапии ОЛЛ европейскими исследователями была выявлена значимая корреляция между уровнем определяемого остаточного клона и вероятностью развития рецидива. В случае обнаружения МРБ риск развития рецидива возрастает в 5-10 раз. Медиана длительности периода между обнаружением минимальной резидуальной болезни и возникновением рецидива составляет 4,1 месяца [van Dongen J.J.M., Lancet, 1998. Raff Т., Blood, 2006].

Существует несколько методов, используемых для исследования минимальной остаточной популяции лейкемических клеток: определение аберрантного иммунофенотипа методом проточной флюорометрии,

флюоресцентная гибридизация in situ (FISH) для детекции хромосомных перестроек, выявление хромосомных поломок с помощью молекулярно-биологического метода (полимеразная цепная реакция, ПЦР). Следует отметить, что хромосомные аберрации являются «идеальными мишенями» для молекулярного мониторинга МРБ. Однако проблема состоит в том, что эти маркеры выявляются далеко не у всех больных. Поэтому требуются иные, более универсальные подходы к детекции и мониторингу МРБ, в частности, определение клональных перестроек генов иммуноглобулинов и Т-клеточных рецепторов с помощью ПЦР. Чувствительность этого метода высока: определяется 1 опухолевая клетка на 1000 - 10000 нормальных. Динамическое исследование специфической реаранжировки генов иммуноглобулинов и Т-клеточных рецепторов требует обнаружения индивидуальной молекулярной метки в дебюте болезни и создания индивидуальных для каждого больного праймеров. Только в этом случае можно отслеживать минимальную остаточную популяцию лейкемических клеток у каждого больного ОЛЛ.

Таким образом, современное лечение ОЛЛ базируется не только на определении молекулярно-биологических, иммунологических характеристик опухолевых клеток, но и на оценке изменения числа лейкемических клеток в процессе лечения. Достижение молекулярной ремиссии и ее сохранение в течение терапии является одним из важнейших и независимые факторов прогноза при ОЛЛ и служит основой для разработки оптимальных дифференцированных программ лечения ОЛЛ. Мониторинг минимальной резидуальной болезни при помощи ПЦР, использующей индивидуальные пациент-специфические праймеры, позволяет идентифицировать пациентов с высокой вероятностью развития рецидива и имеет большую прогностическую ценность, определяя новый критерий ремиссии.

Цель исследования: Детекция клональных перестроек генов иммуноглобулинов и Т-клеточных рецепторов у больных острым лимфобластным лейкозом и мониторинг минимальной резидуальной болезни с помощью пациент-специфических праймеров в процессе лечения ОЛЛ.

Задачи исследования:

1. Оценить как частоту достижения полной и молекулярной ремиссии, так и долгосрочные результаты лечения больных при использовании новых протоколов дифференцированной терапии острых лимфобластных лейкозов.

2. Выделить молекулярные, клинико-лабораторные характеристики, которые определяют эффективность современной терапии острых лимфобластных лейкозов.

3. Создать высокочувствительные индивидуальные ПЦР-системы для выявления у больных острыми лимфобластными лейкозами клональных перестроек генов иммуноглобулинов

4. Определить частоту выявления и охарактеризовать спектр реаранжировок генов иммуноглобулинов и Т-клеточных рецепторов при острых лимфобластных лейкозах.

5. Оценить изменение объема опухолевой массы у больных острым лимфобластным лейкозом на разных этапах химиотерапии и трансплантации костного мозга, используя в качестве маркеров индивидуальные праймеры к уникальным областям клонально перестроенных генов иммуноглобулинов и Т-клеточных рецепторов.

6. Разработать алгоритм мониторинга реаранжировок генов иммуноглобулинов и определить оптимальную частоту молекулярного обследования больных ОЛЛ.

Научная новизна:

1. Определена эффективность терапии острых лимфобластных лейкозов нового протокола «ОЛЛ-2005», основанного на определении чувствительности опухолевых клеток к преднизолону и модификации терапии в зависимости от этого критерия риска.

2. Охарактеризован спектр клональных перестроек генов иммуноглобулинов и Т-клеточных рецепторов у взрослых больных острым лимфобластным лейкозом, определена высокая частота реаранжировок генов у-мепей Т-клеточных рецепторов в исследуемой популяции больных.

3. Показано очень медленное уменьшение объема опухолевой массы, несмотря на мощные химиотерапевтические воздействия.

4. Показана персистенция минимальной резидуальной болезни до двух лет при сохранении клинико-гематологической ремиссии.

Практическая ценность:

1. Новый протокол терапии острых лимфобластных лейкозов «ОЛЛ-2005» используется в рамках многоцентровой кооперации.

2. Разработан метод выявления реаранжировок генов иммуноглобулинов, в результате которого созданы индивидуальные пациент-специфические праймеры для мониторинга минимальной резидуальной болезни у больных ОЛЛ.

3. Разработан алгоритм мониторинга минимальной резидуальной болезни.

4. Мониторинг минимальной резидуальной болезни при проведении унифицированного лечения больных острым лимфобластным лейкозом показал необходимость модификации терапии, что будет использовано при разработке новых протоколов.

Положения, выносимые на защиту:

1. Показана высокая эффективность программы «ОЛЛ-2005», позволившая достичь 88% полных ремиссий у больных из группы стандартного риска и 83% полных ремиссий у больных из группы вьсокого риска.

2. Чувствительность опухолевых клеток к глюкокортикостероидам является наиболее значимым среди прогностических факторов риска и влияет на долгосрочные результаты терапии.

3. Разработан метод выявления реаранжировок генов иммуноглобулинов и Т-клеточного рецептора гамма у больных острым лимфобластным лейкозом. Созданы индивидуальные тест-системы праймеров для мониторинга минимальной остаточной популяции опухолевых клеток.

4. Клональные реаранжировки генов тяжелых цепей иммуноглобулинов и у-цепей Т-клеточных рецепторов выявляются у 88% больных острыми лимфобластными лейкозами.

5. При острых лимфобластных лейкозах наблюдается очень медленное уменьшение объема опухолевой массы, и молекулярная ремиссия достигается значительно позже клинико-гематологической ремиссии.

Публикации.

По теме диссертации опубликовано 4 печатные работы.

Апробация диссертации.

Основные положения работы доложены на Международной гематологической школе: "Лейкозы и лимфомы. Терапия и фундаментальные исследования" (Москва, 2006 г.), Всеросийском декаднике по гематологии (Москва, 2006 г.)

Объем и структура работы.

Диссертация изложена на 144 страницах, состоит из введения, обзора литературы, методической главы, главы собственных исследований, заключения, выводов и списка литературы. Работа иллюстрирована 19 таблицами и 20 рисунками. Диссертация выполнена в отделении высокодозной химиотерапии гемобластозов и трансплантации костного мозга ГНЦ РАМН (руководитель член-корреспондент РАМН, проф. В.Г.Савченко), совместно с лабораторией генной инженерии ГНЦ РАМН (зав. к.б.н. АВ.Мисюрин, научный консультант В.Л.Сурин), а также при участии лаборатории кариологии ГНЦ РАМН (зав. проф. Е.В.Домрачева), лаборатории функциональной морфологии гемобластозов ГНЦ РАМН (зав. проф. И А Воробьев), сотрудников других подразделений ГНЦ РАМН (директор академик РАМН и РАН А.И.Воробьев).

Соавторами работ, опубликованных по теме диссертации, являются д.м.н. Е.Н.Паровичникова, проф. В.Г.Савченко, В.Л.Сурин, к.м.н. И.В.Гальцева, к.м.н. И.А.Демидова, к.б.н. А.В.Мисюрин, проф. И.АВоробьев, ЕАГрецов, проф. Л.С.Любимова, д.м.н. Л.П.Менделеева, проф. Е.В.Домрачева, к.м.н. Ю.В.Ольшанская, к.м.н. ОАВиноградова, к.м.н. В.Г.Исаев, к.м.н. Е.Н.Шуравина, к.м.н. М.А.Вернкж, Е.И.Желнова.

Содержание работы.

Характеристика больных.

В настоящей работе представлены результаты обследования и терапии 31 больного с острым лимфобластным лейкозом, находившего») на лечении в отделении химиотерапии гемобластозов и трансплантации костного мозга (научный руководитель отделения - член-корр. РАМН проф. В.Г.Савченко) Гематологического Научного Центра (директор - академик РАМН и РАН А.И.Воробьев) с марта 2004г. по июнь 2006г.

В ГНЦ РАМН инициировано общее многоцентровое пилотное исследование по протоколу «ОЛЛ-2005» для больных старше 21 года. Для пациентов до 21 года был предусмотрен протокол терапии ОЛЛ у детей «Москва-Берлин 2002».

Пациентам с РЬ+/Ьсг-аЫ ОЛЛ проводилась программа лечения ОЛЛ с Гливеком. Терапию по протоколу «ОЛЛ-2СЮ5» проводили 20 больным, по протоколу «РИ+ОЛЛ с Гливеком» - 4 больным с РЬ-позитивным ОЛЛ, по протоколу «АИ-МВ2002» - 7 больным в возрасте до 21 года.

В протоколе «ОЛЛ-2005» был сохранен принцип дифференцированного лечения пациентов в зависимости от обнаружения различных факторов риска. Кроме того, всем больным выполнялось морфологическое исследование пунктата костного мозга на 7 день предфазы, и в случае обнаружения более 25% бластных клеток в период индукционного и консолидирующего курсов химиотерапии преднизолон заменяли на дексаметазон.

У больных, которым проводилась терапия по протоколу «ОЛЛ-2005», медиана возраста составила 26 лет. В группу стандартного риска включено 8 больных (40%), в группу высокого риска 12 больных (60%). При иммунофенотипической диагностике у 15 больных выявлен В-линейный ОЛЛ и у 5 больных - Т-линейный ОЛЛ. У 7 пациентов были выявлены нарушения кариотипа, которые были представлены клональными хромосомными перестройками.

Вторую группу исследования составили пациенты с РИ-позитивным ОЛЛ. Все пациенты были с впервые установленным РИ+/Ьсг-аЫ ОЛЛ, подтвержденным методами стандартной цитогенетики, 0-Р15Н, ПЦР. Медиана возраста составила 58 лет. При иммунофенотипировании бластных клеток костного мозга у всех больных был выявлен В-линейный ОЛЛ. Методом стандартного цитогенетического исследования костного мозга транслокация 1(9;22) обнаружена только у 2 больных, методом 0-Р13Н химерный ген Ьсг-аЫ выявлен у всех 4 больных. Методом ПЦР химерный онкоген Ьсг-аЫ определен у 3 больных.

Третью фуппу исследования составили больные, которым проводилась терапия по протоколу лечения ОЛЛ у детей и подростков «А!_1_-МВ2002». Медиана возраста составила 17 лет. При иммунофенотипической диагностике у 6 из 7 больных выявлен В-линейный ОЛЛ. У 3 пациентов были выявлены нарушения кариотипа.

Детекция реаранжировки генов 1дН и ТСИС выполнена у 27 пациентов из 31: у 17 больных, которым проводили терапию по протоколу «ОЛЛ-2005»; у 3 больных, которым проводили терапию по протоколу «РИ+ОЛЛ с Гливеком»; у 7 больных, которым проводили терапию по протоколу «АИ-МВ2002». Дополнительно молекулярное исследование с целью детекции реаранжировки

генов 1дН и ТСРКЗ было выполнено еще у 7 больных ОЛЛ, не вошедших в исследовательские протоколы.

Методы исследования.

Цитогенетическое исследование клеток костного мозга (стандартное и методом 0-Р15Н) проводили в лаборатории кариологии ГНЦ РАМН (зав. д.м.н., проф. Е.В. Домрачева). Молекулярно-генетическое исследование костного мозга и периферической крови методом ОТ-ПЦР выполняли в лаборатории генной инженерии ГНЦ РАМН (зав. к.б.н. А.В. Мисюрин).

Для детекции и мониторинга клонально перестроенных генов вариабельного региона тяжелых цепей иммуноглобулинов (1дН) использовался метод двойной ПЦР-амплификации, Т-клеточного рецептора гамма (ТСРКЗ) - одноэтапная ПЦР-амплификация. С этой целью исследовали образцы костного мозга в момент установления диагноза ОЛЛ и на различных этапах лечения.

Полимеразная цепная реакция с семейств-специфичными праймерами.

Для повышения надежности результатов исследования использовали 2 системы праймеров. Праймеры \/Н11.6 гомологичны консервативным участкам лидерной области (Ц вариабельного региона. Праймеры Х/Нсн-в комплементарны первому структурному региону (ПШ1). Структура праймеров, использованных в исследовании для амплификации \/Н-генов, приведена в таблице 1, для амплификации \ЛЗ-генов - в таблице 2. Условия ПЦР для детекции реаранжировки генов 1дН: тепловая денатурация 94°С - 1 мин, отжиг праймеров 64°С - 1 мин, синтез ДНК 72°С - 1 мин, 35 циклов. Условия ПЦР для детекции реаранжировки генов ТСКв: тепловая денатурация 95°С - 1 мин, отжиг праймеров 62°С - 1 мин, синтез ДНК 72°С - 1 мин, 40 циклов.

Таблица 1. Нуклеотидные последовательности праймеров для детекции клонально перестроенных вариабельных регионов 1дН.

Праймер Последовательность (5'—► 3')

.Ш АССТСАССАСАСССТСАССАСССТ

\/Н|_1я СТСАССАТСОАСТССАССТССАС

VHL2 АТЗСАСАСАСТТТССТ(А/С)САС

ССАТССАСТТТССССТСАСС

VHL4 АСАТСААДСАССТСТССГТСТТ

АТОСОетСААСССССАТССТ

\/Ниб АТСТСТСТСТССТТССТСАТ

VHD1 CCTCAGTGAAGGTCTCCTGCAAGG

VH02 TCCTGCGCTGGTGAAAGCCACACA

VHD3 GGTCCCTGAGACTCTCCTGTGCA

VHo4a TCGGAGACCCTGTCCCTCACCTGCA

VHD4b CGCTGTCTCTGGTTACTCCATCAG

VHds GAAAAAGCCCGGGGAGTCTCTGAA

VH06 CCTGTGCCATCTCCGGGGACAGTG

Таблица 2. Нуклеотидные последовательности праймеров для детекции клонально перестроенных вариабельных регионов ТСРЮ.

Праймер Последовательность (5'-» 3')

JG1.1/2.1 TTACCAGGCGAAGTTACTATGAGC

JG1.3/2.3 GTGTTGTTCCACTGCCAAAGAG

VG.1-8 GGAAGGCCCCACAGCTTCTT

VG.9 CGGCACTGTCAGAAAGGAATC

VG.10 AGCATGGGTAAGACAAGCAA

VG.11 CTTCCACTTCCACTTTGAAA

Первичную структуру ПЦР-фрагментов определяли с использованием концевых праймеров. Секвенирование проводили в ЦКП "Геном" ИМБ РАН с помощью набора реактивов ABI PRISM®BigDye™Terminator v.3.1 с последующим анализом продуктов реакции на автоматическом секвенаторе ДНК ABI PRISM 3100-Avant.

Синтез пациент-специфичных праймеров.

После определения нуклеотидной последовательности ПЦР-фрагмента проводили его сравнение с терминальными V-генами IgH и TCRG с помощью программ IgBLAST и BLASTN. На основании полученных нуклеотидных последовательностей клонально перестроенных регионов производился подбор индивидуальных пациент-специфичных праймеров. Обратный праймер подбирали к уникальной для выявленного клона области CDR3, прямой праймер -к участкам V-области, наиболее специфичным для данного конкретного сегмента.

ПЦР с пациент-специфичными праймерами.

Определение уровня МРБ выполнялось полуколичественной ПЦР. В случае мониторинга МРБ по реаранжировке генов IgH ПЦР амплификацию проводили в две стадии с двумя парами праймеров ("гнездовая" ПЦР) для повышения

чувствительности. В случае мониторинга МРБ по реаранжировке генов ТСРО ПЦР амплификацию проводили в одну стадию с соответствующим семейств-специфичным праймером \ЛЗ и индивидуальным пациент-специфичным праймером.

Статистическую обработку полученных данных проводили методом четырехпольных таблиц с использованием Критерия Х2. Эффективность лечения оценивалась посредством построения кривых общей и безрецидивной выживаемости с использованием метода Каплан-Майер.

Основные понятия:

Полная кпинико-гематологическая ремиссия - состояние кроветворной ткани, при котором в пунктате костного мозга обнаруживается 5% и менее властных клеток при нормальном соотношении всех ростков кроветворения, при количестве нейтрофилов в периферической крови 1,5х109/л, тромбоцитов более или равном 100х109/л и отсутствии экстрамедуллярных очагов лейкемического роста. Указанные показатели должны сохраняться в стабильном состоянии в течение 1 месяца и более.

Молекулярная ремиссия - это полная клинико-гематологическая ремиссия острого лейкоза при отсутствии исходно определявшихся молекулярных маркеров методом ПЦР с чувствительностью 10"4.

Минимальная резидуальная болезнь - постоянно определяемая остаточная популяция опухолевых клеток, выявить которую можно лишь с помощью новых высокочувствительных молекулярно-генетических методов. Одновременно при световой микроскопии в костном мозге определяется не более 5% властных клеток при нормальных показателях периферической крови и отсутствии экстрамедуллярных очагов.

Рецидив острого лейкоза - выявление в пунктате костного мозга более 5% властных клеток. Если в пунктате костного мозга не более 10% властных клеток при нормальном анализе гемограммы, проводилось повторное исследование костного мозга через 7-10 дней. Если в пунктате сохранялось 5% властных клеток и более, то констатировали рецидив основного заболевания (ранний рецидив -при констатации в течение 12 мес. от момента достижения ремиссии, поздний считали через 12 мес. и более от момента достижения ремиссии).

Общая выживаемость - число реально оставшихся в живых больных ОЛ на фоне проведенной терапии. Для построения кривой общей выживаемости анализируют временные параметры всех больных, включенных в исследование.

Точкой отсчета является день начала терапии. Событием считается только смерть больного от любой причины и на кривой отображается ступенькой, идущей вниз. Больных, живых во время проведения анализа, расценивают как случай и отмечают на кривой черточкой, т.е. цензурируют. Больных, судьба которых неизвестна, цензурируют в тот момент, когда было известно, что они живы. Больных, отказавшихся от лечения, цензурируют в день отказа от терапии.

Безрецидивная выживаемость - выживаемость только тех больных, у которых была достигнута ремиссия основного заболевания. Точкой отсчета считается дата достижения ремиссии. Событиями считаются рецидив или смерть от любой причины. Цензурируют только тех больных, которые были живы и находились в полной ремиссии в момент проведения анализа. Больных, судьба которых неизвестна, цензурируют в тот момент, когда было известно, что они живы в полной ремиссии. Больных, у которых была достигнута полная ремиссия, но они отказались от лечения в ремиссии, цензурируют в день отказа от терапии.

Опухолевый клон - генетически однородная популяция лейкозных клеток, возникшая из единичной трансформированной клетки-предшественницы. При эволюции моноклонапьной популяции опухолевые клетки приобретают дополнительные генетические изменения, в частности разные перестройки 1дН и ТС(3, и определяются как субклоны.

Олигоклональность - наличие нескольких специфических маркеров в лейкозной популяции при детекции реаранжировок генов 1д и ТСЯ?.

Результаты исследования.

Результаты лечения больных ОЛЛ по протоколу «ОЛЛ-2005».

С 2005 года в ГНЦ РАМН инициировано общее многоцентровое пилотное исследование по протоколу «ОЛЛ-2005». В настоящей работе представлены результаты обследования и терапии 20 больных с острым лимфобластным лейкозом, находившихся в отделении химиотерапии гемобластозов и трансплантации костного мозга ГНЦ РАМН с марта 2004 г. по июнь 2006 г. Цитогенетическое исследование костного мозга и определение иммунофенотипа лейкемических клеток были обязательными условиями включения. На лечение по протоколу принимались только больные ОЛЛ с отсутствием транслокации (9;22) или химерного гена Ьсг/аЫ. К группе высокого риска были отнесены пациенты с исходным лейкоцитозом более 30x109/л для В-линейных ОЛЛ и более 100x109/л для Т-ОЛЛ, уровнем ЛДГ более 960 ЕД, с ранним пре-В ОЛЛ и ранним Т-ОЛЛ. Затем группа риска пересматривалась на 7-ой день предфазы: больные, у

которых определялось более 25% властных клеток в костном мозге на 7-ой день глюкокортикостероидной терапии, были переведены на программу лечения с дексаметазоном и включены в группу высокого риска. Также группа риска пересматривалась после проведения индукции: больные, у которых ремиссия не была достигнута после проведения I фазы индукции, были переведены на программу терапии, предусмотренную для больных из группы высокого риска. Общие результаты терапии острых лимфобластных лейкозов представлены в таблице 3.

Таблица 3. Результаты индукционной терапии у первичньк больных с ОЛЯ

Показатели Стандартный риск л=8 (40%) Высокий риск п=12 (60%) Всего п=20

> 25% бластных клеток на 7 день предфазы * 618 (75%) 6 / 9 (67%) 12/17" (71%)

Полная ремиссия (ПР) 7 (88%) 10(83%) 17(85%)

Резистентность 1 (12%) 0 1 (5%)

Ранняя летальность 0 2(17%) 2(10%)

Смерть в ремиссии 1 (12%) 0 1 (5%)

Примечание: * - определение бластных клеток в костном мозге. ** -исследование костного мозга на 7-ой день предфазы было выполнено только 17 пациентам.

При рассмотрении результатов выявлен высокий процент достижения ремиссии у больных как из группы стандартного риска (88%), так и из группы высокого риска (83%). У большинства больных отмечалась низкая чувствительность ОЛЛ к глюкокортикостероидной терапии, установленная на основании результатов морфологического исследования костного мозга на 7-ой день предфазы, что требовало смены терапии преднизолоном на дексаметазон. Поскольку в данном исследовании сохраняющийся бластоз в костном мозге более 25% после предфазы являлся фактором риска, то эти пациенты были переведены в группу высокого риска, если они исходно в нее не входили. Таким образом, после завершения предфазы в группу высокого риска включено 18 из 20 больных (90%). Использование глюкокортикоидных гормонов является ключевым фактором в лечении ОЛЛ. Чувствительность опухолевых клеток ОЛЛ к преднизолону, определяемая путем подсчета бластных клеток в периферической крови или костном мозге на 7-ой день терапии этим препаратом, является веским фактором риска [Annino L., Blood, 2002. Schrappe М, Blood, 2000]. Так, если на 7-ой

день лечения в костном мозге выявляется более 25% бластных клеток, то это определяет группу высокого риска [Seibel N„ Blood, 2003]. Кроме того, чувствительность к преднизолону явилась тем независимым фактором прогноза, который оказывал влияние на вероятность достижения ремиссии. В итальянском исследовании процент достижения полной ремиссии при чувствительности к преднизолону составил 87%, при отсутствии чувствительности - 70% [Annino L., Blood, 2002].

При анализе долгосрочных результатов терапии необходимо оценивать такие показатели как общая и безрецидивная выживаемость у больных различных групп риска. Общая выживаемость у больных, которым проводилась терапия по протоколу «ОЛЛ-2005», составила 70% при сроке наблюдения 27 месяцев. Общая выживаемость у больных групп стандартного и высокого риска, присвоенных до начала лечения по исходным показателям, не различается. Однако если рассматривать общую выживаемость у больных в зависимости от процента бластных клеток в костном мозге на 7-ой день предфазы, то определяются четкие различия (рисунок 1).

Рисунок 1. Общая выживаемость по протоколу «ОЛЛ-2005» в зависимости от процента бластных клеток на 7-ой день предфазы.

о

я ,6т

с

т ,2-ь

— — — 1 - больные, у которых определялось менее 25% бластных клеток в КМ после предфазы

...... 2 - больные, у которых определялось более 25% бластных клеток в

КМ после предфазы Из рисунка 1 видно, что такой фактор прогноза как чувствительность опухолевых клеток к ГКС терапии действительно влияет на показатели

в

2

О 5 10 15 20 25 30 месяцы

выживаемости больных ОЛЛ. На 7-ой день пред фазы лреднизолоном у 12 из 17 больных (71%) определялось более 25% бластных клеток в КМ: 6 из них изначально были включены в группу стандартного риска, 6 - в группу высокого риска. Из этого следует, что, несмотря на исходные критерии риска, острые лимфобластные лейкозы характеризуются еще более четким дискриминирующим признаком - чувствительностью опухолевых клеток к ГКС.

Безрецидивная выживаемость в течение 26 месяцев составила 40%, а вероятность сохранения полной ремиссии - 50%. Медиана продолжительности полной ремиссии у всех больных ОЛЛ, лечившихся по программе «ОЛЛ-2005», составила 23 месяца. Частота развития рецидивов у больных в зависимости от группы риска, не различалась. Вероятность развития рецидива в исследуемых группах составила 50% для больных с менее 25% бластных клеток на 7-ой день ГКС терапии и 40% для больных с более 25% бластных клеток на 7-ой день ГКС терапии. Итальянскими исследователями продемонстрировано влияние чувствительности опухолевых клеток к преднизолону на долгосрочные результаты: общая выживаемость при чувствительности бластных клеток к преднизолону составила 33%, при отсутствии - 17%; безрецидивная выживаемость при чувствительности опухолевых клеток - 32%, а при ее отсутствии - 22% [Annino L., Blood, 2002].

Результаты печения больных ОЛЛ по протоколу «Ph+ОЛЛ с Гливеком».

С 2004 года в ГНЦ РАМН инициировано новое исследование по лечению больных ОЛЛ, у которых выявляется транслокация t(9;22) методами стандартной цитогенетики и D-FISH, а также химерный транскрипт Ьсг-аЫ. Основной целью пилотного многоцентрового исследования стала оценка эффективности и токсичности Гливека при его одновременном использовании с химиотерапией (индукция, консолидация) у больных с Ph-позитивным ОЛЛ. Параллельно предполагалось осуществление молекулярного и цитогенетического мониторинга у всех пациентов. В настоящей работе представлены результаты обследования и терапии всего 4 больных с Ph-позитивным острым лимфобластным лейкозом. Методом стандартного цитогенетического исследования костного мозга транслокация t(9;22) была обнаружена у 2 из 4 больных, методом D-FISH химерный ген Ьсг-аЫ выявлен у всех 4 больных. Методом ПЦР химерный онкоген Ьсг-аЫ определен у 3 больных: у 1 больного - транскрипт р190, у 1 больного -р210 и у 1 больного - р190 и р210 одновременно. Клинико-гематологическая ремиссия была достигнута у 3 больных, молекулярная ремиссия - у 2 больных.

Резистентная форма ОЛЛ не была отмечена ни у одного больного, однако 1 больной умер при проведении индукционной терапии. У 1 больного была зарегистрирована смерть в ремиссии. Причиной обеих смертей явились тяжелые инфекционные осложнения. Для анализа долгосрочных результатов исследуемая группа больных очень мала. Двое из 3 больных, у которых достигнута ремиссия, живы без признаков рецидива в течение 10 и 12 месяцев, соответственно.

Результаты лечения больных ОЛЛ по протоколу «А1-1--МВ2002».

В настоящей работе представлены результаты обследования и терапии 7 больных с ОЛЛ, находившихся в отделении химиотерапии гемобластозов и трансплантации костного мозга ГНЦ РАМН, которым проводилась терапия по программе «А11.-МВ-2002».

В результате индукционной терапии по программе «А!±-МВ2002» у всех 7 подростков была достигнута полная ремиссия. Хотя группа больных очень мала, можно видеть, что программа терапии «АИ-МВ2002» действительно является эффективной и менее токсичной по сравнению с протоколами терапии ОЛЛ у взрослых, о чем свидетельствует отсутствие больных с резистентными формами ОЛЛ, а также ранней летальности и смерти в ремиссии. Хотелось бы отметить высокий процент больных с низкой чувствительностью к ГКС терапии - 57% (4 из 7 больных).

Анализ долгосрочных результатов терапии в исследуемой группе показал 100% общую выживаемость при сроке наблюдения 21 месяц. Живы без признаков рецидива 6 из 7 больных. Безрецидивная выживаемость в течение 20 месяцев составила 79%. Долгосрочные результаты у подростков с ОЛЛ значительно лучше в сравнении с долгосрочными результатами у взрослых больных с ОЛЛ: 100% общая выживаемость против 70% общей выживаемости у взрослых, 79% безрецидивная выживаемость против 40% безрецидивной выживаемости у взрослых больных в течение 2 лет.

Результаты детекции реаранжировок генов 1дН и ТСГНЗ у больных ОЛЛ.

В настоящее исследование включено 34 больных ОЛЛ. У 27 из 34 больных (79%) установлен В-клеточный ОЛЛ: у 26 - острый лимфобластный лейкоз из предшественников В-клеток и у 1 - В-зрелый острый лимфобластный лейкоз. У 7 из 34 больных (21%) установлен Т-клеточный ОЛЛ. В таблице 4 представлены результаты детекции реаранжировок генов 1дН и ТСРЮ при исследовании КМ методом ПЦР с семейств-специфичными праймерами в дебюте заболевания.

Таблица 4. Выявление реаранжировок генов 1дН и ТСРЮ у больных ОЛЛ при первичном обследовании.

маркеры В-ОЛЛ, п=27 Т-ОЛЛ, п=7 Всего, п=34

только 1дН 5(18%) 0 5(15%)

только ТСРЮ 4(15%) 6 (86%) 10(29%)

1дН + ТСРв 15(56%) 0 15(44%)

нет маркеров 3(11%) 1 (14%) 4(12%)

Как видно из приведенных данных, у большинства больных выявляются реаранжировки генов и 1дН и ТСРЮ - 44% (15 из 34 больных). Реаранжировки генов Т-клеточных рецепторов выявляются у 73% больных (25 из 34 больных), при этом как у больных с Т-клеточным ОЛЛ - 86% (6 из 7 больных), так и у больных с В-клеточным ОЛЛ - 71% (19 из 27 больных). Реаранжировки генов 1дН выявляются у 59% больных (20 из 34 больных), и только с В-клеточным ОЛЛ. Перестройки генов 1д и ТС1Ч могут встречаться при различных иммунологических вариантах ОЛЛ.

Наличие кросс-линейных реаранжировок 1дН и ТС1Ч в опухолевых клетках при ОЛЛ увеличивает количество мишеней для определения клональности и МРБ. Так, в дебюте ОЛЛ при исследовании бластных клеток можно выявить несколько клональных перестроек генов 1д и/или ТСГ*. При эволюции исходной моноклональной популяции опухолевых клеток, некоторые из них приобретают новые генетические изменения, которые могут быть связаны как с профессией опухоли, так и отражать определенные этапы дифференцировки. Так, при дифференцировке лимфоцитов происходит перестройка генома. В данном случае опухолевые клетки, характеризующиеся разными перестройками 1дН и ТСЯ, определяются как субклоны. Наличие нескольких специфических маркеров в лейкозной популяции называется олигоклональностью. При детекции реаранжировок генов 1дН и ТСРЮ в настоящей работе у большинства больных выявлены 2 и более специфических маркеров: у 17 из 30 больных (57%) - 2 маркера, у 3 из 30 больных (10%) - 3 маркера и у 2 из 30 больных (6%) - 4 маркера. Только один маркер для мониторинга МРБ выявлен у 8 из 30 больных (27%). При мониторинге МРБ очень важно наличие 2 и более маркеров, так как во время лечения острого лейкоза динамика опухолевых субклонов различна. Использование двух и более специфических маркеров позволяет существенно

снизить вероятность получения ложноотрицательных результатов при повторных исследованиях образцов костного мозга больного.

Установлено, что для острого лимфобластного лейкоза характерна некоторая избирательность реаранжировок генных сегментов, отличная от случайного выбора, характерного для нормальной дифференцировки В-лимфоцитов. Наиболее часто реаранжировки у больных с ОЛЛ происходят с участием VH-сегментов 3-го семейства - 16 IgH генов. Преобладание VH3-сегментов в кпонально перестроенных IgH при В-линейном ОЛЛ обусловлено наибольшей представленностью этого семейства среди реаранжирующижя VH-генов: из 65 \/НЗ-сегментов - 27 реаранжирующихся [Coyle L., Br J Haemotology, 1996]. В данном случае частота реаранжирующихся VH3 сегментов при ОЛЛ в основном соответствует нормальному репертуару В-лимфоцитов. У 2 из 20 больных (10%) были выявлены перестройки с участием VH6-1 сегмента -единственного представителя \/Н6-семейства. Европейскими исследователями также отмечено достоверно повышенное участие \/Н6-сегмента в реаранжировках генов IgH при В-линейном ОЛЛ у детей и взрослых: 16,7% и 11,0% соответственно. Частота реаранжировки Х/Нб-сегмента у здоровых доноров составляет 0,6%. Исследователи связывают описанный феномен при ОЛЛ с проксимальным расположением этого сегмента по отношению к точке соединения и участием в реаранжировке в первую очередь [Hoffbrand V., Blood, 2001]. Если рассматривать все найденные перестройки VH-генных сегментов, учитывая их расположение по отношению к точке соединения, то видно, что большинство реаранжирующихся VH-сегментов находятся в области проксимальной к локусу DJ. Для острых лимфобластных лейкозов также характерна отличная от случайного выбора перестройка DH сегментов. У большинства больных были выявлены реаранжировки гена IgH с участием DH2-2 сегмента: у 7 из 20 больных. Частота обнаружения DH2-2 сегмента составляет 30% (8 из 27 прочитанных нуклеотидных последовательностей DH генных сегментов). По данным литературы у больных ОЛЛ также самым часто выявляемым DH-сегментом является DH2-2 [Li A., Blood, 2004]. Частота выявления реаранжировок генов IgH с семейством DH2 является самой высокой как по отношению к другим семействам в перестроенных генах у больных ОЛЛ, так и в сравнении с перестройками генов в репертуаре нормальных В-лимфоцитов, и составляет 35% по литературным данным и 42% в нашем исследовании. Напротив, семейство DH6 генов чаще выявляется в перестроенных генах IgH нормальных В-лимфоцитов (23% против

7%). В нашем исследовании показано также, что у больных ОЛЛ в клональных перестройках генов IgH в большинстве случаев задействованы сегменты JH4 (33%), JH5 (25%) и JH6 (33%). По литературным данным в реаранжированных генах IgH наиболее часто встречается JH4-cerMeHT (34%) [Li A., Blood, 2004]. Помимо избирательности реаранжировок генных сегментов IgH, для ОЛЛ также характерна отличная от случайного выбора перестройка VG-сегментов генов TCRG. Наибольшее участие в реаранжированных генах TCRG определено для VG2 и VG9 семейств: у 9 и у 10 больных, соответственно. Необходимо отметить, что в настоящее время зависимость эффективности терапии больных ОЛЛ от выявляемого спектра генных сегментов, участвующих в реаранжировках генов lg и TCR, не выявлена.

Анализ приведенных результатов детекции реаранжировок генов IgH и TCRG показал, что:

- у большинства больных ОЛЛ (88%) в дебюте заболевания выявляются реаранжировки генов IgH и/или TCRG,

- реаранжировки генов TCRG встречаются при различных иммунологических вариантах ОЛЛ: как у больных с Т-линейным ОЛЛ (86%), так и у больных с В-линейным ОЛЛ (71 %),

- кросолинейные перестройки генов TCR при В-клеточном ОЛЛ связаны с уровнем дифференцировки опухолевых В-клеток и обнаруживаются в 40% случаев при раннем пре-В ОЛЛ, в 78% случаев при общем пре-В ОЛЛ и в 91% случаев при пре-В ОЛЛ,

- у больных с ОЛЛ часто обнаруживаются несколько клональных перестроек IgH и/или TCR: у 73% больных в дебюте заболевания определяются 2 и более субкпонов,

- в отличие от опухолевых заболеваний, возникающих из зрелых клеток, при ОЛЛ в реаранжированных генах IgH чаще определяются VH-сегменты с проксимальным расположением к DJ локусу и DH-сегменты с дистальным расположением к JH локусу,

- для ОЛЛ характерна избирательность реаранжировок VH, DH, JH и VG генных сегментов, спектр которых отличается от репертуара нормальных В-лимфоцитов.

Мониторинг минимальной резидуальной болезни.

Выполнен мониторинг МРБ методом ПЦР с пациент-специфичными праймерами в период индукции, консолидации и поддерживающего лечения 19

больным. В работе представлено динамическое исследование реаранжировок генов ¡дН у 16 больных ОЛЛ. Дополнительно, был выполнен мониторинг реаранжировок генов ТСРЮ у 7 больных ОЛЛ. Четверым из 19 больных проводился параллельный мониторинг перестроек генов 1дН и ТСРЮ.

Для анализа мы суммировали результаты мониторинга МРБ у 18 больных ОЛЛ, которым проводили лечение по протоколам «01.1995», «ОЛЛ-2005» и «А1_1-МВ2002». Мониторинг МРБ у больного с В-зрелоклеточным ОЛЛ представлен отдельно. Включенные в исследование 18 больных были как из группы стандартного риска, так и из группы высокого риска. На разных этапах терапии оценивались результаты исследования у разного числа больных. При выявлении у одного больного исходно нескольких опухолевых субклонов, наличие МРБ определялось в случае обнаружения хотя бы одной из первоначальных реаранжировок генов Медиана наблюдения за больными составила 8 месяцев (разброс 1-23 месяца). V 18 из 19 больных была достигнута клинико-гематологическая ремиссия. Результаты мониторинга МРБ у 18 больных ОЛЛ представлены в соответствии с частотой выявления клональных реаранжировок генов на разных этапах терапии (рисунок 2).

Рисунок 2. Частота выявления маркеров МРБ у больных ОЛЛ на разных этапах терапии.

Примечание: «нет» - реаранжировки генов не выявлялись; «есть» -реаранжировки генов выявлялись; «однократно» - во время проведения поддерживающей терапии реаранжировки генов выявлялись однократно; п/предфазы - исследование выполнялось после 7 дней ГКС терапии;

п/1ф.индукции - исследование выполнялось после I фазы индукции ремиссии по протоколу «ОЛЛ-2005» (1-1,5 мес.) и после основной фазы индукции ремиссии по протоколу «ALL-MB2002» (1 мес.); п/Пф.индукции - исследование выполнялось после II фазы индукции по протоколу «ОЛЛ-2СЮ5» (2-4 мес.); п/консолидации -исследование выполнялось после консолидации ремиссии (4-9 мес.); поддерж. -исследование выполнялось на разных этапах поддерживающей терапии.

МРБ сохранялась у 100% больных после предфазы, у 94% больных после I фазы индукции ремиссии, у 70% больных после II фазы индукции. Важно отметить, что динамика регрессии маркеров опухолевого клона у больных ОЛЛ очень длительная. Только после консолидирующего лечения у 64% больных (9 из 14 больных) маркеры МРБ не обнаруживались. Кроме того, на протяжении всей поддерживающей терапии у 2 из 10 (20%) больных реаранжировки генов стойко выявлялись. У обоих больных впоследствии были констатированы рецидивы ОЛЛ на 15 и 24 месяцах терапии. Также вскоре после консолидирующего лечения рецидив ОЛЛ был зарегистрирован у больного, у которого на протяжении всей терапии сохранялись маркеры опухолевого клона. Таким образом, у всех 3 больных, у которых на протяжении всего лечения определялась МРБ, развились рецидивы. У больных, у которых МРБ на фоне поддерживающей терапии определялась однократно, не было зарегистрировано рецидивов. Рецидивы также развились у 2 больных, у которых МРБ определялась только после 1 месяца лечения, а после 11 недели терапии не выявлялась на протяжении всего наблюдения. Немецкие авторы, анализируя значимость МРБ у взрослых больных ОЛЛ, продемонстрировали длительную персистенцию опухолевого клона с реаранжировками генов IgH и TCR: 88% случаев на ранних этапах индукционной терапии и 13% - на 52 неделе лечения. Также выявлена зависимость ме>еду МРБ-позитивностью на ранних этапах лечения и риском развития рецидива [Bruggemann М., Blood, 2006]. Mortuza F. и коллеги продемонстрировали долгосрочные результаты для 85 больных с B-линейным ОЛЛ. У больных с выявляемой МРБ на сроках лечения 3-5 месяцев и 6-9 месяцев безрецидивная выживаемость составила 11% и 0%, соответствежо. Напротив, у больных, у которых на этих же сроках терапии реаранжировки генов не определялись, безрецидивная выживаемость была значительно выше - 74% и 80%, соответственно [Mortuza F., J Clin Oncol., 2002].

Таким образом, в ГНЦ РАМН разработан метод ПЦР с использованием индивидуальных пациент-специфичных праймеров, с помощью которого больным

ОЛЛ проводится динамическое исследование реаранжировок генов IgH и TCRG. Анализ приведенных результатов мониторинга МРБ показал, что:

- при мониторинге реаранжировок генов IgH чувствительность метода двухзтапной ПЦР с пациент-специфичными праймерами составляет 10"4,

- при мониторинге реаранжировок генов TCRG чувствительность метода ПЦР с пациент-специфичными праймерами составляет Ю^-Ю"4

- мониторинг МРБ желательно проводить с помощью 2 и более маркеров, так как динамика опухолевых субклонов под цитостатическим воздействием может быть разной,

- молекулярная ремиссия у больных ОЛЛ достигается позже клинико-гематологической,

- минимальная резидуальная болезнь может сохраняться длительное время, несмотря на мощные химиотерапевтические воздействия,

- исследование МРБ оптимально выполнять на следующих этапах терапии: после индукционной терапии, после консолидации ремиссии, каяедые 2-3 месяца на фоне поддерживающей терапии и после снятия с лечения,

- мониторинг МРБ выявляет больных с высоким риском развития рецидива, но наличие остаточного лейкемического пула клеток не всегда является признаком фядущего рецидива,

- отсутствие МРБ, даже на ранних этапах, не означает отсутствие вероятности развития рецидива и не является поводом для преждевременного окончания терапии,

- при однократном обнаружении маркеров МРБ у больных в полной ремиссии необходимо повторное молекулярное исследование костного мозга. Заключение.

Совершенно очевидно, что эффективность лечения острых лимфобластных лейкозов зависит от прецизионности и адекватности химиотерапевтического воздействия, которые в свою очередь определяются биологическими характеристиками опухолевого процесса. Исходное выделение факторов риска позволяет с самого начала выбрать необходимую терапевтическую тактику. К значимым прогностическим признакам, обусловливающим неблагоприятные результаты лечения при острых лимфобластных лейкозах, которые были рассмотрены в нашем исследовании, относят возраст больных, чувствительность опухолевых клеток к глюкокортикостероидам на 7-ой день лредфазы, наличие транслокации t(9;22) и обнаружение минимальной резидуальной болезни в

процессе лечения. Давно известно, что с увеличением возраста снижаются частота достижения полных ремиссий и показатели безрецидивной выживаемости. Так, в немецком исследовании показано, что с каждым увеличением возраста на 5 лет отмечается снижение уровня 5-летней выживаемости приблизительно на 10% [Nachman J., Hematology, 1999]. Также одним из значимых факторов прогноза является чувствительность бластных клеток при ОЛЛ к глюкокортикоидным гормонам. В настоящей работе у 28 из 31 больных, которым проводилась химиотерапии по трем протоколам («ОЛЛ-2005», «Ph+ОЛЛ с гливеком» и «ALL-MB2002»), было выполнено исследование костного мозга после предфазы. Более 25% бластных клеток в КМ определялось у 7 из 11 больных (64%) моложе 21 года и у 12 из 17 больных (71%) старше 21 года. Как видно из представленных данных, число подростков и взрослых больных с низкой чувствительностью опухолевых клеток ОЛЛ сопоставимо. Необходимо отметить, что этот показатель у подростков превышает таковой у детей с ОЛЛ. У детей процент ОЛЛ с низкой чувствительностью бластных клеток к преднизолону невелик - 8-10% [Schrappe М., Blood, 2000]. Это еще раз подтверждает биологические различия между ОЛЛ у подростков и у детей. Одним из важных прогностических признаков также является обнаружение определенных изменений кариотипа опухолевых клеток. К неблагоприятным цитогенетическим признакам отнесена транслокация t(9;22). Результаты лечения этой формы ОЛЛ крайне неудовлетворительны. В нашем исследовании у 3 из 4 больных с Ph-позитивным ОЛЛ была достигнута клинико-гематологическая ремиссия, при этом у 2 из них, в том числе и молекулярная ремиссия. По данным Ottmann O.G. и соавторов использование ингибитора аЫ-тирозинкиназы позволяет достичь клинико-гематологической ремиссии у 90% больных, молекулярной ремиссии - у 60% [Ottmann О., Blood, 2002].

Суммируя все данные по терапии ОЛЛ в ГНЦ РАМН, следует отметить, что программы терапии ОЛЛ для взрослых «ОЛЛ-2005», для подростков «ALL-МВ2002» и для больных с t(9;22) «Ph+ОЛЛ с Гливеком» являются достаточно эффективными. Общая и безрецидивная выживаемость для взрослых больных ОЛЛ, получавших терапию по протоколу «ОЛЛ-2005», составила 70% и 40%, а для подростков с ОЛЛ, получавших терапию по протоколу «ALL-MB2002», составила 100% и 79%, соответственно. В нашем исследовании показана прогностическая ценность определения чувствительности опухолевых клеток к ГКС, что является значимым при рассмотрении долгосрочных результатов. Общая выживаемость у

больных OJ1J1, у которых после предфазы преднизолоном в костном мозге определялось менее 25% бластных клеток, составила 100%. Напротив, общая выживаемость у больных с плохим ответом на преднизолон составила 70%. Различий в показателях безрецидивной выживаемости у больных в этих исследуемых группах не получено. Это, по-видимому, связано с тем, что не всем больным после определения более 25 % бластных клеток в костном мозге на 7-ой день предфазы преднизолон заменяли на дексаметазон. Таким образом, в модифицированном протоколе «(ЭЛЛ-2005» предусмотрена смена ГКС в индукции ремиссии и постремиссионой терапии в зависимости от процента опухолевых клеток после предфазы.

Исключительно важными для определения прогноза заболевания являются также детекция и мониторинг минимальной резидуальной болезни. Определение реаранжировок генов иммуноглобулинов и Т-клеточных рецепторов в дебюте заболевания и в процессе лечения, оценка эффективности терапевтического воздействия на молекулярном уровне стали цэлью нашего исследования.

В это исследование было включено 34 больных острыми лимфобластными лейкозами. Мониторинг реаранжировок генов IgH и TCRG осуществляли методом двухэтапной полимеразной цепной реакции с пациент-специфичными праймерами, индивидуальными для каиодого больного. При проведении исследования костного мозга в дебюте заболевания методом ПЦР с семейств-слецифичными праймерами у 30 из 34 больных (88%) были выявлены реаранжировки генов IgH и/или TCRG. Клональные перестройки гена IgH были выявлены у 20 из 30 больных (67%). И у всех этих больных был установлен В-клеточный ОЛЛ. Перестройки гена TCRG были выявлены у 25 из 30 больных (83%). Помимо высокой частоты реаранжировок гена TCRG при Т-ОЛЛ, выявлена высокая частота кросс-линейных перестроек этого локуса при В-линейном ОЛЛ. Таким образом, реаранжировки генов IgH и TCRG являются оптимальными мишенями для определения клональности и минимальной резидуальной болезни. Исследование нескольких локусов дает возможность увеличить число мишеней для мониторинга МРБ. В нашем исследовании у 22 из 30 больных (73%) в дебюте заболевания были выявлены 2 и более маркеров МРБ. По данным немецких исследователей частота выявления олигоклональноста составила 52% [Bruggemann М., Blood, 2006]. Для мониторинга МРБ очень важно оценивать 2 и более маркеров, так как во время лечения ОЛЛ динамика опухолевых субклонов различна. Использование двух и более специфических маркеров позволяет

существенно снизить вероятность получения ложноотрицательных результатов при повторных исследованиях образцов костного мозга больного.

В нашем исследовании проведен анализ спектра реаранжировок генных сегментов IgH и TCRG. Для ОЛЛ характерна избирательность использования VH, ОН, JH генных сегментов, спектр которых отличается от репертуара нормальных B-лимфоцитов. Причины неравного использования VH-, D- и JH-генов в наивном репертуаре можно разделить на 2 группы. Первая состоит в селекции В-клеток, экспрессирующих определенные VH-гены. После того как созревающая клетка экспрессирует на своей поверхности IgM, ее судьба определяется сигналами, которые она получает через B-клеточный рецептор. Связывание с аутоантигенами на этом этапе может приводить к удалению B-клетки по механизму апоптоза или повторной перестройке генов IgH (рецепторное обучение) [Edry Е., J of Immunology, 2004. Janeway С., "Immunobiology", 2001]. Вторая причина неравного использования VH-, D- и JH-генов связана с исходно разной способностью терминальных VH- и DH-генов участвовать в перестройках. Существование неравных условий для участия в перестройках доказывается фактом предпочтительного использования определенных генов в непродуктивных перестройках [Rassenti L., J of Immunology, 1991. Wasserman R„ J Clin Oncol, 1992]. Также, установлен аллельный полиморфизм VH-генов. Различия между аллельными вариантами по локусу Ig связаны в основном с наличием делеций или вставок [Sasso Е., J Clin Invest, 1993]. Таким образом, наличие нескольких реаранжировок генов IgH у 1 больного может быть также обусловлено возможностью перестроек генов в одной клетке, но на разных аллелях.

При мониторинге МРБ у больных ОЛЛ выявлена длительная регрессия опухолевого клона и показано, что молекулярная ремиссия достигается существенно позже клинико-гематологической. Рецидивы были констатированы у 3 больных, у которых маркеры МРБ выявлялись постоянно на разных этапах терапии до констатации гематологического рецидива. Из тех больных, у которых маркеры МРБ регрессировали после консолидации ремиссии (2,5 месяца) и в дальнейшем не определялись (п=9), у 2 больных также развился рецидив ОЛЛ. У больных, у которых МРБ во время поддерживающей терапии выявлялась однократно, ни в одном случае не было констатировано рецидива ОЛЛ. Эти результаты свидетельствуют о том, что постоянное определение МРБ выявляет больных ОЛЛ с высоким риском развития рецидива. В то же время, отсутствие МРБ на ранних этапах терапии не всегда означает отсутствие вероятности

развития рецидива. При однократном обнаружении маркеров МРБ у больных в полной ремиссии необходимо повторное молекулярное исследование костного мозга после проведенного курса химиотерапии. Европейские исследователи продемонстрировали сопоставимые с нашими результаты мониторинга МРБ у больнь1х ОЛЛ. Так, из 105 больных, включенных в это исследование, у 22 развился рецидив. У 17 из 22 больных маркеры МРБ определялись перед развитием рецидива, а у 5 из 22 больных МРБ не определялась. Медиана временного интервала между определением МРБ и развитием клинического рецидива составила 4,1 месяца [Raff Т., Blood, 2006]. Таким образом, молекулярные исследования костного мозга целесообразно выполнять после основных этапов терапии (индукция, консолидация ремиссии, трансплантация костного мозга) и каждые 2-3 месяца во время поддерживающей терапии.

" Вероятность развития рецидива у больных, у которых МРБ не определяется, требует дальнейшего поиска факторов риска и дополнительных исследований. У трех больных, у которых развился рецидив ОЛЛ, было проведено повторное молекулярное исследование всего спектра реаранжировок генов IgH и TCRG. Найденные маркеры соответствовали таковым при дебюте заболевания. Однако следует отметить, что качественный состав маркеров МРБ при рецидиве может изменяться. Европейские исследователи оценили результаты анализа реаранжировок генов Ig и TCR у больных в первом и втором рецидивах ОЛЛ и показали, что из 149 реаранжировок генов Ig и TCR, выявленных в первом рецидиве ОЛЛ, только 109 (73%) обнаружены повторно во втором рецидиве [Guggemos L., Haematologica, 2003]. Проведенные исследования позволяют рекомендовать выполнение повторной детекции реаранжировок генов IgH и TCRG у больных ОЛЛ на более поздних этапах наблюдения для определения вероятности развития рецидива.

В заключение представляется важным подчеркнуть, что проведенное нами исследование по изучению биологических особенностей острых лимфобластных лейкозов с помощью детекции и мониторинга реаранжировок генов IgH и TCRG позволило выявить ряд закономерностей молекулярной диагностики, мониторинга минимальной резидуальной болезни, выбора терапевтической тактики и оценки ее результатов.

Выводы:

1. Определена высокая терапевтическая эффективность новой программы «ОЛЛ-2005»: полная ремиссия достигается у 85% больных, при этом общая и безрецидивная выживаемость составляют, соответственно, 70% и 42%.

2. Обнаружено, что у 68% взрослых больных ОЛЛ выявляется низкая чувствительность опухолевых клеток к преднизолону, что является фактором, влияющим на общую выживаемость: общая двухлетняя выживаемость при обнаружении менее 25% бластных клеток в костном мозге на 7 день терапии преднизолоном составила 100%; более 25% бластных клеток - 70%.

3. Клональные реаранжировки генов тяжелых цепей иммуноглобулинов выявляются у 74% больных с В-линейным острым лимфобластным лейкозом. Реаранжировки генов Т-клеточного рецептора гамма обнаруживаются у 86% больных с Т-линейным ОЛЛ и у 71% больных с В-линейным ОЛЛ.

4. Показано, что в дебюте острого лимфобластного лейкоза у 73% больных выявляются две и более клональные перестройки генов тяжелых цепей иммуноглобулинов и/или Т-клеточного рецептора гамма.

5. Мониторинг клонапьных перестроек генов тяжелых цепей иммуноглобулинов и Т-клеточного рецептора доказал, что при острых лимфобластных лейкозах наблюдается очень медленное уменьшение объема опухолевой массы: минимальная резидуальная болезнь определяется после I фазы индукции у 94% больных, после II фазы индукции - у 70% больных, после консолидации - у 36% больных, а во время поддерживающей терапии - у 20%.

6. Показано, что обнаружение клональных перестроек генов тяжелых цепей иммуноглобулинов и/или Т-клеточного рецептора гамма на всех этапах лечения острого лимфобластного лейкоза определяет высокую (100%) вероятность развития рецидива, при этом не исключается возможность длительной персистенции маркеров минимальной резидуальной болезни при сохранении клинико-гематологической ремиссии.

Список опубликованных работ по теме диссертации:

1. В.Г.Савченко, Е.Н.Паровичникова, ИАДемидова, Л.С.Любимова, Л.П.Менделеева, Е.И.Желнова, Е.Н.Шуравина, М.А.Вернюк, О.А.Виноградова, Ю.В.Олыианская, И.В.Гальцева, Ю.Р.Давидян, Е.В.Домрачева, В.Л.Сурин, А.В.Мисюрин, И.А.Воробьев. «Детекция и мониторинг минимальной резидуальной болезни при острых лейкозах после трансплантации стволовых гемопоэтических клеток». Биотехнология и онкология, сборник тезисов I Российско-Американской конференции, Санкт-Петербург, Россия, 2005; стр.62.

2. Davidyan Y.R., Surin V.L., Parovichnikova E.N., Savchenko V.G. «Detection and monitoring of IgH and TCRG gene rearrangements in the patients with acute lymphoblastic leukemia (ALL)». Annals of Hematology, Acute Leukemias XI, Munich, Germany, 2006, AbN22, p.18.

3. Ю.Р.Давидян, В.Л.Сурин, Е.Н.Паровичникова, В.Г.Савченко. «Динамическое исследование реаранжировки генов иммуноглобулинов и Т-клеточных рецепторов при острых лимфобластных лейкозах». Гематология и трансфузиолсгия 2006; №2, стр. 3-10.

4. Parovitchnikova E.N., Davidyan Y.R., Galtzeva I.V., Surin V.L., Vorobjev I.A., Gretzov E.A., Isaev V.G., Savchenko V.G. «Parallel Molecular and Immunological ^Monitoring of Minimal Residual Disease in Adult Acute Lymphoblastic Leukemia (ALL) Patients». The American Society of Hematology 48th Annual Meeting and Exposition. Blood, 2006, v.108, abstract 2294.

Принято к исполнению 05/03/2007 Исполнено 06/03/2007

Заказ № 158 Тираж: 100 экз.

Типография «11-й ФОРМАТ» ИНН 7726330900 115230, Москва, Варшавское ш., 36 (495) 975-78-56 \v\vw.autoreferat.ru

 
 

Оглавление диссертации Давидян, Юлия Рубеновна :: 2007 :: Москва

Список используемых сокращений . . стр.

Вюдтю.*.-.~стр. 6.

Гпава 1. Обзор литературы.—------------------стр. 10.

Гпава 2. Материалы и методы исследования стр

2 1. Описание протоколов терапии острых пимфобпастных лейкозов стр

2.1 1. Протокол «ОПЛ-2005».стр. 39,

2,12 Протокол вРЬ+ОЛЛ с Гливеком».стр. 43,

2,1-3. Протокол *АЦ-МВ2002».стр- 44,

2.2 Клинихо-лабораторные исследования.стр.

2.3 Характеристика больных,,.,етр.

2.4 Методы исследования.стр.

2 41 выделение ДНК,.стр.

2.4.2 пир с сембиств-сябцофичными праимераии стр.

2.4.3. Анализ ПЦР продуктов.стр.

2 4 4 Выделение и секеенироеание полученных ПЦР продуктов стр

2 4 5 Синтез пациент-специфичных првймеров стр 54 2.4.6 ПЦР с пациент-специфичными преймервми . .стр

2.5. Статистический анализ полученных данных.стр.

2.6. Основные понятия.стр. 69.

2.7 Схемы программ химиотерапии. стр. 60.

Гта ее 3. Результаты и их обсуждение. .стр 65.

3.? Результаты печения больных ОЛЛ по протоколу 0/7/7-2005» и их обсуждение.стр. 65.

3 2 Результаты лечения больных ОЛЛ по протоколу «РЬ+ОЛЛ с Ггтивеком" и их обсуждение.-.стр. 90.

3.3. Результаты лечения больных ОЛЛ по протоколу «АИ-МВ2002» и их обсуждение.стр.

3.4. Результаты детекции реаранжировок генов 1дН и ТСЯв у больных

ОЛЛ.стр. 91.

3.5. Мониторинг минимальной резидуальной болезни.стр. 106.

 
 

Введение диссертации по теме "Гематология и переливание крови", Давидян, Юлия Рубеновна, автореферат

Актуальность проблемы.

Несмотря на интенсификацию лечения и возможность достижения полной ремиссий у 80-85% взрослых больных острым лимфобластным лейкозом (ОЛЯ), длительная безрецидивная выживаемость больных не превышает 30-40%. Как известно, при ОЛЛ существует множество прогностических факторов, определяющих эффективность терапии возраст пациента, число лейкоцитов в дебюте заболевания, иммунофенотип бластных клеток и цитогенетические аномалии, сроки достижения ремиссии [75]. Эти факторы в определенной степени позволяют проводить дифференцированную терапию ОЛЛ, что в ряде случаев значительно улучшает долгосрочные результаты Одним из весомых факторов прогноза является чувствительность опухолевых клеток к преднизолону определяемая с помощью подсчета числа бластных клеток в периферической крови или костном мозге на 7-ой день монотерапии этим препаратом Так процент достижения полной ремиссии у больных ОЛЛ, у которых бпастные клетки чувствительны к предниэолоку, составляет 87% Кроме того, доказано, что чувствительность опухолевых клеток к преднизалону влияет и на долгосрочные результаты терапии ОЛЛ: общая и безрецидивная выживаемость при чувствительности бластных клеток к преднизолону составляет 33% и 32%, при отсутствии - 22% и 17%, соответственно [18]. Этот фактор прогноза стал одним из ключевых в ходе создания нового протокола «ОЛЛ~2005», разработанного в отделении химиотерапии гемобластоэов и трансплантации костного мозга.

Исключительно важными факторами прогноза при острых лимфобластных лейкозах являются обнаружение специфических индивидуальных маркеров опухолевых клеток и динамическое исследование минимальной резидуальной болезни {МРБ) При мониторинге МРБ в ходе проведения терапии ОЛЛ европейскими исследователями была выявлена значимая корреляция между уровнем определяемого остаточного клона и вероятностью развития рецидива В случае обнаружения МРБ риск развития рецидива возрастает в 5-10 раз. Медиана длительности периода между обнаружением минимальной резидуальной болезни и возникновением рецидива составляет 4.1 месяца [50.123]

Существует несколько методов, используемых для исследования минимальной остаточной популяции лейкемических клеток определение аберрантного иммунофенотипа методом проточной флюорометрии. флюоресцентная гибридизация in situ (FISH} для детекции хромосомных перестроек, выявление хромосомных гюломок с помощью молекулярно-биологического метода (полимеразная цепная реакция, ПЦР) Следует отметить, что хромосомные аберрации являются «идеальными мишенями» для молекулярного мониторинга МРБ Однако проблема состоит в том, что зги маркеры выявляются не у всех больных Поэтому требуются иные, более универсальные подходы к детекции и мониторингу МРБ. в частности, определение клональных перестроек генов иммуноглобулинов и Т-клеточных рецепторов с помощью лолимеразной цепной реакции (ПЦР) Чувствительность этого метода высока: определяется I опухолевая клетка на 1000 - 10000 нормальных Динамическое исследование специфической pea ранжировки генов иммуноглобулинов и Т-клеточных рецепторов требует обнаружения индивидуальной мопекулярной метки в дебюте болезни и создания индивидувпьных дпя каждого больного праймеров Только в этом случае можно отслеживать минимальную остаточную популяцию лейкемичесжих клеток у каждого больного острым лимфобластным лейкозом

Таким образом, современное лечение ОЛЛ базируется не только на определении молекул ярно-био логических, иммунологических характеристик опухолевых клеток, но и на оценке изменения числа лейхемических клеток в процессе лечения Достижение молекулярной ремиссии и ее сохранение в течение терапии является одним из важнейших и независимых факторов прогноза при ОЛЛ и слуяагг основой для разработки оптимальных дифференцированных программ лечения ОЛЛ. Мониторинг минимальной резидуальной болезни при помощи полимера зной цепной реакции, использующей индивидуальные пациент-специфические праймеры позволяет идентифицировать пациентов с высокой вероятностью развития рецидива и имеет большую прогностическую ценность, определяя новый критерий ремиссии.

Цепь исследованиям

Детекция клональных перестроек генов иммуноглобулинов и Т-клеточных рецепторов у больных острым лимфобпастным лейкозом и мониторинг минимальной резидуальной болезни с помощью пациент-специфических праймеров в процессе лечения ОЛЛ

Задачи исследования:

1 Оценить как частоту достижения полной и молекулярной ремиссии, так и долгосрочные результаты лечения больных при использовании новых протоколов дифференцированной терапии острых лимфобластных лейкозов

2. Выделить молекулярные, клинико-лабораторные характеристики, которые определяют эффективность современной терапии острых лимфобластных лейкозов.

3. Создать высокочувствительные индивидуальные ПЦР-системы для выявления у больных острыми лимфобластными лейкозами клонвльных перестроек генов иммуноглобулинов

4 Определить частоту выявления и охарактеризовать спектр реаранжироеок генов иммуноглобупинов и Т-клеточных рецепторов при острых лимфобластных лейкозах.

5. Оценить изменение объема опухолевой массы у больных острым лимфобластным лейкозом на разных этапах химиотерапии и трансплантации костного мозга, используя е качестве маркеров индивидуальные праймеры к уникальным областям клонально перестроенных генов иммуноглобулинов и Т* клеточных рецепторов

6, Разработать алгоритм мониторинга реаранжироеох генов иммуноглобулинов и определить оптимальную частоту молекулярного обследования больных ОЛЛ

Научная новизна:

1. Определена эффективность терапии острых лимфобластных лейкозов нового протокола «ОЛЛ-2005». основанного не определении чувствительности опухолевых клеток к лредниэолону и модификации терапии в зависимости от этого критерия риска.

2. Охарактеризован спектр клональных перестроек генов иммуноглобулинов и Т-клеточных рецепторов у взрослых больных острым лимфобластным лейкозом, определена высокая частота реаранжировох генов у-цепей Т-клеточных рецепторов в исследуемой популяции больных

3. Показано очень медленное уменьшение объема опухолевой массы. несмотря на мощные химиотерепевткческне воздействия

-1 Показана персистенция минимальной резидуальной болезни до двух лет при сохранении клинико-гематолосической ремиссии

Практическая ценность:

1 Новый протокол терапии острых лимфобластных лейкозов «ОЛЛ-2005» используется в рамках многоцентровой кооперации 2- Разработан метод выявления реаранжировок генов иммуноглобулинов, а результате которого созданы индивидуальные пациент-специфические праймеры для мониторинга минимальной резидуальной болезни у больных ОЛЛ

3, Разработан алгоритм мониторинга минимальной резидуальной болезни 4 Мониторинг минимальной резидуальной болезни при проведении унифицированного лечения больных острым лимфобластным лейкозом показал необходимость модификации терапии, что будет использовано при разработке новых протоколов

 
 

Заключение диссертационного исследования на тему "Детекция и мониторинг специфической реаранжировки генов иммуноглобулинов в процессе лечения острых лимфобластных лейкозов"

Выводы:

1. Определена высокая терапевтическая эффективность новой программы о;ОЛЛ-2005* полная ремиссия достигается у 85% больных, при атом общая и безрецидивная выживаемость составляют, соответственно, 70% и 42%.

2. Обнаружено, что у 68% взрослы* больны* ОЛЛ выявляется низкая чувствительность опухолевых клеток к преднизолону, что является фактором, влияющим на общую выживаемость общая двухлетняя выживаемость при обнаружении менее 25% бластных клеток в костном мозге на 7 день терапии преднизопоном составила 100%. более 25% бластных клеток - 70%^

3. Кпональные реаранжировки генов тяжелых цепей иммуноглобулинов выявляются у 74% больных с В-линейным острым лимфобластным лейкозом Реаранжировки генов Т-клеточного рецептора гамма обнаруживаются у 86% больных с Т'лмнейным ОЛЛ и у 71% больных с В-линейным ОЛЛ,

4. Показано, что в дебюте острого лимфобластного лейкоза у 73% больных выявляются две и более кпональные перестройки генов тяжелых цепей иммуноглобулинов и/или Т-клеточного рецептора гамма

5. Мониторинг клональных перестроек генов тяжелых цепей иммуноглобулинов и Т-клеточного рецептора доказал, что лрн острых лимфоблэстных лейкозах наблюдается очень медленное уменьшение объема опухолевой массы минимальная резидуальная болезнь определяется после I фазы индукции у 94% больных, после II фазы нндукции - у 70% больных, после консолидации - у 36% больных, а во время поддерживающей терапии - у 20%

6 Показано, что обнаружение клональных перестроек генов тяжелых целей иммуноглобулинов и/или Т-клеточного рецептора гамма на всех этапах лечения острого лимфобластного лейкоза определяет высокую (100%) вероятность развития рецидива, при этом не исключается возможность длительной персистенции маркеров минимальной реэидуальной болезни при сохранении клиникмематологической ремиссии

 
 

Список использованной литературы по медицине, диссертация 2007 года, Давидян, Юлия Рубеновна

1. Вернюк М А Острые лейкозы с перестройками генов ВСТАВЬ и гена МЦ~ Диссертаций на соискание ученой степени кандидата медицинских наук. Москва. 2005.

2. Волкова М А. Клиническая онкогематопогия Москва, Медицина. 2001

3. Воробьев А И. Руководство по гематологии Москва, Медицина, 1985

4. Кисляк Н С Гемобластозы у детей Педиатрия, 1980, 5, с,3-12,

5. Ковалева Л Г Острые лейкозы Москва, Медицина, 1990.в. Кошель И.В Результаты погмхишотерэпни острого лимфобластного лейкоза у детей Гематология и трансфузиология, 1986, 4. с.13-16

6. Кошель И В. Курмашов В.И и соавт Эффективность полихимиотерапии острого лимфобластного лейкоза у детей за последние 10 лет Современные проблемы клинической гематологии и трансфузиологии, 1985, с. 177-178.

7. Кулимова Э.Б Диссертация на соискание ученой степени кандидата медицинских наук Лечение острых лимфоблвстных лейкозов взрослых Москва, 2001

8. Мэхоноаа Л.А , Маякоаа С А Результаты лечения острого лимфобластного лейкоза у детей, Гематология и трансфузиология, 1987, 2, с 3-7

9. Паровичникова Е Н Диссертация на соискание ученой степени доктора медицинских наук Новые программы лечения острых лейкозов Москва, 2003,

10. Переводчикова Н. Н. Химиотерапия опухолевых заболеваний Москва. Медицина. 2000.

11. Румянцев А Г Терапия острого лейкоза у детей Педиатрия, 1980, 5, с.57-62

12. Савченко В, Г, Паровичникова Е. Н, Исаев В Г. и совет Лечение острых лимфобластных лейкозов взрослых. Терапевтический архив, 1997, 7. с. 5-11.

13. Тимаков АМ Диссертация на соискание ученой степени доктора медицинских наук Отдаленные результаты терапии острого лимфобластного пейкоза у детей, Москва, 2003

14. Херрингтон С , Макги Дж Молекулярная клиническая диагностика Методы. Москва. Мир, 1999, с.376-393.

15. Annlno L . Vegna ML . Camera A el al Treatment of adult acute lymphoblastic leukemia {ALL), long-term follow-up of the GIMEMA ALL 0288 randomized study Blood. 2002, v.99, p 863-671

16. ArguelJo, J.R., Littfe A,-M,, Pay A,L et al Mutation detection and typing of polymorphic loci through double strand conformation analysis Nat. Genet, 1998, v-18, p, 192-194

17. Asselin В L , Whitin J.C. Coppola D J et al. Comparative pharmacokinetic studies of three asparaginase preparations J Clin Oncol, 1993. v 11, p. 17801786.

18. Bassan R , Battista R , Comeo G. et al Warubicin in the initial treatment of adults with acute lymphoblastic leukemia the effect of drug schedule on outcome Leuk Lymphoma, 1993, v,11, p. 105-110.

19. Bassan R , Lerede T , Rambatoi A et al The role of anthracyclines in adult acute tymphobtastic leukaemia Leukemia, 1996. v.10, suppl.2, p 56-61

20. Blom В., Verschuren M.C.M., Heemskerk M H M et al TCR gene rearrangements and expression of Hie pre-T celt receptor complex dunng human T-cell differetiation. Stood, 1999, v.93. p.3033-3043.

21. Borst J . Brouns С S,, de Vries E et al Antigen receptors on T and В lymphocytes: parallels in organization and function. Immunol Rev , 1993, v.132, p 49

22. Brisco M J , Condon J , Hughes E et al Outcome prediction In childhood acute lymphoblastic leukaemia by molecular quantification of residual disease at the end of induction. Lancet. 1994. 343. p 196-200

23. Broome J.D. L-Asparagmase discovery and development as a tumor-inhibitory agent Cancer Treat Rep. 1981. v.65, suppL4, p111-115.

24. Bruggemann M Pott C , Ritgen M. et al. Significance of Minimal Residual Disease in Lymphoid Malignancies. Acta Haematologica. 2004. w 112, p 111-119

25. Bruggemann M Raff T. Flohr T et al Clinical significance of minimal residual disease quantification in adult patients with standard-risk acute lymphoblastic leukemia Blood, 2006, v. 107, p.1116-1123.

26. Bruggemann M . van der Velden V H J Raff T et al Rearranged T-cell receptor beta genes represent powerful targets for quantification of minimal residual disease in childhood and adult T-cell acute lymphoblastic leukemia Leukemia. 2004. V 18, p 709-719

27. Capizzi RL., Cheng Y.C. Sequential high-dose cytosine arabmoside and asparaginase in refractory acute leukemia. Med Pediatr Oncol 1982, v. 10. suppM. 221-228

28. Cassileth PA. Andersen J.W . Bennett G M. Adutt ALL the Eastern cooperative oncofogy group experience Leukemia, 1992, v.6, p 178-181

29. Chao N J , Blume K Forman S J et al Long-term follow-up of allogeneic bone marrow recipients for Philadelphia chromosome-positive acute lymphoblastic leukemia Blood. 1995, v.85, p 3353-3354

30. Cheson B.D., Homing S.J. Coiffer B et al Report of an international workshop to standardize response criteria for non-Hodgkm's lymphomas. NCI Sponsored International Working Group J Clin Oncol., 1999, v. 117. p 1244 -1253

31. Childhood ALL Collaborative Group Duration and intensity of maintenance chemotherapy in ALL overview of 42 trials involving 12000 randomised children. Lancet, 1996. v.347. p. 1783-1788

32. Copelan E A. McGuire E.A. The biology and treatment of acute lymphoblastic leukemia in adults. Blood, 1995, p 1151-1168

33. Cortes J,E,. Kantarjian H M Acute lymphoblastic leukemia A comprehensive review with emphasis on biology and therapy Cancer. 1995, p 2393-2417

34. Cortes J.E. O'Brien S„ Pierce S The value of high-dose systematic chemotherapy and intrathecal therapy for central nervous system prophylaxis in different risk groups of aduit acute lymphoblastic leukemia. Blood, 1995, 86, p.2091-2103.

35. Coustan-Smith E . Sancho J Campana D. Clinical importance of minimal residual disease in childhood acute lymphoblastic leukemia Blood. 2000. v.96, p2691-2696.

36. Coyle L A. Papaioannou M,. Yaxley J.C et al. Molecular analysis of the leukaemic B-cell in adult and childhood acute lymphoblastic leukaemia British Journal of HaemoJology. 1996, v. 94. p.685-693

37. Cross N O P Quantitative PCR techniques and applications British Journal of Haemotology, 1995, v 89 p 693-697

38. Edry E., Melamed D Receplor editing in positive and negative selectoon of B lymphopoiesis. The Journal of Immunology, 2004. v. 173. p.4265-4271

39. Escudier S M. Albrtar M., Robertson L.E. et al Acute lymphoblastic leukema following preleukemic syndromes in adults Leukemia. 1996. v 10, p 473-477

40. Esley E H. Use of colony-stimulating factors in the treatment of acute myeloid leukemia. Blood, 1994. v.83, p 2015-2019

41. Paderl S , Kantarjian H Talpar M. Clinical significance of cytogenetic abnormalites In adult ALL Blood, 1998. v.91, p. 3995-4011

42. Faded S , Kantarjian H , Thomas D et al Oulcome of Philadelphia chromosome-positive adult acute lymphocytic leukemia Leuk Lymphoma, 2000, v.36, p.263-273

43. Felix C.A. Lange B.J. Chessels J.M Pediatric acute lymphoblastic leukemia challenges and controversies in 2000 Hematology 2000, ASH, Education Program Book Washington p.285-302

44. Ferrando AA. Look A T Clinical implications of recurhng chromosomal and associated molecular abnormalities in acute lymphoblastic leukemia. Semm Hematof., 2000, v.37. p.381-395.

45. Gaynon P S . Tngg M E , Bleyer W A et al Childrens Cancer Group Trials in childhood acute lymphoblastic leukemia 1983-1995 Leukemia, 2000. v 14. p,2223-2233.

46. Goekbuget N. Arnold R , Buechner Th et al. Treatment of adult acute lymphoblastic leukemia. Blood. ASH 2001, abstf 3338.

47. Gokbuget N , Hoelzer D Meningeosis leukaemika in adult acute lymphoblastic leukemia J Neurooncol ,1998, v.38, p.167-180

48. Gokbuget N. Raff R., Bruggemann M et al Risk/MRD adapted GMALL tnate in adult ALL. Ann Hematol. 2004. v.63, suppU. p, 129-131

49. Goker E , Lin J.T, Trippetyl T et al Decreased polyglutamation of metothrexate in acute lymphoblastic leukemia blasts in adults compared to children with this disease Leukemia, 1993. v.7, p. 1000-1007

50. Goldstein G., Shpilberg O., Raanam P. Acute lymphoblastic leukemia in adults treated with German mutticenter study group protocols. Harefuah, 2000, v 139. p,255.

51. Groupe Fransais de Cytogenetique Haematotogue A Collaborative Study of the Group Francais de Cytogenetique Hematologique. Blood, 1996, v,67, p,3135-3144

52. Guggemos A., Eckert C„ Szczepanski T et al Assessment of clonal stability of minimal residual disease targets between l" and 2nd relapse of childhood precursor B-cell acute lymphoblastic leukemia Haematologica, 2003, v.86, p 737746

53. GugUotta L., D'Angelo A, Befmonle M N et al Hypercoagulabitrty dunng L-asparaginase treatment the effect of antrthrombln III supplementation in vivo British Journal of Haemotology, 1990, v. 74. p.465-470.

54. Hoelzer D Acute lymphoblastic leukemia more progress in children less in adults N Eng J Med , 1993, v 329, p 1343-1347

55. Hoelzer D, Gokbuget N New approaches to acute lymphoblastic leukemia in adults where do we go? Semin Oncol,, 2000, v 27. p 540-549

56. Hoelzer D.« Gokbuget N. Martin H Management of poor nsk adult ALL European Hematology Association. Educational Program Book, 1998. p.34-37

57. Hoelzer D., Seipelt G Leukamietherapie UNI-MED Verlag AG Bremen 1998, p.66-83

58. Hoelzer D , Thiel E . Loffler H et al. Prognostic factors in a multicenter study for treatment of acute lymphoblastic leukemia in adults Blood, 1988, v.71r p. 123-131

59. Hoflbrand V., Foroni L. immunoglobulin heavy-chain gene rearrangement in adult acute lymphoblastic leukemia reveals preferential usage of JH-proximal variable gene segments Blood, 2001, v,97, p 2716-2726,

60. Hoflbrand V, Foconi L Molecular analysis of minimal residual disease in adult acute lymphoblastic leukaemia Best Pract Res Clrn Haematol, 2002, v.15, p 7190

61. Hru£Ak O., Poiwit-MacOonald A Antigen expression patterns reflecting genotype of acute leukemias. Leukemia. 2002, v. 16. p. 1233-1258

62. Hurwitz C A. Silverman L B , Schorin M A Substituting dexamethasone for Pr coplicates remission induction in children with ALL. Cancer, 2000, p 1064-1969

63. Jaffe N , Traggis D . Das L et al L-asparaginase in the treatment of neoplastic diseases in children Cancer Res., 1971, v,3> p,81-B3,

64. Janeway C , Travers P , Walport M et al "Immunobiotogy". Garland Publishing, Hew York, 2001.

65. Kantaqian H , O'Brien S. Beran M Update of HYPER-CVAD program in newly-diagnosed adufls with acute lymphocytic leukemia Btood. 1995, v 86, abstr680

66. Kantarjian H M , O'Brien S , Smith T.L. et al. Results of treatment with hyper-CVAD, a dose-intensive regimen, in adult acute lymphocytic leukemia. J Clin Oncol., 2000, v.18, p.547-581

67. Kaspers G.J., Veennan A.J. Popp-Snijders C, et al Comparison of the antileukemic activity in vitro of dexamethasone and prednisolone in childhood ALL Med Pediatr Oncology. 1996, v.27. p. 114-121.

68. Kneba M . Bolz B , Lmke B et al. Characterization of clone-specific rearranged T-cell receptor gamma-chain genes in lymphomas and leukemias by the polymerase chain reaction and DNA sequencing Btood, 1994, v 84, p 574-581.

69. Krejci О . Prouïova Z, Horvath О et al Cutting edge. TCRG gene is frequently rearranged in adult В lymphocytes J Immunol. 2003. v.171, p. 524-527

70. Lambe M Ekbom A Cancers coinciding wilh childbearing delayed diagnosis during pregnancy? BMJ., 1995, v.311, p. 1607-160S

71. Laport G.F. Larson R A. Treatment of adult acute lymphoblastic leukemia. Semin Oncol, 1997, v.24, p,70-82.

72. Larson RA Dodge R.K Bums C R et al A five-drug remission induction regimen with intensive consolidation for adults with acute lymphoblastic leukemia Cancer and Leukemia Group В Study 8811 Blood, 1995. v 85, p,2025-2035

73. Larson RA. Fretzin M H. Dodge R.K. et al Hypersensitivity reaction to L-asparagmase do not impact on the remission duration of adults with acute lymphoblastic leukemia Leukemia, 1998, v. 12. p.660-666.

74. Larson RA , Stock W., Hoelzer D et al. Acute lymphoblastic leukemia m adults ASHH Educational Book. Hematology. 1998. v.4, p 44-62

75. LeBien T W , Elstrom R.L , Moseley M et al Analysis of immunoglobulin and T-cell receptor gene rearrangements in human fetal bone marrow В lineage celts Blood. 1990, vol.76, p 1196

76. Levitt L , Lin R. Biology and treatment of adutt acute lymphoblastic leukemia West J Med , 1996. v.164. p. 143-155.

77. Malortey К W Shuster J, J. Camitta В A Long-tetm results of treatment studiesprotocol for childhood acute lymphoblastic leukemia Pediatric Oncology Group studies from 1986-1994 Leukemia. 2000. v 14. p 2276-2285,

78. Mathe G., Amiel J.L., Schwarzenberg M et al Follow-up of the first pilot study on active immunotherapl of acute lymphoblastic leukemia: a critical discussion BtamedictneH 1962, v,26, p 29-35

79. Mauer A M Adult and childhood acute lymphoblastic leukemia are they different diseases? Am J of Hematology, 1993, v.42, p. 127 -132.

80. Miller D Acute Lymphoblastic Leukemia in Children an Update of Clinical, Biologic and Theraputic Aspects Critical Reviews In Oncology/Hematology, 1990, v 10, P-131-163

81. Moreau E.J,, Langerac AW, van Gastel-Mol E.J. et al Easy detection of all T cell receptor gamma (TCRG) gene rearrangements by Southern blot analysis recommendations for optimal results Leukemia, 1999, v. 13, p. 1620-1626

82. Moreira I , Fofoni L Heterogeneity of VH-JH gene rearrangement patterns: an insighl into the biology of B cell precursor ALL Leukemia. 2001. v15. p,1527-1536.

83. Mortuza FY, Moreira IM, Papaioannou M. et al. Immunoglobulin heavy-chain gene rearrangement in adult acute lymphoblastic leukoma reveals preferential usage of JH-proximal variable gene segments Blood, 2001, v 97, p.2716-2726

84. Mortuza F Y , Papaioannou M,, Moreira I M et al Minimal residual disease tests provide an independent predictor of clinical outcome in adult acute lymphoblastic leukemia J Clin Oncol., 2002. v20, p.1094-1104

85. Nachman J. Adoîescens and young adults with acute lymphoblastic leukemia a pediatric oncology perspective Hematology, 1999, ASH. Education Program Book, p.82-87.

86. Nestwt M.E., Eftel I, Hammond G D et al L-asparaginase as a single agent in acule lymphocytic leukemia: survey of studies from children® cancer study group Cancer Treat Rep., 1981, v.65. suppl.4, p 101-108

87. Nyvold C. Madsen H.O , Ryder LP. et al Precise quantification of minimal residual disease at day 29 allows identification of children with acute lymphoblastic leukemia and an excellent outcome Blood, 2002. v 99, p. 1253-1258,

88. Ottmann OG, Druker B J Sawyers C.L. et al. A phase II study of Jmatinlb Mesylate (Glivec) in patients wrih relapsed or refractory Philadelphia chromosome-positive acute lymphoid leukemias BJood. 2002, v. 100. p. 1965-1971

89. Ottmann OG . Hoeltzer D . Gracein E. et aJ. Concomitant grannulocyte colony-stimulating factor and Induction chemotherapy in adult acule lymphoblastic leukemia a randomized phase 111 Inal Blood, 1995, v 85. p.444-450

90. Panzer-Grumayer E R . Shneider M . Panzer S et al Rapid molecular response dunng early Induction chemotherapy predicts a good outcome in childhood acute lymphoblastic leukemia Blood, 2000. v 95, p.790-794

91. Patel S.S., BenfieW P Pegasparaginase Clin fmmumother. 1996, v.5. p.492-498

92. Pinkel D . Woo S. Prevention and Treatment of Meningeal Leukemia in Children

93. Blood. 1994. v 64. p. 355-366

94. Proctor S.J- Acute lymphoblastic leukemia in adults, the case for strategic shift in study approach. British Journal of Haemotology, 1994, v 88, p.229-233.

95. Put C.H. Biology and treatment of Acute Lymphoblastic Leukemia J Pediatr 1994, v 124, p 491-499

96. Rajewsky K Clonal selection and learning in the antibody system Nature, 1996 v 381. p 751-758.

97. Rao S.P., Riggs J.M., Friedman D,F et al Biased VH gene usage in early lineage human B ceHs evidence for preferential |g gene rearrangement in the absence of selection The Journal of Immunology, 1999, v 163. p,2732-2740

98. Rassenti L.Z. Pratt L.F, Chen P.P. et al Autoantibody-encoding kappa L chain genes frequently rearranged in lambda L chain-expressing chronic lymphocytic leukemia The Journal of Immunology. 1991. v. 147, p 1060-1066

99. Reiter A,, Schrappe M. Tiemann M et al Improved treatment results in childhood B-Cell neoplasms with taitored intensification of therapy a report of the BerlinFrankfurt-Munster Group trial NHL-BFM 90. Blood, 1999, v 94, p 3294-3306.

100. Ribera J.M., Onol A., Gonzalez M et al Treatment of Philadelphia chromosome (Ph)-posihve acute lymphoblastic leukemia (ALL) with concurrent chemotherapy and Imatinib mesylate ASH Annual Meeting Abstracts Blood. 2004, v. 104, abstr 4483

101. Sallan S E Influence of intensive L-asparaginase in the trearment of childhood non-T-cell acute lymphoid leukemia Cancer Rec„ 1983, v.43, p. 5601-5608

102. Sasso E.H. van Dijk K.W., Bull A P et al A fetally expressed immunoglobulin VH1 gene belongs to a complex set of alleles. J Clin Invest, 1993. v 91, p.49

103. Schrappe M R<sk-adapted treatment for childhood acute lymphoblastic leukemia results from the ALL-BFM Sudy Group. 5mCongress of the European Haemotology Association. Birmingham, Education Book. 2000. p, 102-106

104. Schrappe M , Reiter A , Ludwig W.O. el at. Improved outcome in childhood acute lymphoblastic leukemia despite reduced use of anthracyclines and cranial radiotherapy results of tnal ALL-8FM 90 Blood, 2000, v. 95, p 3310-3322

105. Schrappe M , Reiter A , Riehm H et al Long-term results of four consecutive trials in chilhood All performed by the ALL 8FM study group from 1981 to1995 Leukemia, 2000, v. 14, p 2205-2222

106. Sievers E.L, Larson RA. Stadtmauer E.A el al Efficacy and safety of gemtuzumab ozogamictn in patients with C033-positive acute myeloid leukemia in first relapse J Clm Oncol., 2001, v.19, p 3244-3254

107. Silverman LB, Declerck L, Sallan S E et al, Resufts of Dana-Farber Institute. Consortium for children with newty diagnosed acute lymphoblastic leukemia (19811995). Leukemia, 2000, v 14, p 2247-2256

108. Silverman L B., Gebber R D., Oalton V.K et al Improved outcome for children with ALL results of Dana-Farber Consortium Protocol 91-01. Btood. 2001. v 97. p1211-1218.

109. Simone J.V., Aur R JA, Pinkel D. et al. Combined modality therapy of acute lymphocytic leukemia. Cancer, 1975, v.35, p.25.

110. Stock W Treatment of adult ALL risk adapted strategies ASH. Education Program Book, Hematology, 1999, p 87-96

111. Sullivan MP, Chen T , Dymenl P et at Equivalence of Intrathecal chemotherapy and radiotherapy as central nervous system prophylaxis m children with acute lymphatic leukemia: a pediatric oncology group study Blood, 1982, v.60, p.948 -958.

112. Sykes P.J . Neoh S H , Brisco M J et al Quantitayion of targets for PCR by use of limiting dilution Biotechniques 1992, v 13, p 444-449.

113. Szczepanski T., Ftohr T., van der Velden VH J et a) Molecular1 monitoring of residual disease using antigen receptor genes in childhood acute lymphoblastic leukaemia Best Pract Res Clin Haematol.„ 2002. v 15, p. 37-57

114. Szczepanski T ., Orfao A. van der Velden V H J el al, Minimal residual disease in leukemia patients Lanoel Oncol, 2001, v 2, p.409-417

115. Szczepanski T., Pongers-Willemse M.J., Kamps WA. et al Molecular discnmination between relapsed and secondary acute lymphoblastic leukemia proposal for an easy stralegy Med Pediatr Oncol, 2001, v 36, p 352-358

116. Szczepanski T. Pongers-Wiflemse M J. Langerak A W et al Unusual immunoglobulin and T-cell receptor gene rearrangement patterns in acute lymphoblastic leukemias. Curr Top Microbiol Immunol., 1999, v 246, p.205-215.

117. Szczepanski T Pongers-Willemse M.J., van Weerden J F elal Precursor-B-ALL with DH-JH gene rearrangements have an immature immunogenotype with a high frequence of olrgoctonalJty and byperpkwdy of chromosome 14. Leukemia, 2001, v.15. p 1415-1423